CS213399B2 - Method of making the substance with bacteriostatic effect - Google Patents
Method of making the substance with bacteriostatic effect Download PDFInfo
- Publication number
- CS213399B2 CS213399B2 CS797378A CS737879A CS213399B2 CS 213399 B2 CS213399 B2 CS 213399B2 CS 797378 A CS797378 A CS 797378A CS 737879 A CS737879 A CS 737879A CS 213399 B2 CS213399 B2 CS 213399B2
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- microorganism
- ncib
- culture
- beggiatoa
- hours
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/66—Microorganisms or materials therefrom
- A61K35/74—Bacteria
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K8/00—Cosmetics or similar toiletry preparations
- A61K8/18—Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
- A61K8/96—Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution
- A61K8/99—Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution from microorganisms other than algae or fungi, e.g. protozoa or bacteria
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61Q—SPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
- A61Q19/00—Preparations for care of the skin
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
- C12N1/205—Bacterial isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P1/00—Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
- C12P1/04—Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using bacteria
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K2800/00—Properties of cosmetic compositions or active ingredients thereof or formulation aids used therein and process related aspects
- A61K2800/10—General cosmetic use
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Virology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Birds (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Oncology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Cosmetics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
Vynález se týká způsobu výroby sloučeniny s bakteriostatickým účinkem.
Celá řada teplých sirných pramenů . v Evropě obsahuje mikroorganismy, které při nahromadění v místech, kde vodní proud je pomalý, vytvářejí bílou až světle šedou želatinovitou látku, která byla pojmenována baregín podle teplých pramenů v Bareges, francouzských lázních v ' Pyrenejích. Baregín je vlastně seskupení různých bakterií, které jsou schopné fixovat sirovodík a které snesou vyšší teplotu. Některé z těchto bakterií vyměšují slizovitou látku, kterou je povrch bareginu povlečen. Baregín obsahuje mrtvé i živé .elementy.
Léčivé vlastnosti bareginu byly před určitou dobou prokázány .a tento materiál byl užíván v počátečních stadiích léčby reumatických onemocnění ve formě masáží a pro léčbu některých kožních chorob. Může být užit také jako přísada do některých typů kosmetických prostředků.
Výroba a izolace bareginu byly předmětem řady patentů, které se vztahovaly zejména na jeho pěstování za přírodních podmínek, podstatou tohoto pěstování bylo stékání pramenité vody po různých materiálech. Podobný způsob se běžně užívá v Termes Nationaux d‘Aix-les-Bains ve Francii. Zařízení užívané k tomuto účelu sestává z vertikální betonové zdi, na jejímž vrcholu skapává horká voda z. pramene, která jě přiváděna potrubím a pomalu stéká po stěnách zdi. Na zdi se pak vytvářejí vločky . bareginu, jejichž velikost. je přibližně 1 cm, .a . .tyto vločky lnou k hrubé stěně betonové zdi. Z vloček bareginu se postupně vytváří želatinový film, který povléká celou zeď a čas od času se získává tak, že se zeď 'oči-stí drsným kartáčem. Teplota vody musí . být . 43 až 47 °C, v závislosti na tom se pak . řídí . vzdálenost zdi od pramene, ' obvykle je vsak nutno, aby zeď byla v jeho bezprostřední blízkosti. Výtěžek tohoto postupu je velmi nízký, pohybuje . se obvykle v blízkosti 5 g sušiny bareginu na 1 m2 za měsíc. Mimoto je tento výtěžek závislý na meteorologických podmínkách.
Baregín byl podroben mikrobiologickýma biochemickým studiím. Tyto pokusy prokázaly metabolismus sirovodíku a dalších sloučenin s obsahem síry, nevysvětlily však příčinu léčebných vlastností bareginu. Z . velkého počtu mikroorganismů, které tato látka obsahuje, je často* uváděn mikroorganismus Beggatoa. Izolace tohoto mikroorganismu však obvykle nebyla prováděna z bareginu, avšak z matečných louhů nebo promývací vody. Mimoto byly tyto izolace velmi pracné a obtížné a kultura takto izolovaného mikroorganismu poskytovala jen - velmi nízké výtěžky, mimo jiné proto, že mikroorganismus se velmi snadno porušuje a obsahuje ' velké množství vody. V průběhu 48 hodin bylo možno získat při teplotě 28 °C v 1 litru pouze 1,2 g čerstvé hmoty mikroorganismu bez míchání živného prostředí, které obsahovalo 2 g extraktu z kvasnic, 0,1 g octanu sodného· a aktivní katalázu.
Vynález si klade za úkol navrhnout způsob výroby látky s bakteriostatickým účinkem podobné bareginu, ekonomicky a v průmyslovém měřítku.
Předmětem vynálezu je tedy způsob výroby látky s bakteriostatickým účinkem, vyznačující se tím, že se pěstuje alespoň jeden mikroorganismus typu Beggiatoa č. NCIB 11418 až NCIB 114.25 ve vodném živném prostředí, obsahujícím 1 -až 4 g extraktu z kvasnic, 0,1 až 0,3 g chloridu vápenatého a 0,2 až 1 g octanu sodného nebo amonného v 1 litru vody, po dobu 5 až 36 hodin při teplotě 20 až 50 °C, při pH 6 až 8, za stálého míchání za aerobních podmínek s následným oddělením biologické hmoty a/nebo živného prostředí.
Bylo zjištěno, že biomasa mikroorganismu typu Beggiatoa i živné prostředí, v němž tento mikroorganismus byl pěstován, mají bakteriostatický účinek. Bylo- rovněž prokázáno, . že. - křehkost . stěn tohoto mikroorganismu nebrání jeho intenzivnímu pěstování za trvalého energického míchání a .že - se naopak mikroorganismus rozmnožuje i tehdy, když vlákna, která vytváří, jsou rozlomena na několik úlomků. Z tohoto důvodu je výhodné homogenizovat očkovací materiál mikroorganismu typu Beggiotoa před . naočkováním- živného prostředí tímto materiálem.
/Výraz „mikroorganismus typu Beggiatoa“ je- užíván . -v ' průběhu popisu úmyslně . -- místo názvu . „.mikroorganismus .. rodu Beggiotoa“. ;Rod ... B.eggiatoa· přísluší do řádu myxobacter-ales, - do - - čeledi. . - Beggiatoaceae - (Bergey^ МаодаЬ-of - - Determinative Bacteriology, - 8. vydání, - Weverly. Press, BaltimoeerUSA- - 1974, / strany -112 - -až 114). Z této práce, která je zcela - základní, vyplývá, že - třídění mikroorganismů tohoto chodu je -z větší části nejisté, - protože - -chybí dostatečné množství informací. -Z - tohoto - - důvodu -máme ža to, že - by ani - nemělo - být používáno- přesného· termínu - rod, - protože - prozatím - je zařazení - uváděného- mikroorganismu otevřenou - otázkou. V průběhu popisu se tedy pod pojmem „mikroorganismus typu - - Beggiatoa“ rozumí bakterie tvořící vlákna -charakteristické pro půdy a prameny s obsahem síry, s možností pohybu pomocí bičíku -a se současným vytvářením řetězců buněk, tak jak jsou zařazovány do rodu Beggiatoa,.
Mikroorganismy typu Beggiatoa je možno s výhodou získat izolací z bareginu. Bylo zjištěno, že tuto izolaci je možno provést a získaný kmen je - možno dále- pěstovat při poměrně dobrém výtěžku - bakteriostatické účinnosti. Bylo také prokázáno, že i problém konzervace získaného materiálu je možno úspěšně řešit.
K izolaci kmene těchto mikroorganismů se uloží vzorek bareginu na živné prostředí s obsahem gelózy a tento vzorek se pak inkubuje 5 až 36 hodin při teplotě 25 - až 50 °C. Po této době - se- oddělí - zóna, v- níž jsou vlákna mikroorganismu typu Beggiatoa prosté znečištěním a tento materiál se vloží na živné prostředí s obsahem gelózy. Toto prostředí má být identické s prvním prostředím. Inkubace, odběr čistého materiálu a další pěstování je obvykle .nutno dvakrát nebo třikrát opakovat. ;
Tento postup byl použit k izolaci osmi kmenů, které byly uloženy 12. července 1978 do National Collection of industrial Ba-cteria (NCIB), Aberdeen, Skotsko pod čísly NCIB 11418 až 114 25/Způsob podle vynálezu je možno provádět -alespoň -s jedním z těchto osmi kmenů.
Živné prostředí s obsahem gelózy, které je užíváno pro izolaci uvedeného mikroorganismu, obsahuje s výhodou 1 až 4- g extraktu z kvasnic a 10 až 20 g agaru v 1 litru vody.
Vodné živné prostředí, které se s výhodou užívá pro - pěstování - tohoto mikroorganismu, obsahuje 1 až 4 g extraktu z kvasnic, 0,1 až 0,3 g - chloridu vápenatého - a 0,2 až - l - g octanu sodného nebo amonného- v 1 litru vody. Jako voda se s výhodou - užije teplý pramen s obsahem síry. '
K ochraně vyvíjející se kultury je možno přidat k živnému prostředí katalázu, například do množství 5 až 20 mezinárodních jednotek - (.IU) - - na - ml.- Mikroorganismus ‘se pěstuje po dobu - - 5 až 36 hodin při teplotě - 20 až 50 °C a při hodnotě pH v rozmezí 6 až 8. Výhodná doba pěstování - je - 8 až 10 - hodin- při teplotě - 30. až 40 - °C a při neutrálním, pH. - .
Látka - z bakteriostatickým účinkem, - která se - získává způsobem podle vynálezu, se užívá ke kožním masážím nebo jako složka kosmetického přípravku,, například k ošet-řování pokožky. Biomasa může být konzerzována v suché formě, - s výhodou lyofilizací, vzhledem ke své křehkosti a nízkému - obsahu sušiny. /.·.*:.·.?
Následující příklady slouží k - osvětlení - povahy a rozsahu způsobu podle - vynálezu.- V těchto příkladech se -důsledně - - užívá - názvu „Beggiatoa“ místo svrchu uvedeného výrazu „mikroorganismus typu Beggiatoa“.
Přikladl
Izolace kmenů /
Vločka čerstvého - bareginu, odebraná - z
Thermes Nationaux d‘ Aix-les-Bains, se uloží do středu Petriho misky, která obsahuje ml živného prostředí -s obsahem - . gelózy, připraveného z následujících složek: 213399
Složka Množství extrakt z kvasnic (Difco) 2g agar. (Bacto-Difco) 15g zfiltróvaná termální voda . .
ťz Aix 100ml destilovaná voda 900ml
Miska se pak uloží horní stranou směrem dolů do termostatu při teplotě 30 °G na 30 hodin. Pak se zkoumá při malém zvětšení pod. mikroskopem na přítomnost spirálních .struktur, které jsou charakteristické pro Beggiatoa a jsou výsledkem způsobu jejich pohybu. Některé spirály je možno vidět 1 pouhým okem. Při mikroskopickém pozorování je rovněž možno objevit zóny, v nichž jsou vlákna mikroorganismu prostá znečištěnin. Tato zóna se vyřízne sterilním skalpelem a uloží na plotnu čerstvého agaru stejného· složení, a to tak, aby povrch s obsahem vláken Beggiatoa byl přiložen na neporušený povrch nového živného prostředí. Druhá agarová plotna se pak znovu inkubuje 24 hodin při teplotě 30 °C. Znovu se vyřízne zóna, v níž jsou vlákna pokud možno bez znečlštěnin, izolovaná zóna se znovu dále pěstuje a tento postup se opakuje ještě dvakrát;. Tímto způsobem se získá čistá kultura Beggiatoa. ·..··.
Příklad 2
Uchovávání kmenů
Způsobem podle příkladu 1 bylo izolováno 10 kmenů. Tyto kmeny se od sebe liší průměrem svých vláken, rychlostí svého pohybu a tvarem kolonií na agaru. Tyto kmeny je možno uchovávat třemi různými způsoby v závislosti na tom, .je-li požadováno uchovávání na krátkou. dobu, středně dlouhou dobu nebo na dlouhou dobu.
2. 1} Uchovávání na krátkou dobu
Plotna se uchovává v lednici při teplotě 4 °C a má být dobře uzavřena. Přeočkování kmene se musí provádět každých 10 dní, protože živné prostředí má tendenci к vysychání.
.2.2) Uchovávání na středně dlouhou dobu
К tomuto účelu se připraví polotuhé prostředí následujícího složení:
Složka Množství extrakt z kvasnic 2g chlorid vápenatý 0,1g octán sodný 0,5g agar 2g zfiltróvaná termální voda 1000 ml
Po sterilizaci tohoto živného prostředí se přidá kataláza z hub v množství 10 IU/ml.
Roztok katalázy se předem sterilizuje filtrací za studená filtrem Mllllpore, který obsahuje mikroskopické póry o průměru 0,22 μΐη.
Malá krychle agaru s obsahem Beggiatoa se vloží do zkumavky, která obsahuje 10 ml svrchu uvedeného prostředí, a inkubuje se při 30 °C. Beggiatoa se vyvíjí, v horní části zkumavky. Zkumavka. se inkubuje 3 týdny při teplotě 30 °C. Kultura se pak dále přenáší v množství 0,1 ml na další zkumavku.
2.3) Uchovávání na delší dobu
Stejným způsobem jako v příkladu 3 se připraví v míchaném prostředí kultura stará 24 hodin. Po odstředění se usazenina promyje čerstvým Ringerovým roztokem. Pak se získaný materiál zmrazí a lyofilizuje. Tento materiál je možno skladovat několik měsíců v lednici v dobře uzavřené nádobě. Při opětném přidání vody se fragmenty vláken počnou znovu vyvíjet.
Příklad 3
Pěstování kmenů
3.1) Očkovací materiál
Malá agarová krychle 5 mm3 se vyřízne z agaru, získaného způsobem podle příkladu
1. Tato krychle se pak vloží do baňky o obsahu 500 ml s obsahem 100 ml živného prostředí následujícího složení:
Složka množství extrakt z kvasnic 4g chlorid vápenatý 0,2g octan amonný 1g zfiltróvaná termální voda 1000 ml
Toto živné prostředí má pH 6,6. Baňka se pak vloží do míchačky o 150 otáčkách za minutu při výkyvu 1,25 cm a mikroorganismus se tímto způsobem pěstuje 16 hodin při teplotě 30 °C. Takto získaná kultura se homogenizuje po dobu 15 až 30 sekund za sterilních podmínek v přístroji Sorvall Omnimixer. Takto homogenizovaná kultura je očkovacím materiálem.
3.2) Pěstování ml svrchu získaného očkovacího materiálu se vloží do baňky o obsahu 500 ml s obsahem 100 ml téhož živného prostředí, které bylo užito pro· přípravu očkovacího materiálu. Baňka se pak inkubuje 24 hodin při teplotě 30 °C na míchačce. Získá se 0,8 g suš;ny Beggiatoa na 1 litr živného prostředí. V případě, že se tento postup opakuje při použití různých kmenů a současně se mění podmínky pěstování ve svrchu uvedeném rozmezí, je možno získat 12,5 až 2 g sušiny Beggiatoa na 1 litr živného prostředí.
3.3) Stanovení rychlosti růstu
Běžný nefelometrický způsob obvykle uží213399 váný pro bakteriální kulturu, není možno užít v případě Beggiatoa, protože tento mikroorganismus roste ve formě vložek. Je tedy nutno přizpůsobit i způsob stanovení. Vzorky kultur se odebírají každé 2 hodiny a homogenizují se v přístroji Sorvall Omnimixer. Optická hustota při 600 nm se stanoví pomocí spektrofotometru. Homogenizovaný vzorek se usazuje jen pomalu a dovoluje tedy poměrně přesné odečtení. Tímto způsobem je možno získat informace o počtu buněk v jednotce živného prostředí.
3.4) Stanovení sušiny
Běžné sušení při vyšší teplotě neposkytuje v případě Beggiatoa reprodukovatelné výsledky. Pravděpodobnou příčinou je velmi vysoký obsah vody v tomto mikroorganismů. Aby bylo možno získat reprodukovatelné hodnoty, je nutno sušit lyofllizací vždy alespoň 400 ml hotové kultury.
3.5) Stanovení bakteriostatické účinnosti
Běžný způsob vyhodnocování bakteriostatické účinnosti, tak jak byl navržen Public Health Laboratory Service Committee a popsán v Brltish Med. J. 406 (1965), nepodává uspokojivé výsledky v případě Beggiatoa, protože je prováděn ve zkumavkách. Protože Beggiatoa je přísně aerobní, není koncentrace kyslíku dosažitelná ve zkumavce dostatečně. Je tedy nutno tuto metodu upravit a užít míchané baňky, aby bylo možno zajistit dostatečný přívod kyslíku.
Připraví se tři řady baněk o obsahu 50 ml s obsahem 18 ml živného bujónu (Nutrient Broth Difco). Baňky první a druhé řady se
Patogenní mikroorganismus | Účinnost biomasy (% inhibice) |
P. aeruginosa | 70 |
S. aureus | 100 |
E. coli | 70 |
Příklad 4 | |
Srovnání |
Bakteriostatická účinnost přírodního bareginu se stanoví způsobem uvedeným v příkladu 3.5. Získá se 100 %, 83 % a 96 % účinnosti pro mikroorganismy P. aeruginosa, S. aureus a E. coli po inkubaci 16 hodin. Z tohoto údaje je zřejmé, že bakteriostatická účinnost biomasy, získané způsobem podle vynálezu, je téměř tak vysoká jako účinnost bareginu. Jde o pozoruhodný výsledek, protože biomasu podle vynálezu Je možno vyrábět průmyslovým způsobem ve vysokém výtěžku, kdežto baregin je možno· získávat Jen velmi pomalu a jen ve velmi malých množstvích. Z tohoto důvodu Je zajímavá i účinnost supernatantu, který zbývá po odstředění, i když je nižší než účinnost biomasy.
očkují vždy 0,4 ml kultury patogenního kmene ve stáří 24 hodin. Byly užity tři patogenní kmeny, a to Pseudomonas aeruginosa ATGC 10145, Escherichia coli ATCC 11755 a Staphylococcus aureus ATCC 12 600.
Vzorky bakteriostatického materiálu se připravují tak, že se odstředí kultura připravená podle odstavce 3.2, avšak pouze po dobu 8 hodin. Odstředěná blomasa se homogenizuje a znovu se uvede v suspenzi ve fyziologickém roztoku, a to v objemu, který odpovídá objemu supernatantu po odstředění živného prostředí. Fyziologický roztok s obsahem biomasy a supernatant se rozdělí na vzorky, z nichž každý má objem 2 mi.
ml fyziologického roztoku s obsahem homogenizované biomasy se přidá к baňkám první řady. К baňkám druhé řady se přidá pouze 2 ml fyziologického roztoku. Do baněk třetí řady se přidají 2 ml fyziologického roztoku s obsahem homogenizované biomasy. Baňky třetí řady nejsou naočkovány patogenním mikroorganismem.
Baňky se pak inkubují při teplotě 37 °C na míchačce. Po 16 hodinách se měří optická hustota při 600 nm. Optická hustota odpovídajících baněk, první, druhé a třetí řady, se označuje А, В a C. Rozdíl A—C, odečtený od В a pak dělený В a násobený 100, je bakteriostatickou účinností biomasy, vyjádřeno v procentech inhibice.
Bakteriostatická účinnost supernatantu se stanoví stejným způsobem tak, že se к baňkám první a třetí rady přidají místo 2 ml fyziologického roztoku s obsahem homogenizované biomasy 2 ml supernatantu.
Výsledky jsou uvedeny v následující tabulce:
Účinnost supernatantu (% inhibice) ~~
Příklad 5
Kmeny NCIB
Způsobem podle příkladu 1 bylo izolováno 8 kmenů. Těchto 8 kmenů bylo uloženo
12. července 1975 do sbírky National Collection of Industrial Bacterla (NCIB) v Eberdeen Scotland a jak již bylo uvedeno, byly tyto kmeny opatřeny čísly NCIB 11418 až 114 25. Tyto kmeny je možno charakterizovat jejich růstovými vlastnostmi a jejich morfologií při pěstování na agaru i v kapalném živném prostředí. Mimoto je možno stanovit jejich bakteriostatickou účinnost.
V následující tabulce je uvedena optická hustota kultur, jak byla stanovena po 5, 10 a 24 hodinách pěstování každého z těchto kmenů způsobem uvedeným v příkladu 3.2.
V tabulce je rovněž uvedena biomasa získaná po 24 hodinách a bakteriostatická účinnost biomasy, získaná po 8 hodinách pěsto vání pro 3 patogenní mikroorganismy, a to P. auruginosa, S. aureus a E. coli. Pro každý z kmenů je dále uvedena morfologie.
Kmen NCIB č. | Optická hustota | Biomasa [g sušiny/1) | ||
po 5 h i | ю 10 h | po 20 h | ||
114 18 | 0,237 | 0,713 | 0,583 | 0,91 |
114 19 | 0,352 | 0,621 | 0,514 | 0,95 |
114 20 | 0,147 | 0,447 | 0,709 | 0,95 |
114 21 | 0,160 | 0,402 | 0,646 | 0,95 |
114 22 | 0,289 | 0,364 | 0,305 | 0,75 |
114 23 | 0,360 | 0,496 | 0,378 | 0,69 |
114 24 | 0,217 | 0,737 | 0,587 | 0,59 |
114 25 | 0,395 | 0,981 | 0,838 | 1,11 |
Kmen | Účinnost (% inhibice) | |||
NCIB č. | P. aeruginosa | S. aureu | 3 | E. coli |
114 18 | 100 | 76 | 100 | |
11419 | 100 | 96 | 74 | |
114 20 | 100 | 96 | 44 | |
114 21 | 100 | 98 | 100 | |
114 22 | 68 | 89 | 84 | |
114 23 | 73 | 87 | 25 | |
114 24 | 57 * | 80 | 27 | |
114 25 | 100 | 91 | 90 |
Morfologie
NCIB 114 18
Morfologie na agaru:
Vytváří se velké izolované kolonie o průměru 8 až 15 mm s bílým středem a průsvitnými okraji. Při stonásobném zvětšení jsou kolonie jasně viditelné jako těsně uzavřené spirály.
Morfologie v kapalném prostředí:
Vytváří se homogenní kultura. Při zvětšení 4O0krát je možno pozorovat dlouhá vlákna o rozměru 80 X 1,8 μ, někdy· tvořená krátkými, zřetelně oddělenými účinky. Nedochází ke shlukování, vlákna obsahují malé množství refraktivních inklúzí.
NCIB 114 19
Morfologie na agaru:
Tvoří se bílé izolované kolonie o průměru 4 až 8 mm s nejasnými okraji, ze středu kolonie se hvězdicovitě rozbíhají provazče, které však nedosahují okraje kolonií. Při stonásobném zvětšení je zřejmé, že okraje kolonií jsou tvořeny těsně uzavřenými spirálami vláken.
Morfologie v kapalné kultuře:
Vytváří se homogenní kultura. Při zvětšení 400krát je možno pozorovat velmi krátká izolovaná vlákna o rozměru 3,8 X 0,9 μ, oddělená od sebe jasně pozorovatelným zaškrcením. Vlákna vytváří shluky, avšak neobsahují refraktilní inkluzi.
NCIB 114 20·
Morfologie na agaru:
Vytváří se ploché, opakní izolované kolonie o průměru 2 až 5 mm se zvrásněnými okraji. Při stonásobném zvětšení je možno pozorovat, že kolonie jsou tvořeny úlomky vláken ve formě neúplně vyvinutých spirál.
Morfologie v kapalné kultuře:
Vytváří se homogenní kultura. Při 400násobném zvětšení je možno pozorovat, že se nevytvářejí vlákna, nýbrž pouze další tyčinky o rozměru 9 X 1,4 μ. Tyto tyčinky obsahují malé množství refraktilních inklúzí.
NCIB 114 21
Morfologie na agaru:
Vytvářejí se oddělené kolonie o průměru 4 až 7 mm s difúzními okraji, jsou velmi podobné koloniím kmene NCIB 114 19, jsou bělejší. Okraje těchto kolonií jsou průsvitné. Při stonásobném zvětšení není možno pozorovat žádné spirály.
Morfologie v kapalné kultuře:
Vytváří se homogenní kultura. Při čtyristanásobném zvětšení lze pozorovat podobný obraz, jaký byl pozorován v případě kmene NCIB 114 20. Vlákna se nevytvářejí, vytvářejí se pouze dlouhé tyčinky o rozměru 18 X 1,4 μ s obsahem malého množství refraktilních inklúzí. Ke shlukování nedochází.
NCIB 114 22
Morfologie na agaru:
Kmen nikdy nevytváří izolované kolonie, nýbrž pokrývá celý povrch živného prostředí mykoidními provazci, které jsou průsvitné. Při stonásobném zvětšení je možno pozorovat, že každý z těchto provazců je tvořen vždy několika vlákny.
Morfologie v kapalné kultuře:
Vytváří se homogenní kultura, v níž je možno pozorovat malé shluky od 6. hodiny pěstování. Při čtyřistanásobném zvětšení je možno pozorovat dlouhá izolovaná vlákna o rozměru 90 X 1,4 až 1,8 μ. Tato vlákna jsou rozdělena na dlouhé úseky zřetelným zaškrcením. Obsahují velmi malé množství refraktilních inklúzí.
NCIB 114 23
Morfologie na agaru:
Morfologie tohoto kmene je podobná morfologii kmene NCIB 114 22. Nevytváří se izolované kolonie, nýbrž husté a jasněji viditelné mykoidní provazce. Při stonásobném zvětšení je možno pozorovat, že provazce jsou zřetelnější, protože jsou tvořeny větším množstvím vláken.
Morfologie v kapalné kultuře:
Vytváří se větší vločky (agregáty). Při čtyřistanásobném zvětšení je možno pozorovat daleko kratší vlákna než vlákna kmene NCIB 114 22, jsou však rovněž rozdělena na segmenty zřetelným zaškrcením. Rozměr je až 10 X 1,8 μ. Refraktilní inkluze se objeví již po 5 hodinách pěstování.
NCIB 114 24
Morfologie na agaru:
Vzhled kultury je podobný vzhledu kmene NCIB 114 23. Nevytvářejí se izolované kolonie, nýbrž mykoidní provazce. Při stonásobném zvětšení je možno pozorovat silné provazce, které jsou vytvářeny velkým počtem vláken.
Morfologie v kapalné kultuře:
Vytvářejí se velké vločky (agregáty). Při čtyřistanásobném zvětšení je možno pozorovat dlouhá vlákna o rozměru 140 X 1,8 μ, tato vlákna vytvářejí dlouhé svazky. Není možno pozorovat žádná zaškrcení. Refraktllní inklúze se vytvářejí až po 10 hodinách pěstování.
NCIB 114 25
Morfologie na agaru:
Vytvářejí se opakní izolované kolonie o průměru 2 až 6 mm. Při stonásobném zvětšení je možno pozorovat vlákna sestávající z izolovaných buněk a tvořících těsně uzavřené spirály.
Morfologie v kapalné kultuře:
Tvoří se homogenní kultura. Po čtyřlstanásobném zvětšení je možno pozorovat krátká homogenní vlákna o rozměru 4 X 1,4 μ. Tvoří se malé množství refraktivních inklúzí.
PŘEDMĚT vynálezu
Claims (5)
1. Způsob výroby látky s bakteriostatickým účinkem, vyznačující se tím, že se pěstuje alespoň jeden mikroorganismus typu Beggiatoa č. NCIB 114 18 až NCIB 114 25 ve vodném živném prostředí, obsahujícím 1 až 4 g extraktu z kvasnic, 0,1 až 0,3 g chloridu vápenatého a 0,2 až 1 g octanu sodného nebo amonného v 1 litru vody, po dobu 5 až 36 hodin při teplotě 20 až 50 °C, při pH 6 až 8, za stálého míchání za aerobních podmínek s následným oddělením biologické hmoty a/nebo živného prostředí.
2. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že se mikroorganismus pěstuje 8 až 10 hodin při teplotě 30 až 40 °C při neutrálním pH.
3. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že se živné prostředí před naočkováním mikroorganismem typu Beggiatoa homogenlzuje.
4. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že se biogolická hmota izoluje a lyofilizuje.
5. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že se jako vody použije sirné termální vody.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CH1123078A CH634877A5 (fr) | 1978-11-01 | 1978-11-01 | Procede de preparation d'une substance presentant une activite bacteriostatique. |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS213399B2 true CS213399B2 (en) | 1982-04-09 |
Family
ID=4371398
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS797378A CS213399B2 (en) | 1978-11-01 | 1979-10-30 | Method of making the substance with bacteriostatic effect |
Country Status (28)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4419449A (cs) |
JP (1) | JPS56109589A (cs) |
AT (1) | AT365234B (cs) |
AU (1) | AU528629B2 (cs) |
BE (1) | BE879360A (cs) |
CA (1) | CA1123355A (cs) |
CH (1) | CH634877A5 (cs) |
CS (1) | CS213399B2 (cs) |
DD (1) | DD147251A5 (cs) |
DE (1) | DE2941310C2 (cs) |
DK (1) | DK149781C (cs) |
ES (1) | ES485566A1 (cs) |
FI (1) | FI65448C (cs) |
FR (1) | FR2440403A1 (cs) |
GB (1) | GB2034687B (cs) |
GR (1) | GR73004B (cs) |
HK (1) | HK11384A (cs) |
HU (1) | HU180030B (cs) |
IL (1) | IL58451A (cs) |
IT (1) | IT1164025B (cs) |
LU (1) | LU81771A1 (cs) |
MX (1) | MX5937E (cs) |
MY (1) | MY8400264A (cs) |
NL (1) | NL7908024A (cs) |
SE (1) | SE443996B (cs) |
SG (1) | SG34583G (cs) |
SU (1) | SU1090263A3 (cs) |
ZA (1) | ZA795509B (cs) |
Families Citing this family (19)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2700172B1 (fr) * | 1992-07-20 | 1995-07-13 | Oreal | Procede de culture de bacteries filamenteuses non photosynthetiques et non fructifiantes. |
FR2693654B1 (fr) | 1992-07-20 | 1994-08-26 | Oreal | Médicament, notamment immunomodulateur, contenant des enveloppes ou fractions d'enveloppes de bactéries filamenteuses non photosynthétiques et non fructifiantes, et sa préparation. |
FR2719768B1 (fr) * | 1994-05-10 | 1996-06-14 | Oreal | Utilisation d'extraits de bactéries filamenteuses comme agents cosmétiques contre le vieillissement cutané. |
FR2721208B1 (fr) * | 1994-06-16 | 1996-08-02 | Oreal | Composition à usage topique contenant un antioxidant et un extrait bactérien, et utilisation de cette composition. |
FR2746642B1 (fr) * | 1996-03-27 | 1998-05-15 | Oreal | Composition apaisante comprenant un extrait bacterien |
ES2120274T3 (es) * | 1995-09-07 | 1998-10-16 | Oreal | Utilizacion de un extracto de una bacteria filamentosa no fotosintetica y composicion. |
FR2738485B1 (fr) * | 1995-09-07 | 1997-11-14 | Oreal | Utilisation d'au moins un extrait d'au moins une bacterie filamenteuse non photosynthetique en tant qu'antagoniste de substance p |
FR2746646B1 (fr) * | 1996-03-27 | 1998-05-15 | Oreal | Composition apaisante comprenant un extrait vegetal et un extrait bacterien |
FR2762782B1 (fr) | 1997-05-05 | 1999-06-11 | Oreal | Composition comprenant un milieu de culture de micro-organisme et utilisation |
FR2879452B1 (fr) * | 2004-12-21 | 2007-07-06 | Oreal | Utilisation d'un extrait de bacterie filamenteuse non photosynthetique non fructifiante en tant qu'agent modulant l'adhesion de microorganismes cutanes |
FR2915898B1 (fr) * | 2007-05-10 | 2009-06-12 | Oreal | Procede de preparation d'actifs sur eau thermale et compositions les contenant |
FR2918885B1 (fr) * | 2007-07-17 | 2009-08-28 | Oreal | Utilisation d'extrait de bacterie cultivee sur eau thermale pour diminuer les poches et/ou les cernes perioculaires |
FR2918887B1 (fr) * | 2007-07-17 | 2009-08-28 | Oreal | Utilisation d'au moins un extrait bacterien cultive sur eau thermale pour la chute des cheveux |
FR2918883B1 (fr) * | 2007-07-17 | 2010-01-15 | Oreal | Utilisation d'un extrait bacterien cultive sur une eau thermale pour le traitement des peaux seches |
FR2918884B1 (fr) * | 2007-07-17 | 2010-01-15 | Oreal | Utilisation d'extraits bacteriens cultives sur eau thermale comme agent anti-rougeur |
FR2918886B1 (fr) * | 2007-07-17 | 2010-01-08 | Oreal | Utilisation d'au moins un extrait bacterien cultive sur eau thermale pour le traitement des peaux, muqueuses et cuirs chevelus sensibles |
GB2474041A (en) * | 2009-10-02 | 2011-04-06 | Omorovicza Cosmetics Ltd | Cosmetic composition comprising thermal mineral water |
FR2965277B1 (fr) * | 2010-09-23 | 2012-10-19 | Thermanence Bio | Procede et installation de production en masse de plancton, dit thermal, sur au moins un support de culture dispose a l'interieur d'un bassin comportant au moins une entree et une sortie de fluide |
ES2702293T3 (es) * | 2012-06-13 | 2019-02-28 | Eucodis Bioscience Gmbh | Catalasa en medios de cultivo |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR1372620A (fr) * | 1963-08-07 | 1964-09-18 | Fr Des Cosmetiques Biolog Soc | Produit utilisable en cosmétologie, sa préparation et ses applications |
FR1536017A (fr) * | 1967-09-06 | 1968-08-09 | Nouvelles compositions cosmétiques à base de dérivés planctoniques | |
LU70601A1 (cs) * | 1974-07-24 | 1976-05-31 | ||
FR2283223A1 (fr) * | 1974-08-26 | 1976-03-26 | Synthelabo | Procede de culture industrielle de sulfuraires en vue, notamment, d'une utilisation dermatologique et cosmetologique |
-
1978
- 1978-11-01 CH CH1123078A patent/CH634877A5/fr not_active IP Right Cessation
- 1978-12-06 FR FR7834334A patent/FR2440403A1/fr active Granted
-
1979
- 1979-10-10 LU LU81771A patent/LU81771A1/fr unknown
- 1979-10-11 BE BE0/197605A patent/BE879360A/fr not_active IP Right Cessation
- 1979-10-11 DE DE2941310A patent/DE2941310C2/de not_active Expired
- 1979-10-12 DK DK431979A patent/DK149781C/da active
- 1979-10-12 AT AT0667579A patent/AT365234B/de not_active IP Right Cessation
- 1979-10-15 GR GR60260A patent/GR73004B/el unknown
- 1979-10-15 FI FI793195A patent/FI65448C/fi not_active IP Right Cessation
- 1979-10-15 SE SE7908516A patent/SE443996B/sv not_active IP Right Cessation
- 1979-10-15 IL IL58451A patent/IL58451A/xx not_active IP Right Cessation
- 1979-10-16 ZA ZA00795509A patent/ZA795509B/xx unknown
- 1979-10-17 GB GB7936050A patent/GB2034687B/en not_active Expired
- 1979-10-26 IT IT50674/79A patent/IT1164025B/it active
- 1979-10-29 HU HU79NE622A patent/HU180030B/hu not_active IP Right Cessation
- 1979-10-29 CA CA338,662A patent/CA1123355A/fr not_active Expired
- 1979-10-29 MX MX798459U patent/MX5937E/es unknown
- 1979-10-29 AU AU52264/79A patent/AU528629B2/en not_active Ceased
- 1979-10-30 JP JP14040979A patent/JPS56109589A/ja active Granted
- 1979-10-30 CS CS797378A patent/CS213399B2/cs unknown
- 1979-10-31 DD DD79216588A patent/DD147251A5/de not_active IP Right Cessation
- 1979-10-31 ES ES485566A patent/ES485566A1/es not_active Expired
- 1979-10-31 SU SU792836784A patent/SU1090263A3/ru active
- 1979-11-01 NL NL7908024A patent/NL7908024A/nl not_active Application Discontinuation
-
1981
- 1981-02-02 US US06/230,421 patent/US4419449A/en not_active Expired - Lifetime
-
1983
- 1983-06-17 SG SG345/83A patent/SG34583G/en unknown
-
1984
- 1984-02-09 HK HK113/84A patent/HK11384A/xx not_active IP Right Cessation
- 1984-12-30 MY MY264/84A patent/MY8400264A/xx unknown
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CS213399B2 (en) | Method of making the substance with bacteriostatic effect | |
Grilli Caiola et al. | Cytology of long-term desiccation in the desert cyanobacterium Chroococcidiopsis (Chroococcales) | |
Spiegel et al. | Evaluation of a newly isolated bacterium, Pseudomonas chitinolytica sp. nov., for controlling the root‐knot nematode Meloidogynejavanica | |
AU659199B2 (en) | Biological control of molluscs | |
PL175708B1 (pl) | Biologicznie czysta kultura nowego mikroorganizmu Streptomyces WYEC 108, kompozycja do ochrony przed zakażeniami grzybowymi i sposób polepszania wzrostu roślin | |
KR880001931B1 (ko) | 세균 유래 살충제의 제조방법 | |
Reichenbach | Myxobacteria: a most peculiar group of social prokaryotes | |
Reichenbach et al. | The order Cytophagales (with addenda on the genera Herpetosiphon, Saprospira, and Flexithrix) | |
CA1335433C (en) | Nematicidal microorganisms, their isolation and their use as bio-nematicides | |
Querijero-Palacpac et al. | Mass cultivation of the nitrogen-fixing cyanobacterium Gloeotrichia natans, indigenous to rice-fields | |
Macfadyen et al. | Thermophilic bacteria | |
AU693919B2 (en) | Nematicidic agent and method for the bio-control of nematodes | |
Gorelova et al. | Heteromorphism of the cyanobacterium Nostoc sp., a microsymbiont of the Blasia pusilla moss | |
Hewlett | A Manual of bacteriology | |
CN114634889B (zh) | 一种副地衣芽孢杆菌nmxc2-1及其发酵产物、菌剂与应用 | |
Arfah et al. | The Isolation of termofil amilolitik bacterium and activity test of harsh extract amylase enzyme from the hot spring at Jailolo bay in North Maluku | |
RU2108384C1 (ru) | Штамм bacillus thuringiensis - продуцент эндотоксина против жесткокрылых насекомых и способ его культивирования | |
Brock | The genus Leucothrix | |
Bulleid | A text-book of bacteriology for dental students | |
Maršálek et al. | Long-term maintenance of algal strains for use in bioassays and biotechnology | |
Yaroshko et al. | The features of microbiota isolated from the honeycombs with affected bee brood | |
KR20230016306A (ko) | 굴 패각 세척용 미생물을 이용한 굴패각 세척방법 및 화장료조성물 | |
SU1406156A1 (ru) | Штамм бактерий AeRococcUS VIRIDaNS дл получени клонов с оксидазной и редуктазной активностью | |
RU2112387C1 (ru) | Способ производства сухого бактериального концентрата для кисломолочного продукта | |
Hafez et al. | Culturing Phlebotomus papatasii (Scopoli) in the laboratory |