HU180030B - Process for producing material of bacteriostatic activity - Google Patents

Process for producing material of bacteriostatic activity Download PDF

Info

Publication number
HU180030B
HU180030B HU79NE622A HUNE000622A HU180030B HU 180030 B HU180030 B HU 180030B HU 79NE622 A HU79NE622 A HU 79NE622A HU NE000622 A HUNE000622 A HU NE000622A HU 180030 B HU180030 B HU 180030B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
beggiatoa
agar
biomass
hours
culture
Prior art date
Application number
HU79NE622A
Other languages
English (en)
Inventor
Francios Maillard
David Shepherd
Original Assignee
Nestle Sa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nestle Sa filed Critical Nestle Sa
Publication of HU180030B publication Critical patent/HU180030B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/74Bacteria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/96Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution
    • A61K8/99Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution from microorganisms other than algae or fungi, e.g. protozoa or bacteria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61QSPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
    • A61Q19/00Preparations for care of the skin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • C12P1/04Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using bacteria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2800/00Properties of cosmetic compositions or active ingredients thereof or formulation aids used therein and process related aspects
    • A61K2800/10General cosmetic use
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Birds (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Cosmetics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

A találmány tárgya eljárás bakteriosztatikus hatású anyag előállítására.
Európában számos mikroorganizmusokat tartalmazó kénes gyógyforrás található, melyekben a mikroorganizmusok a gyenge vízáramlású helyeken felhalmozódva világosszürke, zselatinszcrű, „baregin”-nek nevezett anyagot képeznek. Az elnevezés egy Pireneusokban levő francia ásványvízforrásra, a barages-i hőforrásra utal. A baregin magas hőmérsékletnek ellenálló és hidrogcnszulfidot megkötni képes különböző baktériumok összességeként határozható meg. E baktériumok közül néhány egy nyálka kiválasztására képes, mely az egész baktériumtelep burkoló bevonatául szolgál. A baregin legalább annyi élettelen, mint élő alkotóelemet tartalmaz.
A baregin gyógyászati hatásai már jóideje ismertek, és régóta használják reumás betegségek masszázsánál és bizonyos bőrbetegségek kezelésénél. Ezenkívül bőrápoló kozmetikai készítmények alkotórészeként használatos.
A baregin előállítása és összegyűjtése több szabadalom tárgyát képezi, mely eljárások különböző, forrásvizet csörgedeztetö technikákat valósítanak meg természetes körülmények között (itt utalunk a 7 429 J06 számú francia szabadalmi leírásra). 25
Jelenleg egy hasonló eljárást használnak a franci^-, országi Thermes Nationaux d’Aix-les-Bains-ben. Az alkalmazott berendezés egy felső részén vízvezető csatornával ellátott függőleges betonfalból áll. A közeli 30
180930 forrásból csővezetéken odavezetett forró forrásvíz folyik a vízvezető csatornába, és a fal mentén lecsörgedezik.
Az egy centiméteres nagyságrendű baregin-pelyhek hozzátapadn-k a beton durva részeihez. Az odatapadt 5 baregin-pclyhekből zselatinszerű film képződik, melyet időközönként kemény kefével lekaparnak a falról és összegyűjtenek. A falat beépítve tartalmazó épület és a víz hőmérséklete közel van a forrás hőmérsékletéhez, azaz 43—47 °C-os. A kitermelés rendkívül alacsony. 10 Havonta, és négyzetméterenként körülbelül 5 g száraz baregint nyernek ki. Ezenfelül a kitermelést számos meteorológiai körülménytől függő tényező változása is befolyásolja.
A bareginnel mikrobiológiai és biokémiai tanulmá15 nyokban foglalkoztak. Itt utalunk a következő publikációkra: L. Faust és R. S. Wolfe, Enrichment and Cultivation of Beggiatoa alba, J. Bact., 81, 99—106. (1961); Sh. D. Burton és R. Y. Morita, Effect of Catalase and Cultural Conditions on Growth of Beggiatoa, J. Bact. 20 88, 1755—1761. (1964); és Μ. M. Joshi és J. P. Hollis.
Rapid Enrichment of Beggiatoa from Soil, J. appl. Bact., 40, 223—224 (1976). Ezek a tanulmányok a kénhidrogén és kéntartalmú vegyületek anyagcseréjét taglalják, de nem világítanak rá a baregin gyógyászati tulajdonságainak eredetére. A bareginben azonosított számos mikroorganizmus között gyakran említik a Beggiatoa nevű mikroorganizmust. Mindazonáltal a publikációkból ismert kevés elkülönítési eljárásban a Beggiatoát sohasem bareginből, hanem iszapokból és használt vizekből nyerik ki. pzetifelüj ezek az eljárások
-1180030 munkaigényesnek és nehézkesnek bizonyultak, és az elkülönített mikroorganizmusok tenyésztése — többek között törékenységük és magas víztartalmuk miatt — csak nagyon gyenge hozamokat eredményezett. Jellemzőnek tekinthető egy közzétett kitermelési érték, miszerint 1 liter 2 g élesztőkivonatot, 0,1 g nátrium-acetátot és aktív katalázt tartalmazó 28 °C-os, keverés nélküli táptalajból 48 óra alatt 1,2 g mikroorganizmust nyertek ki.
Jelen találmány egyik célja, hogy lehetővé tegye a bareginhez hasonló bakteriosztatikus hatású anyag gazdaságos, ipari méretekben történő előállítását.
A bakteriosztatikus anyagot a találmány szerinti eljárással úgy állítjuk elő, hogy vizes táptalajban, keverés és aerob körülmények biztosítása mellett az NCTB 114 18—114 25 szám alatt letétbe helyezett, Beggiatoa típusú mikroorganizmus törzsek legalább egyikét 5—36 órán keresztül, 20 C’ és 50 °C közötti hőmérséklettartományban, 6 és 8 közötti pH-crtcken tenyésztjük, mikoris a vizes táptalaj mikroorganizmussal való beoltása előtt az oltóanyagot kívánt esetben homogenizáljuk, majd a biomasszát és/vagy a táptalajt összegyűjtjük és kívánt esetben a biomasszát kifagyasztással szárítjuk.
A találmány szerinti eljárásra az jellemző, hogy Beggiatoa típusú mikroorganizmusokat tenyésztünk vizes táptalajban keverés és aerob körülmények biztosítása mellett, és a biomasszát és/vagy a táptalajt összegyűjtjük.
Megállapítást nyert, hogy a Beggiatoa típusú mikroorganizmusok biomasszája, de még az azt tartalmazó közeg is bakteriosztatikus hatással rendelkezik. Azt is megállapítottuk, hogy a mikroorganizmusok törékenysége nem jelent akadályt az erősen kevert közegben történő intenzív tenyésztés számára, minthogy a mikroorganizmusok még akkor is szaporodnak, ha szálaik számos fragmenssé töredeznek szét. így, a Beggiatoa típusú mikroorganizmusokból álló oltóanyag táptalajba történő beoltása előtti homogenizálása még előnyös is lehet.
A leírásban ezentúl szándékosan inkább a „Beggiatoa típusú mikroorganizmus” kifejezést használjuk a „Beggiatoa törzsbe tartozó mikroorganizmus” helyett. A Beggiatoa törzs a „csúszó baktériumok” osztályába, a nyálkabaktériumok rendjébe és a Beggiatoaceae családba tartozik. [Lásd Bergey’s Mannal of Determinative
Bacteriology, 8. kiadás, Waverly Press, Baltimore, USA 45 (1974), 112—114. old.] Mint az említett, szakmabeli tekintélynek örvendő munkából is látható, megbízható információk hiánya miatt ennek a mikroorganizmus törzsnek az osztályozása meglehetősen bizonytalan.
A kérdéses mikroorganizmusok osztályozásának ezen 50 bizonytalansága tükrében helytelen lenne olyan precíz szakkifejezés, mint a „törzs” használata. Ezért, jelen találmány szövegösszefüggéseiben a „Beggiatoa típusú mikroorganizmus” kifejezés alatt a kéntartalmú talajokra és vizekre jellemző szálszerű baktériumokat értjük, 55 melyekre az jellemző, hogy a színtelen szálak — az osztályozás Beggiatoa törzsbe tartozó baktériumaihoz hasonlóan — csúszva mozognak és sejtek láncolataiból épülnek fel.
A Beggiatoa típusú mikroorganizmus előnyösen bare- 60 ginből történő elkülönítéssel nyerhető ki. Megállapítást nyert, hogy egy bizonyos eljárás alkalmazásával lehetséges az említett elkülönítés és, hogy ezzel az eljárással kinyert törzsek tenyészthetők és bakterioszta íikus hatással rendelkeznek. Megállapítottuk végül, hogy a törzsek megőrzésének problémája is kielégítő módon megoldható.
Egy törzs elkülönítése céljából egy baregin-mintát agar-agart tartalmazó táptalajra helyezünk, és 5—36 5 órán keresztül inkubáljuk 25—50 °C-os hőmérséklettartományban. Ezután a Beggiatoa típusú mikroorganizmus-szálak egy szennyeződésmentes területét kivágjuk, és ismét ráhelyezzük egy az elsővel azonos összetételű, — agar-agart tartalmazó táptalajra. Az inkubá10 lás, a kivágás és a másodlagos baktériumtenyésztés műveletei kétszer vagy háromszor megismételhetők.
Ezt az eljárást alkalmaztuk annak a 8 törzsnek az elkülönítésére, melyeket az NC113 114 18-tól 114 25-ig terjedő sorszámok alatt 1978. július 12-én helyeztünk 15 letétbe a skóciai Aberdeenben levő Natíonal Coílection of Industrial Bacteria (NCIB)-ben.
Ennek megfelelően, a találmány szerinti eljárás ezen 8 törzs legalább egyikének a felhasználásával hajtható végre.
Az elkülönítésnél alkalmazott agar-agart tartalmazó táptalaj 1 liter vízre számítva 10—20 g agar-agart tartalmaz.
Hasonlóképp, a mikroorganizmusok tenyésztésénél alkalmazott vizes táptalaj 1 liter vízre számítva előnyö25 sen 1—4 g élesztőkivonatot, 0,1—0,3 g kalcium-kloridot és 0,2—1 g nátrium- vagy ammónium-acetátot tartalmaz. Előnyösen kéntartalmú termálvizet használunk.
A tenyészet megóvása érdekében a táptalajhoz katalázt is hozzáadhatunk, például milliliterenként 5—20 30 nemzetközi egység (international unit, IU) mennyiségben. A mikroorganizmust 5—36 órán keresztül tenyészthetjük 20 °C és 50 C közötti hőmérséklettartományban, 6 pH és 8 pH-értékek között. Előnyös a tenyésztést 8—10 órán keresztül, 30—40 cC-on és semleges 35 pH-értéken végezni.
A találmány szerinti eljárással nyert bakteriosztatikus hatású anyag bőrmasszázsnál használható fel, vagy pedig bőrkozmetikai készítmények alkotórészeként. A biomassza szárított formában tartósítható. A mikroorga40 nizmusok törékenysége és alacsony száraz anyagtartalma miatt a szárítást előnyösen kifagyasztással végezzük.
A következő, bemutatás célját szolgáló példák lehetővé teszik, hogy jobban megértsük a találmány lényegét. A példákban a „Beggiatoa típusú mikroorganizmus” kifejezés helyett rendszeresen a vele azonosnak értendő „Beggiatoa” elnevezést használjuk.
1. példa (a törzsek elkülönítése)
Thermes Nationaux d’Aix-les-Bains-ből származó friss baregin-pelyhet egy petricsésze közepébe helyezünk el, melyben 20 ml agar-agart tartalmazó, alábbi összetételű táptalaj van:
élesztőkivonat (Difco)2 g agar-agar (Bacto—Difico)15 g
Aix-ből származó szűrt termálvíz 100ml desztillált víz 900ml
A csészét felfordítva 30 órán át egy 30 °C-os kemencében tartjuk. Ezután a Beggiatoát jellemző spirál alakú képződmények — melyek a mikroorganizmusok csúszó mozgásának eredményeképp keletkeznek — jelenlétének kimutatása céljából mikroszkopikus (kis 65 nagyítású) vizsgálatot h'jtunk végre. A képződmények néha szabad szemmel is láthatók. A mikroszkopikus vizsgálat feltár olyan zónákat, melyekben a Beggiatoa szálak szennyeződésmentesnek látszanak. Steril szikével kivágjuk az egyik ilyen zónát, és az előzővel azonos összetételű friss táptalajra helyezzük, miközben ügyelünk arra, hogy a Beggiatoa szálakat tartalmazó felület az új csészében is tiszta felületre kerüljön. Ezután ismét 24 órás, 30 °C-os inkubálás következik. A kivágás, a másodlagos baktériumtenyésztés és az inkubálás műveleteket még kétszer megismételjük. Végül tiszta Beggiatoa tenyészetet nyerünk.
2. példa (a törzsek tartósítása)
Tíz törzset különítünk el az 1. példában ismertetett módon. A törzsek a szálak átmérőiben, a csúszási sebességükben és az agar-agar táptalajain levő telepeik alakjaiban térnek el egymástól. Attól függően, hogy rövid-, közép- vagy hosszútávú tartósítást szeretnénk el- 20 érni, három különböző módszer alkalmazható.
2.1. Rövidtávú tartósítás: a gondosan lezárt petri- csészét 4 C-os hűtőszekrényben tartjuk. Mivel az agaragar hajlamos a kiszáradásra, a törzseket legalább 10 naponként át kell helyezni. 25
2.2. Középtávú tartósítás: elkészítünk egy alábbi öszszetételű fél-folyadék halmazállapotú táptalajt:
élesztőkivonat 2 g
kalcíum-klorid 0,1 g
nátrium-acetát 0,5 g
agar-agar 2 g
szűrt termálvíz 1000 ml
Λ táptalajhoz a sterilizálást követően hozzáadunk milliliterenként 10 nemzetközi egység (IU) gomba- 35 katalázt. A katalázoldatot előzőleg 0,22 mikrométer átmérőjű mikroszkopikus pórusokkal rendelkező Millipore szűrőn történő hideg szűréssel sterilizáljuk.
A Beggiatoát tartalmazó kis kockányi agar-agart 10 ml táptalajt tartalmazó tubusba helyezzük, és 31 °C 40 hőmérsékleten inkubáljuk. A Beggiatoa a tubus felső részén indul fejlődésnek. A csövet 3 héten keresztül tartjuk 30 °C-on. Ezután a tenyészetet 0,1 ml-es részletekben tubusokba helyezzük.
2.3. Hosszútávú tartósítás: a 3. példában leírt módon 45 kevert táptalajban egy 24-órás tenyészetet állítunk elő. Centrifugálás után a kivált részt steril Ringer-oldattal mossuk, majd megfagyasztjuk és fagyasztással szárítjuk. Szorosan záró konténerben több hónapig tároljuk hűtőszekrényben. Újrahidratáláskor a szálak fragmensei fejlődőképesek.
3. példa (a törzsek tenyésztése)
3.1. Oltóanyag
Az 1. példában leírt módon kikészített mintából kivágunk egy kis kockányi (5 mm3) agar-agart, melyet egy 500 ml-es edénybe helyezzük, melyben 100 ml alábbi összetételű táptalaj van:
élesztőkivonat kalcium-klorid ammónium-acetát szűrt termálvíz g
0,2 g g 1000 ml
A közeg pH-értéke 6,6. Az edényt 1501/perc fordulatszámú 1,25 cm-es íherciasugarú forgó keverőbe helyezzük, és 16 órán keresztül keverjük 30 °C-on. A kapott tenyészetet steril körülmények között Sorvall Omni5 mixerben 15—30 percig homogenizáljuk. A homogenizált tenyészet alkotja az oltóanyagot.
3.2. Tenyésztés
A fenti oltóanyag 5 ml-ét egy 500 ml-es edénybe helyezzük, amely az oltóanyag előállításához használt táptalajból 100 ml-t tartalmaz. Az edényt 24 óráig inkubáljuk forró keverőben 30 °C-on. A tenyészet egy liternyi mennyiségéből 0,8 g száraz Beggiatoát nyerünk.
Az eljárást több törzzsel megismételjük, miközben a körülményeket az említett határok között változtatjuk, és így a tenyészet egy liternyi mennyiségéből 12,5 g és 2 g közötti súlyú száraz Beggiatoát termelünk ki.
3.3. A növekedés mérése
A pehelyszerű növekedése miatt a Beggiatoa esetében a hagyományos zavarosságvizsgálati eljárás közvetlenül nem alkalmazható, hanem azt adaptálni kell az adott esethez. Sorvall Omnimixerrel homogenizált tenyészetből két óránként mintákat veszünk. A minták optikai sűrűségét spektrofotométerrel határoztuk meg 600 nmen. A homogenizált minta lassú leülepedése megbízható eredmények leolvasását teszi lehetővé. Az így kapott 30 növekedési adat közvetlen kapcsolatban van a sejtek számával.
3.4. A száraz súly meghatározása
A Beggiatoa szokásos kemencében történő szárítása nem szolgáltat reprodukálható eredményeket. Ez valószínűleg a nagyon magas víztartalma miatt van. Ezért a reprodukálható eredmények érdekében fagyasztásos eljárással sohasem szárítunk 400 ml-nél kisebb menynyíségű tenyészetet.
3.5. A bakteriosztatikus aktivitás meghatározása
A bakteriosztatikus aktivitás kiértékelésének a Public Health Laboratory Service Committee által kifejlesztett és ismertetett [British Medical Journal, 408 (1965)] hagyományos eljárása a Beggiatoa esetében nem vezet kielégítő eredményekhez, mert a vizsgálatot tubusokban végzik el. Minthogy a Beggiatoa szigorúan 50 aerob körülményeket igényel, a vizsgálati tubusban levő oxigénkoncentráció nem kielégítő. Ennek megfelelően a módszert tökéletesíteni kell, és az oxigén átáramoltatása érdekében kevert edényeket kell alkalmazni.
Elkészítettünk egy olyan sorozatot, ahol 50 ml-es edényekbe 18—18 ml baktérium-táptalajt (Nutrient Broth Difco) helyeztünk. Az első és a második sorozat edényeit kórokozó törzsek 24 órás tenyészeteinek 0,4 mles mennyiségeivel oltottuk be. Három kórokozó törzset használtunk, nevezetesen a Pseudomonas aeruginosa 60 ATCC 10 145, az Escherichia coli ATCC 11 755 és a Staphyllococcus aureus ATCC 12 600 törzseket.
Bakteriosztatikus minták előállítását a 3.2. példában ismertetett módon végeztük el azzal a különbséggel, hogy a tenyészetet csak 8 órán keresztül centrifugáltuk. 65 A centrifugált biomasszát homogenizáltuk, majd a
-3180030 centrifugálás után maradt felszínen úszó fázis mennyiségével egyenlő mennyiségű fiziológiás oldattal szuszpendáltuk. Mind a biomasszát tartalmazó fiziológiás oldatot, mind a felszínen úszó folyadékot 2 ml-es mintákra osztottuk.
Az első sorozat edényeibe 2 ml homogenizált biomaszszát tartalmazó fiziológiás oldatot adagoltunk. A második sorozat edényeihez csak 2—2 ml fiziológiás oldatot adtunk. A harmadik sorozat edényeihez, melyeket nem oltottunk be kórokozókkal, 2—2 ml homogenizált biomasszát tartalmazó fiziológiás oldatot adtunk.
Az edényeket forgó keverőben inkubáltuk 37 °C-on. Optikai sűrűségüket 16 óra eltelte után határoztuk meg 600 nm-en. Az első, második és harmadik sorozatnak megfelelő optikai sűrűségmérések adatait rendre az A, B és C paraméterek képviselik. Az A—C különbséget B-ből kivonjuk, a különbséget elosztjuk B-vel, és a hányadost 100-zal megszorozzuk, és így százalékos inhibícióként megkapjuk a biomassza bakteriosztatikus aktivitását.
A felszínen úszó fázis bakteriosztatikus aktivitását hasonlóképpen határozzuk meg, azaz az első és a harmadik sorozat edényeihez a homogenizált biomassza fiziológiás oldata helyett a felszínen úszó fázisból adunk 2—2 ml-t.
Az alábbi táblázat szemlélteti az eredményeket:
A biomassza A felszínen úszó
Kórokozó aktivitása fázis aktivitása
(%-os inhibíció) (%-os inhibíció)
P. aeruginosa 70 4.
S. aureus 100 45
E. coli 70 11
4. példa (összehasonlítás)
Összehasonlítás céljából a 3.5. példában ismertetett módszerrel meghatározzuk a természetes baregin bakte5 riosztatikus aktivitását. 16 órás inkubálás után a P. aeruginosa, az S. aureus és az E. coli törzsekkel szembeni százalékos inhibíció rendre 100%, 83% és 96%.
Az adatok szerint tehát, a találmány szerinti eljárással előállított biomassza bakteriosztatikus aktivitása majd10 nem ugyanolyan erős, mint a bareginé. Ez lényeges eredménynek számít, ha összevetjük a találmány szerinti eljárással előállított biomassza magas kitermelést biztosító ipari előállíthatóságát a baregin alacsony kitermelést biztosító, lassú kinyerhetőségével. A találmány 15 szerinti eljárásban a felszínen úszó fázis aktivitása —jóllehet kisebb — nemkevésbé érdekes.
5. példa (NCIB törzsek) törzset különítettünk el az 1. példában ismertetett módon. Ezt a 8 törzset 1978. július 12-én helyeztük letétbe a skóciai Aberdeenben levő National Collection of Jndustrial Bacteria (NCIB)-ben, és ahogy említettük 25 már az NCIB 114 18-tól az NCIB 114 25-ig terjedő sorszámokat kapták. Ezek a törzsek növekedésképességükkel, agar-agaron és folyékony táptalajban levő tenyészetük morfológiájával és bakteriosztatikus aktivitásukkaljellemezhetők.
A 3.2. példában ismertetett módon 5, 10 és 24 órán át tenyésztett fent említett nyolc törzs és a 24 óra után nyert biomassza optikai sűrűségét, valamint a 8 órás tenyésztéssel nyert biomasszák P. aeruginosa, S. Aureus és E. coli kórokozó törzsekkel szembeni bakterioszta35 tikus aktivitását szemlélteti az alábbi táblázat. A törzsek morfológiáját külön ismertetjük.
Törzs NCIB száma Optikai sűrűség Biomassza Aktivitás (%*os inhibíció)
5 ó után 10 ó után 24 ó után (g szárazanyag,'liter) P. aeruginosa S. aureus E. coli
114 18 0,237 0,713 0,583 0,91 100 76 100
114 19 0,352 0,621 0,514 0,95 100 96 74
114 20 0,147 0,447 0,709 0,95 100 96 44
114 21 0,160 0,402 0,646 0,95 100 98 100
114 22 0,289 0,364 0,305 0,75 68 89 84
114 23 0,360 0,496 0,378 0,69 73 87 25
114 24 0,217 0,737 0,587 0,59 57 80 27
114 25 0,395 0,981 0,838 1,11 100 91 90
Morfológia
NCIB 114 18:
Agar-agaron- fehér közepű, áttetsző szélű, 8—15 mm átmérőjű elkülönült telepeket alkot. Mikroszkopikus vizsgálat (100-szoros nagyítás): a telepet tisztán kivehető, szorosan összecsavarodott spirálok alkotják.
Folyékony tenyészetben: homogén tenyészet. Mikroszkopikus vizsgálat (400-szoros nagyítás): 1,8 X 80 mikrométeréi,’Hosszú szálak, melyeket alkalmilag rövid, egymástól elhatárolható baktériumok alkotnak. Nincsenek aggregációk. Nagyon kevés fénytörő zárvány.
NCIB 114 19:
Agar-agaron: diffúz határú, 4—8 mm átmérőjű, fehér színű elkülönült telepeket alkot. A telep közepéről csillag alakú, sugárirányú rostok indulnak ki, de nem érik el a telep határát. Mikroszkopikus vizsgálat (100szoros nagyítás): a telep határait szorosan összecsavarodott szálak alkotják.
-4180030
Folyékony tenyészetben: homogén tenyészet. Mikroszkopikus vizsgálat (400-szoros nagyítás): nagyon világos zsugorodások által szabdalt, nagyon rövid, 3,6X0,9 mikrométeres elkülönült szálak. Nincsenek fénytörő zárványok. Aggregátumokat alkot.
NCIB 114 20:
Agar-agaron: „rojtozott” szegélyű 2—5 mm átmérőjű, áttetsző elkülönült telepeket alkot. Mikroszkopikus vizsgálat (100-szoros nagyítás): a telepeket szálak fragmensei alkotják gyengénfejlett spirálok formájában.
Folyékony tenyészetben: homogén tenyészet. Mikroszkopikus vizsgálat (400-szoros nagyítás): nincsenek szálak. Kevés fénytörő zárványt tartalmazó, 9X1,4 mikrométeres, hosszú baktériumok.
NCIB 114 21:
Agar-agaron: az NCIB 114 19 számú törzshöz hasonló, csak annál fehérebb, diffúz szegélyű, 4—7 mm átmérőjű elkülönült telepeket alkot. A telepek szegélyei áttetszők. Mikroszkopikus vizsgálat (100-szoros nagyítás): nincsenek látható spirálok.
Folyékony tenyészetben: homogén tenyészet. Mikroszkopikus vizsgálat (400-szoros nagyítás): az NCIB 114 20 számú törzshöz hasonló kép. Nincsenek szálak. Kevés fénytörő zárványt tartalmazó, 18X1,4 mikrométeres, hosszú baktériumok. Nincsenek aggregátumok.
NCIB 114 22:
Agar-agaron: sohasem alkot elkülönült telepeket. Az egész felületet áttetsző nyálkás rostok borítják Mikroszkopikus vizsgálat (100-szoros nagyítás): a rostokat több szál alkotja.
Folyékony tenyészetben: a hatodik óra után néhány kisméretű aggregátumot tartalmazó tenyészet. Mikroszkopikus vizsgálat (400-szoros nagyítás): 90X1,4X1,8 mikrométeres hosszú, elkülönült szálak. A szálakat jól elhatárolható zsugorodások hosszú egységekre osztják Kevés fénytörő zárvány.
NCIB 114 23:
Agar-agaron: az NCIB 114 22 számú törzshöz hasonló. Nincsenek elkülönült telepek. Sűrű és tisztábban kivehető nyálkás sávok. Mikroszkópiás vizsgálat (100szoros nagyítás): határozottabban elhatárolható rostok, mivel azokat több szál alkotja.
Folyékony tenyészetben: nagy pelyhek (aggregátumok). Mikroszkopikus vizsgálat (400-szoros nagyítás) világosan kivehető zsugorodások által szegmensekre osztott, az NCIB 114 22 számú törzsnél sokkal rövidebt szálak. Méretük 9—10X1,8 mikrométer. 5 óra után gyorsan megjelenő fénytörő zárványok.
NCIB 114 24:
Agar-agaron: az NCIB 114 23 számú törzshöz hasonló. Nincsenek elkülönült telepek. Nyálkás rostok. Mikroszkopikus vizsgálat (100-szoros nagyítás): a rostokat sok szál alkotja.
Folyékony tenyészetben: nagy pelyhek (aggregátumok). Mikroszkopikus vizsgálat (400-szoros nagyítás): hosszú kötegeket alkotó, 140X1,8 mikrométeres hoszszú szálak. Nincsenek látható zsugorodások. Idővel (10 óra után) fénytörő zárványok keletkeznek.
NCIB 114 25:
Agar-agaron: 2—6 mm átmérőjű, áttetsző, elkülönült telepeket alkot. Mikroszkopikus vizsgálat (100-szoros 20 nagyítás): a telepeket szoros spirálokat képező, elkülönült sejtekből álló szálak alkotják.
Folyékony tenyészetben: homogén tenyészet. Mikroszkopikus vizsgálat (400-szoros nagyítás): 4X1,4 mikrométeres, rövid, homogén szálak. Kevés fénytörő 25 zárvány.

Claims (5)

  1. Szabadalmi igénypontok
    30 1. Eljárás bakteriosztatikus hatású anyag előállítására, azzal jellemezve, hogy vizes táptalajban, keverés és aerob körülmények biztosítása mellett a Beggiatoa típusú mikroorganizmus törzsek legalább egyikét (NCIB 114 18—414 25 szám) 5—36 órán keresztül, 20 °C és
    35 50 °C közötti hőmérséklettartományban, 6 és 8 közötti pH-értéken tenyésztjük, mikoris a vizes táptalaj mikroorganizmussal való beoltása előtt az oltóanyagot kívánt esetben homogenizáljuk, majd a biomasszát és/vagy a felszínen úszó fázist összegyűjtjük és kívánt 40 esetben a biomasszát kifagyasztással szárítjuk.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás foganatosítási módja, azzal jellemezve, hogy a mikroorganizmust 8—10 órán keresztül tenyésztjük 30 °C és 40 °C közötti hőmérsékleten, semleges pH-értéken.
    45
  3. 3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti eljárás foganatosítási módja, azzal jellemezve, hogy a biomasszát összegyűjtjük és kifagyasztással szárítjuk.
  4. 4. Az 1—3. igénypontok bármelyike szerinti eljárás foganatosítási módja, azzal jellemezve, hogy egy liter
    50 vízre számítva 1—4 g élesztőkivonatot, 0,1-0,3 g kalcium-kloridot és 0,2—1,0 g nátrium- vagy ammónium-acetátot tartalmazó vizes táptalajt használunk.
  5. 5. A 4. igénypont szerinti eljárás foganatosítási módja, azzal jellemezve, hogy vízként kéntartalmú termálvizet
    55 használunk.
HU79NE622A 1978-11-01 1979-10-29 Process for producing material of bacteriostatic activity HU180030B (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CH1123078A CH634877A5 (fr) 1978-11-01 1978-11-01 Procede de preparation d'une substance presentant une activite bacteriostatique.

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HU180030B true HU180030B (en) 1983-01-28

Family

ID=4371398

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU79NE622A HU180030B (en) 1978-11-01 1979-10-29 Process for producing material of bacteriostatic activity

Country Status (28)

Country Link
US (1) US4419449A (hu)
JP (1) JPS56109589A (hu)
AT (1) AT365234B (hu)
AU (1) AU528629B2 (hu)
BE (1) BE879360A (hu)
CA (1) CA1123355A (hu)
CH (1) CH634877A5 (hu)
CS (1) CS213399B2 (hu)
DD (1) DD147251A5 (hu)
DE (1) DE2941310C2 (hu)
DK (1) DK149781C (hu)
ES (1) ES485566A1 (hu)
FI (1) FI65448C (hu)
FR (1) FR2440403A1 (hu)
GB (1) GB2034687B (hu)
GR (1) GR73004B (hu)
HK (1) HK11384A (hu)
HU (1) HU180030B (hu)
IL (1) IL58451A (hu)
IT (1) IT1164025B (hu)
LU (1) LU81771A1 (hu)
MX (1) MX5937E (hu)
MY (1) MY8400264A (hu)
NL (1) NL7908024A (hu)
SE (1) SE443996B (hu)
SG (1) SG34583G (hu)
SU (1) SU1090263A3 (hu)
ZA (1) ZA795509B (hu)

Families Citing this family (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2700172B1 (fr) * 1992-07-20 1995-07-13 Oreal Procede de culture de bacteries filamenteuses non photosynthetiques et non fructifiantes.
FR2693654B1 (fr) 1992-07-20 1994-08-26 Oreal Médicament, notamment immunomodulateur, contenant des enveloppes ou fractions d'enveloppes de bactéries filamenteuses non photosynthétiques et non fructifiantes, et sa préparation.
FR2719768B1 (fr) * 1994-05-10 1996-06-14 Oreal Utilisation d'extraits de bactéries filamenteuses comme agents cosmétiques contre le vieillissement cutané.
FR2721208B1 (fr) * 1994-06-16 1996-08-02 Oreal Composition à usage topique contenant un antioxidant et un extrait bactérien, et utilisation de cette composition.
FR2746642B1 (fr) * 1996-03-27 1998-05-15 Oreal Composition apaisante comprenant un extrait bacterien
ES2120274T3 (es) * 1995-09-07 1998-10-16 Oreal Utilizacion de un extracto de una bacteria filamentosa no fotosintetica y composicion.
FR2738485B1 (fr) * 1995-09-07 1997-11-14 Oreal Utilisation d'au moins un extrait d'au moins une bacterie filamenteuse non photosynthetique en tant qu'antagoniste de substance p
FR2746646B1 (fr) * 1996-03-27 1998-05-15 Oreal Composition apaisante comprenant un extrait vegetal et un extrait bacterien
FR2762782B1 (fr) 1997-05-05 1999-06-11 Oreal Composition comprenant un milieu de culture de micro-organisme et utilisation
FR2879452B1 (fr) * 2004-12-21 2007-07-06 Oreal Utilisation d'un extrait de bacterie filamenteuse non photosynthetique non fructifiante en tant qu'agent modulant l'adhesion de microorganismes cutanes
FR2915898B1 (fr) * 2007-05-10 2009-06-12 Oreal Procede de preparation d'actifs sur eau thermale et compositions les contenant
FR2918885B1 (fr) * 2007-07-17 2009-08-28 Oreal Utilisation d'extrait de bacterie cultivee sur eau thermale pour diminuer les poches et/ou les cernes perioculaires
FR2918887B1 (fr) * 2007-07-17 2009-08-28 Oreal Utilisation d'au moins un extrait bacterien cultive sur eau thermale pour la chute des cheveux
FR2918883B1 (fr) * 2007-07-17 2010-01-15 Oreal Utilisation d'un extrait bacterien cultive sur une eau thermale pour le traitement des peaux seches
FR2918884B1 (fr) * 2007-07-17 2010-01-15 Oreal Utilisation d'extraits bacteriens cultives sur eau thermale comme agent anti-rougeur
FR2918886B1 (fr) * 2007-07-17 2010-01-08 Oreal Utilisation d'au moins un extrait bacterien cultive sur eau thermale pour le traitement des peaux, muqueuses et cuirs chevelus sensibles
GB2474041A (en) * 2009-10-02 2011-04-06 Omorovicza Cosmetics Ltd Cosmetic composition comprising thermal mineral water
FR2965277B1 (fr) * 2010-09-23 2012-10-19 Thermanence Bio Procede et installation de production en masse de plancton, dit thermal, sur au moins un support de culture dispose a l'interieur d'un bassin comportant au moins une entree et une sortie de fluide
ES2702293T3 (es) * 2012-06-13 2019-02-28 Eucodis Bioscience Gmbh Catalasa en medios de cultivo

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR1372620A (fr) * 1963-08-07 1964-09-18 Fr Des Cosmetiques Biolog Soc Produit utilisable en cosmétologie, sa préparation et ses applications
FR1536017A (fr) * 1967-09-06 1968-08-09 Nouvelles compositions cosmétiques à base de dérivés planctoniques
LU70601A1 (hu) * 1974-07-24 1976-05-31
FR2283223A1 (fr) * 1974-08-26 1976-03-26 Synthelabo Procede de culture industrielle de sulfuraires en vue, notamment, d'une utilisation dermatologique et cosmetologique

Also Published As

Publication number Publication date
GR73004B (hu) 1984-01-24
FI65448C (fi) 1984-05-10
IL58451A0 (en) 1980-01-31
JPH0336517B2 (hu) 1991-05-31
GB2034687A (en) 1980-06-11
BE879360A (fr) 1980-04-11
FI65448B (fi) 1984-01-31
DE2941310C2 (de) 1982-11-18
FR2440403A1 (fr) 1980-05-30
IT7950674A0 (it) 1979-10-26
US4419449A (en) 1983-12-06
AU5226479A (en) 1980-05-08
AT365234B (de) 1981-12-28
JPS56109589A (en) 1981-08-31
CA1123355A (fr) 1982-05-11
MX5937E (es) 1984-08-30
SE7908516L (sv) 1980-05-02
DE2941310A1 (de) 1980-05-14
IL58451A (en) 1983-10-31
DK149781B (da) 1986-09-29
DK431979A (da) 1980-05-02
MY8400264A (en) 1984-12-31
AU528629B2 (en) 1983-05-05
IT1164025B (it) 1987-04-08
FI793195A (fi) 1980-05-02
SG34583G (en) 1984-04-19
DD147251A5 (de) 1981-03-25
HK11384A (en) 1984-02-17
FR2440403B1 (hu) 1983-08-26
DK149781C (da) 1987-03-09
ATA667579A (de) 1981-05-15
CS213399B2 (en) 1982-04-09
SE443996B (sv) 1986-03-17
GB2034687B (en) 1983-03-30
NL7908024A (nl) 1980-05-06
ZA795509B (en) 1980-09-24
LU81771A1 (fr) 1980-01-24
ES485566A1 (es) 1980-07-01
CH634877A5 (fr) 1983-02-28
SU1090263A3 (ru) 1984-04-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU180030B (en) Process for producing material of bacteriostatic activity
Park et al. Pathogenic Microorganisms: A Practical Manual for Students, Physicians, and Health Officers
Kulp et al. Comparative study of Lactobacillus acidophilus and Lactobacillus bulgaricus
Torrey et al. Cultural methods for the gonococcus
Hewlett A Manual of bacteriology
Knaysi Morphological and Cultural Studies of Bacillus megatherium with special Reference to Dissociation
Trick et al. Characterization of Herpetosiphon spec.—A gliding filamentous bacterium from bulking sludge
RU2210592C1 (ru) ШТАММ БАКТЕРИЙ Bifidobacterium longum 58B ДЛЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ДОБАВОК, РЕГУЛИРУЮЩИХ МИКРОФЛОРУ КИШЕЧНИКА У ДЕТЕЙ РАННЕГО ВОЗРАСТА
Peckham THE INFLUENCE OF ENVIRONMENT UPON THE BIOLOGICAL PROCESSES OF THE VARIOUS MEMBERS OF THE COLON GROUP OF BACILLI: An Experimental Study.
Wolbach et al. A critical Review of the Bacteriology of Human and Rat Leprosy
Reed A manual of bacteriology for agricultural and general science students
Newton Marine spore forming bacteria
Khikmatovna CHARACTERISTICS OF MICROORGANISMS ISOLATED FROM THE GASTROINTESTINAL TRACT OF FISH
Bulleid A text-book of bacteriology for dental students
Traut Blood cultures in chronic arthritis
SU721487A1 (ru) Штамм N563 ,используемый дл вы влени лизогенных штаммов молочнокислых стрептококков
Park et al. Pathogenic microörganisms: a practical manual for students, physicians and health officers
Harden The fermentation of sugars by Bacillus coli communis and allied organisms
Jordan An attempt to grow tubercle bacilli within the single-celled organism Colpidium campylum
Hewlett A manual of bacteriology clinical and applied
KETRON THE ACNE BACILLUS: VARIATIONS IN THE CULTURAL AND MORPHOLOGIC CHARACTERISTICS
RU2213140C2 (ru) Штамм бактерий bifidobacterium infantis 37b для приготовления биологически активных добавок, регулирующих микрофлору кишечника у детей раннего возраста
RU2068880C1 (ru) Способ выделения листерий из пищевых продуктов
Ellis Outlines of bacteriology (technical and agricultural)
Park et al. Pathogenic Micro-organisms: Including Bacteria and Protozoa

Legal Events

Date Code Title Description
HU90 Patent valid on 900628
HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee