CN1182250C - 用于制备抗坏血酸、2-酮-l-古洛糖酸及2-酮-l-古洛糖酸酯的酶促方法 - Google Patents
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Abstract
本发明的目的在于用于制备抗坏血酸、2-酮-L-古洛糖酸及2-酮-L-古洛糖酸酯的有效、高产的方法。该方法包括将合适的起始原料与水解酶催化剂、比如蛋白酶、酯酶、脂肪酶或酰胺酶反应。
Description
本申请是申请号为97196510.2、申请日为1997年5月16日、发明名称为用于制备抗坏血酸、2-酮-L-古洛糖酸及2-酮-L-古洛糖酸酯的酶促方法的分案申请。
发明领域
本发明涉及用于制备抗坏血酸、2-酮(keto)-L-古洛糖酸(KLG)和KLG的酯的方法。更具体地说,本发明涉及酶催化剂在制备抗坏血酸、KLG或KLG的酯中的用途。
发明背景
抗坏血酸、又名雏生素C是一种必须存在于人类饮食中以预防坏血病并且已经鉴定为可以提高对传染的抗性的试剂的饮食因子。在商业方面,抗坏血酸例如用作营养添加物、固色剂、肉类和其它食品中的调味剂和防腐剂、面包生面团中的氧化剂、收获中的柑橘类水果的切除(abscission)以及分析化学中的还原剂。
一种用于制备抗坏血酸的通用方法使用了原始Reichstein-Grossner合成的改进方法(Reichstein等,Helv.Chim.Acta,17:311(1934);Reichstein的美国专利2,301,811;本文中所引用的所有文献逐一插入本文仅供参考)。在该方法中把葡萄糖源转化成抗坏血酸。在转化过程中生成了KLG的双丙酮化合物的中间体。
有几种两阶段方法用于制备抗坏血酸。在第一阶段中,通过发酵方法将葡萄糖或者转化为分离了的KLG的中间体(Sonoyama等,应用与环境微生物学,43:1064-1069(1982);Anderson等,科学,230:144-149(1985);Shinjoh等,应用与环境微生物学,61:413-420(1995))或者转化为Reichstein-Grossner合成的中间体、即KLG的双丙酮化合物。
把上述两种中间体之一转化为抗坏血酸的第二阶段是通过两条已经报道的路线中的一条路线进行的。第一条路线、即Reichstein-Grossner合成的后继步骤的改进需要多个步骤,由此在强酸条件下使中间体与甲醇发生酯化以生成甲基-2-酮-L-古洛糖酸(MeKLG)。然后使MeKLG与碱反应以生成金属抗坏血酸盐。最后,用酸化剂处理金属抗坏血酸盐以得到抗坏血酸。第二条路线为一步法,该方法包括如最初在Reichstein的英国专利466548中公开、随后由Yamazaki改进(Yamazaki,日本农业化学协会杂志,28:890-894(1954)与化学文摘,50:5992d)并且再由Yodice改进(WO 87/00839)的酸催化KLG的成环。Yodice的方法在商业上不受欢迎,因为它使用了大量的气态氯化氢、需要非常昂贵的加工设备并且生产出需要进一步纯化的抗坏血酸产品。
脂肪酶、即一组水解酶已经成功地用于一些有机酸酯的合成中。具体说来,脂肪酶已经用于其中的酯化剂为不可逆的醇的酯基转移作用,比如当醋酸乙烯酯用作酯化剂时(Thiel,今日催化,517-536(1994)).Gutman等(四面体通讯,28:3861-3864(1987))描述了一种使用猪胰脂肪酶作为催化剂由γ-羟甲基酯制备简单的5-元环内酯的方法。但是,Gutman等(四面体通讯,28:5367-5368(1987))随后报道了用δ-羟甲基酯代替γ-羟甲基酯并且使用同样的催化剂仅生产出聚合物。在Sakashita等的EP 0 515 694 Al中,抗坏血酸酯的合成(在伯羟基上进行酰化)包括在有脂肪酶存在的条件下在极性有机溶剂中使抗坏血酸与多种脂肪酸的活性酯(即脂肪酸乙烯酯)反应。
因此,在现有技术中需要有生产下列物质的方法:(a)由KLG或KLG的酯生产抗坏血酸或其金属盐,(b)由KLG的酯生产KLG和(c)由KLG生产KLG的酯,所述方法具有高产率和高纯度、极少或者没有副产物产生并且在温和的条件下进行。因此,本发明主要的目的在于提供上述方法。
发明概述
本发明公开了在化学和生物学领域中的进步,其中用于制备抗坏血酸的方法包括使KLG或KLG的酯与水解酶催化剂接触。
在本发明的另一个实施方案中,用于生产KLG的方法包括在水溶液中使KLG的酯与水解酶催化剂接触。
在本发明的再一个实施方案中,用于由KLG生产KLG酯的方法包括使KLG的醇溶液与水解酶催化剂接触。醇溶液含有与将要制得的KLG酯的烷基部分相对应的醇。
在本发明的再一个实施方案中,用于由KLG的酯生产KLG的酯的方法包括使第一种KLG酯的醇溶液与水解酶催化剂接触。该醇溶液含有与将要制得的第二种KLG酯的烷基部分相对应的醇。
发明详述
本发明的目的在于出乎意料地发现使用水解酶作为催化剂通过诱导KLG或KLG酯的闭环,可以由KLG、或者更优选地可以由KLG的酯生成抗坏血酸。可以在熔化状态或者在溶液中进行用于生产抗坏血酸的方法。该方法也可以在体内或在体外进行。对体内方法而言,水解酶催化剂可以天然存在于宿主细胞中或者可以通过重组DNA方法引入到宿主细胞或者生物体中。
本发明的目的还在于出乎意料地发现KLG可以在可逆反应中通过在水溶液中使用水解酶作为催化剂使KLG的酯发生反应来制备。此外,本发明的目的在于出乎意料地发现KLG的酯可以通过使用水解酶作为催化剂在醇溶液中使KLG或另一种KLG的酯发生反应来制备。用于制备上述溶液的醇对应于将要制得的KLG的酯的烷基部分。
在本发明的方法中用作催化剂的水解酶可以从任何来源适宜的生物体中得到或者分离出来。其中包括的实例有、但却不限于植物、微生物以及动物,比如酵母、细菌、霉菌、真菌、鸟类、爬行动物、鱼类和哺乳动物。正如在酶命名(学术出版社,1992)中规定的那样,对本发明而言的水解酶通常被定义为E.C.3.-.-.-的酶类,并且这些酶可以通过商业途径得到。
优选的水解酶为那些能够影响含有羰基或者磷酸基团的分子水解的酶。更具体地说,优选的水解酶为能够影响在含有一个杂原子单键的羰基碳上发生水解的酶。这些含有一个杂原子单键的羰基碳的实例包括、但却不限于酯、硫酯、酰胺、酸、酰基卤及类似物。优选的水解酶包括E.C.3.1.-.-的酶类,它包括作用于酯键的水解酶、比如酯酶和脂肪酶;E.C.3.2-.-的酶类,它包括糖苷酶;E.C.3.4-.-的酶类,它包括肽的水解酶,比如蛋白酶;以及E.C.3.5.-.-的酶类,它包括作用于除肽键以外的键的酰胺酶。最优选的水解酶包括蛋白酶、酰胺酶、脂肪酶和酯酶。
最优选的水解酶含有活性位点的丝氨酸残基,它能够与KLG或KLG的酯进行酯化或者酯基转移作用。甚至更为优选的为那些含有丝氨酸、组氨酸和天冬氨酸的催化三联体的水解酶。
优选的蛋白酶包括那些来源于芽胞杆菌属或曲霉属细菌的蛋白酶。特别优选的蛋白酶为那些从地衣形芽胞杆菌细菌中得到的蛋白酶。优选的蛋白酶为那些与枯草蛋白酶之间至少具有70%的序列同源性的蛋白酶。与枯草蛋白酶具有序列同源性的蛋白酶用于洗涤剂工业中,因此可以方便地得到。更优选的为与枯草蛋白酶之间至少具有80%序列同源性的蛋白酶,甚至更为优选的为与枯草蛋白酶之间至少具有90%序列同源性的蛋白酶,特别是与枯草蛋白酶之间至少具有95%序列同源性的蛋白酶。一种非常优选的蛋白酶为枯草蛋白酶自身,它具有由Smith等在《生物化学杂志》243:2184-2191(1968)中所描述的氨基酸序列(SEQ ID NO:1)并且如下所示:
MMRKKSFWLG MLTAFMLVFT MAFSDSASAA QPAKNVEKDY
IVGFKSGVKT ASVKKDIIKE SGGKVDKQFR IINAAKAKLD
KEALKEVKND PDVAYVEEDH VAHALAQTVP YGIPLIKADK
VQAQGFKGAN VKVAVLDTGI QASHPDLNVV GGASFVAGEA
YNTDGNGHGT HVAGTVAALD NTTGVLGVAP SVSLYAVKVL
NSSGSGTYSG IVSGIEWATT NGMDVINMSL GGPSGSTAMK
QAVDNAYARG VVVVAAAGNS GSSGNTNTIG YPAKYDSVIA
VGAVDSNSNR ASFSSVGAEL EVMAPGAGVY STYPTSTYAT
LNGTSMASPH VAGAAALILS KHPNLSASQV RNRLSSTATY
LGSSFYYGKG LINVEAAAQ。
为了方便读者,表1提供了以上以及在本说明书其余部分中使用的氨基酸简写形式的一览表。
表1
氨基酸符号 三字母缩写 一字母
丙氨酸 Ala A
精氨酸 Arg R
天冬酰胺 Asn N
天冬氨酸 Asp D
半胱氨酸 Cys C
谷氨酰胺 Gln Q
谷氨酸 Glu E
甘氨酸 Gly G
组氨酸 His H
异亮氨酸 Ile I
亮氨酸 Leu L
赖氨酸 Lys K
甲硫氨酸 Met M
苯丙氨酸 Phe F
脯氨酸 Pro P
丝氨酸 Ser S
苏氨酸 Thr T
色氨酸 Trp W
酪氨酸 Tyr Y
缬氨酸 Val V
另外也包括在本发明范围之内的为与以上所示序列的对1至6个位点具有特异性的突变体、序列添加以及序列缺失相对应的蛋白酶。甚至更优选的为对应于以上所示枯草蛋白酶序列的对0至2个位点具有特异性的突变体的蛋白酶。
适用于本发明的酯酶包括那些由猪肝提取物中得到的酶。优选的酯酶为那些与猪肝酯酶之间至少具有70%序列同源性的酯酶,所述的猪肝酯酶具有由Matsushima等在《FEBS Lett.》293:37(1991)中所述的氨基酸序列(SEQ ID NO:2)并且如下所示:
MWLLPLVLTS LASSATWAGQ PASPPVVDTA QGRVLGKYVS
LEGLAFTQPV AVFLGVPFAK PPLGSLRFAP PQPAEPWSFV
KNTTSYPPMC CQDPVVEQMT SDLFTNFTGK ERLTLEFSED
CLYLNIYTPA DLTKRGRLPV MVWIHGGGLV LGGAPMYDGV
VLAAHENFTV VVVAIQYRLG IWGFFSTGDE HSRGNWGHLD
QVAALHWVQE NIANFGGDPG SVTIFGESFT AGGESVSVLV
LSPLAKNLFH RAISESGVAL TVALVRKDMK AAAKQIAVLA
GCKTTTSAVF TFVHCLRQKS EDELLDLTLK MKFLTLDFHG
DQRESHPFLP TVVDGVLLPK MPEEILAEKD FTFNTVPYIV
GINKQEFGWL LPTMMGFPLS EGKLDQKTAT SLLWKSYPIA
NIPEELTPVA TFTDKYLGGT DDPVKKKDLF LDLMGDVVFG
VPSVTVARQH RDAGAPTYMY EFQYRPSFSS DKFTKPKTVI
GDHGDEIFSV FGFPLLKGDA PEEEVSLSKT VMKFWANFAR
SGNPNGEGLP HWPFTMYDQE EGYLQIGVNT QAAKRLKGEE
VAFWNDLLSK EAAKKPPKIK HAEL。
酯酶更优选与以上所示的猪肝酯酶的序列之间至少具有80%的序列同源性、甚至更优选至少有90%的序列同源性、特别优选至少有95%的序列同源性。非常优选的为具有以上所示序列的猪肝酯酶。
另外也包括在本发明范围之内的为与以上所示序列的对1至6个位点具有特异性的突变体、序列添加以及序列缺失相对应的酯酶。甚至更优选的为对应于以上所示猪肝酯酶序列的对0至2个位点具有特异性的突变体的酯酶。
优选的脂肪酶包括那些从猪和其它哺乳动物、微生物以及植物中分离出来的酶。这包括、但却不限于从曲霉属、毛霉菌属、假丝酵母属、假单胞菌属、腐质霉属、根霉属、色杆菌属、产碱杆菌属、地霉属和青霉属得到的脂肪酶。优选的脂肪酶也包括胞外脂肪酶、比如角质酶(cutinase)。更优选的脂肪酶与南极洲假丝酵母(CandidaAntartica)B型脂肪酶之间至少具有70%的序列同源性、甚至更优选至少具有80%的序列同源性、愈加更优选至少具有90%的序列同源性、甚至更优选至少具有95%的序列同源性。一种非常优选的脂肪酶为南极洲假丝酵母B型脂肪酶自身,它具有由Uppenberg等在《结构》2:293,453(1994)中所述的氨基酸序列(SEQ ID NO:3)并且如下所示:
MKLLSLTGVA GVLATCVAAT PLVKRLPSGS DPAFSQPKSV
LDAGLTCQGA SPSSVSKPIL LVPGTGTTGP QSFDSNWIPL
STQLGYTPCW ISPPPFMLND TQVNTEYMVN AITALYAGSG
NNKLPVLTWS QGGLVAQWGL TFFPSIRSKV DRLMAFAPDY
KGTVLAGPLD ALAVSAPSVW QQTTGSALTT ALRNAGGLTQ
IVPTTNLYSA TDEIVQPQVS NSPLDSSYLF NGKNVQAQAV
CGPLFVIDHA GSLTSQFSYV VGRSALRSTT GQARSADYGI
TDCNPLPAND LTPEQKVAAA ALLAPAAAAI VAGPKQNCEP
DLMPYARPFA VGKRTCSGIV TP。
另外也包括在本发明范围之内的为与以上所示序列的对1至6个位点具有特异性的突变体、序列添加以及序列缺失相对应的脂肪酶。甚至更优选的为对应于以上所示B型南极洲假丝酵母序列的对0至2个位点具有特异性的突变体的脂肪酶。
优选的酰胺酶包括那些从青霉菌属的细菌中分离出来的酰胺酶。更优选的酰胺酶与青霉素酰基转移酶之间至少具有80%的序列同源性。特别优选的酰胺酶为青霉素酰基转移酶,它也称作青霉素酰胺水解酶E.C.3.5.1.11(Duggleby等,自然,373:264-266(1995))。
对于在其活性位点上含有丝氨酸的水解酶来说,人们认为在KLG或KLG酯的反应中的第一步涉及通过由活性位点丝氨酸的KLG的酰化形成了KLG-酶酯。人们认为分子内的闭环生成了抗坏血酸(或其盐),而醇解则生成了KLG的酯、水解则生成了KLG。
本发明的方法包括将KLG或者KLG的酯与水解酶接触以生成抗坏血酸。优选地,该反应是在有机溶剂系统、水溶剂系统或其混合物的条件下进行的。有机溶剂优选为C1-C6的醇。水溶剂系统或者水和有机溶剂混合的系统更为优选,这是因为抗坏血酸、KLG以及KLG的酯通常更易溶于水溶剂系统中。对于在体外从KLG的酯生产抗坏血酸而言,优选水和有机溶剂混合的系统或者有机溶剂系统以便使能够生产出副产物KLG的竞争水解反应降到最低的程度。当使用完整细胞系统在体内生产抗坏血酸时,特别优选水溶剂系统。
在本发明的一个方面,抗坏血酸是由KLG或KLG的酯在有水解酶催化剂存在下,在体内在完整细胞以及完整生物体生产系统中生成的。在一个具体实施方案中,水解酶是由宿主生物体天然产生的。在另一个具体实施方案中,水解酶是通过重组DNA技术由宿主生物体产生的。例如,将编码水解酶的基因序列插入宿主生物体中,其中所述的宿主生物体可以是能够表达水解酶的微生物、植物或动物。培养产生水解酶的宿主生物体、即在有KLG或KLG的酯存在的情况下提供适于生长的营养和合适的环境以生产出抗坏血酸。优选的宿主生物体为柠檬泛菌(Pantoea Citrea),以前在如Anderson等的美国专利5,008,193中所公开的将其称为草生欧文氏菌(Erwiniaherbicola)。
另外优选的宿主生物体为一种除了生产水解酶之外还生产KLG的生物体。具有代表性的生物体为来自泛菌属或葡糖杆菌属的生物体、比如Shinjoh等在《应用与环境微生物学》61:413-420(1995)中公开的生物体,以及如Sonoyama等在《应用与环境微生物学》43:1064-1069(1982)中公开的棒状杆菌属的生物体。
正如本文所使用的那样,重组DNA技术包括体外重组DNA技术、合成技术以及体内重组/遗传重组,并且该技术在现有技术中是众所周知的。例如可以参阅在下列文献中所述的技术:Maniatis等,《分子克隆实验室手册》,冷泉港实验室,纽约(1989);Ausubel等,《分子生物学通用实验方案》,Greene出版协会与WileyInterscience,纽约(1989);Anderson等,《科学》,230:144-149(1985);以及Estell等的美国专利5,441,882。
为了从KLG的酯制备KLG,使KLG的酯的水溶液与水解酶反应。在制备KLG中可以使用助溶剂并且优选C-C6的醇。
为了从KLG或者从KLG的其它酯制备KLG的酯,将起始原料溶于醇溶液中,其中的醇对应于将要制得的KLG的酯的烷基部分。从中可以得到优选的KLG酯的醇ROH的烷基部分R可以选自支链或直链的、饱和或不饱和的烷基、芳烷基、芳基以及取代的芳基。优选的R基团包括C1至C6的直链或支链的、饱和或不饱和的烷基。针对烷基部分衍生的甚至更优选的KLG的酯包括MeKLG、乙基-KLG、正丙基-KLG、异丙基-KLG、正丁基-KLG、异丁基-KLG、t-丁基-KLG以及正戊基-KLG。生成的最优选的KLG的酯为MeKLG、这是因为它可以很方便地进行生产,以及丁基-KLG、这是由于在除去水分时可以便利地使用丁醇水的共沸物。在制备KLG的酯的过程中可以使用助溶剂并且优选水、C1-C6的醇或其混合物。
用于进行本发明的反应的优选温度为5℃至120℃。甚至更优选的温度为25℃至100℃,并且特别优选的温度为38℃至80℃。
用于本发明的方法的优选pH介于1.5和10之间,并且更优选的pH介于3和10之间。为了从KLG的酯制备抗坏血酸盐,特别优选的pH范围在6和10之间。为了制备呈游离酸形式的抗坏血酸,优选的pH在抗坏血酸的pKa下,并且更优选在4.2下。为了从KLG的酯制备KLG,特别优选的pH范围介于5和10之间,这是因为在该pH范围内通常能提高酶协助的水解的速率。另一方面,为了生成呈质子化形式的KLG,介于1.5和2.5之间的pH尤其合乎要求。最后,为了从KLG制备KLG的酯,特别优选的pH范围介于3和6之间。
每种水解酶都具有最适温度、最适pH以及与活性有关的pH和温度范围。因此对给定的水解酶而言,适宜的pH和温度范围为可以为水解酶的活性创造条件并且避免使水解酶变性或失活的条件。对于可以发生变性的条件而言、比如高温或者使用变性溶剂(如甲醇或者类似物),可以要求进行最小量的测试以限定那些在一系列给定的条件下仍保持活性的水解酶。
下面的实施例是通过解释的方式提供的,并且这些实施例不打算限制所要求保护的本发明的范围。
实施例
在质子模式为300MHZ和碳模式为75MHZ下操作的Varian Gemini300NMR仪上记录质子和碳核磁共振(NMR)光谱。除非另作说明的以外,所有的NMR光谱都以0百万分率(ppm)的四甲基硅烷(TMS)为基准并且以ppm记录峰的频率。使用紫外(UV)检测进行HPLC(高效液相层析)的分析。使用Fisons VG分析有限公司的Autospec质谱仪在FD(场解吸)模式下得到质谱(MS)。
在本实验中使用的KLG是根据Lazarus等、Anderson等在《科学》230:144-149(1985)中的方法通过发酵得到的,并且通过浓缩和结晶进行纯化。另外,KLG也可以根据本领域中众所周知的方法通过化学转化由L-山梨糖制得(例如参见Reichstein的美国专利2,301,811)。甲基-2-酮-L-古洛糖酸的标准品可以从Aldrich化学公司(稀有和特殊化学药品目录)买到,另外可以通过如下所述的与用于制备丁基-KLG的方法类似的方法由KLG的酯化来制备。
水解酶样品是从商业来源得到的,包括Sigma化学公司、AltusBiologics、重组生物催化公司、Boehringer Mannheim、NovoNordisk、Genencor国际公司、Thermogen和Fluka。
实施例1
本实施例描述了丁基2-酮-L-古洛糖酸的制备和纯化。
在氩气环境中将KLG水合物(51.62g)装入一个500ml的反应容器中。该反应器配备有一个连接到迪安-斯达克榻分水器上的30.48cm(12”)的维格罗分馏柱。然后向反应器中装入正丁醇(310g)和对甲苯磺酸(2.3g)。在适度真空的条件下[大约19.95 kPa(150mmHg)]在搅拌下使反应混合物回流(81-82℃)。持续回流共计2小时40分钟。不再继续加热。使反应冷却并在室温下保持大约3天。得到的晶体通过粗多孔玻璃过滤器过滤并用两份正丁醇(139g、随后为37g)洗涤。将得到的固体(24.4g)溶解在热的醋酸乙酯(250ml)中,并在室温下通过静置过夜进行重结晶。通过过滤分离出重结晶的丁基-KLG并在真空下[0.1995kPa(1.5mmHg)]干燥至恒重(15.97g)来实现。
人们发现如此制得的丁基-KLG在水中具有至少50%重量百分数的溶解度,因为在50%重量百分数的情况下在所有的浓度下它都可以溶解在水中。本实施例重结晶的丁基-KLG具有令人满意的质子和碳NMR光谱并且通过场解吸质谱测定给出了预测的分子量。
1H NMR(DMSO,数字式分辨率=0.11z,在半高度下的TMS=0.5Hz):6.49(OH,d,J=1.4Hz),4.96(OH,d,J=5.0Hz),4.84(OH,d,J=4.8Hz),4.78(OH,d,J=7.4Hz),4.17-4.0(m,2H),3.5-3.2(m,约为5H),1.64-1.5(m,2H),1.4-1.35(m,2H),0.89(CH3,t,J=7.3)。
13C NMR(DMSO,去偶的):169.4,96.3,73.8,72.8,69.8,64.5,62.8,30.0,18.4,13.5。
FDMS:M=250
实施例2
以下的方法用于说明在具体的pH和水溶剂组合物条件下酶的活性。
如下进行起始酶的筛选。把酶(一般为10mg)、水性缓冲溶液(一般为860微升(ul)或550ul)、0.2MCaCl2水溶液(10ul)、甲醇(一般为90ul或400ul)和底物的水溶液(一般为90ul的丁基-KLG、其常用的浓度为110,000ppm)加入2ml聚丙烯离心管中。把得到的溶液简短地旋转一下并放置在300rpm、38℃下的水浴摇床中(通常处理18小时或者更长的时间)。在温育后,将样品在14,000G’s(14,000倍的重力)下离心20分钟以除去酶、取样(300ul)并用蒸馏水稀释到1毫升。如果不在当天用HPLC进行分析的话,在分析前冷冻样品。
在下面的表2中总结的是在丁基-KLG(BuKLG)与多种水解酶在水/甲醇溶液中反应时的产物(以及残留底物)的HPLC数据。这些数据是以KLG、MeKLG、抗坏血酸(ASA)和丁基-KLG的百万分率报道的。报道值为0(零)表明存在的物质的量低于仪器的检测阈值。在给定的试验中,标记为“无酶”的样品为对照物。这些对照物含有底物、但却不含酶,因而可以代表实验和HPLC的本底数据。
表2
针对丁基-KLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理41小时/38%甲醇-水/0.1MES缓冲溶液)
酶 测量的 KLG MeKLG ASA BuKLG
pH (ppm)
ESL-001-01 5.8 1180 2352 766 4603
ESL-001-02 5.6 704 1084 302 7736
ESL-001-03 5.7 386 527 257 8931
ESL-001-04 5.8 550 752 833 6229
ESL-001-05 5.9 456 684 469 7942
ESL-001-06 5.6 547 661 129 8896
ESL-001-07 5.7 311 755 489 6540
无酶 108 325 33 10177
无酶 (重复) 107 303 0 9459
无酶 117 327 42 9878
无酶 (重复) 103 269 2 8593
无酶 116 322 0 9473
表2说明由重组生物催化公司提供的水解酶(ESL-001-01至ESL-001-07)显示出在用吗啉代乙磺酸(MES)半钠盐缓冲的、将pH控制在5.5与6之间的38%甲醇-水溶液中把丁基-KLG明显地转化为抗坏血酸、MeKLG和KLG。这些水解酶为通过商业途径由重组生物催化公司销售的重组酯酶以及来自嗜热生物体、商品名为CloneZyme(商标)的脂肪酶。
实施例3
下面的表3说明多种酰基转移酶、酯酶、脂肪酶和蛋白酶显示出在用MES缓冲溶液缓冲的、pH为4.8至5.8的38%甲醇-水溶液中把丁基-KLG明显地转化成抗坏血酸、MeKLG和KLG。标明为ChiroClec(商标)的酶为可以通过商业途径从Altus Biologics购得的结晶状的交联酶。ChiroClec-CR为来自皱摺假丝酵母(Candida rugosa)的脂肪酶,ChiroClec-BL为枯草蛋白酶(一种蛋白酶)的结晶形式,而ChiroClec-PC为来自葱头假单胞菌(Pseudomonas Cepacia)的脂肪酶。南极洲假丝酵母B(Candida Antartica)(一种脂肪酶)、猪肝酯酶(一种水解酶)和芽胞杆菌属物种的蛋白酶均显示出特别高水平的活性。
表3
针对丁基-KLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理16小时/38%甲醇-水/0.1M MES缓冲溶液)
酶 测量的 KLG MeKLG ASA BuKLG
pH (ppm)
猪肝酯酶 5.3 446 4377 294 5711
葱头假单胞菌脂肪酶 5.3 98 295 65 11355
猪胰脂肪酶 5.4 81 316 49 10709
皱摺假丝酵母脂肪酶 5.7 122 197 180 10689
α-胰凝乳蛋白酶 4.9 57 152 20 11174
青霉素酰基转移酶 5.6 83 1307 15 12007
黑色曲霉脂肪酶 5.7 302 541 55 12290
无酶 5.1 88 210 5 10393
无酶 5.1 87 199 1 11553
南极洲假丝酵母‘A’脂肪酶 5.4 88 242 37 10670
解脂假丝酵母脂肪酶 5.3 91 92 5 11604
南极洲假丝酵母‘B’脂肪酶 4.8 2915 6807 0 0
Humicola lanuginosa脂肪酶 5 63 90 6 10191
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 4.8 2587 5386 9 1251
无酶 5.2 94 194 1 11552
ChiroCLEC-CR(干燥的) 5.1 113 222 2 10988
ChiroCLEC-BL(干燥的) 5.4 194 642 3 5123
ChiroCLEC-PC(葱头假单胞菌) 5.7 147 566 1 10471
德列马根霉脂肪酶
雪白根霉脂肪酶 5.5 51 99 1 7392
米根霉脂肪酶 5.1 80 252 17 10453
粘稠色杆菌脂肪酶 5.5 58 172 5 10873
白地霉脂肪酶 5.5 433 187 1 10843
爪哇毛霉脂肪酶 5 33 407 7 10000
米曲霉蛋白酶 5.5 33 167 97 9950
Amano-脂肪酶 5.8 289 781 96 7429
PS30(假单胞菌属) 5.3 56 300 49 9143
Amano-脂肪酶AK
(假单胞菌属) 5.6 74 167 93 11372
实施例4
下面的表4说明多种酰基转移酶、酯酶、脂肪酶和蛋白酶显示出在用MES缓冲溶液缓冲的、pH为5至5.8的38%甲醇-水溶液中把丁基-KLG明显地转化成抗坏血酸、MeKLG和KLG。猪肝酯酶、枯草蛋白酶Carlsberg(一种蛋白酶)、芽胞杆菌属物种的蛋白酶、ChiroClec-BL与南极洲假丝酵母B脂肪酶均显示出特别高水平的活性。
表4
针对丁基-KLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理47.5小时/38%甲醇-水/0.1M MES缓冲溶液)
酶 测量的 KLG MeKLG ASA BuKLG
pH (ppm)
猪肝酯酶 5.3 705 2720 246 1368
葱头假单胞菌脂肪酶 5.5 77 288 46 6222
猪胰脂肪酶 5.4 229 613 222 10899
皱摺假丝酵母脂肪酶 5.8 104 205 155 5417
α-胰凝乳蛋白酶 5.1 82 248 54 6092
青霉素酰基转移酶 5.8 100 1607 30 6192
黑色曲霉脂肪酶 5.3 214 391 29 6470
米赫毛霉脂肪酶 5.6 54 189 108 7041
ChiroCLEC-CR 5.5 115 218 99 3769
枯草蛋白酶Carlsberg 5.1 3072 47 0 0
南极洲假丝酶母A 5.4 166 316 35 5943
解脂假丝酵母脂肪酶 5.7 150 166 0 6445
南极洲假丝酵母B 5.3 2210 3520 60 0
Humicola lanuginosa脂肪酶 5.2 129 241 42 8017
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 5.3 3722 1940 29 38
ChiroCLEC-BL蛋白酶 5 3744 1724 54 634
ChiroCLEC-PC脂肪酶 5.7 108 196 5 4148
皱摺假丝酵母酯酶 5.6 70 309 61 6734
L-1(假单胞菌属) 5.4 90 336 11 7066
L-2(南极洲假丝酵母B) 5.5 2622 3764 14 913
L-3(Candida cylindracea) 5.7 88 158 37 10343
L-5(南极洲假丝酵母A) 5.5 153 665 42 4626
L-6(假单胞菌属) 5.7 0 379 13 6183
L-7猪胰 5.8 94 884 120 5488
L-8(腐质霉属) 5.5 98 219 7 7299
无酶 5.6 75 234 5 5508
无酶 5.5 68 209 6 4968
无酶 5.6 65 277 16 5320
实施例5
下面的表5说明多种脂肪酶和蛋白酶显示出在用MES缓冲溶液缓冲的、pH为5.7至6.1的38%甲醇-水溶液中把丁基-KLG明显地转化成抗坏血酸、MeKLG和KLG。在该表中根据与其它酶进行比较,Prozyme 6(一种来自米曲霉的蛋白酶)、蛋白酶2A(来自米曲霉)与GC899(一种来自Genencor国际公司的商品洗涤剂蛋白酶)显示出更高水平的活性。
表5
针对丁基-KLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理19小时/38%甲醇-水/0.1M MES缓冲溶液)
酶 注释 测量的 pH KLG MeKLG ASA BuKLG(ppm)
PS30(假单胞菌属) 脂肪酶 5.9 83 213 32 10424
GC4(白地霉) 脂肪酶 5.7 0 166 0 7475
AK(假单胞菌属) 脂肪酶 6 27 205 26 9815
G(青霉属) 脂肪酶 5.8 0 0 0 9441
Newlase A(曲霉属) 蛋白酶 5.9 83 299 6 10368
蛋白酶M(曲霉属) 蛋白酶 6 498 1054 281 6990
Prozyme 6(曲霉属) 蛋白酶 6 1489 2259 0 4965
MAP10(毛霉菌属) 脂肪酶 6.1 21 148 145 8968
无酶 5.9 71 169 22 9463
无酶 5.9 75 191 6 9391
无酶 5.9 79 196 7 9539
D(根霉属) 脂肪酶 5.7 44 156 3 8562
Newlase II(根霉属) 蛋白酶 5.9 36 164 12 9586
AY30(假丝酵母属) 脂肪酶 6 0 192 33 8725
L-10(假丝酵母属) 脂肪酶 5.7 0 0 0 9608
CES(假单胞菌属) 脂肪酶 5.8 52 296 42 9491
N(根霉属) 脂肪酶 5.8 78 404 27 9834
2A(蛋白酶,曲霉属) 蛋白酶 6.1 937 1158 215 8951
猪胰脂肪酶 Fluka 6 58 529 130 11114
脂肪酶(Sigma-1754) 脂肪酶 5.8 57 98 47 9845
脂肪酶(Sigma-1754) 脂肪酶 5.8 46 88 82 9428
脂肪酶(Sigma-8525) 脂肪酶 5.9 178 222 60 9041
脂肪酶(Sigma-1754) 脂肪酶 5.7 76 145 89 14267
脂肪酶(Sigma-3126) 脂肪酶 5.9 90 415 130 12756
F-15(根霉属) 脂肪酶 5.8 55 165 14 10262
Lipozyme(Novo-液态) 脂肪酶 6 82 122 160 9100
GC899(蛋白酶) 蛋白酶 5.8 791 2735 312 11607
实施例6
下面的表6说明多种脂肪酶和蛋白酶显示出在用MES缓冲溶液缓冲的、pH为5.3至6的8.6%甲醇-水溶液中把丁基-KLG明显地转化成抗坏血酸、MeKLG和KLG。蛋白酶M(米曲霉)、Prozyme6(一种来自米曲霉的蛋白酶)、蛋白酶N(枯草蛋白酶)与蛋白酶2A(米曲霉)均显示出特别高水平的活性。
表6
针对丁基-KLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理19小时/8.6%甲醇-水/0.1M MES)
酶 注释 测量的 KLG MeKLG ASA BuKLG
pH (ppm)
PS30(假单胞菌属) 脂肪酶 5.9 341 163 157 8363
GC4(白地霉) 脂肪酶 5.9 424 0 8 4192
AK(假单胞菌属) 脂肪酶 6 295 432 125 8255
G(青霉属) 脂肪酶 5.8 253 323 0 7678
Newlase A(曲霉属) 蛋白酶 5.7 692 302 126 13408
R-10(青霉属) 脂肪酶 6 527 208 583 5570
蛋白酶M(曲霉属) 蛋白酶 6 3650 2262 328 1696
Prozyme 6(曲霉属) 蛋白酶 5.3 7207 694 0 0
MAP10(毛霉菌属) 脂肪酶 6 369 0 231 8334
无酶 5.8 378 239 132 8272
无酶 5.8 380 205 19 8582
无酶 5.8 382 295 43 8785
D(根霉属) 脂肪酶 5.9 595 326 76 11656
Newlase II(根霉属) 蛋白酶 5.9 323 212 28 8535
AY30(假丝酵母属) 脂肪酶 5.9 330 249 254 10195
L-10(假丝酵母属) 脂肪酶 5.8 302 69 55 11057
AP12(曲霉属) 脂肪酶 6 1448 738 129 7730
CES(假单胞菌属) 脂肪酶 5.9 197 252 0 8092
N(根霉属) 脂肪酶 6 582 348 61 9598
N(蛋白酶,芽胞杆菌属) 蛋白酶 5.7 1572 1289 26 1822
2A(蛋白酶,曲霉属) 蛋白酶 5.7 5891 616 160 764
猪胰脂肪酶 Fluka 5.8 890 791 158 5284
脂肪酶(Sigma-1754) 脂肪酶 5.9 283 116 148 6196
脂肪酶(Sigma-1754) 脂肪酶 6 348 189 415 8098
脂肪酶(Sigma-8525) 脂肪酶 6 326 93 15 4112
脂肪酶(Sigma-1754) 脂肪酶 6 300 150 154 8057
脂肪酶(Sigma-3126) 脂肪酶 5.8 787 488 99 8829
F-15(根霉属) 脂肪酶 5.9 218 1240 0 8682
Lipozyme(Novo-液态) 脂肪酶 5.8 380 95 101 7251
GC899(蛋白酶) 蛋白酶 5.6 3354 1765 201 6991
实施例7
下面的表7说明多种酰基转移酶、酯酶、脂肪酶和蛋白酶显示出在用MES缓冲溶液缓冲的、pH约为5至6的8.6%甲醇-水溶液中把丁基-KLG明显地转化成抗坏血酸、MeKLG和KLG。南极洲假丝酵母B脂肪酶、猪肝酯酶与芽胞杆菌属物种的蛋白酶均显示出特别高水平的活性。
表7
针对丁基-KLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理19小时/8.6%甲醇-水/0.1M MES)
酶
注释 KLG MeKLG ASA BuKLG
L-1(假单胞菌属) 脂肪酶 137 116 47 7601
L-2(南极洲假丝酵母B) 脂肪酶 5249 1921 0 768
L-3(Candida cylindiacea) 脂肪酶 183 64 107 6920
L-4(假单胞菌属) 脂肪酶 239 163 88 9957
L-5(南极洲假丝酵母A) 脂肪酶 278 344 0 6245
L-6(假单胞菌属) 脂肪酶 90 219 15 6613
L-7(猪胰) 脂肪酶 1007 575 106 5392
L-8(腐质霉属) 脂肪酶 209 70 150 7957
无酶 168 152 6 8753
无酶 152 144 3 8233
无酶 170 137 18 8157
ESL-001-01 重组生物催 1271 906 375 4635
ESL-001-02 化公司的酶 883 329 332 5949
ESL-001-03 290 123 447 7333
ESL-001-04 511 161 306 6207
ESL-001-05 364 124 299 6402
ESL-001-06 329 117 118 6934
ESL-001-07 0 122 430 15752
猪肝酯酶 2726 3731 423 10
葱头假单胞菌脂肪酶 241 109 224 9135
猪胰脂肪酶 333 291 314 7888
皱摺假丝酵母脂肪酶 296 86 451 8697
无酶 153 116 8 8234
α-胰凝乳蛋白酶 蛋白酶 330 1076 65 3855
青霉素酰基转移酶 187 1248 157 8110
无酶 100 73 3 5296
无酶 144 113 7 8106
黑色曲霉脂肪酶 479 72 84 8455
米赫毛霉脂肪酶 229 278 156 8620
ChiroCLEC-CR 脂肪酶 233 155 11 7569
枯草蛋白酶 4463 93 0 4428
南极洲假丝酵母A 脂肪酶 215 0 175 7573
解脂假丝酵母脂肪酶 198 62 92 8445
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 4920 642 13 72
ChiroCLEC-BL 蛋白酶 2860 1233 135 4051
ChiroCLEC PC 脂肪酶 127 62 2 5653
皱摺假丝酵母酯酶 178 120 225 9382
实施例8
下面的表8说明多种酰基转移酶、酯酶、脂肪酶和蛋白酶显示出在用MES缓冲溶液缓冲的、pH约为5.8至6.2的8.6%甲醇-水溶液中把丁基-KLG明显地转化成抗坏血酸、MeKLG和KLG。猪肝酯酶、南极洲假丝酵母B脂肪酶、芽胞杆菌属物种的蛋白酶和轻度交联的结晶状枯草蛋白酶(ChirClec-BL)均显示出特别高水平的活性。
表8
针对丁基-KLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理21小时/8.6%甲醇-水/0.2MES)
酶 注释 pH KLG MeKLG ASA BuKLG
(ppm)
猪肝酯酶 5.8 2373 4167 717 83
葱头假单胞菌脂肪酶 5.9 173 169 25 7384
猪胰脂肪酶 5.9 303 320 78 6860
皱摺假丝酵母脂肪酶 5.9 260 112 271 7351
α-胰凝乳蛋白酶 5.9 506 1239 146 4707
青霉素酰基转移酶 6 176 1172 98 5392
黑色曲霉脂肪酶 5.9 493 259 84 6364
米赫毛霉脂肪酶 5.9 243 283 54 7067
无酶 5.9 198 173 2 7137
无酶 5.9 216 153 0 7115
无酶 5.9 223 154 1 7319
南极洲假丝酵母‘A’脂肪酶 5.9 222 142 148 6683
解脂假丝酵母脂肪酶 6 721 123 25 6721
南极洲假丝酵母‘B’脂肪酶 5.9 2708 709 20 28
Humjcola lanuginosa脂肪酶 5.9 176 129 10 7215
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 5.8 5553 603 0 33
ChiroCLEC-CR(干燥的) 6.1 229 170 2 7191
ChiroCLEC-BL(干燥的) 5.94 293 1282 6 1376
ChiroCLEC-PC(葱头假单胞菌-干燥的) 6.1 240 268 2 7539
德列马根霉脂肪酶 6 178 0 0 7097
雪白根霉脂肪酶 6.2 178 181 61 7102
米根霉脂肪酶 6.1 159 119 26 7611
粘稠色杆菌脂肪酶 6 415 181 2 7275
白地霉脂肪酶 6.1 146 122 6 6140
爪哇毛霉脂肪酶 6.2 167 95 141 7422
米曲霉蛋白酶 6.1 2193 1462 39 2904
皱摺假丝酵母酯酶 5.8 129 132 17 7164
实施例9
下面的表9说明对前述实施例中高活性的酶检测其活性的统计再现性。在严格控制pH的条件下比较来自上述实施例的8种酶,它们均被鉴定为显示出特别高水平的活性。在重新进行分析的过程中,所有以前鉴定的具有高水平活性的酶均保持了高水平的活性。这些酶显示出在用0.2M MES缓冲溶液缓冲的、pH约为5.6至6的8.6%甲醇-水溶液中把丁基-KLG明显地转化成抗坏血酸、MeKLG和KLG。在该比较实施例中,南极洲假丝酵母B脂肪酶、猪肝酯酶与芽胞杆菌属物种的蛋白酶均显示出特别高水平的活性。猪肝酯酶显示出对酯基转移作用以及明显地转化为抗坏血酸的选择性。
表9
针对丁基-KLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理19小时/8.6%甲醇-水/0.2M MES缓冲溶液)
酶 注释 PH KLG MeKLG ASA BuKLG
(ppm)
N蛋白酶 蛋白酶 6 700 1166 297 5435
南极洲假丝酵母B 脂肪酶 5.8 4347 2207 283 0
猪肝酯酶 酯酶 5.9 1947 4258 650 0
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 蛋白酶 5.6 5137 745 55 0
ChiroClec-BL(干燥的) 枯草蛋白酶 5.8 3485 1235 215 3045
Prozyme-6 蛋白酶 5.8 3405 1518 73 1624
蛋白酶M 蛋白酶 6 554 668 271 6329
2A蛋白酶 蛋白酶 5.9 1585 1501 153 3954
无酶 6 135 149 14 8170
无酶 5.9 136 127 16 8418
无酶 6 142 133 13 8570
实施例10
下面的表10比较了除有机溶剂的浓度更高以外其它与实施例9中相同的酶。南极洲假丝酵母B和芽胞杆菌属物种的蛋白酶显示出特别高水平的活性,这是因为在用0.2M ES缓冲溶液缓冲的、pH约为5.6至6.2的38%甲醇-水溶液中它们显示出把丁基-KLG明显地转化成抗坏血酸、MeKLG和KLG。对猪肝酯酶而言,与实施例9所示的结果相比,尽管其活性仍很显著、但却观察到活性有所下降。
表10
针对丁基-KLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理19小时/38%甲醇-水/0.2M MES缓冲溶液)
酶 注释 pH KLG MeKLG ASA BuKLG
N蛋白酶 蛋白酶 5.9 176 1144 126 8153
南极洲假丝酵母B 脂肪酶 5.8 1701 5710 213 199
猪肝酯酶 酯酶 6 203 1654 173 7030
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 蛋白酶 5.6 3104 4032 182 213
ChiroClec-BL(干燥的) 蛋白酶 5.8 1261 1693 102 5572
Prozyme-6 蛋白酶 6 350 1268 47 7517
蛋白酶M 蛋白酶 6.2 141 408 199 9400
2A蛋白酶 蛋白酶 6.1 178 626 90 8666
无酶 6 69 2218 94 18
无酶 5.9 61 189 7 8790
无酶 6 63 203 9 9367
实施例11
下面的表11比较了除将pH缓冲到大约5.2以外其它与实施例9中相同的酶。南极洲假丝酵母B和猪肝酯酶显示出特别高水平的活性,这是因为在用0.2M吡啶/吡啶 盐酸化物缓冲溶液缓冲的、pH约为4.9至5.3的8.6%甲醇-水溶液中它们显示出把丁基-KLG明显地转化成MeKLG和KLG。对芽胞杆菌属物种的蛋白酶而言,与实施例9相比,尽管其活性仍很显著、但却观察到活性有所下降。
表11
针对BUKLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理约19小时/8.6%甲醇-水/0.2M吡啶/吡啶鎓盐酸化物)
酶 注释 pH KLG MeKLG ASA BuKLG
(ppm)
N蛋白酶 蛋白酶 5.2 87 237 47 8320
南极洲假丝酵母B 脂肪酶 4.9 3460 3097 53 0
猪肝酯酶 酯酶 5.2 1613 5787 37 390
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 蛋白酶 5.1 1613 2473 70 3757
ChiroClec-BL(干燥的) 蛋白酶 5.1 987 1360 67 5603
Prozyme-6 蛋白酶 5.2 700 840 7 6470
蛋白酶M 蛋白酶 5.3 187 357 0 8387
2A蛋白酶 蛋白酶 5.2 480 643 0 7523
无酶 5.3 97 0 153 9750
无酶 5.2 73 0 80 9547
实施例12
下面的表12比较了除有机溶剂的浓度更高以外其它与实施例11中相同的酶。南极洲假丝酵母B显示出特别高水平的活性,这是因为在用0.2M吡啶/吡啶 盐酸化物缓冲溶液缓冲的、pH约为4.7至5.1的38%甲醇-水溶液中它显示出把丁基-KLG明显地转化成MeKLG和KLG。与实施例9和11相比,所有酶均显示出活性有所下降。
表12
针对BUKLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理约19小时/H 4.9/38%甲醇-水)
酶 注释 PH KLG MeKLG ASA BuKLG
南极洲假丝酵母B 脂肪酶 4.7 1953 6470 0 5373
猪肝酯酶 酯酶 4.9 47 197 0 11750
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 蛋白酶 4.9 333 2113 30 10043
ChiroClec-BL(干燥的) 蛋白酶 4.9 97 447 7 10950
Prozyme-6 蛋白酶 4.9 0 113 3 12730
蛋白酶M 蛋白酶 5.1 73 203 0 15887
2A蛋白酶 蛋白酶 5 67 150 0 13920
无酶 4.9 87 13 27 11753
实施例13
下面的表13比较了除将pH缓冲到大约2.3以外其它与实施例9和11中相同的酶。对于在用0.2M磷酸盐缓冲溶液缓冲的、pH约为2.3-2.7的8.6%甲醇-水溶液中把丁基-KLG转化成抗坏血酸、MeKLG和KLG而言,与实施例9和11相比,所有测试的酶均显示出活性有所下降。
表13
针对BUKLG的水解/甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理20小时/8.6%甲醇-水/pH 2.3 0.2M磷酸盐缓冲溶液)
酶 注释 PH KLG MeKLG ASA BuKLG
N蛋白酶 蛋白酶 2.4 203 0 3 8980
南极洲假丝酵母B 脂肪酶 2.4 397 323 0 8463
猪肝酯酶 酯酶 2.4 417 93 0 9500
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 蛋白酶 2.3 347 0 0 10987
ChiroClec-BL(干燥的) 蛋白酶 2.3 387 0 0 10580
Prozyme-6 蛋白酶 2.4 440 0 0 12357
蛋白酶M 蛋白酶 2.6 137 333 0 12237
2A蛋白酶 蛋白酶 2.7 163 347 0 10600
无酶 2.3 487 0 0 10417
无酶 2.3 413 0 0 9897
无酶 2.3 407 0 0 9873
实施例14
下面的表14比较了在将pH缓冲到大约6时实施例9和11的前5种酶催化KLG酯化为甲基KLG(MeKLG)的能力或其催化KLG的环闭合以生成抗坏血酸的能力。与实施例9和11相比均观察到低水平的活性。
表14
针对KLG的甲醇分解进行酶的筛选
(38℃处理19小时/8.6%甲醇-水/0.2M MES缓冲溶液)
酶 注释 pH KLG MeKLG ASA BuKLG
N蛋白酶 蛋白酶 6 3791 0 0 0
南极洲假丝酵母B 脂肪酶 6 4258 0 0 0
猪肝酯酶 酯酶 6 4393 0 0 0
芽胞杆菌属物种的蛋白酶 蛋白酶 6 4099 0 0 0
ChiroClec-BL(干燥的) 枯草蛋白酶 6.1 3270 0 0 0
无酶 6 4340 0 0 0
无酶 6 3295 0 0 0
无酶 6 4029 0 0 0
实施例15
下面的表15说明了在pH为3-3.2的8.6%甲醇水溶液中使用南极洲假丝酵母B脂肪酶作为催化剂由KLG生产MeKLG。选取该缓冲溶液作为KLG及其钠盐的混合物(约为1/9)。前三项包括酶催化剂并且在相同的条件下一式三份。随后的三项也一式三份,并且除没有酶存在之外其它与前三项的条件相同。前三项显示出在有南极洲假丝酵母B脂肪酶的情况下KLG明显地酯化为MeKLG。随后的三项说明在没有南极洲假丝酵母B脂肪酶的情况下没有进行上述转化。
表15
针对KLG的酯化进行酶的筛选在38℃下处理
68小时/在水相中含8.6%的甲醇/缓冲溶液=KLG+NaKLG
酶 注释 pH KLG MeKLG ASA BuKLG
南极洲假丝酵母B 8.6%MeOH+KLG 3.1 9227 460 0 0
南极洲假丝酵母B 8.6%MeOH+KLG 3.1 9303 530 0 0
南极洲假丝酵母B 8.6%MeOH+KLG 3.2 9213 413 0 0
无酶 8.6%MeOH+KLG 2.9 9530 0 0 0
无酶 8.6%MeOH+KLG 2.9 9477 0 0 0
无酶 8.6%MeOH+KLG 2.9 9600 0 0 0
实施例16
本实施例说明在进行HPLC分析的条件下抗坏血酸的缓慢分解。通过在水中溶解KLG、MeKLG、抗坏血酸(ASA)和丁基-KLG至合适的浓度来制备HPLC样品的标准品。把这些标准品样品放入管形瓶中、装满并密封,在室温下储存,并定期进行分析。根据标准品的面积响应来标定HPLC,其中在标准品制备完毕之后应尽可能快地将其注入HPLC中。下面的表16显示出50、100和500ppm的KLG、MeKLG、抗坏血酸和丁基-KLG标准品在制备样品后的0时(标定时间)、在大约6.5小时以及在大约12小时时记录的响应。
表16
制备的量 发现的量
时间 KLG MeKLG ASA BuKLG
(分钟)
0 50ppm 标准品 51 51.4 53.4 50.6
400 39.9 47.7 28.3 42.7
715 52 43 0 38.2
0 100ppm标准品 102 103 107 101
400 94.3 106.8 96.6 100.1
715 81.8 90.2 57.2 94.2
0 500ppm标准品 510 514 534 506
400 479 496 487 512
715 493 495 473 499
对于其它的标准品、尤其是针对100ppm或者更低浓度的标准品而言,抗坏血酸的响应在整个时间范围内是非线性的。假定在HPLC分析之前对实施例2-16的处理包括在38℃下、在水浴摇床上处理大约16小时或者更长的时间,那么由此可见生成的抗坏血酸的实际水平要高于报道值。
具体地参考本发明优选的具体实例已经对本发明进行了详细的描述,但应当了解的是可以在本发明的精神和范围内实现变化和改进。
序列表
(1)一般信息:
(i)申请人:Hubbs,John C。
(ii)发明名称:用于制备抗坏血酸、2-酮-L-古洛糖酸及2-酮-L-古洛糖酸酯的酶促方法
(iii)序列数:3
(iv)通讯地址:
(A)收信人:Eastman化学公司
(B)街道:邮政信箱511
(C)城市:Kingsport
(D)州:田纳西
(E)国家:美国
(F)邮政编码:37662-5075
(v)计算机可读形式:
(A)存储媒体类型:*
(B)计算机:*
(C)操作系统:*
(D)软件:*
(vi)目前申请资料:
(A)申请号:*
(B)申请日:*
(C)分类:*
(vii)在先申请资料:
(A)申请号:US 60/017,879
(B)申请日:1996年5月17日
(viii)律师/代理人资料:
(A)姓名:Cheryl J.Tubach
(B)登记号:*
(C)参考/案件目录号:70432
(ix)电信资料:
(A)电话:423-229-6189
(B)传真:423-229-1239
(2)SEQ ID NO:1的资料:
(i)序列特征:
(A)长度:379个氨基酸
(B)类型:氨基酸
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:蛋白质
(xi)序列描述:SEQ ID NO:1:
Met Met Arg Lys Lys Ser Phe Trp Leu Gly Met Leu Thr Ala Phe Met
1 5 10 15
Leu Val Phe Thr Met Ala Phe Ser Asp Ser Ala Ser Ala Ala Gln Pro
20 25 30
Ala Lys Asn Val Glu Lys Asp Tyr Ile Val Gly Phe Lys Ser Gly Val
35 40 45
Lys Thr Ala Ser Val Lys Lys Asp Ile Ile Lys Glu Ser Gly Gly Lys
50 55 60
Val Asp Lys Gln Phe Arg Ile Ile Asn Ala Ala Lys Ala Lys Leu Asp
65 70 75 80
Lys Glu Ala Leu Lys Glu Val Lys Asn Asp Pro Asp Val Ala Tyr Val
85 90 95
Glu Glu Asp His Val Ala His Ala Leu Ala Gln Thr Val Pro Tyr Gly
100 105 110
Ile Pro Leu Ile Lys Ala Asp Lys Val Gln Ala Gln Gly Phe Lys Gly
115 120 125
Ala Asn Val Lys Val Ala Val Leu Asp Thr Gly Ile Gln Ala Ser His
130 135 140
Pro Asp Leu Asn Val Val Gly Gly Ala Ser Phe Val Ala Gly Glu Ala
145 150 155 160
Tyr Asn Thr Asp Gly Asn Gly His Gly Thr His Val Ala Gly Thr Val
165 170 175
Ala Ala Leu Asp Asn Thr Thr Gly Val Leu Gly Val Ala Pro Ser Val
180 185 190
Ser Leu Tyr Ala Val Lys Val Leu Asn Ser Ser Gly Ser Gly Thr Tyr
195 200 205
Ser Gly Ile Val Ser Gly Ile Glu Trp Ala Thr Thr Asn Gly Met Asp
210 215 220
Val Ile Asn Met Ser Leu Gly Gly Pro Ser Gly Ser Thr Ala Met Lys
225 230 235 240
Gln Ala Val Asp Asn Ala Tyr Ala Arg Gly Val Val Val Val Ala Ala
245 250 255
Ala Gly Asn Ser Gly Ser Ser Gly Asn Thr Asn Thr Ile Gly Tyr Pro
260 265 270
Ala Lys Tyr Asp Ser Val Ile Ala Val Gly Ala Val Asp Ser Asn Ser
275 280 285
Asn Arg Ala Ser Phe Ser Ser Val Gly Ala Glu Leu Glu Val Met Ala
290 295 300
Pro Gly Ala Gly Val Tyr Ser Thr Tyr Pro Thr Ser Thr Tyr Ala Thr
305 310 315 320
Leu Asn Gly Thr Ser Met Ala Ser Pro His Val Ala Gly Ala Ala Ala
325 330 335
Leu Ile Leu Ser Lys His Pro Asn Leu Ser Ala Ser Gln Val Arg Asn
340 345 350
Arg Leu Ser Ser Thr Ala Thr Tyr Leu Gly Ser Ser Phe Tyr Tyr Gly
355 360 365
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370 375
(2)SEQ ID NO:2的资料:
(i)序列特征:
(A)长度:584个氨基酸
(B)类型:氨基酸
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:蛋白质
(xi)序列描述:SEQ ID NO:2:
Met Trp Leu Leu Pro Leu Val Leu Thr Ser Leu Ala Ser Ser Ala Thr
1 5 10 15
Trp Ala Gly Gln Pro Ala Ser Pro Pro Val Val Asp Thr Ala Gln Gly
20 25 30
Arg Val Leu Gly Lys Tyr Val Ser Leu Glu Gly Leu Ala Phe Thr Gln
35 40 45
Pro Val Ala Val Phe Leu Gly Val Pro Phe Ala Lys Pro Pro Leu Gly
50 55 60
Ser Leu Arg Phe Ala Pro Pro Gln Pro Ala Glu Pro Trp Ser Phe Val
65 70 75 80
Lys Asn Thr Thr Ser Tyr Pro Pro Met Cys Cys Gln Asp Pro Val Val
85 90 95
Glu Gln Met Thr Ser Asp Leu Phe Thr Asn Phe Thr Gly Lys Glu Arg
100 105 110
Leu Thr Leu Glu Phe Ser Glu Asp Cys Leu Tyr Leu Asn Ile Tyr Thr
115 120 125
Rro Ala Asp Leu Thr Lys Arg Gly Arg Leu Pro Val Met Val Trp Ile
130 135 140
His Gly Gly Gly Leu Val Leu Gly Gly Ala Pro Met Tyr Asp Gly Val
145 150 155 160
Val Leu Ala Ala His Glu Asn Phe Thr Val Val Val Val Ala Ile Gln
165 170 175
Tyr Arg Leu Gly Ile Trp Gly Phe Phe Ser Thr Gly Asp Glu His Ser
180 185 190
Arg Gly Asn Trp Gly His Leu Asp Gln Val Ala Ala Leu His Trp Val
195 200 205
Gln Glu Asn Ile Ala Asn Phe Gly Gly Asp Pro Gly Ser Val Thr Ile
210 215 220
Phe Gly Glu Ser Phe Thr Ala Gly Gly Glu Ser Val Ser Val Leu Val
225 230 235 240
Leu Ser Pro Leu Ala Lys Asn Leu Phe His Arg Ala Ile Ser Glu Ser
245 250 255
Gly Val Ala Leu Thr Val Ala Leu Val Arg Lys Asp Met Lys Ala Ala
260 265 270
Ala Lys Gln Ile Ala Val Leu Ala Gly Cys Lys Thr Thr Thr Ser Ala
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290 295 300
Leu Asp Leu Thr Leu Lys Met Lys Phe Leu Thr Leu Asp Phe His Gly
305 310 315 320
Asp Gln Arg Glu Ser His Pro Phe Leu Pro Thr Val Val Asp Gly Val
325 330 335
Leu Leu Pro Lys Met Pro Glu Glu Ile Leu Ala Glu Lys Asp Phe Thr
340 345 350
Phe Asn Thr Val Pro Tyr Ile Val Gly Ile Asn Lys Gln Glu Phe Gly
355 360 365
Trp Leu Leu Pro Thr Met Met Gly Phe Pro Leu Ser Glu Gly Lys Leu
370 375 380
Asp Gln Lys Thr Ala Thr Ser Leu Leu Trp Lys Ser Tyr Pro Ile Ala
385 390 395 400
Asn Ile Pro Glu Glu Leu Thr Pro Val Ala Thr Phe Thr Asp Lys Tyr
405 410 415
Leu Gly Gly Thr Asp Asp Pro Val Lys Lys Lys Asp Leu Phe Leu Asp
420 425 430
Leu Met Gly Asp Val Val Phe Gly Val Pro Ser Val Thr Val Ala Arg
435 440 445
Gln His Arg Asp Ala Gly Ala Pro Thr Tyr Met Tyr Glu Phe Gln Tyr
450 455 460
Arg Pro Ser Phe Ser Ser Asp Lys Phe Thr Lys Pro Lys Thr Val Ile
465 470 475 480
Gly Asp His Gly Asp Glu Ile Phe Ser Val Phe Gly Phe Pro Leu Leu
485 490 495
Lys Gly Asp Ala Pro Glu Glu Glu Val Ser Leu Ser Lys Thr Val Met
500 505 510
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580
(2)SEQ ID NO:3的资料:
(i)序列特征:
(A)长度:342个氨基酸
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(ii)分子类型:蛋白质
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Met Lys Leu Leu Ser Leu Thr Gly Val Ala Gly Val Leu Ala Thr Cys
1 5 10 15
Val Ala Ala Thr Pro Leu Val Lys Ayg Leu Pro Ser Gly Ser AsP Pro
20 25 30
Ala Phe Ser Gln Pro Lys Ser Val Leu Asp Ala Gly Leu Thr Cys Gln
35 40 45
Gly Ala Ser Pro Ser Ser Val Ser Lys Pro Ile Leu Leu Val Pro Gly
50 55 60
Thr Gly Thr Thr Gly Pro Gln Ser Phe Asp Ser Asn Trp Ile Pro Leu
65 70 75 80
Ser Thr Gln Leu Gly Tyr Thr Pro Cys Trp Ile Ser Pro Pro Pro Phe
85 90 95
Met Leu Asn Asp Thr Gln Val Asn Thr Glu Tyr Met Val Asn Ala Ile
100 105 110
Thr Ala Leu Tyr Ala Gly Ser Gly Asn Asn Lys Leu Pro Val Leu Thr
115 120 125
Trp Ser Gln Gly Gly Leu Val Ala Gln Trp Gly Leu Thr Phe Pne Pro
130 135 140
Ser Ile Arg Ser Lys Val Asp Arg Leu Met Ala Phe Ala Pro Asp Tyr
145 150 155 160
Lys Gly Thr Val Leu Ala Gly Pro Leu Asp Ala Leu Ala Val Ser Ala
165 170 175
Pro Ser Val Trp Gln Gln Thr Thr Gly Ser Ala Leu Thr Thr Ala Leu
180 185 190
Arg Asn Ala Gly Gly Leu Thr Gln Ile Val Pro Thr Thr Asn Leu Tyr
195 200 205
Ser Ala Thr Asp Glu Ile Val Gln Pro Gln Val Ser Asn Ser Pro Leu
210 215 220
Asp Ser Ser Tyr Leu Phe Asn Gly Lys Asn Val Gln Ala Gln Ala Val
225 230 235 240
Cys Gly Pro Leu Phe Val Ile Asp His Ala Gly Ser Leu Thr Ser Gln
245 250 255
Phe Ser Tyr Val Val Gly Arg Ser Ala Leu Arg Ser Thr Thr Gly Gln
260 265 270
Ala Arg Ser Ala Asp Tyr Gly Ile Thr Asp Cys Asn Pro Leu Pro Ala
275 280 285
Asn Asp Leu Thr Pro Glu Gln Lys Val Ala Ala Ala Ala Leu Leu Ala
290 295 300
Pro Ala Ala Ala Ala Ile Val Ala Gly Pro Lys Gln Asn Cys Glu Pro
305 310 315 320
Asp Leu Met Pro Tyr Ala Arg Pro Phe Ala Val Gly Lys Arg Thr Cys
325 330 335
Ser Gly Ile Val Thr Pro
340
Claims (4)
1.一种用于制备2-酮-L-古洛糖酸酯的方法,该方法包括以下步骤:
(a)制备2-酮-L-古洛糖酸的醇溶液并且该醇对应于将要生成的2-酮-L-古洛糖酸酯的烷基部分;以及
(b)然后在溶液中将所说的2-酮-L-古洛糖酸与水解酶催化剂接触以生成所说的2-酮-L-古洛糖酸酯。
2.权利要求1的方法,其中所说的水解酶催化剂选自由蛋白酶、酯酶、脂肪酶和酰胺酶组成的组中。
3.权利要求1的方法,其中在制备所说的醇溶液中使用助溶剂。
4.权利要求3的方法,其中所说的助溶剂选自由水、C1至C6的醇及其混合物组成的组中。
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