CN113388699A - 数字pcr技术检测新型冠状病毒的试剂盒及方法 - Google Patents
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Abstract
本能发明提供数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒及方法,包括:扩增SARS‑COV‑2的ORF1ab基因内RdRp区段的基因片段,通过扩增产物情况检测是否存在SARS‑COV‑2;其中,检测片段的核苷酸序列如SEQ.NO.1所示。
Description
技术领域
本发明属于病毒分子检测领域,具体涉及数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒及方法。
背景技术
2019新型冠状病毒(SARS-CoV-2)是2019年在人体中发现的冠状病毒新毒株。该病毒症状一般为发热、乏力、干咳、逐渐出现呼吸困难,严重者表现为急性呼吸窘迫综合征,脓毒症休克,难以纠正的代谢性酸中毒和凝血功能障碍。从分子角度来讲,新型冠状病毒(SARS-COV-2)是一种具有包膜的、不分节段的正链单股RNA病毒,基因组长度约30kb左右,与SARS-CoV同属于乙型冠状病毒属谱系β(BetacoronavirusLineageβ,Sarbecovirus)。该病毒有12个蛋白编码区/开放读码框(ORF),其中ORF1ab为RNA依赖的RNA聚合酶基因(RdRp)所在区域,编码RNA聚合酶,负责病毒核酸复制。由于SARS-COV-2的RdRp区段在进化树上与SARS-CoV的RdRp基因显著不同,故被列为一种全新的β属冠状病毒。因而,位于ORF1ab基因内RdRp区段成为鉴定SARS-COV-2核酸的一个重要标志物。
由于该病毒传染性极强,且会出现无症状感染的现象,因此,通过快速检测病毒是控制病毒传染的重要手段。目前针对ORF1ab的测试引起研究者注意,其中,申请号为202010160162.7中国专利公开了包含ORF1ab基因特异引物和Taqman探针。依赖于Taqman探针的检测具有高特异性和敏感性,但其定量依赖于标准物质,要求样本中目的基因的扩增效率与标准物质一致,定量准确性易受样本基质及干扰物质的影响。同时其检测下限仍很高,还不能检测出微量的病毒。
发明内容
基于上述技术问题,本发明提供数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒及方法。
具体技术方案如下:
数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒,其不同之处在于,包括扩增SARS-COV-2的ORF1ab基因内RdRp区段的基因片段的引物对、ORF1ab基因探针引物、内参基因扩增引物对及内参基因探针引物,所述基因片段的核苷酸序列如SEQ.NO.1所示。
进一步,所述扩增基因片段的引物对的核苷酸序列如SEQ.NO.2~SEQ.NO.3所示。
进一步,所述内参基因扩增引物对扩增的为RPPH1基因区域内的基因片段,其核苷酸序列如SEQ.NO.4所示。
进一步,所述内参基因扩增引物对的核苷酸序列如SEQ.NO.5~SEQ.NO.6所示。
进一步,所述ORF1ab基因探针引物的核苷酸序列如SEQ.NO.7所示,所述内参基因探针引物如SEQ.NO.8。
进一步,所述ORF1ab基因探针引物与内参基因探针引物的5’端连接有荧光基团,3’连接有荧光淬灭基团。
进一步,所述数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒还包括阳性对照品与阴性对照品。
一种数字PCR技术检测新型冠状病毒的反应体系,其不同之处在于,所述反应体系包括下列组分:
上述扩增SARS-COV-2的ORF1ab基因内RdRp区段的基因片段的引物对:上游引物与下游引物的终浓度各为200nM~800nM;
ORF1ab基因探针引物的终浓度为100nM~400nM;、
内参基因扩增引物对:上游引物与下游引物的终浓度各为200nM~800nM;
内参基因探针引物的终浓度为100~400nM;
反应缓冲液;
酶混合液;
及
RNA模板。
进一步,所述反应体系包括下列组分:
扩增SARS-COV-2的ORF1ab基因内RdRp区段的基因片段的引物对:上游引物与下游引物的终浓度各为500nM~600nM;
ORF1ab基因探针引物的终浓度为250nM~300nM;
内参基因扩增引物对:上游引物与下游引物的终浓度各为500nM~600nM;
及
内参基因探针引物的终浓度为250nM~300nM。
一种数字PCR检测新型冠状病毒的方法,其不同之处在于,往上述反应体系中加入微滴生成用油生成微滴后进行PCR反应,分析扩增反应产物的数据,得到PCR扩增结果,判断是否存在SARS-COV-2病毒。
与现有技术相比,本发明的有益效果在于:
(1)本发明采用数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒对RdRp区段的基因片段进行测试,该试剂盒灵敏度高,可以对样本进行绝对定量,在20μl体系下可以检测3个拷贝的目的基因,特异型强,不与其他病毒产生交叉反应。
(2)试剂盒选取特定目的基因引物及特定内参基因引物,在55℃~58℃条件下,扩增效果更佳,荧光信号更强。
(3)试剂盒选取目的基因扩增引物、内参基因扩增引物的上下游引物在500nM~600nM,目标基因探针引物及内参基因探针引物的浓度在250nM~300nM时,其阳性信号与阴性信号分离程度更大,荧光信号更强,便于后续操作与观察。
附图说明
图1为实施例3~实施例8ORF1ab基因检测结果;
图2为实施例3~实施例8内参基因检测结果;
图3为实施例3、实施例9~实施例23ORF1ab基因检测结果;
图4为实施例3、实施例24~实施例35内参基因检测结果;
图5为实施例36ORF1ab基因检测结果;
图6为实施例37ORF1ab基因的检测结果。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步的详细说明,以使本领域的技术人员更加清楚地理解本发明。
以下各实施例,仅用于说明本发明,但不止用来限制本发明的范围。基于本发明中的具体实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动的情况下,所获得的其他所有实施例,都属于本发明的保护范围。
在本发明实施例中,若无特殊说明,所有原料组分均为本领域技术人员熟知的市售产品;在本发明实施例中,若未具体指明,所用的技术手段均为本领域技术人员所熟知的常规手段。
实施例1
本实施例提供一种扩增SARS-COV-2的ORF1ab基因内RdRp区段的基因片段的引物对。
引物对的上游引物序列(RdRP-F)如SEQ.NO.2所示,下游引物(RdRP-R)序列如SEQ.NO.3所示,扩增的基因片段如SEQ.NO.1所示。
实施例2
本实施例提供一种数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒,具体包括:
实施例1的引物对;
ORF1ab基因探针引物(RdRP-P),序列如SEQ.NO.7所示,该探针引物的5’端连接有FAM荧光报告基团,3’端连接有BHQ1荧光淬灭基团。
内参基因上游引物(RNAP-F),序列如SEQ.NO.5所示;
内参基因下游引物(RNAP-R),序列如SEQ.NO.6所示;
内参基因探针引物(RNAP-P),序列如SEQ.NO.8所示,该探针引物的5’端连接有HEX荧光报告基团,3’端连接BHQ1荧光淬灭基团。
其中,内参基因引物对扩增扩增的为RPPH1基因区域内的基因片段,其核苷酸序列如SEQ.NO.4所示;
阴性对照品:含内标基因片段(RPPH1)的体外转录RNA,浓度为10copies/μl。
阳性对照品:含新型冠状病毒(2019-nCoV)ORF1ab基因及内标基因片段(RPPH1)的体外转录RNA,浓度均为10copies/μl。
反应缓冲液:主要包含1.5mM dNTPs、150mM三羟甲基氨基甲烷(Tris)、5mg/mlBSA、5mM DTT和15mM镁离子。
酶缓冲液:主要包含0.5U/μl逆转录酶、0.25U/μl Hot Taq DNA聚合酶、50%甘油和5mg/ml BSA。
实施例3
本发明提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,包括如下步骤:
(1)病毒核酸提取
使用Qiagen公司生产的QIAamp病毒RNA纯化mini试剂盒对人鼻咽拭子样本进行核酸提取。取200μl样本处理液,按照提取试剂盒说明书进行病毒核酸提取,最终溶解于50μl无RNA酶水中。
(2)配制数字PCR反应体系
反应缓冲液4μl,酶混合液2μl,10μM的RdRP-F、RdRP-R、RNAP-F和RNAP-R引物各1.2μl,10μM的RdRP-P和RNAP-P各0.6μl,待测样品RNA模板为8μl,整个反应体系为20μl。
(3)PCR反应
在微滴PCR的生成芯片上,加入(2)中的20μL微滴PCR反应体系,加入40μL的微滴生成用油,生成微滴,然后将其转移至96孔板中,封膜后采用PCR仪中进行扩增;
反应程序为:45℃15min;95℃10min;随后进行35个循环,每个循环包括变性温度:95℃15s,退火温度:55℃20s,延伸温度:72℃20s;每步都设置2℃/sec的升降温速度。
(4)结果分析
将完成PCR扩增的PCR板放入微滴分析仪中,检测微滴,分析数据,显示检测结果。检测结果的有效性判定方法为:阳性对照:目的基因80±10个拷贝,内参基因80±10个拷贝;阴性对照:目的基因<3个拷贝,内参基因80±10个拷贝;
待测样本结果判定标准:阳性:标本检测结果≥3个拷贝;阴性:标本检测结果<3拷贝,内参基因≥3个拷贝。
实施例3采用三份不同的临床样本进行了3次实验,样品分别标记为1号样本、2号样本及3号样本。
实施例4
本发明提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,唯一不同的是,退火温度为56℃。
实施例5
本发明提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,唯一不同的是,退火温度为57℃。
实施例6
本发明提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,唯一不同的是,退火温度为58℃。
实施例7
本发明提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,唯一不同的是,退火温度为59℃。
实施例8
本发明提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,唯一不同的是,退火温度为60℃。
其中,实施例3~实施例8的1号样本的目的基因扩增情况如图1所示,其中,A01:退火温度为55℃的扩增情况;B01:退火温度为56℃的扩增情况;C01:退火温度为57℃的扩增情况;D01:退火温度为58℃的扩增情况;E01:退火温度为59℃的扩增情况;F01:退火温度为60℃的扩增情况。
实施例3~实施例8的1号样本的内标基因扩增情况如图2所示,其中,A01:退火温度为55℃的扩增情况;B01:退火温度为56℃的扩增情况;C01:退火温度为57℃的扩增情况;D01:退火温度为58℃的扩增情况;E01:退火温度为59℃的扩增情况;F01:退火温度为60℃的扩增情况。
从图1及图2可以看出以上退火温度条件下,均扩增情况良好,其中,在55℃~58℃范围内进一步提高,而55℃最优。
实施例9
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为300nM,RdRP-P终浓度为150nM。
实施例10
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为300nM,RdRP-P终浓度为200nM。
实施例11
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为300nM,RdRP-P终浓度为250nM。
实施例12
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为300nM,RdRP-P终浓度为300nM。
实施例13
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为400nM,RdRP-P终浓度为150nM。
实施例14
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为400nM,RdRP-P终浓度为200nM。
实施例15
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为400nM,RdRP-P终浓度为250nM。
实施例16
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为400nM,RdRP-P终浓度为300nM。
实施例17
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为500nM,RdRP-P终浓度为150nM。
实施例18
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为500nM,RdRP-P终浓度为200nM。
实施例19
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为500nM,RdRP-P终浓度为250nM。
实施例20
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为500nM,RdRP-P终浓度为300nM。
实施例21
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为600nM,RdRP-P终浓度为150nM。
实施例22
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为600nM,RdRP-P终浓度为200nM。
实施例23
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RdRP-F与RdRP-R终浓度为600nM,RdRP-P终浓度为250nM。
实施例3、实施例9~实施例2的2号样本的RdRP基因测试情况如图3所示,其中A02:RdRP-F与RdRP-R终浓度为300nM,RdRP-P终浓度为150nM探针;B02::RdRP-F与RdRP-R终浓度为300nM,RdRP-P终浓度为200nM探针;C02:RdRP-F与RdRP-R终浓度为300nM,RdRP-P终浓度为250nM探针;D02:RdRP-F与RdRP-R终浓度为300nM,RdRP-P终浓度为300nM探针;E02:RdRP-F与RdRP-R终浓度为400nM,RdRP-P终浓度为150nM探针;F02:RdRP-F与RdRP-R终浓度为400nM,RdRP-P终浓度为200nM探针;G02:RdRP-F与RdRP-R终浓度为400nM,RdRP-P终浓度为250nM探针;H02:RdRP-F与RdRP-R终浓度为400nM,RdRP-P终浓度为300nM探针;A03:RdRP-F与RdRP-R终浓度为500nM,RdRP-P终浓度为150nM探针;B03:RdRP-F与RdRP-R终浓度为500nM,RdRP-P终浓度为200nM探针;C03:RdRP-F与RdRP-R终浓度为500nM,RdRP-P终浓度为250nM探针;D03:RdRP-F与RdRP-R终浓度为500nM,RdRP-P终浓度为300nM探针;E03:RdRP-F与RdRP-R终浓度为600nM,RdRP-P终浓度为150nM探针;F03:RdRP-F与RdRP-R终浓度为600nM,RdRP-P终浓度为200nM探针;G03:RdRP-F与RdRP-R终浓度为600nM,RdRP-P终浓度为250nM探针;H03:RdRP-F与RdRP-R终浓度为600nM,RdRP-P终浓度为300nM探针。
从图3可以看出,上述终浓度的条件下,阴性微滴与阳性微滴的分离程度均良好;当RdRP-F与RdRP-R终浓度为500nM~600nM,RdRP-P终浓度为250nM~300nM时,阳性信号与阴性信号分离程度进一步提高,当RdRP-F与RdRP-R终浓度为600nM,RdRP-P终浓度为300nM时,阳性信号与阴性信号分离效果最佳。
实施例24
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为300nM,RNAP-P终浓度为150nM。
实施例25
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为300nM,RNAP-P终浓度为200nM。
实施例26
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为300nM,RNAP-P终浓度为250nM。
实施例27
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为400nM,RNAP-P终浓度为150nM。
实施例28
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为400nM,RNAP-P终浓度为200nM。
实施例29
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为400nM,RNAP-P终浓度为250nM。
实施例30
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为500nM,RNAP-P终浓度为150nM。
实施例31
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为500nM,RNAP-P终浓度为200nM。
实施例32
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为500nM,RNAP-P终浓度为250nM。
实施例33
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为600nM,RNAP-P终浓度为150nM。
实施例34
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为600nM,RNAP-P终浓度为200nM。
实施例35
本实施例提供一种利用实施例2的试剂盒的测试方法,其步骤与实施例3相同,不同的是RNAP-F与RNAP-R终浓度为600nM,RNAP-P终浓度为250nM。
实施例3、实施例24~实施例35的3号样本的内参基因测试情况如图4所示,其中A04:RNAP-F与RNAP-R终浓度为300nM,RNAP-P终浓度为150nM探针;B04::RNAP-F与RNAP-R终浓度为300nM,RNAP-P终浓度为200nM探针;C04:RNAP-F与RNAP-R终浓度为300nM,RNAP-P终浓度为250nM探针;D04:RNAP-F与RNAP-R终浓度为300nM,RNAP-P终浓度为300nM探针;E04:RNAP-F与RNAP-R终浓度为400nM,RNAP-P终浓度为150nM探针;F04:RNAP-F与RNAP-R终浓度为400nM,RNAP-P终浓度为200nM探针;G04:RNAP-F与RNAP-R终浓度为400nM,RNAP-P终浓度为250nM探针;H04:RNAP-F与RNAP-R终浓度为400nM,RNAP-P终浓度为300nM探针;A06:RNAP-F与RNAP-R终浓度为500nM,RNAP-P终浓度为150nM探针;B06:RNAP-F与RNAP-R终浓度为500nM,RNAP-P终浓度为200nM探针;C06:RNAP-F与RNAP-R终浓度为500nM,RNAP-P终浓度为250nM探针;D06:RNAP-F与RNAP-R终浓度为500nM,RNAP-P终浓度为300nM探针;E06:RNAP-F与RNAP-R终浓度为600nM,RNAP-P终浓度为150nM探针;F06:RNAP-F与RNAP-R终浓度为600nM,RNAP-P终浓度为200nM探针;G06:RNAP-F与RNAP-R终浓度为600nM,RNAP-P终浓度为250nM探针;H06:RNAP-F与RNAP-R终浓度为600nM,RNAP-P终浓度为300nM探针。
从图4可以看出,上述终浓度的条件下,阴性微滴与阳性微滴的分离程度均良好;当RNAP-F与RNAP-R终浓度为500nM~600nM,RNAP-P终浓度为250nM~300nM时,阳性信号与阴性信号分离程度进一步提高,当RNAP-F与RNAP-R终浓度为600nM,RNAP-P终浓度为300nM时,阳性信号与阴性信号的分离效果最佳。
需要说明的是,实施例3~实施例35中需要浓度调整时通过调整相应物质的起始浓度实现。
实施例36
本实施例提供实施例2中试剂盒引物探针特异性实验
利用实施例3中所述的方法,对与新冠状病毒核酸序列具有同源性、易引起相同或相似的临床症状、采样部位正常寄生或易并发的其他微生物如新型甲型H1N1流感病毒(2009)、乙型流感Yamagata、副流感病毒PIV-1、冠状病毒OC43、冠状病毒229E核酸、SARS冠状病毒、MERS冠状病毒核酸提取物进行检测,同时设置阴性对照和阳性对照,结果如图5及表1所示,其中,A06:新型甲型H1N1流感病毒测试结果;B06:乙型流感Yamagata测试结果;C06:副流感病毒PIV-1测试结果;D06:冠状病毒OC43测试结果;E06:冠状病毒229E测试结果;F06:SARS冠状病毒测试结果;G06:MERS冠状病毒测试结果;H06:阳性对照;A07:阴性对照。
表1.实施例2试剂盒引物探针特异性
样本 | ORF1ab基因 | 内参基因 |
新型甲型H1N1流感病毒核酸提取物 | 0 | 0 |
乙型流感Yamagata核酸提取物 | 0 | 0 |
副流感病毒PIV-1核酸提取物 | 0 | 0 |
冠状病毒OC43核酸提取物 | 0 | 0 |
冠状病毒229E核酸核酸提取物 | 0 | 0 |
SARS冠状病毒核酸提取物 | 0 | 0 |
MERS冠状病毒核酸提取物 | 0 | 0 |
阴性对照 | 0 | 78.37 |
阳性对照 | 89.918 | 81.432 |
结果如表1及图5所示,仅阳性对照组可检测到阳性微滴,其余组均无扩增信号,说明新型冠状病毒(SARS-COV-2)数字PCR引物探针具备很强的特异性。
实施例37
本实施例提供实施例2试剂盒中引物探针灵敏度实验
本实验采用新型冠状病毒(SARS-COV-2)阳性样品进行梯度稀释。通过实施例3给出的检测方法进行检测。
结果显示本体系在3个拷贝的模板量下,可以检测出区别于无模板对照的拷贝数,即本数字PCR的检测方法在扩增体系为20ul时,结果如图6所示,其中,A08~B09:临界浓度阳性样本10次重复检测;C09~D10:无模板对照10次重复检测;E10:阳性对照;F10:阴性对照。结果显示,最低可检测到为3个拷贝。
在此有必要指出的是,以上实施例仅限于对本发明的技术方案做进一步的阐述和说明,并不是对本发明的技术方案的进一步的限制,本发明的方法仅为较佳的实施方案,并非用于限定本发明的保护范围。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
序列表
<110> 武汉康昕瑞基因健康科技有限公司
<120> 数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒及方法
<160> 8
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 84
<212> DNA
<213> 新冠病毒(SARS-COV-2)
<400> 1
tgtgatagag ccatgcctaa catgcttaga attatggcct cacttgttct tgctcgcaaa 60
catacaacgt gttgtagctt gtca 84
<210> 2
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
tgtgatagag ccatgccta 19
<210> 3
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
tgacaagcta caacacgtt 19
<210> 4
<211> 60
<212> DNA
<213> RPPH1基因(RPPH1)
<400> 4
gacatgggag tggagtgaca ggacgcactc agctcgtggc cccactgatg agcttccctc 60
<210> 5
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
gacatgggag tggagtga 18
<210> 6
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
gagggaagct catcagtg 18
<210> 7
<211> 28
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
tggcctcact tgttcttgct cgcaaaca 28
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
acgcactcag ctcgtggccc 20
Claims (10)
1.数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒,其特征在于,包括扩增SARS-COV-2的ORF1ab基因内RdRp区段的基因片段的引物对、ORF1ab基因探针引物、内参基因扩增引物对及内参基因探针引物,所述基因片段的核苷酸序列如SEQ.NO.1所示。
2.根据权利要求1所述的数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒,其特征在于,所述扩增基因片段的引物对的核苷酸序列如SEQ.NO.2~SEQ.NO.3所示。
3.根据权利要求1所述的数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒,其特征在于,所述内参基因扩增引物对扩增的为RPPH1基因区域内的基因片段,其核苷酸序列如SEQ.NO.4所示。
4.根据权利要求2或3所述的数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒,其特征在于,所述内参基因扩增引物对的核苷酸序列如SEQ.NO.5~SEQ.NO.6所示。
5.根据权利要求3所述的数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒,其特征在于,所述ORF1ab基因探针引物的核苷酸序列如SEQ.NO.7所示,所述内参基因探针引物如SEQ.NO.8。
6.根据权利要求1或5所述的数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒,其特征在于,所述ORF1ab基因探针引物与内参基因探针引物的5’端连接有荧光基团,3’连接有荧光淬灭基团。
7.根据权利要求3所述的数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒,其特征在于,所述数字PCR技术检测新型冠状病毒的试剂盒还包括阳性对照品与阴性对照品。
8.一种数字PCR技术检测新型冠状病毒的反应体系,其特征在于,所述反应体系包括下列组分:
权利要求1所述的扩增SARS-COV-2的ORF1ab基因内RdRp区段的基因片段的引物对:上游引物与下游引物的终浓度各为200nM~800nM;
ORF1ab基因探针引物的终浓度为100nM~400nM;、
内参基因扩增引物对:上游引物与下游引物的终浓度各为200nM~800nM;
内参基因探针引物的终浓度为100~400nM;
反应缓冲液;
酶混合液;
及
RNA模板。
9.根据权利要求8所述的数字PCR技术检测新型冠状病毒的反应体系,其特征在于,所述反应体系包括下列组分:
扩增SARS-COV-2的ORF1ab基因内RdRp区段的基因片段的引物对:上游引物与下游引物的终浓度各为500nM~600nM;
ORF1ab基因探针引物的终浓度为250nM~300nM;
内参基因扩增引物对:上游引物与下游引物的终浓度各为500nM~600nM;
及
内参基因探针引物的终浓度为250nM~300nM。
10.一种数字PCR检测新型冠状病毒的方法,其特征在于,往权利要求8所述的反应体系中加入微滴生成用油生成微滴后进行PCR反应,PCR反应的退火温度为55℃~60℃,分析扩增反应产物的数据,得到PCR扩增结果,判断是否存在SARS-COV-2病毒。
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PB01 | Publication | ||
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20210914 |
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RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |