CN110596261A - 利用液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂mrjp1蛋白含量的方法 - Google Patents

利用液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂mrjp1蛋白含量的方法 Download PDF

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Abstract

本发明提供一种利用液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白(王浆主蛋白1)含量的方法，所述方法包括：特征肽段的选择，制作标准曲线，样品前处理，液相色谱分离以及串联质谱检测定量等步骤。本发明提供的蜂蜜中中蜂MRJP1含量的检测方法，具有较高的准确度、精确度和灵敏度，并且稳定性强，适合于蜂蜜中中蜂MRJP1的准确定量。该方法可用于中蜂蜜真实性评价，辅助鉴别蜂蜜是否掺假,对于维护蜂蜜消费行业健康发展和蜂蜜消费者的权益意义重大。

Description

利用液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的 方法
技术领域
本发明涉及食品检测领域，具体地说，涉及一种利用液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的方法。
背景技术
中蜂蜜，又称为土蜂蜜，是有我国本土蜜蜂—中华蜜蜂采集蜜源植物而酿制的蜂蜜。当前，我国中蜂存量约300万群，主要分布在我国南方省市的山区。意大利蜜蜂主要采用追花逐蜜的转场养殖方式进行单一花种蜜的生产；而中蜂主要是定地饲养生产百花蜂蜜。中蜂蜜的产量远低于意蜂蜜，从而导致中蜂蜜的市场价格较高，约为意蜂蜜的5-10倍。不良企业为了追逐高额利润，往往会采用意蜂蜜冒充中蜂蜜，或者在中蜂蜜中勾兑意蜂蜜进行掺假，甚至掺入廉价的果葡糖浆。目前，我国尚未颁布有关中蜂蜜的标准，而相关中蜂蜜鉴别方法的缺失为中蜂蜜掺假在市场上泛滥提供机会。由于中蜂蜜掺假的市场泛滥，恶意压低中蜂蜜价格，不仅严重打击了蜂农生产的积极性，而且导致消费者对中蜂蜜消费信心。近年来，中蜂养殖已经成为贫困山区脱贫致富的重要产业之一，而中蜂蜜的高价格恰是其中蜂产业脱贫的关键。因此，亟需开发出科学有效的中蜂蜜真假识别技术。
王浆主蛋白1(major royal jelly protein 1，MRJP1)，是蜂蜜中主要的蛋白质之一。意蜂和中蜂MRJP1的氨基酸序列存在一定差异，基于此差异，可开发相应的中蜂蜜真实性评价方法。中蜂MRJP1在不同蜜种、不同蜜源中的含量稍有不同，但其含量相对恒定，若是掺入了糖浆等外源性物质，则其含量会大幅下降，因此中蜂MRJP1含量可以用作辅助鉴别蜂蜜的掺假现象。
由于液相色谱-质谱技术相较于其他技术有高选择性和高灵敏度，更有助于复杂生物基质中蛋白质的准确表征、鉴定和定量。可以通过胰蛋白酶酶切得到的靶蛋白质的序列来满足肽水平的检测的定性要求，进而进行定量。该方法的关键点在于对靶蛋白和合适的内标肽选择一种或多种特异性特征肽。利用质谱和软件确定中蜂MRJP1特征肽段，并建立其定量方法，此方法对辅助蜂蜜掺假的鉴别具有重要意义。
发明内容
本发明的目的是提供一种利用液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的方法。
本发明的另一目的是将该方法用于生产和商业中对中蜂蜜的质量控制和真实性鉴定。
为了实现本发明目的，第一方面，本发明提供一种利用液相色谱串联质谱测定中蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的方法，包括以下步骤：
A、提取标准中蜂蜂蜜样品中的蛋白质，进行SDS-PAGE电泳，将MRJP1蛋白对应的条带切胶回收，然后酶解MRJP1蛋白，酶解产物除盐后，用0.1％v/v的甲酸水溶液复溶，然后进行液相色谱串联质谱检测；
B、根据液相色谱串联质谱检测结果，筛选出MRJP1蛋白的特征肽段并测序，然后人工合成所述特征肽段及其稳定同位素内标肽段；
C、配制不同浓度的所述特征肽段的标准品溶液；
D、向标准品溶液中加入稳定同位素内标肽段混匀，然后进行液相色谱串联质谱检测；
E、根据标准品溶液的浓度以及特征肽段/稳定同位素内标肽段的峰面积比绘制标准曲线；
F、对待测蜂蜜样品进行前处理：先将蜂蜜样品溶解于去离子水或PBS缓冲溶液中，离心收集上清，即为蛋白溶液；将蛋白溶液用胰蛋白酶水解，酶解产物除盐后作为待测样本；
G、用待测样本替代步骤D中的标准品溶液，采用相同方法进行液相色谱串联质谱检测；
H、根据待测样本的检测结果，对照标准曲线，获得待测样本中特征肽段的浓度，从而实现对蜂蜜样品中中蜂MRJP1蛋白的定量检测。
本发明成功筛选出中蜂MRJP1的特异性肽段IMDANVNDLILNTR(SEQ ID NO:1)，其特异性通过Uniprot数据库进行了验证；并选择稳定的内标(IS)肽段，以便在蜂蜜中准确、灵敏地定量MRJP1蛋白。
优选地，所述稳定同位素内标肽段为：IMDANVNDLILNTR*，其中，R*表示精氨酸中的碳置换为13C6，氮置换为15N。
前述的方法，步骤A包括以下子步骤：
a1、蜂蜜中蛋白质的提取：将蜂蜜与去离子水或PBS缓冲溶液按照1:1体积比溶解，离心10min，收集上清液至10KD分子通量的超滤管中，以5000g离心力离心，使蛋白溶液浓缩至最小体积，然后收集上清液，作为蛋白提取液，并测定提取液中总蛋白浓度(Bradford法)；
a2、蛋白质的SDS-PAGE分析：将蛋白提取液进行SDS-PAGE分析，用12％浓缩胶和10％分离胶将MRJP1与其它蛋白分离，然后用考马斯蓝染色；
a3、MRJP1蛋白的酶解：从电泳凝胶上切下MRJP1蛋白对应的条带(约56KD，MRJP1蛋白的氨基酸序列见SEQ ID NO:2)，置于离心管中，并用加入脱色液没过凝胶条，旋转进行脱色至无色；弃去脱色液并加入乙腈使切下的凝胶条带脱水，上下颠倒使其反应15min，吸走乙腈并蒸发浓缩干燥；然后加入100mM DTT溶液浸没胶条使其吸胀，在室温反应60min，吸干多余的DTT，再加入100mM IAA溶液在室温下暗反应60min；吸干多余的IAA，向干燥的凝胶块中加入用40mM NH4HCO3溶解的胰蛋白酶(胰蛋白酶与MRJP1蛋白的质量比为1:50)浸没胶条，37℃酶切过夜；然后加入0.1％v/v甲酸水溶液终止酶切反应，加入70％v/v乙腈水溶液(含0.1％v/v甲酸)浸没胶条进行萃取，静置10-20min，将萃取液转移至新的离心管中，重复一次萃取，合并两次萃取液，除盐后将样品进行真空干燥，然后用甲酸水溶液复溶，进行液相色谱串联质谱检测。
本发明中，可以采用UHPLC-Q Exactive plus(超高效液相色谱-四级杆串联高分辨静电轨道阱)进行液相色谱串联质谱检测。
优选地，液相色谱条件如下：
色谱柱：为C18柱；
流动相组成：流动相A为0.1％v/v甲酸水溶液，流动相B为含0.1％v/v甲酸的乙腈；
梯度洗脱条件为：0-0.5min，5％的B；0.5-1.0min，5-15％的B；1.0-6.5min，15-40％的B；6.5-7.0min，40-95％的B；7.0-8.5min，95％的B；8.5-8.6min，95-5％B，8.6-10.0min，5％的B；
流速：0.30mL/min；进样量：5.0μL。
优选地，质谱条件如下：
离子源参数：鞘气的流速(sheath gas flow rate)38；辅助气的流速(aux gasflow rate)15；挡锥气的流速(sweep gas flow rate)0；电喷雾电压(spray voltage)3.2KV；离子导管的温度(capillary temperature)275℃；S-lens RF level设为60；离子源温度(Heater temperature)380℃；
采集的模式为正离子模式下的SIM模式。
所述特征肽段在质谱中所产生的检测信号的母离子具有801.41942的质荷比；子离子包含质荷比为958.53161、217.13806的子离子。
所述稳定同位素内标肽段在质谱中所产生的检测信号的母离子具有806.42356的质荷比；子离子包含质荷比为968.53989、739.47002的子离子。
前述的方法，步骤E得到的标准曲线为Y＝1.626e-2X-6.801e-1，R2＝0.9911，其中，Y为特征肽段/稳定同位素内标肽段的峰面积比，X为特征肽段的浓度。
本发明中，MRJP1蛋白的线性检测范围为40-1000ng/mL，最低检出限为30ng/mL。
第二方面，本发明提供可用于液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白的特征肽段，所述特征肽段选自如下①～③任一个：
①IMDANVNDLILNTR；
②FFDYDFDSDER；
③QDAILSGEYDYR。
其中，①可作为定量肽段，②、③可作为定性肽段。
第三方面，本发明提供用于液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的试剂盒，所述试剂盒中至少包括特征肽段标准品溶液和稳定同位素内标肽段溶液。
所述特征肽段标准品溶液的制备如下：取1mg特征肽段标准品，用500μL乙腈溶解，再加入500μL水混匀，即得。
所述稳定同位素内标肽段溶液的制备同所述特征肽段标准品溶液的制备。
第四方面，本发明提供所述特征肽段、所述方法或所述试剂盒在蜂蜜的质量控制和真实性鉴定中的应用。
进一步地，本发明的技术方案之一是：筛选出中蜂MRJP1蛋白的特异性肽段，基于中蜂MRJP1蛋白在蜂蜜中的含量辅助蜂蜜掺假的鉴别。
确定的中蜂MRJP1蛋白的特征肽段序列为IMDANVNDLILNTR，其特异性已经通过Uniprot数据库进行了验证；稳定同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)。
本发明的技术方案之二是：建立了一种基于液相串联高分辨质谱技术对蜂蜜样本中中蜂MRJP1蛋白的特征肽段的定量方法。该方法采用UHPLC-Q Exactive Plus(超高效液相色谱-四级杆串联高分辨静电轨道阱)检测蜂蜜样本，通过比较其图谱中MRJP1特征肽段/IS肽段峰面积比，推算MRJP1蛋白含量，进而判定蜂蜜是否掺假，主要基于MRJP1的特征肽段的定量子离子在液质上的峰面积和稳定同位素标记的内标(IS)肽段的定量子离子在液质上的峰面积。
筛选中蜂MRJP1特征肽段采取以下步骤：
S1：蜂蜜中蛋白质的提取：将适量的中蜂蜜以1g:1mL的比例在去离子水中溶解，在室温下搅拌至完全溶解，并在12000g，4℃下离心10min。收集上清液至10kD分子通量的超滤管，以5000g离心力离心，使蛋白溶液浓缩至最小体积，然后收集上清液并使用Bradford法测得蜂蜜中蛋白质浓度。上清液储存在-20℃直至进一步分析。
S2：蜂蜜中蛋白质的SDS-PAGE分析：将蛋白提取溶液进行SDS-PAGE分析。通过使用12％浓缩胶和10％分离胶将MRJP1与其它蛋白分离，然后用考马斯蓝染色。
S3：蜂蜜中MRJP1蛋白的酶解：通过文献查询MRJP1分子量(约56KD)，从电泳凝胶上切下靶蛋白条带，之后进行胶内酶解，对酶解产物进行冻干；并用胰蛋白酶进行凝胶内消化，然后通过UHPLC-Q Exactive plus表征目标蛋白质。具体步骤如下：
脱色：从电泳凝胶上切下靶蛋白条带，置于1.5mL离心管中，并用加入脱色液没过凝胶条，旋转进行脱色至无色。脱水：弃去脱色液并加入ACN使切下的凝胶条带脱水，上下颠倒使其反应15min，吸走ACN并蒸发浓缩干燥半小时。酶切：然后加入100mM DTT溶液浸没胶条使其吸胀，在室温反应60min，吸干多余的DTT，再加入5倍DTT体积的100mM IAA溶液在室温下暗反应60min。吸干多余的IAA，向干燥的凝胶块中加入用40mM NH4HCO3溶解的胰蛋白酶(胰蛋白酶与MRJP1蛋白的质量比为1:50)浸没胶条，倒置并在37℃下孵育过夜。萃取：向过夜酶切的缓冲液中加入0.1％FA终止酶切，加入体积比70％乙腈水(含0.1％v/v甲酸)浸没胶条进行萃取，静置10-20min，取出萃取液至新的1.5mL离心管中，重复一次，合并两次萃取液。酶切得到的肽段进行下一步除盐后将样品进行真空干燥。
S4：MRJP1肽段的测定：使用UHPLC-Q Exactive plus对肽段进行测序和鉴定。
将肽段重新溶解在流动相A(0.1％v/v的甲酸水)中。色谱条件为：分析柱是为C18色谱柱。流速：0.30mL/min；进样量：5.0μL。
离子源参数：鞘气的流速(sheath gas flow rate)38；辅助气的流速(aux gasflow rate)15；挡锥气的流速(sweep gas flow rate)0；电喷雾电压(spray voltage)3.2KV；离子导管的温度(capillary temperature)275℃；S-lens RF level设为60；离子源的温度(Heater temperature)380℃。
采集的模式：正离子模式下的SIM模式。
质谱生成的数据通过Xcalibur软件收集并存储，将质谱采集的raw数据直接导入PEAKS 8.0进行定性分析。搜索数据库为NCBI上下载的蜜蜂(Apis mellifera)蛋白质数据库，污染库为常见数据污染库(common repository of adventitious proteinsdatabase，cRAP，从The Global Proteome Machine Organization下载)。检索参数设置如下：母离子质量误差(The precursor mass tolerances)为15ppm，子离子质量误差(Thefragment mass tolerances)为0.05Da，酶为：Trypsin酶切，最大漏切位点数为2；可变修饰为oxidation(M，+15.99)，固定修饰为carbamidomethyl(C，+57.02)。所有检索结果采用正反库融合的算法控制蛋白和肽段的假阳性率(False discovery rate FDR)，FDR<1％。通过UHPLC-Q Exactive plus，蛋白质分别被鉴定为中蜂MRJP1。
S5：特征性肽段的确定：UHPLC-Q Exactive plus分析期间的三种候选肽段显示带电状态和相应的分子量与其理论值良好一致。三种肽段的单电荷离子分别是m/z1583.82100,1437.55935和1411.64883。类似地，肽段片段的双电荷离子分别是m/z792.41414,719.78499和706.32806，它们相应的肽段序列是IMDANVNDLILNTR，FFDYDFDSDER和QDAILSGEYDYR。通过UniProt(www.uniprot.org)中的BLAST搜索验证了三种候选肽段的特异性。选择肽段IMDANVNDLILNTR作为定量肽段，因为其具有最高的信号强度，灵敏度，特异性和稳定性，并将其合成为中蜂MRJP1的特征肽段。FFDYDFDSDER和QDAILSGEYDYR作为定性肽段。此外，通过UHPLC-Q Exactive plus分析还证实在未消化的蜂蜜样品中不存在特征肽段。因此，以IMDANVNDLILNTR作为中蜂MRJP1的特异性肽段时，在MRJP1的定量中没有发生内源性干扰。
S6：合成与储存肽段标品：特征肽段IMDANVNDLILNTR和稳定同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)由上海强耀生物科技有限公司合成，纯度超过98％；储存在-20℃备用。
进一步通过以下列顺序溶解制备特征肽段IMDANVNDLILNTR和同位素标记的内标肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的储备溶液(1mg/mL)：准确称取1mg标品，先用500μL的ACN溶解，然后再用500μL水充分溶解。
S7：标准曲线的绘制：在初始流动相(97：3v/v，水/ACN，含0.1％v/v甲酸)中制备一系列特征肽段标准品(10，20，40，80，100，200，400，800和1000ng/mL)，然后向配置好的每个浓度的标准品中加入200ng IS肽段。通过绘制分析物/IS肽段峰面积比与分析物浓度来绘制校准曲线。
S8：在蜂蜜样本进行检测时，优选对其采用如下前处理方法：将适量的待测蜂蜜以1g:1mL比例在去离子水中溶解，在室温下搅拌至完全溶解，并在12000g，4℃下离心10min。收集上清液至10kD分子通量的超滤管，以5000g离心力离心至最小体积，然后收集上清液，使用Bradford法测得蜂蜜中蛋白质浓度。将蛋白质溶液用5M尿素稀释至总蛋白质的终浓度为2mg/mL。然后向50μL样品溶液中加入8μL的100μg/mL内标肽段(IMDANVNDLILNTR*)，并与200μL 40mM NH4HCO3混合。向上述加入25.8μL 30mM DTT溶液，在室温反应60min，然后再加入129μL 100mM IAA溶液在室温下暗反应60min。
随后，将胰蛋白酶溶液(胰蛋白酶与底物蛋白的质量比为1:50)加入到蜂蜜蛋白样品中并在37℃过夜酶切。当反应完成时，加入1μL FA以使胰蛋白酶失活。然后将酶切产物进行除盐，除盐后的样品经真空干燥，所得样品在0.1％FA溶液中溶解。进入质谱分析。
应当理解的是，对上述所用试剂或原料的用量进行等比例扩大或者缩小后的技术方案，与上述内容实质等同，均属于本发明保护范围。
进一步地，采用UHPLC-Q Exactive plus对蜂蜜样本进行检测时，所述的液相条件如下：
色谱柱：为C18色谱柱，柱温为室温：20℃。
流动相组成：流动相A为0.1％的甲酸水，流动相B为0.1％的甲酸乙腈。
梯度洗脱条件为：0-0.5min，5％的B；0.5-1.0min，5-15％的B；1.0-6.5min，15-40％的B；6.5-7.0min，40-95％的B；7.0-8.5min，95％的B；8.5-8.6min，95-5％B，8.6-10.0min，5％的B。
流速：0.30mL/min；进样量：5.0μL。
所述的质谱条件如下：
离子源参数：
鞘气的流速(sheath gas flow rate)38；辅助气的流速(aux gas flow rate)15；挡锥气的流速(sweep gas flow rate)0；电喷雾电压(spray voltage)3.2KV；离子导管的温度(capillary temperature)275℃；S-lens RF level设为60；离子源的温度(Heatertemperature)380℃。
采集的模式为正离子模式下的SIM模式。
具体地，采用UHPLC-Q Exactive Plus检测蜂蜜样本的图谱中应该含有中蜂MRJP1特征肽段IMDANVNDLILNTR的精确m/z值：801.41942([M+2H]2+)；样本的图谱中应该含有添加的稳定同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的精确m/z值：806.42356([M+2H]2+)，其允许偏差应在5ppm以内。
其MS/MS图谱(子离子图谱)中应该含有中蜂MRJP1特征肽段IMDANVNDLILNTR的特征碎片离子958.53161(y9),m/z 217.13806(y7)，相应地，稳定同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*的子离子图谱(MS/MS)中应含有碎片离子m/z 968.53989(y9),m/z739.47002(y7)，且其精确质量数的误差应当小于5ppm。蜂蜜样本中只有在精确m/z值和特征碎片离子方面同时满足以上的特征，方可肯定所求的该蜂蜜样本中的MRJP1含量可信，可以根据此含量的高低鉴别蜂蜜质量。
本发明采用UHPLC-Q Exactive plus仪器对蜂蜜中的MRJP1定量，基于高分辨质谱提供的精确质量数，该方法具有较高的特异性和灵敏度。基于本方法采用的仪器和参数，不同分析实验室和检测机构可以依据液相串联高分辨质谱技术的相关知识，对其中的参数进行一定调整，上述调整均属于本发明保护范围。
借由上述技术方案，本发明至少具有下列优点及有益效果：
研究发现，蜂蜜中MRJP1的含量相对恒定，本发明据此建立起一套蜂蜜真实性评价的方法，用于辅助蜂蜜掺假的鉴别。本发明提供的蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的检测方法，具有特异性强、灵敏度高、准确度和精确度好等优点，适用于蜂蜜中中蜂MRJP1的准确定量。该方法对于维护蜂蜜消费行业健康发展和蜂蜜消费者的权益意义重大。
附图说明
图1为本发明实施例1中通过UHPLC-Q Exactive plus提取的MRJP1的三种候选肽段的离子流图。
图2为本发明实施例1中通过UHPLC-Q Exactive plus检测的MRJP1的三种候选肽段的质谱图。
图3为本发明实施例1中通过UHPLC-Q Exactive plus检测的MRJP1的三种候选肽段的二级碎片质谱图。
图4为本发明实施例1中通过UHPLC-Q Exactive plus提取的同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的离子流图。
图5为本发明实施例1中通过UHPLC-Q Exactive plus检测的同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的质谱图。
图6为本发明实施例1中通过UHPLC-Q Exactive plus检测的同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的二级碎片质谱图。
图7为本发明实施例2中蜂蜜掺假的定量检测结果。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明，但不用来限制本发明的范围。若未特别指明，实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段，所用原料均为市售商品。
以下实施例中涉及的仪器与试剂：
1.质谱仪(Q-Exactive)，美国Thermo Fisher Scientific公司；
2.台式低温离心机(Microfuge 22R Centrifuge)，美国BeckMAN Coul TER公司；
3.全波长酶标仪(Multiskan GO)，美国Thermo Fisher Scientific公司；
4.电子分析天平((PL203)，德国METTLERTOLEDO公司；
5.pH计(DELTA 320)，德国METTLER TOLEDO公司；
6.蒸发浓缩仪(Speed-Vacsvstem,RVC2-18)，德国MarinChrist公司；
7.超纯水机(Milli-QGradient)，美国Millipore公司；
8.超低温冰箱(MDF-U3286S)，日本SANYO公司；
9.1290Infinity液相色谱-6495三重四级杆质谱，美国Agilent Technologies公司；
10.二硫苏糖醇(DL-Dithiothreitol,DTT)，中国Solarbio公司；
11.碘乙酰胺(Iodoacetamide,IAA)，美国Merk公司；
12.Bradford法蛋白质定量试剂盒，中国Solarbio公司；
13.碳酸氢铵(NH4HCO3)，美国Sigma公司。
实施例1利用液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的方法
1.样品来源
从市场或者蜂农处购买真实的中蜂蜜样本以及糖浆。
2.实验步骤
(1)溶液配制
5M Urea溶液：称取Urea 4.5g，超纯水定容到15mL；
100mM DTT：称取DTT 308.5mg，40mM NH4HCO3溶液定容到20mL，每管l mL分装，-20℃冰箱保存待用。
40mM NH4HCO3溶液：称取0.316g NH4HCO3，用超纯水定容100mL，4℃冰箱保存待用。
100mM IAA溶液：称取IAA 0.39g，用40mM的NH4HCO3溶液定溶至20mL，-20℃冰箱保存待用。
活化液：500μL ACN、3μL TFA，超纯水定容至1mL，4℃保存。
平衡液:1μL TFA，超纯水定容至1mL，存于4℃。
洗脱液：800μL ACN、1μL TFA，用超纯水定容至1mL，4℃保存。
(2)特征肽段的选择：
①蜂蜜中蛋白质的提取
称取1g中蜂蜜加入1mL去离子水，在室温下涡旋至完全溶解，并在12000g，4℃下离心10min。收集上清液至10KD分子通量的超滤管中，以5000g离心力离心50min。然后收集超滤管中的蛋白溶液，并使用Bradford法测得蜂蜜中蛋白质浓度。上清液储存在-20℃直至进一步分析。
②蜂蜜中蛋白质的聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分析
配制浓度为15％和5％的分离胶和浓缩胶溶液；将10μL检测样品和10μL 1×(或6×)的loading buffer混合，然后取15μL混合物用移液枪慢慢加至样品槽中，10μL预染Maker；200V恒压，电泳至溴酚蓝上样缓冲液在凝胶中迁移至凝胶底部，将蜂蜜中的蛋白按照分子量大小分离开，然后用考马斯蓝染色，判断分析蜂蜜中蛋白成分。
③蜂蜜中蛋白质的胶内酶切
通过文献查询MRJP1分子量(约56KD)，从电泳凝胶上切下靶蛋白条带，之后进行胶内酶解，对酶解产物进行冻干；并用胰蛋白酶进行凝胶内消化，然后通过UHPLC-Q Exactiveplus表征目标蛋白质。具体步骤如下：
A.脱色：从电泳凝胶上切下靶蛋白条带，置于1.5mL离心管中，并用加入脱色液没过凝胶条，旋转进行脱色至无色。
B.脱水：弃去脱色液并加入ACN使切下的凝胶条带脱水，上下颠倒使其反应15min，吸走CAN并蒸发浓缩干燥半小时。
C.酶切：然后加入100mM DTT溶液浸没胶条使其吸胀，在室温反应60min。吸干多余的DTT，再加入5倍DTT体积的100mM IAA溶液在室温下暗反应60min。吸干多余的IAA，向干燥的凝胶块中加入用40mM NH4HCO3溶解的胰蛋白酶(胰蛋白酶与底物蛋白的质量比为1:50)浸没胶条，倒置并在37℃下孵育过夜。
D.萃取：向过夜酶切的缓冲液中加入0.1％FA终止酶切，加入体积比70％乙腈水(含0.1％v/v甲酸)浸没胶条进行萃取，静置10-20min取出萃取液至新的1.5mL离心管中，重复一次，合并两次萃取液。
酶切得到的肽段进行下一步除盐。
④酶切肽段的除盐
向C18除盐小柱中加入活化液1mL，缓慢打出进行活化；再加入平衡液1mL，缓慢打出进行平衡；再加入平衡液600μL和酶切得到的肽段溶液400μL，将此混合液缓慢打到新的1mL离心管中，将打出的液体重新加入小柱中，使蛋白样品充分结合在C18柱子上；再加入平衡液1mL，缓慢打出，洗去盐；最后再加入洗脱液1mL，缓慢打出至新1mL离心管中，得到除盐肽段。干燥：将样品进行真空干燥。
⑤纯蛋白的质谱分析
将脱盐并干燥后的肽段在0.1％FA溶液中溶解。色谱条件为：分析柱是为C18色谱柱。流速：0.30mL/min；进样量：5.0μL。
离子源参数：鞘气的流速(sheath gas flow rate)38；辅助气的流速(aux gasflow rate)15；挡锥气的流速(sweep gas flow rate)0；电喷雾电压(spray voltage)3.2KV；离子导管的温度(capillary temperature)275℃；S-lens RF level设为60；离子源的温度(Heater temperature)380℃。
采集的模式：正离子模式下的SIM模式。
质谱生成的数据通过Xcalibur软件收集并存储，将质谱采集的raw数据直接导入PEAKS 8.0进行定性分析。搜索数据库为NCBI上下载的蜜蜂(Apis mellifera)蛋白质数据库，污染库为常见数据污染库(common repository of adventitious proteinsdatabase，cRAP，从The Global Proteome Machine Organization下载)。检索参数设置如下：母离子质量误差(The precursor mass tolerances)为15ppm，子离子质量误差(Thefragment mass tolerances)为0.05Da，酶为：Trypsin酶切，最大漏切位点数为2；可变修饰为oxidation(M，+15.99)，固定修饰为carbamidomethyl(C，+57.02)。所有检索结果采用正反库融合的算法控制蛋白和肽段的假阳性率(False discovery rate FDR)，FDR<1％。通过UHPLC-Q Exactive plus，蛋白质分别被鉴定为中蜂MRJP1。
⑥特征性肽段的确定
UHPLC-Q Exactive plus分析期间的三种候选肽段显示带电状态和相应的分子量与其理论值良好一致。三种肽段的单电荷离子是m/z 1583.82100,1437.55935和1411.64883。类似地，肽段片段的双电荷离子是m/z 792.41414,719.78499和706.32806，它们相应的肽段序列是IMDANVNDLILNTR，FFDYDFDSDER和QDAILSGEYDYR。通过UniProt(www.uniprot.org)中的BLAST搜索验证了三种候选肽段的特异性。选择肽段IMDANVNDLILNTR作为定量肽段，因为其具有最高的信号强度，灵敏度，特异性和稳定性，并将其合成为MRJP1的特征肽段。FFDYDFDSDER和QDAILSGEYDYR作为定性肽段。此外，通过UHPLC-Q Exactive plus分析还证实在未消化的蜂蜜样品中不存在特征肽段。因此，当肽段IMDANVNDLILNTR用作中蜂MRJP1的特异性肽段时，在MRJP1的定量中没有发生内源性干扰。
(3)合成肽段标品
特征肽段IMDANVNDLILNTR和稳定同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)由上海强耀生物科技有限公司提纯，纯度超过98％；储存在-20℃备用。
进一步通过以下列顺序溶解制备特征肽段IMDANVNDLILNTR和同位素标记的内标肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的储备溶液(1mg/mL)：准确称取1mg标品，先用500μL的ACN溶解，然后再用500μL水充分溶解。
(4)标准曲线的绘制：在初始流动相(97：3，v/v，水/ACN，含0.1％v/v甲酸)中制备一系列特征肽段标准品(10，20，40，80，100，200，400，800和1000ng/mL)，然后向配置好的每个浓度的标准品中加入800ng IS肽段。
1290Infinity液相色谱-6495三重四级杆质谱液相条件如下：
色谱柱：Kinetex C18(50mm×2.1mm)2.6μm，柱温为室温：20℃。
流动相组成：流动相A为0.1％v/v的甲酸水，流动相B为0.1％v/v的甲酸乙腈。梯度洗脱条件为：0-0.8min，10％的B；0.8-1.3min，10-20％的B；1.3-4.5min，20-30％的B；4.5-5.4min，30-95％的B；5.4-6.0min，95％的B；6.0-6.1min，95-5％B，6.1-5.0min，5％的B。
流速：0.30mL/min；进样量：5.0μL。
所述的质谱条件如下：
离子源参数：鞘气温度350℃；鞘气流速12L/min；辅助气温度290℃；辅助气流速11L/min；毛细管电压正模式3.5kV；iFunnel参数正模式高压200V、低压100V，采集的模式为正离子模式下的SIM模式。通过绘制特征肽段/IS肽段峰面积比与分析物浓度来绘制校准曲线。通过绘制特征肽段/IS肽段峰面积比与分析物浓度来绘制校准曲线。
标曲方程式如下：Y＝1.626e-2X-6.801e-1，R2＝0.9911 式(1)
其中，Y为特征肽段/IS肽段峰面积比，X为特征肽段浓度(μg/mL)。
MRJP1蛋白的线性检测范围为40-1000ng/mL，最低检出限为30ng/mL。
(5)蜂蜜样本的前处理
①准确称取均匀待测蜂蜜10g至50mL离心管中，加入10mL去离子水，涡旋至蜂蜜充分溶解。于12000g，4℃条件下离心10min。收集上清液至10kD分子通量的超滤管，以5000g离心力离心至最小体积，然后收集上清液于新的2mL离心管中，使用Bradford法测得蜂蜜中蛋白质浓度。
②将蛋白质溶液用5M尿素稀释至总蛋白质的终浓度为2mg/mL。然后向50μL样品溶液中加入8μL的100μg/mL内标肽段(IMDANVNDLILNTR*)，并与200μL 40mM NH4HCO3混合。向上述混合溶液中加入25.8μL 30mM DTT溶液，在室温反应60min，然后再加入129μL 100mM IAA溶液在室温下暗反应60min。
③每个样品中加入60μL胰蛋白酶溶液，于37℃过夜酶切。当酶切反应完成时，加入1μL FA以使胰蛋白酶失活。然后将酶切产物进行除盐，除盐后的样品进入质谱分析。
(6)蜂蜜样本的质谱分析
1290Infinity液相色谱-6495三重四级杆质谱对蜂蜜样本进行检测时，所述的液相条件如下：
色谱柱：Kinetex C18(50mm×2.1mm)2.6μm，柱温为室温：20℃。
流动相组成：流动相A为0.1％v/v的甲酸水，流动相B为0.1％v/v的甲酸乙腈。梯度洗脱条件为：0-0.8min，10％的B；0.8-1.3min，10-20％的B；1.3-4.5min，20-30％的B；4.5-5.4min，30-95％的B；5.4-6.0min，95％的B；6.0-6.1min，95-5％B，6.1-5.0min，5％的B。
流速：0.30mL/min；进样量：5.0μL。
所述的质谱条件如下：
离子源参数：鞘气温度350℃；鞘气流速12L/min；辅助气温度290℃；辅助气流速11L/min；毛细管电压正模式3.5kV；iFunnel参数正模式高压200V、低压100V，采集的模式为正离子模式下的SIM模式。
(7)蜂蜜样本的数据处理
根据特征肽段/IS肽段峰面积比带入公式求得特征肽段浓度，再根据式(2)得到中蜂MRJP1蛋白的含量。
X＝(ФcVM1)/(M2m) 式(2)
其中，X为(ng/g)是蜂蜜样品中MRJP1蛋白的含量，Ф是酶解蛋白体积占总样品体积比例，c(ng/mL)是特征肽在胰蛋白酶消化物中的浓度，V(mL)是胰蛋白酶消化物的体积，M1、M2是MRJP1和特征肽段的摩尔质量，m(g)是蜂蜜样品的质量。以达到对蜂蜜样品中MRJP1定量的目的。
经过对部分蜂蜜样品的检测，蜂蜜中MRJP1蛋白含量在0.08～0.31mg/g范围内。并且检测蜂蜜样本的图谱中应该含有中蜂MRJP1特征肽段IMDANVNDLILNTR的精确m/z值：801.41942([M+2H]2+)；样本的图谱中应该含有添加的稳定同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的精确m/z值：806.42356([M+2H]2+)，其允许偏差应在5ppm以内。
其MS/MS图谱(子离子图谱)中应该含有中蜂MRJP1特征肽段IMDANVNDLILNTR的特征碎片离子958.53161(y9)，m/z 825.33563(y7)，相应地，稳定同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*的子离子图谱(MS/MS)中应含有碎片离子m/z 968.53989(y9),m/z739.47002(y7)，且其精确质量数的误差应当小于5ppm。蜂蜜样本中只有在精确m/z值和特征碎片离子方面同时满足以上的特征，方可肯定所求的该蜂蜜样本中的中蜂MRJP1含量可信，可以根据含量的高低鉴别蜂蜜质量。
通过UHPLC-Q Exactive plus提取的MRJP1的三种候选肽段的离子流图见图1。
通过UHPLC-Q Exactive plus检测的MRJP1的三种候选肽段的质谱图见图2。
通过UHPLC-Q Exactive plus检测的MRJP1的三种候选肽段的二级碎片质谱图见图3。
通过UHPLC-Q Exactive plus提取的同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的离子流图见图4。
通过UHPLC-Q Exactive plus检测的同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的质谱图见图5。
通过UHPLC-Q Exactive plus检测的同位素标记的内标(IS)肽段IMDANVNDLILNTR*(R*-13C6,15N4)的二级碎片质谱图见图6。
实施例2蜂蜜掺假的定量检测
1、样品来源
从市场或者蜂农处购买真实的蜂蜜样本以及糖浆。
2、实验步骤
(1)溶液配制
同实施例1。
(2)蜂蜜的混掺：按不同比例向蜂蜜中掺入糖浆。
向蜂蜜中按照5％、10％、20％、50％、80％的比例掺入糖浆。
(3)蜂蜜样本的前处理
①准确称取待测蜂蜜10g至50mL离心管中，加入10mL去离子水，涡旋至蜂蜜充分溶解。于12000rpm，4℃离心10min。收集上清液于新的2mL离心管中。
②移取蛋白质溶液200μL，加入800μL 40mM NH4HCO3混合。向上述混合溶液中加入100μL 30mM DTT溶液，在室温反应60min，然后再加入500μL 100mM IAA溶液在室温下暗反应60min。
③每个样品中加入30μL胰蛋白酶溶液，于37℃过夜酶切。当酶切反应完成时，加入1μL FA以使胰蛋白酶失活。然后将酶切产物进行除盐，除盐后的样品进入质谱分析。
(4)蜂蜜样本的质谱分析
使用1290Infinity液相色谱-6495三重四级杆质谱对蜂蜜样本进行检测。
(5)蜂蜜样本的数据处理
从质谱数据中提取特征肽段的质荷比，以m/z 801.41942的峰面积作为对比依据。结果如图7所示，结果表明本发明能够检测出掺入糖浆为5％以上的蜂蜜掺假现象。
虽然，上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述，但在本发明基础上，可以对之做一些修改或改进，这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此，在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进，均属于本发明要求保护的范围。
序列表
<110> 中国农业科学院蜜蜂研究所
<120> 利用液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的方法
<130> KHP191114180.6
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 14
<212> PRT
<213> 中华蜜蜂(Apis cerana)
<400> 1
Ile Met Asp Ala Asn Val Asn Asp Leu Ile Leu Asn Thr Arg
1 5 10
<210> 2
<211> 433
<212> PRT
<213> 中华蜜蜂(Apis cerana)
<400> 2
Met Thr Arg Trp Leu Phe Met Val Val Cys Leu Gly Ile Val Cys Gln
1 5 10 15
Gly Thr Thr Ser Ser Ile Leu Arg Gly Glu Ser Leu Asn Lys Ser Leu
20 25 30
Ser Val Leu His Glu Trp Lys Phe Phe Asp Tyr Asp Phe Asp Ser Asp
35 40 45
Glu Arg Arg Gln Asp Ala Ile Leu Ser Gly Glu Tyr Asp Tyr Arg Lys
50 55 60
Asn Tyr Pro Ser Asp Val Asp Gln Trp His Gly Lys Ile Phe Val Thr
65 70 75 80
Met Leu Arg Tyr Asn Gly Val Pro Ser Ser Leu Asn Val Ile Ser Lys
85 90 95
Lys Ile Gly Asp Gly Gly Pro Leu Leu Gln Pro Tyr Pro Asp Trp Ser
100 105 110
Phe Ala Lys Tyr Asp Asp Cys Ser Gly Ile Val Ser Ala Thr Lys Leu
115 120 125
Ala Ile Asp Lys Cys Asp Arg Leu Trp Val Leu Asp Ser Gly Leu Val
130 135 140
Asn Asn Thr Gln Pro Met Cys Ser Pro Lys Leu Leu Thr Phe Asp Leu
145 150 155 160
Thr Thr Ser Gln Leu Leu Lys Gln Val Glu Ile Pro His Asp Val Ala
165 170 175
Val Asn Ala Thr Thr Gly Lys Gly Arg Leu Ser Ser Leu Ala Val Gln
180 185 190
Pro Leu Asp Cys Asn Ile Asn Gly Asp Thr Met Val Tyr Ile Ala Asp
195 200 205
Glu Lys Gly Glu Gly Leu Ile Val Tyr His Asp Ser Asp Tyr Ser Phe
210 215 220
His Arg Leu Thr Ser Lys Thr Phe Asp Tyr Asp Pro Lys Phe Thr Lys
225 230 235 240
Met Thr Ile Asn Gly Glu Ser Phe Thr Thr Gln Asn Gly Ile Ser Gly
245 250 255
Met Ala Leu Ser Pro Met Thr Asn Asn Leu Tyr Tyr Ser Pro Val Ala
260 265 270
Ser Thr Ser Leu Tyr Tyr Val Asn Thr Glu Gln Phe Arg Thr Ser Asn
275 280 285
Tyr Glu Gln Asn Ala Val His Tyr Glu Gly Val Gln Asn Ile Leu Asp
290 295 300
Thr Gln Ser Ser Ala Lys Val Val Ser Lys Ser Gly Val Leu Phe Phe
305 310 315 320
Gly Leu Val Gly Asp Ser Ala Leu Gly Cys Trp Asn Glu His Arg Ser
325 330 335
Leu Glu Arg His Asn Ile Arg Thr Val Ala Gln Ser Asp Glu Thr Leu
340 345 350
Gln Met Ile Val Gly Met Lys Ile Lys Glu Ala Leu Pro His Val Pro
355 360 365
Ile Phe Asp Arg Tyr Ile Asn Arg Glu Tyr Ile Leu Val Leu Ser Asn
370 375 380
Arg Met Gln Lys Met Ala Asn Asn Asp Tyr Asn Phe Asn Asp Val Asn
385 390 395 400
Phe Arg Ile Met Asp Ala Asn Val Asn Asp Leu Ile Leu Asn Thr Arg
405 410 415
Cys Glu Asn Pro Asn Asn Asp Asn Thr Pro Phe Lys Ile Ser Ile His
420 425 430
Leu

Claims (8)

1.利用液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的方法，其特征在于，包括以下步骤：
A、提取标准中蜂蜂蜜样品中的蛋白质，进行SDS-PAGE电泳，将MRJP1蛋白对应的条带切胶回收，然后酶解MRJP1蛋白，酶解产物除盐后，用0.1％v/v的甲酸水溶液复溶，然后进行液相色谱串联质谱检测；
B、根据液相色谱串联质谱检测结果，筛选出MRJP1蛋白的特征肽段并测序，然后人工合成所述特征肽段及其稳定同位素内标肽段；
C、配制不同浓度的所述特征肽段的标准品溶液；
D、向标准品溶液中加入稳定同位素内标肽段混匀，然后进行液相色谱串联质谱检测；
E、根据标准品溶液的浓度以及特征肽段/稳定同位素内标肽段的峰面积比绘制标准曲线；
F、对待测蜂蜜样品进行前处理：先将蜂蜜样品溶解于去离子水或PBS缓冲溶液中，离心收集上清，即为蛋白溶液；将蛋白溶液用胰蛋白酶水解，酶解产物除盐后作为待测样本；
G、用待测样本替代步骤D中的标准品溶液，采用相同方法进行液相色谱串联质谱检测；
H、根据待测样本的检测结果，对照标准曲线，获得待测样本中特征肽段的浓度，从而实现对蜂蜜样品中中蜂MRJP1蛋白的定量检测；
其中，所述特征肽段为：IMDANVNDLILNTR。
2.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，步骤A包括以下子步骤：
a1、蜂蜜中蛋白质的提取：将蜂蜜与去离子水或PBS缓冲溶液按照1:1体积比溶解，离心10min，收集上清液至10KD分子通量的超滤管中，以5000g离心力离心，使蛋白溶液浓缩至最小体积，然后收集上清液，作为蛋白提取液，并测定提取液中总蛋白浓度；
a2、蛋白质的SDS-PAGE分析：将蛋白提取液进行SDS-PAGE分析，用12％浓缩胶和10％分离胶将MRJP1与其它蛋白分离，然后用考马斯蓝染色；
a3、MRJP1蛋白的酶解：从电泳凝胶上切下MRJP1蛋白对应的条带，置于离心管中，并用加入脱色液没过凝胶条，旋转进行脱色至无色；弃去脱色液并加入乙腈使切下的凝胶条带脱水，上下颠倒使其均匀反应，吸走乙腈并蒸发浓缩干燥；然后加入100mM DTT溶液浸没胶条使其吸胀，在室温反应60min，吸干多余的DTT，再加入100mM IAA溶液在室温下暗反应60min；吸干多余的IAA，向干燥的凝胶块中加入用40mM NH4HCO3溶解的胰蛋白酶浸没胶条，37℃酶切过夜，其中，胰蛋白酶与MRJP1蛋白的质量比为1:50；然后加入0.1％v/v甲酸水溶液终止酶切反应，加入含0.1％v/v甲酸的70％v/v乙腈水溶液浸没胶条进行萃取，静置10-20min，将萃取液转移至新的离心管中，重复一次萃取，合并两次萃取液，除盐后将样品进行真空干燥，然后用0.1％v/v甲酸水溶液复溶，进行液相色谱串联质谱检测。
3.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，步骤D和G中采用UHPLC-Q Exactive plus进行液相色谱串联质谱检测；
(1)液相色谱条件如下：
色谱柱：为C18柱；
流动相组成：流动相A为0.1％v/v甲酸水溶液，流动相B为含0.1％v/v甲酸的乙腈；
梯度洗脱条件为：0-0.5min，5％的B；0.5-1.0min，5-15％的B；1.0-6.5min，15-40％的B；6.5-7.0min，40-95％的B；7.0-8.5min，95％的B；8.5-8.6min，95-5％B，8.6-10.0min，5％的B；
流速：0.30mL/min；进样量：5.0μL；
(2)质谱条件如下：
离子源参数：鞘气的流速38；辅助气的流速15；挡锥气的流速0；电喷雾电压3.2KV；离子导管的温度275℃；S-lens RF level设为60；离子源温度380℃；
采集的模式为正离子模式下的SIM模式。
4.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述特征肽段在质谱中所产生的检测信号的母离子具有801.41942的质荷比；子离子包含质荷比为958.53161、217.13806的子离子。
5.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述稳定同位素内标肽段为：IMDANVNDLILNTR*，其中，R*表示精氨酸中的碳置换为13C6，氮置换为15N；
所述稳定同位素内标肽段在质谱中所产生的检测信号的母离子具有806.42356的质荷比；子离子包含质荷比为968.53989、739.47002的子离子。
6.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，步骤E得到的标准曲线为Y＝1.626e-2X-6.801e-1，R2＝0.9911，其中，Y为特征肽段/稳定同位素内标肽段的峰面积比，X为特征肽段的浓度；MRJP1蛋白的线性检测范围为40-1000ng/mL，最低检出限为30ng/mL。
7.用于液相色谱串联质谱测定蜂蜜中中蜂MRJP1蛋白含量的试剂盒，其特征在于，所述试剂盒中至少包括特征肽段标准品溶液和稳定同位素内标肽段溶液；
其中，所述特征肽段、稳定同位素内标肽段的定义同权利要求5中所述；
所述特征肽段标准品溶液的制备如下：取1mg特征肽段标准品，用500μL乙腈溶解，再加入500μL水混匀，即得；
所述稳定同位素内标肽段溶液的制备同所述特征肽段标准品溶液的制备。
8.权利要求1-6任一项所述方法或权利要求7所述试剂盒在蜂蜜的质量控制和真实性鉴定中的应用。
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Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111157635A (zh) * 2019-12-26 2020-05-15 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种液相色谱串联质谱定量检测中蜂蜜中α-葡萄糖苷酶的方法
CN111289661A (zh) * 2020-05-12 2020-06-16 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种液相色谱串联质谱检测蜂蜜中意蜂和中蜂α-淀粉酶的方法
CN111323522A (zh) * 2020-04-22 2020-06-23 中国海洋大学 一种食品中白鲢成分的鉴真方法及应用
CN111398503A (zh) * 2020-04-16 2020-07-10 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种用于检测蜂王浆主蛋白4的试剂盒及检测方法
CN111398498A (zh) * 2020-03-19 2020-07-10 中国农业科学院蜜蜂研究所 吲哚-3-乙酸甲酯在鉴别中蜂蜂蜜和意蜂蜂蜜中的应用
CN111929390A (zh) * 2020-10-15 2020-11-13 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种基于液相色谱串联质谱检测小蜜蜂mrjp1的方法及其在鉴别小蜜蜂蜂蜜中的应用
CN113176362A (zh) * 2021-06-30 2021-07-27 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种评估天然蜂花粉及发酵蜂花粉致敏性的方法

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010078455A (ja) * 2008-09-26 2010-04-08 Japan Science & Technology Agency プロテオミクス解析におけるペプチド分離・同定方法
CN102010867A (zh) * 2010-08-17 2011-04-13 浙江大学 重组中华蜜蜂王浆主蛋白AccMRJP1的酵母表达方法及产物用途
WO2014163421A1 (ko) * 2013-04-04 2014-10-09 충남대학교산학협력단 인간 혈청 당쇄 지도 및 이를 이용하여 혈청 시료를 검증하는 방법
CN105301119A (zh) * 2014-07-15 2016-02-03 中国科学院大连化学物理研究所 基于两端非等重标记的蛋白质氨基酸序列从头测序方法
CN106596760A (zh) * 2016-12-05 2017-04-26 北京理工大学 一种基于两端等重标记和数据库搜索的蛋白质鉴定方法
CN106855543A (zh) * 2016-12-22 2017-06-16 绿城农科检测技术有限公司 一种基于化学标记技术的蛋白质同位素稀释串联质谱检测方法
CN107290461A (zh) * 2017-07-14 2017-10-24 浙江工商大学 一种建立蜂王浆致敏蛋白的液质联用分析的方法
CN108948176A (zh) * 2018-05-21 2018-12-07 杭州璞湃科技有限公司 一种骨桥蛋白特征肽及其应用
CN109142596A (zh) * 2018-08-27 2019-01-04 福建出入境检验检疫局检验检疫技术中心 一种蜂蜜或蜂王浆真实性的识别方法

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010078455A (ja) * 2008-09-26 2010-04-08 Japan Science & Technology Agency プロテオミクス解析におけるペプチド分離・同定方法
CN102010867A (zh) * 2010-08-17 2011-04-13 浙江大学 重组中华蜜蜂王浆主蛋白AccMRJP1的酵母表达方法及产物用途
WO2014163421A1 (ko) * 2013-04-04 2014-10-09 충남대학교산학협력단 인간 혈청 당쇄 지도 및 이를 이용하여 혈청 시료를 검증하는 방법
CN105301119A (zh) * 2014-07-15 2016-02-03 中国科学院大连化学物理研究所 基于两端非等重标记的蛋白质氨基酸序列从头测序方法
CN106596760A (zh) * 2016-12-05 2017-04-26 北京理工大学 一种基于两端等重标记和数据库搜索的蛋白质鉴定方法
CN106855543A (zh) * 2016-12-22 2017-06-16 绿城农科检测技术有限公司 一种基于化学标记技术的蛋白质同位素稀释串联质谱检测方法
CN107290461A (zh) * 2017-07-14 2017-10-24 浙江工商大学 一种建立蜂王浆致敏蛋白的液质联用分析的方法
CN108948176A (zh) * 2018-05-21 2018-12-07 杭州璞湃科技有限公司 一种骨桥蛋白特征肽及其应用
CN109142596A (zh) * 2018-08-27 2019-01-04 福建出入境检验检疫局检验检疫技术中心 一种蜂蜜或蜂王浆真实性的识别方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DUANGPORN SRISUPARBH等: "Isolation and Characterization of Major Royal Jelly cDNAs and Proteins of the Honey Bee (Apis cerana)", 《JOURNAL OF BIOCHEMISTRY AND MOLECULAR BIOLOGY》 *
YAN-ZHENG ZHANG等: "Discrimination of the entomological origin of honey according to the secretions of the bee (Apis cerana or Apis mellifera)", 《FOOD RESEARCH INTERNATIONAL》 *
刘喜东 等: "基于蛋白质组学的细胞色素P450和葡萄糖醛酸转移酶亚型绝对定量分析", 《分析化学》 *
汪聪慧 编著: "《有机质谱技术与方法》", 31 March 2011, 中国轻工业出版社 *

Cited By (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111157635A (zh) * 2019-12-26 2020-05-15 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种液相色谱串联质谱定量检测中蜂蜜中α-葡萄糖苷酶的方法
CN111157635B (zh) * 2019-12-26 2021-01-15 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种液相色谱串联质谱定量检测中蜂蜜中α-葡萄糖苷酶的方法
CN111398498A (zh) * 2020-03-19 2020-07-10 中国农业科学院蜜蜂研究所 吲哚-3-乙酸甲酯在鉴别中蜂蜂蜜和意蜂蜂蜜中的应用
CN111398498B (zh) * 2020-03-19 2023-01-03 中国农业科学院蜜蜂研究所 吲哚-3-乙酸甲酯在鉴别中蜂蜂蜜和意蜂蜂蜜中的应用
CN111398503A (zh) * 2020-04-16 2020-07-10 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种用于检测蜂王浆主蛋白4的试剂盒及检测方法
CN111323522A (zh) * 2020-04-22 2020-06-23 中国海洋大学 一种食品中白鲢成分的鉴真方法及应用
CN111323522B (zh) * 2020-04-22 2022-01-04 中国海洋大学 一种食品中白鲢成分的鉴真方法及应用
CN111289661A (zh) * 2020-05-12 2020-06-16 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种液相色谱串联质谱检测蜂蜜中意蜂和中蜂α-淀粉酶的方法
CN111289661B (zh) * 2020-05-12 2020-08-25 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种液相色谱串联质谱检测蜂蜜中意蜂和中蜂α-淀粉酶的方法
CN111929390A (zh) * 2020-10-15 2020-11-13 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种基于液相色谱串联质谱检测小蜜蜂mrjp1的方法及其在鉴别小蜜蜂蜂蜜中的应用
CN111929390B (zh) * 2020-10-15 2021-01-12 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种基于液相色谱串联质谱检测小蜜蜂mrjp1的方法及其在鉴别小蜜蜂蜂蜜中的应用
CN113176362A (zh) * 2021-06-30 2021-07-27 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种评估天然蜂花粉及发酵蜂花粉致敏性的方法

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