CN107119002A - 一种合成3‑羟基丙酸的重组菌及其构建方法和应用 - Google Patents
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Abstract
本发明提供一种合成3‑羟基丙酸的重组菌及其构建方法和制备,属于基因工程领域和发酵工程领域,所述重组菌宿主菌为大肠杆菌,表达编码ATP依赖的蛋白酶水解亚单位的基因clpP、编码乙酰辅酶A羧化酶的基因accABCD和编码丙二酸单酰辅酶A还原酶的基因mcr。制备方法为:获得重组载体pETDuet‑clpP‑mcr、重组载体pACYCDuet‑accADBC;转化到宿主感受态细胞中。本发明解决了微生物发酵过程中,随着3‑羟基丙酸的浓度增加,抑制微生物生长影响产量的问题,相对于没有表达编码ATP依赖的蛋白酶水解亚单位的菌株提高了116%,是已知的摇瓶发酵最高水平。
Description
技术领域
本发明涉及一种合成3-羟基丙酸的重组菌及其构建方法和应用,属于基因工程技术领域。
背景技术
3-羟基丙酸作为一种平台化合物,是美国能源部公布的未来全球最具开发潜力的12种高附加值生物基化工产品之一,具有广阔的应用前景和很高的经济价值。3-羟基丙酸是一种三碳有机化合物,分子内含羧基和羟基,为乳酸的同分异构体,可作为多种有机物合成的前体物质,生产多种具有商业价值的化合物,如丙烯酸、1,3-丙二醇、丙二酸、丙内酯等,以上几种化学品每年的市场份额超过10亿美元。此外,它还是组成诸多大分子化合物和酯类聚合物的单体,可用于包装材料、金属润滑剂、纺织品抗静电材料、个人日常用品及可吸收医用材料等。目前我国的3-羟基丙酸全部依赖国外进口,国内市场售价高达8.5万元/吨。
目前,3-羟基丙酸的生产以化学合成为主,主要以丙烯酸、3-丙内酯、3-羟丙腈、醋酸乙烯酯和1,3-丙二醇为前体物质,通过一系列化工路线进行转化。化学合成方法具有生产成本较高而产率较低等缺点;同时,用于化学合成的前体物质大都具有毒性大、致癌性的特点,严重制约了产业化应用。生物转化法合成3-羟基丙酸的相关研究起步于近二十年,一些学者利用重组大肠杆菌(Escherichia coli)或肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae)以甘油或葡萄糖为底物进行微生物转化。为有效提高3-羟基丙酸产量,转化技术路线也各有不同,研究主要集中于工程菌的构建和发酵工艺的改进。
3-羟基丙酸的生物合成技术虽然已经取得了一些进展,在产量和产率上取得了一定进步。但是,生物法生产3-羟基丙酸还存在诸多问题。其中,产物对菌体生长的抑制作用是制约3-羟基丙酸产量的主要因素之一。微生物发酵过程中,随着3-羟基丙酸的合成和积累,当3-羟基丙酸的浓度达到一定高度时,会抑制微生物的生长,阻碍3-羟基丙酸产量的进一步提升。
发明内容
为解决现有技术中,微生物发酵过程中,随着3-羟基丙酸的合成和积累,当3-羟基丙酸的浓度达到一定高度时,会抑制微生物的生长,阻碍3-羟基丙酸产量的进一步提升的问题,本发明首先提供了一种合成3-羟基丙酸的重组菌,所述重组菌宿主菌为大肠杆菌,表达编码ATP依赖的蛋白酶水解亚单位的基因clpP、编码乙酰辅酶A羧化酶的基因accABCD和编码丙二酸单酰辅酶A还原酶的基因mcr。
在本发明的一种实施方式中,所述的编码ATP依赖的蛋白酶水解亚单位的基因clpP和编码乙酰辅酶A羧化酶的基因accABCD来源于大肠杆菌,编码丙二酸单酰辅酶A还原酶的基因mcr来源于橙色绿屈挠菌。所述ATP依赖的蛋白酶水解亚单位ClcP在NCBI的蛋白质编号为YP_002406280.1,乙酰辅酶A羧化酶亚基AccA在NCBI的蛋白质编号为WP_000055741.1,乙酰辅酶A羧化酶亚基AccB在NCBI的蛋白质编号为WP_000354622.1,乙酰辅酶A羧化酶亚基AccC在NCBI的蛋白质编号为WP_000884639.1,乙酰辅酶A羧化酶基因亚基AccD在NCBI的蛋白质编号为WP_000118404.1,丙二酸单酰辅酶A还原酶MCR在NCBI的蛋白质编号为AAS20429.1。
上述ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因clcP在NCBI的Gene ID为7150967,乙酰辅酶A羧化酶亚基基因accA、accB、accC和accD在NCBI的Gene ID分别为944895、947758、947761和946796,丙二酸单酰辅酶A还原酶基因mcr在NCBI的Gene ID为5827083。
本发明还提供一种构建上述重组菌的方法,包括以下步骤:
1)克隆ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因clpP,将所得基因与质粒pETDuet进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pETDuet-clpP;
2)克隆丙二酸单酰辅酶A还原酶基因mcr,将所得基因与步骤1)所得载体pETDuet-clpP进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pETDuet-clpP-mcr;
3)克隆乙酰辅酶A羧化酶亚基基因accA,将所得基因与质粒pACYCDuet-1进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pACYCDuet-accA;
4)克隆乙酰辅酶A羧化酶亚基基因accD,将所得基因与步骤3)所得pACYCDuett-accA进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pACYCDuet-accAD;
5)克隆乙酰辅酶A羧化酶亚基基因accBC,将所得基因与步骤4)所得pACYCDuett-accAB进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pACYCDuet-accABCD;
6)将步骤2)与步骤5)所获得的重组载体,转化到宿主Escherichia coli BL21(DE3)感受态细胞中,获得大肠杆菌重组菌。
所述ATP依赖的蛋白酶水解亚单位ClcP在NCBI的蛋白质编号为YP_002406280.1,乙酰辅酶A羧化酶亚基AccA在NCBI的蛋白质编号为WP_000055741.1,乙酰辅酶A羧化酶亚基AccB在NCBI的蛋白质编号为WP_000354622.1,乙酰辅酶A羧化酶亚基AccC在NCBI的蛋白质编号为WP_000884639.1,乙酰辅酶A羧化酶基因亚基AccD在NCBI的蛋白质编号为WP_000118404.1,丙二酸单酰辅酶A还原酶MCR在NCBI的蛋白质编号为AAS20429.1。
所述ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因clpP和乙酰辅酶A羧化酶基因accABCD来源于大肠杆菌,丙二酸单酰辅酶A还原酶基因mcr来源于橙色绿屈挠菌;所述ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因clpP和乙酰辅酶A羧化酶基因accABCD来源于大肠杆菌,丙二酸单酰辅酶A还原酶基因mcr来源于橙色绿屈挠菌;所述ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因clcP在NCBI的Gene ID为7150967,乙酰辅酶A羧化酶亚基基因accA、accB、accC和accD在NCBI的Gene ID分别为944895、947758、947761和946796,丙二酸单酰辅酶A还原酶基因mcr在NCBI的Gene ID为5827083。
本发明还提供一种应用上述重组菌发酵生产3-羟基丙酸的方法,步骤如下:
1)活化重组菌,获得种子液;
2)将步骤1)所得的种子液,与含有氨苄青霉素与氯霉素的发酵培养基,按照体积比种子液:发酵培养基=(1~2):(100~130)的比例接种后,35℃~37℃、180~220rpm、pH=7.0条件下培养至OD600在0.6~0.8,获得培养液;
3)向所得的培养液中加入诱导剂异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)至终浓度为0.01~0.1mM,然后转入30~33℃、180~220rpm、pH=7.0条件下继续培养24~48小时;
在本发明的一种实施方式中,步骤2)所述培养条件为:37℃,180rpm。
在本发明的一种实施方式中,发酵培养基的碳源为葡萄糖,氮源为无机氮源,如氯化铵或硫酸铵等,其他成分为无机盐。
在本发明的一种实施方式中,发酵培养基的配方为:20g/L葡萄糖,9.8g/L三水磷酸氢二钾,2.1g/L一水合柠檬酸,0.3g/L柠檬酸铁铵,3.0g/L硫酸铵,0.5g/L硫酸镁,18mg/L二水合氯化钙,0.1%(v/v)微量元素。
在本发明的一种实施方式中,微量元素母液的配方为:6.0g/L七水合硫酸亚铁,2.0g/L硼酸,2.0g/L四水合氯化锰,0.8g/L四水合钼酸铵,0.2g/L五水合硫酸铜。
在本发明的一种实施方式中,上述发酵的具体步骤为:将重组菌活化后,按1%的接种量接种到含100μg·mL-1氨苄青霉素和100μg·mL-1氯霉素的发酵培养基中,37℃、180rpm条件下振荡培养,待OD600达到0.6时,温度调节至30℃,并加入0.05mM IPTG进行诱导;此后,每隔12h添加一次0.05mM IPTG、100μg·mL-1氨苄青霉素和100μg·mL-1氯霉素,IPTG初次诱导后48h终止发酵。
本发明所获得的的有益效果如下:
本发明解决了微生物发酵过程中,随着3-羟基丙酸的合成和积累,当3-羟基丙酸的浓度达到一定高度时,会抑制微生物的生长的问题,以Escherichia coli BL21(DE3)为宿主菌株,表达编码ATP依赖的蛋白酶水解亚单位的基因clpP、编码乙酰辅酶A羧化酶的基因accABCD和编码丙二酸单酰辅酶A还原酶的基因mcr。提高了重组菌株的3-羟基丙酸耐受性,并结合整体方案,以葡萄糖为碳源,实现了3-羟基丙酸在产量上的大幅增加。本发明所构建的重组菌具有利用葡萄糖为唯一碳源合成3-羟基丙酸的特点,发酵48h,可以得到6.7g/L的3-羟基丙酸,相对于没有表达编码ATP依赖的蛋白酶水解亚单位的菌株提高了116%,取得了预料不到的技术效果,是已知的摇瓶发酵最高水平。
定义和缩写
在本文中使用下列的缩写或简称:
ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因:clpP
乙酰辅酶A羧化酶A亚基基因:accA
乙酰辅酶A羧化酶B亚基基因:accB
乙酰辅酶A羧化酶C亚基基因:accC
乙酰辅酶A羧化酶D亚基基因:accD
丙二酸单酰辅酶A还原酶基因:mcr
大肠杆菌(Escherichia coli):E.coli
橙色绿屈挠菌(Chloroflexus aurantiacus):C.aurantiacus
3-羟基丙酸:3-HP
“过量表达”或“过表达”指特定的基因在生物体中大量表达,表达量超过正常水平(即,野生型表达水平),可以通过增强内源表达或引入外源基因来实现。
具体实施方式
下面通过实例来进一步阐明本发明。但本发明并不限于以下实施例。
下述实施例中所使用的实验方法若无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所使用的材料、试剂等若无特殊说明,均可从商业途径获得。
所用酶试剂购自MBI Fermentas公司,提取质粒所用的试剂盒和回收DNA片段所用的试剂盒购自美国OMEGA公司,相应的操作步骤按照产品说明书进行;所有培养基如无特别说明均用去离子水配制。
培养基配方:
1)种子液摇瓶培养基
LB培养基:5g/L酵母粉,10g/L NaCl,10g/L蛋白胨,其余为水,121℃,20min灭菌。
2)摇瓶发酵培养基
基本改良培养基:20g/L葡萄糖,9.8g/L三水磷酸氢二钾,2.1g/L一水合柠檬酸,0.3g/L柠檬酸铁铵,3.0g/L硫酸铵,0.5g/L硫酸镁,18mg/L二水合氯化钙,0.1%(v/v)微量元素。
微量元素母液的配方:6.0g/L七水合硫酸亚铁,2.0g/L硼酸,2.0g/L四水合氯化锰,0.8g/L四水合钼酸铵,0.2g/L五水合硫酸铜。
在实际培养过程中,可向上述培养基中添加一定浓度的抗生素以维持质粒的稳定性,如100mg/L的氨苄青霉素和100μg·mL-1氯霉素。
实施例1重组菌株的构建
1)载体pETDuet-clpP的构建
本实施例中,获取来源于C.aurantiacus的丙二酸单酰辅酶A还原酶基因mcr(MCR在NCBI的蛋白质编号为AAS20429.1),是以C.aurantiacus基因组为模板,通过PCR扩增获得(引物:5'-CATGGTACCAGCGGAACAGGACGAC-3'和5'-CCCTCGAGGAATTTACACGGTAATCGC-3'),具体扩增程序如下:
PCR结束后,进行1%(wt/v)琼脂糖凝胶电泳,再利用回收试剂盒(OMEGA GelExtraction Kit)回收大小为3700bp左右的目的片段。
将获得的mcr基因片段和质粒pETDuet-1用KpnI和XhoI限制性内切酶在37℃条件下进行双酶切3.5h,酶切产物进行1%(wt/v)琼脂糖凝胶电泳,再利用回收试剂盒(OMEGAGel Extraction Kit)回收酶切产物,将回收的载体与mcr基因片段按照摩尔比1:5的比例,16℃连接6h以上,连接产物转化E.coliDH5α,然后涂布在加有100μg·mL-1氨苄青霉素的LB固体平板上,PCR筛选阳性克隆。从阳性克隆中提取重组质粒pETDuet-mcr后,再通过限制性酶酶切和测序鉴定,确认mcr基因片段已经正确插入到pETDuet-1载体上。
2)载体pETDuet-clpP-mcr的构建
获取来源于E.coli的ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因(clpP)(ClcP在NCBI的蛋白质编号为YP_002406280.1),是以E.coli基因组为模板,通过PCR扩增获得(引物:5'-GTAGGATCCGATGTCATACAGCGGCGAACGAG-3'和5'-CAGGAGCTCTCAATTACGATGGGTCAGAATCG-3'),具体扩增程序如下:
PCR结束后,进行1%(wt/v)琼脂糖凝胶电泳,再利用回收试剂盒(OMEGA GelExtraction Kit)回收大小为700bp左右的目的片段。
将获得的clpP基因片段和质粒pETDuet-mcr用BamHI和SacI限制性内切酶作用下于37℃水浴锅中酶切3.5h,酶切产物进行1%(wt/v)琼脂糖凝胶电泳,再利用回收试剂盒(OMEGA Gel Extraction Kit)回收酶切产物。将回收的载体与clpP基因片段按照摩尔比1:5的比例,16℃连接6h以上,连接产物转化E.coliDH5α,然后涂布在加有100μg·mL-1氨苄青霉素的LB固体平板上,PCR筛选阳性克隆。从阳性克隆中提取重组质粒pETDuet-clpP-mcr后,再通过限制性酶酶切和测序鉴定,确认clcP基因片段已经正确插入到表达载体中。
3)载体pACYCDuet-accA的构建
本实施例中,获取来源于E.coli的乙酰辅酶A羧化酶A亚基基因(accA)(AccA在NCBI的蛋白质编号为WP_000055741.1),是以E.coli基因组为模板,通过PCR扩增获得(引物:5'-CGCGGATCCGATGAGTCTGAATTTCCTTGATTTTG-3'和5'-ATGCGAGCTCTTACGCGTAACCGTAGCTCATC-3'),具体扩增程序如下:
PCR结束后,进行1%(wt/v)琼脂糖凝胶电泳,再利用回收试剂盒(OMEGA GelExtraction Kit)回收大小为1000bp左右的目的片段。
将获得的accA基因片段和质粒pACYCDuet-1用BamHI和SacI限制性内切酶在37℃水浴锅中酶切3.5h,回收酶切产物。将回收的载体与accA基因片段按照摩尔比1:5的比例,16℃连接6h以上,连接产物转化E.coliDH5α,然后涂布在加有100μg·mL-1氯霉素的LB固体平板上,PCR筛选阳性克隆。从阳性克隆中提取重组质粒pACYCDuet-accA后,再通过限制性酶酶切和测序鉴定,确认基因accA已经正确插入到表达载体中。
4)载体pACYCDuet-accAD的构建
获取来源于E.coli的乙酰辅酶A羧化酶D亚基基因(accD)(AccD在NCBI的蛋白质编号为WP_000118404.1),是以E.coli基因组为模板,通过PCR扩增获得(引物:5'-ATGCGAGCTCTTAATACGACTCACTATAGGGG-3'和5'-ACGCGTCGACTCAGGCCTCAGGTTCCTGATC-3'),具体扩增程序如下:
PCR结束后,进行1%(wt/v)琼脂糖凝胶电泳,再利用回收试剂盒(OMEGA GelExtraction Kit)回收大小为1000bp左右的目的片段。
将获得的accD基因片段和质粒pACYCDuet-accA用SacI和SalI在37℃水浴锅中酶切3.5h,回收酶切产物。将回收的载体与accD基因片段按照摩尔比1:5的比例,16℃连接6h以上,连接产物转化E.coliDH5α,然后涂布在加有100μg·mL-1氯霉素的LB固体平板上,PCR筛选阳性克隆。从阳性克隆中提取重组质粒pACYCDuet-accAD后,再通过限制性酶酶切和测序鉴定,确认基因accD片段已经正确插入到表达载体中。
5)载体pACYCDuet-accABCD的构建
获取来源于E.coli的乙酰辅酶A羧化酶BC亚基基因(accBC)(AccB在NCBI的蛋白质编号为WP_000354622.1,AccC在NCBI的蛋白质编号为WP_000884639.1),是以E.coli基因组为模板,通过PCR扩增获得(引物:5'-GGAATTCCATATGGATATTCGTAAGATTAAAAAAC-3'和5'-CCGCTCGAGTTATTTTTCCTGAAGACCGAG-3'),具体扩增程序如下:
PCR结束后,进行1%(wt/v)琼脂糖凝胶电泳,再利用回收试剂盒(OMEGA GelExtraction Kit)回收大小为目的片段。
将获得的accBC基因片段和质粒pACYCDuet-accAD用NdeI和XhoI在37℃水浴锅中酶切3.5h,回收酶切产物。将回收的载体与accBC基因片段按照摩尔比1:5的比例,16℃连接6h以上,连接产物转化E.coliDH5α,然后涂布在加有100μg·mL-1氯霉素的LB固体平板上,PCR筛选阳性克隆。从阳性克隆中提取重组质粒pACYCDuet-accABCD后,再通过限制性酶酶切和测序鉴定,确认已经将accBC片段正确插入到表达载体中。
6)转化
将pETDuet-clpP-mcr和pACYCDuet-accABCD导入E.coli BL21(DE3)合成3-HP
将实施例1中获得的载体pETDuet-clpP-mcr与实施例2中获得的载体pACYCDuet-accABCD导入E.coli BL21(DE3)感受态细胞,涂布在含有100μg·mL-1氨苄青霉素和100μg·mL-1氯霉素的LB固体平板;涂布后的平板置于37℃恒温培养箱,继续培养至长出单克隆。
实施例2发酵生产3-羟基丙酸
将获得的工程菌株单克隆在LB培养中进行活化,活化后的种子液按种子液:基本改良液体培养基体积比1:100的比例接种到含有100mL的基本改良液体培养基的250mL摇瓶中(内含100μg·mL-1氨苄青霉素和100μg·mL-1氯霉素),37℃、180rpm条件下振荡培养。OD600达到0.6左右时,温度调节至30℃,并加入0.05mM IPTG进行诱导。此后,每隔12h添加一次0.05mM的IPTG和100mg/mL氨苄青霉素及100μg·mL-1氯霉素,IPTG初次诱导后48h终止发酵。
取1mL发酵液,4℃,15000rpm离心10min,取上清,用高效液相色谱检测产物浓度,使用紫外检测器,测得3-HP产量为6.7g/L。相比对比例2,产量提高了116%。
实施例3
将获得的工程菌株单克隆在LB培养中进行活化,活化后的菌株按2:100的比例接种到含有100mL的基本改良液体培养基的250mL摇瓶中(内含100μg·mL-1氨苄青霉素和100μg·mL-1氯霉素),37℃、220rpm条件下振荡培养。OD600达到0.8左右时,温度调节至33℃,并加入0.1mM IPTG进行诱导。此后,每隔12h添加一次0.1mM的IPTG和100mg/mL氨苄青霉素及100μg·mL-1氯霉素,IPTG初次诱导后24h终止发酵。
取1mL发酵液,4℃,15000rpm离心10min,取上清,用高效液相色谱检测产物浓度,使用紫外检测器,测得3-HP产量为3.5g/L。
实施例4
将获得的工程菌株单克隆在LB培养中进行活化,活化后的种子液按种子液:基本改良液体培养基体积比1:130的比例接种到含有100mL的基本改良液体培养基的250mL摇瓶中(内含100μg·mL-1氨苄青霉素和100μg·mL-1氯霉素),35℃、180rpm条件下振荡培养。OD600达到0.6左右时,温度调节至30℃,并加入0.01mM IPTG进行诱导。此后,每隔12h添加一次0.01mM的IPTG和100mg/mL氨苄青霉素及100μg·mL-1氯霉素,IPTG初次诱导后48h终止发酵。
取1mL发酵液,4℃,15000rpm离心10min,取上清,用高效液相色谱检测产物浓度,使用紫外检测器,测得3-HP产量为5.1g/L。
对比例1对照重组菌的构建
与实施例1的区别在于:步骤6)转化:
将pETDuet-mcr和pACYCDuet-accABCD导入E.coli BL21(DE3)合成3-HP
将获得的载体pETDuet-mcr与获得的载体pACYCDuet-accABCD导入E.coli BL21(DE3)感受态细胞,涂布在含有100μg·mL-1氨苄青霉素和100μg·mL-1氯霉素的LB固体平板;涂布后的平板置于37℃恒温培养箱,继续培养至长出单克隆。
对比例2发酵生产3-羟基丙酸
将对比例1获得的工程菌株单克隆在LB培养中进行活化,活化后的种子液按种子液:基本改良液体培养基体积比1:100的比例接种到含有100mL的基本改良液体培养基的250mL摇瓶中(内含100μg·mL-1氨苄青霉素和100μg·mL-1氯霉素),37℃、180rpm条件下振荡培养。OD600达到0.6左右时,温度调节至30℃,并加入0.05mM IPTG进行诱导。此后,每隔12h添加一次0.05mM的IPTG和100mg/mL氨苄青霉素及100μg·mL-1氯霉素,IPTG初次诱导后48h终止发酵。
取1mL发酵液,4℃,15000rpm离心10min,取上清,用高效液相色谱检测产物浓度,使用紫外检测器,测得3-HP产量为3.1g/L。
虽然本发明已以较佳实施例公开如上,但其并非用以限定本发明,任何熟悉此技术的人,在不脱离本发明的精神和范围内,都可做各种的改动与修饰,因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。
SEQUENCE LISTING
<110> 中国科学院青岛生物能源与过程研究所,燃点科技(天津)有限公司
<120> 一种合成3-羟基丙酸的重组菌及其构建方法和应用
<130>
<160> 10
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 25
<212> DNA
<213> 引物1
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(25)
<400> 1
catggtacca gcggaacagg acgac 25
<210> 2
<211> 27
<212> DNA
<213> 引物2
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(27)
<400> 2
ccctcgagga atttacacgg taatcgc 27
<210> 3
<211> 32
<212> DNA
<213> 引物3
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(32)
<400> 3
gtaggatccg atgtcataca gcggcgaacg ag 32
<210> 4
<211> 32
<212> DNA
<213> 引物4
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(32)
<400> 4
caggagctct caattacgat gggtcagaat cg 32
<210> 5
<211> 35
<212> DNA
<213> 引物5
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(35)
<400> 5
cgcggatccg atgagtctga atttccttga ttttg 35
<210> 6
<211> 32
<212> DNA
<213> 引物6
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(32)
<400> 6
atgcgagctc ttacgcgtaa ccgtagctca tc 32
<210> 7
<211> 32
<212> DNA
<213> 引物7
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(32)
<400> 7
atgcgagctc ttaatacgac tcactatagg gg 32
<210> 8
<211> 31
<212> DNA
<213> 引物8
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(31)
<400> 8
acgcgtcgac tcaggcctca ggttcctgat c 31
<210> 9
<211> 35
<212> DNA
<213> 引物9
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(35)
<400> 9
ggaattccat atggatattc gtaagattaa aaaac 35
<210> 10
<211> 30
<212> DNA
<213> 引物10
<220>
<221> DNA
<222> (1)..(30)
<400> 10
ccgctcgagt tatttttcct gaagaccgag 30
Claims (10)
1.一种合成3-羟基丙酸的重组菌,其特征在于,宿主菌为大肠杆菌,表达编码ATP依赖的蛋白酶水解亚单位的基因clpP、编码乙酰辅酶A羧化酶的基因accABCD和编码丙二酸单酰辅酶A还原酶的基因mcr。
2.根据权利要求1所述的重组菌,其特征在于,所述的编码ATP依赖的蛋白酶水解亚单位的基因clpP和编码乙酰辅酶A羧化酶的基因accABCD来源于大肠杆菌,编码丙二酸单酰辅酶A还原酶的基因mcr来源于橙色绿屈挠菌。
3.根据权利要求1所述的重组菌,其特征在于,所述ATP依赖的蛋白酶水解亚单位ClcP在NCBI的Gene ID为7150967,乙酰辅酶A羧化酶亚基AccA在NCBI的Gene ID为944895,乙酰辅酶A羧化酶亚基AccB在NCBI的Gene ID为947758,乙酰辅酶A羧化酶亚基AccC在NCBI的Gene ID为947761,乙酰辅酶A羧化酶基因亚基AccD在NCBI的Gene ID为946796,丙二酸单酰辅酶A还原酶MCR在NCBI的Gene ID为5827083。
4.一种构建权利要求1所述重组菌的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)克隆ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因clpP,将所得基因与质粒pETDuet进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pETDuet-clpP;
2)克隆丙二酸单酰辅酶A还原酶基因mcr,将所得基因与步骤1)所得载体pETDuet-clpP进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pETDuet-clpP-mcr;
3)克隆乙酰辅酶A羧化酶亚基基因accA,将所得基因与质粒pACYCDuet-1进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pACYCDuet-accA;
4)克隆乙酰辅酶A羧化酶亚基基因accD,将所得基因与步骤3)所得pACYCDuett-accA进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pACYCDuet-accAD;
5)克隆乙酰辅酶A羧化酶亚基基因accBC,将所得基因与步骤4)所得pACYCDuett-accAD进行酶切、连接,并转入E.coliDH5α感受态细胞中,筛选阳性克隆,提取质粒,获得重组载体pACYCDuet-accADBC;
6)将步骤2)与步骤5)所获得的重组载体,转化到宿主Escherichia coli BL21(DE3)感受态细胞中,获得重组菌。
5.根据权利要求4所述的构建方法,其特征在于,所述ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因clpP和乙酰辅酶A羧化酶基因accABCD来源于大肠杆菌,丙二酸单酰辅酶A还原酶基因mcr来源于橙色绿屈挠菌;所述ATP依赖的蛋白酶水解亚单位基因clcP在NCBI的Gene ID为7150967,乙酰辅酶A羧化酶亚基基因accA、accB、accC和accD在NCBI的Gene ID分别为944895、947758、947761和946796,丙二酸单酰辅酶A还原酶基因mcr在NCBI的Gene ID为5827083。
6.一种应用权利要求1-3任一所述的重组菌发酵生产3-羟基丙酸的方法,其特征在于,步骤如下:
1)活化重组菌,获得种子液;
2)将步骤1)所得的种子液,与含有氨苄青霉素与氯霉素的发酵培养基,按照体积比种子液:发酵培养基=(1~2):(100~130)的比例接种后,35℃~37℃、180~220rpm、pH=7.0条件下培养至OD600在0.6~0.8,获得培养液;
3)向所得的培养液中加入诱导剂异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)至终浓度为0.01~0.1mM,然后转入30~33℃、180~220rpm、pH=7.0条件下继续培养24~48小时。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于,步骤2)所述培养条件为:37℃,180rpm。
8.根据权利要求6所述的方法,其特征在于,发酵培养基的碳源为葡萄糖,氮源为无机氮源,其他成分为无机盐。
9.根据权利要求6所述的方法,其特征在于,氮源为氯化铵和/或硫酸铵。
10.根据权利要求6~9任一所述的方法,其特征在于,发酵培养基的配方为:20g/L葡萄糖,9.8g/L三水磷酸氢二钾,2.1g/L一水合柠檬酸,0.3g/L柠檬酸铁铵,3.0g/L硫酸铵,0.5g/L硫酸镁,18mg/L二水合氯化钙,0.1%(v/v)微量元素母液;微量元素母液的配方为:6.0g/L七水合硫酸亚铁,2.0g/L硼酸,2.0g/L四水合氯化锰,0.8g/L四水合钼酸铵,0.2g/L五水合硫酸铜。
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