CN102735851A - 一种猪肺炎支原体多重组抗原elisa检测试剂盒 - Google Patents

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Abstract

本发明属于卫生检验领域,公开了一种猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,试剂盒中设有:多重组抗原包被的ELISA板,酶结合物工作液,阳性对照血清,阴性对照血清,样品稀释液,二抗稀释液,10×浓缩洗涤液,显色液A,显色液B和终止液;其中所述的多重组抗原为猪肺炎支原体蛋白P36、猪肺炎支原体蛋白P46、猪肺炎支原体蛋白P97R1和猪肺炎支原体蛋白DnaK。经检测验证,本发明试剂盒特异性强、敏感性高、具有良好的重复性和可操作性,可应用于猪肺炎支原体抗体的实验室研究和临床检测,易于大范围推广应用,具有广阔的市场前景和较大的经济、社会效益。

Description

一种猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒
技术领域
本发明涉及一种动物传染病检测用试剂盒,属于兽用生物制品领域。
背景技术
猪肺炎支原体(Mycoplasma hyopneumoniae,Mhp)是引起猪支原体肺炎(Mycoplasmal pneumoniae of swine,Mps又称猪气喘病)的主要病原,也是猪呼吸道疾病综合症的一种重要的原发性病原。Mhp主要感染猪呼吸道,本身致病力不强,临床症状主要以咳嗽和气喘为主,病变特征主要是肺的尖叶、心叶、中间叶和隔叶前缘呈“肉样”或“虾肉样”实变。Mhp感染机体后主要与呼吸道内壁的纤毛黏附,引起纤毛细胞病变和凋亡,导致纤毛断裂和脱落,引起机体发病,并且会严重影响猪的生长发育和饲料转化率,或者破坏粘膜-纤毛屏障,容易继发其他致病菌的感染(特别是对青年猪),提高致死率,因而给养猪业造成巨大的经济损失。目前猪支原体肺炎的主要防治措施是疫苗和药物,但由于缺乏有效的药物,且疫苗免疫后仅能减轻患猪临床症状的发生,降低死亡率,不能抵御机体对Mhp强毒的感染。因此,建立一种敏感、稳定的检测方法对本病的检测和监控及流行病学调查具有重要的意义。
目前,猪肺炎支原体的诊断技术主要有以下四种:临床检查、细菌学检查、分子生物学检查和血清学检查。支原体体外培养比较复杂,Mhp的分离培养具有一定的难度,并且时间较长,容易漏检,不适合于临床应用。已有研究报道,通过PCR扩增特异性片段的方法来检测,具有较好的效果,但通过呼吸道采集样品,势必会对猪只造成不同程度的影响,且PCR法有一定的技术要求,仪器设备要求较高,价格昂贵,不易于在生产实际中推广应用。血清学检测则可避免以上缺点。国内外建立了多种血清学检测方法如免疫琼扩、间接血凝等,免疫琼扩、间接血凝试验虽操作简单,但存在敏感性不高的问题。ELISA方法操作简单,敏感性高,特异性好,可作为检测的有效手段,并可在基层得到广泛应用。目前,国内外均有相关研究报道,国外虽已研制成了ELISA检测试剂盒,但检出率低,且价格较为昂贵。因此,建立一种适用的、特异性好的、稳定性高的Mhp ELISA检测手段是目前有效控制该病发生的关键。
本病全球性分布,国外远领先于国内。Mhp与其他支原体之间存在严重的交叉反应,从而给Mhp的鉴别诊断带来了困难。目前,关于Mhp诊断方法,国内报道甚少,而国外研究较多。常用的ELISA方法,但由于交叉反应等影响,未能达到理想的效果。通过研究Mhp中特异性蛋白而建立诊断方法是目前研究的焦点。由于Mhp缺乏细胞壁,所以菌体的主要抗原物质存在于荚膜和细胞膜。荚膜中含有多种粘附蛋白和粘附相关蛋白等膜分子;细胞膜成分的2/3为蛋白质,分布于细胞膜的内外层,1/3为脂类,分布于细胞膜的中层。猪肺炎支原体的抗原组成成分主要是蛋白质与脂质两类。脂质包括糖脂和脂多糖,它们都是半抗原,与蛋白质结合后具有抗原性。
国内外学者已对猪肺炎支原体多种抗原蛋白进行了研究,其中包括乳糖脱氢酶P36蛋白、膜蛋白P46、热休克蛋白DnaK以及黏附素蛋白P97。这些蛋白均特异性好,且分别是猪肺炎支原体感染早中晚期诱导产生抗体的蛋白之一,是已知抗原蛋白中用于检测用抗原较为理想的蛋白。体外表达蛋白经镍柱亲合层析纯化后作为抗原,建立间接ELISA检测方法,并优化ELISA的反应条件形成检测试剂盒,该试剂盒具有高特异性,高稳定性。试剂盒主要供实验室研究和临床诊断使用。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,为实验室和临床检测猪肺炎支原体抗体提供快速、准确、简便的检测工具。
为解决上述技术问题,本发明采用的技术方案如下:
一种猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,试剂盒中设有:多重组抗原包被的ELISA板,酶结合物工作液,阳性对照血清,阴性对照血清,样品稀释液,二抗稀释液,10×浓缩洗涤液,显色液A,显色液B和终止液;其中所述的多重组抗原为猪肺炎支原体蛋白P36、猪肺炎支原体蛋白P46、猪肺炎支原体蛋白P97R1和猪肺炎支原体蛋白DnaK。
其中,本发明所述的猪肺炎支原体蛋白P36、P46、P97R1和DnaK按如下方法获得:
1、猪肺炎支原体蛋白P36按专利ZL200910027160.4的方法获得。
2、猪肺炎支原体蛋白P46按文献【猪肺炎支原体P46基因的克隆及表达,江苏农业学报,2008,24(3):288-292】的方法获得。
3、猪肺炎支原体蛋白P97R1按专利ZL200910027159.1的方法获得。
4、猪肺炎支原体蛋白DnaK按文献【猪肺炎支原体DnaK基因的表达及ELISA方法建立,金陵科技学院学报,2011,27(4):79-84】的方法获得。
上述猪肺炎支原体蛋白P36和P97R1用分子筛层析发纯化后使用,猪肺炎支原体蛋白P46和DnaK经Ni柱纯化后使用。
其中,所述的多重组抗原包被的ELISA板按如下方法制备得到:使用pH9.6的碳酸盐缓冲液作为包被液,将猪肺炎支原体蛋白P36、P46、P97R1和DnaK作为抗原分别以0.5-2μg/ml、5-10μg/ml、5-10μg/ml和5-10μg/ml的包被浓度等体积混合,进行包板,每个样孔100μL混合抗原,置湿盒,37℃孵育1h,4℃过夜,甩干包被液,用PBST洗涤3次,3-5min/次,加入封闭液10g/L酪蛋白PBST,200μl/孔,置湿盒,37℃孵育1h,甩干,加50g/L蔗糖水溶液37℃孵育1h,甩干后抽空封装,置2-8℃保存。
其中,所述的酶结合物工作液为辣根过氧化物酶标记的羊抗猪IgG抗体。按其使用说明的推荐稀释倍数进行验证试验,按试验结果进行矫正,酶标二抗直接加在二抗稀释液中,二抗稀释液为:氯化钠8.0g,KH2PO4 0.3g,Na2HPO4.12H2O 5.33g,KCl0.2g加ddH2O至900ml,加入10g酪蛋白充分溶解后,调整pH至7.2-7.4,加入0.5mL Tween-20和0.1-0.5g硫柳汞,加ddH2O定容至1000mL。
其中,所述的阳性对照血清为猪肺炎支原体间接血凝和IDEXX公司的ELISA检测试剂盒检测为阳性的猪血清;所述的阴性对照血清为猪肺炎支原体间接血凝和IDEXX公司的ELISA检测试剂盒检测为阴性的猪血清。
其中,所述的样品稀释液和二抗稀释液按如下方法制备得到:氯化钠8.0g,KH2PO40.3g,Na2HPO4.12H2O5.33g,KCl0.2g加ddH2O至900ml,加入10g酪蛋白后充分溶解后,调整pH至7.2-7.4,加入0.5mL/L Tween-20和0.1-0.5g硫柳汞,加ddH2O定容至1000mL。
其中,所述的10×浓缩洗涤液为10×PBST,含有5mL/L Tween-20和0.1-0.5g/L硫柳汞的10×PBS。
其中,所述的显色液A按如下方法配制:Na2HPO414.6g,柠檬酸9.33g,过氧化氢脲0.52g,加ddH2O至1000ml,调至pH5.0~5.4;所述的显色液B按如下方法配制:TMB200mg,无水乙醇100ml,加ddH2O定容至1000ml。显色液A与B按如下方法配制工作液:底物液A与B液1:1(V:V)混合使用,混匀。
其中,所述的终止液为2mol/L的硫酸溶液。
有益效果:本发明具有下列突出的优点:
1)高特异性:因猪肺炎支原体与猪鼻支原体等具有免疫交叉,因此全菌特异性差,本发明使用的4个蛋白均为猪肺炎支原体的特异性蛋白,与猪鼻支原体等其他病原无交叉,保证了ELISA的高度特异性。
2)高灵敏度:猪肺炎支原体4个蛋白的组合提高了ELISA的灵敏度,其灵敏度高于IDEXX的猪肺炎支原体抗体ELISA检测试剂盒和单蛋白的ELISA。
3)简单快速:仅需要移液器和酶标仪进行加样和读数,操作仅需约2.5h。
本发明的检测体系快速、方便、高特异性、高灵敏度地检测到猪肺炎支原体抗体,不需要复杂仪器,为兽医安全卫生的检测提供了新的手段,能较好的满足目前对猪场养殖现场检测的迫切需要,易于大范围推广应用,具有广阔的市场前景和较大的经济、社会效益。
附图说明
图1P36蛋白检测不同免疫组。
图2P46检测不同免疫组。
图3P97R1检测不同免疫组。
图4DnaK检测不同免疫组。
图5多种抗原共同检测不同免疫组。
图6IDEXX试剂盒检测不同免疫组。
具体实施方式
根据下述实施例,可以更好地理解本发明。然而,本领域的技术人员容易理解,实施例所描述的具体的物料配比、工艺条件及其结果仅用于说明本发明,而不应当也不会限制权利要求书中所详细描述的本发明。
实施例1:
一种猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,试剂盒中设有:
1、多重组抗原包被的ELISA板:
猪肺炎支原体蛋白P46和DnaK按文献【猪肺炎支原体P46基因的克隆及表达,江苏农业学报,2008,24(3):288-292】和【猪肺炎支原体DnaK基因的表达及ELISA方法建立,金陵科技学院学报,2011,27(4):79-84】的方法构建猪肺炎支原体P46和DnaK的表达菌,将菌接入到LB(Amp+/Kan+)液体培养基,震荡培养至OD值为0.6-1.0时加入IPTG(终浓度为1mM)进行诱导表达5h。同时设未诱导的菌、诱导的空载体菌作为对照进行SDS-PAGE电泳。离心取上清液,用裂解缓冲液洗涤一次后,用裂解缓冲液悬浮。冻融数次后,超声波裂解置于冰浴中的样品,直至样品不再粘稠。超声时间不要太长,避免样品温度升高;若DNA没有被切断,细菌提取物就会粘稠并堵塞柱子,降低流速。14000g离心20min除去碎片,为防止堵塞树脂。采用Protino Ni-TED 2000 PackedColumns试剂盒进行亲和层析分离纯化目的蛋白,检测纯化效果。采用BCA方法检测蛋白浓度。采用不同浓度的重组抗原对ELISA酶标板进行包被,以确定最适包板的抗原浓度。
猪肺炎支原体蛋白P36和P97R1按专利ZL200910027160.4和ZL 200910027159.1的方法获得。采用DEAE纤维素等分子筛层析分离纯化目的蛋白,检测纯化效果。采用BCA方法检测蛋白浓度。采用不同浓度的重组抗原对ELISA酶标板进行包被,以确定最适包板的抗原浓度。
重组抗原的最适包板浓度,是将提纯后的重组抗原,通过10×、20×、40×、80×、160×和320倍稀释后分别包板,然后分别进行ELISA测定阴、阳性对照,用阴、阳性对照所测定的OD值得比值(P/N)和表达抗原稀释倍数划曲线图,选用曲线的拐点(P/N下降开始加快)的稀释倍数的前一个稀释倍数作为重组抗原的最适包板浓度。
所述的多重组抗原包被的ELISA板按如下方法制备得到:使用pH9.6的碳酸盐缓冲液作为包被液,将猪肺炎支原体蛋白P36、P46、P97R1和DnaK作为抗原分别以0.5-2μg/ml、5-10μg/ml、5-10μg/ml和5-10μg/ml的包被浓度等体积混合,进行包板,每个样孔100μL混合抗原,置湿盒,37℃孵育1h,4℃过夜,甩干包被液,用PBST洗涤3次,3-5min/次。加入封闭液10g/L酪蛋白PBST,200μl/孔,置湿盒,37℃孵育1h,甩干,加50g/L蔗糖水溶液37℃孵育1h,甩干后抽空封装,置2-8℃保存。
2、酶结合物工作液:
所述的酶结合物工作液为市售商品化辣根过氧化物酶标记的羊抗猪IgG。按其使用说明的推荐稀释倍数进行验证试验,按试验结果进行矫正。如推荐稀释倍数为10000-100000,则使用5000、10000、15000、20000和250000的工作浓度加入到二抗稀释液中,分别进行ELISA测定,测定阴、阳性对照血清,用阴、阳性对照血清所测定的OD值得比值(P/N)和二抗稀释倍数划曲线图,选用曲线的拐点(P/N下降开始加快)的稀释倍数作为二抗的最适使用浓度。按照以下配方配制二抗稀释液:氯化钠8.0g,KH2PO40.3g,Na2PO4·12H2O5.33g,KCl0.2g,加ddH2O至900mL,加入10g酪蛋白充分溶解后,调整至7.2-7.4,加入0.1-0.5g硫柳汞,加入0.5ml吐温20,加ddH2O定容至1000mL。
3、阳性对照血清:
临床解剖后肺脏有明显的猪肺炎支原体病变的猪,取其血清,同时通过间接血凝和IDEXX的RLISA检测试剂盒检测为阳性,用样品稀释液进行40倍稀释即为标准阳性血清。
4、阴性对照血清:
取临床通过间接血凝和IDEXX的ELISA检测试剂盒检测为阴性,同时作临床解剖后肺脏无任何猪肺炎支原体病变的猪,取其血清,用样品稀释液进行40倍稀释即为标准阴性血清。
5、样品稀释液和二抗稀释液:
所述的样品稀释液和二抗稀释液按如下方法制备得到:氯化钠8.0g,KH2PO40.3g,Na2HPO4.12H2O5.33g,KCl0.2g加ddH2O至900ml,加入10g酪蛋白后充分溶解后,调整pH至7.2-7.4,加入0.5mL/L Tween-20和0.1-0.5g硫柳汞,加ddH2O定容至1000mL。
6、10×浓缩洗涤液:
所述的10×浓缩洗涤液为10×PBST(即含有5mL/L Tween-20和0.1-0.5g/L硫柳汞的10×PBS)。
7、显色液A:
所述的显色液A按如下方法配制:Na2HPO414.6g,柠檬酸9.33g,过氧化氢脲0.52g,加ddH2O至1000ml,调至pH5.0~5.4;
8、显色液B:
所述的显色液B按如下方法配制:TMB200mg,无水乙醇100ml,加ddH2O定容至1000ml。显色液A与B按如下方法配制工作液:底物液A与B液1:1(V:V)混合使用,混匀。
9、终止液;
所述的终止液为2mol/L的硫酸溶液。
实施例2:
1试剂盒检测操作程序
实验前的准备:将10×洗涤液加入ddH2O稀释成洗涤工作液(1×)。将待检样品用稀释液进行40倍稀释。
(1)在重组抗原包被板上分别设定两个阳性对照和阴性对照孔,并加入相应的对照血清样品(已稀释),每孔100μL;
(2)将待检样品加入检测样孔中,100μL每孔,置室温60min;
(3)甩去各样孔中的液体,用1×洗涤液,每孔300μL,洗涤3-5次,甩干;
(4)加入酶标二抗工作液,100μL每孔,室温30min后重复步骤3;
(5)加入显色工作液100μL,室温避光显色10min;
(6)向每个样孔加入终止液50μL终止显色,在450nm下测定其OD450值。
2结果判断
公式:S/P=(样品OD450值-阴性对照OD450值)/(阳性对照OD450值-阴性对照OD450值)
当阳性对照OD450/阴性对照OD450≥3.0时试验成立,血清样品S/P≥0.4,则判为阳性,S/P≤0.3判为阴性,介于二者之间为可疑。
实施例3:
1血清样品:
猪鼻支原体阳性血清、猪絮状支原体阳性血清、猪圆环病毒阳性血清、副猪嗜血杆菌4型阳性血清、副猪嗜血杆菌5型阳性血清、猪肺炎支原体阳性血清、猪肺炎支原体阴性血清。
2检测方法:
按照实施例1和2进行P36、P46、P97、DnaK混合蛋白包被试剂盒的制备和检测。
3结果:
用猪鼻支原体阳性血清、猪絮状支原体阳性血清、猪圆环病毒阳性血清、副猪嗜血杆菌4型阳性血清、副猪嗜血杆菌5型阳性血清、猪肺炎支原体阳性血清、猪肺炎支原体阴性血清对本发明的试剂盒的特异性进行检测结果见表1。
表1猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒
Figure BDA00001885763800081
由表1可见,本发明的试剂盒的具有良好的特异性。
实施例4:
1血清样品:
猪场选取42头5到10日龄猪肺炎支原体抗体阴性猪进行试验,分成6组,分别免疫自自制猪支原体肺炎灭活疫苗1批,自制猪支原体肺炎灭活疫苗2批,猪支原体肺炎活疫苗(168株)1批,辉瑞猪支原体肺炎灭活疫苗,猪支原体肺炎活疫苗(168株)2批,免疫后15天、30天、45天和60天采集分离血清。疫苗免疫情况和血清采集,如表2所示。
表2实验动物分组及处理
Figure BDA00001885763800082
2检测方法:
按照技术方案进行P36、P46、P97R1、DnaK单个蛋白及混合蛋白包被试剂盒的制备和检测。同时用商品化的IDEXX试剂盒检测免疫各组抗体进行比较。各个时间点的血清均用各蛋白或试剂盒进行同时检测。
3结果:
3.1P36、P46、P97R1、DnaK单个蛋白检测免疫后各组猪抗体
由图1结果可以看出,小猪受母源抗体影响一开始保持较高的抗体滴度,当免疫30天时母源抗体滴度影响很低。之后随着时间的延长,疫苗抗体滴度开始升高,抗体滴度也达到了一个较高水平。
由图2结果可见,P46蛋白检测免疫猪血清检测结果与P36蛋白检测结果相比,大部分实验猪在免疫后30天时抗体滴度很低,45日时抗体滴度明显上升。但是60日时没有见到更高抗体的产生。同时,样本7由于受到高滴度母源抗体水平的影响。
由图3结果可见,P97R1检测不同免疫组结果显示,15天左右时还是可以检测到比较高的母源抗体水平。免疫后60天其抗体水平与45天相比有一点降低。
由图4结果可见,DnaK检测不同免疫组结果显示,免疫后抗体滴度逐渐升高。
3.2用P36、P46、P97R1、DnaK混合蛋白检测免疫后各组猪抗体
用多种蛋白对各实验组血清进行检测,结果如图5所示。用混合抗原进行检测时,没有检测到明显的母源抗体,在免疫后45左右时抗体滴度有一定增加,到60日龄时抗体滴度有了明显的上升,这符合疫苗免疫产生的规律。
3.3用IDEXX试剂盒检测免疫各组抗体
从上述结果可见,P36、P97R1能够检测出早期比较高的母源抗体水平,样品都有很高的检出量。针对P46的抗体在免疫60日龄时较45日龄时有一定程度的降低,说明疫苗刺激机体产生的针对P46的抗体高滴度维持的时间要低于其他抗原。抗原混合后包被酶标板,在60日龄时检测阳性均值要比单个单个蛋白检测结果高;同时,非特异性显色有所降低,低于单个蛋白包被。免疫45日龄到60日龄时抗体有一个明显的上升过程。DnaK蛋白检测抗体逐步升高。
单个蛋白检测结果与IDEXX检测结果相比有很大的非特异性显色。但是免疫后30天到45天抗体产生趋势是一致的。从多次动物实验结果显示,IDEXX试剂盒检测存在着低敏感性的特点。这与文献报道的结果一致。我们所用的混合蛋白在很大程度上提高了检测方法的敏感性,正确的监测到了其抗体产生的规律。
3.4所测样本阴阳性分布分析
表3疫苗免疫后不同蛋白检测抗体
Figure BDA00001885763800101
从表3结果可以看出,在免疫过的样本中,IDEXX试剂盒检测出阳性率为11.4%,混合抗原检测阳性率为30.3%。这显示,采用混合抗原能够很大程度上提高样品阳性检出率。

Claims (8)

1.一种猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,其特征在于,试剂盒中设有:多重组抗原包被的ELISA板,酶结合物工作液,阳性对照血清,阴性对照血清,样品稀释液,二抗稀释液,10×浓缩洗涤液,显色液A,显色液B和终止液;其中所述的多重组抗原为猪肺炎支原体蛋白P36、猪肺炎支原体蛋白P46、猪肺炎支原体蛋白P97R1和猪肺炎支原体蛋白DnaK。
2.根据权利要求1所述的猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,其特征在于,所述的多重组抗原包被的ELISA板按如下方法制备得到:使用pH9.6的碳酸盐缓冲液作为包被液,将猪肺炎支原体蛋白P36、P46、P97R1和DnaK作为抗原分别以0.5-2μg/ml、5-10μg/ml、5-10μg/ml和5-10μg/ml的包被浓度等体积混合,进行包板,每个样孔100μL混合抗原,置湿盒,37℃孵育1h,4℃过夜,甩干包被液,用PBST洗涤3次,3-5min/次,加入封闭液10g/L酪蛋白PBS,200μl/孔,置湿盒,37℃孵育1h,甩干,加50g/L蔗糖水溶液37℃孵育1h,甩干后抽空封装,置2-8℃保存。
3.根据权利要求1所述的猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,其特征在于,所述的酶结合物工作液为辣根过氧化物酶标记的羊抗猪IgG抗体。
4.根据权利要求1所述的猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,其特征在于,所述的阳性对照血清为猪肺炎支原体间接血凝和IDEXX公司的ELISA检测试剂盒检测为阳性的猪血清;所述的阴性对照血清为猪肺炎支原体间接血凝和IDEXX公司的ELISA检测试剂盒检测为阴性的猪血清。
5.根据权利要求1所述的猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,其特征在于,所述的样品稀释液和二抗稀释液均按如下方法制备得到:氯化钠8.0g,KH2PO4 0.3g,Na2HPO4.12H2O 5.33g,KCl 0.2g加ddH2O至900ml,加入10g酪蛋白后充分溶解后,调整pH至7.2-7.4,加入0.5mL Tween-20和0.1-0.5g硫柳汞,加ddH2O定容至1000mL。
6.根据权利要求1所述的猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,其特征在于,所述的10×浓缩洗涤液为10×PBST,即含有5mL/L Tween-20和0.1-0.5g/L硫柳汞的10×PBS。
7.根据权利要求1所述的猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,其特征在于,所述的显色液A按如下方法配制:Na2HPO4 14.6g,柠檬酸9.33g,过氧化氢脲0.52g,加ddH2O至1000ml,调至pH5.0~5.4;所述的显色液B按如下方法配制:TMB200mg,无水乙醇100ml,加ddH2O定容至1000ml;显色液A与B按如下方法配制工作液:底物液A与B液1:1(V:V)混合使用,混匀。
8.根据权利要求1所述的猪肺炎支原体多重组抗原ELISA检测试剂盒,其特征在于,所述的终止液为2mol/L的硫酸溶液。
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Cited By (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102928585A (zh) * 2012-10-31 2013-02-13 广东现代农业集团研究院有限公司 一种猪肺炎支原抗体检测试剂盒及其制备方法
CN103278627A (zh) * 2013-05-22 2013-09-04 扬州大学 一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原elisa试剂盒
CN104062439A (zh) * 2014-07-10 2014-09-24 中国农业科学院兰州兽医研究所 一种牛支原体抗体检测试剂及其制备方法
CN104597249A (zh) * 2015-01-15 2015-05-06 贵州大学 一种基于Mo Hsp70蛋白的间接ELISA试剂盒及使用方法
CN104730256A (zh) * 2015-04-03 2015-06-24 江苏省农业科学院 用于检测支原体抗体的组合物及其应用
CN106093384A (zh) * 2016-08-08 2016-11-09 河南省农业科学院畜牧兽医研究所 一种含有猪传染性胸膜肺炎放线杆菌抗体和猪肺炎支原体抗体的elisa检测试剂盒及其制备方法
CN106290887A (zh) * 2016-08-01 2017-01-04 瑞普(保定)生物药业有限公司 一种猪肺炎支原体活菌滴度测定方法
CN108896380A (zh) * 2018-05-21 2018-11-27 苏州佑君环境科技有限公司 一种化学发光仪在机用血清稀释液及其制备方法
CN109207502A (zh) * 2018-10-10 2019-01-15 杭州洪桥中科基因技术有限公司 猪支原体肺炎和猪圆环病毒2型重组蛋白及制备二联疫苗
CN110045117A (zh) * 2019-05-06 2019-07-23 江苏南农高科技股份有限公司 猪肺炎支原体固相竞争elisa试剂盒及其制备方法和应用
CN110133284A (zh) * 2019-05-07 2019-08-16 西南大学 蛋白抗原及其编码基因和它们在鉴别猪肺炎支原体灭活疫苗抗体和自然感染抗体中的应用
CN111122860A (zh) * 2019-12-31 2020-05-08 南京拂晓生物科技有限公司 一种检测肺炎衣原体抗体间接elisa检测试剂盒及检测方法
CN113092783A (zh) * 2021-04-06 2021-07-09 中农华大(武汉)检测科技有限公司 一种猪肺炎支原体抗体检测方法及应用
CN113588946A (zh) * 2021-07-26 2021-11-02 山东省滨州畜牧兽医研究院 一种猪肺炎支原体抗体间接elisa检测用的重组蛋白和方法
CN115433737A (zh) * 2022-08-23 2022-12-06 上海市农业科学院 一种梅山猪气喘病间接elisa检测方法

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040091901A1 (en) * 2002-06-28 2004-05-13 Minion F. Chris Immunogenic Mycoplasma hyopneumoniae polypeptides
CN1673745A (zh) * 2003-12-20 2005-09-28 苏冬梅 酶联免疫吸附elisa同步快速测定多项免疫指标的方法
CN1700007A (zh) * 2005-05-10 2005-11-23 安徽医科大学 用于血吸虫病检测的组合检测试剂及检测方法
CN1869701A (zh) * 2006-06-27 2006-11-29 厦门大学 一种联合检测乙型肝炎病毒前s1抗原和核心抗原的方法及诊断试剂盒
CN1916633A (zh) * 2006-09-08 2007-02-21 中国人民解放军第三军医大学 检测梅毒螺旋体的方法及试剂盒
CN101236206A (zh) * 2008-01-17 2008-08-06 中国兽医药品监察所 一种猪肺炎支原体重组抗原elisa检测试剂盒
CN101448521A (zh) * 2006-03-03 2009-06-03 梅瑞尔有限公司 猪肺炎支原体疫苗
CN101477119A (zh) * 2008-12-18 2009-07-08 孙家隆 同时分析甲萘威和甲基对硫磷的酶联免疫吸附测定试剂盒
CN101545904A (zh) * 2009-03-06 2009-09-30 江苏省农业科学院 抗猪肺炎支原体SIgA间接ELISA检测方法

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040091901A1 (en) * 2002-06-28 2004-05-13 Minion F. Chris Immunogenic Mycoplasma hyopneumoniae polypeptides
CN1673745A (zh) * 2003-12-20 2005-09-28 苏冬梅 酶联免疫吸附elisa同步快速测定多项免疫指标的方法
CN1700007A (zh) * 2005-05-10 2005-11-23 安徽医科大学 用于血吸虫病检测的组合检测试剂及检测方法
CN101448521A (zh) * 2006-03-03 2009-06-03 梅瑞尔有限公司 猪肺炎支原体疫苗
CN1869701A (zh) * 2006-06-27 2006-11-29 厦门大学 一种联合检测乙型肝炎病毒前s1抗原和核心抗原的方法及诊断试剂盒
CN1916633A (zh) * 2006-09-08 2007-02-21 中国人民解放军第三军医大学 检测梅毒螺旋体的方法及试剂盒
CN101236206A (zh) * 2008-01-17 2008-08-06 中国兽医药品监察所 一种猪肺炎支原体重组抗原elisa检测试剂盒
CN101477119A (zh) * 2008-12-18 2009-07-08 孙家隆 同时分析甲萘威和甲基对硫磷的酶联免疫吸附测定试剂盒
CN101545904A (zh) * 2009-03-06 2009-09-30 江苏省农业科学院 抗猪肺炎支原体SIgA间接ELISA检测方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
刘茂军等: "检测猪肺炎支原体抗体间接ELISA方法的建立", 《江苏农业学报》, vol. 23, no. 5, 31 October 2007 (2007-10-31) *
刘茂军等: "猪肺炎支原体DnaK基因的表达及ELISA方法建立", 《金陵科技学院学报》, vol. 27, no. 4, 31 December 2011 (2011-12-31) *
刘茂军等: "猪肺炎支原体P97基因抗原决定簇R1区的克隆与表达", 《江苏农业学报》, vol. 21, no. 3, 30 September 2005 (2005-09-30) *
祝永琴等: "猪肺炎支原体 P36蛋白间接ELISA检测方法的建立", 《江苏农业学报》, vol. 26, no. 5, 31 October 2010 (2010-10-31) *

Cited By (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102928585A (zh) * 2012-10-31 2013-02-13 广东现代农业集团研究院有限公司 一种猪肺炎支原抗体检测试剂盒及其制备方法
CN102928585B (zh) * 2012-10-31 2014-07-30 广东海大畜牧兽医研究院有限公司 一种猪肺炎支原抗体检测试剂盒及其制备方法
CN103278627A (zh) * 2013-05-22 2013-09-04 扬州大学 一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原elisa试剂盒
CN103278627B (zh) * 2013-05-22 2015-09-02 扬州大学 一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原elisa试剂盒
CN104062439A (zh) * 2014-07-10 2014-09-24 中国农业科学院兰州兽医研究所 一种牛支原体抗体检测试剂及其制备方法
CN104597249A (zh) * 2015-01-15 2015-05-06 贵州大学 一种基于Mo Hsp70蛋白的间接ELISA试剂盒及使用方法
CN104730256A (zh) * 2015-04-03 2015-06-24 江苏省农业科学院 用于检测支原体抗体的组合物及其应用
CN106290887A (zh) * 2016-08-01 2017-01-04 瑞普(保定)生物药业有限公司 一种猪肺炎支原体活菌滴度测定方法
CN106093384A (zh) * 2016-08-08 2016-11-09 河南省农业科学院畜牧兽医研究所 一种含有猪传染性胸膜肺炎放线杆菌抗体和猪肺炎支原体抗体的elisa检测试剂盒及其制备方法
CN108896380A (zh) * 2018-05-21 2018-11-27 苏州佑君环境科技有限公司 一种化学发光仪在机用血清稀释液及其制备方法
CN109207502A (zh) * 2018-10-10 2019-01-15 杭州洪桥中科基因技术有限公司 猪支原体肺炎和猪圆环病毒2型重组蛋白及制备二联疫苗
CN110045117A (zh) * 2019-05-06 2019-07-23 江苏南农高科技股份有限公司 猪肺炎支原体固相竞争elisa试剂盒及其制备方法和应用
CN110133284A (zh) * 2019-05-07 2019-08-16 西南大学 蛋白抗原及其编码基因和它们在鉴别猪肺炎支原体灭活疫苗抗体和自然感染抗体中的应用
CN111122860A (zh) * 2019-12-31 2020-05-08 南京拂晓生物科技有限公司 一种检测肺炎衣原体抗体间接elisa检测试剂盒及检测方法
CN113092783A (zh) * 2021-04-06 2021-07-09 中农华大(武汉)检测科技有限公司 一种猪肺炎支原体抗体检测方法及应用
CN113588946A (zh) * 2021-07-26 2021-11-02 山东省滨州畜牧兽医研究院 一种猪肺炎支原体抗体间接elisa检测用的重组蛋白和方法
CN115433737A (zh) * 2022-08-23 2022-12-06 上海市农业科学院 一种梅山猪气喘病间接elisa检测方法

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