CN103278627A - 一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原elisa试剂盒 - Google Patents
一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原elisa试剂盒 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103278627A CN103278627A CN2013101939760A CN201310193976A CN103278627A CN 103278627 A CN103278627 A CN 103278627A CN 2013101939760 A CN2013101939760 A CN 2013101939760A CN 201310193976 A CN201310193976 A CN 201310193976A CN 103278627 A CN103278627 A CN 103278627A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- antigen
- elisa
- asfv
- antibody
- fever virus
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
本发明的一种检测非洲猪瘟病毒(ASFV)抗体的多抗原酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒属于生物技术和动物传染病诊断研究领域,包括三种ASFV重组抗原表达与纯化、ASFV抗体阳性和阴性对照血清制备、最佳包被抗原组合及浓度确定、多抗原ELISA(MA-ELISA)反应参数优化、ASFV抗体阴性血清临界值确定以及MA-ELISA检测人工感染和田间血清样品的灵敏性、特异性、可重复性测定。通过大量已知血清样品检测证明,本发明的MA-ELISA检测血清ASFV抗体的灵敏性、特异性和可重复性显著高于世界动物卫生组织推荐的ELISA方法和国外同类试剂盒,可用于ASFV血清学诊断、流行病学调查和生猪进出口检疫检验。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术和动物传染病诊断研究领域。
背景技术
非洲猪瘟(ASF)是猪的一种高度致死性传染病,该病一直在许多非洲国家流行,目前已传播到格鲁齐亚、亚美尼亚、阿塞拜疆和俄罗斯等邻国,对我国养猪业的威胁越来越大。目前ASF无疫苗用于防疫,因此快速、准确诊断对防止该病传入及其控制十分重要。世界动物卫生组织(OIE)最近推荐的ASF诊断技术包括病原鉴定和血清学试验。
在病原鉴定技术中,血吸附试验是经典的ASF鉴定方法之一,敏感性较高,但需要临时制备和培养猪骨髓细胞,不仅费时、操作繁琐,而且不能用于非血吸附性毒株的诊断;检测ASFV抗原的荧光抗体试验可用于可疑病猪组织和白细胞样品的检测,不仅适用于非血吸附性毒株的鉴定,而且能与其他病毒感染进行鉴别诊断,但需要制备冰冻切片、技术难度较大,而且仅能在专门的ASF诊断实验室进行;聚合酶链式反应(PCR)和实时定量PCR具有快速、灵敏等优点,还适合腐败样品的病毒检测,已成为ASF诊断技术的发展方向,但需要较昂贵的仪器设备和防污染措施,有时检测结果需用序列测定等方法验证;敏感猪接种试验也是经典的ASF诊断技术之一,但需时较长、成本较高,而且仅能在专门的动物设施内进行,现已不再推荐使用。
在血清学检测技术中,ASFV感染猪在感染后7-10天即可产生特异抗体,并能维持很长时间,所以可用间接免疫荧光和酶联免疫吸附法(ELISA)等方法检测。其中,ELISA是OIE规定的国际贸易检验方法,但检测抗原需从病毒感染细胞制备,病毒培养有导致病毒扩散风险,诊断可靠性也有待提高,结果需用免疫印迹(Western-blotting)等方法验证;为了解决这些问题,国内外都在进行重组抗原ELISA的尝试,法国和西班牙已有商品化试剂盒供应,但因重组抗原制备难度较大,不仅试剂盒供应有限、价格昂贵,而且不同地区病毒株的检测结果有待进一步验证。
本发明用重组大肠杆菌表达与组氨酸标签融合的三种ASFV重组抗原,重组抗原不仅可用成本较低、可重复使用的镍亲和柱纯化,解决了重组抗原的批量生产问题;通过优化组合,将三种重组抗原以最佳比例混合,建立的检测ASFV抗体的多抗原ELISA(MA-ELISA)试剂盒,其特异性显著高于OIE推荐ELISA和进口同类试剂盒,而且扩大了毒株检测范围;以ProClin300作为防腐剂,使酶标板可在普通冰箱中稳定保存。该试剂盒不仅可用于ASFV血清学诊断和流行病学调查,而且可用于生猪的国际贸易检疫检验。
发明内容
本发明的目的在于:建立特异性强、敏感性高、操作简单、成本低廉、适合非疫区国家(地区)使用的ASFV抗体检测MA-ELISA试剂盒,用于ASFV血清学诊断、流行病学调查和生猪国际贸易检疫检验。
本发明一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原ELISA试剂盒,包括有抗原包被的酶标板、酶标二抗、阳性对照血清、阴性对照血清、稀释液、10×洗涤液、OPD与过氧化脲片剂、终止液。
上述试剂盒中,所述包被酶标板的抗原为重组大肠杆菌中表达和纯化的ASFV pB602L、pK205R和p54重组蛋白。
所述酶标二抗为商品化的辣根过氧化物酶标记的羊抗猪IgG抗体,经方阵实验校正后按10000倍稀释,稀释液为:NaCl8g,KCl0.2g,Na2HPO41.44g,KH2PO40.24g,溶于800mL蒸馏水,调pH7.4,加5mL Tween-20、50mg脱脂乳定容至1L,0.45μm滤膜过滤除菌后,加入ProClin300至终浓度0.01%。
所使用的阳性对照血清为重组蛋白pB602L、pK205R和p54分别免疫猪获得的血清,再等体积混合,加入0.01%硫柳汞防腐;所使用的阴性对照血清为非免疫健康猪血清,加入0.01%硫柳汞防腐。
所述10×洗涤液为:NaCl80g,KCl2g,Na2HPO414.4g,KH2PO42.4g,溶于800mL蒸馏水,调pH7.4,加5mL Tween-20和1mL ProClin300,定容至1L。使用时用去离子水稀释成1×洗涤液。
所述OPD与过氧化脲片剂分别标记为A和B,使用时各取A、B一片,加入20mL的去离子水,溶解后作为底物溶液。
所述终止液为1M的H2SO4。
本发明所述试剂盒检测程序为:
(1)从试剂盒中取出酶标板,平衡至室温(16-26℃),避免阳光直射。
(2)用稀释液稀释待检血清、阳性和阴性对照血清,稀释倍数为200倍,再分别加样至对应的检测孔和本底对照孔(表1),100μL/孔,37℃作用1h;
表1检测加样孔示意
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | |
A | C+ | C+ | S7 | S7 | S15 | S15 | S23 | S23 | S31 | S31 | S39 | S39 |
B | C- | C- | S8 | S8 | S16 | S16 | S24 | S24 | S32 | S32 | S40 | S40 |
C | S1 | S1 | S9 | S9 | S17 | S17 | S25 | S25 | S33 | S33 | S41 | S41 |
D | S2 | S2 | S10 | S10 | S18 | S18 | S26 | S26 | S34 | S34 | S42 | S42 |
E | S3 | S3 | S11 | S11 | S19 | S19 | S27 | S27 | S35 | S35 | S43 | S43 |
F | S4 | S4 | S12 | S12 | S20 | S20 | S28 | S28 | S36 | S36 | S44 | S44 |
G | S5 | S5 | S13 | S13 | S21 | S21 | S29 | S29 | S37 | S37 | S45 | S45 |
H | S6 | S7 | S14 | S14 | S22 | S22 | S30 | S30 | S38 | S38 | S46 | S46 |
注:C+,表示阳性对照血清;C-,表示阴性对照血清;S,表示待检血清样品。
(3)洗涤液洗涤酶标板,200μL/孔×4次,3min/次,吸水纸上拍干孔中液体;
(4)加入稀释的酶标二抗,37℃作用1h;
(5)洗涤液洗涤酶标板,200μL/孔×4次,3min/次,吸水纸上拍干孔中液体;
(6)加入新鲜配制的底物溶液,100μL/孔,室温下避光静置15min;
(7)加入终止液终止反应,50μL/孔;
(8)酶标仪读取每孔490nm(OD490)波长吸光值,每份血清样品OD490净值=检测孔OD490值-本底对照孔OD490值;
(9)在符合阳性对照血清OD490净值>1.5,阴性对照血清OD490净值≤0.1的前提条件下,待检血清样品OD490净值>阴性血清临界值,判定为ASFV抗体阳性;待检血清样品OD490净值≤阴性血清临界值,判定为ASFV抗体阴性;阴性血清临界值为0.163。
本发明的技术方案的建立,包括以下步骤:三种ASFV重组抗原表达与纯化、ASFV抗体阳性和阴性对照血清制备、MA-ELISA反应条件优化以及检测人工感染和田间血清样品的灵敏性、特异性测定。
1、重组抗原表达与纯化:将ASFV pB602L、pK205R和p54基因分别插入原核表达载体pET-30a(+),转化大肠杆菌BL21(DE3),用异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷诱导重组蛋白表达,按照Ni-NTA琼脂糖层析柱说明书纯化重组蛋白,用ASFV自然感染康复猪血清对重组蛋白进行Westernblot验证,证实表达重组蛋白表达正确,纯化效果好。
2、阳性和阴性对照血清制备:用加弗氏佐剂的重组蛋白pB602L、pK205R和p54免疫猪,采集猪血清,用重组抗原包被酶标板,用常规间接ELISA测定针对3种抗原的抗体效价均≥105,三种抗体等体积混合后,加入0.01%硫柳汞防腐,作为阳性对照血清-20℃保存;采集正常健康猪血清,加入0.01%硫柳汞防腐,作为阴性对照血清,-20℃保存。
3、ELISA检测板的抗原包被
将重组蛋白pB602L、p54及pK205R溶液10000rpm离心3min,吸取上清紫外分光光度计定量其浓度,用0.05mol/L碳酸盐缓冲液(pH9.6)将三种蛋白稀释成2.0μg/mL、0.5μg/mL、2.0μg/mL混合溶液,加入酶标板横排奇数孔(检测孔),横排偶数孔加包被液为本底对照孔,100μL/孔,37℃作用2h;用洗涤液(NaCl8g,KCl0.2g,Na2HPO41.44g,KH2PO40.24g,溶于800mL蒸馏水,调pH7.4,加5mL Tween-20定容至1L,再加入ProClin300至终浓度0.01%)洗板,200μL/孔×2次;加入封闭液,200μL/孔,37℃作用1h;洗涤液洗板,200μL/孔×2次;吸水纸上拍干孔中的液体。
4、间接ELISA操作及结果判定
加入封闭液200倍稀释待检血清、抗体阳性和阴性对照血清于检测孔和本底对照孔,100μL/孔,37℃作用1h,洗涤液洗板,200μL/孔×4次,吸水纸上拍干孔中的液体;加入稀释液(NaCl8g,KCl0.2g,Na2HPO41.44g,0.24g,溶于800mL蒸馏水,调pH7.4,加5mLTween-20、50mg脱脂乳定容至1L,再加入ProClin300至终浓度0.01%)稀释酶标二抗(Earthox公司),37℃作用1h,同前洗板;加入新鲜配制底物溶液(按SIGMAFASTTM OPD说明书配制),100μL/孔,室温避光静置15min;加入终止液,50μL/孔,在酶标仪读取各孔OD490值,血清OD490净值=检测孔OD490值-本底对照孔OD490值;在符合阳性对照血清OD490净值>1.5,阴性对照血清OD490净值≤0.1的前提条件下,以OD490=0.163为临界值,将OD490净值>0.163的血清样品判定为抗体阳性,≤0.163的判定为抗体阴性。
与OIE推荐ELISA和进口同类试剂盒相比,本发明建立的ASFV抗体检测MA-ELISA试剂盒具有特异性强、敏感性高、操作简单和成本低廉等优点,适合包括我国在内的ASF非疫区国家(地区)使用,不仅可用于ASFV血清学诊断、流行病学调查和生猪国际贸易检疫检验,而且具有较强的产业化开发前景和国际市场竞争优势。
附图说明
图1纯化ASFV重组蛋白的Western-blotting鉴定
1.蛋白分子质量标准SM0441,2.重组蛋白pB602L,3.重组蛋白p54,4.重组蛋白pK205R。
具体实施方式
生物材料来源:
pGEX-4T-1-B602L:含E70株ASFV B602L基因,由葡萄牙Gulbenkian de Cie^ncia研究所RM Parkhouse博士惠赠(Reis,A.L.,R.M.Parkhouse,A.R.Penedos,C.Martins,and A.Leitao.2007.Systematic analysis of longitudinal serological responses of pigs infected experimentally withAfrican swine fever virus.J.Gen.Virol.88:2426-2434.);
pGEX-4T-1-E183L:含E70株ASFV E183L(p54)基因,由葡萄牙Gulbenkian de Cie^ncia研究所RM Parkhouse博士惠赠(Reis,A.L.,R.M.Parkhouse,A.R.Penedos,C.Martins,and A.Leitao.2007.Systematic analysis of longitudinal serological responses of pigs infectedexperimentally with African swine fever virus.J.Gen.Virol.88:2426-2434.);
pGEX-4T-1-K205R:含E70株ASFV K205R基因,由葡萄牙Gulbenkian de Cie^ncia研究所RM Parkhouse博士惠赠(Reis,A.L.,R.M.Parkhouse,A.R.Penedos,C.Martins,and A.Leitao.2007.Systematic analysis of longitudinal serological responses of pigs infectedexperimentally with African swine fever virus.J.Gen.Virol.88:2426-2434.);
pET30a(+):大肠杆菌表达载体,从美国Novogen公司引进(Cat No.69909.3);
BL21(DE3)大肠杆菌(E.coli):从海基生(HaiGene)物科技有限公司引进(Cat No,K10127);
检测的ASFV抗体阳性、阴性猪血清:由Pirbright研究所OIE ASF参考实验室LK Linda博士提供。
具体操作步骤如下:
1.重组大肠杆菌构建
用限制性内切酶EcoR Ⅰ和Xho Ⅰ双酶切pGEX-4T-1-K205R,琼脂糖凝胶电泳分离后,用DNA凝胶回收试剂盒(Qiagen公司)回收618bp DNA片段,与同酶消化pET-30a(+)载体连接,获得重组质粒pET-K205R,转化BL21(DE3)E.coli感受态细胞,获得pET-K205R重组菌。
以pGEX-4T-1-E183L为模板,用p54基因(GenBank ACCESSION:FJ174389)引物PCR扩增不包括N端50个氨基酸的p54编码序列。
正向引物:5-TAGAATTCGACCCGTCTTCAAGAAAG-3(SEQ ID NO.1)
反向引物:5-TACTCGAGTTACAAGGAGTTTTCTAGG-3(SEQ ID NO.2)
扩增产物用EcoR Ⅰ、Xho Ⅰ酶切后,与同酶消化的pET-30a(+)载体连接,获得重组质粒pET-E183L,转化E.coli BL21(DE3)感受态细胞,获得pET-E183L重组菌。
以pGEX-4T-1-B602L为模板,用B602L基因(GenBank Accession:U18466)引物进行PCR扩增。
正向引物:5-CTGAATTCATGGCAGAATTTAATATTGATGAGCTTC-3(SEQ ID NO.3)
反向引物:5-CTGCGGCCGCTTACAATTCTGCTTTTGTATATAAA ATT-3(SEQ ID NO.4)
扩增产物用EcoR Ⅰ、Not Ⅰ酶切后,与同酶消化pET-30a(+)载体连接,用重组质粒pET-B602L转化E.coli BL21(DE3)感受态细胞,获得pET-B602L重组菌。
2.重组抗原表达与纯化
按1∶100体积比,将pET-K205R、pET-E183L和pET-B602L重组菌培养物接种含50μg/mL卡那霉素的2×YT培养基(参考文献1),37℃培养至OD600=0.8,加入1mmol/L IPTG,37℃诱导4h;8000rpm离心2min,收集菌体用PBS(pH7.6)离心洗涤2次;沉淀菌体用超声波仪裂解(功率50W,10s/次,共10min),4℃、12000rpm离20min,收集上清液或沉淀;按照Ni-NTA琼脂糖柱(Qiagen,Cat No:30210)说明书纯化重组蛋白pK205R(变性条件)、pB602L(非变性条件)和p54(非变性条件);取三种重组蛋白各5μg,12%聚丙烯酰胺凝胶电泳分离,用蛋白转印仪(BioRad公司)转印Protran BA83硝酸纤维素膜(Whatman公司),用ASFV抗体阳性血清进行Western-blotting验证(图1)。
3.ASFV抗体阳性与阴性对照血清制备
用0.01M PBS(pH7.6)将纯化的重组蛋白pB602L、p54和pK205R浓度调整为1mg/mL,分别与等体积弗氏完全佐剂(Sigma公司)混合,超声波仪(Bandelin公司)充分乳化(功率30W,5min);每重组抗原肌肉注射2月龄姜曲海猪(江苏省畜牧兽医技术学院种猪场提供)2头,2mL(1mg蛋白)/头;第一次免疫后10天,用弗氏不完全佐剂混合的同样剂量抗原加强免疫1次;10天后再用同样剂量的重组抗原加强免疫1次;在第三次免疫后第7天,无菌采集猪血分离血清;按照常规间接ELISA方法,分别以5μg/mL重组蛋白pB602L、p54或pK205R包被酶标板,与连续10倍稀释重组蛋白免疫猪血清反应,测得三种重组蛋白免疫猪血清的ELISA抗体效价均大于105;将分三种重组蛋白免疫猪血清等体积混合,加入0.01%硫柳汞,分装后-20℃保存,作为ASFV抗体检测阳性对照血清;从2头2月龄非免疫姜曲海猪(江苏省畜牧兽医技术学院种猪场提供)采集血液分离血清,用上述ELISA测定ASFV抗体为阴性,加入0.01%硫柳汞,分装后-20℃保存,作为ASFV抗体检测阴性对照血清。
4.ELISA操作程序与结果判定
(1)基本操作程序
用0.05mol/L碳酸盐缓冲液(pH9.6)稀释的重组抗原包被96孔酶标板(NUNC公司)横排奇数各孔,横排偶数孔加碳酸盐缓冲液作为本底对照孔,100μL/孔,37℃作用2h,甩去抗原包被液,用洗涤液(含0.01ProClin300和0.05%Tween-20的0.01mol/L PBS,pH7.4)洗板2次,200μL/孔;加入封闭液,200μL/孔,37℃作用1h,用PBST洗板2次,吸水纸上拍干孔中液体;加入稀释液(NaCl8g,KCl0.2g,Na2HPO41.44g,0.24g,溶于800mL蒸馏水,调pH7.4,加5mL Tween-20、50mg脱脂乳定容至1L,再加入ProClin300至终浓度0.01%)200倍稀释的血清,100μL/孔,37℃作用1h,用洗涤液洗板4次,吸水纸上拍干孔中液体;加入稀释液稀释的酶标二抗(辣根过氧化物酶标记羊抗猪IgG,Earthox公司),37℃作用1h,用洗涤液洗板4次,吸水纸上拍干孔中液体;按SIGMAFASTTM OPD(Sigma公司)说明书新鲜配制底物溶液,加入酶标板各孔,100μL/孔,室温下避光静置15min;加入1mol/L H2SO4终止反应,50μL/孔;用酶标仪读取各孔OD490值,将检测孔OD490值-本底对照孔OD490值确定为每份血清样品的OD490净值,将OD490净值□阴性血清临界值的血清样品判定为ASFV抗体阳性,将OD490净值≤阴性临界值的血清样品判为ASFV抗体阴性。
(2)单抗原ELISA
分别以梯度稀释的ASFV重组蛋白pB602R、p54和pK205R为包被抗原,与1∶200稀释ASFV人工感染后第6、13、27天猪血清进行间接ELISA,同时设抗体阴性血清对照,以辣根过氧化物酶标记羊抗猪IgG为二抗,测定人工感染猪血清病毒抗体的产生时间。结果显示:ASFV重组蛋白pB602R、p54和pK205R最佳包被浓度为2μg/mL、0.5μg/mL、2μg/mL,在病毒感染后第6天,pB602R抗原可检测到低水平病毒抗体;感染后第13天,pB602R、p54和pK205R抗原均可检测到病毒抗体,其中p54抗原检测的抗体滴度最高;感染后第27天,pB602R、p54和pK205R检测抗体滴度继续上升,其中pK205R检测的抗体滴度最高。
(3)MA-ELISA的建立
①包被抗原及酶标抗体浓度确定:将pB602L、pK205R和p54抗原以4:1:4混合,先与1∶200稀释ASFV抗体阳性及阴性血清反应,再与不同倍数稀释的酶标抗体反应,以样品孔OD490净值/阴性孔OD490净值为判断标准(最大值所对应的抗原包被浓度为最佳浓度),测得混合抗原最佳包被浓度为4.5μg/mL,酶标抗体使用浓度为1:10000。
②封闭液及抗体稀释液的选择:分别以含3%冷水鱼皮明胶、1%牛血清白蛋白、5%脱脂乳粉的稀释液作为封闭液和抗体稀释液,用上述混合抗原包被板分别与1∶200ASFV抗体阳性和阴性血清反应,结果显示:用含5%脱脂乳粉PBST作为封闭液和抗体稀释液,测得抗体阳性孔OD490净值/阴性孔OD490净值最大,表明以5%脱脂乳作为封闭液和抗体稀释液效果最佳。
③阳性、阴性对照血清ELISA定量:按照ELISA检测程序,对制备的阳性、阴性血清分别进行10次重复检测,以阳性对照血清OD490净值的平均值-2×SD(标准差)公式,计算阳性对照血清OD490净值的下限为1.5;以阴性对照血清OD490净值的平均值+2×SD(标准差)公式,计算阴性对照血清OD490净值的上限为0.1。从而确定阳性对照血清OD490净值>1.5,阴性对照血清OD490净值≤0.1的前提条件下,MA-ELISA体系有效。
④ASFV抗体阴性血清临界值确定:先以Western-blot试验测得ASF V抗体阴性和阳性血清各101份和113份,然后用MA-ELISA检测,用Medcalc软件(Version11.4.2)对阴、阳性血清OD490净值进行ROC分析,结果显示ASFV抗体阴性血清的OD490临界值为0.163(表2)。
表2Medcalc Version11.4.2ROC分析结果
Criterion | Sensitivity | 95%CI | Specificity | 95%CI |
>=0 | 100.00 | 96.8-100.0 | 0.00 | 0.0-3.6 |
>0.103 | 100.00 | 96.8-100.0 | 77.23 | 67.8-85.0 |
>0.104 | 99.12 | 95.2-100.0 | 77.23 | 67.8-85.0 |
>0.144 | 99.12 | 95.2-100.0 | 90.10 | 82.5-95.1 |
>0.148 | 98.23 | 93.8-99.8 | 90.10 | 82.5-95.1 |
>0.163* | 98.23 | 93.8-99.8 | 92.08 | 85.0-96.5 |
>0.204 | 92.92 | 86.5-96.9 | 92.08 | 85.0-96.5 |
>0.213 | 92.92 | 86.5-96.9 | 93.07 | 86.2-97.2 |
>0.238 | 91.15 | 84.3-95.7 | 93.07 | 86.2-97.2 |
>0.363 | 91.15 | 84.3-95.7 | 99.01 | 94.6-100.0 |
>0.583 | 84.07 | 76.0-90.3 | 99.01 | 94.6-100.0 |
>0.589 | 84.07 | 76.0-90.3 | 100.00 | 96.4-100.0 |
>2.218 | 0.00 | 0.0-3.2 | 100.00 | 96.4-100.0 |
5.MA-ELISA试剂盒批内重复性试验
选取3块同一批次混合抗原包被的酶标板,在相同试验条件下分别对20份阴性、10份弱阳性和10份强阳性血清进行MA-ELISA平行试验,结果显示混合抗原包被酶标板的批内变异系数小于7.8%(表3)。
表3批内重复性试验结果
6.MA-ELISA试剂盒批间重复性试验
选取3块不同批次包被的微量板,室温平衡后在相同试验条件下,分别对20份阴性、10份弱阳性和10份强阳性血清进行MA-ELISA平行试验,结果显示混合抗原包被酶标板的批间变异系数小于8%(表4)。
表4批间重复性试验结果
7.MA-ELISA试剂盒灵敏性与特异性试验
选取经Western-blotting验证的ASFV抗体阴性血清74份、弱阳性血清19份和强阳性血清27份,同时用MA-ELISA、OIE推荐ELISA(抗原由英国Pirbright研究所提供)、西班牙Ingenasa公司ELISA试剂盒(INGEZIM PPA COMPAC)、法国ID-Vet公司ELISA试剂盒(IDScreen African Swine Fever Indirect ELISA kit)进行平行检测,结果显示:MA-ELISA的检测敏感性和特异性分别为95.7%和91.9%,显著高于其他方法,尤其是抗体弱阳性血清的检测(表5)。
表5不同方法检测结果比较
8.MA-ELISA试剂盒田间血清样品检测
从ASF疫区刚果民主共和国采集猪血清样品共201份,在相同条件下分别用OIE推荐ELISA和本发明的MA-ELISA试剂盒进行平行检测,结果不一致样品用Western-blotting验证。结果在201份血清样品中,MA-ELISA试剂盒检测阳性65份,OIE ELISA检测阳性86份,其中两种检测方法检测均为阳性57份。MA-ELISA试剂盒检测阳性而OIE ELISA检测阴性的8份血清中,5份为Western-blotting验证阳性,3份为Western-blotting验证阴性;OIE ELISA检测阳性而MA-ELISA试剂盒检测阴性的29份血清样品中,1份为Western-blot验证阳性,28份为Western-blot验证阴性(表6),
表6田间血清样品检测结果
表明本发明的MA-ELISA试剂盒检测临床猪血清样品ASFV抗体较OIE推荐ELISA更准确。
Claims (7)
1.一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原ELISA试剂盒,其特征在于:试剂盒中有抗原包被的酶标板、酶标二抗、阳性对照血清、阴性对照血清、稀释液、10×洗涤液、OPD与过氧化脲片剂、终止液。
2.根据权利要求1所述的一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原ELISA试剂盒,其特征在于,包被酶标板的抗原为重组大肠杆菌中表达和纯化的ASFV pB602L、pK205R和p54重组蛋白。
3.根据权利要求1所述的一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原ELISA试剂盒,其特征在于,酶标二抗为商品化的辣根过氧化物酶标记的羊抗猪IgG抗体,经方阵实验校正后按10000倍稀释,稀释液为:NaCl8g,KCl0.2g,Na2HPO41.44g,KH2PO40.24g,溶于800mL蒸馏水,调pH7.4,加5mL Tween-20、50mg脱脂乳定容至1L,0.45μm滤膜过滤除菌后,加入ProClin300至终浓度0.01%。
4.根据权利要求1所述的一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原ELISA试剂盒,其特征在于,所使用的阳性对照血清为重组蛋白pB602L、pK205R和p54分别免疫猪获得的血清,再等体积混合,加入0.01%硫柳汞防腐;所使用的阴性对照血清为非免疫健康猪血清,加入0.01%硫柳汞防腐。
5.根据权利要求1所述的一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原ELISA试剂盒,其特征在于,10×洗涤液为:NaCl80g,KCl2g,Na2HPO414.4g,KH2PO42.4g,溶于800mL蒸馏水,调pH7.4,加5mL Tween-20和1mL ProClin300,定容至1L。使用时用去离子水稀释成1×洗涤液。
6.根据权利要求1所述的一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原ELISA试剂盒,其特征在于,OPD与过氧化脲片剂分别标记为A和B,使用时各取A、B一片,加入20mL的去离子水,溶解后作为底物溶液。
7.根据权利要求1所述的一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原ELISA试剂盒,其特征在于,终止液为1M的H2SO4。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310193976.0A CN103278627B (zh) | 2013-05-22 | 2013-05-22 | 一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原elisa试剂盒 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310193976.0A CN103278627B (zh) | 2013-05-22 | 2013-05-22 | 一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原elisa试剂盒 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103278627A true CN103278627A (zh) | 2013-09-04 |
CN103278627B CN103278627B (zh) | 2015-09-02 |
Family
ID=49061206
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310193976.0A Expired - Fee Related CN103278627B (zh) | 2013-05-22 | 2013-05-22 | 一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原elisa试剂盒 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103278627B (zh) |
Cited By (17)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104459160A (zh) * | 2014-12-30 | 2015-03-25 | 洛阳普莱柯万泰生物技术有限公司 | 试剂盒及其制备方法和使用方法 |
CN104459121A (zh) * | 2014-11-28 | 2015-03-25 | 洛阳普莱柯万泰生物技术有限公司 | Prv抗体检测系统及其制备方法 |
CN104988052A (zh) * | 2015-06-25 | 2015-10-21 | 中山鼎晟生物科技有限公司 | 一种速测病毒检测试剂盒及其使用方法 |
CN105527442A (zh) * | 2014-09-30 | 2016-04-27 | 洛阳普莱柯万泰生物技术有限公司 | 一种猪瘟抗体检测系统及其制备方法 |
CN108148138A (zh) * | 2017-12-14 | 2018-06-12 | 石河子大学 | 非洲猪瘟病毒多表位融合诊断抗原及其制备方法和用途 |
CN110093356A (zh) * | 2019-05-14 | 2019-08-06 | 深圳市易瑞生物技术股份有限公司 | 编码非洲猪瘟病毒抗原的dna序列、由其编码的抗原的组合物及其在免疫学检测中的应用 |
CN111393510A (zh) * | 2020-04-02 | 2020-07-10 | 中国农业科学院兰州兽医研究所 | 一种非洲猪瘟病毒重组抗原及其应用 |
CN112444626A (zh) * | 2019-08-30 | 2021-03-05 | 洛阳普泰生物技术有限公司 | 一种非洲猪瘟病毒抗体elisa检测试剂盒及其制备方法 |
CN112462057A (zh) * | 2020-11-23 | 2021-03-09 | 浙江洪晟生物科技股份有限公司 | 猪伪狂犬病毒gB&gD抗体检测试剂盒及其制备方法和应用 |
CN112831597A (zh) * | 2019-11-22 | 2021-05-25 | 洛阳普泰生物技术有限公司 | 用于非洲猪瘟病毒基因鉴别检验的实时荧光pcr扩增引物对、探针引物、及制备的试剂盒 |
CN113125710A (zh) * | 2021-03-19 | 2021-07-16 | 安渡生物医药(杭州)有限公司 | 免疫复合物检测方法 |
KR20210106181A (ko) * | 2020-02-20 | 2021-08-30 | 한국생명공학연구원 | 아프리카 돼지 열병 바이러스 감염 진단을 위한 항원 단백질 조성물 및 이의 용도 |
CN115032387A (zh) * | 2022-05-27 | 2022-09-09 | 中国农业科学院上海兽医研究所 | 一种非洲猪瘟病毒间接elisa抗体检测方法、试剂盒及其应用 |
CN115469105A (zh) * | 2022-11-01 | 2022-12-13 | 龙阔(苏州)生物工程有限公司 | 一种一步法非洲猪瘟elisa抗体快速检测试剂盒 |
CN115947795A (zh) * | 2022-09-01 | 2023-04-11 | 扬州大学 | 一种检测asfv抗体的重组蛋白、双抗原夹心elisa试剂盒及其应用 |
US20230375548A1 (en) * | 2022-05-23 | 2023-11-23 | Institute Of Animal Science And Veterinary Medicine, Shandong Academy Of Agricultural Sciences | Indirect enzyme-linked immunosorbent assay detection kit based on p30 protein and p22 protein of african swine fever virus |
NL2033301B1 (en) * | 2022-08-31 | 2024-03-12 | Inst Animal Health Guangdong Academy Agricultural Sciences | Dominant epitope fusion protein of african swine fever virus (asfv) non-structural protein and kit and use thereof |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101833005A (zh) * | 2010-04-23 | 2010-09-15 | 天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心 | 一种用于检测非洲猪瘟病毒抗体的竞争elisa试剂盒及其用途 |
CN102236017A (zh) * | 2010-04-23 | 2011-11-09 | 陈文刚 | 用于检测非洲猪瘟病毒抗体的间接elisa试剂盒及其用途 |
CN102236019A (zh) * | 2010-04-23 | 2011-11-09 | 陈文刚 | 一种用于检测非洲猪瘟病毒的间接elisa试剂盒 |
CN102735851A (zh) * | 2012-07-13 | 2012-10-17 | 江苏省农业科学院 | 一种猪肺炎支原体多重组抗原elisa检测试剂盒 |
CN102841209A (zh) * | 2012-08-28 | 2012-12-26 | 郑州后羿制药有限公司 | 一种以猪瘟病毒重组蛋白ns2建立的elisa试剂盒 |
CN102967703A (zh) * | 2012-09-06 | 2013-03-13 | 中国动物卫生与流行病学中心 | 一种用于elisa诊断的生物安全性非洲猪瘟抗原多因子血清 |
-
2013
- 2013-05-22 CN CN201310193976.0A patent/CN103278627B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101833005A (zh) * | 2010-04-23 | 2010-09-15 | 天津出入境检验检疫局动植物与食品检测中心 | 一种用于检测非洲猪瘟病毒抗体的竞争elisa试剂盒及其用途 |
CN102236017A (zh) * | 2010-04-23 | 2011-11-09 | 陈文刚 | 用于检测非洲猪瘟病毒抗体的间接elisa试剂盒及其用途 |
CN102236019A (zh) * | 2010-04-23 | 2011-11-09 | 陈文刚 | 一种用于检测非洲猪瘟病毒的间接elisa试剂盒 |
CN102735851A (zh) * | 2012-07-13 | 2012-10-17 | 江苏省农业科学院 | 一种猪肺炎支原体多重组抗原elisa检测试剂盒 |
CN102841209A (zh) * | 2012-08-28 | 2012-12-26 | 郑州后羿制药有限公司 | 一种以猪瘟病毒重组蛋白ns2建立的elisa试剂盒 |
CN102967703A (zh) * | 2012-09-06 | 2013-03-13 | 中国动物卫生与流行病学中心 | 一种用于elisa诊断的生物安全性非洲猪瘟抗原多因子血清 |
Non-Patent Citations (5)
Title |
---|
ANA LUISA REIS ET AL: "Systematic analysis of longitudinal serological responses of pigs infected experimentally with African swine fever virus", 《JOURNAL OF GENERAL VIROLOGY》 * |
B. GUTIE´RREZ-CASTAN˜EDA ET AL: "Expression, cellular localization and antibody responses of the African swine fever virus genes B602L and K205R", 《ARCH VIROL》 * |
张鑫宇等: "非洲猪瘟病毒p72基因的纳米金探针研究", 《扬州大学学报(农业与生命科学版)》 * |
王志亮: "非洲猪瘟研究进展", 《中国动物检疫》 * |
许宝华等: "两种不同组织嗜性的小鼠肝炎病毒组合抗原检测抗体的间接ELISA方法", 《中国比较医学杂志》 * |
Cited By (23)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105527442A (zh) * | 2014-09-30 | 2016-04-27 | 洛阳普莱柯万泰生物技术有限公司 | 一种猪瘟抗体检测系统及其制备方法 |
CN104459121A (zh) * | 2014-11-28 | 2015-03-25 | 洛阳普莱柯万泰生物技术有限公司 | Prv抗体检测系统及其制备方法 |
CN104459160A (zh) * | 2014-12-30 | 2015-03-25 | 洛阳普莱柯万泰生物技术有限公司 | 试剂盒及其制备方法和使用方法 |
CN104988052A (zh) * | 2015-06-25 | 2015-10-21 | 中山鼎晟生物科技有限公司 | 一种速测病毒检测试剂盒及其使用方法 |
CN108148138A (zh) * | 2017-12-14 | 2018-06-12 | 石河子大学 | 非洲猪瘟病毒多表位融合诊断抗原及其制备方法和用途 |
CN108148138B (zh) * | 2017-12-14 | 2020-05-05 | 石河子大学 | 非洲猪瘟病毒多表位融合诊断抗原及其制备方法和用途 |
CN110093356A (zh) * | 2019-05-14 | 2019-08-06 | 深圳市易瑞生物技术股份有限公司 | 编码非洲猪瘟病毒抗原的dna序列、由其编码的抗原的组合物及其在免疫学检测中的应用 |
CN110093356B (zh) * | 2019-05-14 | 2021-07-20 | 深圳市易瑞生物技术股份有限公司 | 编码非洲猪瘟病毒抗原的dna序列、由其编码的抗原的组合物及其在免疫学检测中的应用 |
CN112444626B (zh) * | 2019-08-30 | 2023-09-12 | 洛阳普泰生物技术有限公司 | 一种非洲猪瘟病毒抗体elisa检测试剂盒及其制备方法 |
CN112444626A (zh) * | 2019-08-30 | 2021-03-05 | 洛阳普泰生物技术有限公司 | 一种非洲猪瘟病毒抗体elisa检测试剂盒及其制备方法 |
CN112831597A (zh) * | 2019-11-22 | 2021-05-25 | 洛阳普泰生物技术有限公司 | 用于非洲猪瘟病毒基因鉴别检验的实时荧光pcr扩增引物对、探针引物、及制备的试剂盒 |
KR20210106181A (ko) * | 2020-02-20 | 2021-08-30 | 한국생명공학연구원 | 아프리카 돼지 열병 바이러스 감염 진단을 위한 항원 단백질 조성물 및 이의 용도 |
KR102648716B1 (ko) * | 2020-02-20 | 2024-03-15 | 한국생명공학연구원 | 아프리카 돼지 열병 바이러스 감염 진단을 위한 항원 단백질 조성물 및 이의 용도 |
CN111393510A (zh) * | 2020-04-02 | 2020-07-10 | 中国农业科学院兰州兽医研究所 | 一种非洲猪瘟病毒重组抗原及其应用 |
CN112462057A (zh) * | 2020-11-23 | 2021-03-09 | 浙江洪晟生物科技股份有限公司 | 猪伪狂犬病毒gB&gD抗体检测试剂盒及其制备方法和应用 |
CN113125710A (zh) * | 2021-03-19 | 2021-07-16 | 安渡生物医药(杭州)有限公司 | 免疫复合物检测方法 |
CN113125710B (zh) * | 2021-03-19 | 2024-02-09 | 安渡生物医药(杭州)有限公司 | 免疫复合物检测方法 |
US20230375548A1 (en) * | 2022-05-23 | 2023-11-23 | Institute Of Animal Science And Veterinary Medicine, Shandong Academy Of Agricultural Sciences | Indirect enzyme-linked immunosorbent assay detection kit based on p30 protein and p22 protein of african swine fever virus |
CN115032387A (zh) * | 2022-05-27 | 2022-09-09 | 中国农业科学院上海兽医研究所 | 一种非洲猪瘟病毒间接elisa抗体检测方法、试剂盒及其应用 |
NL2033301B1 (en) * | 2022-08-31 | 2024-03-12 | Inst Animal Health Guangdong Academy Agricultural Sciences | Dominant epitope fusion protein of african swine fever virus (asfv) non-structural protein and kit and use thereof |
CN115947795A (zh) * | 2022-09-01 | 2023-04-11 | 扬州大学 | 一种检测asfv抗体的重组蛋白、双抗原夹心elisa试剂盒及其应用 |
CN115947795B (zh) * | 2022-09-01 | 2024-04-16 | 扬州大学 | 一种检测asfv抗体的重组蛋白、双抗原夹心elisa试剂盒及其应用 |
CN115469105A (zh) * | 2022-11-01 | 2022-12-13 | 龙阔(苏州)生物工程有限公司 | 一种一步法非洲猪瘟elisa抗体快速检测试剂盒 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103278627B (zh) | 2015-09-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103278627B (zh) | 一种检测非洲猪瘟病毒抗体的多抗原elisa试剂盒 | |
CN103293306B (zh) | 一种非洲猪瘟病毒抗体检测胶体金免疫层析试纸条制备方法 | |
CN109254155A (zh) | 一种检测非洲猪瘟病毒抗原胶体金免疫层析试纸及制备方法和应用 | |
CN105527437A (zh) | 一种检测试剂盒及其应用 | |
CN102731615A (zh) | Prrsv的检测试剂和检测方法 | |
CN112877348B (zh) | 一种非洲猪瘟病毒CD2v胞外域重组蛋白及其应用 | |
CN110873792A (zh) | 非洲猪瘟病毒抗体检测试剂盒 | |
CN111732664A (zh) | 一种新型冠状病毒重组蛋白、兔-人嵌合抗体、其制备方法及应用 | |
CN104316703A (zh) | 一种牛支原体检测试纸条及其制备方法 | |
CN105061602B (zh) | 用于检测抗猪产肠毒素性大肠杆菌抗体的融合蛋白、制备方法及应用 | |
CN106442981A (zh) | 一种人博卡病毒1型抗体间接elisa诊断试剂盒 | |
CN108872601A (zh) | 一种猪繁殖与呼吸综合征抗体的免疫荧光定量检测试剂盒及其使用方法 | |
CN105348391A (zh) | 埃可病毒6型vp1蛋白特异性抗原表位及其融合蛋白的制备、应用 | |
CN109239341B (zh) | 一种牛溶血性曼氏杆菌抗体检测的间接elisa试剂盒及其应用 | |
CN102533663B (zh) | 口蹄疫杂交瘤细胞株、单克隆抗体、检测试剂和试剂盒 | |
CN102967666B (zh) | 一种对猪瘟病毒e2蛋白含量的定量检测方法 | |
CN106632618B (zh) | 一种猪戊型肝炎病毒orf2重组蛋白的制备方法及该病毒抗体液相芯片检测试剂盒 | |
CN106279408B (zh) | 抗口蹄疫o型病毒的单克隆抗体及抗体组合以及其在该病毒抗原、抗体检测中的应用 | |
CN109851675B (zh) | 一种口蹄疫诊断试剂盒及其所用口蹄疫诊断抗原 | |
CN104297493B (zh) | 可溶性i型鸭肝炎病毒3d蛋白在制备elisa试剂中的应用及其elisa试剂盒 | |
Wu et al. | Development and validation of a prokaryotically expressed foot-and-mouth disease virus non-structural protein 2C'3AB-based immunochromatographic strip to differentiate between infected and vaccinated animals | |
CN103848916A (zh) | 一种抗cp4 epsps单克隆抗体的制备方法、编码序列及其应用 | |
CN103834667A (zh) | 化学合成的肺炎链球菌PspA蛋白胞外区基因片段及其表达、应用 | |
Chen et al. | Development of a multiplex Luminex assay for detecting swine antibodies to structural and nonstructural proteins of foot-and-mouth disease virus in Taiwan | |
CN103387971B (zh) | 一种重组人胃蛋白酶原ii同工酶嵌合蛋白、制备方法及其应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20150902 Termination date: 20190522 |