AT264000B - Verfahren zur Herstellung eines abgeschwächten, zur Immunisierung von Menschen gegen Masern geeigneten Virus - Google Patents
Verfahren zur Herstellung eines abgeschwächten, zur Immunisierung von Menschen gegen Masern geeigneten VirusInfo
- Publication number
- AT264000B AT264000B AT874362A AT874362A AT264000B AT 264000 B AT264000 B AT 264000B AT 874362 A AT874362 A AT 874362A AT 874362 A AT874362 A AT 874362A AT 264000 B AT264000 B AT 264000B
- Authority
- AT
- Austria
- Prior art keywords
- virus
- tissue
- measles
- culture
- passages
- Prior art date
Links
- 241000700605 Viruses Species 0.000 title claims description 67
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 14
- 201000005505 Measles Diseases 0.000 title claims description 11
- 230000002238 attenuated effect Effects 0.000 title claims description 11
- 230000003053 immunization Effects 0.000 title claims description 7
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title description 5
- 241000712079 Measles morbillivirus Species 0.000 claims description 23
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 claims description 17
- 241000271566 Aves Species 0.000 claims description 13
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 11
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims description 10
- 239000007858 starting material Substances 0.000 claims description 8
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 claims description 7
- 241000282412 Homo Species 0.000 claims description 6
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims description 5
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 5
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 5
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims description 4
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 claims description 4
- 230000003000 nontoxic effect Effects 0.000 claims description 4
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 claims description 2
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 claims 1
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 claims 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 52
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 19
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 description 19
- 210000003837 chick embryo Anatomy 0.000 description 8
- 230000000120 cytopathologic effect Effects 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 5
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 5
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 5
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 5
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 5
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 4
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 4
- 206010067484 Adverse reaction Diseases 0.000 description 3
- PXXXZVXOMPUQRY-NKNAPQMISA-N OC(=O)[C@@H](N)CCC(O)=O.O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(O)=O.O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O PXXXZVXOMPUQRY-NKNAPQMISA-N 0.000 description 3
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 230000006838 adverse reaction Effects 0.000 description 3
- 108010074605 gamma-Globulins Proteins 0.000 description 3
- 210000005003 heart tissue Anatomy 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 3
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 3
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 3
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 3
- 208000010201 Exanthema Diseases 0.000 description 2
- WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M Potassium chloride Chemical compound [Cl-].[K+] WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M Sodium bicarbonate Chemical compound [Na+].OC([O-])=O UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 description 2
- 238000010908 decantation Methods 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 201000005884 exanthem Diseases 0.000 description 2
- 208000021760 high fever Diseases 0.000 description 2
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 2
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 2
- 230000001575 pathological effect Effects 0.000 description 2
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 description 2
- 206010037844 rash Diseases 0.000 description 2
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 2
- 210000005084 renal tissue Anatomy 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 241000282465 Canis Species 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 102000004407 Lactalbumin Human genes 0.000 description 1
- 108090000942 Lactalbumin Proteins 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 1
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 1
- BELBBZDIHDAJOR-UHFFFAOYSA-N Phenolsulfonephthalein Chemical compound C1=CC(O)=CC=C1C1(C=2C=CC(O)=CC=2)C2=CC=CC=C2S(=O)(=O)O1 BELBBZDIHDAJOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000001447 alkali salts Chemical class 0.000 description 1
- 210000001691 amnion Anatomy 0.000 description 1
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 1
- 210000004102 animal cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000004135 animal tissue culture Methods 0.000 description 1
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 1
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 244000309466 calf Species 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000012136 culture method Methods 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 239000003085 diluting agent Substances 0.000 description 1
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 1
- WDRWZVWLVBXVOI-QTNFYWBSSA-L dipotassium;(2s)-2-aminopentanedioate Chemical compound [K+].[K+].[O-]C(=O)[C@@H](N)CCC([O-])=O WDRWZVWLVBXVOI-QTNFYWBSSA-L 0.000 description 1
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 1
- 210000003754 fetus Anatomy 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- WRUGWIBCXHJTDG-UHFFFAOYSA-L magnesium sulfate heptahydrate Chemical compound O.O.O.O.O.O.O.[Mg+2].[O-]S([O-])(=O)=O WRUGWIBCXHJTDG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229940061634 magnesium sulfate heptahydrate Drugs 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 229940041323 measles vaccine Drugs 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 235000013919 monopotassium glutamate Nutrition 0.000 description 1
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 231100000255 pathogenic effect Toxicity 0.000 description 1
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 1
- 229960003531 phenolsulfonphthalein Drugs 0.000 description 1
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 1
- 239000001103 potassium chloride Substances 0.000 description 1
- 235000011164 potassium chloride Nutrition 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 description 1
- 238000007086 side reaction Methods 0.000 description 1
- 231100000046 skin rash Toxicity 0.000 description 1
- 235000019980 sodium acid phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 235000017557 sodium bicarbonate Nutrition 0.000 description 1
- 229910000030 sodium bicarbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M sodium dihydrogen phosphate Chemical compound [Na+].OP(O)([O-])=O AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 description 1
- 230000003068 static effect Effects 0.000 description 1
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 1
- 238000010257 thawing Methods 0.000 description 1
- 239000003104 tissue culture media Substances 0.000 description 1
- 230000008467 tissue growth Effects 0.000 description 1
- 229940124974 vaccine stabilizer Drugs 0.000 description 1
- 230000001018 virulence Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
- A61K39/155—Paramyxoviridae, e.g. parainfluenza virus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/525—Virus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/525—Virus
- A61K2039/5254—Virus avirulent or attenuated
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2710/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
- C12N2710/00011—Details
- C12N2710/16011—Herpesviridae
- C12N2710/16311—Mardivirus, e.g. Gallid herpesvirus 2, Marek-like viruses, turkey HV
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/18011—Paramyxoviridae
- C12N2760/18411—Morbillivirus, e.g. Measles virus, canine distemper
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/18011—Paramyxoviridae
- C12N2760/18411—Morbillivirus, e.g. Measles virus, canine distemper
- C12N2760/18434—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Virology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Immunology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Pulmonology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Description
<Desc/Clms Page number 1>
Verfahren zur Herstellung eines abgeschwächten, zur Immunisierung von Menschen gegen Masern geeigneten Virus
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung eines abgeschwächten, lebenden, zur Immunisierung von Menschen gegen Masern geeigneten Virus unter Verwendung eines lebenden Masernvirus, das für das Wachstum in Vogelembryogewebezellkulturen adaptiert worden ist, das aber als solches zur Immunisierung von Menschen ohne Herbeiführung eines hohen Prozentsatzes relativ schwerer unerwünschter Reaktionen nicht geeignet ist, als Ausgangsmaterial.
Auf Grund älterer Arbeiten ist es gelungen, das Masernvirus so zu adaptieren, dass es auf Tiergewebe oder Zellkulturen wächst und sich vermehrt (vgl. z. B. die deutsche Auslegeschrift 1130 558).
Stämme des Masernvirus, die zur Impfung von Menschen geeignet sind, konnten durch Abschwächung in solchen Kulturen von Tierzellen erhalten werden.
Die klinische Erprobung des adaptierten und abgeschwächten lebenden Masernvirus, das in dieser Weise erhalten worden ist, zeigte, dass es die Fähigkeit besitzt, in den geimpften Personen gegen Maserninfektionen immunisierende Antikörper zu bilden. Leider aber zeigten sich bei einem Grossteil der geimpften Personen unerwünschte Reaktionen, wie hohes Fieber. Ein Grossteil der Kinder, die mit Vakzinen aus adaptierten und abgeschwächten Stämmen der bisher zur Verfügung stehenden Masernviren beimpft worden waren, zeigten als Nachwirkungen der Impfung schwere Hautausschläge und andere Reaktionen.
Durch gleichzeitige Injektion von Gammaglobulin, das bei Kindern eine beachtliche Schutzwirkung gegen die schwereren Symptome der unerwünschten Reaktionen zeigt, konnten die unangenehmen Nebenwirkungen bis zu einem gewissen Grad unterdrückt oder vermieden werden. Eine Vorbeugung gegen Nebenreaktionen durch gemeinsame Verabfolgung von Masernvakzin und Gammaglobulin ist jedoch umständlich und teuer und kommt im allgemeinen für Impfaktionen grossen Massstabes nicht in Betracht.
Es wurde nun gefunden, dass erhebliche Nebenwirkungen und unerwünschte Symptome vermieden oder wenigstens stark vermindert werden können, wenn man erfindungsgemäss ein für das Wachstum in Vogelembryogewebezellkulturen adaptiertes Virus in einer das Wachstum des Gewebes fördernden und gegenüber dem Virus nichttoxischen Nährflüssigkeit bei einer Temperatur von etwa 28 bis etwa 320C zur Förderung des Wachstums des Virus bebrütet, wenigstens einen Teil des so gebildeten Virus erntet und ein solches geerntetes Virus in eine frische Kultur von Vogelembryogeweben einführt und solche Kulturpassagen des Virus reihenweise unter Bebrütung bei Temperaturen von etwa 28 bis etwa 320C (unternormale Temperaturen) bei einer genügenden Anzahl von Passagen wiederholt, wodurch ein Virus erhalten wird, das,
ohne Verlust der Antigenwirkung zur Bildung von Masern-Antikörpern, im Hinblick auf die Schwere der Reaktion des Menschen auf dieses Virus, genügend abgeschwächt ist.
Ein erfindungsgemäss erhältlicher, abgeschwächter, lebender Masernvirusstamm ist der sogenannte Schwarz-Stamm des Masernvirus (von der Fa. Glaxo Laboratories Ltd., Greenford, England, beziehbar) ; er unterscheidet sich von den bisher bekannten Stämmen des Masernvirus durch das Fehlen von wesent-
<Desc/Clms Page number 2>
lichen unerwünschten Nebeneffekten und Reaktionen bei Personen, die damit geimpft worden sind, und durch das praktische Fehlen der üblichen pathologischen Symptome der Masern, ohne dass eine erkenn- bare Verminderung bezüglich Immunisiervermögen und Wirksamkeit eintritt.
Die erhöhte Sicherheit und Leistung des Schwarz-Stammes des Masernvirus als Impfstoff kann da- durch erklärt werden, dass die Virulenz des Virus stärker geschwächt wird als im Falle der bisher ange- wendeten Abschwächungsverfahren. Das abgeschwächte Virus bewirkt, wenn es noch nicht gegen Ma- sern immunen Kindern injiziert wird, dass die Bildung von schützend wirkenden Masernantikörpern ohne
Hervorrufung nennenswerter Hausausschläge, hohen Fiebers oder anderer üblicher pathologischer Symp- tome der Masern stimuliert wird.
Die genaue Zahl der Reihenpassagen, die im Rahmen des erfindungs- gemässenverfahrens bei der unternormalen Temperatur erforderlich sind, wird in Abhängigkeit von sol- chen Faktoren wie der spezielle Stamm des angewendeten Masernvirus, die Vorbehandlung im Kultur- medium desselben und die speziellen in der Gewebekultur verwendeten Vogelembryogewebe, abhängen.
Bei Kückenembryogewebekulturen werden gute Ergebnisse in bezug auf Abschwächung erreicht, wenn etwa 40 Reihenpassagen des Virus bei einer Bebrütungstemperatur von 28 bis 320C ausgeführt werden.
Bei der Durchführung des erfindungsgemässen Verfahrens können gewisse Variationen angewendet werden. So können z. B. die Reihenpassagen bei 28 - 320C durch eine oder wenige Passagen bei höheren Temperaturen unterbrochen werden, vorausgesetzt dass die Gesamtzahl der Passagen bei der unternormalen Temperatur ausreichend ist, um die gewünschte Abschwächung zu erreichen.
Nachdem die gewünschte Abschwächung erreicht ist, können eine oder zwei Vermehrungspassagen zur Vermehrung des Vakzinansatzes, gewünschtenfalls bei geeigneten höheren Temperaturen, ausgeführt werden.
Ist eine Abschwächung des Virus in der erfindungsgemässen Weise erreicht, so kann der gewünschte, abgeschwächte Stamm des Virus in einer Gewebekultur der gleichen Type von Gewebe, an welche das Virus adaptiert worden ist, und unter fortgesetzter Bebrütung bei Temperaturen von 28 bis 320C aufbewahrt werden.
Im allgemeinen ist es wünschenswert, aber nicht notwendig, das Virus auf frische Gewebekulturen zu überführen, wenn etwa 20-75%, vorzugsweise etwa 25-50%, der Zellen in einem gegebenen Ansatz von beimpfter Gewebekultur einen cytopathogenen Effekt zeigen.
Ähnliche Verfahrensweisen werden zur Vermehrung des abgeschwächten Virus angewendet, um einen Ansatz für die Vakzineherstellung zu erhalten. Bei der zuletzt genannten Verfahrensweise wird die Kultur bebrütet, bis das Virus sich unter Bildung einer geeigneten Konzentration desselben vermehrt hat, und die Flüssigkeit wird aus dem Behälter mit der Gewebekultur durch Dekantation unter aseptischen Bedingungen abgetrennt und durch Zentrifugieren, Filtrieren od. dgl. geklärt. Das entstehende Produkt kann direkt als Vakzine verwendet werden, oder es kann, in Abhängigkeit von der darin enthaltenen Viruskonzentration, mit einem geeigneten injizierbaren Verdünnungsmittel oder mit einer Stabilisierungslösung, die gegenüber dem Virus nichttoxisch ist, verdünnt werden, um eine fertige, flüssige Vakzine herzustellen.
Wenn ein entsprechender Anteil der Vogelembryogewebezellen in der Kultur infolge der cytopathogenen Wirkung des wachsenden Virus noch nicht zerstört ist, wird frische Flüssigkeit, wie eine geeignete Vakzinestabilisatorlösung, isotonische Salzlösung, frisches Nährmedium od. dgl., nach dem oben angegebenen Dekantationsschritt zum Kulturbehälter zugeführt, und Kessel sowie Inhalt werden einem Gefrier- und Auftauzyklus unterworfen, um weiteres Virus aus den Gewebezellen freizusetzen. Die entstehende Flüssigkeit wird abgetrennt und mit der vorstehend erhaltenen Flüssigkeit vereinigt, um ein Vakzinekonzentrat zu schaffen. Das letztere wird in geeigneter Weise von Vogelembryogewebezellen und Zellbruchstücken befreit, und der Virusgehalt wird durch Titration, wie z. B. gegen Menschengewebekulturzellen, standardisiert.
Anschliessend kann das Vakzinekonzentrat gewünschtenfalls direkt zur Vakzination nicht-immuner Menschen verwendet werden, oder es kann mit einem sterilen Stabilisator, wie z. B. Lactose-Glutamatlösung, verdünnt, für die Lagerung, vorzugsweise bei einer Temperatur von -20 bis -700C, eingefroren und bei dieser Temperatur bis zur Verwen- dung aufbewahrt werden. Man kann die stabilisierte Vakzine auch einer Gefriertrocknung unterwerfen, um ein trockenes Vakzineprodukt zu schaffen, das leicht lagerfähig ist und das mit sterilem Wasser od. dgl. unmittelbar vor der Verwendung rekonstituiert werden kann.
Eine unter Verwendung des neuen, erfindungsgemäss erhältlichen Virus hergestellte Vakzine macht eine gleichzeitige Injektion von Gammaglobulin überflüssig. Eine ebenso gute oder noch höhere Leistung bezüglich der verminderten Häufigkeit und Stärke der Reaktionen bei den geimpften Personen kann nun erreicht werden, wenn ausschliesslich die verbesserte, gemäss der Erfindung hergestellte Masemvakzine eingesetzt wird.
<Desc/Clms Page number 3>
Wenn die Vermehrung des erfindungsgemäss erhältlichen, abgeschwächten, lebenden Virus und ins- besondere des Schwarz-Stammes des Masernvirus bei Bedingungen und Temperaturen ausgeführt wird, bei welchen die Möglichkeit besteht, dass das Virus in eine stärker virulente Form zurückkehrt, liegt eine vorteilhafte Vorsichtsmassnahme bei der Herstellung und bzw. oder Zubereitung des Saat- bzw.
Stammansatzes aus dem bestehenden Schwarz-Stamm des Virus darin, wenigstens mehrere Passagen un- ter virulenzvermindernden Bedingungen einzuschalten, z. B. durch Züchtung des Virus während mehre- rer Passagen bei Temperaturen unter 32 C. Sollte der Schwarz-Stamm des Virus trotz aller Vorkehrun- gen in eine stärker virulente Form zurückkehren, so stellt er kein geeignetes Ausgangsmaterial für die
Zwecke der Erfindung mehr dar und soll durch neues Material ersetzt werden, welches der oben ange- gebenen Definition des Schwarz-Stammes des Masernvirus entspricht.
Das beim erfindungsgemässen Verfahren als Ausgangsmaterial verwendete adaptierte Virus kann aus nativem, lebendem Masernvirus erhalten werden.
Wenn frisches, natives Masernvirus für die Verwendung als Ausgangsmaterial beim erfindungsge- mässen Verfahren adaptiert werden soll, ist es häufig wünschenswert, die anfängliche Vermehrung des
Virus in einer Menschengewebekultur, wie Menschennierengewebekultur, Menschenfötushautgewebe- kultur oder Menschenherzgewebekultur, oder in einem Tiergewebe, das bekanntermassen leicht als
Wirtgewebe für die Vermehrung solcher nativer Viren wirksam ist, wie z. B. Hundenierengewebekultur, durchzuführen. Bei solchen Behandlungen kann es zweckmässig sein, die Züchtung auf solchen Men- schen-oder Hundegeweben durch eine Reihe von Passagen fortzusetzen, bis die Identität und Reinheit des jeweiligen Virus festzustellen ist. Anschliessend wird die Adaption des Virus an Vogelembryogewebezellkulturen, insbesondere Kückenembryogewebezellkulturen, vorgenommen.
Bei Adaptionsschritten vor der Einleitung der erfindungsgemässen Bebrütung bei unternormalen Temperaturen können die vorkommenden Übertragungen auf andere Gewebe oder im Embryonale durch übliche Massnahmen ausgeführt werden. Das Virus wird vorzugsweise der Reihe nach durch aufeinanderfolgende Frisch-Vogelembryogewebekulturen unter Bebrüten bei 350C geführt werden, wobei einige wenige, vorzugsweise etwa 10, Reihenpassagen durchgeführt werden, um eine Adaption an das Vogelembryogewebe zu erreichen.
Bevorzugterweise werden Gewebekulturen von Vogelembryogeweben in üblicher Weise in einer Nährflüssigkeit angesetzt, die gegenüber dem Masernvirus nicht toxisch ist und das Wachstum solcher Gewebe unterhält. Diese Gewebe werden mit lebendem Masernvirus beimpft. Die beimpften Gewebekulturen werden dann eine Zeitlang bei 35 - 370C bebrütet und das Virus wird durch eine Reihe von Passagen auf dem gleichen Vogelembryogewebe geführt, wobei eine genügende Zahl von Passagen angewendet wird, um eine Adaption des Virus an die Wachstumsbedingungen in den Vogelembryogewebezellkulturen zu gewährleisten.
Anstatt natives Masernvirus zu adaptieren, ist es auch möglich, einen adaptierten Stamm des Masernvirus als Ausgangsmaterial zu verwenden, wie er durch Adaption und Abschwächung gemäss früheren Arbeiten aus dem Edmonston-Stamm des Masernvirus erhalten worden ist, wie der Enders-Stamm. Gleiche Ergebnisse können auch mit Stämmen erhalten werden, die von Patienten während einer Epidemie in Grönland isoliert wurden, sowie mit in Dänemark isolierten Stämmen.
Während der Bebrütung des Virus kann eine schwache Bewegung des Kulturbehälters, wie z. B. mittels einer Walzentrommelanordnung, vorgesehen werden ; es können aber auch statische Kulturmethoden benutzt werden, vorausgesetzt dass für ein Eintauchen der Gewebezellen in die Nährflüssigkeit Sorge getragen wird. Die Vermehrung des Virus zeigt sich üblicherweise durch einen deutlichen cytopathogenen Effekt auf den Gewebezellen, welcher unter dem Mikroskop beobachtet werden kann. In einzelnen Fällen jedoch, insbesondere in Frühstadien der Adaption des Virus, wird ein beobachtbarer pathogener Effekt, falls ein solcher überhaupt auftritt, nur nach langen Bebrütungsabschnitten festzustellen sein.
In solchen Fällen kann jedoch die Vermehrung des Virus durch Titration eines Teiles der beimpften Gewebekulturflüssigkeit in einer Kultur von gegenüber dem Virus empfindlichem Menschengewebe, z. B. Menschenfötushautgewebe, Menschenherzgewebe od. dgl., verfolgt werden. Letzteres zeigt deutlich einen typischen cytopathogenen Effekt, wenn es mit Masernvirus infiziert wird.
Beispiel l : Herstellung des Virus-Ausgangsmaterials.
8 - 10 Tage alte Kückenembryos werden nach Entfernen der Augen unter aseptischen Bedingungen fein gehackt, und das entstehende zerkleinerte Gewebe wird mit Phosphat-gepufferter Salzlösung gewaschen. Das gewaschene Gewebe wird in der üblichen Weise in einem Erlenmeyerkolben unter Rühren mit einem Magnetrührer trypsinisiert. Das trypsinisierte Gewebe wird mit 1000 Umdr/min 3 min zentrifugiert und die entstehenden angereicherten Zellen werden in einem Züchtungsmedium suspendiert,
<Desc/Clms Page number 4>
um eine Konzentration von 500 000 bis 600 000 Zellen/ml einzustellen.
Das Züchtungsmedium besteht aus Earlels Basissalzlösung (6,8 g Natriumchlorid, 0,4 g Kaliumchlorid, 0,2 g Kalziumchlorid, 0, 2 g
Magnesiumsulfatheptahydrat, 0, 125 g saures Natriumphosphat, 1, 0 g Glukose, 2, 2 g Natriumbicarbonat und 0, 02 g Phenolrot, die in Wasser unter Einstellung eines Volumens von 1000 ml gelöst werden), die 50/0 Kalbserum und 0, 5% Lactalbuminhydrolysat sowie ferner 200 Einheiten Penicillin und 200 y Strep- tomycin/ml enthält. Die entstehende Suspension wird in Mengen von 1 ml zur Beimpfung steriler Pro- bierröhrchen verwendet, die dann für 24 - 48 h bei 350C bebrütet werden.
Eine ähnliche Verfahrens- weise wird auch angewendet, um grössere Ansätze unter Einführung von 60 bis 70 ml der Suspension in Blake- oder Roux-Kulturkolben einzuführen.
Nach der anfänglichen Bebrütungsperiode für die Kückenembryogewebezellen wird das Züchtungs- medium abgetrennt und die Zellen werden zweimal mit Medium Nr. 199 von Morgan und Parker (Morgan et al., Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, 73 [1950], S. 1-8) gewa- schen.
Abschwächungsbehandlung :
2 ml des Mediums Nr. 199, die ohne Serum und auf einen pH-Wert von 7 bis 7,2 eingestellt sind, werden zu jedem Röhrchen, oder 100 ml des genannten Mediums zu jedem Kolben, zugesetzt. Jedes Röhrchen wird dann mit 0,2 ml der Suspension von aktiven, lebenden Masernviren oder jeder Kolben mit 1 ml dieser Virussuspension beimpft, und die entstehenden Kulturen werden bei Temperaturen von 32 bis 280C zur Vermehrung des Virus bebrütet. Im allgemeinen wird das Wachstum des Virus durch den Umstand ersichtlich, dass die Zellen in der Gewebekultur einen cytopathogenen Effekt aufweisen, und eine Reihenpassage des Virus auf neuem Gewebekulturmedium wird üblicherweise ausgeführt, wenn etwa 25 - 500/0 der Zellen in der beimpften Kultur den cytopathogenen Effekt zeigen.
Das Wachstum des Virus in der Gewebekultur kann aber auch durch Titration des Kulturmediums in einer Kultur von Menschengewebezellen, wie z. B. Menschenamniongewebe, Menschenherzgewebe oder andern geeigneten Geweben, durch die von Schwarz und Zirbel in Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, Bd. 102 [1959], S. 711-714, angegebene Methode verfolgt werden.
Nachdem genügend Passagen der oben genannten Art durchgeführt worden sind, um die gewünschte Abschwächung des Virus zu erreichen, werden eine oder wenige zusätzliche Passagen in Kückenembryogewebekultur bei 32 - 280C in einem genügend grossen Umfange ausgeführt, um das Virus genügend zu vermehren.
Das vermehrte Virus bildet einen Ansatz des Vakzinekonzentrats. Das Vakzinekonzentrat wird in üblicher Weise durch Dekantieren, Gefrieren und Auftauen sowie Waschen aufgearbeitet. Die gesammelte Vakzine wird durch Zentrifugieren der Kulturflüssigkeit und der Waschflüssigkeiten geklärt, bis diese frei von Gewebezellen und Zellbruchstücken sind.
Beispiel 2 : Herstellung des Virus-Ausgangsmaterials :
Der Edmonston-Stamm des Masernvirus, der von Enders und Mitarbeitern beschrieben wurde, wird in einer Reihenpassage in Kückenembryogewebekultur unter Bebrütung bei 350C durch 19 aufeinanderfolgende Passagen geführt.
Abschwächungsbehandlung :
Dieses kückenembryoadaptierte Virus wird dann nacheinander gemäss der Verfahrensweise des Beispiels 1 durch 37 aufeinanderfolgende Passagen in Kückenembryogewebekultur unter Bebrütung bei 320C geführt. Das erhaltene abgeschwächte Virus aus der 37. Passage wird durch drei Endpassagen mit verdünnter Kückenembryogewebekultur geführt.
Vakzinegewinnung :
Anschliessend werden zwei weitere Passagen in einer solchen Gewebekultur durchgeführt, die eine Vermehrung des Virus und die Bildung eines Vakzineansatzes (Vakzinepool) ermöglicht. Bei jeder dieser letzteren Passagen wird die Kultur bei 320C bebrütet. Die entstehenden Vakzinekonzentrate werden von den Gewebezellen und Zellbruchstücken abgetrennt und mit einem entsprechenden Volumen Laktose-Glutamatlösung als Stabilisator verdünnt. Die Laktose-Glutamat-Stabilisatorlösung hat die folgende Zusammensetzung :
Kaliumglutamat 0, 956 g
EMI4.1
<Desc/Clms Page number 5>
EMI5.1
Claims (1)
- Verfahren zur Herstellung eines abgeschwächten, lebenden, zur Immunisierung von Menschen gegen Masern geeigneten Virus unter Verwendung eines lebenden Masernvirus, das für das Wachstum in Vogelembryogewebezellkulturen adaptiert worden ist, das aber als solches zur Immunisierung von Menschen ohne Herbeiführung eines hohen Prozentsatzes relativ schwerer unerwünschter Reaktionen nicht geeignet ist, als Ausgangsmaterial, dadurch gekennzeichnet, dass man ein derart adaptiertes Virus in Gewebekulturen von Vogelembryogeweben in einer das Wachstum des Gewebes fördernden und gegenüber dem Virus nichttoxischen Nährflüssigkeit bei einer Temperatur von etwa 28 bis etwa 320C zur Förderung des Wachstums des Virus bebrütet,wenigstens einen Teil des so gebildeten Virus erntet und <Desc/Clms Page number 6> ein solches geerntetes Virus in eine frische Kultur von Vogelembryogeweben einführt, und solche Kulturpassagen des Virus reihenweise unter Bebrütung bei Temperaturen von etwa 28 bis etwa 32 C bei einer genügenden Anzahl von Passagen wiederholt, wodurch ein Virus erhalten wird, das, ohne Verlust der Antigenwirkung, zur Bildung von Masern-Antikörpern, im Hinblick auf die Schwere der Reaktion des Menschen auf dieses Virus, genügend abgeschwächt ist, und dass man gewünschtenfalls ein so erhaltenes Virus bei Temperaturen von etwa 28 bis etwa 320C in einer Kultur von Vogelembryozellen vermehrt und züchtet.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US264000XA | 1961-11-08 | 1961-11-08 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| AT264000B true AT264000B (de) | 1968-08-12 |
Family
ID=21831619
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| AT874362A AT264000B (de) | 1961-11-08 | 1962-11-06 | Verfahren zur Herstellung eines abgeschwächten, zur Immunisierung von Menschen gegen Masern geeigneten Virus |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| AT (1) | AT264000B (de) |
-
1962
- 1962-11-06 AT AT874362A patent/AT264000B/de active
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE69327307T2 (de) | Herstellung von antigenen und impfstoffen vom mysterie-disease-virus, antigene und erworbene impfstoffe zur verhinderung dieser krankheit | |
| DE2851928C2 (de) | ||
| DE2516274C2 (de) | Verfahren zum Herstellen eines abgeschwächten Zytomegalie-Virus-Impfstoffes | |
| DE1617940C2 (de) | Verfahren zur Gewinnung eines für die Züchtung von Viren geeigneten Zellstammes | |
| CH429024A (de) | Verfahren zur Herstellung eines lebendes, abgeschwächtes Masernvirus enthaltenden Impfstoffes | |
| DE2828073C2 (de) | Verfahren zum Kultivieren von Viren | |
| DE1198489B (de) | Verfahren zur Herstellung eines Impfstoffes gegen Panleucopenie | |
| AT264000B (de) | Verfahren zur Herstellung eines abgeschwächten, zur Immunisierung von Menschen gegen Masern geeigneten Virus | |
| DE2057544C3 (de) | Impfstoff gegen ein neonatales Kälberdiarrhoevirus, Verfahren zu seiner Herstellung und seine Verwendung | |
| DE841333C (de) | Verfahren zur Herstellung von Bakterienpraeparaten von Treponema Pallidum | |
| DE1235505B (de) | Verfahren zur Herstellung einer Vaccine gegen Staupe | |
| DE2058645A1 (de) | Verfahren zur Herstellung von abgeschwaechter Newcastle-Disease-Virus-Lebendvaccine | |
| DE3524794A1 (de) | Pharmazeutisches praeparat enthaltend lebende vermehrungsfaehige embryonalzellen, verfahren zu dessen herstellung und testverfahren zur bestimmung der pharmazeutischen wirksamkeit | |
| DE2162013C3 (de) | Tollwut-Lebendimpfstoff, Verfahren zu seiner Herstellung nd seine Verwendung bei der Bekämpfung von Tollwut | |
| DE1209245B (de) | Verfahren zur Herstellung von Masernimpfstoffen | |
| DE424197C (de) | Verfahren zur Herstellung eines Naehrbodens fuer Influenzabazillen und zur Herstellung von Impfstoffen aus diesen | |
| DE2121237C3 (de) | Verwendung einer Zellinie zur Züchtung von Viren | |
| DE3009064A1 (de) | Verfahren zur herstellung eines tollwutimpfstoffes und danach erhaltener impfstoff | |
| GB1001689A (en) | Process for the production of a rabies vaccine | |
| DE2033946C2 (de) | Lebendimpfstoff gegen infektiöse pustulöse Vulvovaginitis [IPV] und infektiöse bovine Rhinotracheitis [IBR] | |
| DE908909C (de) | Verfahren zur Herstellung und Verarbeitung pathogener Viren und der sie begleitenden Stoffe | |
| DE1214831B (de) | Verfahren zur Herstellung von Thymusextrakten | |
| DE1030516B (de) | Naehrboden zur Viruszuechtung | |
| DE3019554C2 (de) | ||
| DE2141901A1 (de) | Verfahren zur Herstellung eines Vak zins |