DE1209245B - Verfahren zur Herstellung von Masernimpfstoffen - Google Patents

Verfahren zur Herstellung von Masernimpfstoffen

Info

Publication number
DE1209245B
DE1209245B DED40215A DED0040215A DE1209245B DE 1209245 B DE1209245 B DE 1209245B DE D40215 A DED40215 A DE D40215A DE D0040215 A DED0040215 A DE D0040215A DE 1209245 B DE1209245 B DE 1209245B
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
virus
tissue
measles
vaccine
cells
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
DED40215A
Other languages
English (en)
Inventor
Anton Josef Franz Schwarz
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Dow Chemical Co
Original Assignee
Dow Chemical Co
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Dow Chemical Co filed Critical Dow Chemical Co
Publication of DE1209245B publication Critical patent/DE1209245B/de
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/155Paramyxoviridae, e.g. parainfluenza virus
    • A61K39/165Mumps or measles virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5254Virus avirulent or attenuated
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011Details
    • C12N2760/18011Paramyxoviridae
    • C12N2760/18411Morbillivirus, e.g. Measles virus, canine distemper
    • C12N2760/18434Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

  • Verfahren zur Herstellung von Masernimpfstoffen Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Masernimpfstoffen durch Verbreitung und Wachstum eines adaptierten und geschwächten Stammes von Masernviren in einem lebende tierische Zellen enthaltenden Kulturmedium und durch Abtrennung dieser Zellen sowie des Zellenrestmaterials von dem Kulturmcdium. Erfindungsgemäß ist vorgesehen, daß während der zur Schwächung und Vermehrung der Masernviren nötigen Durchgänge oder während eines Teiles dieser Durchgänge die Temperatur auf 28 bis 32"C gehalten wird.
  • Man hat Masernviren bereits früher mit Erfolg dahingehend adaptiert, daß sie in Nichthumangewebe-oder Zellkulturen wachsen und sich ausbreiten. Man hat ferner schon festgestellt, daß man Stämme von Maseraviren, die zum Impfen von Menschen geeignet sind, dadurch gewinnen kann, daß man die in solchen Isichthumanzellkulturen ichth umanzellkulturen gewonnenen Viren schwächt.
  • Klinische Versuche mit adaptierten und geschwächten aktiven Masernviren, die man auf diese Weise erhalten hat, waren in der Lage, in den geimpften Personen Antikörper zu bilden und diese somit gegen Masern infekt ion immun zu machen. Unglücklicherweise traten jedoch unerwünschte Erscheinungen auf: Es trat bei einer großen Anzahl der geimpften Personen starkes Fieber ein. Bei Impfung von Kindern mit 1 mpfstoffen, die aus adaptierten und geschwächten Stämmen bisher verfügbarer Masernviren gewonnen worden waren, traten außerdem ein starker Ausschlag und andere un erwünschte Nebenerscheinungen auf.
  • Die unerwünschten Nebenerscheinungen konnten unterdriickt oder weinigstens bis zu einem gewissen Grad dadurch vermieden werden, daß man gleichzeitig y-Globulin einspritzte, welches einen ausgesprochenen Effekt insokm zeigte, als es Kinder vor den ernsteren Symptomen der unerwünschten Reaktion schützte. Die Verhinderung solcher Nebenerscheinungen durch die kombinierte Anwendung von Masernimpfstoff und y-Globulin ist unpraktisch und teuer und insbesondere ungeeignet für Impfprogramme großen Umfangs.
  • Es hat sich gezeigt, daß merkbare Nebenerschei nungen und unerwünschte Symptome vermieden oder wenigstens weitgehend reduziert werden können, wenn man zur Impfung erfindungsgemäß hergestellten Impfstoff verwendet. Dieser neue Impfstoff macht nicht mehr die gleichzeitige Impfung von y-Globulin erforderlich. Man kann durch Anwendung des verbesserten Impfstoffes allein mindestens ebenso gute Resultate hinsichtlich der Häufigkeit und Gefährlichkeit der Nebenerscheinungen erzielen, als man sie bisher durch gleichzeitige Anwendung bekannter Impfstoffe und y-Globulin erzielen konnte.
  • Der aus dem erfindungsgemäßen Verfahren zugrunde liegende sogenannte Schwarz-Stamm des Masernvirus unterscheidet sich von den bisher bekannten Stämmen dadurch, daß im wesentlichen keine unerwünschten Nebenerscheinungen und Reaktionen bei den geimpften Personen auftreten und durch das Fehlen der üblichen pathologischen Masernsymptome, ohne daß eine Verminderung der immunisierenden Wirkung eintreten würde.
  • Statt ursprüngliche Masernviren - zu adaptieren. ist es auch möglich, als Ausgangsmaterial einen bereits adaptierten Stamm von Masernviren zu verwenden, etwa einen Stamm, wie er durch Adaptierung und Schwächung des Edmonston-Stammes gewonnen wurde; ein solcher adaptierter und geschwächter Stamm ist z. B. der Enders-Stamm.
  • Bei einer bevorzugten Durchführungsform des Verfahrens zur Gewinnung des Schwarz-Stammes von Masernviren werden Gewebekulturen tierischen Nichthumangewebes in an sich bekannter Weise in eine Nährflüssigkeit gebracht, welche für Masernviren nicht toxisch ist und welche das Wachstum solchen Gewebes unterstützt, in diese mit Zellen beschickte 79ährflüssigkeit werden die lebenden Masernviren eingeimpft.
  • Die geimpften Gewebekulturen werden sodann bei 35 bis 37"C für eine bestimmte Zeit inkubiert; der Virus wird in mehreren Durchgängen auf das gleiche tierische Gewebe gegeben, um die Adaptierung des Virus an das jeweilige Gewebe durchzuführen und die Wachstumsmöglichkeit in diesem Gewebe zu schaffen.
  • Es hat sich gezeigt, daß auf diese Weise der Masernvirus in Kaninchennierengewebe, Rindernierengewebe, Schweinenierengewebe und Kükenembryogewebe zum Wachsen gebracht werden kann. Anschließend an die soweit beschriebene Adaptierungsbehandlung wird der Virus serienmäßig in Gewebekultur gegeben, und zwar auf dem jeweiligen Substrat, an das er adaptiert worden ist, wobei die Inkubation des Virus bei einer Untertemperatur von 28 bis 32"C durchgeführt wird; dadurch wird die Modifizierung des Virus erreicht; wenn der so modifizierte Virus schließlich Kindern geimpft wird, welche gegen Masern nicht immun sind, so ist er imstande, die Erzeugung von Masernantikörpern anzuregen, ohne daß in merklichem Umfang Ausschlag, hohes Fieber und ähnliche pathologische Symptome von Masern eintreten.
  • Eine andere Möglichkeit zur Erzeugung des Schwarz-Stammes von Masernviren als Ausgangsmaterial für den erfindungsgemäßen Impfstoff besteht darin, daß der ursprüngliche aktive Masernvirus in tierische Gewebekulturen eingeimpft und bei Untertemperatur inkubiert wird, ohne daß vorher eine Adaptierung in das jeweilige Gewebe bei normaler Inkubationstemperatur stattgefunden hat. Anschließend wird die serienmäßige Übertragung und Inkubation bei diesen Untertemperaturen von vorzugsweise etwa 28 bis etwa 32"C für eine ausreichende Zahl von Durchgängen fortgesetzt, um die erstrebte Schwächung des Virus zu erreichen.
  • Wenn man von frischen natürlichen Masernviren ausgeht, ist es zweckmäßig, die anfänglicheVermehrung des Virus in Humangewebekulturen durchzuführen, etwa in Nierengewebekulturen, Amniotagewebekulturen (Amnion = ein Embryonalhäutchen [s. Van Nostrand's Scientific Encyclopedia, 3. Auflage, 1958, S. 85]) oder Herzgewebekulturen, daneben aber auch in tierischen Gewebekulturen, die als Gastkulturen für die Vermehrung ursprünglicher Viren bekannt sind, z. B. Kaninchennierenkulturen. Es empfiehlt sich die Behandlung auf solchen Human- oder Kaninchengeweben für so viele Durchgänge fortzusetzen, bis die Identität und Reinheit des gebildeten Virus untersucht werden kann. Anschließend wird dann die Adaptierung des Virus in andere tierische Nichthumangewebe und die Schwächung des Virus durch Inkubation bei niederen Temperaturen durchgeführt. In den Verlauf der Adaptierungsmaßnahmen können natürlich von Übertragungen auf andere Gewebe oder Embryonaleier nach herkömmlicher Verfahrenstechnik eingeschaltet sein, ohne daß vom Grundgedanken der Erfindung abgegangen wird.
  • Die genaue Zahl der aufeinanderfolgenden Durchgänge, die bei den niederen Temperaturen erforderlich sind, hängt von verschiedenen Umständen ab, so von dem jeweiligen Masernvirenstamm, von dem ausgegangen wird, von der behandlungsmäßigen Vorgeschichte dieses Stammes und von dem jeweiligen Gewebe, das in der Gewebekultur verwendet wird.
  • Bei Kükenembryogewebekulturen hat man günstige Resultate hinsichtlich der Schwächung erhalten, wenn man in etwa vierzig aufeinanderfolgenden Durchgängen des Virus eine Inkubationstemperatur von 28 bis 32"C angewandt hat.
  • Während des Durchgangs wird man den Virus zweckmäßig immer dann auf Frischgewebekulturen übertragen, wenn 20 bis 750/o, vorzugsweise 25 bis 500/0, der Zellen in einer bestimmten Charge geimpfter Gewebekultur einen Zytopathogeneffekt zeigen.
  • Ähnliche Verfahrensmaßnahmen werden angewandt, um den geschwächten Virus zu vermehren und Ansätze für Impfstoffherstellung zu gewinnen.
  • Bei den zuletzt genannten Vorgängen wird die Kultur inkubiert, so lange, bis sich der Virus in einer Weise vermehrt hat, die eine brauchbare Konzentration liefert, worauf die Flüssigkeit aus der Gewebekultur geerntet wird, etwa durch Dekantieren unter aseptischen Bedingungen sowie Klären durch Zentrifugieren, Filtrieren od. dgl. Das so erhaltene Produkt kann unmittelbar als Impfstoff verwendet werden oder je nach seiner Konzentration mit einem zur Impfung geeigneten Verdünnungsmittel verdünnt werden; auch kann eine für den Virus nichttoxische Stabilisierungslösung zugegeben werden, um einen gebrauchsfertigen flüssigen Impfstoff zu gewinnen. Wenn eine merkliche Anzahl der Gewebezellen in der Kultur durch den Zytopathogeneffekt des Virenwachstums nicht aufgelöst worden ist, so kann Frischflüssigkeit, etwa eine Impfstoffstabilisatorlösung, eine Salzlösung, ein frisches Nährmedium od. dgl. anschließend an die Dekantierung zugegeben werden, worauf der Inhalt einer Reihe von Ausfrier- und Tauvorgängen unterworfen wird, um weitere Viren aus den Gewebezellen zu erhalten. Die resultierende Flüssigkeit wird dann geerntet und mit der vorhergehenden Ernte zusammengegeben, um ein Impfstoffkonzentrat zu erhalten.
  • Letzteres wird von Gewebezellen und Zellrückständen befreit, und der Virengehalt wird durch Titration, z. B. gegen Humanzellenkulturen, standardisiert. Hierauf kann das Impfstoffkonzentrat, wenn gewünscht, direkt zum Impfen von nicht immunen Personen verwendet werden; es kann auch mit einem sterilen Stabilisator verdünnt werden, z. B. mit einer Laktoseglutamatlösung und im gefrorenen Zustand, vorzugsweise bei einer Temperatur von -20 bis -70"C, bis zum späteren Gebrauch aufbewahrt werden. Andererseits kann der stabilisierte Impfstoff auch einer Gefriertrocknung unterworfen werden, so daß ein trockener Impfstoff entsteht, der leicht aufbewahrt werden und mit sterilem Wasser od. dgl. vor Gebrauch wiederhergestellt werden kann.
  • Beispiel 1 Gewebekulturverfahren 8 bis 10 Tage alte Kükenembryos wurden unter aseptischen Bedingungen fein zerhackt, nachdem die Augen entfernt worden waren; das so gewonnene zerkleinerte Gewebe wurde mit phosphatgepufferter Salzlösung gewaschen. Das gewaschene Gewebe wurde sodann in üblicher Weise in einem Erlenmeyer-Kolben mit magnetischem Rührwerk trypsinisiert. Das trypsinisierte Gewebe wurde bei 1000 Umdrehungen pro Minute 3 Minuten lang zentrifugiert; das dabei gewonnene Zellkonzentrat wurde in einem Wachstumsmedium suspendiert, so daß 500 000 bis 600 000 Zellen auf 1 ml entfielen. Das Wachstumsmedium war eine basische Lösung nach E a r 1(6,8 g Natriumchlorid, 0,4 g Kaliumchlorid, 02 g Kalziumchlorid, 0,2 g Magnesiumsulfatheptahydrat, 0,125 g natriumsaures Phosphat, 1,0 g Glukose, 2,2 g Natriumbikarbonat und 0,02 g Phenolrot in Wasser gelöst, derart, daß die Gesamtmenge 1000 ml beträgt), enthaltend 5°/0 Kalbsserum, 0,5 0/o Laktalbuminhydrolysat, 20û Einheiten Penizillin und 200 ug Streptomyzin pro Milliliter. Die entstehende Suspension wurde in Mengen von 1 ml in sterile Röhrchen gegeben und 24 bis 48 Stunden lang bei 35 C inkubiert. Ein ähnliches Verfahren wurde angewandt, um größere Mengen zu gewinnen, und zwar wurden 60 bis 70 ml der Suspension in Kulturflaschen nach B 1 a k e oder R o u x eingegeben.
  • Anschließend an die anfängliche Inkubationsperiode für r die Kükenembryogewebezellen wurde das Wachstumsmedium entfernt, mld die Zellen wurden zweimal mit einem Medium -t- 199 nach M o r g a n und P a r k e r (s. Aufsatz von M o r g a n u. a. in Proccedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, 1950, 73, S, 1 bis 8) gewaschen; hierauf wurden 2 ml des Mediums # 199 ohne Serum und eingestellt auf einen pH-Wert von 7 bis 7,2 in jedes Röhrchen gegeben oder 100 ml des Mediums in jede Flasche. Jedes Röhrchen wurde sodann mit 0,2 ml der aktiven Masernvirensuspension geimpft bzw. jede Flasche mit 1 ml dieser Suspension; die so gebildeten Kulturen wurden bei einer Temperatur von 32 bis 28"C inkubiert und zwar so lange, bis eine Vermehrung des Virus eintrat. Im allgemeinen konnte man Wachstum des Virus auf Grund der Tatsache feststellen, daß die Zellen in der Gewebekultur einen Zytopathogeneffekt zeigten; der Übergang des Virus in das nächste Gewebekulturmedium wurde gewöhnlich jeweils dann ausgeführt, wenn 25 bis 50010 der Zellen in dem jeweils geimpften Medium den Zytopat h ogeneffekt zeigten. Alternativ kann das Wachstum des Virus in den Gewebekulturen auch dadurch festgestellt werden, daß man das Kultur medium in eine Kultur von Humangewebezellen, etwa Humanamniotazellen, Humanherzzellen oder andere geeignete Zellen, titriert, und zwar nach dem Verfahren von S c h w a r z und Z i r b e l, veröffentlicht in Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, 1959, S. 102, Zeilen 711 bis 714.
  • Nachdem die gewünschte Schwächlung des Virus nach einer ausreichenden Zahl von Durchgängen erreicht war, wurden ein oder mehrere Durchgänge durch eine Kükenembryogewebekullur aílgeschlossen, und zwar bei 32 bis 28"C. Diese Durchgänge erfolgten in so großem Maßstab, daß der Virus genügend vermehrt werden konnte, um einen Vorrat von IIllpfstoffkonzentrat zu gewinnen. Das Impfstoffkonzentrat wurde in herkömmlicher Weise durch Dekantieren, Einfrieren, Auftauen und Waschen geerntet. Der geerntete Impfstoff wurde durch Zentrifugieren der Kulturffnssigkeit und anschließendes Waschen geklärt, solange, bis er frei war von Gewebezellen und Zellrückständen.
  • Beispiel 2 Bereitung und Prüfung des Impfstoffes Bei einer bevorzugten erfindungsgemäßen Herstellungsweise des Impfstoffes ging man von dem Edmonston-Stamm des Masernvirus aus, wie er von E n d e r s beschrieben worden ist. Diesen unterwarf man neunzehn aufeinanderfolgenden Durchgängen in einer Kükenembryogewebekultur bei einer Inkubationstemperatur von 35 C. Hierauf unterwarf man diesen in Kükenembryo adaptierten Virus gemäß dem Verfahren vom Beispiel 1 siebenunddreißig aufeinanderfolgen den Durchgängen durch eine Kükenembryogewebekultur mit einer Inkubationstemperatur von 32 C. Der nach dem 37. Durchgang vorliegende geschwächte Virus wurde hierauf drei abschließenden Behandlungen in verdünnten Kükenembryogewebekulturen unterworfen, worauf zwei weitere Durchgänge durch solche Kulturen zum Zwecke der Vermehrung und der Erzeugung eines Impfstoffpools erfolgten. Bei jedem dieser letzteren Durchgänge erfolgte die Inkubation bei einer Temperatur von 32 C.
  • Die entstehenden Impfstoffkonzentrate wurden von dem Zellgewebe und den Geweberesten abgetrennt und mit einer gleichen Menge von Laktoseglutamatlösung als Stabilisator verdünnt. Die Laktoseglutamatstabilisatorlösung hatte die folgende Zusammensetzung: Kaliumglutamat .................. 0,956 g NaOHPO4 .................... ...... 1,25 g KH2PO4 .......................... 0,52 g Laktose .......................... 100,00 g Wasser ............... bis zu 1 1 Gesamtmenge Ein Teil des somit fertigen Impfstoffes wurde auf Humanherzgewebezellen titriert. Man fand, daß der Impfstoff 103,5 bis 104,3 TCLD50-Einheiten pro 0,2 ml enthielt (tissue culture infective doses 50 per cent [TCID5/] per 0,2 ml). Jeder Impfstoffpool wurde getestet durch Einimpfung in ein Thioglykolat-Bakteriennährmedium sowie durch intraperitoneale und subkutane Impfung in Guinea-Schweine und Mäuse sowie durch intramuskulare und intrazerebrale Impfung bei Affen (monkey cynomolgous); man konnte feststellen, daß die Impfstoffe frei von Verunreinigungen waren.
  • Neun Kinder, die gegen Masern nicht immun waren, wurden mit 0,2 ml Dosen des Impfstoffes injiziert, zwei davon intramuskular und sieben subkutan. Keines der geimpften Kinder zeigte Masernausschlag, und bei nur einem von ihnen trat eine merkliche Temperaturerhöhung ein; auch diese Temperaturerhöhung war nur kurzzeitig.
  • Beispiel 3 Der nach der 37. Untertemperatur (Behandlung gemäß Beispiel 2) gewonnene Virus wurde weiteren Durchgängen gemäß Beispiel 2 unterworfen, so daß schließlich insgesamt fünfundsechzig Durchgänge bei einer Inkubationstemperatur von 32°C erfolgt waren.
  • Es wurden Impfstoffpools mit Laktoseglutamatstabilisatoren gebildet. Diese wurden friergetrocknet.
  • Die aus dem friergetrockneten Material gebildeten Impfstoffe enthielten 102 5 bis 10l 5 TCID50-Einheiten auf 0,2 ml. Ein Teil des Impfstoffes wurde durch direktes Einfrieren aufbewahrt. Der Impfstoff wurde wie im Beispiel 2 auf Sicherheit hin geprüft.
  • Siebzig Kinder, die auf Komplement bindende und neutralisierende Antikörper hin untersucht worden waren und die bei einer Serumverdünnung im Verhältnis 1 : 2 keine solchen Antikörper gezeigt hatten, wurden subkutan mit 0,2 ml der erwähnten Impfstoffe geimpft und anschließend für eine Zeitspanne von mehreren Wochen in Beobachtung gehalten.
  • Es traten keine lokalen oder unmittelbaren Reaktionen auf mit Ausnahme eines Kindes, bei dem eine leichte urtikariale Reaktion ungefähr 4Wochen nach der Impfung eintrat. Temperaturen wurden mindestens einmal täglich gemessen, bei den meisten Kindern zweimal täglich während der ganzen Beobachtungszeit. In manchen Fällen trat eine leichte fiebrige Reaktion ein, die ungefähr 2 Tage dauerte und 7 bis 8 Tage nach der Impfung in Erscheinung trat. Die mittlere maximale Rektaltemperatur bei sämtlichen geimpften Kindern betrug 38,4ob. Ein leichter, masernartiger Ausschlag war nur bei zwei Kindern zu beobachten und zwar am 11. bzw. 13. Tag nach der Impfung. Es traten keine ernsthaften Komplikationen während der Beobachtungszeiten auf, und es gab keinen Beweis dafür, daß das Zentralnervensystem in Mitleidenschaft gezogen wurde. 3 bis 6 Wochen nach der Impfung wurde von jedem Kind eine Blutserumsprobe entnommen und auf Komplement bindende und neutralisierende Masern-Antikörper hin untersucht. 97,1 01o der Kinder hatten Antikörperniveaus entwickelt, die denjenigen bei natürlicher Maserninfektion vergleichbar waren.
  • Beispiel 4 Anschließend an die Prozedur von Beispiel 2 wurden Masernviren nach der 37. Behandlung unter 32"C zehn weiteren Behandlungen mit einer Inkubationstemperatur von 32 C und sodann fünfzehn Behandlungen mit einer Inkubationstemperatur von 28 ° C unterworfen. Die nach der 15. Behandlung unter 28"C gewonnenen Impfstoffe wurden zur Impfung von nicht immunen Kindern verwendet. Die Beobachtung der geimpften Kinder zeigte, daß der Virus geschwächt war, was die Heftigkeit der auftretenden Reaktionen anbelangte, daß aber keine merkliche Minderung der Antigenität eingetreten war.
  • Auf einfache Weise können die Masernviren dadurch geschwächt werden, daß man sie auf isoliertem Gewebe bei einer Temperatur von 28 bis 32"C einer Kulturbehandlung unterwirft, wobei man als Gewebe beispielsweise Rindernierengewebe verwenden kann.
  • Bei der Herstellung von Gewebekulturen können auch andere geeignete proteolytische Enzyme an Stelle des Trypsins verwendet werden, um die Gewebezahlen zu dispergieren. Man kann auch andere Kulturflüssigkeiten, z. B. das basische Medium nach E a gele, verwenden (Medium ft 199) zusammen mit 5 bis 10oil nichtaktiviertem Pferdeserum oder ein Medium, bestehend aus 8 Teilen basischer SalzIösung nach E a r 1 e, 1 Teil 5 °/Oigem Laktalbuminhydrolysat und 1 Teil nichtaktiviertem Pferde- oder Lammserum.

Claims (1)

  1. Patentanspruch: Verfahren zur Herstellung von Masernimpfstoffen durch Verbreitung und Wachstum eines adaptierten und geschwächten Stammes von Masernviren in einem lebende tierische Zellen enthaltenden Kulturmediumund durchAbtrennung dieser Zellen sowie des Zellenrestmaterials von dem Kulturmedium, dadurch gekennz e i c h n e t, daß während der zur Schwächung und Vermehrung der Masernviren nötigen Durchgänge oder während eines Teiles dieser Durchgänge die Temperatur auf 28 bis 32"C gehalten wird.
DED40215A 1961-11-08 1962-11-07 Verfahren zur Herstellung von Masernimpfstoffen Pending DE1209245B (de)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US1209245XA 1961-11-08 1961-11-08

Publications (1)

Publication Number Publication Date
DE1209245B true DE1209245B (de) 1966-01-20

Family

ID=22393290

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DED40215A Pending DE1209245B (de) 1961-11-08 1962-11-07 Verfahren zur Herstellung von Masernimpfstoffen

Country Status (1)

Country Link
DE (1) DE1209245B (de)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2076787A5 (en) * 1970-01-28 1971-10-15 Merieux Inst Lyophilisation stabiliser - for viruses contg potassium phosphate lactose and albumin

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2076787A5 (en) * 1970-01-28 1971-10-15 Merieux Inst Lyophilisation stabiliser - for viruses contg potassium phosphate lactose and albumin

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE2902136C2 (de) Verfahren zum Herstellen von Interferon
DE1617940C2 (de) Verfahren zur Gewinnung eines für die Züchtung von Viren geeigneten Zellstammes
CH429024A (de) Verfahren zur Herstellung eines lebendes, abgeschwächtes Masernvirus enthaltenden Impfstoffes
DE1198489B (de) Verfahren zur Herstellung eines Impfstoffes gegen Panleucopenie
DE1209245B (de) Verfahren zur Herstellung von Masernimpfstoffen
CH423095A (de) Verfahren zur Herstellung eines Tollwutimpfstoffes
DE2352662A1 (de) Verfahren zur herstellung eines uebertragungsfaktors
AT264000B (de) Verfahren zur Herstellung eines abgeschwächten, zur Immunisierung von Menschen gegen Masern geeigneten Virus
DE2034118A1 (en) Xenogenic nucleic acids for enhancing antigenicity - of peptides and proteins
DE2162013C3 (de) Tollwut-Lebendimpfstoff, Verfahren zu seiner Herstellung nd seine Verwendung bei der Bekämpfung von Tollwut
DE19512227C1 (de) Multifaktorielles Abwehr-Modulatorengemisch, Verfahren zu seiner Herstellung und diese Modulatoren enthaltende Arzneimittel
DE3009064A1 (de) Verfahren zur herstellung eines tollwutimpfstoffes und danach erhaltener impfstoff
DE3524794A1 (de) Pharmazeutisches praeparat enthaltend lebende vermehrungsfaehige embryonalzellen, verfahren zu dessen herstellung und testverfahren zur bestimmung der pharmazeutischen wirksamkeit
CH455148A (de) Verfahren zur Vermehrung des Tollwutvirus
DE1235505B (de) Verfahren zur Herstellung einer Vaccine gegen Staupe
DE1941709C3 (de) Verfahren zur enzymatischen Vermehrung von informatorischer Ribonucleinsäure
AT243435B (de) Verfahren zur Herstellung einer Tollwutvakzine
DE509186C (de) Verfahren zur Gewinnung von Impfstoffen aus druesigen tierischen Organen
DE4108464C1 (en) Nutrient medium for cell culture - contg. activated human blood plasma contg. increased amt. of albumin, reduced amt. of gamma globulin and cell growth inhibiting substances
DE908909C (de) Verfahren zur Herstellung und Verarbeitung pathogener Viren und der sie begleitenden Stoffe
DE2121237C3 (de) Verwendung einer Zellinie zur Züchtung von Viren
EP0158285B1 (de) Verfahren zur Gewinnung von Zellkulturen
EP0451357A1 (de) Pathogenese-Faktoren von Dermatophyten
DE739594C (de) Verfahren zur Herstellung eines Heil- und Schutzserums gegen Staupe
DE2033946A1 (en) Live vaccine against vesicle eruption - (infectious pustular vulvovaginitis or bovine vesicular coital exanthema)in cattle