WO2019189642A1 - リポ蛋白コレステロールの定量方法、定量試薬及び定量キット - Google Patents

リポ蛋白コレステロールの定量方法、定量試薬及び定量キット Download PDF

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trl
cholesterol
lipoprotein
phospholipid
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謙亨 佐藤
誠 伊海田
裕子 平尾
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デンカ生研株式会社
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    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/92—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving lipids, e.g. cholesterol, lipoproteins, or their receptors
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • G—PHYSICS
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    • G01N2405/00—Assays, e.g. immunoassays or enzyme assays, involving lipids
    • G01N2405/04—Phospholipids, i.e. phosphoglycerides

Definitions

  • the present invention relates to a method for quantifying cholesterol in lipoprotein, a quantification reagent, and a quantification kit.
  • Lipoproteins contained in blood may be called chylomicron, ultra-low density lipoprotein (hereinafter sometimes referred to as VLDL), or intermediate density lipoprotein (hereinafter referred to as IDL) due to the difference in density due to ultracentrifugation. ), Low density lipoprotein (hereinafter sometimes referred to as LDL), and high density lipoprotein (hereinafter sometimes referred to as HDL).
  • LDL Low density lipoprotein
  • HDL high density lipoprotein
  • these lipoproteins are further subdivided according to specific gravity and size.
  • small-sized low-density lipoprotein hereinafter referred to as small, dense LDL or sdLDL
  • small and high-density LDL There are some).
  • These lipoproteins are known to have different contents in lipids such as triglycerides and cholesterol, and proteins, and to exhibit different actions in vivo.
  • Ultracentrifugation is a method of performing fractionation by utilizing the difference in density of lipoproteins by centrifugation, and has the disadvantages that it requires skill in the work, takes days, and is expensive.
  • the NMR method is a method of measuring the number of lipoprotein particles by magnetic resonance, but requires a special machine and is not general.
  • Patent Document 1 discloses a method of using a surfactant that inhibits reaction with respect to lipoproteins other than HDL and a surfactant that specifically dissolves HDL.
  • Patent Document 6 discloses a method for eliminating cholesterol in LDL lipoproteins other than small, dense LDL using sphingomyelinase in the first step, and then quantifying cholesterol in the remaining small, dense LDL.
  • Patent Document 7 discloses a method for measuring triglyceride-rich lipoprotein (TRL) having a density of less than 1.019 g / cm3 combining chylomicron (including chylomicron remnant), VLDL (including VLDL remnant) and IDL.
  • TRL triglyceride-rich lipoprotein
  • a method is disclosed in which cholesterol in lipoproteins other than TRL is eliminated using a surfactant that acts other than TRL, and then cholesterol in the remaining TRL is quantified.
  • JP-A-8-131197 Japanese Patent Laid-Open No. 11-56395 WO98 / 26090 JP-A-9-96637 JP 2013-148589 A WO09 / 048143 JP 2017-209035 A
  • An object of the present invention is to provide a method capable of more accurately quantifying lipoprotein cholesterol in a test sample, and a quantitative reagent and a quantitative kit used in this method.
  • the present invention is as follows.
  • a method for quantifying lipoprotein cholesterol in which lipoprotein cholesterol in a test sample containing lipoprotein is quantified using a quantification reagent, if desired, wherein phospholipid is added in the test sample or in the quantification reagent A quantitative method comprising adding.
  • the phospholipid is phosphatidylcholine (PC) or lysophosphatidylcholine (LPC).
  • PC phosphatidylcholine
  • LPC lysophosphatidylcholine
  • the method according to [1] wherein the phospholipid is a phospholipid-like surfactant.
  • HDL high density lipoprotein
  • TRL triglyceride rich lipoprotein
  • the lipoprotein cholesterol is quantified using a quantification reagent.
  • [10] Use of the reagent according to [9] as a reagent for quantifying lipoprotein cholesterol in a test sample containing lipoprotein.
  • a novel method capable of more accurately quantifying lipoprotein cholesterol in a test sample, a quantification reagent used in this method, and a quantification kit are provided.
  • Example 1 it is the figure which plotted the reaction absorbance of TRL-C with respect to the dilution level of the dilution series 1 (human serum diluted with physiological saline).
  • Example 1 it is the figure which plotted the reaction light absorbency of TRL-C with respect to the dilution level of the dilution series 2 (The human serum is diluted with the diluent A containing HDL).
  • Example 1 it is the figure which plotted the reaction light absorbency of TRL-C with respect to the dilution level of the dilution series 3 (The human serum is diluted with the diluent B containing HDL).
  • Example 2 it is the figure which plotted the reaction absorbance of sdLDL-C with respect to the dilution level of the dilution series 4 (a human serum is diluted with the physiological saline).
  • Example 2 it is the figure which plotted the reaction light absorbency of sdLDL-C with respect to the dilution level of the dilution series 5 (The human serum is diluted with the diluent B containing HDL).
  • TRL-C Reagent 1-1 HDL-C: 0 mg / dL
  • FIG. 6 is a graph plotting the reaction absorbance of TRL-C against the dilution level of dilution series 1 when TRL-C reagent 1-2 (HDL-C: 2 mg / dL) of Example 3 was used.
  • FIG. 6 is a graph plotting the reaction absorbance of TRL-C against the dilution level of dilution series 1 when TRL-C reagent 1-3 of Example 4 (HDL-C: 3 mg / dL) was used.
  • the TRL-C reagent 1-1 phospholipid: 0 mg / dL
  • the reaction absorbance of TRL-C with respect to the dilution level of dilution series 1 human serum diluted with physiological saline
  • FIG. 9 is a graph plotting the reaction absorbance of TRL-C against the dilution level of dilution series 1 when TRL-C reagent 1-7 (phospholipid LPC: 400 mg / dL) of Example 8 is used.
  • FIG. 10 is a graph plotting the reaction absorbance of TRL-C against the dilution level of dilution series 1 when TRL-C reagent 1-8 of Example 9 (phospholipid LPC: 800 mg / dL) was used.
  • FIG. 6 is a graph plotting reaction absorbance of TRL-C against dilution level of dilution series 1 when TRL-C reagent 1-9 (phospholipid LPC: 1600 mg / dL) of Example 10 is used.
  • FIG. 11 is a graph plotting the reaction absorbance of TRL-C against the dilution level of dilution series 1 when TRL-C reagent 1-11 (LIPIDURE BL1002) of Example 12 was used.
  • FIG. 6 is a graph plotting reaction absorbance of TRL-C against dilution level of dilution series 1 when TRL-C reagent 1-12 (LIPIDUREIDSF08) of Example 13 is used.
  • FIG. 10 is a graph plotting reaction absorbance of TRL-C against dilution level of dilution series 1 when TRL-C reagent 1-13 (LIPIDUREIDSF16) of Example 14 is used.
  • the present invention is characterized in that phospholipid is added to a test sample or a quantitative reagent when cholesterol contained in a lipoprotein in the test sample is quantified using a quantitative reagent as required.
  • Cholesterol contained in lipoprotein includes ester-type cholesterol (cholesterol ester) and free-type cholesterol.
  • the term “cholesterol” includes both of them.
  • Lipoproteins containing cholesterol are classified by electrophoresis or ultracentrifugation, and are chylomicron, very low density lipoprotein (VLDL), intermediate density lipoprotein (IDL), low density lipoprotein (LDL), small, dense LDL And high density lipoprotein (HDL).
  • VLDL very low density lipoprotein
  • IDL intermediate density lipoprotein
  • LDL low density lipoprotein
  • HDL small, dense LDL And high density lipoprotein
  • lipoproteins include chylomicron (including chylomicron remnants), VLDL (including VLDL remnants), and triglyceride rich lipoproteins (TRL) having a density of less than 1.019 g / cm 3 , including IDL.
  • test sample (specimen) to be used in the method of the present invention is not particularly limited as long as it contains lipoprotein and attempts to quantify cholesterol in lipoprotein, but usually blood (whole blood, serum and Body fluids such as plasma) and dilutions thereof.
  • any method known in this field can be used as the method for quantifying lipoprotein cholesterol of the present invention.
  • cholesterol can be measured by any method as long as phospholipids can be added to the test sample.
  • methods that do not use quantitative reagents include ultracentrifugation and NMR.
  • a cholesterol quantitative reagent used as desired in addition to the phospholipid described later, for example, a reagent containing cholesterol oxidase, cholesterol esterase, peroxidase, hydrogen donor and hydrogen acceptor can be used.
  • the phospholipid in the present invention includes a phospholipid-like surfactant and a substance containing phospholipid as a partial structure.
  • the phospholipid-like surfactant is a surfactant having a phosphate ester as a partial structure
  • the phospholipid-like surfactant preferably has a structure having a phosphorylcholine group (PC group), specifically , LIPIDURE BL206 (Nippon), LIPIDURE BL1002 (Nippon), LIPIDURE ⁇ SF08 (Nippon), LIPIDURE SF16 (Nippon).
  • substances containing phospholipids as partial structures include biological membranes such as lipoproteins, liposomes, and cell membranes.
  • lipoproteins include chylomicron, very low density lipoprotein (VLDL), and intermediate density lipoprotein ( IDL), low density lipoprotein (LDL), small, dense LDL, high density lipoprotein (HDL) and the like.
  • a lipoprotein different from the lipoprotein containing cholesterol to be quantified by the method of the present invention is used.
  • a lipoprotein different from the lipoprotein containing cholesterol to be quantified by the method of the present invention is used.
  • a lipoprotein different from TRL for example, high-density lipoprotein (HDL) can be used.
  • the phospholipids in the present invention may be used alone or in combination of two or more.
  • the phospholipid is added to the test sample or the quantitative reagent.
  • the phospholipid may be added to the test sample by adding it to a diluent used for diluting the test sample (specimen), and the phospholipid may be added to the quantitative reagent in advance. Alternatively, it may be added at the time of measurement.
  • the amount of phospholipid added is such that when phospholipid is added to the test sample, the concentration of phospholipid in the diluent for diluting the test sample is usually 1 to 1000 mg / dL, preferably 10 It is preferable to add so as to be in the range of ⁇ 500 mg / dL, more preferably in the range of 50 ⁇ 300 mg / dL.
  • the amount of phospholipid added when phospholipid is added to the quantitative reagent varies depending on the type of phospholipid.
  • the phospholipid in the quantitative reagent is usually 50 to 5000 mg / dL, preferably 200 to 3000 mg / dL, more preferably 500 to 2000 mg / dL. It is good to add so that it may become this range.
  • the lipoprotein cholesterol in the quantitative reagent is usually in the range of 0.05 to 100 mg / dL, preferably 0.1 to 50 mg / dL, more preferably 0.5 to 10 mg / dL. It is good to add so that it becomes.
  • cholesterol can be quantified by reacting the above-described quantification reagent as it is with a test sample containing lipoprotein, but in the lipoprotein other than the lipoprotein to be quantified in the test sample.
  • the method of the present invention comprises a first step (step (1)) for selectively eliminating cholesterol and a second step (step (2)) for quantifying cholesterol in lipoproteins to be quantified remaining in the reaction system.
  • lipoprotein when the term “reacts” with respect to lipoprotein is used, it means that the structure of lipoprotein is changed by a surfactant or an enzyme, and the enzyme easily acts on internal cholesterol. .
  • step (1) of the present invention cholesterol in lipoproteins other than lipoproteins to be quantified is selectively erased.
  • erasing means degrading cholesterol and preventing the degradation product from being detected in the next step (2).
  • Examples of a method for selectively erasing cholesterol contained in lipoproteins other than the lipoprotein to be quantified include a method in which cholesterol oxidase and cholesterol esterase are allowed to act on a test sample to remove the generated hydrogen peroxide. It is done.
  • a method of removing hydrogen peroxide a method of decomposing it into water and oxygen by the action of catalase or a hydrogen donor compound that reacts with hydrogen peroxide to produce a colorless quinone by the action of peroxidase is converted into a colorless quinone.
  • a method etc. can be mentioned, it is not limited to these.
  • the method for selectively eliminating cholesterol in a specific lipoprotein in the first step is widely used for LDL cholesterol quantification methods (for example, WO98 / 47005) and HDL cholesterol quantification methods (for example, WO98 / 26090). It has been adopted and is well known. Step (1) of the present invention can also be carried out by these known methods.
  • the phospholipid in the present invention is preferably added in the step (1) in that the linearity of the measured value (the linearity of the correlation between the dilution level of the test sample and the reaction absorbance of cholesterol) is further improved.
  • the cholesterol in the lipoprotein to be quantified remaining without being erased in the step (1) is enzymatically quantified by the known method described above.
  • cholesterol oxidase and cholesterol esterase used in the step (1)
  • the cholesterol oxidase and cholesterol esterase used in the step (1) can be used as they are in the step (2), and it is not necessary to newly add them.
  • a catalase inhibitor such as sodium azide is added in step (2). Used to inhibit catalase.
  • step (1) and step (2) of the present invention at least one surfactant can be used. If a suitable surfactant is used, the enzyme reaction in each step can be promoted.
  • the cholesterol oxidase that can be used in the present invention is not particularly limited as long as it is an enzyme having the ability to oxidize cholesterol to generate hydrogen peroxide, and examples thereof include animal or microorganism-derived cholesterol oxidase. These may be produced by genetic manipulation and may or may not be chemically modified.
  • the cholesterol esterase that can be used in the present invention is not particularly limited as long as it acts on ester-type cholesterol.
  • the amount of each of the cholesterol esterase and cholesterol oxidase enzymes used in the present invention is not particularly limited and can be appropriately set. Usually, it is 0.001 U to 2000 U / mL, preferably 0.1 to 1000 U / mL. used.
  • an aniline derivative is preferable.
  • aniline derivative N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3-methylaniline (TOOS), N-ethyl-N— (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3,5-dimethylaniline (MAOS), N-ethyl-N- (3-sulfopropyl) -3-methylaniline (TOPS), N- (2-hydroxy-3 -Sulfopropyl) -3,5-dimethoxyaniline (HDAOS), N- (3-sulfopropyl) aniline (HALPS), N- (3-sulfopropyl) -3-methoxy-5-aniline (HMMPS) It is done.
  • TOOS N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3-methylaniline
  • MAOS 2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3,5-dimethylaniline
  • TOPS
  • hydrogen acceptor 4-aminoantipyrine, methylbenzothiazolone hydrazone, or the like can be used.
  • reaction solution various buffer solutions used in ordinary biochemical reactions can be used, and the pH of the buffer solution is preferably between 5 and 8.
  • a buffer solution of Good, Tris, phosphate, and glycine is preferable.
  • Good buffer solutions such as bis (2-hydroxyethyl) iminotris (hydroxyethyl) methane (Bis-Tris), piperazine-1, 4-bis ( 2-ethanesulfonic acid) (PIPES), piperazine-1, 4-bis (2-ethanesulfonic acid), 1.5 sodium salt, monohydrate (PIPES1.5Na), 2-hydroxy-3-morpholinopropanesulfone Acid (MOPSO), N, N-bis (2-hydroxyethyl) -2-aminoethanesulfonic acid (BES), 2- [4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazinyl] ethanesulfonic acid (HEPES) and Piperazine-1,4-bis (2-hydroxy-3-propanesulfonic
  • Each step in the present invention is preferably performed at pH 5 to pH 10, more preferably at pH 6 to pH 8.
  • the reaction temperature is preferably 20 ° C to 45 ° C for each step, more preferably 25 ° C to 40 ° C.
  • the reaction time is preferably 1 to 10 minutes for each step, more preferably 3 to 7 minutes.
  • the reagent to be used may be divided into a plurality of reagent compositions.
  • the reagent include a reagent composition (first reagent) for performing a step of eliminating cholesterol in lipoproteins other than the lipoprotein to be quantified (ie, step (1)), Two types of reagent compositions, ie, a reagent composition (second reagent) for performing the step of measuring cholesterol in lipoprotein (ie, step (2)) were prepared, and these two types of reagent compositions were combined.
  • the product can be used as a quantification kit for lipoprotein cholesterol.
  • the reagent composition for performing step (1) includes a surfactant suitable for eliminating cholesterol in lipoproteins other than the lipoproteins to be quantified as described above.
  • the reagent composition may further contain a hydrogen donor such as cholesterol oxidase, cholesterol esterase or aniline derivative, or a catalase which eliminates hydrogen peroxide.
  • the reagent composition for performing step (2) contains at least a surfactant that reacts with all the lipoproteins as described above.
  • the reagent composition may further contain a hydrogen acceptor such as 4-aminoantipyrine, peroxidase, and the like.
  • the linearity of the measured value (correlation between the dilution level of the test sample and the reaction absorbance of cholesterol) (Linearity) is preferable in that it is further improved.
  • the phospholipid content in the reagent composition varies depending on the type of phospholipid, but when the phospholipid is glycerophospholipid or sphingophospholipid, the concentration of phospholipid in the reagent composition is usually 50 to 5000 mg / mg. The range is dL, preferably 200 to 3000 mg / dL, more preferably 500 to 2000 mg / dL. When the phospholipid is lipoprotein, the concentration of lipoprotein cholesterol in the reagent composition is usually 0.05 to 100 mg / dL, preferably 0.1 to 50 mg / dL, more preferably 0.5 to 10 mg / dL. Range.
  • the reagent composition for carrying out the step (1) and the reagent composition for carrying out the step (2) include a monovalent cation (for example, a monovalent metal ion), a divalent cation, if necessary. (Eg divalent metal ions) or salts thereof, polyanions (eg heparin, dextran sulfate, phosphotungstate), serum albumin may be added.
  • the pH of each reagent composition is near neutral, for example, pH 5 to pH 9, preferably pH 6 to 8, and the pH may be adjusted by adding a buffer solution.
  • a reagent composition for performing step (1) is added to the test sample and reacted, and then step (2) is performed.
  • the reagent composition may be added and reacted, and the absorbance may be measured.
  • Example 1 Commercially available HDL concentrate (BRT) diluted with physiological saline so that the HDL-C concentration is about 50 mg / dL, and physiological saline so that the HDL-C concentration is about 100 mg / dL Diluent B diluted with water was prepared.
  • Dilution Series 3 diluted human serum 1 in 5 stages with physiological saline as shown in Table 1 below, diluted series 2 diluted in 5 stages as shown in Table 2 below using dilution A, and dilution B As shown in Table 3 below, Dilution Series 3 was prepared by diluting in five steps.
  • a TRL-C measurement reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-1) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • FIGS. 1-1 to 1-3 The results when the dilution levels of dilution series 1, dilution series 2, and dilution series 3 are on the x-axis and the reaction absorbance of TRL-C is on the y-axis are shown in FIGS. 1-1 to 1-3.
  • the dilution series 2 and the dilution series 3 prepared using the diluent A or the diluent B containing HDL are better than the dilution series 1 prepared using the physiological saline. Showed good dilution linearity.
  • Example 2 Dilution series 4 in which human serum 2 was diluted in 5 stages with physiological saline as shown in Table 4 below, and dilution series 5 was diluted in 5 stages as shown in Table 5 below using diluent B described in Example 1 was prepared.
  • the reaction absorbance when the dilution series 4 and the dilution series 5 were used as samples was measured by the Hitachi 7180 automatic analyzer by the following method.
  • 150 ⁇ L of the first reagent was added to 3 ⁇ L of the sample and reacted at 37 ° C. for 5 minutes.
  • 50 ⁇ L of the second reagent was added and reacted for 5 minutes, and then the reaction absorbance was measured at a main wavelength of 600 nm and a subwavelength of 700 nm.
  • Example 3 A TRL-C measurement reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-2) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • Example 4 A TRL-C measurement reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-3) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • the reaction absorbance of TRL-C when the dilution series 1 described in Example 1 was used as a sample was the same as in Example 1. It measured by the method of each. The results when the dilution level of the dilution series is on the x-axis and the reaction absorbance of TRL-C is on the y-axis are shown in FIGS. As shown in Figs. 3-1 to 3-3, the measurement using the TRL-C reagent containing HDL is better than the measurement using the TRL-C reagent containing no HDL. Good dilution linearity was shown.
  • Example 5 A TRL-C measurement reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-4) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • Example 6 A TRL-C measurement reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-5) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • Example 7 A TRL-C measurement reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-6) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • Example 8 A TRL-C measuring reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-7) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • Example 9 A TRL-C measuring reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-8) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • Example 10 A reagent for measuring TRL-C comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-9) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • the reaction absorbance of TRL-C when the dilution series 1 described in Example 1 was used as a sample was the same as in Example 1. It measured by the method of each. The results when the dilution level of the dilution series is on the x-axis and the reaction absorbance of TRL-C is on the y-axis are shown in FIGS. As shown in Fig.4-1 to Fig.4-7, compared with the measurement using the TRL-C reagent without phospholipid, the measurement with the TRL-C reagent containing phospholipid. It showed better dilution linearity.
  • Example 11 A TRL-C measurement reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-10) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • Example 12 A TRL-C measuring reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-11) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • Example 13 A TRL-C measuring reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-12) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • Example 14 A TRL-C measuring reagent comprising the following first reagent (TRL-C reagent 1-13) and second reagent (TRL-C reagent 2) was prepared.
  • Second reagent (TRL-C reagent 2) PIPES, pH6.8 50mmol / L 4-Aminoantipyrine 4.0mmol / L Peroxidase 20 units / mL Sodium azide 0.05% (w / v) Polyoxyethylene alkyl ether 0.5% (w / v)
  • the reaction absorbance of TRL-C when the dilution series 1 described in Example 1 was used as a sample was the same as in Example 1. It measured by the method of each. The results when the dilution level of the dilution series is on the x-axis and the reaction absorbance of TRL-C is on the y-axis are shown in FIGS. 5-1 to 5-5. As shown in FIGS. 5-1 to 5-5, the TRL-C reagent containing the phospholipid-like surfactant is compared with the case where the measurement is performed using the TRL-C reagent not containing the phospholipid-like surfactant. Better dilution linearity was observed when measured using.

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Abstract

要約　被検試料中のリポ蛋白コレステロールをより正確に定量できる方法、この方法に用いられる定量試薬及び定量キットを提供する。本発明は、リポ蛋白を含む被検試料中のリポ蛋白コレステロールを、所望により定量試薬を用いて定量するリポ蛋白コレステロールの定量方法であって、前記被検試料中又は前記定量試薬中にリン脂質を添加することを含む。また、本発明は、前記本発明の方法に用いられるリポ蛋白中のコレステロールの定量試薬であって、リン脂質を含有する定量試薬である。更に、本発明は、前記本発明の方法に用いられるリポ蛋白コレステロールの定量キットであって、リン脂質を含む定量キットである。

Description

リポ蛋白コレステロールの定量方法、定量試薬及び定量キット
　本発明は、リポ蛋白中のコレステロールの定量方法、定量試薬及び定量キットに関する。
　血液中に含まれるリポ蛋白は、超遠心分離による密度の違いから、カイロミクロン、超低密度リポ蛋白（以下、VLDLと呼ぶことがある）、中間密度リポ蛋白（以下、IDLと呼ぶことがある）、低密度リポ蛋白（以下、LDLと呼ぶことがある）、高密度リポ蛋白（以下、HDLと呼ぶことがある）に分けられる。近年はこれらのリポ蛋白は比重や大きさによってさらに細分化されており、例えば、LDLの中で小型で高密度のものとして、小粒子低密度リポ蛋白（以下、small, dense LDL又はsdLDLと呼ぶことがある）などがある。これらのリポ蛋白は、トリグリセリドやコレステロールなどの脂質や蛋白等の含有量が違っており、それぞれ生体内で異なった作用を示すことが知られている。
　現在までに知られているリポ蛋白中のコレステロールの測定法として、超遠心法、NMR法などが存在する。超遠心は遠心によりリポ蛋白の密度の差を利用して画分する方法であり、作業に熟練が必要なこと、日数がかかること、また費用も高額となる欠点がある。NMR法は磁気共鳴によりリポ蛋白の粒子数を計測する方法であるが、特殊な機械が必要であり、一般的ではない。
　近年、これらの煩雑な操作が不要で、自動分析装置において使用可能なダイレクト法が急速に普及してきた。HDLを測定する方法としては、例えば、特許文献１には、凝集剤として硫酸化シクロデキストリンを用いて、ＨＤＬ以外のリポ蛋白を十分に反応させた後、ポリエチレングリコールで修飾した酵素を作用させて、ＨＤＬ中のコレステロールを特異的に測定する方法が開示されている。特許文献２には、ＨＤＬ以外のリポ蛋白に対して反応阻害性の界面活性剤と、ＨＤＬを特異的に溶解する界面活性剤を使用する方法が開示されている。特許文献３には、第一工程でＨＤＬ以外のリポ蛋白をカタラーゼで消去し、第二工程でＨＤＬに特異的に作用する界面活性剤を用いてＨＤＬを測定する方法が開示されている。更に特許文献４には、初めにＨＤＬ以外のリポ蛋白に対する抗体を作用させ、次いでＨＤＬの溶解を行い、コレステロールを検出する方法が開示されている。small, dense LDLを測定する方法としては、例えば、特許文献５には、第一工程でsmall, dense LDL以外のリポ蛋白のコレステロールをsmall, dense LDL以外に作用する界面活性剤を用いて消去し、次いで残存したsmall, dense LDL中のコレステロールを定量する方法が開示されている。特許文献６には、第一工程でスフィンゴミエリナーゼを用いてsmall, dense LDL以外のLDLのリポ蛋白のコレステロールを消去し、次いで残存したsmall, dense LDL中のコレステロールを定量する方法が開示されている。また、カイロミクロン（カイロミクロンレムナントを含む）、VLDL（VLDLレムナントを含む）及びIDLを合わせた密度1.019g/cm3未満のトリグリセリドリッチリポ蛋白（TRL）の測定方法としては、特許文献７には、TRL以外のリポ蛋白のコレステロールをTRL以外に作用する界面活性剤を用いて消去し、次いで残存したTRL中のコレステロールを定量する方法が開示されている。
特開平８－１３１１９７号公報 特開平１１－５６３９５号公報 ＷＯ９８／２６０９０号公報 特開平９－９６６３７号公報 特開２０１３－１４８５８９号公報 ＷＯ０９／０４８１４３号公報 特開２０１７－２０９０３５号公報
　本発明の目的は、被検試料中のリポ蛋白コレステロールをより正確に定量できる方法、この方法に用いられる定量試薬及び定量キットを提供することである。
　本願発明者らは、鋭意研究の結果、被検試料中又は定量試薬中にリン脂質を添加することで、測定値の直線性（被検試料の希釈レベルとコレステロールの反応吸光度との相関の直線性）が向上することを見出した。この知見を利用することにより、より正確にリポ蛋白中のコレステロールを測定できることに想到し、本発明を完成した。
　すなわち、本発明は以下のとおりである。
[１］リポ蛋白を含む被検試料中のリポ蛋白コレステロールを、所望により定量試薬を用いて定量するリポ蛋白コレステロールの定量方法であって、前記被検試料中又は前記定量試薬中にリン脂質を添加することを含む定量方法。
[２］前記リン脂質がホスファチジルコリン（ＰＣ）又はリゾホスファチジルコリン（ＬＰＣ）である［１］に記載の方法。
[３］前記リン脂質がリン脂質様界面活性剤である[１］に記載の方法。
[４］前記リン脂質が、定量されるコレステロールを含むリポ蛋白とは異なるリポ蛋白質である［１］に記載の方法。
[５］前記リン脂質が高密度リポ蛋白質（ＨＤＬ）である［４］に記載の方法。
[６］前記リポ蛋白がトリグリセリドリッチリポ蛋白（ＴＲＬ）である［１］～［５］のいずれかに記載の方法。
[７］前記リポ蛋白がsmall, dense ＬＤＬである［１］～［５］のいずれかに記載の方法。
[８］前記リポ蛋白コレステロールを定量試薬を用いて定量する［１］～［７］のいずれかに記載の方法。
[９］［１］～［８］のいずれかに記載の方法に用いられるリポ蛋白中のコレステロールの定量試薬であって、リン脂質を含有する定量試薬。
[１０］［９］に記載の試薬の、リポ蛋白を含む被検試料中のリポ蛋白コレステロールを定量するための試薬としての使用。
[１１］［１］～［８］のいずれかに記載の方法に用いられるリポ蛋白コレステロールの定量キットであって、リン脂質を含む定量キット。
[１２］［１１］に記載のキットの、リポ蛋白を含む被検試料中のリポ蛋白コレステロールを定量するためのキットとしての使用。
　本発明により、被検試料中のリポ蛋白コレステロールをより正確に定量することができる新規な方法、この方法に用いられる定量試薬及び定量キットが提供された。
実施例１において、希釈系列１（ヒト血清を生理食塩水で希釈）の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１において、希釈系列２（ヒト血清をHDLを含む希釈液Ａで希釈）の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１において、希釈系列３（ヒト血清をHDLを含む希釈液Ｂで希釈）の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例２において、希釈系列４（ヒト血清を生理食塩水で希釈）の希釈レベルに対し、sdLDL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例２において、希釈系列５（ヒト血清をHDLを含む希釈液Ｂで希釈）の希釈レベルに対し、sdLDL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１のTRL-C試薬１－１（HDL-C: 0mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１（ヒト血清を生理食塩水で希釈）の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例３のTRL-C試薬１－２（HDL-C: 2mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例４のTRL-C試薬１－３（HDL-C: 3mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１のTRL-C試薬１－１（リン脂質: 0mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１（ヒト血清を生理食塩水で希釈）の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例５のTRL-C試薬１－４（リン脂質PC: 400mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例６のTRL-C試薬１－５（リン脂質PC: 800mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例７のTRL-C試薬１－６（リン脂質PC: 1600mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例８のTRL-C試薬１－７（リン脂質LPC: 400mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例９のTRL-C試薬１－８（リン脂質LPC: 800mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１０のTRL-C試薬１－９（リン脂質LPC: 1600mg/dL）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１のTRL-C試薬１－１（LIPIDURE 非添加）を用いた場合に、希釈系列１（ヒト血清を生理食塩水で希釈）の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１１のTRL-C試薬１－１０（LIPIDURE BL206）を用いた場合に、希釈系列１（ヒト血清を生理食塩水で希釈）の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１２のTRL-C試薬１－１１（LIPIDURE BL1002）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１３のTRL-C試薬１－１２（LIPIDURE SF08）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。 実施例１４のTRL-C試薬１－１３（LIPIDURE SF16）を用いた場合に、希釈系列１の希釈レベルに対し、TRL-Cの反応吸光度をプロットした図である。
　本発明は、被検試料中のリポ蛋白に含まれるコレステロールを、所望により定量試薬を用いて定量するにあたり、被検試料中又は定量試薬中にリン脂質を添加することを特徴とする。
　リポ蛋白中に含まれるコレステロールとしては、エステル型コレステロール（コレステ
ロールエステル）及び遊離型コレステロールがある。本発明において単に「コレステロー
ル」という場合にはこれらの両者を包含する。
　本発明の方法で定量しようとするリポ蛋白中のコレステロールとは、トリアシルグリセロール（トリグリセリド、中性脂肪）および、細胞の生命維持に不可欠なコレステロールを多く含む球状粒子に含まれるコレステロールである。
　コレステロールを含むリポ蛋白は、電気泳動法又は超遠心にて分類され、カイロミクロン、超低密度リポタンパク質（VLDL）、中間密度リポタンパク質（IDL）、低密度リポタンパク質（LDL）、small, dense LDL、高密度リポタンパク質（HDL）等が挙げられる。また、リポ蛋白としては、カイロミクロン（カイロミクロンレムナントを含む）、VLDL（VLDLレムナントを含む）及びIDLを合わせた密度1.019g/cm3未満のトリグリセリドリッチリポ蛋白（TRL）を挙げることもできる。
　本発明の方法に供される被検試料（検体）としては、リポ蛋白を含み、リポ蛋白中のコレステロールを定量しようとするものであれば特に限定されないが、通常、血液（全血、血清及び血漿を包含する）等の体液やその希釈物である。
　本発明のリポ蛋白コレステロールの定量方法は、この分野において周知のいずれの方法をも採用することができる。例えば、定量試薬を用い、コレステロールにコレステロールオキシダーゼおよびコレステロールエステラーゼを作用させ、生成した過酸化水素をペルオキシダーゼと水素供与体および水素受容体によりキノン色素に変え、該色素を吸光度測定して定量する方法が挙げられる。これらは広く用いられている周知の酵素的な定量方法であり、WO98/47005やWO98/26090にも記載されている。なお、本発明においては、被検試料中にリン脂質を添加することができれば、コレステロールをいかなる方法でも測定することができる。例えば、定量試薬を用いない方法としては、超遠心法やNMR法などが挙げられる。
　本発明において、所望により使用するコレステロールの定量試薬としては、後述するリン脂質の他に、例えば、コレステロールオキシダーゼ、コレステロールエステラーゼ、ペルオキシダーゼ、水素供与体および水素受容体を含有する試薬を用いることができる。
　本発明の方法で供されるリン脂質は、部分構造としてリン酸エステルを持つ脂質であり、生体中で主に細胞膜の主要構成成分として存在している。本発明におけるリン脂質としては、グリセロールを骨格とするグリセロリン脂質やスフィンゴシンを骨格とするスフィンゴリン脂質が挙げられる。グリセロリン脂質としては、ホスファチジルコリン（ＰＣ）、リゾホスファチジルコリン（ＬＰＣ）、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルセリン、及びホスファチジルグリセロールなどが挙げられる。スフィンゴリン脂質としては、スフィンゴミエリン及びスフィンゴエタノールアミンなどが挙げられる。
　また、本発明におけるリン脂質には、リン脂質様界面活性剤、及びリン脂質を部分構造として含む物質も包含される。リン脂質様界面活性剤とは、部分構造としてリン酸エステルを持つ界面活性剤であり、リン脂質様界面活性剤としては、ホスホリルコリン基（ＰＣ基）を有する構造のものが好ましく、具体的には、LIPIDURE BL206（日油社）、LIPIDURE BL1002（日油社）、LIPIDURE SF08（日油社）、LIPIDURE SF16（日油社）などが挙げられる。リン脂質を部分構造として含む物質としては、リポ蛋白、リポソーム、細胞膜などの生体膜などが挙げられ、リポ蛋白としては、例えば、カイロミクロン、超低密度リポタンパク質（VLDL）、中間密度リポタンパク質（IDL）、低密度リポタンパク質（LDL）、small, dense LDL、高密度リポタンパク質（HDL）等が挙げられる。
　本発明におけるリン脂質としてリポ蛋白を使用する場合には、本発明の方法で定量しようとするコレステロールを含むリポ蛋白とは異なるリポ蛋白を用いる。例えば、トリグリセリドリッチリポ蛋白（TRL）中のコレステロールを定量する場合には、TRLとは異なるリポ蛋白、例えば、高密度リポタンパク質（HDL）を用いることができる。
　本発明におけるリン脂質は、単独で用いてもよいし、複数種類を組み合わせて用いてもよい。
　本発明においては、反応液中に一定量以上のリン脂質が存在していれば良く、被検試料中又は定量試薬中にリン脂質を添加する。リン脂質は被検試料（検体）を希釈する際等に使用する希釈液に添加することにより、被検試料中に添加しても良く、また、リン脂質を定量試薬中に予め添加しておき、測定時に添加されるように構成しても良い。
　リン脂質の添加量は、リン脂質を被検試料中に添加する場合には、被検試料を希釈するための希釈液中のリン脂質の濃度が、通常1～1000 mg/dL、好ましくは10～500 mg/dL、更に好ましくは50～300 mg/dLの範囲となるように添加するのがよい。
　リン脂質を定量試薬中に添加する場合のリン脂質の添加量は、リン脂質の種類により異なる。例えば、リン脂質がグリセロリン脂質又はスフィンゴリン脂質に場合には、定量試薬中のリン脂質が、通常50～5000 mg/dL、好ましくは200～3000 mg/dL、更に好ましくは500～2000 mg/dLの範囲となるように添加するのがよい。また、リン脂質がリポ蛋白質の場合には、定量試薬中のリポ蛋白コレステロールが、通常0.05～100 mg/dL、好ましくは0.1～50 mg/dL、更に好ましくは0.5～10 mg/dLの範囲となるように添加するのがよい。
　本発明の方法は、リポ蛋白を含む被検試料に上記定量試薬をそのまま反応させてコレステロールを定量することも可能であるが、被検試料中の定量対象となるリポ蛋白以外のリポ蛋白中のコレステロールを選択的に消去する第１工程（工程(1)）と、反応系内に残存する定量対象となるリポ蛋白中のコレステロールを定量する第２工程（工程(2)）により本発明の方法を行うと、定量対象となるリポ蛋白中のコレステロールをより正確に定量することができる。
　本発明中においてリポ蛋白に対して「反応する」という言葉を用いる場合は、界面活性剤や酵素によってリポ蛋白の構造が変化し、内部のコレステロールに対して酵素が作用しやすくなることを意味する。
　本発明における工程(1)では、定量対象となるリポ蛋白以外のリポ蛋白中のコレステロールを選択的に消去する。ここで「消去」とはコレステロールを分解し、かつ、その分解物が次の工程(2)で検出されないようにすることを意味する。定量対象となるリポ蛋白以外のリポ蛋白に含まれるコレステロールを選択的に消去する方法としては、例えば被検試料に、コレステロールオキシダーゼおよびコレステロールエステラーゼを作用させ、生じた過酸化水素を除去する方法が挙げられる。過酸化水素を除去する方法としては、カタラーゼを作用させて水と酸素に分解する方法、又はペルオキシダーゼの作用により例えば過酸化水素と反応して無色キノンを生じる水素供与体化合物を無色キノンに転化する方法等を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。
　なお、第１工程において特定のリポ蛋白中のコレステロールを選択的に消去する方法は、LDLコレステロールの定量方法（例えばWO98/47005等）やHDLコレステロールの定量方法（例えばWO98/26090等）等に広く採用され、周知となっているものである。本発明の工程(1)も、これらの周知の方法により実施することが可能である。
　本発明におけるリン脂質は、上記工程(1)において添加すると、測定値の直線性（被検試料の希釈レベルとコレステロールの反応吸光度との相関の直線性）が更に向上するという点で好ましい。
　続く工程(2)では、前述した周知の方法により、前記工程(1)で消去されずに残存する定量対象となるリポ蛋白中のコレステロールを酵素的に定量する。前記工程(1)でコレステロールオキシダーゼおよびコレステロールエステラーゼを用いる場合には、工程(2)では、工程(1)で用いたコレステロールオキシダーゼおよびコレステロールエステラーゼをそのまま用いることができ、新たに添加する必要はない。
　なお、工程(1)において生じた過酸化水素をカタラーゼで分解し、工程(2)でこのカタラーゼを阻害する必要がある場合は、工程(2)において例えばアジ化ナトリウムのようなカタラーゼ阻害剤を用いてカタラーゼを阻害する。
　本発明の工程(1)および工程(2)においては、少なくとも１種の界面活性剤を用いることができる。好適な界面活性剤を用いれば、それぞれの工程における酵素反応を促進することができる。
　本発明で使用することができるコレステロールオキシダーゼとしては、コレステロールを酸化して過酸化水素を生成する能力を有する酵素であれば特に限定されず、例えば動物又は微生物由来のコレステロールオキシダーゼがあげられる。これらは、遺伝子操作により作られたものでもよく、化学修飾の有無も問わない。また、本発明で使用することができるコレステロールエステラーゼとしては、エステル型コレステロールに作用するものであれば、特に制限されるものではない。
　本発明で使用する、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼの各酵素の使用量は、特に制限されるものではなく、適宜設定できるが、通常、0.001U～2000U/mLで、好ましくは0.1～1000U/mLで使用される。
　本発明で使用する水素供与体としてはアニリン誘導体が好ましく、アニリン誘導体としてはN－エチル－N－（2－ヒドロキシ－3－スルホプロピル）－3－メチルアニリン（TOOS）、N－エチル－N－（2－ヒドロキシ－3－スルホプロピル）－3，5－ジメチルアニリン（MAOS）、N－エチル－N－（3－スルホプロピル）－3－メチルアニリン（TOPS）、N－（2－ヒドロキシ－3－スルホプロピル）－3，5－ジメトキシアニリン（HDAOS）、N－（3－スルホプロピル）アニリン（HALPS）、N－（3－スルホプロピル）－3－メトキシ－5－アニリン（HMMPS）等があげられる。
　水素受容体としては4－アミノアンチピリンやメチルベンゾチアゾロンヒドラゾン等を用いることができる。
　反応液には通常の生化学反応に用いられる各種の緩衝液を使用することができ、緩衝液のｐＨは５～８の間であるのが好ましい。溶液としては、グッド、トリス、リン酸、グリシンの緩衝溶液が好ましく、グッド緩衝液であるビス（２－ヒドロキシエチル）イミノトリス（ヒドロキシエチル）メタン（Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ）、ピペラジン－１、４－ビス（２－エタンスルフォン酸）（ＰＩＰＥＳ）、ピペラジン－１、４－ビス（２－エタンスルフォン酸）、１．５ナトリウム塩、一水和物（ＰＩＰＥＳ１．５Ｎａ）、２－ヒドロキシ－３－モルホリノプロパンスルホン酸（ＭＯＰＳＯ）、Ｎ、Ｎ－ビス（２－ヒドロキシエチル）－２－アミノエタンスルフォン酸（ＢＥＳ）、２－［４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジニル］エタンスルフォン酸（ＨＥＰＥＳ）およびピペラジン－１、４－ビス（２－ヒドロキシ－３－プロパンスルフォン酸）（ＰＯＰＳＯ）が好ましい。
　本発明における各工程は、pH5～pH10で行うことが好ましく、pH6～pH8で行うことがさらに好ましい。
　反応温度は各工程とも20℃～45℃で行うことが好ましく、25℃～40℃で行うことがさらに好ましい。反応時間は各工程とも1～10分間で行うことが好ましく、3～7分で行うことがさらに好ましい。
　本発明の定量方法を実施するに当たり、用いる試薬を複数の試薬組成物に分けてもよい。本発明においては、試薬としては例えば定量対象となるリポ蛋白以外のリポ蛋白中のコレステロールを消去する工程（すなわち工程(1))を行うための試薬組成物（第一試薬）と、定量対象となるリポ蛋白中のコレステロールを測定する工程（すなわち工程(2)）を行うための試薬組成物（第二試薬）の２種類の試薬組成物を調製し、これら２種類の試薬組成物を組み合わせたものをリポ蛋白コレステロールの定量キットとすることができる。
　工程(1)を行うための試薬組成物には、上述したような定量対象となるリポ蛋白以外のリポ蛋白中のコレステロールを消去するのに適した界面活性剤が含まれる。該試薬組成物にはさらに、コレステロールオキシダーゼ、コレステロールエステラーゼ、アニリン誘導体等の水素供与体、過酸化水素を消去するカタラーゼ等を含ませればよい。
　工程(2)を行うための試薬組成物には、少なくとも、上記したようなすべてのリポ蛋白に対して反応する界面活性剤が含まれる。該試薬組成物にはさらに、4-アミノアンチピリン等の水素受容体、ペルオキシダーゼ等を含ませることができる。
　本発明におけるリン脂質は、工程(1)を行うための試薬組成物（第一試薬）中に含有させると、測定値の直線性（被検試料の希釈レベルとコレステロールの反応吸光度との相関の直線性）が更に向上するという点で好ましい。
　試薬組成物中のリン脂質の含有量はリン脂質の種類により異なるが、リン脂質がグリセロリン脂質又はスフィンゴリン脂質に場合には、試薬組成物中のリン脂質の濃度は、通常50～5000 mg/dL、好ましくは200～3000 mg/dL、更に好ましくは500～2000 mg/dLの範囲である。また、リン脂質がリポ蛋白質の場合には、試薬組成物中のリポ蛋白コレステロールの濃度は、通常0.05～100 mg/dL、好ましくは0.1～50 mg/dL、更に好ましくは0.5～10 mg/dLの範囲である。
　工程(1)を行うための試薬組成物及び工程(2)を行うための試薬組成物には、必要に応じて、１価の陽イオン（例えば一価の金属イオン）、２価の陽イオン（例えば二価の金属イオン）もしくはそれらの塩、ポリアニオン（例えばヘパリン、デキストラン硫酸塩、リンタングステン酸塩）、血清アルブミンを添加してもよい。また、各試薬組成物のpHは、中性付近、例えばpH5～pH9、好ましくはpH6～8であり、緩衝液を添加してpHを調整すればよい。
　本発明の方法によりを定量対象となるリポ蛋白中のコレステロールを定量するには、被検試料に工程(1)を行うための試薬組成物を添加し反応させ、次いで工程(2)を行うための試薬組成物を添加し反応させ、吸光度を測定することにより行えばよい。
　以下、本発明を実施例に基づき具体的に説明するが、本発明は下記実施例に限定されるものではない。
　実施例１
　市販のHDL濃縮液（BRT社）を、HDL-C濃度が約50mg/dLになるように生理食塩水で希釈した希釈液Ａ、およびHDL-C濃度が約100mg/dLになるように生理食塩水で希釈した希釈液Ｂを調製した。
　ヒト血清１を、生理食塩水を用いて下記表１の通りに5段階希釈した希釈系列１、希釈液Ａを用いて下記表２の通りに5段階希釈した希釈系列２、希釈液Ｂを用いて下記表３の通りに5段階希釈した希釈系列３を調製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－１）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－１）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
　TRL-C測定用試薬を用いて、希釈系列１、希釈系列２、希釈系列３を検体としたときの反応吸光度を、日立７１８０型自動分析装置により、以下の方法で測定した。
　検体3μLに第一試薬を150μL加え、37℃で5分間反応させ、次いで、第二試薬を50μL加えて5分間反応させた後に、反応吸光度を主波長600nm、副波長700nmで測定した。
　希釈系列１、希釈系列２、希釈系列３の各希釈レベルをx軸に、TRL-Cの反応吸光度をy軸にしたときの結果を図１－１～図１－３に示す。
　図１に示したように、生理食塩水を用いて調製された希釈系列１に比べ、HDLを含む希釈液Ａ又は希釈液Ｂを用いて調製された希釈系列２および希釈系列３の方が良好な希釈直線性を示した。
実施例２
　ヒト血清２を、生理食塩水を用いて下記表４の通りに5段階希釈した希釈系列４、実施例１に記載の希釈液Ｂを用いて下記表５の通りに5段階希釈した希釈系列５を調製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　デンカ生研社製のsdLDL-C測定用試薬を用いて、希釈系列４、希釈系列５を検体としたときの反応吸光度を、日立７１８０型自動分析装置により、以下の方法で測定した。
　検体3μLに第一試薬を150μL加え、37℃で5分間反応させ、次いで、第二試薬を50μL加えて5分間反応させた後に、反応吸光度を主波長600nm、副波長700nmで測定した。
　希釈系列４、希釈系列５の各希釈レベルをx軸に、sdLDL-Cの反応吸光度をy軸にしたときの結果を図２－１及び図２－２に示す。
　図２に示したように、生理食塩水を用いて調製された希釈系列４に比べ、HDLを含む希釈液Ｂを用いて調製された希釈系列５の方が良好な希釈直線性を示した。
実施例３
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－２）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　HDL濃縮液　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 2mg/dL（HDL-C）
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
実施例４
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－３）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－３）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　HDL濃縮液　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 3mg/dL（HDL-C）
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
　実施例１、実施例３～４に記載のTRL-C測定用試薬を用いて、実施例１に記載の希釈系列１を検体としたときのTRL-Cの反応吸光度を、実施例１と同様の方法でそれぞれ測定した。希釈系列の希釈レベルをx軸に、TRL-Cの反応吸光度をy軸にしたときの結果を図３－１～図３－３に示す。
　図３－１～図３－３に示したように、HDLを含まないTRL-C試薬を使用して測定した場合に比べ、HDLを含むTRL-C試薬を使用して測定した場合の方が良好な希釈直線性を示した。
実施例５
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－４）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－４）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質（ホスファチジルコリン（PC））　　　　　　　　　　400mg/dL
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
実施例６
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－５）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－５）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質（ホスファチジルコリン（PC））　　　　　　　　　　800mg/dL
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
実施例７
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－６）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－６）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質（ホスファチジルコリン（PC））　　　　　　　　　　1600mg/dL
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
実施例８
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－７）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－７）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質（リゾホスファチジルコリン（LPC））　　　　　　　 400mg/dL
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
実施例９
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－８）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－８）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質（リゾホスファチジルコリン（LPC））　　　　　　　 800mg/dL
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
実施例１０
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－９）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－９）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質（リゾホスファチジルコリン（LPC））　　　　　　　 1600mg/dL
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
　実施例１、実施例５～１０に記載のTRL-C測定用試薬を用いて、実施例１に記載の希釈系列１を検体としたときのTRL-Cの反応吸光度を、実施例１と同様の方法でそれぞれ測定した。希釈系列の希釈レベルをx軸に、TRL-Cの反応吸光度をy軸にしたときの結果を図４－１～図４－７に示す。
　図４－１～図４－７に示したように、リン脂質を含まないTRL-C試薬を使用して測定した場合に比べ、リン脂質を含むTRL-C試薬を使用して測定した場合の方が良好な希釈直線性を示した。
実施例１１
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－１０）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－１０）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質様界面活性剤（LIPIDURE BL206（日油社））　　　　　0.25%(w/v)
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
実施例１２
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－１１）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－１１）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質様界面活性剤（LIPIDURE BL1002（日油社））　　　　　0.25%(w/v)
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
実施例１３
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－１２）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－１２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質様界面活性剤（LIPIDURE SF08（日油社））　　　　　 0.25%(w/v)
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
実施例１４
　以下の第一試薬（TRL-C試薬１－１３）、第二試薬（TRL-C試薬２）からなるTRL-C測定用試薬を調製した。
第一試薬（TRL-C試薬１－１３）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　コレステロールエステラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　コレステロールオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　2U/mL
　カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　1200U/mL
　TOOS　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　2.0mmol/L
　ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル[HLB:12.8]　0.25%(w/v)
　リン脂質様界面活性剤（LIPIDURE SF16（日油社））　　　　　 0.25%(w/v)
第二試薬（TRL-C試薬２）
　PIPES，pH6.8　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50mmol/L
　４－アミノアンチピリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　4.0mmol/L
　ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　20単位/mL
　アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　0.05%(w/v)
　ポリオキシエチレンアルキルエーテル　　　　　　　　　　　　0.5%(w/v)
　実施例１、実施例１１～１４に記載のTRL-C測定用試薬を用いて、実施例１に記載の希釈系列１を検体としたときのTRL-Cの反応吸光度を、実施例１と同様の方法でそれぞれ測定した。希釈系列の希釈レベルをx軸に、TRL-Cの反応吸光度をy軸にしたときの結果を図５－１～図５－５に示す。
　図５－１～図５－５に示したように、リン脂質様界面活性剤を含まないTRL-C試薬を使用して測定した場合に比べ、リン脂質様界面活性剤を含むTRL-C試薬を使用して測定した場合の方が良好な希釈直線性を示した。

Claims (12)

  1. 　リポ蛋白を含む被検試料中のリポ蛋白コレステロールを、所望により定量試薬を用いて定量するリポ蛋白コレステロールの定量方法であって、前記被検試料中又は前記定量試薬中にリン脂質を添加することを含む定量方法。
  2. 　前記リン脂質がホスファチジルコリン（ＰＣ）又はリゾホスファチジルコリン（ＬＰＣ）である請求項１記載の方法。
  3. 　前記リン脂質がリン脂質様界面活性剤である請求項１記載の方法。
  4. 　前記リン脂質が、定量されるコレステロールを含むリポ蛋白とは異なるリポ蛋白質である請求項１記載の方法。
  5. 　前記リン脂質が高密度リポ蛋白質（ＨＤＬ）である請求項４記載の方法。
  6. 　前記リポ蛋白がトリグリセリドリッチリポ蛋白（ＴＲＬ）である請求項１～５のいずれか１項に記載の方法。
  7. 　前記リポ蛋白がsmall, dense ＬＤＬである請求項１～５のいずれか１項に記載の方法。
  8.   前記リポ蛋白コレステロールを定量試薬を用いて定量する請求項１～７のいずれか１項に記載の方法。
  9. 　請求項１～８のいずれか１項に記載の方法に用いられるリポ蛋白中のコレステロールの定量試薬であって、リン脂質を含有する定量試薬。
  10. 　請求項９に記載の試薬の、リポ蛋白を含む被検試料中のリポ蛋白コレステロールを定量するための試薬としての使用。
  11. 　請求項１～８のいずれか１項に記載の方法に用いられるリポ蛋白コレステロールの定量キットであって、リン脂質を含む定量キット。
  12. 　請求項１１に記載のキットの、リポ蛋白を含む被検試料中のリポ蛋白コレステロールを定量するためのキットとしての使用。
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