WO2019049734A1 - 新規ポリエチレングリコール誘導体および蛋白質吸着抑制剤 - Google Patents

新規ポリエチレングリコール誘導体および蛋白質吸着抑制剤 Download PDF

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protein adsorption
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protein
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茜 鹿取
将 松田
朋澄 野田
佐々木 崇
裕貴 鈴木
伸行 坂元
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日油株式会社
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    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54393Improving reaction conditions or stability, e.g. by coating or irradiation of surface, by reduction of non-specific binding, by promotion of specific binding

Definitions

  • the present invention is a novel compound that can be applied to the surface treatment of natural or synthetic materials (substrates), and the surface treatment of proteins, in particular, a surface treatment agent for suppressing nonspecific adsorption of proteins on substrates etc.
  • the present invention relates to a novel compound applicable as a protein adsorption inhibitor).
  • the present invention relates to a surface modifier using the compound as a protein adsorption inhibitor.
  • a novel phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative that prevents nonspecific adsorption of a labeled antibody or antigen or a protein in a sample on the surface of a used substrate in measurement using an immune reaction, and the derivative Phosphorylcholine modified substrate surface-coated with Further, the present invention relates to a method for suppressing protein adsorption to a substrate, wherein the derivative is used as a protein adsorption inhibitor.
  • a protein adsorption inhibitor containing a phosphorylcholine group-containing compound prevents nonspecific adsorption of the antibody or antigen to be measured on the surface of a substrate such as an immune reaction container. It is known to be important.
  • Patent Document 1 discloses the protein adsorption inhibitory effect of a 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine polymer on the surface of a substrate.
  • the invention of Patent Document 1 is characterized by using the polymer having strong protein adsorption-preventing ability to enable analysis of a target substance with high accuracy in analysis of various biorelated substances.
  • Patent Documents 2 and 3 disclose phosphorylcholine compounds and novel polymers having an amino group that can be bonded to a substrate surface by a chemical reaction.
  • the invention of Patent Document 2 is characterized in that since the compound according to the invention has a highly reactive amino group, the substrate surface can be modified with the compound, and the function of the compound can be imparted to the substrate.
  • the invention of Patent Document 3 is characterized in that since the above novel polymer is strongly bound to the substrate surface, the blocking effect for preventing nonspecific adsorption is high, and a minute amount of biological component can be measured with sufficient sensitivity. .
  • Patent Document 1 there is a problem that the 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine polymer may be peeled off from the substrate by washing several times, and the protein adsorption inhibitory effect after washing may be reduced.
  • the compound shown in Patent Document 2 has a problem that the amino group and the phosphorylcholine group are linked by an ethyl group, so that the compound is not sufficient in the protein adsorption inhibitory effect.
  • the compound shown in Patent Document 3 is a polymer, has a high molecular weight, and due to steric repulsion with an antibody or antigen, the binding rate of the protein adsorption inhibitor is unlikely to be high, and the protein adsorption inhibitory effect may not be sufficient.
  • suppression of protein adsorption to magnetic fine particles for the purpose of high sensitivity measurement has been difficult in the prior art.
  • the problem of the present invention is that the protein adsorption suppressing effect of effectively adsorbing on the surface of a substrate such as an immune reaction container and preventing nonspecific adsorption of protein etc. is extremely high, and before and after the washing operation of the substrate It is an object of the present invention to provide a compound excellent in washing resistance, in which the effect does not change, and a protein adsorption inhibitor using the compound.
  • Another object of the present invention is to provide a phosphoryl choline-modified substrate obtained by adsorbing the above-mentioned compound to the substrate surface.
  • a further object of the present invention is to provide an effective method of suppressing protein adsorption to a substrate using the above-mentioned compound.
  • polyethylene glycol derivatives having an amino group and a phosphorylcholine group at the end have high adsorption properties to the surface of a substrate such as an immune reaction container and excellent washing resistance.
  • the present invention has been completed.
  • a phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative represented by formula (1) is provided.
  • n is an integer of 20 to 200.
  • a protein adsorption inhibitor containing the above phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative as an active ingredient.
  • a protein adsorption inhibitor solution containing 0.01 to 20% by mass of the phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative.
  • a phosphorylcholine-modified substrate comprising the substrate and the above-described phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative, wherein the derivative is adsorbed on the substrate surface.
  • a method for suppressing protein adsorption to a substrate comprising the step of treating the substrate surface with the protein adsorption inhibitor solution to form an adsorption layer of the phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative.
  • the phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative of the present invention can highly suppress nonspecific adsorption of a protein on the surface of a substrate by effectively adsorbing itself to the surface of the substrate such as an immune reaction container. That is, it exerts high protein adsorption suppression ability. Furthermore, since the adsorption power to the substrate is strong, it has high durability to washing, and there is very little detachment from the substrate by washing. That is, since the washing resistance is extremely high, the ability to suppress protein adsorption can be highly maintained even if washing is repeated for each measurement.
  • the phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative of the present invention can be strongly adsorbed onto the substrate surface.
  • the phosphorylcholine-modified substrate of the present invention obtained by adsorbing the phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative of the present invention on the substrate surface has high protein adsorption inhibitory ability and excellent washing resistance, so it has high protein adsorption inhibitory ability Can be maintained by
  • the method for suppressing protein adsorption to the substrate of the present invention can strongly adsorb the phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative of the present invention to the surface of the substrate, so that nonspecific adsorption of protein can be highly suppressed. .
  • the phosphorylcholine group-containing polyethylene glycol derivative of the present invention is represented by the following formula (1).
  • the compound represented by the formula (1) may be simply referred to as the derivative of the present invention.
  • the derivative of the present invention has a feature that it has a polyethylene glycol moiety and a phosphoryl choline base in its molecule and can be strongly adsorbed on the surface of various substrates such as an immune reaction container and a measuring instrument.
  • n represents the number of “—O—CH 2 CH 2 —” units calculated from the molecular weight and the like of Formula (1), and is an integer of 20 to 200.
  • the number n is preferably 20 to 100, more preferably 20 to 50, and particularly preferably 40 to 50. If the values of n and m fall within this range, they can be effectively adsorbed on the surface of a substrate such as an immune reaction container and the like, and nonspecific adsorption of protein can be highly suppressed.
  • the compound shown by Formula (1) can also be used for the protein adsorption inhibitor and protein adsorption inhibitor solution which are mentioned later in the state of the mixture of 2 or more types of compounds in which the value etc. of m or n differ.
  • the derivatives of the invention may be in the form of amine salts. That is, the amine at the polyethylene glycol side terminal may form various salts with various acids. Specific examples of the salt include, for example, hydrochloride, acetate, sulfate, trifluoroacetate, hydrobromide, methanesulfonate and the like.
  • the derivative of the present invention is a compound represented by the following formula (2) ( ⁇ -aminoalkyl- ⁇ -mercaptoethoxy-polyoxyethylene) or an amine salt thereof and 2-methacryloyloxyethyl represented by the following formula (3) It can be produced, for example, by reacting 2-trimethylammonioethyl phosphate (hereinafter sometimes abbreviated as MPC) with an amine catalyst such as diisopropylamine in an alcoholic solvent.
  • MPC 2-trimethylammonioethyl phosphate
  • an amine catalyst such as diisopropylamine
  • n is an integer of 20 to 200.
  • the reaction ratio is 0.6 to 1.5 moles of the compound of formula (2) to 1 mole of the compound of formula (3) preferable. If it is less than 0.6 mol, the production yield of the derivative of the present invention may be low. Also, if it exceeds 1.5 moles, there is a risk of side reactions in which the decomposition reaction of MPC of formula (3) occurs or the amino group of the compound of formula (2) undergoes Michael addition reaction to a double bond. Again, the production yield of the derivatives of the invention may be low.
  • the solvent in the production of the derivative of the present invention is not particularly limited as long as it dissolves the compounds of the formulas (2) and (3) and does not react with these compounds. Specifically, in addition to the above-mentioned alcohol solvents, ketone solvents, ester solvents, ether solvents, nitrogen-containing solvents and the like can be used.
  • Alcohol solvents include methanol, ethanol, n-propanol, 2-propanol and the like; ketone solvents such as acetone and methyl ethyl ketone; ester solvents such as ethyl acetate and butyl acetate; ether solvents such as tetrahydrofuran and diethyl ether, Examples of the nitrogen-containing solvent include acetonitrile, nitromethane, N-methylpyrrolidone and the like. In particular, alcohol solvents are preferable.
  • the amount of the solvent used is not particularly limited as long as it can dissolve the raw materials such as the compounds of formulas (2) and (3), and other conditions such as reaction temperature are also taken into consideration for producing the derivative of the present invention It may be a suitable amount.
  • An organic base or an inorganic base can be used as a catalyst for reacting the compounds of the formulas (2) and (3).
  • an amine compound is preferable as the catalyst from the viewpoint of solubility and reactivity in a solvent.
  • Specific examples thereof include methylamine as a primary amine, diisopropylamine as a secondary amine, and triethylamine as a tertiary amine.
  • secondary amines and tertiary amines are preferable.
  • the catalytic amount is preferably 5 to 20 mol% with respect to 100 mol% of the compound of the formula (2) or a salt thereof. If it is less than 5 mol%, the reaction rate may be extremely slow. If it exceeds 20 mol%, decomposition of the ester part of the compound of formula (3) (MPC) may occur.
  • the reaction temperature in the reaction of the compounds of formulas (2) and (3) is preferably 10 to 60.degree. If it is less than 10 ° C., the reaction rate may be very slow. If the temperature is higher than 60 ° C., there is a risk of side reactions in which the ester decomposition reaction of MPC proceeds or the amino group of the compound of the formula (2) undergoes Michael addition reaction to a double bond, and the production of the derivative of the present invention The yield may be low.
  • the reaction time in the reaction of the compounds of formulas (2) and (3) is preferably 6 to 96 hours, depending on the catalyst and the reaction temperature. If the reaction time is less than 6 hours, the reaction may not reach the end point. When the reaction time exceeds 96 hours, the derivative of the present invention, which is a reaction product, may be oxidized and degraded.
  • the inside of the reaction vessel it is preferable to set the inside of the reaction vessel to an inert gas atmosphere such as nitrogen or argon. It is because the byproduct of a disulfide compound can be prevented.
  • the protein adsorption inhibitor of the present invention contains the derivative of the present invention as an active ingredient.
  • the content of the derivative of the present invention in the protein adsorption inhibitor of the present invention is preferably 50 to 100% by mass. It is because an effective protein adsorption suppression ability can be expressed.
  • substances other than the derivative of the present invention which can be contained in the protein adsorption inhibitor of the present invention reagents generally used in the field can be mentioned.
  • the protein adsorption inhibitor of the present invention may contain two or more of the derivatives of the present invention. In this case, it is preferable to adjust the total content of the two or more derivatives within the above range.
  • the protein adsorption inhibitor of the present invention contains 50 to 100% by mass of the derivative of the present invention as an active ingredient, it can be used for the following applications and exhibits excellent effects.
  • the derivative of the present invention can be used for surface treatment of various medical device substrates such as contact lenses, catheters and guide wires, and surface treatment of physiochemical devices such as microchannels, as well as protein adsorption inhibitors.
  • the protein adsorption inhibitor of the present invention is, for example, an enzyme reaction or an antigen-antibody reaction using various antigens, antibodies, receptors, enzymes, etc. in the presence of proteins, polypeptides, steroids, lipids, hormones etc. It can be used in the immunological measurement etc. which are utilized and measured. More specifically, it can be applied to known radioimmunoassay (RIA), enzyme-linked immunosorbent assay (EIA), fluorescent immunoassay (FIA), latex nephelometry, western blotting and the like.
  • RIA radioimmunoassay
  • EIA enzyme-linked immunosorbent assay
  • FIA fluorescent immunoassay
  • latex nephelometry western blotting and the like.
  • the substrate surface part to which the antibody or antigen is not bound is a protein adsorption inhibitor of the present invention
  • the derivative of the present invention is strongly adsorbed on the surface of the substrate by treatment with the above to inhibit protein adsorption.
  • the protein adsorption inhibitor solution of the present invention is a solution in which 0.01 to 20% by mass of the derivative of the present invention is dissolved in a solvent.
  • the concentration of the derivative of the present invention in the protein adsorption inhibitor solution of the present invention is preferably 0.1% by mass or more, and more preferably 1.0% by mass or more. Moreover, 10 mass% or less is preferable, and 5.0 mass% or less is more preferable. Within this range, when the substrate surface is treated with the protein adsorption inhibitor solution of the present invention, the derivative of the present invention is effectively adsorbed onto the substrate surface, and a good protein adsorption inhibiting ability is obtained on the substrate Granted.
  • the protein adsorption inhibitor solution of the present invention may contain two or more of the derivatives of the present invention. In this case, it is preferable to adjust the total concentration of the two or more derivatives within the above range.
  • the protein adsorption inhibitor solution of the present invention can be obtained by dissolving the derivative of the present invention or the protein adsorption inhibitor of the present invention in a solvent, buffer solution or the like.
  • a solvent an organic solvent such as purified water, pure water, ion exchange water, or alcohol of methanol, ethanol, 2-propanol, etc. can be used.
  • the solvent is preferably water or ethanol, more preferably water.
  • a buffer solution a buffer solution which can be used for immunoassays such as phosphate buffer, acetate buffer, carbonate buffer, citrate buffer, Tris buffer, HEPES buffer, physiological saline, etc. If there is, all can be used.
  • the protein adsorption inhibitor solution of the present invention may contain, in addition to the derivative of the present invention, compounds such as reagents generally used in the field for the purpose of improving reactivity and solution stability.
  • compounds such as reagents generally used in the field for the purpose of improving reactivity and solution stability.
  • amino acids such as glycine, alanine, serine, threonine, glutamic acid, aspartic acid, glutamine, asparagine, lysine and histidine
  • amino acid salts amino acids such as glycine, alanine, serine, threonine, glutamic acid, aspartic acid, glutamine, asparagine, lysine and histidine
  • amino acid salts amino acid salts
  • peptides such as glycylglycine
  • phosphates phosphates
  • borates Sulfates
  • inorganic salts such as Tris salts, flavins, acetic acid, citric acid,
  • the content of these compounds other than the derivative of the present invention in the protein adsorption inhibitor solution of the present invention may be appropriately set in a range that does not inhibit the protein adsorption inhibitory effect of the derivative of the present invention in consideration of the purpose of use of the solution. Just do it.
  • the material of the substrate used in the present invention is not particularly limited, and examples thereof include polystyrene, polyvinyl chloride, polypropylene, acrylic resin, polymethyl methacrylate, glass, metal, ceramic, silicone rubber, polyvinylidene fluoride ( Hereinafter, it may be mentioned PVDF), polyurethane, nylon, nitrocellulose, protein, polypeptide, polysaccharide and the like. Among them, polystyrene and PVDF are preferable, and polystyrene is particularly preferable.
  • the derivative of the present invention is also useful for suppressing protein adsorption to magnetic microparticles.
  • the base material of the phosphoryl choline modified base material of the present invention may be magnetic fine particles.
  • the magnetic particles are not particularly limited as long as they contain a material that can be magnetized by magnetic induction.
  • Such materials include iron trioxide (Fe 3 O 4 ), iron trioxide ( ⁇ -Fe 2 O 3 ), various ferrites, metals such as iron, manganese and nickel, cobalt, nickel, manganese and the like. Alloy etc. are mentioned.
  • the magnetic fine particles are particles having a polymer (resin) layer, a polar group, or a ligand on the surface from the viewpoint that the effects of the present invention are more exhibited etc., and they are insoluble particles stable in an aqueous medium.
  • the magnetic fine particle having a polar group is not particularly limited, and is, for example, a magnetic fine particle having at least one polar group selected from the group consisting of an amino group, an aldehyde group, a carboxyl group, a tosyl group, a mercapto group and an epoxy group. It is more preferable that
  • the shape of the substrate is not particularly limited, but specifically, the shape of a film (film), plate, particle, porous, gel, test tube, vial shape , A tube shape, a flask shape, etc. can be illustrated.
  • the mechanism by which the derivative of the present invention is adsorbed to a substrate to form an adsorption layer can be described as follows.
  • the derivative of the present invention may be adsorbed on the surface of the substrate by chemically reacting with the reactive functional group present on the surface of the substrate to form an adsorption layer.
  • the derivative of the present invention is obtained by reacting and bonding the amino group of the derivative of the present invention with a reactive functional group such as a carboxyl group, an epoxy group, a vinyl group or an isocyanate group on the substrate surface. It can be adsorbed on the surface of the material. Accordingly, it is preferable that the surface of the substrate has the presence of these functional groups.
  • a functional group is not present on the surface of the substrate, for example, when only a functional group which does not react with the amino group such as amino group or hydroxyl group is present on the substrate surface, for example, diisocyanate, dicarboxylic acid, diepoxy
  • a functional group capable of reacting with an amino group on the surface of a substrate using a multifunctional reagent such as, for example.
  • the method for introducing such a reactive functional group to the substrate surface is appropriately selected from known conditions depending on the type of the substrate, its surface properties, and the desired introduction amount of the reactive functional group. be able to.
  • the derivative of the present invention is reacted in advance with albumin or a hydrophobic compound, and then it is physically adsorbed onto the substrate surface by adding it as a solution or dispersion. It can also be done.
  • the following method can be mentioned. That is, after immersing the substrate in the protein adsorption inhibitor solution of the present invention, the substrate is sufficiently dried at room temperature or by heating to form an adsorption layer in which the derivative of the present invention is adsorbed to the substrate surface by bonding. .
  • the substrate can be immersed in the protein adsorption inhibitor solution of the present invention, and the derivative of the present invention can be bound to the surface of the substrate by reaction to form an adsorption layer of the derivative.
  • the immersion temperature is 4 to 37 ° C.
  • the immersion time is 4 ° C., 12 hours or more, 4 ° C. to less than 25 ° C., 1 to 12 hours, and 25 to 37 ° C., 0.5 to 2 hours Is preferred.
  • Examples of the substrate used in the method for suppressing protein adsorption of the present invention include those similar to the substrate used for the above phosphorylcholine modified substrate.
  • the base material is removed from the protein adsorption inhibitor solution of the present invention and sufficiently dried at room temperature or by heating to prepare a phosphorylcholine-modified base material on which the adsorption layer of the derivative of the present invention is formed.
  • the phosphoryl choline-modified substrate for measurement utilizing an immune reaction, it is possible to suppress nonspecific adsorption of an antibody or an antigen or a protein in a sample to the substrate.
  • the substrate may be washed with water before the drying.
  • ion exchange water, purified water, pure water or the like can be used.
  • drying by room temperature or heating is not essential, and the target measurement may be performed without the drying step.
  • this protein adsorption inhibitor solution is made to contact the base material surface as the said suppression method Any method may be used if it is possible.
  • the substrate is a container or the like, a method of filling the container with the protein adsorption inhibitor solution may be used.
  • the method for suppressing protein adsorption of the present invention a method of suppressing adsorption of a protein to a substrate at the time of various measurements by forming an adsorption layer of the derivative of the present invention on the surface of the substrate as described above It is one embodiment. That is, the derivative of the present invention covers the surface of a substrate such as an immune reaction container or a measuring instrument as an adsorption layer, thereby preventing protein from approaching the surface of the substrate and suppressing the adsorption thereof.
  • Another embodiment of the method for suppressing protein adsorption of the present invention includes a method in which the agent for suppressing protein adsorption of the present invention is added to a reagent used in various measurements such as immune reaction. That is, it is a method of suppressing adsorption of a protein to a substrate by forming an adsorption layer of the derivative of the present invention on the substrate surface as one step of various measurements.
  • the protein adsorption inhibitor of the present invention may be added to any of the reagent and the solution to be used as long as it is other than the sample to be measured.
  • the concentration of the derivative of the present invention in the reagent or solution to which the protein adsorption inhibitor of the present invention is added is 0.0125 to 5.0% by mass with respect to the total amount of the reagent or solution. Preferably, it is 0.1 to 1.0% by mass.
  • a method of treating a substrate with the protein adsorption inhibitor of the invention can be mentioned.
  • the protein to be measured is physically adsorbed or chemically bound to the plate, washed with a suitable solvent, and then brought into contact with the protein adsorption inhibitor solution of the present invention.
  • the derivative of the present invention is adsorbed in order to suppress the adsorption of the protein to the plate surface portion to which the target is not adsorbed.
  • This is a method of suppressing nonspecific adsorption of protein to the substrate in the subsequent measurement process.
  • Example 1 Preparation of protein adsorption inhibitor solution 1>
  • the protein adsorption inhibitor solution 1 was prepared by dissolving the derivative 1 obtained in Synthesis Example 1 in a carbonate buffer (0.1 mol / L, pH 9.8) so that the concentration was 1.0% by mass.
  • the immune reaction was measured as follows, and in the measurement, a method for suppressing protein adsorption to amino plate was carried out to prepare a phosphorylcholine-modified base material having derivative 1 adsorbed on the base surface, and the protein adsorption suppressing effect was evaluated. .
  • DMS Dimethyl suberimidate ⁇ 2 HCl
  • amino plate Sumitomo Bakelite Co., Ltd.
  • Comparative example 1 The immunoassay reaction was performed in the same manner as in Example 1 except that a carbonate buffer solution in which the derivative 1 was not dissolved was used instead of the protein adsorption inhibitor solution 1, and the absorbance was measured in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 1. The protein adsorption rate of Comparative Example 1 is set to 100%.
  • Example 1 in which the method for suppressing protein adsorption to a substrate of the present invention was carried out using derivative 1 was compared with Comparative Example 1 in which the method for suppressing protein adsorption was not performed. Is less than half, and the protein adsorption rate to the amino plate as the substrate is less than half. Therefore, it can be seen that the nonspecific adsorption of protein to the amino plate is effectively prevented.
  • Example 2 ⁇ Cleaning resistance (desorption resistance)>
  • the washing resistance of the derivative 1 obtained in Synthesis Example 1 was evaluated in comparison with the copolymer 1 by the method described below. That is, the difference in absorbance between the derivative 1 modifier adsorbed on the substrate surface and the presence or absence of the washing of the derivative 1 modifier, and the copolymer 1 modifier adsorbed on the substrate surface
  • Example 2-1 Using the protein adsorption inhibitor solution 1, the immune reaction was measured in the same manner as in Example 1, and the absorbance was similarly measured.
  • Example 2-2 After removing the protein adsorption inhibitor solution 1, an immune reaction was measured in the same manner as in Example 1 except that the washing step of adding and removing 200 ⁇ L / well of PBS was repeated three times, and the absorbance was similarly measured.
  • the washing resistance was calculated from the absorbance of Example 2-1 and the absorbance of Example 2-2 according to the above equation. The results are shown in Table 2.
  • Example 2-3 An immune reaction is carried out in the same manner as in Example 1 except that a PBS solution of copolymer 1 in which copolymer 1 is dissolved in PBS so as to be 1.0 mass% is used instead of protein adsorption inhibitor solution 1. The measurement was performed, and the absorbance was similarly measured.
  • the desorption rate of the derivative 1 by washing from the base material is extremely small compared to the desorption rate of the copolymer 1 by washing, and it can be seen that the washing resistance is excellent.
  • Example 3-1 The immune reaction measurement is performed as follows, and in the measurement, the method for suppressing protein adsorption to magnetic microparticles is carried out to prepare derivative 1-bound magnetic microparticles wherein the derivative 1 is adsorbed to the particle surface, and the protein adsorption suppression effect was evaluated.
  • ⁇ Reaction to magnetic particles Transfer 16 ⁇ L of magnetic microparticles (Thermo Fisher Scientific, DynabeadsTM MyOneTM Carboxylic Acid) into a polypropylene microtube, and use 32 ⁇ L of MES / NaOH buffer (10 mM, pH 5.0, below, MES buffer) The washing step of adding and removing the solution was carried out twice. To this, 2 ⁇ L of a water-soluble carbodiimide solution (dissolved in MES buffer to be 20 mg / mL) and 2 ⁇ L of N-hydroxysuccinimide solution (dissolved in MES buffer to become 12 mg / mL) are added. The reaction was allowed to proceed for 30 minutes at room temperature.
  • HEPES-T buffer Tween 20-containing HEPES buffer
  • 100 ⁇ L / well is dispensed in a V-bottom 96 well plate, and the supernatant was discarded.
  • 100 ⁇ L / well of HRP-labeled IgG diluted 10000 folds with HEPES buffer was added thereto and allowed to stand at room temperature for 1 hour. Thereafter, the washing step of adding and removing 100 ⁇ L / well of HEPES-T buffer was repeated four times.
  • the protein adsorption inhibitory effect was evaluated by the relative protein adsorption ratio calculated by the following equation from the absorbance of Example 3-1 and the absorbance of Comparative Example 3-1 below. That is, the protein adsorption rate to the magnetic fine particles of Example 3-1 was evaluated by the relative adsorption rate when the protein adsorption rate to the magnetic fine particles of Comparative Example 3-1 was 100%.
  • the results are shown in Table 3.
  • Protein adsorption ratio of Example 3-1 (Absorbance of Example 3-1 / Absorbance of Comparative Example 3-1) ⁇ 100
  • Example 3-2 Example 3- except that the washing step of removing 16 ⁇ l of 50 mM HEPES / NaOH buffer (pH 7.4, hereinafter referred to as HEPES buffer) after removing the derivative 1 at 37 ° C. for 2 hours was repeated twice.
  • the immunoassay reaction was performed in the same manner as 1 and the protein adsorption rate was calculated from the obtained absorbance. The results are shown in Table 3.
  • Example 3-3 The immunoassay reaction was performed in the same manner as in Example 3-1 except that the concentration of the derivative 1 was 4 wt%, and the protein adsorption rate was calculated from the obtained absorbance. The results are shown in Table 3.
  • Example 3-1 The immunoassay reaction was performed in the same manner as in Example 3-1 except that a carbonate buffer solution in which the derivative 1 was not dissolved was used, and the protein adsorption rate was calculated from the obtained absorbance. The results are shown in Table 3.
  • Example 3-2 The immunoassay reaction was performed in the same manner as in Example 3-1 except that the copolymer 1 was used instead of the derivative 1, and the protein adsorption rate was calculated from the obtained absorbance. The results are shown in Table 3.
  • Example 3-3 The immunoassay reaction was performed in the same manner as in Example 3-2 except that copolymer 1 was used instead of derivative 1, and the protein adsorption rate was calculated from the obtained absorbance. The results are shown in Table 3.
  • the derivative of the present invention exhibits a particularly excellent protein adsorption inhibitory effect. Further, from the comparison of Examples 3-1 and 3-2 with Comparative Examples 3-2 and 3-3, the derivative of the present invention exhibits excellent washing resistance even when magnetic fine particles are used as the base material. I understand.

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Abstract

免疫反応容器等の基材表面に効果的に吸着し、蛋白質等の非特異的吸着を防止する蛋白質吸着抑制効果が極めて高く、かつ、基材の洗浄操作前後で該効果が変化しない耐洗浄性に優れた化合物を提供する。また、当該化合物を用いた蛋白質吸着抑制剤、ホスホリルコリン修飾基材、及び蛋白質吸着抑制方法を提供する。この化合物は式(1)で示されるホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体である。本発明の蛋白質吸着抑制方法は、基材表面に該誘導体の吸着層を形成する工程を有する。

Description

新規ポリエチレングリコール誘導体および蛋白質吸着抑制剤
 本発明は、天然または合成の材料(基材)の表面処理、および蛋白質の表面処理に応用し得る新規化合物、特に、基材等への蛋白質の非特異吸着を抑制するための表面処理剤(蛋白質吸着抑制剤)として適用可能な新規化合物に関する。さらに、該化合物を蛋白質吸着抑制剤として用いた表面修飾材に関する。
 具体的には、免疫反応を利用した測定において、標識抗体もしくは抗原または検体中の蛋白質の、使用基材の表面への非特異吸着を防止する、新規なホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体、および該誘導体で表面被覆されたホスホリルコリン修飾基材に関する。さらに、該誘導体を蛋白質吸着抑制剤として使用する、基材への蛋白質吸着を抑制する方法に関する。
 従来、ホスホリルコリン基を有する化合物で各種材料表面を処理することにより、ホスホリルコリン基に起因する、生体適合性、抗血栓性、表面親水性等を付与しうる表面処理剤が広く提案されている。その用途としては、蛋白質を親水化するための蛋白質表面処理、工業用フィルター表面の防汚処理、医療用高分子材料に対する蛋白質や血球の吸着抑制のための表面処理が挙げられる。特に近年では、臨床検査、診断薬の分野において、免疫反応を利用した測定系で、ホスホリルコリン基含有化合物を成分とする蛋白質吸着抑制剤が利用されている。微量の生体成分を検出する測定法では、ホスホリルコリン基含有化合物を含む蛋白質吸着抑制剤の添加は、測定対象となる抗体あるいは抗原の免疫反応容器等の基材表面への非特異吸着を防止する点で重要であることが知られている。
 特許文献1は、2-メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン重合体の基材表面に対する蛋白質吸着抑制効果を開示している。特許文献1の発明は、強い蛋白質吸着防止能を有する該重合体を使用し、種々の生体関連物質の分析において、高精度で目的物質の分析を可能とすることを特徴としている。
 特許文献2および3は、化学反応によって基材表面と結合可能なアミノ基を有するホスホリルコリン化合物や新規ポリマーを開示している。特許文献2の発明は、発明に係る化合物が反応性の高いアミノ基を有するために基材表面を該化合物で修飾でき、該化合物の機能を基材に付与し得ることを特徴としている。特許文献3の発明は、上記新規ポリマーが基材表面に強固に結合するため、非特異的吸着を防止するためのブロッキング効果が高く、微量な生体成分を十分な感度で測定できることを特徴としている。
特開平07-083923号 国際公開2012/086762号 特開2015-117269号
 しかしながら、特許文献1の開示の方法では、複数回の洗浄により、2-メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン重合体が基材から剥がれ、洗浄後の蛋白質吸着抑制効果が低下する可能性があるという問題がある。特許文献2で示される化合物は、アミノ基とホスホリルコリン基がエチル基で連結しているために、蛋白質吸着抑制効果の点では十分ではないという問題がある。また、特許文献3で示される化合物はポリマーであり、分子量が高く、抗体または抗原との立体反発により、蛋白質吸着抑制剤の結合率が高くなりにくく、蛋白質吸着抑制効果が十分ではない場合もあるという問題がある。特に、高感度測定を目的とする磁性微粒子への蛋白質吸着抑制は、従来技術では困難であった。
 そこで、本発明の課題は、免疫反応容器等の基材表面に効果的に吸着し、蛋白質等の非特異的吸着を防止する蛋白質吸着抑制効果が極めて高く、かつ、基材の洗浄操作前後で該効果が変化しない耐洗浄性に優れた化合物、および該化合物を用いた蛋白質吸着抑制剤を提供することにある。
 本発明の他の課題は、上記化合物を基材表面に吸着させてなるホスホリルコリン修飾基材を提供することにある。
 本発明の更なる課題は、上記化合物を用いて基材への蛋白質の吸着を抑制する効果的な方法を提供することにある。
 本発明者らは、上記課題に鑑み鋭意検討した結果、末端にアミノ基とホスホリルコリン基を有するポリエチレングリコール誘導体が、免疫反応容器等の基材表面への吸着特性が高く、且つ耐洗浄性に優れることを見出し、本発明を完成するに至った。
 すなわち、本発明によれば、式(1)で示されるホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体が提供される。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
 式(1)中、mは1~10、nは20~200の整数である。
 本発明の別の観点の発明によれば、上記ホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体を有効成分として含有する蛋白質吸着抑制剤が提供される。
 また別の観点の発明によれば、上記ホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体を0.01~20質量%含有する、蛋白質吸着抑制剤溶液が提供される。
 さらに別の観点の発明によれば、基材と上記ホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体とからなり、該誘導体が基材表面に吸着している、ホスホリルコリン修飾基材が提供される。
 さらに別の観点の発明によれば、基材表面を上記蛋白質吸着抑制剤溶液で処理し、上記ホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体の吸着層を形成する工程を有する、基材への蛋白質吸着抑制方法が提供される。
 本発明のホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体は、自身が免疫反応容器等の基材表面に効果的に吸着することにより、基材表面への蛋白質の非特異的吸着を高度に抑制できる。すなわち、高い蛋白質吸着抑制能を発揮する。さらに、基材への吸着力が強いので、洗浄に対して高い耐久性を有し、洗浄による基材からの脱離が極めて少ない。すなわち、耐洗浄性が極めて高いので、測定ごとに洗浄を繰り返しても、蛋白質吸着抑制能を高度に維持できる。
 本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液で基材表面を処理することにより、本発明のホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体を基材表面に強固に吸着させることができる。
 本発明のホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体を基材表面に吸着させて得られる本発明のホスホリルコリン修飾基材は、蛋白質吸着抑制能が高く、かつ耐洗浄性に優れるので、蛋白質吸着抑制能を高いレベルで維持できる。
 本発明の基材への蛋白質吸着抑制方法は、本発明のホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体を基材表面に強固に吸着させることができるので、蛋白質の非特異的吸着を高度に抑制することができる。
 本発明のホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体は下記式(1)で示される。以後、式(1)で示される化合物を単に本発明の誘導体と称することもある。本発明の誘導体は、分子内にポリエチレングリコール部とホスホリルコリン基部を有し、免疫反応容器や測定器具等の各種基材の表面に強固に吸着し得るという特徴を備える。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
 式(1)中、mは1~10の整数であり、2~5が好ましい。nは式(1)の分子量等から算出される「-O-CH2CH2-」ユニット数を表し、20~200の整数である。nの数は20~100が好ましく、20~50がより好ましく、40~50が特に好ましい。nおよびmの値がこの範囲であれば、免疫反応容器等の基材表面に効果的に吸着して、蛋白質の非特異的吸着を高度に抑制することができるからである。なお、式(1)で示される化合物は、mまたはnの値等が異なる2種以上の化合物の混合物の状態で、後述する蛋白質吸着抑制剤や蛋白質吸着抑制剤溶液に使用することもできる。
 本発明の誘導体はアミン塩の構造であってもよい。すなわち、ポリエチレングリコール側末端のアミンが各種酸により各種塩を形成しているものであってもよい。塩の具体例としては、例えば、塩酸塩、酢酸塩、硫酸塩、トリフルオロ酢酸塩、臭酸塩、メタンスルホン酸塩等が挙げられる。
 次に、本発明の誘導体の製造方法の一実施形態について説明する。本発明の誘導体は、下記式(2)で示される化合物(α-アミノアルキル-ω-メルカプトエトキシ-ポリオキシエチレン)またはそのアミン塩と、下記式(3)で示される2-メタクリロイルオキシエチル-2-トリメチルアンモニオエチルホスフェート(以後、MPCと略す場合がある)とを、例えば、アルコール系溶媒中、ジイソプロピルアミン等のアミン触媒を用いて、反応させることにより製造することができる。以後、式(2)の化合物と称した場合は、そのアミン塩も含むものとする。該アミン塩を形成する酸としては、上記本発明の誘導体のアミン塩を形成する酸として例示したものを挙げることができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
 式(2)中、mは1~10、nは20~200の整数である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
 式(2)の化合物と式(3)の化合物との反応において、その反応割合は、式(3)の化合物1モルに対して、式(2)の化合物0.6~1.5モルが好ましい。0.6モル未満の場合、本発明の誘導体の製造収率が低くなるおそれがある。また、1.5モルを超える場合、式(3)のMPCの分解反応が起きたり、式(2)の化合物のアミノ基が二重結合にマイケル付加反応したりする副反応のおそれがあり、やはり本発明の誘導体の製造収率が低くなる可能性がある。
 本発明の誘導体の製造における溶媒としては、式(2)および(3)の化合物を溶解し、これらの化合物と反応しない溶媒であれば特に制限はない。具体的には、上記のアルコール系溶媒の他、ケトン系溶媒、エステル系溶媒、エーテル系溶媒、および含窒素系溶媒等を使用できる。アルコール系溶媒としてはメタノール、エタノール、n-プロパノール、2-プロパノール等;ケトン系溶媒としてはアセトン、メチルエチルケトン等;エステル系溶媒としては酢酸エチル、酢酸ブチル等;エーテル系溶媒としてはテトラヒドロフラン、ジエチルエーテル、シクロペンチルメチルエーテル等;含窒素系溶媒としてはアセトニトリル、ニトロメタン、N-メチルピロリドン等を挙げることができる。特にアルコール系溶媒が好ましい。
 溶媒の使用量としては、式(2)および(3)の化合物等の原料を溶解できる量であれば特に制限はなく、反応温度等他の条件も考慮して、本発明の誘導体の製造に好適な量とすればよい。
 式(2)および(3)の化合物を反応させる触媒としては有機塩基または無機塩基が使用できる。特に、溶媒に対する溶解性や反応性の観点から触媒はアミン化合物が好ましい。具体的には、一級アミンとしてメチルアミン、二級アミンとしてジイソプロピルアミン、三級アミンとしてトリエチルアミン等が挙げられ、特に、二級アミン、三級アミンが好ましい。触媒量としては、式(2)の化合物またはその塩100モル%に対して5~20モル%が好ましい。5モル%未満では反応速度が極端に遅くなるおそれがある。20モル%を超えると、式(3)の化合物(MPC)のエステル部の分解が生じるおそれがある。
 式(2)および(3)の化合物の反応における反応温度としては10~60℃が好ましい。10℃未満の場合は、反応速度が非常に遅くなる可能性がある。60℃を超える場合は、MPCのエステル分解反応が進行したり、式(2)の化合物のアミノ基が二重結合にマイケル付加反応したりする副反応のおそれがあり、本発明の誘導体の製造収率が低くなる可能性がある。
 式(2)および(3)の化合物の反応における反応時間としては、触媒および反応温度にもよるが、6~96時間が好ましい。反応時間が6時間未満の場合、反応が終点に到達しない可能性がある。反応時間が96時間を超えると反応生成物である本発明の誘導体が酸化を受け劣化するおそれがある。
 また、式(2)および(3)の化合物の反応において、反応容器内を窒素やアルゴンなどの不活性ガス雰囲気とすることが好ましい。ジスルフィド化合物の副生を防止することができるからである。
 続いて、本発明の蛋白質吸着抑制剤について説明する。本発明の蛋白質吸着抑制剤は、本発明の誘導体を有効成分として含有する。本発明の蛋白質吸着抑制剤中の、本発明の誘導体の含有量は50~100質量%が好ましい。効果的な蛋白質吸着抑制能を発現できるからである。本発明の蛋白質吸着抑制剤中に含有し得る、本発明の誘導体以外の物質としては、本分野で通常用いられる試薬類を挙げることができる。なお、本発明の蛋白質吸着抑制剤は本発明の誘導体を2種以上含有していてもよい。この場合、2種以上の誘導体の合計の含有量を上記範囲内に調整することが好ましい。
 本発明の蛋白質吸着抑制剤は、本発明の誘導体を有効成分として50~100質量%含有しているので、次のような用途に使用でき、優れた効果を発揮する。
 本発明の誘導体は、蛋白質吸着抑制剤以外として、例えば、コンタクトレンズやカテーテル、ガイドワイヤー等の各種医療機器基材の表面処理、マイクロ流路等の理化学機器の表面処理に利用することができる。
 特に、本発明の蛋白質吸着抑制剤は、例えば、蛋白質、ポリペプチド、ステロイド、脂質、ホルモン等の存在下における、各種抗原、抗体、レセプター、酵素等を利用した、酵素反応、あるいは抗原抗体反応を利用して測定する免疫学的測定等において使用可能である。より具体的には、公知の放射免疫測定法(RIA)、酵素免疫測定法(EIA)、蛍光免疫測定法(FIA)、ラテックス比濁法、ウエスタンブロッティング等に適応することができる。これらの免疫学的測定法において、例えば、免疫反応容器等の基材表面に抗体あるいは抗原を結合させた後、抗体あるいは抗原が結合していない基材表面部分を、本発明の蛋白質吸着抑制剤で処理することによって、本発明の誘導体が基材表面に強固に吸着されて蛋白質の吸着を抑制する。
 次に、本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液について説明する。本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液は、溶媒中に本発明の誘導体が0.01~20質量%溶解している溶液である。本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液中の本発明の誘導体濃度は、0.1質量%以上がより好ましく、1.0質量%以上がさらに好ましい。また、10質量%以下が好ましく、5.0質量%以下がより好ましい。この範囲であれば、基材表面を本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液で処理したときに、本発明の誘導体が基材表面に効果的に吸着されて、良好な蛋白質吸着抑制能が基材に付与される。なお、本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液は本発明の誘導体を2種以上含有していてもよい。この場合、2種以上の誘導体の合計の濃度を上記範囲内に調整することが好ましい。
 本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液は、本発明の誘導体または本発明の蛋白質吸着抑制剤を溶媒もしくは緩衝液等に溶解させることによって得られる。溶媒としては、精製水、純水、イオン交換水、もしくはメタノール、エタノール、2-プロパノールのアルコール等、有機溶媒を使用することができる。溶媒としては、水、エタノールが好ましく、より好ましくは水である。緩衝液としては、リン酸緩衝液、酢酸緩衝液、炭酸緩衝液、クエン酸緩衝液、トリス緩衝液、HEPES緩衝液、生理食塩水等、免疫学的測定法に使用することができる緩衝液であればすべて用いることができる。
 本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液は、本発明の誘導体以外に、反応性向上や溶液安定性を目的として本分野で通常用いられる試薬等の化合物を含有してもよい。具体的には、グリシン、アラニン、セリン、トレオニン、グルタミン酸、アスパラギン酸、グルタミン、アスパラギン、リジン、ヒスチジン等のアミノ酸、および、アミノ酸塩、グリシルグリシン等のペプチド類、リン酸塩、ホウ酸塩、硫酸塩、トリス塩等の無機塩類、フラビン類、酢酸、クエン酸、リンゴ酸、マレイン酸、グルコン酸などの有機酸および有機酸の塩等が挙げられる。
 本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液中の、本発明の誘導体以外のこれら化合物の含有量は、該溶液の使用目的を考慮し、本発明の誘導体による蛋白質吸着抑制作用を阻害しない範囲で適宜設定すればよい。
 続いて、本発明の誘導体を基材表面に吸着させてなるホスホリルコリン修飾基材について説明する。本発明に用いる基材としては、その材質は特に限定されるものではないが、例えばポリスチレン、ポリ塩化ビニル、ポリプロピレン、アクリル樹脂、ポリメチルメタクリレート、ガラス、金属、セラミック、シリコンラバー、ポリフッ化ビニリデン(以後、PVDFと略称する)、ポリウレタン、ナイロン、ニトロセルロース、蛋白質、ポリペプチド、多糖類等を挙げることができる。それらの中でも、ポリスチレンとPVDFが好ましく、特にポリスチレンが好ましい。
 本発明の誘導体は磁性微粒子への蛋白質吸着抑制にも有用である。すなわち、本発明のホスホリルコリン修飾基材の基材は磁性微粒子であってもよい。磁性微粒子は磁気誘導により磁化され得る材料を含むものであれば特に制限されない。このような材料としては、四三酸化鉄(Fe34)、三二酸化鉄(γ-Fe23)、各種フェライト、鉄、マンガン、ニッケル等の金属や、コバルト、ニッケル、マンガン等の合金等が挙げられる。本発明の効果がより発揮される等の点から、磁性微粒子は表面にポリマー(樹脂)層、極性基、またはリガンドを有する粒子であることが好ましく、水系媒体中において安定な不溶性の粒子であることが好ましい。極性基を有する磁性微粒子としては特に制限されないが、例えば、アミノ基、アルデヒド基、カルボキシル基、トシル基、メルカプト基、およびエポキシ基等からなる群より選ばれる少なくとも1つの極性基を有する磁性微粒子であることがより好ましい。
 また、基材の形状としては特に限定されるものではないが、具体的には、膜(フィルム)状、プレート状、粒子状、多孔状、ゲル状、さらには、試験管形状、バイアル瓶形状、チューブ形状、およびフラスコ形状等を例示することができる。
 本発明の誘導体が基材に吸着して吸着層を形成する機構としては、次のように説明することができる。本発明の誘導体は、基材表面に存在する反応性官能基と化学反応することによってその表面に吸着し吸着層を形成してよい。具体的には、本発明の誘導体のアミノ基と、基材表面のカルボキシル基、エポキシ基、ビニル基、イソシアネート基等の反応性官能基とが反応して結合することにより本発明の誘導体が基材表面に吸着し得る。従って、基材表面には、これらの官能基の存在があると良い。
 基材表面にこのような官能基が存在しない場合、例えば、基材表面にアミノ基、水酸基等のアミノ基とは反応しない官能基のみしか存在しない場合には、例えば、ジイソシアネート、ジカルボン酸、ジエポキシ等の多官能性試薬を用いて、アミノ基と反応し得る官能基を基材表面に導入することが可能である。このような反応性官能基の基材表面への導入方法は特に制限はなく、基材の種類、その表面性質、および反応性官能基の所望導入量により、公知の条件から適宜選択して行うことができる。
 さらに、基材表面が疎水基のみである場合には本発明の誘導体をアルブミンや疎水性化合物と事前に反応させた後、それを溶液あるいは分散体として添加することで基材表面に物理吸着させることもできる。
 本発明の誘導体と結合し得る官能基を有する基材表面上に、該誘導体の吸着層を形成する具体的操作方法としては、例えば、次のような方法を挙げることができる。すなわち、本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液中に、基材を浸漬した後、室温または加温により十分に乾燥させることによって、本発明の誘導体が基材表面に結合により吸着した吸着層を形成させる。
 次に、本発明の誘導体を含有する本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液を用いた、免疫反応容器等の基材への蛋白質の吸着を抑制する方法の一実施形態について説明する。本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液中に、基材を浸漬し、基材表面に本発明の誘導体を反応により結合させて該誘導体の吸着層を形成できる。浸漬温度としては4~37℃、浸漬時間としては4℃の場合、12時間以上、4℃超25℃未満の場合、1~12時間、および25~37℃の場合、0.5~2時間が好ましい。本発明の蛋白質吸着抑制方法で使用する基材の例としては、上記ホスホリルコリン修飾基材に用いられる基材と同様のものが挙げられる。
 浸漬終了後、基材を本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液から取り出し、室温または加温により十分に乾燥させて、本発明の誘導体の吸着層が形成されたホスホリルコリン修飾基材を調製する。当該ホスホリルコリン修飾基材を、免疫反応を利用した測定に使用することにより、抗体もしくは抗原、または検体中の蛋白質が基材へ非特異的に吸着することを抑制する。なお、該乾燥前に、基材を水で洗浄してもよい。洗浄水としては、イオン交換水、精製水、純水等を使用することができる。また、室温または加温による乾燥は必須ではなく、乾燥工程を入れずに目的の測定を行ってもよい。
 本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液による基材への蛋白質の吸着を抑制する方法として、上記浸漬法を例示したが、当該抑制方法としては、該蛋白質吸着抑制剤溶液を基材表面に接触させることができれば、どの様な方法を用いてもよい。例えば、基材が容器等であれば、該容器中を当該蛋白質吸着抑制剤溶液で満たす方法を用いてもよい。
 本発明の蛋白質吸着抑制方法としては、上記したように、基材の表面に本発明の誘導体の吸着層を形成させることにより、各種測定時における基材への蛋白質の吸着を抑制する方法が、一つの実施形態である。すなわち、本発明の誘導体が、免疫反応容器や測定器具等の基材表面を吸着層として被覆することにより、蛋白質等の基材表面への接近を防止し、その吸着を抑制するものである。
 本発明の蛋白質吸着抑制方法の別の実施形態としては、免疫反応等の各種測定において使用する試薬に本発明の蛋白質吸着抑制剤を添加する方法が挙げられる。つまり、各種測定の一工程として、基材表面上に本発明の誘導体の吸着層を形成することにより、基材への蛋白質の吸着を抑制する方法である。当該方法において、本発明の蛋白質吸着抑制剤は、測定対象の試料以外であれば、使用する試薬や溶液のいずれに添加してもよい。本実施形態では、本発明の蛋白質吸着抑制剤を添加した試薬または溶液中の本発明の誘導体の濃度は、該試薬または溶液の全量に対して0.0125~5.0質量%であるのが好ましく、より好ましくは0.1~1.0質量%である。当然ながら、本実施形態においては、測定対象物である血清、標識抗体または標識抗原等の蛋白質含有試料が基材に接触する前に、当該試薬または溶液を基材に接触させる必要がある。
 さらに別の実施形態としては、上記免疫反応容器や測定器具等の基材の表面に、まず、酵素、標識抗体または標識抗原等の試料中に含まれる測定対象の蛋白質を結合させた後、本発明の蛋白質吸着抑制剤で基材を処理する方法を挙げることができる。例えば、ポリスチレン製プレートを使用する際に、該プレートに測定対象物である蛋白質を物理吸着または化学結合させ、適当な溶媒で洗浄した後、本発明の蛋白質吸着抑制剤溶液を接触させる。つまり、測定対象物をプレート表面に吸着させた後、対象物が吸着していないプレート表面部分への蛋白質の吸着を抑制するため、本発明の誘導体を吸着させる。これによって、以後の測定工程において基材への蛋白質の非特異的な吸着を抑制する方法である。
 以下、実施例に基づき本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。本実施例においては、式(1)の化合物を単に誘導体と称する。
<合成例1:誘導体1(m=3,n=44)の合成>
 MPC;2.16g(7.31mmol)を、温度計を付けた三口フラスコに仕込み、メタノール;34.32gを加えて均一に撹拌し、30分間窒素を吹き込んだ。α-アミノプロピル-ω-メルカプトエトキシ-ポリオキシエチレン塩酸塩(SUNBRIGHT SH-020PA(m=3,n=44)、日油株式会社製);15.00g(7.31mmol)とジイソプロピルアミン;0.077mL(0.58mmol)を加えて25℃で48時間撹拌した。得られた反応液を冷却した酢酸エチル中に滴下し、生成した沈殿物を濾過することにより白色固体を得た。
 得られた白色固体について、1H-NMR分析、IR分析を行った結果を以下に示す。IRはFT/IR-6100(日本分光株式会社製)、NMRはJNM-AL400(日本電子株式会社製)により測定した。
<合成例1の白色固体のIRおよび1H-NMR測定結果>
[IR]
 3430cm-1(-NH2)、2875cm-1(-CH)、1639cm-1(C=O)、1457cm-1(-CH)、1249cm-1(P=O)、1102cm-1(-OPOCH-)、953cm-1(-N+(CH33
1H-NMR(D2O溶媒)]
 1.25ppm(-CH3)、1.94-1.99ppm(H2NCH2CH2CH2O-)、2.77-2.89ppm(-SCH2CH(CH3)-、H2NCH2CH2CH2O-)、3.10-3.14ppm(NH2CH2CH2CH2O-)、3.22ppm(-N+(CH33)、2.66-3.74ppm(-OCH2CH2S-)、3.84-3.90ppm(-CH2CH2+(CH33)、4.11-4.12ppm(-CH2CH2+(CH33)、4.31-4.36ppm(-OCH2CH2OP-)
 上記測定結果から、得られた白色固体は下記式(1-1)に示す誘導体1であると同定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
<比較合成例1:共重合体1(MPC/BMA共重合体)の合成>
 MPC;17.85g(60.45mmol)とメタクリル酸ブチル(以下、BMAとする);2.15g(15.12mmol)をエタノール;30g、蒸留水:30gの混合溶媒に溶解し、温度計と冷却管を付けた500mLの四口フラスコに入れて30分間窒素を吹き込んだ。その後、40℃でアゾビスイソブチロニトリル(AIBN)を0.328g加えて4時間重合後、70℃に昇温し、さらに3時間反応させて重合体を得た。重合液をアセトン中に滴下し、沈殿物を濾過することにより共重合体1の白色固体を得た。
 得られた共重合体1をHLC-8320GPC(東ソー株式会社製)によりGPC分析した結果、その分子量はポリエチレングリコール換算で1,210,000であった。
(実施例1)
<蛋白質吸着抑制剤溶液1の調製>
 合成例1で得た誘導体1を炭酸緩衝液(0.1mol/L、pH9.8)に、その濃度が1.0質量%となるように溶解して蛋白質吸着抑制剤溶液1を調製した。
<基材(アミノプレート)への蛋白質吸着抑制方法の実施、誘導体1が基材表面に吸着したホスホリルコリン修飾基材の調製、および蛋白質吸着抑制効果の評価>
 以下のようにして免疫反応測定を行い、該測定においてアミノプレートへの蛋白質吸着抑制方法を実施して誘導体1が基材表面に吸着したホスホリルコリン修飾基材を調製し、蛋白質吸着抑制効果を評価した。
 アミノプレート(住友ベークライト社製)に5mMのDimethyl suberimidate・2HCl(Thermofisher Scientific社製、以下、DMSとする)溶液(溶媒は0.2Mのトリエタノールアミン水溶液)を100μL/ウェル加え、室温にて30分間静置した。DMS溶液を除去した後に、蛋白質吸着抑制剤溶液1を100μL/ウェル加え、室温にて1時間静置し、その後蛋白質吸着抑制剤溶液1を除去した。DULBECCO’S PHOSPHATE BUFFERED SALINE(-)(以下、PBSとする)で72000倍希釈したHRP標識IgG(BioRad社製)を100μL/ウェル加え、室温にて1時間静置した。ウェル内のHRP標識IgG溶液を除去し、0.05%Tween20の入ったPBSを200μL/ウェル加え、除去する洗浄工程を4回繰り返した。洗浄後に、HRP用発色液(KPL社製)を100μL/ウェル加え、室温にて7分間反応させ、7分後に2N硫酸を50μL/ウェル加えることで反応を停止させ、マイクロプレートリーダー(Molecular Device社製)を用いて450nmの吸光度を測定することでウェル内に吸着した蛋白質を検出した。吸光度は3回の測定の平均値を用いた。吸光度が小さいほど蛋白質の吸着が抑制されていることを示す。
 蛋白質吸着抑制効果は、実施例1の吸光度と下記の比較例1の吸光度とから下記式で算出する相対的な蛋白質吸着率により評価した。すなわち、実施例1のアミノプレートへの蛋白質吸着率を、比較例1のアミノプレートへの蛋白質吸着率を100%としたときの相対吸着率で評価した。結果を表1に示す。
  実施例1の蛋白質吸着率=(実施例1の吸光度/比較例1の吸光度)×100
(比較例1)
 蛋白質吸着抑制剤溶液1の代わりに、誘導体1が溶解していない炭酸緩衝液を使用した以外は実施例1と同様にして免疫測定反応を行い、実施例1と同様に吸光度を測定した。結果を表1に示す。比較例1の蛋白質吸着率を100%とする。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
 表1から明らかなように、誘導体1を使用して本発明の基材への蛋白質吸着抑制方法を実施した実施例1は、蛋白質吸着抑制方法を実施していない比較例1と比較して吸光度が半分以下であり、基材であるアミノプレートへの蛋白質吸着率が半分以下であった。従って、アミノプレートへの蛋白質の非特異的吸着を効果的に防止していることが判る。
(実施例2)
<耐洗浄性(耐脱着性)>
 合成例1で得た誘導体1の耐洗浄性を、以下に示す方法により共重合体1と比較して評価した。すなわち、誘導体1が基材表面に吸着している誘導体1修飾材の洗浄の有無での吸光度の相違と、共重合体1が基材表面に吸着している共重合体1修飾材の洗浄の有無での吸光度の相違とを比較し、誘導体1および共重合体1の耐洗浄性を評価した。具体的には、洗浄有のときの吸光度と、洗浄無のときの吸光度から下記式により耐洗浄性を算出して評価した。
  耐洗浄性(%)=(洗浄無のときの吸光度/洗浄有のときの吸光度)×100
 耐洗浄性は、数値が大きいほど、すなわち洗浄の有無での吸光度の差が小さいほど、洗浄による基材に吸着した吸着物質の脱着が少なく(脱着率が小さく)、耐洗浄性が良好であることを示す。
(実施例2-1)
 蛋白質吸着抑制剤溶液1を使用し、実施例1と同様にして免疫反応測定を行い、同様に吸光度を測定した。
(実施例2-2)
 蛋白質吸着抑制剤溶液1を除去した後に、PBSを200μL/ウェル加え除去する洗浄工程を3回繰り返したこと以外は実施例1と同様にして免疫反応測定を行い、同様に吸光度を測定した。
 実施例2-1の吸光度と実施例2-2の吸光度とから上記式で耐洗浄性を算出した。結果を表2に示す。
(比較例2-1)
 蛋白質吸着抑制剤溶液1の代わりに、共重合体1を1.0質量%となるようにPBSに溶解した共重合体1のPBS溶液を用いた。さらに、Nunc maxisoapプレート(Thermofisher Scientific社製)を使用し、DMSを添加しなかった。これらの点以外は実施例1と同様にして免疫反応測定を行い、同様に吸光度を測定した。
(比較例2-2)
 共重合体1のPBS溶液を除去した後に、PBSを200μL/ウェル加え除去する洗浄工程を3回繰り返したこと以外は比較例2-1と同様にして免疫反応測定を行い、同様に吸光度を測定した。
 比較例2-1の吸光度と比較例2-2の吸光度とから上記式で耐洗浄性を算出した。結果を表2に示す。
(比較例2-3)
 蛋白質吸着抑制剤溶液1の代わりに、共重合体1を1.0質量%となるようにPBSに溶解した共重合体1のPBS溶液を用いたこと以外は実施例1と同様にして免疫反応測定を行い、同様に吸光度を測定した。
(比較例2-4)
 共重合体1のPBS溶液を除去した後に、PBSを200μL/ウェル加え除去する洗浄工程を3回繰り返したこと以外は比較例2-3と同様にして免疫反応測定を行い、同様に吸光度を測定した。
 比較例2-3の吸光度と比較例2-4の吸光度とから上記式で耐洗浄性を算出した。結果を表2に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
 表2から明らかなように、誘導体1の基材からの洗浄による脱着率は、共重合体1の洗浄による脱着率と比較して極めて小さく、耐洗浄性が優れていることが分かる。
(実施例3-1)
 以下のようにして免疫反応測定を行い、該測定において磁性微粒子への蛋白質吸着抑制方法を実施して、誘導体1が粒子表面に吸着している誘導体1結合磁性微粒子を調製し、蛋白質吸着抑制効果を評価した。
<磁性微粒子への反応>
 16μLの磁性微粒子(サーモフィッシャーサイエンティフィック社製、Dynabeads(商標) MyOne(商標) Carboxylic Acid)をポリプロピレン製のマイクロチューブにとり、32μLのMES/NaOH緩衝液(10mM、pH5.0、以下、MES緩衝液とする)を加え除去する洗浄工程を2回実施した。そこに、2μLの水溶性カルボジイミド溶液(20mg/mLとなるようにMES緩衝液に溶解)と2μLのN-ヒドロキシコハク酸イミド溶液(12mg/mLとなるようにMES緩衝液に溶解)を加え、室温で30分間反応させた。反応後、32μLのMES緩衝液を加え除去する洗浄を実施し、合成例1で得た誘導体1が1wt%となるように25mMのCAPS/NaOH緩衝液(pH10.0、以下CAPS緩衝液とする)に溶解した溶液を8μL加え、撹拌した後に37℃で2時間反応させた。これを誘導体1結合磁性微粒子として回収した。なお、磁性微粒子の洗浄と回収にはネオジム磁石を使用した。
<誘導体1結合磁性微粒子の蛋白質吸着試験>
 誘導体1結合磁性微粒子に784μLの0.05%Tween20含有HEPES緩衝液(以下、HEPES-T緩衝液とする)を加え、撹拌した後に、V底96ウェルプレートに100μL/ウェル分注し、上清を廃棄した。そこにHEPES緩衝液で10000倍希釈したHRP標識IgGを100μL/ウェル加え、室温で1時間静置した。その後、100μL/ウェルのHEPES-T緩衝液を加え、除去する洗浄工程を4回繰り返した。洗浄後、HRP用発色液(KPL社製)を100μL/ウェル加え、室温にて7分間反応させ、7分後に2N硫酸を50μL/ウェル加えることで反応を停止した。反応液を平底96ウェルプレートに100μL/ウェル移し、マイクロプレートリーダー(Molecular Device社製)を用いて450nmの吸光度を測定することでウェル内に吸着した蛋白質を検出した。結果を表3に示す。吸光度が小さいほど蛋白質の吸着が抑制されていることを示す。
 蛋白質吸着抑制効果は、実施例3-1の吸光度と下記の比較例3-1の吸光度とから下記式で算出する相対的な蛋白質吸着率により評価した。すなわち、実施例3-1の磁性微粒子への蛋白質吸着率を、比較例3-1の磁性微粒子への蛋白質吸着率を100%としたときの相対吸着率で評価した。結果を表3に示す。
  実施例3-1の蛋白質吸着率=(実施例3-1の吸光度/比較例3-1の吸光度)×100
(実施例3-2)
 誘導体1を37℃で2時間反応させた後に、50mM HEPES/NaOH緩衝液(pH7.4、以下HEPES緩衝液とする)を16μL加え除去する洗浄工程を2回繰り返したこと以外は実施例3-1と同様にして免疫測定反応を行い、得られた吸光度から蛋白質吸着率を算出した。結果を表3に示す。
(実施例3-3)
 誘導体1の濃度を4wt%としたこと以外は実施例3-1と同様にして免疫測定反応を行い、得られた吸光度から蛋白質吸着率を算出した。結果を表3に示す。
(比較例3-1)
 誘導体1が溶解していない炭酸緩衝液を使用したこと以外は実施例3-1と同様にして免疫測定反応を行い、得られた吸光度から蛋白質吸着率を算出した。結果を表3に示す。
(比較例3-2)
 誘導体1の代わりに共重合体1を使用したこと以外は実施例3-1と同様にして免疫測定反応を行い、得られた吸光度から蛋白質吸着率を算出した。結果を表3に示す。
(比較例3-3)
 誘導体1の代わりに共重合体1を使用したこと以外は実施例3-2と同様にして免疫測定反応を行い、得られた吸光度から蛋白質吸着率を算出した。結果を表3に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
 表3から明らかなように、基材として磁性微粒子を用いた場合、本発明の誘導体は特に優れた蛋白質吸着抑制効果を示す。また、実施例3-1および3-2と比較例3-2および3-3との比較から、基材として磁性微粒子を用いた場合も、本発明の誘導体は優れた耐洗浄性を示すことが分かる。

Claims (5)

  1.  式(1)で示されるホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
    [式(1)中、mは1~10、nは20~200の整数である。]
  2.  請求項1記載のホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体を有効成分として含有する、
     蛋白質吸着抑制剤。
  3.  請求項1記載のホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体を0.01~20質量%含有する、
     蛋白質吸着抑制剤溶液。
  4.  基材と請求項1記載のホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体とからなり、前記ホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体が前記基材の表面に吸着している、
     ホスホリルコリン修飾基材。
  5.  基材表面を請求項3に記載の蛋白質吸着抑制剤溶液で処理し、請求項1記載のホスホリルコリン基含有ポリエチレングリコール誘導体の吸着層を形成する工程を有する、
     基材への蛋白質吸着抑制方法。
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