WO2015186812A1 - 免疫学的測定試薬におけるプロゾーン現象の解消法 - Google Patents

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WO2015186812A1
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labeling substance
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鈴木 啓太
久彦 岩本
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田中貴金属工業株式会社
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Definitions

  • the present invention uses an immunological antigen-antibody reaction to detect an object (antigen, etc.) in a test sample containing a large excess of an object (antigen, etc.) quickly, conveniently and accurately.
  • the present invention relates to an immunochromatography kit having high importance as a kit or a portable diagnostic apparatus, a reagent composition used therefor, and a detection method.
  • the present invention relates to an inspection method with improved inspection efficiency and inspection accuracy and a diagnostic kit used therefor.
  • immunochromatographic strip-type immunoassays are versatile as simple in-vitro diagnostic kits or portable diagnostic devices that detect the detection target (antigen, etc.) in a sample solution using the specific reactivity of antibodies. Is growing.
  • an immunochromatography method using the principle of affinity chromatography a sandwich method in which an object to be detected (antigen etc.) is detected as a sandwich between the antibody and an antibody bound to a fine particle, Objectives of determination by immobilizing an object to be detected (antigen, etc.) or equivalent on a chromatographic carrier and competing with the object to be detected (antigen, etc.) to suppress the prozone phenomenon peculiar to the sandwich method.
  • a technique for ensuring the sexiness and a technique for eliminating the prozone phenomenon by providing a free antibody have been developed.
  • an immunological quantification device for example, in an immunological quantification device, a sample addition part, a labeled reactant application part downstream thereof, a part where a target substance (detected substance) or an equivalent substance is immobilized downstream thereof, and an antibody further downstream thereof.
  • a target substance detected substance
  • an antibody further downstream thereof.
  • a competitive reaction is performed on the chromatographic carrier, and by providing multiple free antibodies in a ladder shape, the prozone phenomenon is suppressed / resolved.
  • the quantitative apparatus which can be measured objectively and rapidly in one step by determining with the number of the reaction lines in a solid-phased antibody, or its coloring pattern is proposed (refer patent document 1).
  • a first detection region to which a substance that specifically binds to a detection target substance is fixed and a second detection region to which a detection target substance competitive substance is fixed are provided on a development carrier. Then, a developing solution containing a substance that is labeled with the labeling substance and specifically binds to the detection target substance and the sample is developed through these detection areas, and the substance is detected based on the signals in the first and second detection areas. Therefore, a method has been proposed in which false negatives are less likely to occur and the appearance of prozone is avoided (see Patent Document 2).
  • test strip having an extended dynamic range As another method for eliminating the prozone phenomenon, the provision of a test strip having an extended dynamic range and a detection method using the test strip have been proposed. Enables sample detection.
  • the first end and the second end including at least a first reaction region and a second reaction region including a capture agent that specifically binds an analyte are provided, and an absorption pad is provided at the first end.
  • a test strip, wherein the absorbent pad allows lateral flow of the sample, whereby the capture agent can bind at least a portion of the analyte, and the analyte There has been proposed a method for detecting and measuring the presence of the signal from the signal of the first reaction region, or from the intensity of the signal from the first reaction region, the second reaction region, or a combination thereof (see Patent Document 3).
  • an immunochromatography method also referred to as “particle immunochromatography method” in which an antibody is labeled with an insoluble carrier (gold colloid particles, colored latex particles, etc.
  • an insoluble carrier gold colloid particles, colored latex particles, etc.
  • the detection target substance can be objectively determined / measured by comprehensively determining these signals by providing a second or more detection region.
  • An object of the present invention is to use an immunological antigen-antibody reaction to detect a target (antigen or the like, hereinafter) in a test sample (also referred to as “specimen”) in which the target (antigen or the like) exists in a large excess.
  • a test sample also referred to as “specimen”
  • the prozone phenomenon is suppressed / eliminated, and is important as an in vitro diagnostic kit or portable diagnostic device that can detect rapidly, simply and accurately.
  • the present invention relates to a high immunochromatography kit, a reagent composition used therefor, and a detection method.
  • an object of the present invention is to provide an immunochromatography apparatus that suppresses / eliminates the prozone phenomenon occurring in the sandwich method by using an improved member in a specimen in which an antigen is present in a large excess in an immunochromatography reagent. It is in. More specifically, the object of the present invention is to detect a detection object (antigen etc.) in a test sample having a large excess of an object to be detected (antigen etc.), for example, a biological sample such as urine and blood.
  • the present invention relates to an inspection method in which inspection efficiency and inspection accuracy are improved by suppressing / eliminating a zone phenomenon, and a diagnostic kit used therefor.
  • the antigen that is not bound to the chromogenic carrier is captured by the test line antibody applied on the membrane, and the test line does not develop color and is determined to be false negative. It is well known that the phenomenon (prozone phenomenon) occurs.
  • the present inventors suppress this phenomenon by holding a specific nonionic surfactant at least in the sample addition part and using a membrane having a high flow speed (development speed) as a membrane used in a chromatographic medium. This is the first knowledge that it can be resolved.
  • a specific nonionic surfactant a member containing a nonionic and hydrophilic surfactant having an HLB value of 13 to 18 is used, and a high flow of a membrane used for a chromatographic medium is used.
  • Specimens that have a high flow rate high flow rate: time taken to suck up 4 cm of water (sec / 40 mm)) is 75 (sec / 40 mm) or less, thereby eliminating the prozone phenomenon and having a large excess of antigen.
  • the present invention provides an immunoassay reagent, an immunoassay method, an immunochromatography kit, and the like that can accurately and easily be tested.
  • the present invention provides an immunochromatography apparatus, an immunochromatography kit using an immunochromatography method according to the following (1) to (12), and an immunochromatography detection method using the same.
  • the immunochromatography apparatus of the present invention has the following characteristics.
  • a first feature of the present invention is an immunochromatography apparatus including a sample addition unit, a labeling substance holding unit, a chromatographic medium having a detection unit, and an absorption unit, and at least the sample addition unit has an HLB value
  • An immunochromatography apparatus for detecting a detection target in a specimen, which retains a nonionic and hydrophilic surfactant of 13 to 18 and uses a membrane having a high flow speed as a membrane used in a chromatographic medium is there.
  • the detection kit (also referred to as “immunochromatography kit”) using the immunological detection method of the present invention has the following characteristics.
  • a second feature of the present invention is an immunochromatography kit comprising a sample addition unit, a labeling substance holding unit, a chromatographic medium having a detection unit, and an absorption unit, wherein at least the sample addition unit has an HLB value.
  • a third feature of the present invention resides in an immunochromatography kit having a membrane flow speed of 75 or less as a high flow rate (sec / 40 mm).
  • a fourth feature of the present invention resides in an immunochromatography kit in which a nonionic and hydrophilic surfactant having an HLB value of 13 to 18 is held in both the sample addition part and the labeling substance holding part.
  • the fifth feature of the present invention is that the content of the nonionic and hydrophilic surfactant is 0.000 per unit area of the sample addition part of the immunochromatography kit or both of the sample addition part and the labeling substance holding part.
  • the immunochromatography kit is 1-5 ⁇ g / mm 2 .
  • a sixth feature of the present invention resides in an immunochromatography kit in which a labeling substance modified with gold nanoparticles is held dry in the labeling substance holding part.
  • a seventh feature of the present invention resides in an immunochromatography kit in which the average particle diameter of gold nanoparticles is 20 to 60 nm.
  • the immunochromatographic detection method of the present invention has the following characteristics.
  • the eighth feature of the present invention is that the step of adding the specimen to the sample addition unit, the step of causing the labeling substance modified by the gold nanoparticles held in the labeling substance holding unit to recognize the detection target, and the label
  • a ninth feature of the present invention resides in an immunochromatographic detection method in which the average particle size of gold nanoparticles is 20 to 60 nm.
  • a tenth feature of the present invention resides in an immunochromatographic detection method in which the specimen is a biological sample.
  • An eleventh feature of the present invention resides in an immunochromatographic detection method in which the detection target is a peptide hormone.
  • the twelfth feature of the present invention is that the non-ionic and hydrophilic surfactant having an HLB value of 13 to 18 is held in both the sample addition section and the labeling substance holding section.
  • Graphy detection method The present invention has achieved the above-described problems by having the features as described above.
  • an object to be detected (antigen or the like) in a test sample also referred to as “specimen” in which the object to be detected (antigen or the like) is present in a large excess is obtained by
  • at least a sample addition part also referred to as “sample pad” holds a nonionic and hydrophilic surfactant having an HLB value of 13 to 18 and is used for a chromatographic medium
  • an object to be detected in a test sample (also referred to as “specimen”) in which the object to be detected (antigen or the like) exists in a large excess.
  • a test sample also referred to as “specimen” in which the object to be detected (antigen or the like) exists in a large excess.
  • an immunochromatography device that can be detected quickly, conveniently and accurately, an immunochromatography kit that is highly important as an in vitro diagnostic kit or a portable diagnostic device, and a method for detecting the same. is there.
  • the HLB value held in both the sample addition part (also referred to as “sample pad”) or the sample addition part and the labeling substance holding part (also referred to as “conjugation pad”) is 13-18.
  • the non-ionic and hydrophilic surfactant can quickly conjugated an object to be detected (antigen or the like) with a labeling substance.
  • a gold colloid used as a labeling substance by modifying an antibody has a relatively small particle size of 20 to 60 nm.
  • the mechanism of action is not clear, but the complex of the detected substance (antigen, etc.) and the labeling substance is extremely rapid, and the complex in the chromatographic medium.
  • the movement and development of the cell line is very smooth and quick, without any trouble, and can rapidly bind to the test line antibody and develop a color.
  • FIG. 1 is a diagram showing an immunochromatography apparatus of the present invention.
  • FIG. 2 is a graph of the data of [Table 5] of the present invention.
  • a target substance (antigen) to be detected in various specimens is reacted with a binding substance (antibody) that specifically binds various labels and is reacted on a chromatographic medium.
  • a binding substance antibody
  • This is based on an immunochromatography method or a detection method applying it, in which a complex is formed by an antibody reaction, developed on the immunochromatographic medium in the direction of the absorption part, and confirmed by various detection means.
  • an antibody that reacts and binds most specifically to the antigen for example, a monoclonal antibody and a polyclonal antibody that bind specifically to the antigen, or other known antibodies can be arbitrarily used.
  • an enzyme As the label, an enzyme, a coloring substance, a fluorescent substance, or a radioactive substance can be arbitrarily used.
  • an antibody It may be determined in consideration of the type of antigen.
  • the detection means is characterized by having the ability to be accurately determined by visual determination in order to represent the characteristic of the immunochromatographic method that the operation is simple and can be determined in a relatively short time.
  • various detection means such as spectrophotometric detection and radiation detection can be attached for detection.
  • the immunochromatography apparatus of the present invention is an apparatus used for immunoassay, and one embodiment thereof includes an immunochromatography kit.
  • a nonionic and hydrophilic surfactant having an HLB value of 13 to 18 is contained and held at least in the sample addition part (2).
  • the labeling substance holding part (3) may be contained and held in one or more of these parts of the membrane (4) which is a chromatographic medium.
  • this nonionic and hydrophilic surfactant is contained in the sample addition part, the labeling substance holding part (3), the chromatographic medium (4), the detection part (hereinafter also referred to as determination part) (5)
  • the detection part (hereinafter also referred to as determination part) (5)
  • it has the property of sequentially moving and expanding to the absorption part (6).
  • the immunochromatography apparatus of the present invention includes a nonionic and hydrophilic interface having an HLB value of 13 to 18 in the sample addition section (2) or both in the sample addition section (2) and the labeling substance holding section (3). The activator is dried and retained.
  • the specific nonionic surfactant that can be used in the present invention is a nonionic and hydrophilic surfactant having an HLB value of 13 to 18, more preferably a nonionic surfactant having an HLB value of 14 to 17. It is a hydrophilic surfactant.
  • Triton X100 product name
  • Brij 35 product name
  • Tween 20 product name
  • NP 40 product name
  • HLB value is less than 13
  • the solubilization effect becomes insufficient, and the sensitivity is deteriorated.
  • the HLB value exceeds 18, the solubilizing action is sufficient, but the sensitivity is lowered even if the hydrophilicity is too large.
  • nonionic surfactant having an HLB value of about 13 to 18 is most suitable for the immunochromatography apparatus of the present invention.
  • the behavior of the nonionic surfactant according to the present invention is not limited to the high flow rate characteristics of the membrane of the chromatographic medium, and also the characteristics of the gold nanoparticles, and other anionic surfactants, cationic surfactants, It can develop unique properties and performance not found in amphoteric surfactants.
  • the content of the hydrophilic surfactant is 0.10 to 5.0 ⁇ g / mm 2 , preferably 0.15 to 3.0 ⁇ g / mm 2 , and particularly preferably 0.20 to 1.0 ⁇ g / mm 2. a mm 2.
  • the flow becomes poor.
  • the sample pad may be peeled off when the device is cut or the package is stored. Unevenness in color development may occur and is wasted.
  • it acts in cooperation with the high flow rate characteristics of the membrane of the chromatographic medium, and the prozone phenomenon can be further suppressed.
  • a membrane having a high flow speed As the membrane used in the chromatographic medium of the present invention, a membrane having a high flow speed (development speed) is used.
  • a high flow rate (High Flow Rate: time taken to suck up 4 cm of water (sec / 40 mm)) (HFR) is 75 (sec / 40 mm) or less, preferably 60 (sec / 40 mm) ) Or less, and particularly preferably 45 (sec / 40 mm) or less.
  • High flow rate (High Flow Rate: Time required to suck up 4 cm of water (sec / 40 mm)) is more than 75 (sec / 40 mm). Since the complex of substances cannot move through the membrane more quickly than the object to be detected (antigen, etc.), it suppresses the prozone phenomenon in the examination of the specimen in which the object to be detected (antigen, etc.) exists in a large excess. I can't.
  • the HFR can be arbitrarily designed up to about 20 (sec / 40 mm). It is preferably 30 (sec / 40 mm) or more, particularly preferably 36 (sec / 40 mm) or more.
  • this membrane carrier As the characteristics of this membrane carrier, a material that can absorb and move the sample specimen by capillary action or the like is recommended. This migration phenomenon needs to be examined from the viewpoint of the properties of the material constituting the membrane carrier and the porous structure that exhibits the capillary action of the membrane.
  • the structural design of this membrane carrier requires examination of both the material and the structure.
  • the membrane carrier is manufactured from materials such as natural materials such as nitrocellulose, cellulose acetate and cellulose, synthetic polymers such as nylon, polyethersulfone, polyvinyl alcohol, polyester and polyolefin, and inorganic fibers such as glass fiber and carbon fiber. It may be composed of mixed fibers.
  • the state of use of the membrane carrier can be selected from any form such as fiber, woven fabric, nonwoven fabric, fabric, membrane, paper, open cell sponge, sheet, foam, pad, etc. It can be designed with consideration.
  • the dimensions of the membrane carrier are not particularly limited, and general materials applicable to this type of product can be used.
  • the width is 3 to 10 mm
  • the length is 2 to 6 cm
  • the thickness is 100 to 100 mm.
  • a thing of 150 micrometers is a standard thing. Since the membrane is porous, it can be backed by laminating films of impermeable polyester, polyethylene, etc., or formed by previously laminating a nitrocellulose membrane on a plastic film of impermeable polyester, polyethylene, etc. It may be what you did.
  • limiting in particular in the thickness of this water-impermeable film The thing of about 100 micrometers is preferable on handling.
  • the gold nanoparticles used as the labeling substance are preferably red gold nanoparticles and / or blue gold nanoparticles having an average particle diameter of 10 to 60 nm, preferably about 20 to 60 nm.
  • gold metal particles such as platinum, silver, rhodium, palladium and germanium, and metal nanoparticles having an average particle diameter of about 10 to 60 nm, preferably about 20 to 60 nm, such as titanium, zinc and iron can also be used.
  • Such metal nanoparticles are in a dispersed state, for example, antibody, antigen-sensitized metal colloid, sensitized gold colloid, sensitized platinum-gold colloid, sensitized gold-silver colloid, iron colloid, etc.
  • Gold colloid is most recommended because it is easy to obtain and handle.
  • the average particle diameter can be determined based on a conventional measurement method in which the average particle diameter is obtained after measuring the particle size distribution of the colloid with a dynamic light scattering particle size distribution analyzer.
  • test sample (specimen) in the present invention are mainly biological samples, specifically blood, serum, plasma, urine, saliva, sweat, spinal fluid, tears, amniotic fluid, nipple discharge, nasal discharge, sputum, and nasal cavity.
  • Samples such as food extract, clean water, sewage waste, culture solution, etc. as well as aspirate, pharyngeal wipe, alveolar lavage, skin exudate, rectal wipe, feces and extracts from tissues and cells, etc.
  • an object to be detected such as an antigen
  • the detection target of the present invention is not particularly limited as long as a substance that specifically binds to it, such as an antigen-antibody reaction, exists or can be produced. Even if the object to be detected is an antigenic substance such as a complete antigen, or a hapten (incomplete antigen), even if it is not itself antigenic, it can be made chemically modified. It may lead to having. Any substance that specifically binds to the detection target may be present or can be produced, and can be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody.
  • Examples of the detection target of the present invention include peptide hormones (growth hormone (GH), adrenocorticotropic hormone (ACTH), melamine cell stimulating hormone (MSH), prolactin, thyroid stimulating hormone (TSH), luteinizing hormone (LH). ), Follicle stimulating hormone (FSH), pituitary hormone, calcium metabolism regulating hormone, pancreatic hormone, gastrointestinal hormone, vasoactive hormone, human chorionic gonadotropin (hCG), follicular hormone such as estrone, progesterone, etc.
  • GH growth hormone
  • ACTH adrenocorticotropic hormone
  • MSH melamine cell stimulating hormone
  • TSH thyroid stimulating hormone
  • LH luteinizing hormone
  • FSH Follicle stimulating hormone
  • pituitary hormone calcium metabolism regulating hormone, pancreatic hormone, gastrointestinal hormone, vasoactive hormone, human chorionic gonadotropin (hCG), follicular hormone such as estrone, progesterone, etc.
  • Natural or synthetic progesterone male hormones such as testosterone, corticosteroids such as cortisol, hormones such as thyroid hormones such as diiodothyronine, prostatic acid phosphatase (PAP), prostate specific antigen (PSA), alkaline phosphatase, Transa Cancer specific substances such as nuclease, trypsin, pepsinogen, ⁇ -fetoprotein (AFP), carcinoembryonic antigen (CEA), serum protein components such as immunoglobulin G (IgG), rheumatoid factor, serotonin, urokinase, ferritin, substance P, Fecal occult blood, syphilis antibody, influenza virus, adenovirus, rotavirus, mycoplasma, HBs antigen, HBs antibody, chlamydia antigen, group A ⁇ -streptococcal antigen, cholesterol, bile acid, cardiotonic steroid, sapogenin and
  • Preferred detection targets include luteinizing hormone (LH), follicle stimulating hormone (FSH), human chorionic gonadotropin (hCG), follicular hormones such as estrone, natural or synthetic luteinizing hormones such as progesterone, and the like.
  • LH luteinizing hormone
  • FSH follicle stimulating hormone
  • hCG human chorionic gonadotropin
  • follicular hormones such as estrone, natural or synthetic luteinizing hormones such as progesterone, and the like.
  • examples of the sample (specimen) including the detection target of the present invention include urine and blood.
  • the labeling substance solution for immunochromatography of the present invention preferably contains a buffer or a surfactant, particularly a nonionic surfactant.
  • a buffering agent to be included, especially if it has an action (buffering action) that does not cause a fatal effect even if the sample changes, changes in concentration due to evaporation or dilution of the sample, or some foreign matter enters from the outside. There is no limit.
  • examples of buffers include acetate buffer (acetate + sodium acetate), phosphate buffer (phosphate + sodium phosphate), citrate buffer (citric acid + sodium citrate), and borate buffer.
  • Tris-HCl buffer Tris (hydroxylmethyl) aminomethane + hydrochloric acid
  • TE buffer Tris + ethylenediaminetetraacetic acid
  • TAE buffer Tris + acetic acid + ethylenediaminetetraacetic acid
  • TBE buffer Tris + boric acid
  • Ethylenediaminetetraacetic acid or HEPES buffer (2- [4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazinyl] ethanesulfonic acid).
  • HEPES buffer Preferred are HEPES buffer, phosphate buffer, acetate buffer, Tris-HCl buffer, and the like, and more preferred are phosphate buffer and HEPES buffer. Further, other buffering agents can be blended and used within a range that does not adversely affect.
  • the concentration of the buffer used in the present invention is preferably in the range of 10 to 500 mM, more preferably in the range of 10 to 300 mM, and further preferably in the range of 30 to 100 mM. If the concentration is lower than 10 mM, the buffering action is insufficient, and the suppression of protein component precipitation and the suppression of aggregation of labeled particles are also insufficient. If it exceeds 500 mM, the concentration becomes higher than necessary, which is not economical and wasteful. Also, it is optimal to make a buffer having a pH range of 7.1 to 9.8.
  • each part of the immunochromatography apparatus of the present invention in particular, the membrane of the chromatographic medium, known additives that can suppress side reactions based on biological affinity or suppress nonspecific reactions, such as Proteins (eg, bovine serum albumin, gelatin, etc.), polymer compounds (eg, polyethylene glycol, methylcellulose, polyvinyl pyrrolidone, polyvinyl alcohol, dextran, etc.), ions for promoting antigen-antibody reaction or suppressing nonspecific reaction It is possible and effective to add and hold one or more active surfactants or polyanions (for example, dextran sulfate, heparin, polystyrene sulfonate, chondroitin sulfate, etc.) or antibacterial agents. It does n’t interfere with anything.
  • active surfactants or polyanions for example, dextran sulfate, heparin, polystyrene sulfonate, chondroitin sulfate, etc.
  • one or more of proteins, polymer compounds, ionic surfactants or polyanions, or antibacterial agents for promoting these antigen-antibody reactions or suppressing non-specific reactions are added to the stationary phase. It is possible and effective to keep it on the mobile phase of the mobile phase of the chromatographic medium to be constructed, and it does not prevent anything.
  • the content of the additive contained in the sample pad (SP) or the sample pad (SP) and the conjugation pad (CP) in the immunochromatography apparatus of the present invention is 0.01 to 20% by mass concentration range,
  • an aqueous solution having a concentration range of 0.1 to 10% by mass, more preferably 0.5 to 5% by mass, is applied or impregnated, and then dried, so that the content per unit area is It is set to 0.10 to 10.0 ⁇ g / mm 2 , preferably 0.15 to 5.0 ⁇ g / mm 2 , particularly preferably 0.20 to 1.0 ⁇ g / mm 2 .
  • the content is less than 0.10 ⁇ g / mm 2 , the nonspecific reaction cannot be suppressed and accurate determination cannot be performed. On the other hand, if it exceeds 10.0 ⁇ g / mm 2 , the concentration becomes higher than necessary, which is not economical and wasteful.
  • the content per unit area is in the range of 0.10 to 10.0 ⁇ g / mm 2 , it acts in cooperation with the high flow rate characteristics of the membrane of the chromatographic medium and suppresses the prozone phenomenon more. Can do.
  • the protective stabilizing substance or dissolution promoting substance contained in the labeling substance solution includes saccharides, that is, monosaccharides, disaccharides, trisaccharides, oligos. Sugars or polysaccharides can be used.
  • Monosaccharides include glucose, galactose, xylose, fructose, etc.
  • disaccharides include trehalose, sucrose, lactose, maltose, etc.
  • trisaccharides and oligosaccharides such as raffinose
  • polysaccharides include gluconic acid.
  • dextran and the like. These may be used alone or in combination of two or more.
  • a labeled substance-protecting and stabilizing reagent-containing composition obtained by subjecting to a protective treatment with the above-described alkylene glycol and / or derivative thereof (protecting reagent) and, if necessary, further mixing arginine and casein (stabilizing reagent). After being coated, adsorbed or impregnated, it is preferably supported, held or formed by drying by various drying means (aeration drying, vacuum drying, natural drying, freeze drying, etc.).
  • Examples of a method for providing a site containing the immunochromatographic labeling substance solution or other reagent composition of the present invention include, for example, applying an immunochromatographic labeling substance solution to a glass fiber pad (labeling substance holding member) in an immunochromatography apparatus. After impregnation, the glass fiber pad can be supported or held by various drying means.
  • the specimen is directly dropped on the sample addition section or the sample addition section is immersed in the specimen.
  • a sample diluent can be used.
  • This specimen dilution solution can also be used as a developing solution.
  • water is used as a solvent, and a buffer solution, a salt, a nonionic surfactant, and the antigen-antibody reaction described above are used.
  • a buffer solution a salt, a nonionic surfactant, and the antigen-antibody reaction described above are used.
  • protein, polymer compound (PVP, etc.), ionic surfactant or polyanion, antibacterial agent, chelating agent, etc. are added.
  • sample adding part When used as a developing solution, a mixture of the detection sample and developing solution previously mixed can be supplied and dropped on the sample pad (sample adding part), or the sample can be supplied to the sample pad first. -After dripping, you may supply and dripping a developing solution on a sample pad, and you may make it expand
  • sample diluent When used as a sample diluent, the sample can be used by adjusting or diluting the sample to a concentration suitable for measurement with the sample diluent and supplying and dropping the sample on the sample pad.
  • the immunochromatography apparatus or immunochromatography kit (1) includes a sample addition unit (2) (also referred to as “sample pad”), a labeling substance holding unit (3) (also referred to as “conjugate pad”), a chromatography medium (4),
  • the determination part (5) is further comprised from the control part (8), the absorption part (6) (it is also called a "development speed control part"), and the backing sheet (7) as needed.
  • the structures, specifications and embodiments of each part are as follows.
  • the sample addition unit (2) (“sample pad”) absorbs the sample quickly, but the holding power is weak, so that the sample moves quickly to the reaction unit. It is composed of a porous sheet with various properties. Examples of the porous sheet include cellulose filter paper, glass fiber filter paper, polyurethane, polyacetate, cellulose acetate, rayon, nylon, and cotton cloth. As the porous sheet of the present invention, glass fiber filter paper and rayon are preferably used. In the present invention, in order to suppress / eliminate the prozone phenomenon, an immunochromatography containing a nonionic and hydrophilic surfactant of HLB 13 to 18 and, if necessary, a buffer at least in the sample pad (2). It is possible to adopt a mode in which the reagent composition is impregnated in advance and then supported by a means such as drying.
  • HLB Hydrophilic Lipophile Balance
  • polyoxyalkylene alkyl ethers polyoxyethylene alkyl ethers (eg, registered trademark “Brij” series), polyoxyethylene / polyoxypropylene alkyl ethers (eg, Nacalai Tesque, trade name: NP 40)
  • the labeling substance holding unit (3) carries or holds a labeling reagent in which the reagent component is labeled with the labeling component.
  • labeling components include metal colloidal particles such as gold colloidal particles and silver colloidal particles, colored latex particles obtained by dyeing synthetic polymers synthesized by (co) polymerization of various monomers, enzymes, fluorescent compounds, etc. Can be used.
  • the reagent component is a particle or molecule capable of recognizing an analyte, preferably a monoclonal antibody, a polyclonal antibody or a fragment thereof (second reagent).
  • the immunochromatographic reagent composition containing a buffer solution is impregnated in advance and then supported by a means such as drying.
  • the chromatographic medium (4) is obtained by producing a determination unit (also referred to as a detection unit) (5) on a membrane carrier.
  • the membrane carrier is not particularly limited as long as it can absorb and move the sample specimen by capillary action and has a high flow speed (development speed).
  • it is 30 to 60 (sec / 40 mm), and particularly preferably 36 to 60 (sec / 40 mm).
  • it is selected from the group consisting of nitrocellulose, cellulose acetate, nylon, polyethersulfone, polyvinyl alcohol, polyester, glass fiber, polyolefin, cellulose, and an artificial polymer composed of these mixed fibers. It consists of arbitrary things, such as those fibers, a woven fabric, a nonwoven fabric, cloth, a film
  • a monoclonal antibody, a polyclonal antibody or a fragment thereof is supported and fixed on a nitrocellulose sheet.
  • One or both of the reagent component (first reagent) used for the determination unit (5) and the reagent component (second reagent) used for the labeling reagent may be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody.
  • at least one of them is preferably a polyclonal antibody.
  • the reagent component (second reagent) used for the labeling reagent is more preferably a monoclonal antibody with high specificity in terms of measurement sensitivity and the like.
  • the use of monoclonal antibodies for both the first reagent and the second reagent is most preferable from the viewpoint of the accuracy and efficiency of the reaction.
  • Monoclonal antibodies, polyclonal antibodies and fragments thereof are known and available, and can be prepared by known methods.
  • Examples of antibody-producing animal species include humans, mice, rats, rabbits, goats, and the like.
  • the immunoglobulin may be IgG, IgM, IgA, IgE, or IgD.
  • spleen cells and osteosarcoma cells of a mouse immunized with an antigen are hybridized according to a conventional method, a hybridoma producing the target antibody is selected, and the monoclonal antibody produced from this hybridoma is obtained.
  • a hybridoma producing the target antibody is selected, and the monoclonal antibody produced from this hybridoma is obtained.
  • the polyclonal antibody can be obtained by separating the target antibody from antiserum obtained by immunizing an animal (for example, human, mouse, rat, rabbit, goat, horse, etc.) with an antigen by a conventional method.
  • an animal for example, human, mouse, rat, rabbit, goat, horse, etc.
  • filter paper made of glass fiber, cellulose fiber, etc., which is a material having the ability to quickly absorb an excess sample, is widely used, but further holds the absorbed liquid so that it does not flow backward. It is more preferable to use a material having the ability to A particularly preferred embodiment is as disclosed in (Japanese Unexamined Patent Publication No. 2012-189346).
  • the backing sheet (7) is a base material. By applying an adhesive on one side or sticking an adhesive tape, one side has adhesiveness, and a sample addition part (2), a labeling substance holding part (3), and a detection part (5) are provided on the adhesive side. A part or all of the chromatographic medium (4) having the above and the absorbing part (6) are provided in close contact with each other.
  • the backing sheet (7) is not particularly limited as long as the backing sheet (7) becomes impermeable and impermeable to the sample solution by the adhesive.
  • Example 1 Preparation of determination part on chromatographic medium Phosphate buffer solution (pH 7.5) containing 5% by mass of isopropyl alcohol on a 2.5 ⁇ 25 cm cellulose membrane using an antibody coater (manufactured by BioDot).
  • the anti-LH (Luteinizing Hormone) monoclonal antibody having a concentration of 1.8 mg / ml diluted in (1) was applied and dried to prepare a determination part on the chromatographic medium.
  • Centrifugation was performed at 8000 ⁇ g for 15 minutes. After removing the supernatant, 1 ml of phosphate buffer (pH 7.5) was added. The colloidal labeling reagent was well dispersed using an ultrasonic crusher, and then centrifuged at 8000 ⁇ g for 15 minutes. The supernatant was removed, 0.15 ml of the phosphate buffer was added, and the mixture was well dispersed with an ultrasonic crusher to obtain a labeling reagent solution.
  • phosphate buffer pH 7.5
  • sample pad (sample addition part) To a 3.0 ⁇ 25 cm rayon pad, Tween 20 (manufactured by Sigma Aldrich, trade name: Tween (registered trademark) 20, HLB (Hydrophile-Lipophile Balance) as a nonionic surfactant ) Value: 16.7) 2% by weight aqueous solution was uniformly applied so as to have a content per unit area shown in the table, and then dried by a vacuum dryer.
  • Tween 20 manufactured by Sigma Aldrich, trade name: Tween (registered trademark) 20, HLB (Hydrophile-Lipophile Balance) as a nonionic surfactant ) Value: 16.7
  • 2% by weight aqueous solution was uniformly applied so as to have a content per unit area shown in the table, and then dried by a vacuum dryer.
  • the flow of the nonionic surfactants Tween 20 and Brij 35 added only to the sample pad (SP) is in the range of 0.20 to 0.60 ⁇ g / mm 2. It was also found that both the sensitivity and the sensitivity were good. If the content is too large, damage such as peeling may occur during device manufacture or package storage, or unevenness in the color of the detection line may occur due to unevenness in the dry state.
  • the nonionic surfactant Tween 20 may be added only to the sample pad (SP), but it is added to both the sample pad (SP) and the conjugation pad (CP). Then, it turns out that it is still more favorable. Rather, when added to both the sample pad (SP) and the conjugation pad (CP) rather than only to the sample pad (SP), both the flow and sensitivity are both low, even though the total nonionic surfactant content is small. Was found to work well.
  • the flow rate of the membrane used (High Flow Rate: the time taken to suck up 4 cm of water (sec / 40 mm)) was evaluated and examined for the suppression effect of the prozone phenomenon.
  • Tween 20 and Brij 35 are used as nonionic surfactants added only to the sample pad (SP), and the content thereof is 0.2 ⁇ g / mm 2.
  • LH as a positive sample is 20 ⁇ 10 6 mIU / mL.
  • the determination was performed according to the same visual judgment criteria as described above, except that 150 ⁇ L of the sample diluted with male urine containing at a concentration of 5 was used, and the determination result was shown in Table 4.
  • the evaluation study on the suppression effect of the prozone phenomenon is performed on the concentration range of the test substance, the test substance concentration range of 0 to 2 ⁇ 10 7 mIU / mL, and further the membrane Using HFR of 45 and 75, color development intensity (absorbance) was measured.
  • the flow rate (HFR: sec / 40 mm) characteristics of the membrane used were two types (HF45, HF75).
  • HF45 a nonionic surfactant (Tween 20, 0.4 ⁇ g / mm 2 ) is added only to the sample pad (SP), and a nonionic surfactant (Tween 20, 0.2 ⁇ g to the sample pad (SP).
  • / Mm 2 was measured when a nonionic surfactant (Tween 20, 0.2 ⁇ g / mm 2 ) was also added to the conjugation pad (CP).
  • HF75 a nonionic surfactant (Tween 20, 0.4 ⁇ g / mm 2 ) was added only to the sample pad (SP) and measured.
  • the procedure was the same as that described above except that 150 ⁇ L of a sample diluted with male urine containing LH at a concentration of 3 to 2 ⁇ 10 7 mIU / mL was used as a positive sample, and the test was performed under the above conditions. Evaluation of the suppression effect of the prozone phenomenon was conducted. And it determined in accordance with the same visual criteria. The determination results are shown in Table 5. When the color development intensity (absorbance) is less than 10, visual determination is impossible, and when it is 10 or more, visual determination is possible.
  • FIG. 2 is a graph of the data in Table 5. From this graph, the suppression / elimination effect of the prozone phenomenon produced by the present invention is clearer.
  • the test substance concentration can be visually judged up to a range of 20 to 1 ⁇ 10 7 mIU / mL, and in HF75, the test substance concentration can be judged up to a range of 50 to 5 ⁇ 10 5 mIU / mL. You can see that it is possible.
  • the HF45 having a high membrane flow speed has both a low concentration and a high concentration of the test substance concentration zone that can be visually judged compared to HF75 having a low flow speed (development speed). You can see that it is spreading in the zone. That is, it is confirmed that the suppression / elimination effect of the prozone phenomenon is exhibited remarkably in the high-concentration sample, and the color development is exhibited without weakening in the low-concentration sample.
  • the immunochromatography kit as shown in FIG. 1 of the present invention has a specific nonionic surfactant dried and retained at least in the sample addition part (sample pad), and the flow speed (development) is used as a membrane used in the chromatographic medium.
  • the prozone phenomenon can be suppressed over a very wide range of analyte concentrations, and sufficient color intensity can be obtained without weakening the color development even at low analyte concentrations.
  • the present inventors have found that it performs a particularly remarkable function.
  • a nonionic surfactant having an HLB value of 13 to 18 in the sample addition part (sample pad), more preferably an HLB value is used.
  • a non-ionic surfactant of 15 to 17 is retained and a membrane having a high flow rate of 75 (sec / 40 mm) or less is used as a membrane used in a chromatographic medium.
  • the present invention suppresses / eliminates the prozone phenomenon even in a system that does not require a sample extract such as urine, blood, etc., and in which a detection target (antigen, etc.) is present in a large excess. Because it has the excellent advantage that it can be used in an immunological diagnosis method and apparatus that can perform quick and simple examinations and diagnoses, even individuals who do not have special skills as well as hospitals and clinics Highly sensitive and rapid clinical testing is possible, and it has the potential to lead to early diagnosis and treatment of diseases.

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Abstract

 抗原が大過剰に存在する検体で、サンドイッチ法において起きるプロゾーン現象を、抑制/解消したイムノクロマト検出方法およびイムノクロマトキットを提供することを課題とし、イムノクロマトグラフィー装置の試料添加部にHLB値が14~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させ、かつクロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピードの速いものを用いることにより、解決した。

Description

免疫学的測定試薬におけるプロゾーン現象の解消法
 本発明は、免疫学的抗原抗体反応を利用して、被検出物(抗原等)が大過剰に存在する検査試料中の被検出物(抗原等)を迅速、簡便かつ正確に検出する体外診断キットもしくは携帯用診断装置として重要性が高いイムノクロマトキット、それに用いる試薬組成物又は検出方法に関する。
 特に、被検出物(抗原等)が大過剰に存在する検査試料、例えば、尿、血液といった検査試料中の被検出物(抗原等)を検出する際に起きるプロゾーン現象を解消することにより、検査効率および検査精度を向上させた検査方法及びそれに用いる診断キットに関する。
 近年、イムノクロマトグラフ用ストリップ形式のイムノアッセイは、抗体の持つ特異的反応性を利用して、試料液中の被検出物(抗原等)を検出する簡便な体外診断キットもしくは携帯用診断装置として汎用性が高まっている。
 ところで、被検出物(抗原等)を抗体によりサンドイッチにして検出するイムノクロマトグラフ検出法において、大過剰の被検出物(抗原等)が検査試料中に存在する場合に、見かけ上、被検出物が少ないか全く存在しないような偽陰性現象(プロゾーン現象、または高用量フック効果とも呼ばれる。)を惹起して、検出時のS/N比を下げるのみならず、誤った検査結果をもたらすという問題点はよく知られており、このプロゾーン現象の解消のための研究がなされてきた。
 この問題点を克服するために、アフィニティークロマトグラフィーの原理を利用したイムノクロマト法において、被検出物(抗原等)をその抗体と、微粒子に結合させた抗体とでサンドイッチにして検出するサンドイッチ法と、被検出物(抗原等)又は同等物をクロマト担体上に固定化させて、被検出物(抗原等)と競合させることにより、上記サンドイッチ法に特有のプロゾーン現象を抑制して、判定の客観性を確保するという手法、さらには、フリーの抗体を備えることで、プロゾーン現象を解消する技術が、開発されている。
 例えば、免疫学的定量装置において、試料添加部、その下流に標識化反応体塗布部、更にその下流に目的物質(被検出物)又はそれと同等物質を固定化した部位、更にその下流に抗体を複数本梯子状に固相化した部位を設定することにより、クロマト担体上で競合反応を行わせると共に、フリーの抗体を梯子状に複数本備えることにより、プロゾーン現象を抑制/解消している。そして、固相化抗体における反応ラインの本数またはその呈色パターンによって判定することにより、客観的かつワンステップで迅速に測定できる定量装置が、提案されている(特許文献1参照)。
 また、アフィニティークロマト検出法において、展開担体上に、検出対象物質に特異的に結合する物質が固定された第一の検出領域、及び検出対象物質競合物質が固定された第二の検出領域を設けて、標識物質により標識され検出対象物質に特異的に結合する物質と試料とを含む展開液を、これら検出領域を通して展開させ、第一及び第二の検出領域における信号に基づいて物質を検出することにより、偽陰性を生じにくく、プロゾーンの出現を回避する方法が提案されている(特許文献2参照)。
 そして、プロゾーン現象の解消のための別の手法として、拡張されたダイナミックレンジを有する試験ストリップの提供及びそれを用いた検出方法が提案されており、これによりサンプルを希釈することなく、プロゾーンサンプルの検出を可能にしている。
 例えば、特許文献3においては、分析物を特異的に結合する捕捉剤を含んだ、少なくとも第1反応領域と第2反応領域を含む第1末端及び第2末端を備え、第1末端に吸収パッドを含むクロマトグラフィーストリップであって、該吸収パッドにより、サンプルの側方流動を可能とし、それによって、捕捉剤が、分析物の少なくとも一部を結合することが可能となる試験ストリップ、および分析物の存在を、第1反応領域のシグナルに基づいて、又は第1反応領域、第2反応領域もしくはそれらの組合せからのシグナルの強度から検出測定する方法が提案されている(特許文献3参照)。
 しかしながら、不溶性担体(金コロイド粒子、着色ラテックス粒子等)で抗体を標識したイムノクロマト法(「粒子イムノクロマト法」ともいう。)にあって、プロゾーン現象を解消する従来技術の手法としては、フリーの抗体を梯子状に複数本仕込んだり、または第2又はそれ以上の検出領域を設けることにより、検出対象物質(抗原等)が大過剰に存在する高濃度検体試料に対して、反応ラインの本数またはその呈色パターンによって定量判定が可能になるといったメリットがある一方で、低濃度検体の発色が弱まったり、フリーの抗体が変性して、経時的にプロゾーン現象対策効果が弱まってしまうといった問題点があった。
 さらに、プロゾーン現象を解消する従来技術の手法としては、主として、大過剰に存在する検出対象物質に対して、フリーの抗体を梯子状に複数本仕込んだり、標準的な第1検出領域に加えて、第2又はそれ以上の検出領域を設けたりして、これらのシグナルを総合的に判断することにより、客観的に検出対象物質の判定/測定ができるというものである。
 しかしながら、検出ラインが複数本あったり、検出領域が少なくても2つある為、判定基準が単純ではなく、どうしても複雑となり、誰にでも容易に誤りなくできるというものではないという問題点があり、判定が簡単にできる手法が切望されていた。
日本国特開平10-185921号公報 日本国特開2004-85425号公報 日本国特表2012-524277号公報
 本発明の目的は、免疫学的抗原抗体反応を利用して、被検出物(抗原等)が大過剰に存在する検査試料(「検体」ともいう。)中の被検出物(抗原等、以下検出対象物ともいう。)を、抗体によりサンドイッチして検出する方法において、プロゾーン現象を、抑制/解消して、迅速、簡便かつ正確に検出できる体外診断キットもしくは携帯用診断装置として重要性が高いイムノクロマトキット、それに用いる試薬組成物又は検出方法に関する。
 さらに、本発明の目的は、イムノクロマト試薬において抗原が大過剰に存在する検体で、改良された部材を用いることにより、サンドイッチ法において起きるプロゾーン現象を、抑制/解消したイムノクロマトグラフィー装置を提供することにある。
 さらに詳しくは、本発明の目的は、被検出物(抗原等)が大過剰に存在する検査試料、例えば、尿、血液といった生体試料中の被検出物(抗原等)を検出する際に起きるプロゾーン現象を抑制/解消することにより、検査効率および検査精度を向上させた検査方法及びそれに用いる診断キットに関する。
 イムノクロマト試薬において抗原が大過剰に存在する検体では、メンブレン上に塗布されたテストライン抗体に、発色担体と結合していない抗原が捕捉されてしまい、テストラインが発色せず偽陰性と判断されてしまう現象(プロゾーン現象)が起きることは、よく知られている。
 本発明者等は、この現象を、少なくとも試料添加部に特定の非イオン性界面活性剤を乾燥保持させ、クロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピード(展開速度)の速いものを用いることで、抑制/解消できることを初めて知見したものである。
 本発明の検出系では、特定の非イオン性界面活性剤として、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を含有させた部材を用い、かつクロマトグラフ媒体に用いるメンブレンのハイフローレート(High Flow Rate:水を4cm吸い上げるのにかかる時間(sec/40mm))が、75(sec/40mm)以下であることにより、プロゾーン現象を解消して、抗原が大過剰に存在する検体を、正確に容易かつ迅速に検査できる免疫測定用試薬、免疫測定方法およびイムノクロマトキットなどを提供するものである。
 本発明は、下記の(1)~(12)に係る免疫クロマトグラフ法を使用するイムノクロマトグラフィー装置、イムノクロマトキット、およびそれを使用するイムノクロマト検出法を提供するものである。
 本発明のイムノクロマトグラフィー装置としては、次のような特徴を有する。
 (1)本発明の第1の特徴は、試料添加部、標識物質保持部、検出部を有するクロマトグラフ媒体、および吸収部から構成されるイムノクロマトグラフィー装置であって、少なくとも試料添加部にHLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させ、かつクロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピードの速いものを用いる、検体中の検出対象物を検出するためのイムノクロマトグラフィー装置、にある。
 本発明の免疫学的検出法を使用する検出キット(「イムノクロマトキット」ともいう。)としては、次のような特徴を有する。
 (2)本発明の第2の特徴は、試料添加部、標識物質保持部、検出部を有するクロマトグラフ媒体、および吸収部から構成されるイムノクロマトキットであって、少なくとも試料添加部にHLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させ、かつクロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピードの速いものを用いる検体中の検出対象物を検出するためのイムノクロマトキット、にある。
 (3)本発明の第3の特徴は、メンブレンのフロースピードが、ハイフローレイト(sec/40mm)として、75以下であるイムノクロマトキット、にある。
 (4)本発明の第4の特徴は、試料添加部、及び標識物質保持部の両方に、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させるイムノクロマトキット、にある。
 (5)本発明の第5の特徴は、非イオン性かつ親水性界面活性剤の含有量が、イムノクロマトキットの試料添加部、又は試料添加部及び標識物質保持部の両方の単位面積当り0.1~5μg/mmであるイムノクロマトキット、にある。
 (6)本発明の第6の特徴は、標識物質保持部に、金ナノ粒子により修飾された標識物質が乾燥保持されているイムノクロマトキット、にある。
 (7)本発明の第7の特徴は、金ナノ粒子の平均粒径が20~60nmであるイムノクロマトキット、にある。
 本発明のイムノクロマトグラフィー検出法としては、次のような特徴を有する。
 (8)本発明の第8の特徴は、検体を試料添加部に添加する工程、標識物質保持部に保持されている金ナノ粒子により修飾された標識物質により検出対象物を認識させる工程、標識物質と検出対象物の複合体を移動相として展開させる工程、および展開された移動相中の検出対象物を検出部で検出する工程、からなるイムノクロマトグラフィー検出法において、少なくとも試料添加部にHLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させ、かつクロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピードの速いものを用いるイムノクロマトグラフィー検出法、にある。
 (9)本発明の第9の特徴は、金ナノ粒子の平均粒径が20~60nmであるイムノクロマトグラフィー検出法、にある。
 (10)本発明の第10の特徴は、検体が、生体試料であるイムノクロマトグラフィー検出法、にある。
 (11)本発明の第11の特徴は、検出対象物が、ペプチドホルモンであるイムノクロマトグラフィー検出法、にある。
 (12)本発明の第12の特徴は、試料添加部、及び標識物質保持部の両方に、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させることを特徴とするイムノクロマトグラフィー検出法、にある。
 本発明は以上のような特徴を有することにより、上記の課題を達成することができたものである。
 本発明では、免疫学的抗原抗体反応を利用して、被検出物(抗原等)が大過剰に存在する検査試料(「検体」ともいう。)中の被検出物(抗原等)を、抗体によりサンドイッチして検出する方法において、少なくとも試料添加部(「サンプルパッド」ともいう)にHLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させ、かつ、クロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピード(展開速度)の速いものを用いることにより、プロゾーン現象(抗原が存在するにも拘らず、テストラインが発色せず偽陰性と判断される現象)を顕著に解消できるものである。
 その為、本発明では、免疫学的抗原抗体反応を利用して、被検出物(抗原等)が大過剰に存在する検査試料(「検体」ともいう。)中の被検出物(抗原等)を、抗体によりサンドイッチして検出する方法において、迅速、簡便かつ正確に検出できるイムノクロマトグラフィー装置、および体外診断キットもしくは携帯用診断装置として重要性が高いイムノクロマトキット、さらにその検出方法を提供できるものである。
 即ち、本発明では、試料添加部(「サンプルパッド」ともいう)、又は試料添加部及び標識物質保持部(「コンジュゲーションパッド」ともいう)の両方に保持させている、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤の働きにより、被検出物(抗原等)が標識物質と速やかにコンジュゲートできるものである。
 さらに、クロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピード(展開速度)の速いものを用いることにより、さらには、抗体を修飾して標識物質として用いる金コロイドの粒径を20~60nmという比較的小さいものを使用することにより、これらが共同作用する結果、作用機序は明確ではないが、被検出物(抗原等)と標識物質の複合体の形成が極めて迅速で、かつ該複合体のクロマトグラフ媒体中での移動展開が、非常に円滑かつ迅速で何の支障もなく、そして、テストライン抗体と速やかに結合して発色することができるものである。
 その結果として、プロゾーン現象を起こすことなく、正確にかつ、展開速度の速い迅速、簡便および高感度に、結果の判定が可能である検査薬を提供することができたものである。例えば、検体として用いる尿中のLH、又はhCG等を検出する際に、結合抗体量を増加させることなく、かつ、被検出物(抗原等)の低濃度での発色強度は変化させずに、感度の低下なく、しかも、プロゾーン現象を顕著に抑制/解消するため、判定基準が判り易く正確に検査結果の判定が可能である。
図1は、本発明のイムノクロマトグラフィー装置を示す図である。 図2は、本発明の[表5]のデータをグラフ化したものである。
 以下、本発明を詳細に説明する。
 本発明の実施形態は、各種検体中の被検出物質である検出対象物(抗原)に各種の標識をつけた特異的に結合する結合物質(抗体)を、クロマトグラフ媒体上で反応させる抗原-抗体反応により複合体を形成させ、イムノクロマトグラフ媒体上を吸収部の方向へ展開させて、それを各種の検出手段により確認するという、イムノクロマトグラフ法またはそれを応用した検出法に基づくものである。その抗原と最も特異的に反応して結合する抗体としては、それと特異的に結合する、例えばモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体若しくはその他の公知の抗体を任意に使用することができる。
 その標識としては、酵素、発色物質、蛍光物質、または放射性物質などを任意に使用することができるが、操作が簡単で、検定時間も短くするという、イムノクロマトグラフ法の特色を出す為や、抗体、抗原の種類を考慮して決めればよい。
 また、検出手段は、操作が簡単で、比較的短時間で判定できるという、イムノクロマトグラフ法の特色を表すためには、目視判定で、正確に判定できるという性能を有することを特徴とするが、時間、精度などが要求される場合には、分光光度検出、放射線検出など、各種の検出手段を付帯させて、検出することもできる。
 本発明のイムノクロマトグラフ法に使用可能なイムノクロマトグラフィー装置、イムノクロマトキット、免疫測定法もしくはイムノクロマト検出方法、を実施するための最良の形態を順次説明をする。
 本発明のイムノクロマトグラフィー装置とは、免疫測定に際して使用する装置であって、その一態様としては、イムノクロマトキットが含まれるものである。このイムノクロマトグラフィー装置においては、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を、少なくとも試料添加部(2)に含有保持させている。
 しかし、これに加えて標識物質保持部(3)、さらにはクロマトグラフ媒体であるメンブレン(4)におけるこれらの1以上の部位に含有保持させても構わない。この非イオン性かつ親水性界面活性剤を試料添加部に含有させた場合には、標識物質保持部(3)、クロマトグラフ媒体(4)、検出部(以下、判定部ともいう)(5)および吸収部(6)へと順次移動および展開する性質を備えたものである。
 本発明のイムノクロマトグラフィー装置としては、試料添加部(2)に、または試料添加部(2)および標識物質保持部(3)の両方に、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を乾燥して保持含有させるものである。
 本発明で使用可能な特定の非イオン性界面活性剤としては、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤であり、より好ましくはHLB値が14~17の非イオン性かつ親水性界面活性剤である。
 市販されているTriton X100(商品名)、Brij 35(商品名)、Tween 20(商品名)、NP 40(商品名)等の商品が、使用可能なものとして挙げられる。特に好適なものとしては、Brij 35(商品名)、Tween 20(商品名)等が挙げられる。HLB値が13未満では、可溶化作用が不十分となるため、感度が悪くなる。一方で、HLB値が18超では、可溶化作用は十分であるが、親水性が大きすぎても、感度が低下する。
 界面活性剤の浸透、可溶化の特性なども考慮すれば、HLB値は13~18程度の非イオン性界面活性剤が、本発明のイムノクロマトグラフィー装置に最も適していることを知見したものである。本発明の非イオン性界面活性剤の挙動は、クロマトグラフ媒体のメンブレンのハイフローレート特性と、更には金ナノ粒子の特性とも相互に協同して、他のアニオン界面活性剤、カチオン界面活性剤、両性界面活性剤には見られない特有の性質および性能を発現することができる。
 本発明の試料添加部(「サンプルパッド」ともいう)、又は試料添加部及び標識物質保持部(「コンジュゲーションパッド」ともいう。)の両方に保持させる、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤の含有量は、0.10~5.0μg/mmであり、好ましくは0.15~3.0μg/mmであり、特に好ましくは0.20~1.0μg/mmである。
 0.10μg/mm未満の含有量では、流れが悪くなり、一方、5.0μg/mm超では、装置製造時の裁断やパッケージの収納時に、サンプルパッドの剥離を生じたり、検出ラインの発色にムラが生じることがあり、無駄となる。0.10~5.0μg/mmの範囲で用いれば、クロマトグラフ媒体のメンブレンのハイフローレート特性と相互に協同して作用し、よりプロゾーン現象を抑制することができる。
 本発明のクロマトグラフ媒体に使用するメンブレンとしては、フロースピード(展開速度)の速いものを用いる。ハイフローレート(High Flow Rate:水を4cm吸い上げるのにかかる時間(sec/40mm))(HFR)が、75(sec/40mm)以下であるものが使用可能であり、好ましくは、60(sec/40mm)以下であり、特に好ましくは、45(sec/40mm)以下のものである。
 ハイフローレート(HFR)(High Flow Rate:水を4cm吸い上げるのにかかる時間(sec/40mm))が、75(sec/40mm)を超える展開速度が遅いメンブレンでは、被検出物(抗原等)と標識物質の複合体は、被検出物(抗原等)と比べてメンブレン中を速やかに移動できないため、被検出物(抗原等)が大過剰に存在する検体の検査においては、プロゾーン現象を抑制することができない。
 検出に要する測定時間や精度などを考慮すれば、HFRが20(sec/40mm)程度まで、任意に設計できる。好ましくは、30(sec/40mm)以上のものであり、特に好ましくは、36(sec/40mm)以上のものである。
 この膜担体の特性としては、毛細管現象などにより試料検体を吸収し移動させることができる材料が推奨される。この移動現象は、膜担体を構成する素材が有する性質、および膜の毛細管現象を発現する多孔質という構造面から吟味する必要がある。この膜担体の構造設計には、素材と構造の両面からの吟味が、必要である。
 いずれにせよ、フロースピード(展開速度)の速いものであれば、特に限定されるものではない。ハイフローレイト(HFR)が75(sec/40mm)以下の担体材料を選定することが、特にプロゾーン現象を抑制/解消するという目標を達成するにおいて好適である。
 例えば、ニトロセルロース、酢酸セルロース、セルロース等の天然素材、ナイロン、ポリエーテルスルホン、ポリビニルアルコール、ポリエステル、ポリオレフィン等の合成ポリマー、ガラスファイバー、カーボンファイバー等の無機繊維等の材料から製造されるものであり、混合繊維からなるものであってもよい。その膜担体の使用状態は、例えば、繊維、織布、不織布、布、膜、紙、連通気泡のスポンジ、シート、発泡体、パッド等の任意の形態のものから選定できるが、HFRの性能を考慮して設計することができる。
 この膜担体の寸法は、特に限定されず、この種の製品に適用される一般的なものを利用することができるが、例示すると幅3~10mm、長さ2~6cm、厚さは100~150μmのものが標準的なものである。メンブレンは多孔性であるため、不透水性のポリエステル、ポリエチレン等のフィルムを張り合わせることによって裏打ちするか、あるいはあらかじめ不透水性のポリエステル、ポリエチレン等のプラスチックフィルム上にニトロセルロースメンブレンを積層させて形成したものであってもよい。この不透水性フィルムの厚みには特に制限はないが100μm程度のものが取り扱い上好ましい。
 本発明のイムノクロマトグラフィー装置において、標識物質に使用する金ナノ粒子としては、平均粒径が、10~60nm、好ましくは20~60nm程度の赤色金ナノ粒子及び/又は青色金ナノ粒子が好ましい。勿論、白金、銀、ロジウム、パラジウム、ゲルマニウムなどの貴金属粒子、チタン、亜鉛、鉄等の平均粒径が、10~60nm、好ましくは20~60nm程度の金属ナノ粒子も使用可能である。
 このような金属ナノ粒子が分散状態にある、例えば、抗体、抗原による感作金属コロイド、感作金コロイド、感作白金-金コロイド、感作金-銀コロイド、鉄コロイド等が挙げられるが、金コロイドが入手及び取り扱いが容易であるところから、最も推奨される。平均粒径は、コロイドの粒度分布を動的光散乱法粒度分布計で測定した後の平均粒径を求めるという慣用の測定法に基づいて決めることができる。
 本発明における検査試料(検体)としては、例えば、主として生体試料、具体的には、血液、血清、血漿、尿、唾液、汗、髄液、涙、羊水、乳頭分泌液、鼻汁、痰、鼻腔吸引液、咽頭拭い液、肺胞洗浄液、皮膚からの浸出液、直腸拭い液、糞便および組織や細胞からの抽出物等のみならず、食品抽出液、上水、下廃水、培養液等といった試料などが挙げることができ、特に限定されるものではない。これらの検体中に、被検出物(抗原等)が大過剰に含まれる場合に、特に有用であって、プロゾーン現象を起こすことなく、簡単かつ正確に検査できるものである。
 本発明の検出対象物としては、それと特異的に結合する、例えば、抗原-抗体反応のように特異的に結合する物質が存在するかもしくは製造できるものであればよく、特に限定されない。検出対象物が完全抗原といったそれ自体が抗原性を有するものであっても、もしくはハプテン(不完全抗原)といった、それ自体が抗原性を有しなくても化学的変成物とすることにより抗原性を持つに至るものであってもよい。これらの検出対象物と特異的に結合する物質が、存在するかもしくは製造できるものであればよく、モノクローナル抗体若しくはポリクローナル抗体とすることができる。
 本発明の検出対象物を例示すれば、ペプチドホルモン(成長ホルモン(GH)、副腎皮質刺激ホルモン(ACTH)、メラミン細胞刺激ホルモン(MSH)、プロラクチン、甲状腺刺激ホルモン(TSH)、黄体形成ホルモン(LH)、卵胞刺激ホルモン(FSH)、下垂体ホルモン、カルシユウム代謝調節ホルモン、膵ホルモン、消化管ホルモン、血管作用ホルモン、ヒト絨毛性性腺刺激ホルモン(hCG)、エストロン等の卵胞ホルモン、プロゲストロン等の天然又は合成黄体ホルモン、テストステロン等の男性ホルモン、コルチゾール等の副腎皮質ホルモン、ジヨードサイロニン等の甲状腺ホルモン類等のホルモン、前立腺性酸性フォスファターゼ(PAP)、前立腺特異抗原(PSA)、アルカリ性フォスファターゼ、トランスアミナーゼ、トリプシン、ペプシノーゲン、α-フェトプロテイン(AFP)、ガン胎児性抗原(CEA)等のガン特異物質、免疫グロブリンG(IgG)等の血清蛋白成分、リュウマチ因子、セロトニン、ウロキナーゼ、フェリチン、サブスタンP、便潜血、梅毒抗体、インフルエンザウィルス、アデノウィルス、ロタウィルス、マイコプラズマ、HBs抗原、HBs抗体、クラミジア抗原、A群β溶連菌抗原、コレステロール、胆汁酸、強心性ステロイド、サポゲニン等のその他のステロイド類、エピネフリン、ドーパミン、生理活性アルカロイド類、アミノ基含有向精神薬類、TRH等の低分子ペプチド類、プロスタグランジン類、ビタミン類、ペニシリン等の抗生物質類、その他生体内成分、生体内投与薬物およびその代謝産物等が挙げられる。
 好ましい検出対象物としては、特に黄体形成ホルモン(LH)、卵胞刺激ホルモン(FSH)、ヒト絨毛性性腺刺激ホルモン(hCG)、エストロン等の卵胞ホルモン、プロゲストロン等の天然又は合成黄体ホルモン等が挙げられ、本発明の検出対象物を含む試料(検体)としては、例えば、尿、血液等が用いられる。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用の標識物質溶液等は、緩衝剤や界面活性剤、特に、非イオン性界面活性剤を含有させることが好ましい。
 含有させる緩衝剤としては、試料の添加や試料の蒸発や希釈による濃度の変化、外部からの多少の異物の混入によっても致命的な影響を生じない作用(緩衝作用)を持つものであれば特に制限はない。
 本発明において、緩衝剤としては、例えば、酢酸緩衝液(酢酸+酢酸ナトリウム)、リン酸緩衝液(リン酸+リン酸ナトリウム)、クエン酸緩衝液(クエン酸+クエン酸ナトリウム)、ホウ酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液(トリス(ヒドロキシルメチル)アミノメタン+塩酸)、TE緩衝液(トリス+エチレンジアミン四酢酸)、TAE緩衝液(トリス+酢酸+エチレンジアミン四酢酸)、TBE緩衝液(トリス+ホウ酸+エチレンジアミン四酢酸)又はHEPES緩衝液(2-[4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジニル]エタンスルフォン酸)等が挙げられる。
 好ましくは、HEPES緩衝液、リン酸緩衝液、酢酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液等であり、より好ましくは、リン酸緩衝液、HEPES緩衝液である。また、悪影響を及ぼさない範囲内においてその他の緩衝剤を配合して使用することもできる。
 本発明で使用する緩衝剤の濃度としては、10~500mMの範囲が好ましく、10~300mMの範囲がより好ましく、30~100mMの範囲がさらに好ましい。濃度が10mMより低くなると緩衝作用が不十分になり、タンパク成分の析出抑制や標識粒子の凝集抑制も不十分となる。500mM超では、必要以上の濃度となり経済的でなく無駄となる。また、緩衝液として、pH範囲7.1~9.8のものを作るのが最適である。
 本発明のイムノクロマトグラフィー装置の各部位、特に、クロマトグラフ媒体のメンブレンには、生物学的親和性に基づく副反応を抑制したり、非特異的反応を抑制することができる公知の添加剤、例えば、抗原抗体反応の促進あるいは非特異的反応を抑制するための蛋白質(例えば、牛血清アルブミン、ゼラチン等)、高分子化合物(例えば、ポリエチレングリコール、メチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、デキストラン等)、イオン性界面活性剤又はポリアニオン(例えば、デキストラン硫酸、ヘパリン、ポリスチレンスルホン酸、コンドロイチン硫酸等)、あるいは、抗菌剤等の1種もしくは2種以上を添加保持して使用することも可能かつ有効であって、何ら妨げるものではない。
 また、これらの抗原抗体反応の促進あるいは非特異的反応を抑制するための蛋白質、高分子化合物、イオン性界面活性剤又はポリアニオン、あるいは、抗菌剤等の1種もしくは2種以上を、固定相を構成するクロマトグラフィー媒体上の、移動相の移動経路上に保持させておくことも可能かつ有効であって、何ら妨げるものではない。
 本発明のイムノクロマトグラフィー装置におけるサンプルパッド(SP)、又はサンプルパッド(SP)及びコンジュゲーションパッド(CP)中に含有させる上記添加剤の含有量としては、0.01~20質量%の濃度範囲、好ましくは、0.1~10質量%の濃度範囲、より好ましくは、0.5~5質量%の濃度範囲の水溶液を、塗布あるいは含浸させた後、乾燥させて単位面積当りの含有量が、0.10~10.0μg/mm、好ましくは0.15~5.0μg/mm、特に好ましくは0.20~1.0μg/mmとなるようにする。
 0.10μg/mm未満の含有量では、非特異的反応を抑制できず正確な判定が行なえない。一方、10.0μg/mm超では、必要以上の濃度となり経済的でなく無駄となる。単位面積当りの含有量が、0.10~10.0μg/mmの範囲で用いれば、クロマトグラフ媒体のメンブレンのハイフローレート特性と相互に協同して作用し、よりプロゾーン現象を抑制することができる。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用標識物質溶液を固相中に保持させるに際し、標識物質溶液中に含有させる保護安定化物質もしくは溶解促進物質としては、糖類、即ち、単糖類、二糖類、三糖類、オリゴ糖又は多糖類が使用できる。
 単糖類としては、グルコース、ガラクトース、キシロース、フラクトース等が、二糖類としては、トレハロース、シュークロース、ラクトース、マルトース等が、三糖類やオリゴ糖としては、ラフィノース等が、多糖類としては、グルコン酸、デキストラン等が、挙げられ、これらは、1種又は2種以上を混合して用いても何ら差支えない。
 また、本発明の標識物質保持部をイムノクロマトグラフィー装置の領域部内に設けるにおいては、試料添加部の端部と判定部との間の領域内に、標識物質を分子量1000~30000のメルカプト基を1以上有するアルキレングリコール及び/又はその誘導体(保護試薬)により保護処理し、必要に応じて、これに更にアルギニン及びカゼイン(安定化試薬)を混合して得られる、標識物質保護安定化試薬含有組成物を、塗布、吸着もしくは含浸させた後、各種の乾燥手段(通気乾燥、真空乾燥、自然乾燥、凍結乾燥等)により乾燥させることによって、担持または保持もしくは形成するのが好ましい。
 本発明のイムノクロマトグラフィー用標識物質溶液やその他の試薬組成物を含む部位を設ける方法としては、例えば、イムノクロマトグラフィー装置におけるグラスファイバーパッド(標識物質保持部材)中へイムノクロマトグラフィー用標識物質溶液を塗布又は含浸させた後、各種の乾燥手段により乾燥させる方法により、グラスファイバーパッド中へ担持または保持させる態様とすることができる。
 本発明のイムノクロマトグラフィー検出法を実施するにおいては、検体を直接、試料添加部に滴下するか又は検体中に試料添加部を浸漬する態様となる。しかしながら、検体が、例えば、痰のように固形状である場合には、検体希釈液を使用することも可能である。
 この検体希釈液は、また展開液としても使用することができるものであるが、通常、溶媒として水を用い、これに緩衝液、塩、および非イオン性界面活性剤、さらに、前記抗原抗体反応の促進あるいは非特異的反応を抑制するための蛋白質、高分子化合物(PVP等)、イオン性界面活性剤又はポリアニオン、あるいは、抗菌剤、キレート剤等の1種もしくは2種以上を加える。
 加える順序は特に特定されず、同時に加えても差支えない。展開液として用いる場合には、検出試料と展開液を予め混合したものを、サンプルパッド(試料添加部)上に供給・滴下して展開させることもできるし、先に試料をサンプルパッド上に供給・滴下した後、展開液をサンプルパッド上に供給・滴下して展開させてもよい。試料希釈液として使用する場合には、試料希釈液により試料を測定に適した濃度に調整した或いは希釈した後に、サンプルパッド上に供給・滴下することにより使用できる。
 イムノクロマトグラフィー装置および仕様について、以下に説明をする。
 イムノクロマトグラフィー装置またはイムノクロマトキット(1)は、試料添加部(2)(「サンプルパッド」ともいう)、標識物質保持部(3)(「コンジュゲートパッド」ともいう)、クロマトグラフィー媒体(4)、判定部(5)、更に必要に応じてコントロール部(8)、吸収部(6)(「展開速度コントロール部」ともいう。)、およびバッキングシート(7)から構成されている。それらの各部位の構造、仕様および態様は以下のとおりである。
 1)試料添加部(2)(「サンプルパッド」)は、図1を参考にすると、試料が迅速に吸収されるが、保持力は弱く、速やかに反応部へと試料が移動していくような性質の多孔質シートで構成されている。多孔質シートとしては、セルロース濾紙、ガラスファイバー濾紙、ポリウレタン、ポリアセテート、酢酸セルロース、レーヨン、ナイロン、綿布等が挙げられる。本発明の多孔質シートとしては、ガラスファイバー濾紙、レーヨンが好ましく用いられる。本発明においては、プロゾーン現象を抑制/解消するために、少なくともサンプルパッド(2)中に、HLB13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤、および必要に応じて緩衝液を含むイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を予め含浸させた後、乾燥させる等の手段により担持させる態様とすることができる。
 本発明のイムノクロマトキットのサンプルパッド中に保持する非イオン性界面活性剤としては、HLB(Hydrophile Lipophile Balance=親水基の重量%×0.2=0~20)が、13~18であるものが使用可能である。
 例えば、ポリオキシアルキレンアルキルエーテル類、ポリオキシエチレンアルキルエーテル類(例えば、登録商標「Brij」シリーズ)、ポリオキシエチレン/ポリオキシプロピレンアルキルエーテル類(例えば、ナカライテスク社製、商品名:NP 40)、ポリオキシエチレンアリールエーテル類、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル類(例えば、商品名「Tween」シリーズ)、ポリオキシエチレンp-t-オクチルフェニルエーテル類(例えば、商品名「Triton」シリーズ)、例えば、ポリオキシエチレン(10)-p-t-オクチルフェニルエーテル(Triton X100(商品名)、HLB=13.7)、ポリオキシエチレンp-t-ノニルフェニルエーテル類(例えば、商品名「TritonN」シリーズ)、ポリオキシアルキレンアリールエーテル類、ポリオキシアルキレン多環フェニルエーテル類、ポリオキシエチレンアルキルアミンエーテル類、水素化ポリオキシエチル化ひまし油類等であって、HLB値が13~18であるものを挙げることができる。また、悪影響を及ぼさない範囲内において、これらの非イオン性界面活性剤を混合して使用することも可能である。
 2)標識物質保持部(3)には、標識成分によって試薬成分を標識した標識試薬を担持または保持させている。標識成分としては、金コロイド粒子、銀コロイド粒子等の金属コロイド粒子、各種のモノマーを(共)重合させて合成した合成高分子を染色して得られる着色ラテックス粒子、酵素、蛍光化合物、その他を用いることができる。試薬成分としては、分析物を認識する能力を有する粒子又は分子であり、好ましくはモノクローナル抗体又はポリクローナル抗体若しくはそのフラグメントである(第二試薬)。
 また、本発明においては、プロゾーン現象を抑制/解消するために、サンプルパッド(2)のみならず標識物質保持部(3)中においても、HLB13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤、および必要に応じて緩衝液を含むイムノクロマトグラフィー用試薬組成物を予め含浸させた後、乾燥させる等の手段により担持させる態様とすることが好ましい。
 3)クロマトグラフ媒体(4)は、膜担体上に判定部(検出部ともいう)(5)を作製したものである。膜担体としては、毛細管現象により試料検体を吸収し移動させることができるものであって、フロースピード(展開速度)の速いものであれば、特に限定されるものではない。ハイフローレイトHFRが75(sec/40mm)以下、好ましくはHFRが20~60(sec/40mm)で、プロゾーン現象を抑制/解消するのに好適である。
 より好ましくは、30~60(sec/40mm)であり、特に好ましくは、36~60(sec/40mm)である。例えば、ニトロセルロース、酢酸セルロース、ナイロン、ポリエーテルスルホン、ポリビニルアルコール、ポリエステル、ガラスファイバー、ポリオレフィン、セルロース、これらの混合繊維からなる人工ポリマーからなる群から選択される。それらの繊維、織布、不織布、布、膜などの任意のものからなる。
 4)判定部(5)には、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体若しくはそのフラグメント(第一試薬)が、ニトロセルロースのシート上に担持固定されている。
 この判定部(5)に用いる試薬成分(第一試薬)および標識試薬に用いる試薬成分(第二試薬)は、その一方又は両方がモノクローナル抗体であってもよいし、ポリクローナル抗体であってもよいが、特異性を保った上で製造コストや抗体の安定供給を考慮する場合は、少なくとも一方がポリクローナル抗体であることが好ましい。
 更に、標識試薬に用いる試薬成分(第二試薬)は、測定感度等の点から特異性の高いモノクローナル抗体がより好ましい。しかしながら、第一試薬および第二試薬の両方にモノクローナル抗体を用いることが、反応の正確性と効率性の観点から最も好ましい。
 モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体及びそれらのフラグメントは、公知であり、入手可能であり、公知の方法により調整することができる。抗体産生動物種としては、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、ヤギ等である。免疫グロブリンとしては、IgG、IgM、IgA、IgE、IgDのいずれでもよい。
 モノクローナル抗体は、常法に従って、抗原で免疫したマウスの脾臓細胞と骨隋腫細胞をハイブリッドさせ、目的とする抗体を産生するハイブリドーマを選択し、このハイブリドーマから産生されてくるモノクローナル抗体を収得する。例えば、ケーラーとミルスタインの技法(Nature 256(1975)495-497)を参照できる。
 ポリクローナル抗体は、常套手法により、抗原を産生動物(例えば、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、ヤギ、ウマ等)に免疫して得た抗血清中から目的とする抗体を分離することにより得られる。
 5)吸収部(6)には、過剰の試料を迅速に吸収する能力を有する材料であるガラス繊維、セルロース繊維等からなる濾紙が汎用されているが、さらに吸収した液体が逆流しないように保持する能力を有する材料を用いればより好ましい。特に好ましい態様は(日本国特開2012-189346号公報)に開示されているとおりのものである。
 6)バッキングシート(7)は、基材である。片面に粘着剤を塗布したり、粘着テープを貼り付けることにより、片面が粘着性を有し、該粘着面上に試料添加部(2)、標識物質保持部(3)、検出部(5)を有するクロマトグラフ媒体(4)、および吸収部(6)の一部または全部が密着して設けられている。バッキングシート(7)は、粘着剤によって試料液に対して不透過性、非透湿性となるようなものであれば、基材としては、特に限定されない。
 以下、本発明の有効性を各仕様の実施例および実施態様を挙げて説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
 以下に、実施例および比較例を挙げて、本発明の有意性を説明する。その実施の仕様は以下のとおりのものである。
[実施例1]
1.クロマトグラフ媒体上への判定部の作製
 2.5×25cmのセルロースからなるメンブレンに、抗体塗布機(BioDot社製)を用いて、5質量%のイソプロピルアルコールを含むリン酸緩衝液(pH7.5)で希釈した濃度1.8mg/mlの抗LH(黄体形成ホルモン)モノクローナル抗体を塗布し乾燥させ、クロマトグラフ媒体上へ判定部を作製した。
2.標識試薬溶液の作製
 金コロイド懸濁液(田中貴金属工業(株)製:40nm)0.9mlにリン酸緩衝液(pH7.5)を0.1ml加え混和し、リン酸緩衝液(pH7.5)で希釈した50μg/mlの抗LHモノクローナル抗体を0.05ml加え、室温で10分間静置した。次いで、0.01質量%のPEG-SH(日本油脂株式会社製、商品名:SUNBRIGHT ME-200SH、分子量20000)を含むTris緩衝液(pH7.5)を0.1ml加え、十分攪拌した後、8000×gで15分間遠心分離を行った。上清を除去した後、リン酸緩衝液(pH7.5)を1ml加えた。超音波破砕機を用いてコロイド状の標識試薬をよく分散させた後、8000×gで15分間遠心分離した。上清を除去し、前記リン酸緩衝液を0.15ml加えて超音波破砕機にてよく分散し、標識試薬溶液とした。
3.サンプルパッド(試料添加部)の作製
 3.0×25cmのレーヨン製パッドへ、非イオン性界面活性剤としてTween20(シグマアルドリッチ社製、商品名:Tween(登録商標)20、HLB(Hydrophile-Lipophile Balance)値:16.7)の2質量%水溶液を表に記載の単位面積あたりの含有量となるように均一に塗布した後、真空乾燥機にて乾燥させ作製した。
4.クロマトグラフ媒体の作製
 上記作製した標識試薬溶液0.22mLを0.78mlの10%トレハロース水溶液に加え混和し、1.6×25cmのグラスファイバー製パッドに均一に添加した後、真空乾燥機にて乾燥させ、標識試薬保持部材とした。次いで、バッキングシートから成る基材に、上記にて判定部を作製したニトロセルロース膜、標識試薬保持部材、上記作製したサンプルパッド、および展開した試料や標識試薬などを吸収するためのセルロース繊維の吸収パッドを貼り合わせた。最後に、裁断機で幅が5mmとなるように裁断し、クロマトグラフ媒体を作製した。
5.測定
 上記3.にて作製したクロマトグラフ媒体を用いて、被検物質であるLHの検出試験を行った。陰性検体としては、LHが、0mIU/mLである男性尿の150μLを陰性検体試料として用いた。また、表1~3では、陽性検体試料として、LHが40mIU/mLの濃度で含む男性尿で希釈した試料150μLを用い、さらに、表4では、陽性検体試料として、20×10mIU/mLの濃度で含む男性尿で希釈した試料150μLを用いて試験した。表5では、LHが、0~2×10mIU/mLの濃度範囲のものを用い、更に、メンブレンのHFRが、45、及び75のものを用いて試験した。陰性検体試料、陽性検体試料とも150μLをイムノクロマトグラフィー用試験片のサンプルパッド上に添加し展開させ、15分後に目視判定をした。
流れについて:測定開始後に試料液がメンブレン上に展開された際に、その液の展開と標識試薬の赤色の展開を目視で確認した。
 展開された液と標識試薬が同じあるいはほぼ同じ速度で展開されたものは「○」、
 展開された液に少し遅れ標識試薬が展開されたものは「△」、
 展開された液に遅れ標識試薬が展開されたものは「×」とした。
感度について:
 判定部の赤い線を確認できるものは「○」、
 赤い線は確認できるが、非常に色が薄いものは「△」
 赤い線を確認できないものは「×」とした。
目視判定基準:
 判定部の赤い線を確認できるものは「+」、
 鮮明に確認できるものは「++」、
 より強く鮮明に確認できるものは「+++」、
 赤い線を確認できるが、非常に色が薄いものは「±」、
 赤い線を確認できないものは「-」とした。
 その試験結果を表に示す。
尚、表1~4中で使用した非イオン性界面活性剤は、以下のとおりである。
〔非イオン性界面活性剤について〕
MN811:日油社製、商品名:ノニオンMN811
Triton X100:シグマアルドリッチ社製、商品名:Triton X100
Brij35:ICI Americas Inc.の登録商標、商品名:Brij35
Tween20:ICI Americas Inc.の商品名:ポリオキシエチレン(20)ソルビタンモノラウレート
NP40:ナカライテスク社製、商品名:ノニデット P40
 上記3.にて作製するクロマトグラフ媒体において、サンプルパッド(SP)に添加する非イオン性界面活性剤であるTween20に代えて、HLB値が異なる各種類の非イオン性界面活性剤を用いて、被検物質であるLHの検出試験を行って、HLB値の違いに起因する非イオン性界面活性剤の評価検討を行った。サンプルパッド(SP)に添加する非イオン性界面活性剤の含有量は、0.2μg/mmである。陰性検体としてLHを、0mIU/mL、あるいは陽性検体としてLHを、40mIU/mLの濃度で含む男性尿で希釈した試料150μLを、用いて試験した。試験結果を表1に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 表1の結果から明らかなように、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を用いた場合には、LHと標識物質との複合体の、サンプルパッドから吸収部へ向けて流れる速度が、展開された液と同じあるいはほぼ同じ速度で展開され良好である。また、HLB値が14~17の非イオン性かつ親水性界面活性剤を用いた場合には、検出ラインにおける感度も良好であることがわかった。流れ及び感度の両面で、Brij35、Tween20が好ましく、特に、Tween20は保存安定性の点でも好適であった。
 上記3.にて作製するクロマトグラフ媒体において、サンプルパッド(SP)のみに添加する非イオン性界面活性剤としてTween20及びBrij35を用いて、その含有量を変えたこと以外は、前記と同じ手順態様で実施して、被検物質であるLHの検出試験を行って、非イオン性界面活性剤の含有量の違いに起因する評価検討を行った。検査デバイスの陰性・陽性検体での評価を行うにあたって、陰性検体としてLHを、0mIU/mL、あるいは陽性検体としてLHを、40mIU/mLの濃度で含む男性尿で希釈した試料150μLを用いて試験した。そして、同じ目視判定基準に従って判定した。試験結果を表2に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
 表2の結果から明らかなように、サンプルパッド(SP)のみに添加する非イオン性界面活性剤のTween20及びBrij35の含有量は、0.20~0.60μg/mmの範囲であれば流れ及び感度の両面で良好であることがわかった。含有量が多すぎる場合には、装置製造時やパッケージ収納時に剥離等の損傷が生じたり、乾燥状態の不均一に起因して、検出ラインの発色にムラが生じる場合がある。
 上記3.にて作製するクロマトグラフ媒体において、サンプルパッド(SP)及びコンジュゲーションパッド(CP)の両方に非イオン性界面活性剤であるTween20を添加する以外は、前記と同じ手順態様で実施した。そして、Tween20の含有量を変えて、被検物質であるLHの検出試験を行って、含有量の違いに起因する評価検討を行った。検査デバイスの陰性・陽性検体での評価を行うに当り、陰性検体としてLHを、0mIU/mL、あるいは陽性検体としてLHを、40mIU/mLの濃度で含む男性尿で希釈した試料150μLを、用いて試験した。試験結果を表3に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
 表3の結果から明らかなように、非イオン性界面活性剤のTween20は、サンプルパッド(SP)のみに添加してもよいが、サンプルパッド(SP)及びコンジュゲーションパッド(CP)の両方に添加するとさらに良好であることがわかる。むしろ、サンプルパッド(SP)のみに添加するより、サンプルパッド(SP)及びコンジュゲーションパッド(CP)の両方に添加すると、非イオン性界面活性剤の総含有量は少量でも、流れ及び感度の両面で良好に機能することがわかった。
 上記1.にて作製するクロマトグラフ媒体において、使用するメンブレンの流速(High Flow Rate:水を4cm吸い上げるのにかかる時間(sec/40mm)特性の違いによる、プロゾーン現象の抑制効果について評価検討を行った。サンプルパッド(SP)のみに添加する非イオン性界面活性剤としてTween20、及びBrij35を用い、その含有量は、0.2μg/mmである。陽性検体としてLHを、20×10mIU/mLの濃度で含む男性尿で希釈した試料150μLを用いたこと以外は、前記と同じ操作手順、及び態様で実施した。そして、同じ目視判定基準に従って判定した。その判定結果を表4に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
 表4の結果から明らかなように、メンブレンのハイフローレートが、75(sec/40mm)以下で、プロゾーン現象を抑制する効果が得られた。
 以下においては、被検物質の濃度範囲に対して、プロゾーン現象の抑制効果について評価検討を、被検物質濃度が0~2×10mIU/mLの濃度範囲のものについて、更に、メンブレンのHFRが、45、及び75のものを用いて、発色強度(吸光度)を測定することにより行った。
 上記1.にて作製するクロマトグラフ媒体において、使用するメンブレンの流速(HFR:sec/40mm)特性は、2種類(HF45、HF75)のものを使用した。HF45では、サンプルパッド(SP)のみに非イオン性界面活性剤(Tween20、0.4μg/mm)を添加した場合と、サンプルパッド(SP)に非イオン性界面活性剤(Tween20、0.2μg/mm)を、コンジュゲーションパッド(CP)にも非イオン性界面活性剤(Tween20、0.2μg/mm)を添加した場合とで、測定した。HF75では、サンプルパッド(SP)のみに非イオン性界面活性剤(Tween20、0.4μg/mm)を添加して、測定した。
 陽性検体としてLHを、3~2×10mIU/mLの濃度で含む男性尿で希釈した試料150μLを用い、かつ、上記の条件で行う以外は、前記と同じ操作手順、及び態様で実施し、プロゾーン現象の抑制効果について評価検討を行った。そして、同じ目視判定基準に従って判定した。その判定結果を表5に示す。
 発色強度(吸光度)が、10未満では目視判定は、不可能であり、10以上で目視判定が、可能になる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005

 
 表5の結果から明らかなように、本発明においては、プロゾーン現象を抑制/解消する効果が、被検物質量の極めて広い濃度範囲において、かつ、非常に顕著に発揮されることがわかる。
 表5のデータをグラフにしたものが、図2である。このグラフを見れば、本発明で奏されるプロゾーン現象の抑制/解消効果が、さらに明瞭である。HF45では、被検物質濃度が20~1×10mIU/mLの範囲まで、目視判定可能であり、HF75では、被検物質濃度が50~5×10mIU/mLの範囲まで、目視判定可能であることが、よくわかる。
 この結果から、メンブレンのフロースピード(展開速度)の速いHF45の方が、フロースピード(展開速度)の遅いHF75に比べて、目視判定可能な被検物質濃度ゾーンが、低濃度及び高濃度の両ゾーンで、広がっていることがわかる。即ち、高濃度検体においては、プロゾーン現象の抑制/解消効果が極めて顕著に発揮されており、また、低濃度検体においても、発色が弱まることなく発揮されていることを、裏付けている。
 このように、本発明の図1に見るようなイムノクロマトキットは、少なくとも試料添加部(サンプルパッド)に特定の非イオン性界面活性剤を乾燥保持させ、クロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピード(展開速度)の速いものを用いることにより、極めて広い被検物質濃度範囲にわたって、プロゾーン現象を抑制することができると共に、低い被検物質濃度においても発色が弱まることなく十分な発色強度が得られるという格別顕著な機能を果たすことを、本発明者等は知見したものである。
 これらの結果から、イムノクロマトグラフ法により検体中の検出対象物の検査を行うにおいて、少なくとも試料添加部(サンプルパッド)にHLB値が13~18の非イオン性界面活性剤を、より好ましくはHLB値が15~17の非イオン性界面活性剤を保持させ、かつ、クロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとして、ハイフローレートが、75(sec/40mm)以下のものを用いる本発明においては、検体の流れを速くすることにより、検出対象物(抗原)がメンブレン上の検出抗体を埋めてしまう前に、発色抗体(検出対象物(抗原)と標識物質の複合体)が到達できるようになるため、検体中に検出対象物(抗原)が大過剰に存在する場合にあっても、プロゾーン現象を顕著に抑制して、展開速度の速い、S/N比が高い正確な判定ができるという顕著な効果を奏することが、明らかとなった。
 本発明は、尿、血液等といった、検体抽出液等を必要としない、しかも、検体中に検出対象物(抗原等)が大過剰に存在する系にあっても、プロゾーン現象を抑制/解消して迅速且つ簡便な検査、診断ができるという免疫学的診断方法及び装置に使用することができるという優れた利点を有するため、病院、クリニックのみならず格別な技能を有しない個人であっても、高感度で迅速な臨床検査が可能であり、病気の早期診断や治療に繋がるという利用可能性を有する。
 さらに、低濃度から高濃度までという幅広い範囲の検体を扱うことができ、また、希釈液等の必要もなく、更に、プロゾーン現象が起きないので、判定基準も単純明快であるため、容易かつ正確な免疫学的診断方法及び装置を提供するものである。そのため、本発明のキットの取り扱い、検査効率および検査精度を上げるばかりでなく、検査の効率化、省力化も向上するので、検査機関に係わる産業分野、医療分野に係わる産業分野の発展に著しく寄与するものである。
 本発明を特定の態様を用いて詳細に説明したが、本発明の意図と範囲を離れることなく様々な変更および変形が可能であることは、当業者にとって明らかである。なお本出願は、2014年6月4日付で出願された日本特許出願(特願2014-116036)に基づいており、その全体が引用により援用される。
  1 ・・・ イムノクロマトグラフィー装置(1)
  2 ・・・ 試料添加部(2)(サンプルパッド、SP)
  3 ・・・ 標識物質保持部(3)(コンジュゲートパッド、CP)
  4 ・・・ クロマトグラフ媒体のメンブレン(4)
  5 ・・・ 検出ライン(5)(検出部、判定部)
  6 ・・・ 吸収部(6)(吸収パッド)
  7 ・・・ パッキングシート(7)(図中では省略。)
  8 ・・・ コントロールライン(8)

Claims (12)

  1.  試料添加部、標識物質保持部、検出部を有するクロマトグラフ媒体、および吸収部から構成されるイムノクロマトグラフィー装置であって、前記試料添加部にHLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させ、かつ前記クロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピードの速いものを用いる、検体中の検出対象物を検出するためのイムノクロマトグラフィー装置。
  2.  試料添加部、標識物質保持部、検出部を有するクロマトグラフ媒体、および吸収部から構成されるイムノクロマトキットであって、前記試料添加部にHLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させ、かつクロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピードの速いものを用いる、検体中の検出対象物を検出するためのイムノクロマトキット。
  3.  メンブレンのフロースピードが、ハイフローレイト(sec/40mm)として75以下である、請求項2に記載のイムノクロマトキット。
  4.  試料添加部、及び標識物質保持部の両方に、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させる、請求項2又は3に記載のイムノクロマトキット。
  5.  非イオン性かつ親水性界面活性剤の含有量が、イムノクロマトキットの試料添加部、又は試料添加部及び標識物質保持部の両方の単位面積0.1~5μg/mmである、請求項2~4のいずれか1項に記載のイムノクロマトキット。
  6.  標識物質保持部に、金ナノ粒子により修飾された標識物質が乾燥保持されている、請求項2~5のいずれか1項に記載のイムノクロマトキット。
  7.  金ナノ粒子の平均粒径が20~60nmである、請求項6に記載のイムノクロマトキット。
  8.  検体を試料添加部に添加する工程、標識物質保持部に保持されている金ナノ粒子により修飾された標識物質により検出対象物を認識させる工程、標識物質と検出対象物の複合体を移動相として展開させる工程、および展開された移動相中の検出対象物を検出部で検出する工程、からなるイムノクロマトグラフィー検出法において、少なくとも試料添加部にHLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させ、かつクロマトグラフ媒体に用いるメンブレンとしてフロースピードの速いものを用いる、イムノクロマトグラフィー検出法。
  9.  金ナノ粒子の平均粒径が20~60nmである、請求項8に記載のイムノクロマトグラフィー検出法。
  10.  検体が、生体試料である、請求項8又は9に記載のイムノクロマトグラフィー検出法。
  11.  検出対象物が、ペプチドホルモンである、請求項8~10のいずれか1項に記載のイムノクロマトグラフィー検出法。
  12.  試料添加部、及び標識物質保持部の両方に、HLB値が13~18の非イオン性かつ親水性界面活性剤を保持させる、請求項8~11のいずれか1項に記載のイムノクロマトグラフィー検出法。
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