WO2015150716A2 - Procede de culture des microalgues du genre aurantiochytrium dans un milieu de culture sans chlorure et sans sodium pour la production de dha - Google Patents

Procede de culture des microalgues du genre aurantiochytrium dans un milieu de culture sans chlorure et sans sodium pour la production de dha Download PDF

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    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/12—Unicellular algae; Culture media therefor

Definitions

  • the invention relates to a method for culturing
  • the method makes it possible to obtain a high yield of biomass and an enrichment of the protists thus cultivated with lipids and more particularly with docosahexaenoic acid (DHA).
  • DHA docosahexaenoic acid
  • the invention relates to the development of a culture method for the high-density production of Thraustochytrides rich in DHA on chemically defined medium reduced sodium (Na + ) and chloride (CI-).
  • the invention relates only to Thraustochytrids belonging to the genus Aurantiochytrium. This genus is delimited by a genetic, metabolic and physiological characterization.
  • the cultivation process by which cells are cultured without significant addition of sodium (Na + ) or chloride (CI-) ions, allows high cell density production - about 125 to 140 g / L of dry matter - Aurantiochytrium mangrovei.
  • This biomass is rich in DHA, with a level of 15 to 20 g / l of culture, preferably 20 to 25 g / l of culture, or even 25 to 30 g / l of culture.
  • Very small amounts of sodium chloride are present in the culture medium required for this process, specifically, very small amounts of chloride (CI-) and sodium (Na + ) ions.
  • CI- chloride
  • Na + sodium ions
  • Protists are currently the subject of many industrial projects because some species are able to accumulate or secrete significant amounts of lipids, including polyunsaturated fatty acids.
  • omega-3 highly unsaturated (omega-3) (omega-3) (omega-3), particularly eicosapentaenoic acid (EPA or C20: 5 ⁇ 3) and docosahexaenoic acid (DHA or C22: 6 ⁇ 3), and of the omega-6 series (PUFA- ⁇ 6), in particular, arachidonic acid (ARA or AA or eicosatetraenoic acid C20: 4 ⁇ 6), have a recognized nutritional importance and have strong potentialities. in terms of therapeutic applications.
  • EPA eicosapentaenoic acid
  • DHA or C22: 6 ⁇ 3 docosahexaenoic acid
  • PUFA- ⁇ 6 arachidonic acid
  • ARA or AA or eicosatetraenoic acid C20: 4 ⁇ 6 arachidonic acid
  • DHA is necessary for the normal and functional development of cells, and plays a crucial role in various biochemical processes and functions. It is essential for the development of the central nervous system and retinal function, by incorporation into cell membranes, and plays a vital role in the satisfactory acquisition and maintenance of the mechanisms of vision and memory.
  • Thraustochytrids in particular Aurantiochytrium, are known to produce DHA when grown in heterotrophy [WK Hong et al. (201 1); Production of lipids containing high levels of docosahexaenoic acid by a newly isolated microalga, Aurantiochytrium sp. KRS101. Appl. Biochem. Biotechnol .: 164 (8): 1468-80].
  • Aurantiochytrium is also known to produce carotenoids, such as astaxanthin, zeaxanthin, canthaxanthin, echinenone, beta-carotene and phoenicoxanthin [Yokoyama, R, Hyundai, D.
  • the technical requirements of the production for example, the number and the technical difficulty of the pre-culture and cultivation stages, the online monitoring of the crops, and the stages of treatment of the biomass resulting from the culture to valorize the product ;
  • Culture media currently used to grow protists of the family Thraustochytrides heterotrophy or mixotrophy contain significant amounts of salt, especially sodium chloride.
  • salt especially sodium chloride.
  • ATCC culture medium No. 790 11 g / L Na + and 19 g / L Cl-.
  • NaCl sodium chloride
  • the chloride ions cause a degradation of the stainless steel, a material used for the manufacture of the fermenters, tools for preparation and sterilization of the culture medium and other equipment for the cultivation of microalgae and the treatment of the resulting biomass.
  • DSP downstream stream processing
  • sodium chloride or other sodium salts, for example sodium sulfate, sodium carbonate
  • sodium chloride or other sodium salts, for example sodium sulfate, sodium carbonate
  • yeast extract represents an additional cost for the medium, and also a disadvantage compared to the quality of the final biomass for its use as a food or pharmaceutical product.
  • the yeast extracts are not standardized products and therefore the lots of yeast extracts are not homogeneous. This has an impact on the homogeneity of the final products from the biomass of a culture medium containing yeast extracts.
  • Thraustochytrids it is desirable to be able to cultivate Thraustochytrids under optimal conditions to increase the yield of the fatty acid (s) to be produced, while avoiding the problems related to the wear of steel equipment, by reducing the costs of production for fermentation, as well as for the treatment of the resulting biomass.
  • Aurantiochytrium culture methods which make it possible to reduce, or even substantially eliminate, the sodium and chloride ions of the culture media, without the addition of other (s) component (s), which can lead to additional costs related to the treatment of effluents, as well as additional costs related to additional stages of PSD and problems of recovery of end products.
  • an organic source such as yeast extract, or osmotic agents such as mannitol, or sucrose, as defined in the articles of Shabala et al. (2013) (or other osmotic agents such as sorbitol, polyethylene glycol PEG).
  • Figure 1 Phylogenetic analysis showing the relationships between DNA sequences encoding the small subunit of ribosomal RNA. The sequences were aligned with ClustalW of Mega 5.1. The analysis was conducted using the Maximum Likelihood method.
  • the strains of Thraustochytrids used in this study belong to the genera: Aurantiochytrium mangrovei, Schizochytrium sp, and Schizochytrium aggregatum, Ulkenia visurgensis, Ulkenia sp, Ulkenia profunda, Botryochytrium sp., Botryochytriumradiatum, Parieticytrium sp., Parieticytrium sarkarianum, Aplanochtytrium kerguelense, Aplanochtytrium stocchinoi, Oblongichytrium multirudimentale, Oblongichytrium sp. and Phytophthora infestans. Bootstrap values are considered significant if they are greater than 7
  • Figure 2 Growth tests in Erlen with FCC-M medium reduced content of Na + and CI-. Comparison of the growth of the strains concerned by the invention (in black) and not concerned by the invention (in gray and streaks) in a culture medium according to one embodiment of the invention. The length of the column for each strain represents the optical density (Example 1).
  • Figure 3 Fatty acid profiles of the different Thrautochytrid strains cultured in Erlen (Example 2).
  • the culture conditions are described in Example 2.
  • Figure 4 Fatty acid profiles of different strains of thrautochytrids grown in a bioreactor (Examples 3 and 4).
  • Crops whose pH has been regulated by KOH or NH 4 OH have been identified by the abbreviation (KOH) or (NH 4 OH) respectively.
  • KOH abbreviation
  • NH 4 OH NH 4 OH
  • strain is meant not only the natural strains of the genus Aurantiochytrium defined according to the invention, but also the mutants of said natural strains.
  • chemically defined is meant any product or mixture of products whose chemical composition is known and the content of each element which constitutes the product or the mixture is also known.
  • culture medium in which the content of each element is known, that is to say in the absence of yeast extracts or other complex sources of proteins or other organic materials such as peptone or other complex growth agent whose composition is variable both in nature and in the absence of fixed concentration of each of these components.
  • osmotic regulating agent an agent present in a culture medium that maintains the osmotic pressure in the medium.
  • genetic identity is meant an identity between two DNA sequences, as performed by BLAST-type software.
  • the subject of the present invention is therefore a process for the cultivation of certain protists of the Aurantiochytrium mangrovei and Aurantiochytrium limacinum type in heterotrophy or in a mixotrophic mixture in a substantially free sodium (Na + ) and chloride (Cl-) organic medium.
  • This culture method makes it possible to obtain high yields of biomass, lipids, and specifically DHA.
  • the strains concerned by the invention have the capacity to grow at high density, in chemically defined culture media, without the addition significant amounts of sodium ions and chloride, and without the addition of osmotic regulatory agents, such as mannitol, sorbitol, or polyethylene glycol. They are, according to recent phylogenetic classifications, strains of Thraustochytrides of the type Aurantiochytrium mangrovei and Aurantiochytrium limacinum, known to be producing DHA [Yokoyama R, et al. (2007).
  • Taxonomic rearrangement of the genus Schizochytrium sensu lato based on morphology, chemotaxonomical characteristics and 18S rRNA gene phylogeny Thraustochytriaceae, Labyrinthulomycetes, stramenopiles: emendation for Schizochytrium and erection of Aurantiochytrium and Oblongichytrium gen. Nov. Mycoscience 48, 199-21; Tsui CK, et al. (2009) Labyrinthulomycetes phylogeny and its implications for the evolutionary loss of chloroplasts and gain of ectoplasmic gliding. Mol Phylogenet Evol.
  • strains are genetically characterized, as well as by their lipid profile.
  • strains concerned by the invention are characterized by the genetic identity of four of their genes, 18s, actin, tubulin and EF1-alpha, with genes of a strain representative of the strains of the invention, strain FCC 1324.
  • strain FCC 1324 is representative of the new Aurantiochytrium strain, isolated and selected, and deposited with CCAP (Culture Collection of Algae and Protozoa, Scottish Association for Marine Science, Dunstaffnage Marine Laboratory, Oban, Argyll PA371 QA, Scotland, United Kingdom) on 21 June 2013, according to the provisions of the Budapest Treaty, accession number CCAP 4062/1.
  • Table 1 (a) is a comparison of the sequences of the four genes between the genus Aurantiochytrium mangrovei and the genetically closest genus Schizochytrium sp., As well as other closely related strains. All strains having sequences having between 91% and 100% identity with the genes of the CCAP 4062-1 strain, according to the genes compared, can be considered to be of the genus Aurantiochytrium. A genetic identity of at least 92% to the 18s gene CCAP 4062-1 considered characterizes the strains according to the invention.
  • Strains having a genetic identity of at least 92% for the 18s genes are concerned by the invention and are therefore likely to grow in a reduced sodium and chloride medium. Applicants have also found that these strains thus defined by their genetic identity for the 18s gene, have a genetic identity of at least 96% for the actin gene (SEQ ID No. 2), of at least 91% for the tubulin gene (SEQ ID NO: 3) and at least 95% for the EF1-alpha gene (SEQ NO.4). These percentages of identity are shown in Table 1 (b).
  • Figure 1 shows the phylogenetic analysis which led to this definition of the strains concerned by the invention.
  • the strains of Thraustochytrids used in this study belong to the genus Aurantiochytrium mangrovei, Schizochytrium sp and Schizochytrium aggregatum.
  • a Bootstrap value of 70% is considered as the limit below which it is not necessary to descend so that the branch between two groups remains significant. According to Hillis DM and Bull JJ in their "(1993) Systematic Biology Vol. 42, pp. 182-192], Bootstrap proportions of more than 70% generally correspond to a probability of at least 95% that the corresponding clade (groups) is real.
  • the strains that are concerned by the invention are those of the first group at the top of the Figure and have the name Aurantiochytrium mangrovei.
  • Examples of the strains that are concerned by the invention are the strains Aurantiochytrium sp. SD1 16 (JX863672), Aurantiochytrium limacinum (AB022107), Aurantiochytrium mangrovei (DQ367049), Aurantiochytrium limacinum SL 101 (JN986842), Aurantiochytrium limacinum (JN986842), Aurantiochytrium sp.
  • LY2012 JX847370
  • Aurantiochytrium limacinum HM042909
  • Aurantiochytrium sp. BL10 FJ821477)
  • the numbers in parentheses are accession numbers. Indeed, each of these strains has a percentage identity with the sequences of the strain CCAP 4062/1 respectively of at least 92%, 96%, 91% and 94% to the sequences SEQ NO. 1, SEQ NO. 2, SEQ NO. 3 and SEQ NO. 4.
  • strains of the genus Aurantiochytrium having a genetic identity of 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% or 100% at sequence SEQ NO. 1 are concerned by the invention. These strains also have a 96%, 97%, 98%, 99% or 100% genetic identity to the sequence SEQ NO. 2, a genetic identity of 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% or 100% to the sequence SEQ NO. 3 and a 95%, 96%, 97%, 98%, 99% or 100% genetic identity to the sequence SEQ NO. 4.
  • Table 1 (a) shows in detail the comparison of the genetic identities of the strains concerned, or not, by the invention with the CCAP 4062/1 strain.
  • This medium is characterized in that it comprises less than 3.5 g / l, preferably less than 1 g / l, more preferably less than 10 mg / l of sodium ions and less than 1 g / l preferably less than 0.5 g / l, more preferably less than 0.2 g / l of chloride ions.
  • Example 1 the applicants carried out Erlen growth tests with strains according to the invention, as well as comparison strains not concerned by the invention, in such a medium.
  • culture see Table 2 (a) for the main culture medium.
  • the cultures were carried out in the presence of mineral nitrogen (NH) 2 SO 4 , and of glucose as carbon source, and without addition of organic nitrogen.
  • Figure 2 illustrates results from his experiences. The results show that all strains of Aurantiochytrium mangrovei have the ability to grow on this medium, unlike the other genera of Thraustochytrids tested, Schizochytrium sp. and Schizochytrium aggregatum.
  • strains according to the invention have a genetic identity for the 18s, actin, tubulin and EF1-alpha genes respectively of at least 92%, 96%, 91% and 95% of the FCC 1324 strain.
  • strains concerned by the invention are also characterized by their lipid profile.
  • the strain CCAP 4062/1 is taken as an example and representative of the strains according to the invention.
  • Figures 3 (A) and 3 (B) show a comparison of fatty acid profiles between strains of two different genera.
  • the genus according to the invention illustrated by Aurantiochytrium mangrovei, of which Aurantiochytrium limacinum are part (first three lines of each panel) and the genus Schizochytrium sp., Which groups the ATCC strains 20888, as well as strains Aurantiochytrium sp SEK 217 and SEK 209 (last three lines of each panel).
  • the lipid profile of the genus Aurantiochytrium mangrovei has a majority of DHA (greater than 80% of the total PUFA) under the culture conditions according to one embodiment of the invention, described in Example 2.
  • DPA (n-6) accounts for about 20% of total PUFAs with minor amounts of AA and EPA (see Figure 3 (A)).
  • Other strains that have a genetic similarity to strain CCAP 4062/1 also present this profile.
  • Figure 3 (B) shows that strains ATCC 20888, Aurantiochytrium sp SEK 217 and SEK 209 have a different saturated fatty acid profile, with less palmitic acid and a larger amount of C15: 0 odd fatty acid and C17: 0.
  • Figure 4 (A) shows the polyunsaturated fatty acids (PUFAs) expressed as percentages relative to the total PUFAs.
  • Figure 4 (B) shows saturated fatty acids expressed as percentages of total saturated fatty acids.
  • Cultures whose pH has been regulated by KOH or NH OH have been identified by the initials (KOH) or (NH OH) respectively. The profile remains almost unchanged according to the growing conditions.
  • DHA is the major polyunsaturated fatty acid, at almost 80% of the total unsaturated acids.
  • C16: 0 remains the predominantly saturated fatty acid, more than 90% of the total saturated acids, under the conditions of culture according to one embodiment of the invention, described in Examples 3 and 4.
  • strains concerned by the invention have the ability to grow at a high density in a chemically defined culture medium without the addition of significant amounts of sodium or chloride.
  • the culture of these strains is generally carried out in heterotrophic mode.
  • the chemically defined culture medium according to the invention comprises a carbon source, a nitrogen source and salts necessary for the growth of microorganisms.
  • the carbon source is a chemically defined source selected from glucose, glycerol, preferably glucose.
  • the content of carbon source in the culture medium is advantageously between 10 and 90 g / l, or 10 and 75 g / l.
  • the nitrogen source is advantageously a chemically defined mineral or organic source, excluding any complex organic material comprising nitrogen, such as yeast extracts or protein extract mixtures.
  • the nitrogen source is an ammonium salt, in particular ammonium sulfate, and / or a nitrate, in particular potassium nitrate.
  • the nitrogen source content in the culture medium is advantageously between 1 and 10 g / l.
  • the main culture medium may contain all the other components known to those skilled in the art for cultivating microalgae according to the invention.
  • the medium generally contains chemically defined inorganic salts, for example, alkali and alkaline earth metal salts, as well as salts of the other metals. Examples of such salts are Ca, Mg, K, Fe, Ni, Co, Cu, Mn, Mo or Zn.
  • sulfates such as potassium sulfate, magnesium sulfate, iron sulfate, ammonium sulfate, magnesium sulfate, or copper sulfate, nickel sulfate, zinc.
  • Phosphates such as potassium hydrogen phosphate or carbonates such as calcium carbonate may also be mentioned.
  • chlorides such as cobalt chloride, manganese chloride, calcium chloride.
  • alkali metal oxides Mention may also be made of selenites and molybdates such as sodium molybdate and sodium selenite.
  • Other inorganic salts which can be used are, for example, halides, such as potassium bromide or potassium iodide.
  • the contents of the various salts in the culture medium depend on the needs of the microorganisms for their growth. Some salts are only used in small amounts as micronutrients, such as salts of zinc, cobalt, manganese, molybdenum, selenium, nickel, or copper.
  • a particularly preferred culture medium for the method of the invention comprises, where appropriate, apart from other elements such as, for example, nutritive components, at least one of the salts selected from the group comprising magnesium sulphate, calcium chloride, borate and potassium phosphate.
  • the salt (s) is / are added without the total salt content according to the invention being exceeded. It is particularly preferred when magnesium sulfate, calcium chloride and potassium phosphate are added to the medium.
  • the ion content is included in the ranges detailed in Table 2 (a) (see following table).
  • the nature and proportions of these salts in the culture medium are chosen so that the sodium ion content is less than 3.5 g / l, preferably less than 1 g / l, more preferably less than 10 mg / L and that the chloride ion content is less than 1 g / l, preferably less than 500 mg / l, more preferably about 200 mg / l.
  • the culture medium also comprises additional macro- or micronutrients, such as amino acids, purine, pyrimidine, vitamins which are chemically defined, that is to say excluding macro- or micronutrients brought into the culture medium by complex sources, such as yeast.
  • additional macro- or micronutrients such as amino acids, purine, pyrimidine, vitamins which are chemically defined, that is to say excluding macro- or micronutrients brought into the culture medium by complex sources, such as yeast.
  • the medium comprises and other media components known to those skilled in the art. Anti-foaming agents may be added, if necessary.
  • the medium does not contain complex components that can not be chemically defined.
  • the vitamins are advantageously chosen from thiamine, vitamin B12, panthothenate and their mixtures.
  • the vitamin content in the culture medium is advantageously between the values described in Table 2 (a).
  • the chemically defined culture medium consists of a mixture of a chemically defined carbon source, a chemically defined nitrogen source and chemically defined salts and vitamins. It will be noted that this culture medium is particularly suitable for a fermenter culture, advantageously in fermenters of at least 1000 liters, especially in batch mode called "batch", in semi-continuous mode called “fed batch” or in continuous mode .
  • An example of a culture medium according to one embodiment of the invention is defined as in Table 2 (b) below.
  • Vitamin B12 0.15 mg / L
  • FIG. 2 An example of a culture medium according to one embodiment of the invention is defined as in Table 2 (c) below.
  • This medium named FCC-M comprises 0.00038 g / l of sodium (Na +) and 0.437 g / l of chloride (Cl "). The medium contains no added NaCl.
  • Table 2 (c) An example of a culture medium according to one embodiment of the invention is defined as in Table 2 (c) below.
  • This medium named FCC-M comprises 0.00038 g / l of sodium (Na +) and 0.437 g / l of chloride (Cl "). The medium contains no added NaCl.
  • the basic culture medium is supplemented with an addition solution to maintain the growth of microalgae.
  • the carbon substrate for example glucose, can also be added (addition solution 2).
  • additional solution 2 The person skilled in the art knows how to determine the concentration of each of the elements of the addition solution. For example, the contents of the elements as an example are shown in Table 3 (a) below.
  • Vitamin B12 0, 005-0.02
  • the final concentration of Na + is about 10 mg / L, preferably less than 6 mg / L
  • the final concentration of Cl- is about 250 mg / L, preferably less than 200 mg / L.
  • the concentration of Na + is less than 5 mg / l, preferably less than 2 mg / l and more preferably less than 1 mg / l. and the concentration of CI " is about 1 g / L, preferably less than 0.750 g / L and more preferably less than 0.5 g / L.
  • additions of an organic carbon substrate are made (see, for example, the addition solution 2 Table 3 (a or b)), in order to allow the cells to accumulate a concentration. important lipid.
  • Additional substrate (addition solution 2) is added to the culture medium during the culture process to maintain a sufficient concentration.
  • This organic carbon substrate preferably comprises, in pure form or in a mixture: glucose, cellulose derivatives, sucrose and / or glycerol.
  • the concentration of organic substrate is generally between 200 mM and 500 mM.
  • the organic carbon substrate contained in the culture medium may consist of complex molecules or a mixture of substrates.
  • Products resulting from the biotransformation of starch, for example from corn, wheat or potato, in particular starch hydrolysates, which consist of small molecules, constitute, for example, substrates organic carbon adapted to the heterotrophic or mixotrophic culture of the protists according to the invention.
  • the pH is between 4 and 8
  • the temperature between 20 and 30 ° C
  • the concentration of dissolved oxygen is typically regulated between 5% and 30%.
  • This process has the advantage of increasing the yield of biomass obtained from the culture. It also has the advantage of enriching protists thus cultivated in polyunsaturated fatty acids, more particularly in docosahexaenoic acid (DHA).
  • DHA docosahexaenoic acid
  • a preculture is carried out in a culture medium having a small amount of NaCl, such as FCC-M medium (Table 2 (c)) containing, for example, yeast as a source of nitrogen, and glucose, for example, as a source of carbon.
  • FCC-M medium Table 2 (c)
  • yeast as a source of nitrogen
  • glucose for example, as a source of carbon.
  • FCC-M a culture medium having a small amount of NaCl
  • FCC-M for example, containing no yeast, or any other source of mineral or organic nitrogen.
  • the isolated Aurantiochytrium strains according to the invention make it possible to produce significant amounts of biomass as well as lipids, the lipids being rich in DHA.
  • the method of the invention under heterotrophic or mixotrophic conditions makes it possible to obtain a biomass yield of greater than 100 g / l, preferably greater than 120 g / l, this biomass having 50% to 60% of lipids relative to the weight of the dry matter.
  • DHA may represent more than 15%, or more than 20%, or more than 30% of the total fatty acids contained in the protists.
  • the protists can thus have a productivity (quantity of product of interest produced, per liter of culture, per hour) of DHA of at least 0.1 g / L / h, preferably at least 0.2 g / L / h, and more preferably at least 0.3 g / L / h.
  • the method according to the invention further comprises the following steps:
  • recovery step is meant more particularly the isolation of the strain or strains whose cell number has grown the most during said generations.
  • the method may also comprise the additional steps: d) a lipid recovery step of the strains, and optionally
  • the strains of step (a) may also have a genetic identity of at least 96% to the sequence SEQ NO. 2, and / or a genetic identity of at least 91% to the sequence SEQ NO. 3 and / or a genetic identity of at least 95% to the sequence SEQ NO. 4.
  • the culture method according to the invention makes it possible to carry out the cultures of these strains of Aurantiochytrium in culture media with a reduced sodium and chloride content, without losing the productivity and high yields of biomass, lipids and especially in DHA.
  • the degradation of fermentors and other stainless steel equipment used for culturing cells and the treatment of the resulting biomass, as well as the early degradation by corrosion of biomass production and processing tools ("Down-stream") is avoided. Processing "or" DSP "in English).
  • the invention also relates to the development of a culture medium for the high-density production of strains according to the invention rich in DHA.
  • the medium is chemically defined with reduced sodium (Na + ) and chloride (Cl-) content.
  • the concentration of Na + is generally less than 100 mg / L, preferably less than 50 mg / L and more preferably less than 6 mg / L
  • the concentration of IC- is preferably less than 0.5 g. / L, and more preferably less than 200 mg / L.
  • the culture of the strains concerned by the invention is carried out in a culture medium having less than 0.5 g / L NaCl, less than 6 mg / l of sodium ions and less 200 mg / L of chloride ions.
  • the culture medium is FCC-M
  • the culture media according to the invention contain no growth agents, such as yeast extracts or peptones which also contain amounts of sodium chloride or osmotic regulatory agents, such as mannitol or sorbitol.
  • the biomass and lipids derived from the culture can be used for food products (or pharmaceuticals) without the many steps of DSP necessary to either characterize the content of the final products or eliminate these undesired added agents in end products. This avoids additional costs associated with these additional steps.
  • co-products obtained after extraction of the oil can be used for animal feed in the form of cakes, for example.
  • Another advantage of the process of the invention and the medium of the invention is that the effluents from the cultures do not contain agents requiring additional processing steps which entail additional costs and thus reduce the profitability of the production.
  • the method and the medium of the invention make it possible not only to optimize the production of the biomass obtained from the culture, while avoiding the use of the sodium and chloride ions and the problems of associated additional costs, but also to enrich the organisms thus cultivated in polyunsaturated fatty acids.
  • the strains are cultured according to the methods referred to above, and then recovered to extract the lipid content, in particular lipids including DHA.
  • lipids including DHA are known to those skilled in the art and are, for example, described by [Bligh, EG and Dyer, WJ (1959) [A rapid method of total lipid extraction and purification. , Can. J. Biochem. Physiol., 37:91 1 -917].
  • Strains according to one embodiment of the invention can thus have a DHA productivity of at least 0.1 g / L / h, preferably at least 0.2 g / L / h, and more preferably at least 0.3 g / L / hr.
  • the invention also relates to the use of all or part of the biomass and / or co-products obtained from the process of the invention as a product, an ingredient in a product for human consumption or as a raw material for animal feed. including aquaculture.
  • the invention also relates to the use of the culture medium according to embodiments described herein, in particular the culture medium named FCC-M, for the cultivation of protists for the production of lipids and pigments.
  • FCC-M the culture medium named FCC-M
  • the strains listed in Figure 2 were previously cultured in a medium containing reconstituted sea salt, Instant Océan® at 15 g / l for two days, then centrifuged and washed once with the FCC-M solution (Table 2 (c)). )), before being inoculated (1/1000 v / v) into Erlens containing 50 ml of FCC-M medium, in which the ammonium sulfate was substituted with yeast extract (4 g / L) ).
  • the fatty acid profile (FAMEs) was determined from cell cultures incubated for 3 days at 26 ° C. and with stirring (220 rpm).
  • the cultures of Aurantiochytrium were carried out in fermentors (bioreactors) of 1 to 2 L useful with dedicated automata and supervision by computer station.
  • the system was regulated in pH via addition of base (NaOH, or KOH) and / or acid (sulfuric acid solution).
  • the culture temperature was set at 26 ° C.
  • Stirring was carried out by means of 3 stirring machines placed on the tree according to the Rushton configuration. (three-bladed pumping propellers).
  • the dissolved oxygen pressure was regulated in the medium throughout the culture, the stirring speed (250 - 1200 rpm), the air flow (0.25 - 1 vvm), or even the oxygen flow rate (0.1 - 0.5 vvm).
  • the control parameters, integrated in the supervisory PLC, made it possible to maintain a constant pO 2 between 5% and 30%.
  • the culture time was between 50 and 200 hours, preferably between 65 and 96 hours, for example 72 hours.
  • Preculture was carried out on a stirring table (140 rpm) in a thermostatically controlled enclosure (26 ° C), in FCC-M medium, containing 4 g of yeast extract as a source of nitrogen and 30 g of glucose. as a source of carbon. After 48 hours of incubation, the cells were centrifuged for 5 minutes at 3000 g and the cell pellet was rinsed with FCC-M medium containing no yeast extract or any other mineral or organic nitrogen source. During culture, 3 additions of addition solution 1 were made, as well as additions of solution 2 in order to maintain glucose concentrations of between 200 mM and 500 mM.
  • the total biomass concentration was monitored by measuring the dry mass (filter filtration GF / F, Whatman, then drying in an oven at 105 ° C for 24 hours minimum before weighing).
  • the cultures of Aurantiochytrium were carried out in fermentors, in a manner similar to that described in Example 3.
  • the modification of the procedure was carried out on the regulation mode of the pH by addition of ammonia (NH 4 OH) to avoid the important contribution of Na + or K + , related to the regulation of the pH by NaOH or KOH, which could have been embarrassing for the valorization of co-products for the animal feed. Since part of the nitrogen required for cell culture is provided via pH regulation with ammonia (NH 4 OH), it was no longer necessary to include (NH) 2 SO 4 in the composition of the add-on solution 1.

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Abstract

L'invention se rapporte à un procédé de culture d'un protiste du genre Aurantiochytrium mangrovei. Le genre est caractérisé génétiquement et par son profil lipidique. Le procédé permet d'obtenir un haut rendement en biomasse et un enrichissement des protistes ainsi cultivés en lipides et plus particulièrement en acide docosahexaénoïque (DHA). L'invention concerne la mise au point d'un milieu de culture permettant la production à haute densité cellulaire d'un protiste du genre Aurantiochytrium mangrovei riche en DHA. Le milieu est chimiquement défini à teneur réduite en ions de sodium (Na+) et de chlorure (CI").

Description

PROCEDE DE CULTURE DES MICROALGUES DU GENRE
AURANTIOCHYTRIUM DANS UN MILIEU DE CULTURE SANS CHLORURE ET SANS SODIUM POUR LA PRODUCTION DE DHA
L'invention se rapporte à un procédé de culture de cellules de
Thraustochytrides du genre Aurantiochytrium mangrovei. Le procédé permet d'obtenir un haut rendement en biomasse et un enrichissement des protistes ainsi cultivés en lipides et plus particulièrement en acide docosahexaénoïque (DHA). L'invention concerne la mise au point d'un procédé de culture permettant la production à haute densité cellulaire de Thraustochytrides riches en DHA sur milieu chimiquement défini à teneur réduite en ions de sodium (Na+) et de chlorure (CI-).
L'invention concerne seulement les Thraustochytrides appartenant au genre Aurantiochytrium. Ce genre est délimité par une caractérisation génétique, métabolique et physiologique.
Le procédé de culture, par lequel les cellules sont cultivées sans ajout significatif d'ions de sodium (Na+), ni de chlorure (CI-), permet la production à haute densité cellulaire - environ 125 à 140 g/L de matière sèche - d'Aurantiochytrium mangrovei. Cette biomasse est riche en DHA, avec un taux de 15 à 20 g/L de culture, de préférence 20 à 25 g/L de culture, ou même 25 à 30 g/L de culture.
De très faibles quantités de chlorure de sodium sont présentes dans le milieu de culture nécessaire pour ce procédé, spécifiquement, de très faibles quantités d'ions de chlorure (CI-) et de sodium (Na+). Ainsi, dans le milieu de culture, il y a moins de 1 g/L, de préférence moins de 0,5 g/L, plus préférentiellement moins de 0,2 g/L d'ions de chlorure, et moins de 100 mg/L, de préférence moins de 50 mg/L et plus préférentiellement moins de 6 mg/L d'ions de sodium (Na+). Cela permet de s'affranchir des surcoûts d'investissement nécessaires pour les équipements en contact avec le milieu et de réduire substantiellement les coûts de traitement des effluents, de s'affranchir des inconvénients associés à la présence de sel de sodium ou de chlorure dans la biomasse et de réduire le coût du milieu en diminuant les intrants (des produits ajoutés à la culture pour améliorer le rendement).
Préambule
Les protistes font l'objet actuellement de nombreux projets industriels car certaines espèces sont capables d'accumuler ou de sécréter des quantités importantes de lipides, notamment d'acides gras polyinsaturés.
Parmi les acides gras polyinsaturés, certains hautement insaturés (AGHI) de la série des oméga-3 (PUFA-ω 3), en particulier l'acide éicosapentaénoïque (EPA ou C20:5 ω3) et l'acide docosahexaénoïque (DHA ou C22:6 ω3), et de la série des oméga-6 (PUFA-ω 6), en particulier, l'acide arachidonique (ARA ou AA ou encore acide eicosatétraénoïque C20:4 ω6), ont une importance nutritionnelle reconnue et présentent de fortes potentialités en terme d'applications thérapeutiques.
Considéré comme nutriment essentiel, le DHA est nécessaire au développement normal et fonctionnel des cellules, et joue un rôle crucial dans divers processus et fonctions biochimiques. Il est indispensable au développement du système nerveux central et à la fonction rétinienne, par incorporation dans les membranes cellulaires, et joue un rôle capital dans l'acquisition et le maintien satisfaisant des mécanismes de la vision et de la mémoire.
Les Thraustochytrides, en particulier Aurantiochytrium, sont connus pour produire du DHA lorsqu'ils sont cultivés en hétérotrophie [W.K. Hong et al. (201 1 ); Production of lipids containing high levels of docosahexaenoic acid by a newly isolated microalga, Aurantiochytrium sp. KRS101 . Appl. Biochem. Biotechnol.: 164(8):1468-80]. Aurantiochytrium est aussi connue pour produire des caroténoïdes, tels que l'astaxanthine, la zéaxanthine, la canthaxanthine, l'échinénone, le bêta-carotène et la phoenicoxanthine [Yokoyama, R, Honda, D. (2007) Taxonomic rearrangement of the genus Schizochytrium sensu lato based on morphology, chemotaxonomic characteristics, and 18S rRNA gene phylogeny (Thraustochytriaceae, Labyrinthulomycetes): emendation for Schizochytrium and érection of Aurantiochytrium and Oblongichytrium gen. nov.; Mycoscience, Vol. 48, pp. 199-21 1 ].
Pour mettre en œuvre la production des acides gras par des protistes à l'échelle industrielle, plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour rendre la production rentable. Parmi ces facteurs, on peut citer :
- les coûts des matières premières et des équipements (leur achat ou location ainsi que leur maintenance), ainsi que de la main d'œuvre ;
- les exigences techniques de la production: par exemple, le nombre et la difficulté technique des étapes de pré-culture et de culture, le suivi en ligne des cultures, et les étapes de traitement de la biomasse issue de la culture pour valoriser le produit ;
- le traitement des effluents issus de la culture.
Les milieux de culture utilisés actuellement pour cultiver des protistes de la famille des Thraustochytrides en hétérotrophie ou en mixotrophie, contiennent des quantités significatives de sel, en particulier de chlorure de sodium. A titre d'exemple, on peut citer le milieu de culture ATCC médium N° 790 (1 1 g/L Na+ et 19 g/L Cl-).
L'utilisation de chlorure de sodium (NaCI) pour la culture des protistes marins de la famille des Thraustochytrides dans les procédés de production d'huile et/ou autres molécules d'intérêt entraîne des surcoûts importants en termes d'investissement, de traitement des effluents et limite la valorisation des coproduits.
En effet, les ions chlorure provoquent une dégradation de l'acier inoxydable, une matière utilisée pour la fabrication des fermenteurs, des outils de préparation et de stérilisation du milieu de culture et autres équipements pour la culture des microalgues et le traitement de la biomasse résultante. Une des conséquences de ce phénomène est la dégradation précoce des outils de production et du traitement de la biomasse (« Down- Stream Processing » ou « DSP » en anglais).
Pour éviter ce problème de dégradation des équipements, on peut utiliser des équipements d'alliages particuliers plus résistants aux ions chlorure. Ces matières plus résistantes au sel sont plus coûteuses. Dans ce cas, les coûts d'investissement pour la production sont substantiellement accrus.
Par ailleurs, l'utilisation de chlorure de sodium (ou d'autres sels de sodium, par exemple de type sulfate de sodium, carbonate de sodium) entraîne des surcoûts importants en terme de traitement des effluents, en particulier la désalinisation de l'eau.
Enfin, la présence de sels de sodium dans les coproduits de type tourteaux constitués par la biomasse restante après extraction de l'huile gêne leur valorisation, notamment pour la nutrition animale, pisciculture, ou en tant qu'ingrédient pour la cosmétique ou dans l'industrie pharmaceutique. US 5 518 918 décrit le remplacement du chlorure de sodium par d'autres types de sels de sodium (sulfate de sodium, carbonate de sodium...). Même si cela permet de s'affranchir de l'usure précoce des équipements en acier inoxydable, l'ajout des sels de sodium au milieu ne permet pas de s'affranchir du surcoût lié au traitement des effluents, ni des problèmes de valorisation des coproduits indiqués plus haut.
En outre, le remplacement du NaCI par un autre sel de sodium entraîne un surcoût lié à l'achat du sel de substitution.
Dans l'article intitulé « Optimization of docosahexaenoic acid production by Schizochytrium limacinum SR21 » de Yokochi et al. [(1998) Appl. Microbiol. Vol. 49, pp. 72-76], la tolérance de la souche Schizochytrium limacinum SR21 pour des conditions de sels a été étudiée. La souche avait une tolérance importante pour de fortes concentrations en sel, la concentration étant comprise entre 50% et 200% de celle de l'eau de mer. La croissance de la souche dans la culture sans sel était deux fois moins importante que dans la culture contenant 50% d'eau de mer. Nous notons que le milieu de culture de base utilisé dans cette étude comprenait également 3% de glucose et 1 % d'extrait de levure. Un milieu de culture allégué « sans sel » ou à « faible concentration » en sels est décrit dans le brevet US 8,900,831 . Toutefois, comme pour Yokoshi & al., l'ajout d'extrait de levure est nécessaire à la croissance des microalgues. Or, un tel milieu supplémenté en extrait de levure comprend plus de 30 mg de sels de sodium et de chlore.
Au surplus, l'ajout de l'extrait de levure représente un coût supplémentaire pour le milieu, et également un désavantage par rapport à la qualité de la biomasse finale pour son utilisation en tant que produit alimentaire ou pharmaceutique. Les extraits de levures ne sont pas des produits standardisés et donc les lots d'extraits de levures ne sont pas homogènes. Ceci a ainsi un impact sur l'homogénéité des produits finaux issus de la biomasse d'un milieu de culture contenant des extraits de levures.
Shabala et al. [« Osmotic adjustment and requirement for sodium in marine protist thraustochytrid » (2009) Environmental Microbiology Vol. 1 1 (7), pp. 1835-1843] a démontré que Thraustochytrium peut croître dans le milieu de culture à teneur réduite en sodium (1 mM), à condition que le milieu soit supplémenté avec un composé tel que le mannitol ou le saccharose, qui permet l'ajustement osmotique de ce milieu de culture sans sodium. Cependant, la présence de ces derniers composés entraîne des surcoûts associés au coût de ces matières. D'ailleurs, malgré l'ajout des composés qui ajustent l'osmolarité du milieu de culture, les rendements de biomasse (200 000 cellules par millilitre) obtenus sans sel et avec du mannitol restent insuffisants pour une production industrielle du DHA.
Dans un article récent de Shabala et al. [« Thraustochytrids can be grown in low-salt média without affecting PUFA production », Marine Biotechnology (2013) 15: 437-444], un mutant a été obtenu par mutagénèse aléatoire aux UVs de Schizochytrium limacinum SR21 - nommé OUC88 - et testé pour déterminer les facteurs environnementaux qui induisent un changement dans la composition des acides gras. La figure 2 de l'article montre que, dès que la concentration de sel passe en-dessous de 0,9%, la biomasse et la quantité de lipides diminuent fortement (moins de 20 g/L en biomasse et moins de 10 g/L en lipides).
Il est souhaitable de pouvoir cultiver les Thraustochytrides dans des conditions optimales pour augmenter le rendement de(s) l'acide(s) gras à produire, tout en évitant les problèmes liés à l'usure des équipements en acier, en réduisant les coûts de la production pour la fermentation, ainsi que pour le traitement de la biomasse résultante. En particulier, il est souhaitable de fournir des méthodes de culture d' Aurantiochytrium qui permettent de réduire, voire substantiellement d'éliminer, les ions de sodium et de chlorure des milieux de culture, et ceci sans l'ajout d'autre(s) constituant(s) de culture, qui peuvent entraîner des surcoûts liés au traitement des effluents, ainsi que des surcoûts liés à des étapes supplémentaires de DSP et des problèmes de valorisation des produits finaux.
Dans le contexte de la présente invention il est souhaitable d'obtenir un rendement en biomasse et en lipides suffisant pour une production industrielle du DHA. Il est donc souhaitable d'obtenir des rendements de, par exemple, supérieurs à 100 g/L de matière sèche, de préférence supérieurs à 130 g/L de matière sèche, plus préférentiellement encore supérieurs à 150 g/L de matière sèche. Il est donc souhaitable d'obtenir, par exemple, plus de 40%, voire 50% d'acides gras par rapport au poids total de la matière sèche. Il est aussi souhaitable d'obtenir, par exemple, plus de 30%, voire 40% de DHA dans les acides gras par rapport au poids total de la matière sèche.
Ainsi, c'est au terme de nombreuses expérimentations de criblage de souches que le demandeur est parvenu à identifier des souches de protiste du genre Aurantiochytrium, capables de croître dans un milieu de culture chimiquement défini sans ajout de sodium, ni de chlorure, ni d'une source organique telle que de l'extrait de levure, ni d'agents osmotiques tels que du mannitol, ou du saccharose, comme définis dans les articles de Shabala et al. (2013) (ou d'autres agents osmotiques tels que le sorbitol, le polyéthylène glycol PEG).
Ces souches, cultivées dans les conditions de la présente invention, permettent d'obtenir une production à haut rendement en biomasse (supérieur à 1 10 g/L, de préférence 120 g/L) et en acides gras polyinsaturés (supérieur à 15 g/L, de préférence 20 g/L), notamment en DHA. Une souche (FCC 1324), concernée par l'invention, représentative des souches d' Aurantiochytrium ainsi isolées et sélectionnées, a été déposée auprès de la CCAP (Culture Collection of Algae and Protozoa, Scottish Association for Marine Science, Dunstaffnage Marine Laboratory, Oban, Argyll PA371 QA, Ecosse, Royaume-Uni) le 21 juin 2013, selon les dispositions du Traité de Budapest, sous le numéro d'accession CCAP 4062/1 .
Figure 1 : Analyse phylogénétique montrant les relations entre les séquences d'ADN codant la petite sous-unité de l'ARN ribosomique. Les séquences ont été alignées avec ClustalW de Méga 5.1 . L'analyse a été conduite en utilisant la méthode Maximum Likelihood. Les souches de Thraustochytrides utilisées dans cette étude appartiennent aux genres: Aurantiochytrium mangrovei, Schizochytrium sp, et Schizochytrium aggregatum, Ulkenia visurgensis, Ulkenia sp, Ulkenia profunda, Botryochytrium sp., Botryochytriumradiatum, Parieticytrium sp., Parieticytrium sarkarianum, Aplanochtytrium kerguelense,, Aplanochtytrium stocchinoi, Oblongichytrium multirudimentale, Oblongichytrium sp. et Phytophthora infestans. Les valeurs de bootstrap sont considérées comme significatives si elles sont supérieures à 75%.
Figure 2: Tests de croissance en Erlen avec le milieu FCC-M à teneur réduite en Na+ et CI-. Comparaison de la croissance des souches concernées par l'invention (en noir) et non concernées par l'invention (en gris et traits) dans un milieu de culture selon un mode de réalisation de l'invention. La longueur de la colonne pour chaque souche représente la densité optique (Exemple 1 ).
Figure 3: Profils en acides gras des différentes souches de Thrautochytrides cultivées en Erlen (Exemple 2).
(A) et (B) : Une comparaison des profils d'acides gras entre le genre selon l'invention, exemplifié par Aurantiochytrium mangrovei, dont les Aurantiochytrium limacinum font partie (trois premiers lignes des panneaux), et le genre des Schizochytrium sp., qui regroupe les souches ATCC 20888, ainsi que les souches Aurantiochytrium sp SEK 217 et SEK 209 (trois dernières lignes des panneaux). Les conditions de culture sont décrites dans l'Exemple 2.
Figure 4: Profils en acides gras des différentes souches de Thrautochytrides cultivées en Bioréacteur (Exemples 3 et 4).
(A) et (B) : Profils lipidiques des souches selon l'invention. (A) Acides gras polyinsaturés (PUFAs) exprimés en pourcentages par rapport aux PUFAs totaux. (B) Acides saturés exprimés en pourcentages par rapport aux acides gras saturés totaux. Les cultures dont le pH a été régulé par de la KOH ou de NH4OH ont été identifiées respectivement par le sigle (KOH) ou (NH4OH). Les conditions de culture sont décrites dans les Exemples 3 et 4. Description détaillée
Par « souche », on entend non seulement les souches naturelles du genre Aurantiochytrium défini selon l'invention, mais également les mutants desdites souches naturelles.
Par « chimiquement défini » on entend tout produit ou mélange de produits dont la composition chimique est connue et dont la teneur de chaque élément qui constitue le produit ou le mélange est également connue.
Par « milieu de culture chimiquement défini », on entend milieu de culture dans lequel la teneur de chaque élément est connue, c'est-à-dire en l'absence d'extraits de levures ou d'autres sources complexes de protéines ou autres matières organiques telles que de la peptone ou autre agent de croissance complexe dont la composition est variable tant dans la nature qu'en l'absence de concentration fixe de chacun de ces composants.
Par « agent régulateur osmotique » on entend un agent présent dans un milieu de culture qui permet de maintenir la pression osmotique dans le milieu. Par « identité génétique », on entend une identité entre deux séquences d'ADN, telle qu'effectuée par un logiciel de type BLAST.
La présente invention a donc pour objet un procédé de culture de certains protistes du type Aurantiochytrium mangrovei et Aurantiochytrium limacinum en hétérotrophie ou en mixotrophie dans un milieu organique substantiellement libre de sodium (Na+) et de chlorure (CI-). Ce procédé de culture permet d'obtenir de hauts rendements en biomasse, en lipides, et spécifiquement en DHA.
Les souches concernées par l'invention ont la capacité de croître à haute densité, dans les milieux de culture chimiquement définis, sans l'ajout de quantités significatives d'ions de sodium ni de chlorure, et sans l'ajout d'agents régulateurs osmotiques, tels que le mannitol, le sorbitol, ou le polyéthylène glycol. Elles sont, selon des classements phylogénétiques récents, des souches de Thraustochytrides de type Aurantiochytrium mangrovei et Aurantiochytrium limacinum, connues pour être productrices de DHA [Yokoyama R, et al. (2007). Taxonomic rearrangement of the genus Ulkenia sensu lato based on morphology, chemotaxonomical characteristics, and 18S rRNA gene phylogeny (Thraustochytriaceae, Labyrinthulomycetes): emendation for Ulkenia and érection of Botryochytrium, Parietichytrium. Mycoscience. 48(6) p. 329-341 ; Yokoyama, R., Honda, D. (2007) Taxonomic rearrangement of the genus Schizochytrium sensu lato based on morphology, chemotaxonomical characteristics and 18S rRNA gene phylogeny (Thraustochytriaceae, Labyrinthulomycetes, stramenopiles): emendation for Schizochytrium and érection of Aurantiochytrium and Oblongichytrium gen. Nov. Mycoscience 48, 199-21 1 ; Tsui CK, et al. (2009) Labyrinthulomycetes phylogeny and its implications for the evolutionary loss of chloroplasts and gain of ectoplasmic gliding. Mol Phylogenet Evol. 50(1 ):p. 129-40]. On rappelle que de façon classique, des cultures en mode hétérotrophe de ces genres de microalgues s'effectuaient avec un milieu de culture à base d'eau de mer, comme celui utilisé par l'American Type Culture Collection, le milieu ATCC 790 By+ (extrait de levure 1 ,0 g, peptone 1 ,0 g D(+), glucose 5,0 g et eau de mer 1 litre).
Les souches sont caractérisées génétiquement, ainsi que par leur profil lipidique.
Les souches concernées par l'invention sont caractérisées par l'identité génétique de quatre de leurs gènes, 18s, actine, tubuline et EF1 - alpha, à des gènes d'une souche représentative des souches d'invention, la souche FCC 1324. La souche FCC 1324 est représentative des nouvelles souche d' Aurantiochytrium ainsi isolées et sélectionnées, et a été déposée auprès de la CCAP (Culture Collection of Algae and Protozoa, Scottish Association for Marine Science, Dunstaffnage Marine Laboratory, Oban, Argyll PA371 QA, Ecosse, Royaume-Uni) le 21 juin 2013, selon les dispositions du Traité de Budapest, sous le numéro d'accession CCAP 4062/1 .
Le Tableau 1(a) est un comparatif des séquences des quatre gènes entre le genre Aurantiochytrium mangrovei et le genre le plus proche génétiquement Schizochytrium sp., ainsi que d'autres souches proches génétiquement. Toutes les souches présentant des séquences ayant entre 91 % et 100% d'identité avec les gènes de la souche CCAP 4062-1 , selon les gènes comparés, peuvent être considérées comme étant du genre Aurantiochytrium. Une identité génétique d'au moins 92% au gène 18s CCAP 4062-1 considéré caractérise les souches selon l'invention.
18s
Figure imgf000013_0001
Actine
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Tubuline
Figure imgf000015_0001
*Schizochytrium sp. ATCC 20111 DQ323158 = ATCC 20888
Tableau 1 (a)
Les souches ayant une identité génétique d'au moins 92% pour les gènes 18s (SEQ NO. 1 ) sont concernées par l'invention et sont donc susceptibles de croître dans un milieu réduit en sodium et en chlorure. Les demandeurs ont également constaté que ces souches ainsi définies par leur identité génétique pour le gène 18s, ont une identité génétique d'au moins 96% pour le gène d'actine (SEQ NO. 2), d'au moins 91 % pour le gène de tubuline (SEQ NO. 3) et d'au moins 95% pour le gène EF1 -alpha (SEQ NO. 4). Ces pourcentages d'identité sont repris dans le Tableau 1 (b).
Figure imgf000016_0001
Tableau 1 (b)
La Figure 1 montre l'analyse phylogénétique qui a conduit à cette définition des souches concernées par l'invention. Les souches de Thraustochytrides utilisées dans cette étude appartiennent au genre Aurantiochytrium mangrovei, Schizochytrium sp et Schizochytrium aggregatum.
Les séquences ont été alignées avec CLUSTAL W de Méga 5.1 . Dans la Figure, les chiffres situés aux embranchements sont des valeurs de Bootstrap.
Une valeur de Bootstrap de 70% est considérée comme la limite en dessous de laquelle il ne faut pas descendre pour que l'embranchement entre deux groupes reste significatif. Selon Hillis D.M. et Bull J.J. dans leur article "An empirical test of bootstrapping as a method for assessing confidence in phylogenetic analysis" [(1993) Systematic Biology Vol. 42, pp. 182-192], des proportions Bootstrap de plus de 70% correspondent généralement à une probabilité d'au moins 95% que le clade (groupes) correspondant soit réel.
Dans la Figure 1 , cela signifie que la différence entre les groupes A.mangrovei et Schizochytrium sp. est significative car le nœud séparant les deux groupes a une valeur de 100%, et que nous sommes donc en présence de deux genres différents. Ces deux groupes sont eux-mêmes très éloignés du groupe des Schizochytrium aggregatum, comme cela avait déjà été démontré par Yokoyama et Honda [(2007), Taxonomic rearrangement of the genus Schizochytrium sensu lato based on morphology, chemotaxonomic characteristics, and 18S rRNA gene phylogeny (Thraustochytriaceae, Labyrinthulomycetes) : emendation for Schizochytrium and érection of Aurantiochytrium and Oblongichytrium gen. Nov.; Mycoscience Vol. 48, pp. 99-21 1 ].
Dans la Figure 1 , les souches qui sont concernées par l'invention sont celles du premier groupe en haut de la Figure et ont le nom Aurantiochytrium mangrovei. On peut ainsi citer comme exemples des souches qui sont concernées par l'invention, les souches Aurantiochytrium sp. SD1 16 (JX863672), Aurantiochytrium limacinum (AB022107), Aurantiochytrium mangrovei (DQ367049), Aurantiochytrium limacinum SL1 101 (JN986842), Aurantiochytrium limacinum (JN986842), Aurantiochytrium sp. LY2012 (JX847370), Aurantiochytrium limacinum (HM042909) et Aurantiochytrium sp. BL10 (FJ821477), dans la classe phylogénétique classée comme identifiée par les inventeurs. Les numéros entre parenthèses sont des numéros d'accession. En effet, chacune de ces souches présente un pourcentage d'identité aux séquences de la souche CCAP 4062/1 respectivement d'au moins 92%, 96%, 91 % et 94% aux séquences SEQ NO. 1 , SEQ NO. 2, SEQ NO. 3 et SEQ NO. 4. Par exemple, des souches du genre Aurantiochytrium ayant une identité génétique de 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% ou 100% à la séquence SEQ NO. 1 sont concernées par l'invention. Ces souches ont également une identité génétique de 96%, 97%, 98%, 99% ou 100% à la séquence SEQ NO. 2, une identité génétique de 91 %, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% ou 100% à la séquence SEQ NO. 3 et une identité génétique de 95%, 96%, 97%, 98%, 99% ou 100% à la séquence SEQ NO. 4.
Le Tableau 1 (a) montre en détail la comparaison des identités génétiques des souches concernées, ou non, par l'invention, avec la souche CCAP 4062/1 .
On note que ni la souche Schizochytrium sp ATCC 20888 (DQ367050), ni la souche FCC1412 Schizochytrium sp. SEK 209 (AB290574) n'appartiennent aux souches concernées par l'invention. Les valeurs d'identité à la SEQ NO. 1 pour ces souches sont de 91 %. Ces souches ont la capacité de croître à haute densité dans un milieu de culture chimiquement défini (c'est à dire en absence d'extrait de levure ou des autres extraits de protéines) ayant de très faibles quantités de chlorure de sodium. Ce milieu est caractérisé par le fait qu'il comporte moins de 3,5 g/L, de préférence moins de 1 g/L, plus préférentiellement, moins de 10 mg/L d'ions de sodium et moins de 1 g/L, de préférence moins de 0,5 g/L, plus préférentiellement, moins de 0,2 g/L d'ions de chlorure.
Dans l'Exemple 1 , les demandeurs ont effectué des tests de croissance en Erlen avec des souches selon l'invention, ainsi que des souches de comparaison non concernées par l'invention, dans un tel milieu de culture (voir le Tableau 2(a) pour le milieu de culture principal). Les cultures ont été effectuées en présence d'azote minéral (NH )2SO4, et de glucose comme source de carbone, et sans apport d'azote organique. Ainsi, la Figure 2 illustre des résultats issus de ses expériences. Les résultats montrent que toutes les souches d' Aurantiochytrium mangrovei ont la capacité de pousser sur ce milieu, contrairement aux autres genres de Thraustochytrides testés, Schizochytrium sp. et Schizochytrium aggregatum.
On constate que les souches selon l'invention ont une identité génétique pour les gènes 18s, actine, tubuline et EF1 -alpha respectivement d'au moins 92%, 96%, 91 % et 95% de la souche FCC 1324.
Les souches concernées par l'invention sont également caractérisées par leur profil lipidique. La souche CCAP 4062/1 est prise comme exemple et représentative des souches selon l'invention.
Les Figures 3 (A) et 3 (B) montrent une comparaison des profils d'acides gras entre les souches de deux genres différents. Le genre selon l'invention, illustré par Aurantiochytrium mangrovei, dont les Aurantiochytrium limacinum font partie (trois premières lignes de chaque panneau) et le genre des Schizochytrium sp., qui regroupe les souches ATCC 20888, ainsi que les souches Aurantiochytrium sp SEK 217 et SEK 209 (trois dernières lignes de chaque panneau). Le profil lipidique du genre Aurantiochytrium mangrovei présente une majorité de DHA (supérieur à 80% des PUFA totaux) dans les conditions de culture selon un mode de réalisation de l'invention, décrit dans l'Exemple 2.
Dans la Figure 3(A), on voit que les souches ATCC 20888, Aurantiochytrium sp SEK 217 et SEK 209 ont un profil différent avec plus d'EPA par rapport aux souches selon l'invention.
Le DPA (n-6) représente à peu près 20% des PUFAs totaux avec des quantités mineures d'AA et d'EPA (voir Figure 3(A)). D'autres souches qui ont une similarité génétique à la souche CCAP 4062/1 présentent également ce profil.
La Figure 3(B) montre que les souches ATCC 20888, Aurantiochytrium sp SEK 217 et SEK 209 ont un profil d'acides gras saturés différent, avec moins d'acide palmitique et une quantité plus importante d'acide gras impair C15:0 et C17:0.
La Figure 4(A) montre les acides gras polyinsaturés (PUFAs) exprimés en pourcentages par rapport aux PUFAs totaux. La Figure 4(B) montre les acides gras saturés exprimés en pourcentages par rapport aux acides gras saturés totaux. Les cultures dont le pH a été régulé par le KOH ou le NH OH ont été identifiées respectivement par le sigle (KOH) ou (NH OH). Le profil reste quasiment inchangé selon les conditions de culture. Le DHA est l'acide gras polyinsaturé majoritaire, à presque 80% des acides insaturés totaux. C16:0 reste l'acide gras saturé majoritaire, à plus de 90% des acides saturés totaux, dans les conditions de culture selon un mode de réalisation de l'invention, décrit dans les Exemples 3 et 4.
Ainsi, les inventeurs ont défini les souches concernées par l'invention. Ces souches ont une capacité à croître à forte densité en milieu de culture chimiquement défini, sans ajout de quantités significatives de sodium ni de chlorure.
La culture de ces souches s'effectue en général en mode hétérotrophe.
Le milieu de culture chimiquement défini selon l'invention comprend une source de carbone, une source d'azote et des sels nécessaires à la croissance des microorganismes. L'homme du métier connaît bien les éléments nécessaires à la croissance de microorganismes dans un procédé de fermentation. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, la source de carbone est une source chimiquement définie choisie parmi le glucose, le glycérol, de préférence le glucose.
La teneur en source de carbone dans le milieu de culture est avantageusement comprise entre 10 et 90 g/L, ou 10 et 75 g/L.
La source d'azote est avantageusement une source minérale ou organique chimiquement définie, à l'exclusion de toute matière organique complexe comprenant de l'azote, tel que les extraits de levure ou des mélanges d'extrait protéiques. Préférentiellement, la source d'azote est un sel d'ammonium, en particulier le sulfate d'ammonium, et/ou un nitrate, en particulier le nitrate de potassium.
La teneur en source d'azote dans le milieu de culture est avantageusement comprise entre 1 et 10 g/L. Le milieu de culture principal peut contenir tous les autres composants connus de l'homme de l'art pour cultiver des microalgues selon l'invention. Le milieu contient en général des sels inorganiques chimiquement définis, par exemple, des sels de métaux alcalins et alcalinoterreux, ainsi que des sels des autres métaux. On peut citer comme exemple des sels de Ca, Mg, K, Fe, Ni, Co, Cu, Mn, Mo ou Zn. Par exemple, on peut citer des sulfates tels que le sulfate de potassium, le sulfate de magnésium, le sulfate de fer, le sulfate d'ammonium, le sulfate de magnésium, ou le sulfate de cuivre, le sulfate de nickel, le sulfate de zinc. On peut également citer des phosphates tels que le phosphate acide de potassium, ou les carbonates tels que le carbonate de calcium. On peut également citer de chlorures tels que le chlorure de cobalt, le chlorure de manganèse, le chlorure de calcium. On peut également citer des d'oxydes de métaux alcalins. On peut également citer des sélénites et des molybdates tel que le molybdate de sodium et le sélénite de sodium. D'autres sels inorganiques utilisables sont, par exemple, les halogénures, tels que le bromure de potassium ou l'iodure de potassium.
Les teneurs des différents sels dans le milieu de culture dépendent des besoins des microorganismes pour leur croissance. Certains sels ne sont employés qu'en faibles quantités comme apport d'oligoéléments, comme les sels de zinc, de cobalt, de manganèse, de molybdène, de sélénium, de nickel, ou de cuivre.
Un milieu de culture particulièrement préféré pour la méthode de l'invention comprend, le cas échéant, à part d'autres éléments tels que, par exemple, des composants nutritifs, au moins un des sels choisi dans le groupe comprenant le sulfate de magnésium, le chlorure de calcium, le borate et le phosphate de potassium. Le(s) sel (s) est / sont ajoutés sans que la teneur totale en sel selon l'invention soit dépassée. Il est particulièrement préféré lorsque le sulfate de magnésium, le chlorure de calcium et le phosphate de potassium sont ajoutés au milieu.
Avantageusement, la teneur en ions est comprise dans les gammes détaillées dans le Tableau 2(a) (cf. tableau suivant).
22
Figure imgf000023_0001
Tableau 2(a) : Composition générale du milieu. Dans tous les cas, la nature et les proportions de ces sels dans le milieu de culture sont choisies de manière que la teneur en ions sodium soit de moins de 3,5 g/L, de préférence moins de 1 g/L, plus préférentiellement moins de 10 mg/L et que la teneur en ions chlorure soit de moins de 1 g/L, de préférence moins de 500 mg/L, plus préférentiellement d'environ 200 mg/L.
Selon un mode préférentiel de réalisation de l'invention, le milieu de culture comprend également des macro- ou micronutriments supplémentaires, tels que des acides aminés, purine, pyrimidine, des vitamines qui sont chimiquement définies, c'est à dire à l'exclusion des macro- ou micronutriments apportés dans le milieu de culture par des sources complexes, comme la levure. De manière générale, le milieu comporte des et d'autres composants médias connus à l'homme du métier. Les agents anti-moussants peuvent être ajoutés, si nécessaire. Toutefois le milieu ne contient pas de composants complexes qui ne peuvent pas être définis chimiquement.
Les vitamines sont avantageusement choisies parmi la thiamine, la vitamine B12, le panthothénate et leurs mélanges.
La teneur en vitamines dans le milieu de culture est avantageusement comprise entre les valeurs décrites dans le Tableau 2(a).
Selon un mode préférentiel de réalisation de l'invention, le milieu de culture chimiquement défini consiste en un mélange d'une source de carbone chimiquement définie, d'une source d'azote chimiquement définie, de sels et de vitamines chimiquement définis. On notera que ce milieu de culture est particulièrement approprié pour une culture en fermenteur, avantageusement dans des fermenteurs d'au moins 1000 litres, notamment en mode discontinu dit "batch", en mode semi- continu dit "fed batch" ou en mode continu. Un exemple d'un milieu de culture selon un mode de réalisation de l'invention est défini tel que dans le Tableau 2(b) ci-dessous.
Solution Principale
KCI 0,30 g/L
H3BO3 0,0175 g/L
MgSO4 7H20 5,25 g/L
CaCI2, 2H20 0,45 g/L
KNO3 0,04 g/L
KH2PO4, 7H2O 0,309 g/L
Na2EDTA, 2H2O 0,0020 g/L
ZnSO4.7H2O 0,08 mg/L
CoCI2.6H2O 0,08 mg/L
MnCI2.4H2O 0,40 mg/L
Na2MoO4, 2H2O 0,00100 mg/L
Na2SeO3 0,00173 mg/L
NiSO4.6H2O 0,00500 mg/L
CuSO4.5H20 0,015 mg/L
EDTA-Fe 20 mg/L
Carbone
Glucose 50 g/L
Azote
(NH4)2SO4 8 g/L
Post Autoclave
Vitamines Thiamine 6 mg/L
Vitamine B12 0,15 mg/L
Panthothénate 4,0 mg/L
Tableau 2(b) : Exemple de Milieu de culture.
Un exemple d'un milieu de culture selon un mode de réalisation de l'invention est défini tel que dans le Tableau 2(c) ci-dessous. Ce milieu nommé FCC-M comporte 0,00038 g/l de sodium (Na+) et 0,437 g/l de chlorure (CI"). Le milieu ne contient pas de NaCI ajouté. Solution Principale
Ingrédients Concentration g/L
KCI 0,36
H3BO3 0,175
MgSO4, 7H20 8,750 CaCI2, 2H20 0,55
KNO3 0,04667 KH2PO4,7H2O 0,30940 Na2EDTA, 2H2O 0,003094 ZnSO4.7H2O 0,000073 CoCI2.6H2O 0,000016 MnCI2.4H2O 0,00054 Na2MoO4, 2H2O 0,00000148 Na2SeO3 0,00000173 NiSO4.6H2O 0,00000298 CuSO4.5H20 0,0000098 EDTA-Fe 0,03
Carbone g/L
Glucose 55
Azote g/L
(NH4)2SO4 7
Post Autoclave
Vitamines g/L
Thiamine 0,008 Vitamine B12 0,00013 Panthothénate 0,0027
Tableau 2(c): Milieu de culture FCC-M. De manière classique, lors de la culture des souches selon l'invention en bioréacteur ou en fermenteur, en conditions hétérotrophes ou mixotrophes, le milieu de culture de base est supplémenté par une solution d'ajout pour maintenir la croissance des microalgues. Le substrat carboné, par exemple du glucose, peut être également ajouté (solution d'ajout 2). L'homme du métier sait déterminer la concentration de chacun des éléments de la solution d'ajout. Par exemple, les teneurs des éléments à titre d'exemple sont indiquées dans le Tableau 3 (a) ci-dessous.
Solution d'ajout 1 g/L
0 - 35
K2SO4
MgSO4, 7H20 0 - 30
KH2PO4,7H2O 50-70
FeSO4, 7H20 0-1
(NH4)2SO4 * 120-150
MnCI2 4H2O 0,10-0,2
ZnSO4.7H2O 0,1 -0,2
CoCI2.6H2O 0,001 -0,002
Na2MoO4, 2H2O 0,001 -0,002
CuSO4, 5H2O 0,05-0,2
NiSO4, 6H2O 0,05-0,2
Na2EDTA, 2H2O 1 -3
Thiamine 1 -2
Vitamine B12 0, 005-0,02
Panthothénate 0,05-0,3
Solution d'ajout 2 g/L
Glucose 150- 850
KH2PO4 4 - 7
(NH4)2SO4 * 20-40
Tableau 3 (a) : Exemple des solutions d'ajout 1 et 2 pour une culture en fermenteur ou en bioréacteur. Un exemple de telles solutions d'ajout est donné dans le Tableau 3(b).
Concentration
Solution d'ajout 1
31 ,9
K2SO4
MgSO4, 7H20 25,8
KH2PO4,7H2O 61 ,38
FeSO4, 7H20 0,61
(NH4)2SO4 * 138,24
MnCI2 4H2O 0,165
ZnSO4.7H2O 0,165
CoCI2.6H2O 0,0016
Na2MoO4, 2H2O 0,0016
CuSO4, 5H2O 0,1 1
NiSO4, 6H2O 0,086
Na2EDTA, 2H2O 1 ,81
Thiamine 0,49
Vitamine B12 0,008
Panthothénate 0,1656
Solution d'ajout 2 g/L
Glucose 750
KH2PO4 6,4
(NH4)2SO4 * 34
Tableau 3(b): Exemple des solutions d'ajout 1 et 2 pour une culture
en fermenteur ou en bioréacteur.
Selon un mode de réalisation de l'invention, quand la culture est effectuée en fermenteur ou en bioréacteur, typiquement, après l'ajout des solutions d'ajout pour maintenir la croissance des cellules, la concentration finale de Na+ est à environ 10 mg/L, de préférence moins de 6 mg/L, et la concentration finale de CI- est à environ 250 mg/L, de préférence moins de 200 mg/L.
Selon un autre mode de réalisation de l'invention, quand la culture est effectuée en Erlen, la concentration de Na+ est à moins de 5 mg/L, de préférence moins de 2 mg/L et plus préférentiellement moins de 1 mg/L et la concentration de CI" est à environ 1 g/L, de préférence moins de 0,750 g/L et plus préférentiellement moins de 0,5 g/L.
De manière générale, en cours de culture, des ajouts d'un substrat carboné organique sont effectués (voir, par exemple, la solution d'ajout 2 Tableau 3(a ou b)), afin de permettre aux cellules d'accumuler une concentration importante de lipides. Du substrat additionnel (solution d'ajout 2) est ajouté au milieu de culture pendant le procédé de culture pour maintenir une concentration suffisante. Ce substrat carboné organique comprend préférentiellement, sous forme pure ou en mélange : du glucose, des dérivés de cellulose, du saccharose et/ou du glycérol. La concentration en substrat organique est généralement entre 200 mM et 500 mM.
Le substrat carboné organique contenu dans le milieu de culture peut consister en des molécules complexes ou en un mélange de substrats. Les produits issus de la biotransformation de l'amidon, par exemple à partir de maïs, de blé ou de pomme de terre, notamment les hydrolysats de l'amidon, qui sont constitués de molécules de petite taille, constituent, par exemple, des substrats carbonés organiques adaptés à la culture en hétérotrophie ou en mixotrophie des protistes selon l'invention.
Lors de la culture, le pH se situe entre 4 et 8, la température entre 20 et 30°C et la concentration d'oxygène dissous est typiquement régulée entre 5% et 30%.
Ce procédé a pour avantage d'augmenter le rendement en biomasse obtenu de la culture. Il a aussi pour avantage d'enrichir les protistes ainsi cultivés en acides gras polyinsaturés, plus particulièrement en acide docosahexaénoïque (DHA).
Selon un mode de réalisation de l'invention, une préculture est réalisée dans un milieu de culture ayant une faible quantité de NaCI, tel que le milieu FCC-M (Tableau 2(c)) contenant, par exemple, de l'extrait de levure comme source d'azote, et du glucose, par exemple, comme source de carbone. Après un temps de d'incubation, par exemple 48 heures, les cellules sont centrifugées et le culot de cellules rincé dans un milieu de culture ayant une faible quantité de NaCI, tel que le FCC-M, par exemple, ne contenant ni extrait de levure, ni aucune autre source d'azote minérale ou organique. Cette opération a pour but d'éviter tout apport de Na+ dans la culture principale via la présence d'extrait de levure dans la préculture, correspondant généralement à 1/100 (v/v) du volume de culture de la solution principale. Les souches Aurantiochytrium isolées selon l'invention permettent de produire des quantités significatives de biomasse ainsi que de lipides, les lipides étant riches en DHA. En effet, le procédé de l'invention en conditions hétérotrophe ou mixotrophe permet d'obtenir un rendement en biomasse supérieur à 100 g/L, de préférence supérieur à 120 g/L, cette biomasse ayant 50% à 60% de lipides par rapport au poids de la matière sèche. Le DHA peut représenter plus de 15%, ou plus de 20%, ou plus de 30% des acides gras totaux contenus dans les protistes. Les protistes, selon un mode de réalisation de l'invention, peuvent avoir ainsi une productivité (quantité de produit d'intérêt produit, par litre de culture, par heure) de DHA d'au moins 0,1 g/L/h, de préférence d'au moins 0,2 g/L/h, et plus préférentiel lement d'au moins 0,3 g/L/h.
Le procédé selon l'invention comporte en outre les étapes suivantes :
a) la culture, en conditions hétérotrophes, d'une ou plusieurs souches de Labyrinthulomycete, en particulier du genre Aurantiochytrium ayant une identité génétique d'au moins 92% à la séquence SEQ NO. 1 dans un milieu de culture chimiquement défini ayant moins de 1 g/L, de préférence, moins de 10 mg/L sodium (Na+) et moins de 1 g/L, de préférence, moins de 200 mg/L de chlorure (CI"),
b) une étape de maintien de ladite culture sur plusieurs générations, c) une étape de récupération de la biomasse ainsi cultivée.
Par étape de récupération, on entend plus particulièrement l'isolement de la ou des souches dont le nombre de cellules s'est accru le plus au cours desdites générations. Le procédé peut également comprendre les étapes additionnelles : d) une étape de récupération des lipides des souches, et éventuellement,
e) l'extraction du DHA (acide docosahexaénoïque) des lipides récupérés.
Les souches de l'étape (a) peuvent également avoir une identité génétique d'au moins 96% à la séquence SEQ NO. 2, et/ou une identité génétique d'au moins 91 % à la séquence SEQ NO. 3 et/ou une identité génétique d'au moins 95% à la séquence SEQ NO. 4.
Le procédé de culture selon l'invention permet d'effectuer les cultures de ces souches d'Aurantiochytrium dans des milieux de cultures avec un taux réduit en sodium et en chlorure, sans perdre la productivité et de hauts rendements en biomasse, en lipides et en particulier en DHA. Ainsi, on évite la dégradation des fermenteurs et autres équipements en acier inoxydable, utilisés pour la culture des cellules et le traitement de la biomasse résultante, ainsi que la dégradation précoce par corrosion des outils de production et traitement de la biomasse (« Down-stream Processing » ou « DSP » en anglais).
L'invention concerne également la mise au point d'un milieu de culture permettant la production à haute densité cellulaire de souches selon l'invention riches en DHA. Le milieu est chimiquement défini à teneur réduite en ions de sodium (Na+) et de chlorure (CI-). La concentration de Na+ est généralement à moins de 100 mg/L, de préférence moins de 50 mg/L et plus préférentiel lement moins de 6 mg/L, et la concentration de CI- est de préférence à moins de 0,5 g/L, et plus préférentiellement moins de 200 mg/L. Selon un mode de réalisation de l'invention, la culture des souches concernées par l'invention est réalisée dans un milieu de culture ayant moins de 0,5 g/L NaCI, moins de 6 mg/L d'ions de sodium et moins de 200 mg/L d'ions de chlorure. Selon un mode de réalisation, le milieu de culture est le FCC-M
(Tableau 2(c)). Si la culture est effectuée en fermenteur ou en bioréacteur, des solutions d'ajout seront souhaitables, tel que décrit plus haut (voir par exemple le Tableau 3(a ou b)). Puisque les milieux de culture selon l'invention sont chimiquement définis, ils ne comportent ni agents de croissance, tels que les extraits de levure ou des peptones qui, eux aussi, comportent des quantités de chlorure de sodium, ni agents régulateurs osmotiques, tels que le mannitol ou le sorbitol. Ainsi, en l'absence de ces agents, la biomasse et les lipides issus de la culture peuvent être utilisés pour des produits alimentaires (ou pharmaceutiques) sans les nombreuses étapes de DSP nécessaires pour, soit caractériser le contenu des produits finaux, soit éliminer ces agents ajoutés non souhaités dans les produits finaux. Ainsi on évite des surcoûts associés à ces étapes supplémentaires. De même, les coproduits obtenus après extraction de l'huile peuvent être utilisés pour l'alimentation animale sous forme de tourteaux par exemple.
Un autre avantage du procédé de l'invention et du milieu de l'invention est que les effluents issus des cultures ne contiennent pas d'agents nécessitant des étapes de traitement supplémentaires qui entraînent des coûts supplémentaires et qui réduisent ainsi la rentabilité de la production. La méthode et le milieu de l'invention permettent non seulement d'optimiser la production de la biomasse obtenue de la culture, tout en évitant l'utilisation des ions de sodium et de chlorure et les problèmes de surcoûts associés, mais aussi d'enrichir les organismes ainsi cultivés en acides gras polyinsaturés.
De préférence, les souches sont cultivées selon les procédés visés précédemment, puis récupérées pour en extraire le contenu lipidique, en particulier les lipides dont le DHA. Les méthodes d'extraction sélective des lipides, dont le DHA, sont connues de l'homme du métier et sont, par exemple, décrites par [Bligh, E.G. et Dyer, W.J. (1959) [A rapid method of total lipid extraction and purification, Can. J. Biochem. Physiol., 37:91 1 -917].
Les souches selon un mode de réalisation de l'invention peuvent avoir ainsi une productivité de DHA d'au moins 0,1 g/L/h, de préférence d'au moins 0,2 g/L/h, et plus préférentiellement d'au moins 0,3 g/L/h.
L'invention concerne également la utilisation de tout ou partie de la biomasse et/ou des coproduits obtenus à partir du procédé d'invention en tant que produit, ingrédient dans un produit pour l'alimentation humaine ou comme matière première pour l'alimentation animale notamment l'aquaculture.
L'invention concerne également l'utilisation du milieu de culture selon des modes de réalisation, décrits dans ce texte, en particulier le milieu de culture nommé FCC-M, pour la culture de protistes pour la production de lipides et de pigments. Exemple 1
Tests de croissance en Erlen : Les souches listées dans la Figure 2 ont été préalablement cultivées dans un milieu contenant du sel de mer reconstitué, Instant Océan® à 15 g/l pendant deux jours, puis centrifugées et lavées une fois avec la solution FCC-M (Tableau 2(c)), avant d'être inoculées (1/1000 v/v) dans les Erlens contenant 50 ml de milieu FCC-M. Les densités optiques des cultures cellulaires ont été mesurées après 3 jours d'incubation à 26°C et sous agitation (220 rpm).
Exemple 2
Profils d'acides gras de cellules avant poussé en Erlen :
Les souches listées dans la Figure 2 ont été préalablement cultivées dans un milieu contenant du sel de mer reconstitué, Instant Océan® à 15 g/l pendant deux jours, puis centrifugées et lavées une fois avec la solution FCC-M (Tableau 2(c)), avant d'être inoculées (1/1000 v/v) dans les Erlens contenant 50 ml de milieu FCC-M, dans lequel le sulfate d'ammonium a été substitué par de l'extrait de levure (4 g/L). Le profil d'acides gras (FAMEs) a été déterminé à partir de cultures cellulaires incubées pendant 3 jours à 26°C et sous agitation (220 rpm).
Exemple 3
Tests de croissance et production de DHA en bioréacteur :
Les cultures d'Aurantiochytrium ont été réalisées dans des fermenteurs (bioréacteurs) de 1 à 2 L utiles avec automates dédiés et supervision par station informatique. Le système a été régulé en pH via l'ajout de base (NaOH, ou KOH) et/ou d'acide (solution d'acide sulfurique). La température de culture a été fixée à 26°C. L'agitation a été réalisée grâce à 3 mobiles d'agitation placés sur l'arbre selon la configuration de Rushton (hélices tripales à pompage descendant). La pression d'oxygène dissous a été régulée dans le milieu tout au long de la culture, par la vitesse d'agitation (250 - 1200 t/min), le débit d'air (0,25 - 1 vvm), voire le débit d'oxygène (0,1 - 0,5 vvm). Les paramètres de régulation, intégrés dans l'automate de supervision, ont permis de maintenir une pO2 constante comprise entre 5% et 30%. Le temps de culture a été compris entre 50 et 200 heures, de préférence entre 65 et 96 heures, par exemple 72 heures.
Une préculture a été réalisée sur table d'agitation (140 t/min) en enceinte thermostatée (26°C), en milieu FCC-M, contenant 4 g d'extrait de levure comme source d'azote et de 30 g de glucose comme source de carbone. Après 48 heures d'incubation, les cellules ont été centrifugées pendant 5 minutes à 3000 g et le culot de cellules a été rincé avec du milieu FCC-M ne contenant ni extrait de levure, ni aucune autre source d'azote minérale ou organique. En cours de culture, 3 ajouts de solution d'ajout 1 ont été effectuées, ainsi que des ajouts de la solution 2 afin de maintenir des concentrations en glucose comprises entre 200 mM et 500 mM.
Suivi des cultures :
La concentration en biomasse totale a été suivie par mesure de la masse sèche (filtration sur filtre GF/F, Whatman, puis séchage en étuve, à 105°C, pendant 24 h minimum avant pesée).
Les analyses en contenus lipidiques totaux et des FAMEs ont été réalisées selon les méthodes classiquement décrites dans la littérature [Folch J, et al., A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. J Biol Chem. 1957 May; 226(1 ):497-509].
Exemple 4
Culture en Fermenteur :
Les cultures d'Aurantiochytrium ont été réalisées dans des fermenteurs, de manière similaire à celle décrite dans l'Exemple 3. La modification de la procédure a été réalisée sur le mode de régulation du pH par ajout d'ammoniaque (NH4OH) pour éviter l'apport important de Na+ ou de K+, lié à la régulation du pH par NaOH ou la KOH, qui aurait pu être gênant pour la valorisation des coproduits pour l'alimentation animale. Une partie de l'azote nécessaire à la culture des cellules étant apportée via la régulation du pH par l'ammoniaque (NH4OH), il n'était donc plus nécessaire d'inclure le (NH )2SO4 dans la composition de la solution d'ajout 1 .
Le Tableau 3 indique les résultats de cet exemple :
Figure imgf000036_0001

Claims

REVENDICATIONS
1 . Procédé de production de DHA comprenant l'étape suivante : a) la culture, en conditions hétérotrophes ou mixotrophes, d'une ou plusieurs souches du genre Aurantiochytrium ayant une identité génétique d'au moins 92% à la séquence SEQ NO. 1 , dans un milieu de culture chimiquement défini ayant moins de 3,5 g/L d'ions de sodium et moins de 1 g/L d'ions de chlorure et ayant de 200 mM à 500 mM de substrat carboné organique.
2. Procédé de culture selon la revendication 1 , caractérisé en ce que la ou les souches du genre Aurantiochytrium a ou ont également une identité génétique d'au moins 96 % à la séquence SEQ NO. 2, et/ou d'au moins 91 % à la séquence SEQ NO. 3 et/ou d'au moins 95% à la séquence SEQ NO. 4.
3. Procédé de culture selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que le milieu de culture a moins de 3,5 g/L, de préférence moins de 1 g/L, plus préférentiellement moins de 6 mg/L d'ions de sodium et moins de 200 mg/L d'ions de chlorure.
4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que le milieu ne comporte pas d'agent régulateur de la pression osmotique, tel que le mannitol, le sorbitol, le polyéthylène glycol et le saccharose.
5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 comprenant en outre les étapes : b) de maintien de ladite culture sur plusieurs générations,
c) de récupération de la biomasse ainsi cultivée,
d) de récupération des lipides des souches, et éventuellement,
e) l'extraction du DHA (acide docosahexaénoïque).
6. Procédé selon l'une quelconque des revendications caractérisé en ce que le milieu de culture consiste en :
Ingrédients Concentration
KCI 0,05-5 g/L
H3BO3 0,01-0,3 g/L
MgS04, 7H20 2-10 g/L
CaCI2, 2H20 0,2-0,9 g/L
KNO3 0,01-0,06 g/L
KH2P04,7H20 0,2-1 g/L
Na2EDTA, 2H20 0,001-0,005 g/L
ZnS04.7H20 0,01-0,1 mg/L
CoCI2.6H20 0,01-0,1 mg/L
MnCI2.4H20 0,05-1 mg/L
Na2Mo04, 2H20 0,0005-0,1 mg/L
Na2Se03 0,01-0,5 mg/L
NiS04.6H20 0,5-5 mg/L
CuSO4.5H20 0,0025-1 mg/L
EDTA-Fe 10-50 mg/L
Glucose 20-60 g/L
(NH4)2S04 2-9 g/L
Thiamine 1-50 mg/L
Vitamine B12 0,025-5 mg/L
Panthothénate 0,1-25 mg/L
7. Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que la biomasse issue de l'étape b) représente au moins 100 g/L de matière sèche.
8. Procédé selon la revendication 6 ou 7, caractérisé en ce que la concentration de DHA à la fin de l'étape b) représente au moins 15 g/L.
9. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 8, caractérisé en ce que le DHA contenu dans la biomasse à l'issue de l'étape b) représente plus de 30% des lipides totaux.
10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 6 à 9, caractérisé en ce que le procédé a une productivité de DHA d'au moins 0,1 g/L/h.
1 1 . Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé en ce que ledit organisme du genre Aurantiochytrium correspond à la souche FCC 1324, déposée auprès de la CCAP (Culture Collection of Algae and Protozoa), sous le numéro d'accession CCAP 4062/1 .
12. Utilisation de tout ou partie de la biomasse et/ou des coproduits obtenus à partir du procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 1 1 en tant que produit, ingrédient dans un produit pour l'alimentation humaine ou comme matière première pour l'alimentation animale notamment l'aquaculture.
13. Milieu de culture caractérisé en ce qu'il consiste en
Ingrédients Concentration
KCI 0,05-5 g/L
H3BO3 0,01-0,3 g/L
MgS04, 7H20 2-10 g/L
CaCI2, 2H20 0,2-0,9 g/L
KNO3 0,01-0,06 g/L
KH2P04,7H20 0,2-1 g/L
Na2EDTA, 2H20 0,001-0,005 g/L
ZnS04.7H20 0,01-0,1 mg/L
CoCI2.6H20 0,01-0,1 mg/L
MnCI2.4H20 0,05-1 mg/L
Na2Mo04, 2H20 0,0005-0,1 mg/L
Na2Se03 0,01-0,5 mg/L
NiS04.6H20 0,5-5 mg/L
CuSO4.5H20 0,0025-1 mg/L
EDTA-Fe 10-50 mg/L
Glucose 20-60 g/L
(NH4)2S04 2-9 g/L
Thiamine 1-50 mg/L
Vitamine B12 0,025-5 mg/L
Panthothénate 0,1-25 mg/L
14. Milieu de culture selon la revendication 13, caractérisé en ce qu'il consiste en :
Ingrédients Concentration (g/L)
KCI 0,36
H3BO3 0,175
MgS04, 7H20 8,750
CaCI2, 2H20 0,55
KNO3 0,04667
KH2P04,7H20 0,30940
Na2EDTA, 2H20 0,003094
ZnS04.7H20 0,000073
CoCI2.6H20 0,000016
MnCI2.4H20 0,00054
Na2Mo04, 2H20 0,00000148
Na2Se03 0,00000173
NiS04.6H20 0,00000298
CuSO4.5H20 0,0000098
EDTA-Fe 0,03
Glucose 55
(NH4)2S04 7
Thiamine 0,008
Vitamine B12 0,00013
Panthothénate 0,0027
15. Utilisation du milieu de culture selon la revendication 13 ou 14 pour la culture de protistes pour la production de lipides et de pigments.
16. Utilisation du milieu de culture de la revendication 13 ou 14 pour mettre en œuvre le procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 12.
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