WO2012164933A1 - 改良型ニトリルヒドラターゼ - Google Patents

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WO2012164933A1
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amino acid
acid residue
subunit
nitrile hydratase
acid sequence
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文昭 渡辺
貴永 安保
あい 原
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Mitsubishi Chemical Corp
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Dia Nitrix Co Ltd
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    • C12N9/88—Lyases (4.)
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    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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    • Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/52—Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts

Definitions

  • the present invention relates to an improved (mutant) nitrile hydratase and a method for producing the same. Furthermore, the present invention relates to a gene DNA encoding the enzyme, a recombinant vector containing the gene DNA, a transformant having the recombinant vector, and a method for producing an amide compound.
  • nitrile hydratase an enzyme having nitrile hydration activity that hydrates nitrile groups and converts them into amide groups, was discovered, and corresponding amides from nitrile compounds using the enzyme or microbial cells containing the enzyme.
  • a method for producing the compound is disclosed. This production method is known to have a higher conversion rate and selectivity from a nitrile compound to a corresponding amide compound than conventional chemical synthesis methods.
  • microorganisms that produce nitrile hydratase include, for example, the genus Corynebacterium, the genus Pseudomonas, the genus Rhodococcus, the genus Rhizobium, the genus Klebsiella, Examples include microorganisms belonging to genera and the like. Among them, Rhodococcus rhodochrous J1 strain has been used for industrial production of acrylamide and has proved its usefulness. Moreover, the gene which codes the nitrile hydratase which the strain produces is also clear (refer patent document 1).
  • a nitrile hydratase capable of further improving heat resistance and amide compound resistance, or capable of reacting at high temperatures, and using it for the production of amide compounds from the viewpoint of production costs such as catalyst costs.
  • development is desired from the viewpoint of reducing the amount of enzyme during the reaction and reducing the cost.
  • an object of the present invention is to provide a protein having a nitrile hydratase activity that is further improved in heat resistance, amide compound resistance and high-temperature accumulation by improving nitrile hydratase.
  • an object of the present invention is to provide a gene DNA encoding the protein, a recombinant vector containing the gene DNA, a transformant containing the recombinant vector, a nitrile hydratase collected from a culture of the transformant, and It is in providing the manufacturing method.
  • the objective of this invention is providing the manufacturing method of the amide compound using the said culture or the processed material of the said culture.
  • the present inventor has intensively studied to solve the above problems.
  • a protein in which a specific amino acid residue is substituted with another amino acid residue in the amino acid sequence of wild-type nitrile hydratase has nitrile hydratase activity, heat resistance, amide compound resistance, and high-temperature accumulation ability.
  • the present invention has been completed. That is, the present invention is as follows. (1) The following protein (A) or (B): (A) In the amino acid sequence of wild-type nitrile hydratase, the following amino acid residues (a), (b), (c), (d) and (e) are substituted with other amino acid residues.
  • a protein comprising an amino acid sequence in which at least one amino acid residue selected from the group consisting of (f) to (q) is substituted with another amino acid residue, and having a nitrile hydratase activity; (A) an amino acid residue downstream of 167 residues counted from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit; (B) an amino acid residue downstream of 219 residues from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit; (C) an amino acid residue downstream of 57 residues from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit; (D) an amino acid residue that is 114 residues downstream from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit; (E) an amino acid residue that is 107 residues downstream from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit; (F) an amino acid residue downstream of 218 residues counted from the N-terminal amino acid residue
  • a method for producing nitrile hydratase comprising culturing the transformant according to (4) and collecting nitrile hydratase from the obtained culture.
  • An amide compound characterized by contacting a culture obtained by culturing the protein according to (1) or the transformant according to (4) or a treated product of the culture with a nitrile compound. Production method.
  • the present invention it is possible to provide a novel improved (mutant) nitrile hydratase with improved heat resistance, amide compound resistance and high temperature accumulation.
  • the improved nitrile hydratase having improved heat resistance, amide compound resistance and high-temperature storage properties is very useful because the production efficiency of the amide compound is increased.
  • FIG. 2 shows the amino acid sequence of the ⁇ subunit of wild-type nitrile hydratase derived from various microorganisms (continuation of FIG. 2-1). It is a figure which shows the amino acid sequence of alpha subunit of wild type nitrile hydratase derived from various microorganisms.
  • FIG. 3 shows the amino acid sequence of the ⁇ subunit of wild-type nitrile hydratase derived from various microorganisms (continuation of FIG. 3-1).
  • upstream and downstream mean “N-terminal” with respect to the amino acid sequence and “5′-terminal” with respect to the base sequence.
  • Downstream and downstream mean “C-terminal” with respect to the amino acid sequence and “3” with respect to the base sequence.
  • Improved nitrile hydratase (a) Wild type nitrile hydratase
  • the improved nitrile hydratase of the present invention is an improved version of wild type nitrile hydratase, and its origin is not particularly limited.
  • wild-type nitrile hydratase refers to nitrile hydratase that can be isolated from organisms in the natural world (for example, microorganisms such as soil bacteria), an amino acid sequence constituting the enzyme, and a gene encoding the enzyme Is a nitrile hydratase that has not been artificially deleted or inserted, or has not been substituted with other amino acids or bases, and retains its natural properties.
  • nitrile hydratases derived from microorganisms but also nitrile hydratases identified only from DNA sequences whose origins of organisms are not identified are included in the “wild-type nitrile hydratase”.
  • Wild-type nitrile hydratase has a higher order structure in which domains of ⁇ subunit and ⁇ subunit are assembled, and has a non-heme iron atom or a non-choline nuclear cobalt atom as a prosthetic molecule. These nitrile hydratases are distinguished by the names of iron-type nitrile hydratase and cobalt-type nitrile hydratase, respectively.
  • iron-type nitrile hydratase include those derived from Rhodococcus genus N-771. This iron-type nitrile hydratase has been subjected to X-ray crystal structure analysis, and its three-dimensional structure has been clarified. As a result, the enzyme is bound to non-heme iron via four amino acid residues in the cysteine cluster (: SEQ ID NO: 61) of the ⁇ subunit that forms the active center.
  • cobalt-type nitrile hydratase examples include those derived from Rhodococcus rhodochrous J1 strain (hereinafter sometimes referred to as “J1 bacterium”) or those derived from Pseudocardia thermophila (Pseudocardia thermophila). It can.
  • J1 bacterium Rhodococcus rhodochrous J1 strain
  • Pseudocardia thermophila Pseudocardia thermophila
  • the cobalt-type nitrile hydratase derived from the J1 bacterium is bound to a cobalt atom via a region represented by the cysteine cluster (: SEQ ID NO: 62) of the ⁇ subunit that forms the active center.
  • the cysteine cluster of Pseudonocardia thermophila-derived cobalt-type nitrile hydratase is such that the fourth cysteine (Cys) from the upstream side (N-terminal side) of the cysteine cluster derived from J1 bacterium is cysteine sulfinic acid (Csi).
  • the sixth cysteine (Cys) on the most downstream side (C-terminal side) is cysteine sulfenic acid (Cse).
  • the prosthetic molecule is bound to the region represented by the cysteine cluster “C (S / T) LCSC” (SEQ ID NOs: 61 and 62) in the ⁇ subunit.
  • C (S / T) LCSC cysteine cluster “C (S / T) LCSC” (SEQ ID NOs: 61 and 62) in the ⁇ subunit.
  • the nitrile hydratase containing such a prosthetic molecule binding region include Rhodococcus rhodochrous J1 (FERM BP-1478), Rhodococcus rhodochrous M8 (SU17331814), Rhodococcus rhodochrous M33 (VKM Ac-1515D), Rhodococcus rhodochrous rhodochrous.
  • ATCC 39484 Japanese Patent Laid-Open No.
  • FIGS. 3-1 and 3-2 The alignment of the amino acid (single letter code) sequences of the ⁇ subunit of wild-type nitrile hydratase derived from various microorganisms is shown in FIGS. 3-1 and 3-2.
  • SEQ ID NOs: 4 and 49 to 60 are shown in order from the above amino acid sequence.
  • FIGS. 2-1 and 2-2 The alignment of the amino acid (single letter code) sequences of the ⁇ subunit of wild-type nitrile hydratase derived from various microorganisms is shown in FIGS. 2-1 and 2-2. In each of FIGS. 2-1 and 2-2, SEQ ID NOs: 2 and 35 to 48 are shown in order from the above amino acid sequence.
  • the present invention is an improved (mutant) nitrile hydratase obtained by subjecting a wild type nitrile hydratase to amino acid substitution.
  • the amino acid sequence of wild-type nitrile hydratase to be subjected to substitution is published in NCBI databases such as GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/).
  • the ⁇ subunit derived from Rhodococcus rhodochrous J1 has an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4 and a base sequence represented by SEQ ID NO: 3.
  • the ⁇ subunit has an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, a base sequence represented by SEQ ID NO: 1, and an accession number “P21220”.
  • the accession number of the ⁇ subunit derived from Rhodococcus rhodochrous M8 (SU17331814) is “ATT79340”, and the accession number of the ⁇ subunit is “AAT79339”.
  • the accession number of the ⁇ subunit derived from Pseudocardia thermophila JCM3095 is “1IRE A”
  • the accession number of the ⁇ subunit is “1IRE B”.
  • amino acid sequence in which a specific amino acid residue is substituted one or several (for example, about 1 to 10, preferably about 1 to 5) amino acid residues (however, the amino acid after the above substitution)
  • amino acid residues an improved nitrile hydratase having a nitrile hydratase activity consisting of an amino acid sequence in which (except residues) is deleted, substituted and / or added and having nitrile hydratase activity is also within the scope of the present invention.
  • amino acid residues (a), (b), (c), (d) and (e) in the amino acid sequence of wild-type nitrile hydratase are other amino acids.
  • the following (d), (e), (f), (g), (h), (i), (j), (k), (l), (m), (n), (o) , (P) and (q) are amino acid residues in the amino acid sequence of a wild-type nitrile hydratase derived from a bacterium belonging to the species Rhodococcus rhodochrous among various wild-type nitrile hydratases, respectively. preferable.
  • A An amino acid residue downstream of 167 residues from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit.
  • B An amino acid residue downstream of 219 residues from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit.
  • C An amino acid residue downstream of 57 residues from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit.
  • D An amino acid residue that is 114 residues downstream from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit.
  • E an amino acid residue that is 107 residues downstream from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit.
  • the improved nitrile hydratase of the present invention among the above proteins, those in which the substituted amino acid residues are those listed below are preferably mentioned.
  • the 167th amino acid residue (asparagine) from the N-terminal side in the amino acid sequence of the ⁇ subunit of wild-type nitrile hydratase derived from J1 bacteria the amino acid of the ⁇ subunit
  • An enzyme protein having nitrile hydratase activity is preferred. It is.
  • amino acid substitutions include
  • the alphabetical representation of amino acids can be represented by one ordinary letter, and the alphabet displayed on the left side of the number (for example, “26”) indicating the number of amino acid residues up to the substitution site is the one-letter representation of the amino acid before substitution.
  • the alphabet displayed on the right side indicates the one-letter code of the amino acid after substitution.
  • amino acid sequence of the ⁇ subunit shown in SEQ ID NO: 2 when “N ⁇ 167S” is expressed, it is counted from the N-terminal amino acid residue in the amino acid sequence of the ⁇ subunit (SEQ ID NO: 2) ( This means an aspect of amino acid substitution in the improved nitrile hydratase in which the 167th asparagine (N) is substituted with serine (S) (including the N-terminal amino acid residue).
  • ⁇ ⁇ means that the substitution position is downstream from the C residue on the most downstream side of the CTLCSC region (the C-terminal side is counted without including the C residue).
  • the improved nitrile hydratase in which amino acid substitution is performed in the above-described embodiments of substitution numbers 13 to 29 is more preferable, and the improved nitrile hydratase in which amino acid substitution is performed in the above-described embodiments of substitution numbers 26-29. Is particularly preferred.
  • Preferred examples of the base substitution for causing the amino acid substitution include the embodiments shown in Table 2 below.
  • the amino acid substitution sites of the present invention are aligned with the nitrile hydratase ⁇ subunit derived from the J1 bacterium of SEQ ID NO: 2, and are at positions 167, 219, 57, 114, 107, 218, 190 Locations corresponding to the 168th, 144th, 133th, 112th, 105th, 95th, 17th, and 15th amino acid residues are also included.
  • the amino acid sequences corresponding to Pseudocarda thermophila are 164th, 216th, 57th, 114th, 107th, 215th, 187th, 165th, 141st, 129th, 108, respectively.
  • amino acid substitution sites of the present invention include the locations corresponding to positions 124 and 174 in the alignment with the J1 nitrile hydratase ⁇ subunit of SEQ ID NO: 4, and in Pseudonocardia thermophila , Corresponding to the 130th and 180th, respectively.
  • the means used therefor are not particularly limited, and examples include GENENETXY (Nippon Genetics), DNASIS (Hitachi Soft), and free software CLUSTALW and BLAST.
  • FIGS. 2-1, 2-2, 3-1, and 3-2, which are examples of alignment, are shown in GENETYXY Ver. This is a result of using 7 (Nippon Generalics, default setting).
  • the activity of the improved nitrile hydratase of the present invention is improved in heat resistance, amide compound resistance, and high-temperature accumulation with respect to the activity of wild-type nitrile hydratase while retaining the properties derived from nature.
  • nitrile hydratase activity is an enzyme that catalyzes a hydration reaction (RCN + H 2 O ⁇ RCONH 2 ) that converts a nitrile compound into a corresponding amide compound.
  • the activity measurement can be calculated by bringing a nitrile compound as a substrate into contact with nitrile hydratase and converting it to the corresponding amide compound, and then quantifying the amide compound.
  • any nitrile compound can be used as long as it reacts with nitrile hydratase, but acrylonitrile is preferred.
  • the substrate concentration is 2.5%
  • the reaction temperature is 10 ° C. to 30 ° C.
  • the reaction time is 10 minutes to 30 minutes.
  • the enzymatic reaction is stopped by adding phosphoric acid. Thereafter, the amide compound can be quantified by analyzing the produced acrylamide by HPLC (high performance liquid chromatography).
  • nitrile hydratase activity can be easily examined by an activity staining method.
  • anthranilonitrile is used as a substrate
  • anthranilamide converted by nitrile hydratase has fluorescence and can be easily detected with high sensitivity (Antonie Van Leeuwenhoek 80 (2) : 169-183, 2001).
  • “Improved heat resistance” means that the residual activity of the heat-treated improved strain is 10% or more higher than the residual activity of the comparative example subjected to the same treatment.
  • a method for the heat treatment after the culture solution or the collected and washed cultured microbial cells are placed in a container, the container is placed in a heating device such as a water bath or an incubator and kept warm for a certain period of time. At this time, in order to increase the stability of the enzyme, a heat treatment can be performed by adding a nitrile compound or an amide compound.
  • the conditions for the heat treatment it is preferable to appropriately examine the treatment temperature and the treatment time, and set conditions under which the activity of the comparative strain is reduced to 50% or less as compared with that before the heat treatment.
  • Residual activity refers to the ratio between the amount of amide compound produced by activity measurement using heat-treated cells and the amount of amide compound produced by activity measurement using the same amount of untreated cells.
  • the untreated microbial cells a culture solution or a cultivated microbial cell that has been collected and washed is kept cold at 4 ° C.
  • a comparative example in the present invention it means a transformant introduced with pER855A, and it can be evaluated that the heat resistance of a nitrile hydratase having a residual activity 10% or more higher than that of the comparative strain is improved.
  • Amide compound resistance means that nitrile hydratase activity can be maintained even in the presence of an amide compound.
  • a culture of a transformant having an improved nitrile hydratase or an improved nitrile hydratase isolated from the transformant in the presence of an amide compound such as acrylamide (for example, a high concentration of 30 to 50%) The consumption or consumption rate of a nitrile compound such as acrylonitrile as a substrate is analyzed. Compared to the comparative example, a nitrile hydratase having a consumption or consumption rate exceeding 1.01 times can be evaluated as being amide compound resistant.
  • “High temperature accumulation” means that a high concentration of acrylamide exceeding 35% can be produced at a reaction temperature higher than 20 ° C.
  • the culture of the transformant having the improved nitrile hydratase or the improved nitrile hydratase isolated from the transformant is continuously subjected to an enzymatic reaction while adding acrylonitrile, and the produced acrylamide concentration is analyzed.
  • the acrylonitrile may be added while controlling the acrylonitrile concentration in the reaction solution, or may be reacted while sequentially adding.
  • the high temperature in this invention shows reaction temperature of 20 degreeC or more. It can be evaluated that the nitrile hydratase in which the acrylamide concentration produced exceeds the comparative example has improved high-temperature accumulation.
  • Examples of the amide compound include the following general formula (1): R-CONH 2 (1) (Wherein R is an optionally substituted linear or branched alkyl group or alkenyl group having 1 to 10 carbon atoms, an optionally substituted cycloalkyl group having 3 to 18 carbon atoms, or aryl. Or a saturated or unsaturated heterocyclic group which may be substituted.)
  • R is an optionally substituted linear or branched alkyl group or alkenyl group having 1 to 10 carbon atoms, an optionally substituted cycloalkyl group having 3 to 18 carbon atoms, or aryl. Or a saturated or unsaturated heterocyclic group which may be substituted.
  • R is an optionally substituted linear or branched alkyl group or alkenyl group having 1 to 10 carbon atoms, an optionally substituted cycloalkyl group having 3 to 18 carbon atoms, or aryl. Or a saturated or unsaturated heterocyclic group which may be substituted.
  • the improved nitrile hydratase is obtained by amino acid substitution of wild type nitrile hydratase.
  • amino acid sequence of nitrile hydratase derived from Rhodococcus rhodochrous J1 strain SEQ ID NO: 2 and / or 4
  • nitrile hydratase with improved heat resistance and / or improved amide compound resistance can be obtained.
  • Rhodococcus rhodochrous J1 strain was registered as FERM BP-1478 in the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Depositary Center (1st, 1st East, 1-chome, Tsukuba City, Ibaraki Prefecture), September 18, 1987. Deposited internationally by date.
  • Rhodococcus rhodochrous M8 SU17331814
  • Rhodococcus rhodochrous M33 VKM Ac-1515D
  • Rhodococcus rhodochrous M33 VKM Ac-1515D is a strain selected as a strain that constitutively expresses nitrile hydratase from the M8 strain (SU17331814) by natural mutation. There is no mutation in the amino acid sequence and gene sequence of the nitrile hydratase itself (US Pat. No. 5,827,699).
  • Wild-type nitrile hydratase can be substituted with amino acids by contacting and acting on a microorganism having nitrile hydratase activity with a drug that acts as a mutation source such as hydroxylamine or nitrous acid, by inducing mutation by ultraviolet irradiation, nitrile Methods such as Error prone PCR and Site-directed Mutagenesis that randomly introduce mutations into a gene encoding hydratase using PCR can be employed.
  • Random mutagenesis method is one of the methods for studying the functions and properties of proteins using mutants.
  • the random mutagenesis method is a method for producing a mutant by introducing a random mutation into a gene encoding a specific protein.
  • base mutation can be introduced by setting conditions with low stringency during DNA amplification (Error Prone PCR).
  • mutations are introduced at arbitrary sites with respect to the entire DNA to be amplified. Then, information on amino acids and domains important for protein-specific functions can be obtained by examining the functions of mutants in which mutations have been introduced at arbitrary sites.
  • nitrile hydratase used as a template for the error prone PCR
  • a nitrile hydratase gene derived from a wild strain or DNA that is an amplification product by the error prone PCR can be used.
  • reaction conditions for the error prone PCR for example, a composition in which the mixing ratio of any one, two, or three of dNTPs (dGTP, dCTP, dATP, or dTTP) in the reaction solution is reduced as compared with other dNTPs.
  • dNTPs dGTP, dCTP, dATP, or dTTP
  • the conditions to do are mentioned. This increases the possibility that other dNTPs will be used by mistake at locations where dNTPs with a reduced blending ratio are required during DNA synthesis, and mutations are introduced.
  • reaction conditions may be mentioned preferably a composition with an increased MgCl 2 and / or MnCl 2 content in the reaction solution.
  • (B-2) Improved nitrile hydratase derived from Rhodococcus rhodochrous J1 strain and its gene
  • the improved nitrile hydratase of the present invention includes a gene encoding a protein introduced with the mutation shown in Table 1.
  • DNA encoding such an improved nitrile hydratase is based on the wild-type nitrile hydratase gene, Molecular Cloning, A Laboratory Manual 2nd ed. , Cold Spring Harbor Press (1989), Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997) and the like.
  • a mutation introduction kit using site-directed mutagenesis by a known method such as the Kunkel method or Gapped duplex method, for example, QuickChange TM XL Site-Directed Mutagenesis Kit (Stratagene) GeneTailorite Site-Directed Mutagenesis System (manufactured by Invitrogen), TaKaRa Site-Directed Mutagenesis System (manufactured by Mutan-K, Mutan-Super Express Km, etc .: manufactured by Takara Bio Inc.).
  • QuickChange TM XL Site-Directed Mutagenesis Kit Stratagene
  • GeneTailorite Site-Directed Mutagenesis System manufactured by Invitrogen
  • TaKaRa Site-Directed Mutagenesis System manufactured by Mutan-K, Mutan-Super Express Km, etc .: manufactured by Takara Bio Inc.
  • the gene of the present invention also includes DNA that hybridizes with a DNA comprising a base sequence complementary to the base sequence of the gene under stringent conditions and encodes a protein having nitrile hydratase activity. .
  • Such an improved nitrile hydratase gene can be obtained by introducing a mutation into a wild type gene as described above, and colony hybridization using the gene sequence or a complementary sequence thereof or a fragment thereof as a probe, It can also be obtained from cDNA libraries and genomic libraries by known hybridization methods such as plaque hybridization and Southern blot. A library prepared by a known method can be used, and a commercially available cDNA library and genomic library can also be used.
  • “Stringent conditions” are the conditions at the time of washing after hybridization, wherein the salt concentration is 300 to 2000 mM, the temperature is 40 to 75 ° C., preferably the salt concentration is 600 to 900 mM, and the temperature is 65 ° C. means. For example, conditions such as 50 ° C. can be given for 2 ⁇ SSC. Those skilled in the art can code the nitrile hydratase of the present invention in consideration of other conditions such as the concentration of the probe, the length of the probe, and the reaction time in addition to the conditions such as the salt concentration and temperature of the buffer. Conditions for obtaining the DNA to be obtained can be appropriately set.
  • Examples of the DNA to be hybridized include DNA containing a base sequence having at least 40%, preferably 60%, more preferably 90% or more identity to the gene DNA of the present invention, or a partial fragment thereof.
  • any type of amino acid that replaces a specific amino acid residue is a polypeptide (protein) containing the substituted amino acid that exhibits nitrile hydratase activity. It can select suitably in the range which has, and is not limited.
  • C Recombinant vector, transformant
  • the nitrile hydratase gene must be incorporated into a vector so that it can be expressed in the host organism to be transformed.
  • the vector include plasmid DNA, bacteriophage DNA, retrotransposon DNA, artificial chromosome DNA, and the like.
  • the host that can be used in the present invention is not particularly limited as long as the target nitrile hydratase can be expressed after the introduction of the recombinant vector.
  • bacteria such as Escherichia coli and Bacillus subtilis, yeast, animal cells, insect cells, plant cells and the like can be used.
  • Escherichia coli is used as a host, it is preferable to use an expression vector with high expression efficiency, for example, an expression vector pkk233-2 (manufactured by Amersham Bioscience) or pTrc99A (manufactured by Amersham Bioscience) having a trc promoter.
  • a promoter, terminator, enhancer, splicing signal, poly A addition signal, selection marker, ribosome binding sequence (SD sequence) and the like can be linked to the vector.
  • selection marker include kanamycin resistance gene, dihydrofolate reductase gene, ampicillin resistance gene, neomycin resistance gene and the like.
  • Rhodococcus bacteria include Rhodococcus rhodochrous ATCC 12675, Rhodococcus rhodochrous ATCC 17895, Rhodococcus rhodochrous ATCC 19140, and the like. These ATCC strains are available from the American Type Culture Collection.
  • the method for introducing a recombinant vector into bacteria is not particularly limited as long as it is a method for introducing DNA into bacteria. Examples thereof include a method using calcium ions and an electroporation method.
  • yeast When yeast is used as a host, for example, Saccharomyces cerevisiae, Schizosaccharomyces pombe, Pichia pastoris and the like are used.
  • the method for introducing a recombinant vector into yeast is not particularly limited as long as it is a method for introducing DNA into yeast, and examples thereof include an electroporation method, a spheroplast method, and a lithium acetate method.
  • monkey cells COS-7, Vero, CHO cells, mouse L cells, rat GH3, human FL cells and the like are used.
  • methods for introducing a recombinant vector into animal cells include an electroporation method, a calcium phosphate method, and a lipofection method.
  • Sf9 cells When insect cells are used as hosts, Sf9 cells, Sf21 cells and the like are used.
  • a method for introducing a recombinant vector into insect cells for example, calcium phosphate method, lipofection method, electroporation method and the like are used.
  • examples include tobacco BY-2 cells, but are not limited thereto.
  • a method for introducing a recombinant vector into a plant cell for example, an Agrobacterium method, a particle gun method, a PEG method, an electroporation method, or the like is used.
  • the improved nitrile hydratase can be produced by culturing the transformant and collecting it from the resulting culture.
  • the present invention also includes a method for producing an improved nitrile hydratase, wherein the improved nitrile hydratase is collected from the culture.
  • culture means any of culture supernatant, cultured cells, cultured cells, or disrupted cells or cells.
  • the method for culturing the transformant of the present invention is carried out according to a usual method used for culturing a host.
  • the desired improved nitrile hydratase accumulates in the culture.
  • the medium for culturing the transformant of the present invention contains a carbon source, a nitrogen source, inorganic salts, and the like that can be assimilated by the host fungus, and any natural medium can be used as long as the transformant can be cultured efficiently.
  • a medium or a synthetic medium may be used.
  • the carbon source include carbohydrates such as glucose, galactose, fructose, sucrose, raffinose and starch, organic acids such as acetic acid and propionic acid, and alcohols such as ethanol and propanol.
  • the nitrogen source include inorganic acids such as ammonia, ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium acetate, and ammonium phosphate, or ammonium salts of organic acids, and other nitrogen-containing compounds.
  • peptone, yeast extract, meat extract, corn steep liquor, various amino acids, etc. may be used.
  • inorganic substances include monopotassium phosphate, dipotassium phosphate, magnesium phosphate, magnesium sulfate, sodium chloride, ferrous sulfate, manganese sulfate, zinc sulfate, copper sulfate, and calcium carbonate.
  • cobalt ions and iron ions which are nitrile hydratase prosthetic molecules, may be added to the medium, and nitriles and amides serving as enzyme inducers may be added.
  • the cells may be cultured under a selective pressure in order to prevent the vector and the target gene from falling off. That is, a drug corresponding to the case where the selection marker is a drug resistance gene may be added to the medium, or a nutrient factor corresponding to the case where the selection marker is an auxotrophic complementary gene may be removed from the medium.
  • a corresponding assimilation factor can be added as a sole factor as necessary.
  • ampicillin may be added as needed during the culture.
  • an inducer When cultivating a transformant transformed with an expression vector using an inducible promoter as a promoter, an inducer may be added to the medium as necessary. For example, when a transformant transformed with an expression vector having a promoter inducible with isopropyl- ⁇ -D-thiogalactoside (IPTG) is cultured, IPTG or the like can be added to the medium. In addition, when culturing a transformant transformed with an expression vector using a trp promoter inducible with indoleacetic acid (IAA), IAA or the like can be added to the medium.
  • IPTG isopropyl- ⁇ -D-thiogalactoside
  • IAA indoleacetic acid
  • the culture conditions of the transformant are not particularly limited as long as the productivity of the desired improved nitrile hydratase and the growth of the host are not hindered, but are usually 10 ° C. to 40 ° C., preferably 20 ° C. C. to 37.degree. C. for 5 to 100 hours.
  • the pH is adjusted using an inorganic or organic acid, an alkaline solution, or the like. For example, E. coli is adjusted to 6-9.
  • Examples of the culture method include solid culture, stationary culture, shaking culture, and aeration and agitation culture.
  • solid culture stationary culture
  • shaking culture and aeration and agitation culture.
  • aerobic by shaking culture or aeration and agitation culture (jar fermenter). It is preferable to culture under typical conditions.
  • the improved nitrile hydratase of the present invention is produced in a high yield in the above culture, that is, at least one of a culture supernatant, cultured cells, cultured cells, or cells or disrupted cells. Can accumulate.
  • the desired improved nitrile hydratase can be collected by disrupting the cells or cells.
  • a method for disrupting cells or cells high-pressure treatment using a French press or homogenizer, ultrasonic treatment, grinding treatment using glass beads, enzyme treatment using lysozyme, cellulase, pectinase, etc., freeze-thawing treatment, hypotonic solution treatment, It is possible to use a lysis inducing treatment with a phage or the like.
  • cells or cell crushing residues can be removed as necessary.
  • the method for removing the residue include centrifugation and filtration. If necessary, the residue removal efficiency can be increased by using a flocculant or a filter aid.
  • the supernatant obtained after removing the residue is a soluble fraction of the cell extract and can be a crude purified modified nitrile hydratase solution.
  • the improved nitrile hydratase when produced in cells or cells, the cells or cells themselves can be recovered by centrifugation, membrane separation, etc., and used without being crushed.
  • the culture solution is used as it is, or the cells or cells are removed by centrifugation or filtration. Then, if necessary, the improved nitrile hydratase is collected from the culture by extraction with ammonium sulfate precipitation, and further, if necessary, dialysis, various chromatography (gel filtration, ion exchange chromatography, affinity chromatography, etc.) Can also be isolated and purified.
  • the production yield of nitrile hydratase obtained by culturing the transformant is, for example, in units such as per culture liquid, wet or dry weight of bacterial cells, per protein of crude enzyme solution, or the like. It can be confirmed by gel electrophoresis) or nitrile hydratase activity measurement, but is not particularly limited. SDS-PAGE can be performed by a person skilled in the art using a known method. Moreover, the value of the activity mentioned above can be applied to the nitrile hydratase activity.
  • an improved nitrile hydratase can be produced by employing a cell-free protein synthesis system without using any living cells.
  • the cell-free protein synthesis system is a system that synthesizes protein in an artificial container such as a test tube using a cell extract.
  • the cell-free protein synthesis system used in the present invention includes a cell-free transcription system that synthesizes RNA using DNA as a template.
  • the organism corresponding to the above host corresponds to the organism from which the following cell extract is derived.
  • eukaryotic cell-derived or prokaryotic cell-derived extracts such as wheat germ, Escherichia coli and the like can be used as the cell extract. Note that these cell extracts may be concentrated or not concentrated.
  • the cell extract can be obtained, for example, by ultrafiltration, dialysis, polyethylene glycol (PEG) precipitation, or the like.
  • cell-free protein synthesis can also be performed using a commercially available kit. Examples of such kits include a reagent kit PROTEIOSTM (Toyobo), TNTTM System (Promega), a synthesizer PG-MateTM (Toyobo), RTS (Roche Diagnostics), and the like.
  • the improved nitrile hydratase obtained by cell-free protein synthesis can be purified by appropriately selecting chromatography as described above.
  • the improved nitrile hydratase produced as described above can be used for substance production as an enzyme catalyst.
  • an amide compound is produced by contacting the nitrile compound with the improved nitrile hydratase. And the amide compound produced
  • nitrile hydratase separated and purified as described above can be used as the enzyme catalyst.
  • a culture after introducing a gene so that the improved nitrile hydratase gene is expressed in an appropriate host and culturing the host, or a processed product of the culture can be used.
  • the treated product include those in which the cultured cells are included in a gel such as acrylamide, those treated with glutaraldehyde, and those supported on an inorganic carrier such as alumina, silica, zeolite, and diatomaceous earth.
  • contact means that the improved nitrile hydratase and the nitrile compound are present in the same reaction system or culture system.
  • the separated and purified improved nitrile hydratase and nitrile compound are mixed.
  • Adding a nitrile compound to a cell culture vessel expressing the improved nitrile hydratase gene culturing the cell in the presence of the nitrile compound, mixing the cell extract with the nitrile compound, etc. It is.
  • the nitrile compound used as the substrate is selected in consideration of the substrate specificity of the enzyme, the stability of the enzyme to the substrate, and the like.
  • As the nitrile compound acrylonitrile is preferable.
  • the reaction method and the method for collecting the amide compound after completion of the reaction are appropriately selected depending on the characteristics of the substrate and the enzyme catalyst.
  • the enzyme catalyst is preferably recycled as long as its activity is not deactivated.
  • the enzyme catalyst is preferably used in the form of a treated product.
  • mutant gene library As a template plasmid, the amino acid residue downstream of 167 residues from the N-terminal amino acid residue of the amino acid sequence of the ⁇ subunit (SEQ ID NO: 2) is asparagine (N).
  • N-terminal amino acid residues are mutated from valine (V) to alanine (A), and the N-terminal amino acid is The amino acid residue downstream of 57 residues from the residue is mutated from serine (S) to methionine (M), and the amino acid residue downstream of 114 residues from the N-terminal amino acid residue is lysine ( K) is mutated from thior-cin (Y) and the amino acid residue downstream of 107 residues from the N-terminal amino acid residue is mutated from threonine (T) to lysine (K) ER855 to a modified product of (JP see 2010-172295) pER855A (Fig. 1) was used.
  • PSJ034 used as a vector is a plasmid that expresses nitrile hydratase in Rhodococcus, and was prepared from pSJ023 by the method described in JP-A-10-337185.
  • the pSJ023 is a transformant “R. rhodochrous ATCC12673 / pSJ023”, and is designated as FERM BP-6232 by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, the Biological Depositary Center (1st, 1st, 1st East, 1-chome, Tsukuba, Ibaraki). ) Is deposited internationally on March 4, 1997. First, mutations were introduced into the nitrile hydratase gene by the following method.
  • ⁇ Composition of PCR reaction solution 20 ⁇ l of sterilized water pER855A (1 ng / ml) 1 ⁇ l Forward Primer (10 mM) 2 ⁇ l Reverse Primer (10 mM) 2 ⁇ l PrimeSTAR MAX (2x) 25 ⁇ l 50 ⁇ l ⁇ PCR reaction conditions> (98 ° C. 10 seconds, 55 ° C. 5 seconds, 72 ° C.
  • reaction solution After completion of PCR, 5 ⁇ l of the reaction solution is subjected to 0.7% agarose gel electrophoresis, 11 kb amplified fragment is confirmed, 1 ⁇ l of DpnI (supplied with the kit) is added to the PCR reaction solution, and reacted at 37 ° C. for 1 hour. The template plasmid was removed.
  • the reaction end solution was purified with Wizard SV Gel and PCR Clean-Up System (Promega Corporation), and transformed into JM109 using the purified PCR reaction product. Thousands of obtained colonies were recovered from the plate, and plasmid DNA was extracted using QIAprep Spin Miniprep Kit (Qiagen) to obtain a mutant gene library.
  • Rhodococcus transformant Cells in the logarithmic growth phase of Rhodococcus rhodochrous ATCC12674 were collected by a centrifuge, washed three times with ice-cooled sterilized water, and suspended in sterilized water. 1 ⁇ l of the plasmid prepared in (1) above and 10 ⁇ l of the cell suspension are mixed and ice-cooled. The plasmid DNA and the cell suspension are put in a cuvette, and the suspension is added to the gene transfer device Gene Pulser II (BIO RAD). Electric pulse treatment was performed at 0.0 KV and 200 OHMS.
  • the cuvette containing the electric pulse treatment liquid was allowed to stand for 10 minutes under ice cooling, and heat shocked at 37 ° C. for 10 minutes. Then, 500 ⁇ l of MYK medium (0.5% polypeptone, 0.3% bacto yeast extract, 0.3% bacto malt extract, 0.2% K 2 HPO 4 , 0.2% KH 2 PO 4 ) was added to the cuvette. The mixture was allowed to stand at 30 ° C. for 5 hours, and then applied to a MYK agar medium containing 50 ⁇ g / ml kanamycin. Colonies after 3 days of culture at 30 ° C. were used as transformants. Similarly, a transformant of pER855A was prepared as a comparative strain.
  • Rhodococcus transformants containing the nitrile hydratase gene obtained in (2) above and ATCC12274 / pER855A, which is a comparative strain were used for screening.
  • GGPK medium (1.5% glucose, 1% sodium glutamate, 0.1% yeast extract, 0.05% K 2 HPO 4 , 0.05% KH 2 PO 4 , 0.05% MgSO 4 .7H 2 O, Each strain was inoculated into 96-well deep well plates each containing 1 ml of 1% CoCl 2 , 0.1% urea, 50 ⁇ g / ml kanamycin, pH 7.2), and liquid-cultured at 30 ° C. for 3 days.
  • the acrylamide-treated transformant was washed with 50 mM phosphate buffer (pH 7.0), and the activity was measured by the following method.
  • the washed transformant and 50 mM phosphate buffer (pH 7.0) are added to the test tube, preincubated at 30 ° C. for 10 minutes, and an equal amount of 5% acrylonitrile solution (pH 7.0) is added for 10 minutes.
  • the reaction was terminated by adding 1/10 amount of 1M phosphoric acid.
  • the transformant was removed from the stopped reaction solution by centrifugation, diluted to an appropriate concentration, and analyzed by HPLC (WAKOSIL 5C8 (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) 250 mm, 10% acetonitrile containing 5 mM phosphoric acid, migration Phase flow rate 1 ml / min and UV absorption detector wavelength 260 nm).
  • HPLC HPLC
  • the activity was measured using each untreated bacterium not subjected to acrylamide treatment, and the residual activity after acrylamide treatment was determined on the basis of the obtained activity value.
  • the cells were collected by centrifugation, washed with TES (10 mM Tris-HCl (pH 8) -10 mM NaCl-1 mM EDTA) buffer, and then 2 ml of 50 mM Tris-HCl (pH 8) -12.5% sucrose-100 mM NaCl. It was suspended in -1 mg / ml lysozyme and shaken at 37 ° C. for 3 hours. 0.4 ml of 10% SDS was added thereto, and the mixture was gently shaken at room temperature for 1 hour. Further, 2.1 ml of 5M sodium acetate buffer (pH 5.2) was added, and the mixture was allowed to stand in ice for 1 hour.
  • TES mM Tris-HCl
  • pH EDTA 50 mM Tris-HCl
  • ⁇ Composition of PCR reaction solution Template plasmid 1 ⁇ l 10 ⁇ PCR Buffer (manufactured by NEB) 10 ⁇ l Primer NH-19 (50 ⁇ M) 1 ⁇ l Primer NH-20 (50 ⁇ M) 1 ⁇ l 2.5 mM dNTPmix 8 ⁇ l Sterile water 79 ⁇ l Taq DNA polymerase (manufactured by NEB) 1 ⁇ l ⁇ Primer> NH-19 GCCTCTAGATATCGCCCTCTCGTTGCCGG (SEQ ID NO: 7) NH-20 ACCCTGCAGGCTCCGGCGCACCGGATGCCCAC (SEQ ID NO: 8) ⁇ Reaction conditions> (94 ° C for 30 seconds, 65 ° C for 30 seconds, 72 ° C for 3 minutes) x 30 cycles.
  • amide compound resistance of the improved nitrile hydratase obtained in (4) was implemented by the following method. ATCC12674 / pER855A and each transformant obtained in the step (2) above were inoculated into 10 ml of MYK medium (50 ⁇ g / ml kanamycin), shake-cultured at 30 ° C.
  • GGPK medium 1.5% glucose, 1% sodium glutamate, 0.1% yeast extract, 0.05% K 2 HPO 4 , 0.05% KH 2 PO 4 , 0.05% MgSO 4 .7H 2 O, 1% CoCl 2 , 0.1% urea, 50 ⁇ g / ml kanamycin, pH 7.2
  • the cells were cultured with shaking at 30 ° C. for 3 days and collected by centrifugation.
  • the enzyme activity of the obtained cultured cells was measured by the following method. Mix 0.2 ml of bacterial cell solution and 4.8 ml of 50 mM phosphate buffer (pH 7.0), and further add 5 ml of 50 mM phosphate buffer (pH 7.0) containing 5.0% (w / v) acrylonitrile. In addition to the mixture, the reaction was carried out at 10 ° C. with shaking for 10 minutes. Subsequently, the cells were separated by filtration, and the amount of acrylamide produced was quantified using gas chromatography.
  • Analytical instrument Gas chromatograph GC-14B (manufactured by Shimadzu Corporation) Detector: FID (detection 200 ° C) Column: 1m glass column packed with Polapack PS (Waters column filler) Column temperature: 190 ° C Nitrile hydratase activity was converted from the amount of acrylamide.
  • the nitrile hydratase activity is defined as 1 U for the amount of enzyme that produces 1 ⁇ mol of acrylamide per minute.
  • reaction solution composition 94g of 50% acrylamide solution Acrylonitrile 4g 1M phosphate buffer 1g Bacterial fluid (the same enzyme activity unit (U) amount)
  • reaction conditions Reaction for 5 hours with stirring (30 ° C)
  • the improved nitrile hydratases had a consumption rate of acrylonitrile exceeding 103% as compared with pER855A as a comparative example. Therefore, the improved nitrile hydratase maintains the nitrile hydratase activity even in the presence of a high concentration of acrylamide, and thus can be said to have improved resistance to acrylamide.
  • the improved nitrile hydratases had a consumption rate of acrylonitrile exceeding 117% as compared with pER855A as a comparative example. Therefore, the improved nitrile hydratase maintains the nitrile hydratase activity even in the presence of a high concentration of acrylamide, and thus can be said to have improved resistance to acrylamide.
  • the improved nitrile hydratases had an acrylonitrile consumption rate exceeding 124% as compared with pER855A as a comparative example. Therefore, the improved nitrile hydratase maintains the nitrile hydratase activity even in the presence of a high concentration of acrylamide, and thus can be said to have improved resistance to acrylamide.
  • the improved nitrile hydratases had an acrylonitrile consumption rate exceeding 125% as compared with pER855A as a comparative example. Therefore, the improved nitrile hydratase has improved resistance to acrylamide since the nitrile hydratase activity is maintained even in the presence of a high concentration of acrylamide.
  • a transformant was added to a plastic tube with a lid in a combined amount of 10 ml of 50 mM phosphate buffer and the charged activity, and preincubated for 10 minutes while shaking in a 40 ° C. water bath.
  • 1 ml of acrylonitrile is added to each reaction solution to start the reaction.
  • the reaction is carried out while sequentially adding 1 ml of acrylonitrile at a predetermined time (20 minutes, 40 minutes, hours, 1 hour 30 minutes, 2 hours).
  • the reaction solution after 3 hours of reaction was filtered and the acrylamide concentration of the filtrate was measured by gas chromatography.
  • an improved nitrile hydratase is provided.
  • the improved nitrile hydratase of the present invention is improved in heat resistance, amide compound resistance and high temperature accumulation. For this reason, an amide compound can be efficiently produced from a nitrile compound by using the improved nitrile hydratase of the present invention.
  • SEQ ID NO: 1 Nucleotide sequence of nitrile hydratase ⁇ subunit from J1 bacterium
  • SEQ ID NO: 2 Amino acid sequence of nitrile hydratase ⁇ subunit from J1 bacterium
  • SEQ ID NO: 3 Base of nitrile hydratase ⁇ subunit from J1 bacterium
  • SEQ ID NO: 4 Amino acid sequence of nitrile hydratase ⁇ subunit derived from J1 bacteria
  • 10 saturation mutation primer of ⁇ 15
  • 11 saturation mutation primer of ⁇ 95
  • SEQ ID NO: 12 saturation mutation primer of ⁇ 95 SEQ ID NO: 13: saturation mutation primer

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Abstract

野生型ニトリルヒドラターゼの改良により、耐熱性及びアミド化合物耐性及び高温蓄積性がより一層向上したニトリルヒドラターゼ活性を有するタンパク質を提供する。以下の（Ａ）又は（Ｂ）のタンパク質；（Ａ）野生型ニトリルヒドラターゼのアミノ酸配列において特定のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列を含み、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有することを特徴とするタンパク質、（Ｂ）上記（Ａ）のタンパク質のアミノ酸配列において、上記特定のアミノ酸残基を除き、１若しくは数個のアミノ酸残基が欠失、置換及び／又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有することを特徴とするタンパク質を用いる。

Description

改良型ニトリルヒドラターゼ
　本発明は、改良型（変異型）のニトリルヒドラターゼ、及びその製造方法に関する。さらには、当該酵素をコードする遺伝子ＤＮＡ、当該遺伝子ＤＮＡを含む組換えベクター、及び当該組換えベクターを有する形質転換体、並びにアミド化合物の製造方法に関する。
　近年、ニトリル基を水和しアミド基に変換するニトリル水和活性を有する酵素であるニトリルヒドラターゼが発見され、当該酵素又は当該酵素を含有する微生物菌体等を用いてニトリル化合物より対応するアミド化合物を製造する方法が開示されている。この製造方法は、従来の化学合成法と比較し、ニトリル化合物から対応するアミド化合物への転化率及び選択率が高いことで知られている。
　ニトリルヒドラターゼを生産する微生物としては、例えば、コリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属、ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属、リゾビウム（Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍ）属、クレビシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ）属、シュードノカルディア（Ｐｓｅｕｄｏｎｏｃａｒｄｉａ）属等に属する微生物を挙げることができる。中でもロドコッカス・ロドクロウス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ　ｒｈｏｄｏｃｈｒｏｕｓ）Ｊ１株はアクリルアミドの工業的生産に使用されており、有用性が実証されている。また、その菌株が産生するニトリルヒドラターゼをコードする遺伝子も明らかとなっている（特許文献１参照）。
　一方、自然界に存在する微生物から単離したニトリルヒドラターゼやその遺伝子を利用するのみならず、ニトリルヒドラターゼに対して、活性、基質特異性、Ｖｍａｘ、Ｋｍ、熱安定性、基質に対する安定性、生成物に対する安定性等を変化させる目的でニトリルヒドラターゼに変異を導入することが試みられており（特許文献２参照）、本発明者らによって耐熱性又はアミド化合物耐性を共に向上させたニトリルヒドラターゼ遺伝子が取得されている（特許文献３及び４参照）。
　しかし、さらなる耐熱性及びアミド化合物耐性の向上、又は高温での反応が可能なニトリルヒドラターゼを開発し、アミド化合物の製造に用いることは、触媒コスト等の生産コストの観点などから非常に有用であり、その様な性能を有する酵素の取得は、反応時の酵素量の削減及びコスト削減等の観点から開発が望まれている。
特許第３１６２０９１号公報 国際公開第２００４／０５６９９０号パンフレット 国際公開第２００５／１１６２０６号パンフレット 特開２００７－１４３４０９号公報
　そこで、本発明の目的は、ニトリルヒドラターゼの改良により、耐熱性、アミド化合物耐性及び高温蓄積性がさらに向上したニトリルヒドラターゼ活性を有するタンパク質を提供することである。また、本発明の目的は、当該タンパク質をコードする遺伝子ＤＮＡ、当該遺伝子ＤＮＡを含む組換えベクター、当該組換えベクターを含む形質転換体、当該形質転換体の培養物から採取されるニトリルヒドラターゼ及びその製造方法を提供することにある。さらに、本発明の目的は、当該培養物又は当該培養物の処理物を用いたアミド化合物の製造方法を提供することにある。
　本発明者は、上記課題を解決するために鋭意研究を行った。その結果、野生型ニトリルヒドラターゼのアミノ酸配列のうち、特定のアミノ酸残基を他のアミノ酸残基に置換したタンパク質が、ニトリルヒドラターゼ活性を有するとともに、耐熱性、アミド化合物耐性及び高温蓄積性が向上したものであることを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は以下の通りである。
（１）以下の（Ａ）又は（Ｂ）のタンパク質；
（Ａ）野生型ニトリルヒドラターゼのアミノ酸配列において、下記（ａ）、（ｂ）、（ｃ）、（ｄ）及び（ｅ）のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換され、さらに、下記（ｆ）～（ｑ）からなる群より選ばれる少なくとも１つのアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列を含み、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有することを特徴とするタンパク質、
　（ａ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１６７残基下流のアミノ酸残基、
　（ｂ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて２１９残基下流のアミノ酸残基、
　（ｃ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて５７残基下流のアミノ酸残基、
　（ｄ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１１４残基下流のアミノ酸残基、
　（ｅ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１０７残基下流のアミノ酸残基、
　（ｆ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて２１８残基下流のアミノ酸残基、
　（ｇ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１９０残基下流のアミノ酸残基、
　（ｈ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１６８残基下流のアミノ酸残基、
　（ｉ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１４４残基下流のアミノ酸残基、
　（ｊ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１３３残基下流のアミノ酸残基、
　（ｋ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１１２残基下流のアミノ酸残基、
　（ｌ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１０５残基下流のアミノ酸残基、
　（ｍ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて９５残基下流のアミノ酸残基、
　（ｎ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１７残基下流のアミノ酸残基、
　（ｏ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１５残基下流のアミノ酸残基、
　（ｐ）αサブユニットのアミノ酸配列において、補欠分子結合領域を構成するアミノ酸配列Ｃ（Ｓ／Ｔ）ＬＣＳＣの最も下流側のＣ残基より６７残基下流のアミノ酸残基、
　（ｑ）αサブユニットのアミノ酸配列において、補欠分子結合領域を構成するアミノ酸配列Ｃ（Ｓ／Ｔ）ＬＣＳＣの最も下流側のＣ残基より１７残基下流のアミノ酸残基。
（Ｂ）（Ａ）のタンパク質のアミノ酸配列において、前記置換後のアミノ酸残基を除き、１又は数個のアミノ酸残基が欠失、置換及び／又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有することを特徴とするタンパク質。
（２）　（１）に記載のタンパク質をコードするＤＮＡ。
（３）　（２）に記載の遺伝子ＤＮＡを含む組換えベクター。
（４）　（３）に記載の組換えベクターを含む形質転換体。
（５）　（４）に記載の形質転換体を培養して得られる培養物から採取されるニトリルヒドラターゼ。
（６）　（４）に記載の形質転換体を培養し、得られる培養物からニトリルヒドラターゼを採取することを特徴とする、ニトリルヒドラターゼの製造方法。
（７）　（１）に記載のタンパク質又は（４）に記載の形質転換体を培養して得られる培養物若しくは当該培養物の処理物をニトリル化合物に接触させることを特徴とする、アミド化合物の製造方法。
　本発明によれば、耐熱性、アミド化合物耐性及び高温蓄積性が向上した新規な改良型（変異型）ニトリルヒドラターゼを提供することができる。耐熱性、アミド化合物耐性及び高温蓄積性がいずれもより向上した当該改良型ニトリルヒドラターゼは、アミド化合物の製造効率が高くなるので非常に有用である。
プラスミドｐＥＲ８５５Ａの構成図である。 各種微生物由来の野生型ニトリルヒドラターゼのβサブユニットのアミノ酸配列を示す図である。 各種微生物由来の野生型ニトリルヒドラターゼのβサブユニットのアミノ酸配列を示す図である（図２－１の続き）。 各種微生物由来の野生型ニトリルヒドラターゼのαサブユニットのアミノ酸配列を示す図である。 各種微生物由来の野生型ニトリルヒドラターゼのαサブユニットのアミノ酸配列を示す図である（図３－１の続き）。
　以下に、本発明を詳細に説明する。
　なお本明細書においては、特記した場合を除き、「上流」及び「上流側」とは、アミノ酸配列に関しては「Ｎ末端側」を意味し、塩基配列に関しては「５’末端側」を意味する。
また、「下流」及び「下流側」とは、アミノ酸配列に関しては「Ｃ末端側」を意味し、塩基配列に関しては「３」を意味する。
１．改良型ニトリルヒドラターゼ
（ａ）野生型ニトリルヒドラターゼ
　本発明の改良型ニトリルヒドラターゼは、野生型ニトリルヒドラターゼの改良型であり、その由来は特に限定されるものではない。ここで、「野生型ニトリルヒドラターゼ」とは、自然界の生物（例えば、土壌細菌等の微生物）より分離され得るニトリルヒドラターゼを指し、当該酵素を構成するアミノ酸配列、及び当該酵素をコードする遺伝子の塩基配列が、人為的に欠失又は挿入せず、あるいは、他のアミノ酸又は塩基で置換されておらず、天然由来の特性を保持したままのニトリルヒドラターゼを意味する。
　また、既知の微生物由来のニトリルヒドラターゼのみならず、生物の由来が特定されないＤＮＡ配列のみから特定されたニトリルヒドラターゼも、上記「野生型ニトリルヒドラターゼ」に含まれる。
　「野生型ニトリルヒドラターゼ」は、αサブユニット及びβサブユニットのドメインが集合してなる高次構造をとり、補欠分子として非ヘム鉄原子、又は非コリン核コバルト原子を有している。これらのニトリルヒドラターゼは、それぞれ鉄型ニトリルヒドラターゼ及びコバルト型ニトリルヒドラターゼという呼称で区別されている。
　鉄型ニトリルヒドラターゼとしては、ロドコッカス属Ｎ－７７１株由来のものをその代表例として挙げることができる。この鉄型ニトリルヒドラターゼは、Ｘ線結晶構造解析がなされ、その立体構造が明らかになっている。その結果、当該酵素は、活性中心を形成するαサブユニットのシステインクラスター（：配列番号６１）中の４つのアミノ酸残基を介して非へム鉄と結合している。
　コバルト型ニトリルヒドラターゼとしては、ロドコッカス・ロドクロウスＪ１株（以下「Ｊ１菌」と称する場合がある）由来のもの、又はシュードノカルディア・サーモフィラ（Ｐｓｅｕｄｏｎｏｃａｒｄｉａ　ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌａ）由来のものを代表例として挙げることができる。Ｊ１菌由来のコバルト型ニトリルヒドラターゼは、活性中心を形成するαサブユニットのシステインクラスター（：配列番号６２）で示される領域を介してコバルト原子と結合している。なお、シュードノカルディア・サーモフィラ由来のコバルト型ニトリルヒドラターゼのシステインクラスターは、上記Ｊ１菌由来のシステインクラスターにおける上流側（Ｎ末端側）から第４番目のシステイン（Ｃｙｓ）がシステインスルフィン酸（Ｃｓｉ）であり、最も下流側（Ｃ末端側）の第６番目のシステイン（Ｃｙｓ）がシステインスルフェン酸（Ｃｓｅ）である。
　上述の通り、補欠分子は、αサブユニット中のシステインクラスター「Ｃ（Ｓ／Ｔ）ＬＣＳＣ」（配列番号６１および６２）で表される領域と結合している。このような補欠分子結合領域を含むニトリルヒドラターゼとしては、例えば、ロドコッカス・ロドクロウスＪ１（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１４７８）、ロドコッカス・ロドクロウスＭ８（ＳＵ１７３１８１４）、ロドコッカス・ロドクロウスＭ３３（ＶＫＭ　Ａｃ－１５１５Ｄ）、ロドコッカス・ロドクロウスＡＴＣＣ３９４８４（特開２００１－２９２７７２）、バチルス・スミシ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｍｉｔｈｉｉ）（特開平９－２４８１８８）、シュードノカルディア・サーモフィラ（特開平９－２７５９７８）　又はジオバチルス・サーモグルコシダシアス（Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｔｈｅｒｍｏｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｉｕｓ）由来のアミノ酸配列を有するニトリルヒドラターゼ及び遺伝子配列でコードされるニトリルヒドラターゼが挙げられる。
　各種微生物由来の野生型ニトリルヒドラターゼのαサブユニットのアミノ酸（一文字表記）配列のアライメントを、図３－１および図３－２に示した。なお、図３－１、３－２のそれぞれにおいて、上のアミノ酸配列から順に、配列番号４、及び４９～６０を示す。
　一方、βサブユニットの機能については構造の安定性に関与していると考えられている。各種微生物由来の野生型ニトリルヒドラターゼのβサブユニットのアミノ酸（一文字表記）配列のアライメントを、図２－１および図２－２に示した。なお、図２－１、２－２のそれぞれにおいて、上のアミノ酸配列から順に、配列番号２、及び３５～４８を示す。
（ｂ）改良型ニトリルヒドラターゼ
　本発明は、野生型ニトリルヒドラターゼにアミノ酸置換を施した改良型（変異型）ニトリルヒドラターゼである。置換を施す対象となる野生型ニトリルヒドラターゼのアミノ酸配列はＧｅｎＢａｎｋ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／）等のＮＣＢＩのデータベースに公表されている。
　例えば、ロドコッカス・ロドクロウスＪ１（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１４７８）由来のαサブユニットは、アミノ酸配列が配列番号４で示され、塩基配列が配列番号３で示される。また、βサブユニットはアミノ酸配列が配列番号２で示され、塩基配列が配列番号１で示され、アクセッション番号は「Ｐ２１２２０」である。また、ロドコッカス・ロドクロウスＭ８（ＳＵ１７３１８１４）由来のαサブユニットのアクセッション番号は「ＡＴＴ７９３４０」であり、βサブユニットのアクセッション番号は「ＡＡＴ７９３３９」である。さらに、シュードノカルデァ・サーモフィラ（Ｐｓｅｕｄｏｎｏｃａｒｄｉａ　ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌａ）ＪＣＭ３０９５由来のαサブユニットのアクセッション番号は「１ＩＲＥ　Ａ」であり、βサブユニットのアクセッション番号は「１ＩＲＥ　Ｂ」である。
　また、特定のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列において、１個又は数個（例えば１個～１０個程度、好ましくは１個～５個程度）のアミノ酸残基（但し、上記置換後のアミノ酸残基を除く）が欠失、置換及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有する改良型ニトリルヒドラターゼも本発明の範囲である。
　本発明における「改良型ニトリルヒドラターゼ」としては、野生型ニトリルヒドラターゼのアミノ酸配列において下記（ａ）、（ｂ）、（ｃ）、（ｄ）及び（ｅ）のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換され、さらに、下記（ｆ）～（ｑ）からなる群より選ばれる少なくとも１つのアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列を含み、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有することを特徴とするタンパク質が挙げられる。なお、下記（ｄ）、（ｅ）、（ｆ）、（ｇ）、（ｈ）、（ｉ）、（ｊ）、（ｋ）、（ｌ）、（ｍ）、（ｎ）、（ｏ）、（ｐ）及び（ｑ）のアミノ酸残基は、それぞれ、各種野生型ニトリルヒドラターゼの中でもロドコッカス・ロドクロウス種に属する細菌由来の野生型ニトリルヒドラターゼのアミノ酸配列中のアミノ酸残基であることが好ましい。
　（ａ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１６７残基下流のアミノ酸残基。
　（ｂ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて２１９残基下流のアミノ酸残基。
　（ｃ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて５７残基下流のアミノ酸残基。
　（ｄ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１１４残基下流のアミノ酸残基。
　（ｅ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１０７残基下流のアミノ酸残基。
　（ｆ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて２１８残基下流のアミノ酸残基。
　（ｇ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１９０残基下流のアミノ酸残基。
　（ｈ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１６８残基下流のアミノ酸残基。
　（ｉ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１４４残基下流のアミノ酸残基。
　（ｊ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１３３残基下流のアミノ酸残基。
　（ｋ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１１２残基下流のアミノ酸残基。
　（ｌ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１０５残基下流のアミノ酸残基。
　（ｍ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて９５残基下流のアミノ酸残基。
　（ｎ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１７残基下流のアミノ酸残基。
　（ｏ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１５残基下流のアミノ酸残基。
　（ｐ）αサブユニットのアミノ酸配列において補欠分子結合領域を構成するアミノ酸配列Ｃ（Ｓ／Ｔ）ＬＣＳＣの最も下流側のＣ残基より６７残基下流のアミノ酸残基。
　（ｑ）αサブユニットのアミノ酸配列において補欠分子結合領域を構成するアミノ酸配列Ｃ（Ｓ／Ｔ）ＬＣＳＣの最も下流側のＣ残基より１７残基下流のアミノ酸残基。
　また、本発明の改良型ニトリルヒドラターゼとしては、上記タンパク質の中でも、置換されるアミノ酸残基が以下に列挙するアミノ酸残基であるものが好ましく挙げられる。
（１）上記（ａ）～（ｅ）、及び（ｎ）のアミノ酸残基。
（２）上記（ａ）～（ｅ）、及び（ｎ）のアミノ酸残基、並びに、上記（ｇ）～（ｊ）、（ｌ）、（ｍ）、（ｏ）及び（ｑ）からなる群より選ばれる少なくとも１つのアミノ酸残基。
（３）上記（ａ）～（ｅ）、（ｎ）、（ｉ）、及び（ｐ）のアミノ酸残基。
（４）上記（ａ）～（ｅ）、（ｎ）、（ｐ）、及び（ｆ）のアミノ酸残基。
（５）上記（ａ）～（ｅ）、（ｎ）、（ｉ）、（ｐ）のアミノ酸残基、並びに、上記（ｆ）、（ｋ）及び（ｍ）からなる群より選ばれる少なくとも１つのアミノ酸残基。
　本発明の改良型ニトリルヒドラターゼの一例としては、Ｊ１菌由来の野生型ニトリルヒドラターゼのβサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端側から第１６７番目のアミノ酸残基（アスパラギン）、βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端側から第２１９番目のアミノ酸（バリン）、βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端側から第５７番目のアミノ酸（セリン）、βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端側から第１１４番目のアミノ酸（リジン）、βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端側から第１０７番目のアミノ酸（スレオニン）、及びβサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端側から第１７番目のアミノ酸（プロリン）を含み、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有する酵素タンパク質が好ましく挙げられる。このようなアミノ酸置換の態様の表記例としては、「Ｎβ１６７Ｓ，Ｖβ２１９Ａ，Ｓβ５７Ｒ、Ｋβ１１４Ｙ、Ｔβ１０７Ｋ、Ｐβ１７Ｄ」等が挙げられる。
　なお、アミノ酸のアルファベット表記は通常の１文字で表すことができ、置換箇所までのアミノ酸残基数を表す数字（例えば「２６」）の左側に表示したアルファベットは、置換前のアミノ酸の１文字表記を示し、右側に表示したアルファベットは置換後のアミノ酸の１文字表記を示している。
　具体的には、配列番号２に示すβサブユニットのアミノ酸配列に関して、「Ｎβ１６７Ｓ」と表記した場合は、βサブユニットのアミノ酸配列（配列番号２）のうちＮ末端のアミノ酸残基から数えて（当該Ｎ末端のアミノ酸残基を含めて数えて）１６７番目のアスパラギン（Ｎ）がセリン（Ｓ）に置換された改良型ニトリルヒドラターゼにおけるアミノ酸置換の態様を意味する。
　ここで、「α↓」という表記は、置換位置がＣＴＬＣＳＣ領域の最も下流側のＣ残基よりも下流にある（当該Ｃ残基を含めずに数えてＣ末端側にある）ことを意味する。
　さらに、本発明の改良型ニトリルヒドラターゼとしては、上記タンパク質の中でも置換されるアミノ酸残基が表１に列挙するアミノ酸残基であるものがより好ましく挙げられる。

Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000001
　これらの中でも、上記の置換番号１３～２９の態様でアミノ酸置換が施された改良型ニトリルヒドラターゼがさらに好ましく、上記の置換番号２６～２９の態様でアミノ酸置換が施された改良型ニトリルヒドラターゼが特に好ましい。
　上記アミノ酸置換を生じさせるための塩基置換としては、以下の表２の態様が好ましく挙げられる。

Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000002
　尚、本発明のアミノ酸置換の場所は、配列番号２のＪ１菌由来のニトリルヒドラターゼβサブユニットとのアライメントで、１６７番目、２１９番目、５７番目、１１４番目、１０７番目、２１８番目、１９０番目、１６８番目、１４４番目、１３３番目、１１２番目、１０５番目、９５番目、１７番目、及び１５番目のアミノ酸残基に相当する場所も含まれる。一例として、シュードノカルデァ・サーモフィラで相当するアミノ酸配列としてはそれぞれ、１６４番目、２１６番目、５７番目、１１４番目、１０７番目、２１５番目、１８７番目、１６５番目、１４１番目、１２９番目、１０８番目、１０２番目、９２番目、１７番目、及び１５番目に相当する。さらに、本発明のアミノ酸置換の場所は、配列番号４のＪ１菌ニトリルヒドラターゼαサブユニットとのアライメントで１２４番目、及び１７４番目に相当する場所も含まれ、シュードノカルデァ・サーモフィラにおいては、それぞれ１３０番目と１８０番目に相当する。
　アミノ酸配剤のアラインメントの手段として、それに用いる手段は特に限定されないが、ＧＥＮＥＴＸＹ（日本ゼネティクス社）、ＤＮＡＳＩＳ（日立ソフト社）やフリーソフトのＣＬＵＳＴＡＬＷやＢＬＡＳＴ等の遺伝子配列解析ソフトが挙げられる。アライメントの一例である図２－１、図２－２、図３－１、図３－２は、ＧＥＮＥＴＸＹ　Ｖｅｒ．７（日本ゼネティクス社、デフォルト設定）を使用した結果である。
　本発明の改良型ニトリルヒドラターゼの活性は、天然由来の特性を保持したままの野生型ニトリルヒドラターゼの活性に対して耐熱性、アミド化合物耐性及び高温蓄積性が向上している。
　ここで、「ニトリルヒドラターゼ活性」とは、ニトリル化合物を、対応するアミド化合物に変換する水和反応（ＲＣＮ＋Ｈ２Ｏ→ＲＣＯＮＨ２）を触媒する酵素である。活性測定は、基質であるニトリル化合物をニトリルヒドラターゼと接触させ、対応するアミド化合物に変換した後、当該アミド化合物を定量することにより算出することができる。基質としては、ニトリルヒドラターゼが反応すればいかなるニトリル化合物でも使用できるが、アクリロニトリルが好ましい。
　反応条件としては、基質濃度は２．５％、反応温度は１０℃から３０℃、反応時間は１０分から３０分の範囲で行う。酵素反応はリン酸を添加して停止させる。その後、ＨＰＬＣ（高速液体クロマトグラフィー）により、生成したアクリルアミドを分析することでアミド化合物の定量を行うことができる。
　また、ニトリルヒドラターゼ活性の有無は活性染色法によって簡便に調べることができる。例えば、基質にアントラニロニトリル（ａｎｔｈｒａｎｉｌｏｎｉｔｒｉｌｅ）を使用すれば、ニトリルヒドラターゼによって変換されたアントラニルアミド（ａｎｔｈｒａｎｉｌａｍｉｄｅ）は蛍光を有するので高感度に簡便に検出することができる（Ａｎｔｏｎｉｅ　Ｖａｎ　Ｌｅｅｕｗｅｎｈｏｅｋ　８０（２）：１６９－１８３，２００１参照）。
　「耐熱性の向上」とは、加熱処理した改良株の残存活性が、同じ処理を行った比較例の残存活性より１０％以上高いことを意味する。加熱処理の方法としては、培養液、又は集菌・洗浄した培養菌体を容器に入れた後、当該容器をウォーターバスやインキュベーター等の加熱装置に入れ一定時間保温すればよい。この時、酵素の安定性を高める為、ニトリル化合物やアミド化合物を添加して加熱処理を実施することもできる。加熱処理の条件としては処理温度と処理時間を適宜検討し、比較株の活性が加熱処理前に対して５０％以下に低下する条件を設定するのが好ましい。具体的には５０℃から７０℃の範囲で、５分から６０分加熱処理を行う。残存活性とは、加熱処理した菌体を用いて活性測定したアミド化合物の生成量と、同量の無処理の菌体を用いて活性測定したアミド化合物の生成量との比を示す。無処理の菌体は、培養液、又は集菌・洗浄した培養菌体を４℃で保冷しておいたものを用いる。ここで、本発明における比較例としては、ｐＥＲ８５５Ａが導入された形質転換体を意味し、残存活性が比較株より１０％以上高いニトリルヒドラターゼを耐熱性が向上したと評価することができる。
　「アミド化合物耐性」とは、アミド化合物存在下でもニトリルヒドラターゼ活性を維持することができることを意味する。改良型ニトリルヒドラターゼを有する形質転換体の培養物又は当該形質転換体から単離した改良型ニトリルヒドラターゼを、アクリルアミド等のアミド化合物（例えば、３０～５０％の高濃度）の存在下で、基質であるアクリロニトリル等のニトリル化合物の消費量又は消費速度を分析する。比較例に対し、消費量又は消費速度が１．０１倍を超えたニトリルヒドラターゼをアミド化合物耐性であると評価することができる。
　「高温蓄積性」とは、２０℃より高い反応温度で、３５％を超える高濃度のアクリルアミドを生産することができる事を意味する。改良型ニトリルヒドラターゼを有する形質転換体の培養物又は当該形質転換体から単離した改良型ニトリルヒドラターゼを、アクリロニトリルを添加しながら酵素反応を継続し、生成したアクリルアミド濃度を分析する。アクリロニトリルの添加方法は、反応溶液内のアクリロニトリル濃度を制御しながら添加しても良いし、逐次添加しながら反応させても良い。本発明における高温とは２０℃以上の反応温度を示す。生成したアクリルアミド濃度が比較例を超えたニトリルヒドラターゼは高温蓄積性が向上したと評価することができる。
　アミド化合物としては、例えば、下記一般式（１）：
　　　Ｒ－ＣＯＮＨ２　　（１）
（ここで、Ｒは、置換されていてもよい炭素数１～１０の直鎖状若しくは分枝状のアルキル基又はアルケニル基、置換されていてもよい炭素数３～１８のシクロアルキル基又はアリール基、あるいは、置換されていてもよい飽和又は不飽和複素環基である。）
で表されるアミド化合物が挙げられる。特に、式中、Ｒが「ＣＨ２＝ＣＨ－」であるアクリルアミドが好ましい。
　上記の改良型ニトリルヒドラターゼは、野生型ニトリルヒドラターゼをアミノ酸置換することで得られるものであり、例えば、ロドコッカス・ロドクロウスＪ１株由来のニトリルヒドラターゼのアミノ酸配列（配列番号２及び／又は４）を改変し、耐熱性及び／又はアミド化合物耐性の向上したニトリルヒドラターゼを選択することにより得られる。
　なお、ロドコッカス・ロドクロウスＪ１株は、ＦＥＲＭ　ＢＰ－１４７８として独立行政法人産業技術総合研究所　特許生物寄託センター（茨城県つくば市東１丁目１番地１　中央第６）に昭和６２（１９８７）年９月１８日付けで国際寄託されている。
　Ｊ１菌以外のニトリルヒドラターゼにおいてもアミノ酸ホモロジーが高い酵素は上述の変異によって耐熱性及び／又はアミド化合物耐性が向上すると考えられる。
　その様な菌としては、バチルス・スミシ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｍｉｔｈｉｉ）（特開平０９－２４８１８８）、シュードノカルディア・サーモフィラ（特開平０９－２７５９７８）、ジオバチルス・サーモグルコシダシアス（特許番号）等が挙げられ、アミノ酸ホモロジーが９０％を超える（高ホモロジー酵素を羅列）ロドコッカス・ロドクロウスＭ８（ＳＵ１７３１８１４）、ロドコッカス・ロドクロウスＭ３３（ＶＫＭ　Ａｃ－１５１５Ｄ）がさらに好ましい。なお、ロドコッカス・ロドクロウスＭ３３（ＶＫＭ　Ａｃ－１５１５Ｄ）は、上記Ｍ８菌（ＳＵ１７３１８１４）から自然突然変異によって構成的にニトリルヒドラターゼを発現する株として選抜された菌株である。そのニトリルヒドラターゼ自体のアミノ酸配列及び遺伝子配列に変異はない（米国特許第５，８２７，６９９号）。
　野生型ニトリルヒドラターゼをアミノ酸置換する方法としては、ニトリルヒドラターゼ活性を有する微生物にハイドロキシルアミンや亜硝酸等の変異源となる薬剤を接触・作用させる方法、紫外線照射により変異を誘発する方法、ニトリルヒドラターゼをコードする遺伝子にＰＣＲを用いてランダムに変異を導入するＥｒｒｏｒ　ｐｒｏｎｅ　ＰＣＲやＳｉｔｅ－ｄｉｒｅｃｔｅｄ　Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ等の方法を採用することができる。
　（ｂ－１）ランダム変異導入法
　変異体を用いたタンパク質の機能、性質を研究する方法の一つに、ランダム変異導入法がある。ランダム変異導入法とは、特定のタンパク質をコードする遺伝子に対してランダムな変異を導入し、変異体を作製する方法である。ＰＣＲによるランダム変異導入法では、ＤＮＡ増幅時に厳密度（ストリンジェンシー）の低い条件を設定して、塩基の変異を導入する（Ｅｒｒｏｒ　ｐｒｏｎｅ　ＰＣＲ）ことができる。
　このＥｒｒｏｒ　ｐｒｏｎｅ　ＰＣＲでは、増幅されるＤＮＡの全域に対して任意の部位に変異が導入される。そうすると、得られた任意の部位に変異が導入された変異体の機能を検討することによって、タンパク質固有の機能に重要なアミノ酸やドメインの情報を得ることができる。
　Ｅｒｒｏｒ　ｐｒｏｎｅ　ＰＣＲの鋳型となるニトリルヒドラターゼは、野生株由来のニトリルヒドラターゼ遺伝子、Ｅｒｒｏｒ　ｐｒｏｎｅ　ＰＣＲによる増幅産物であるＤＮＡを用いることができる。
　Ｅｒｒｏｒ　ｐｒｏｎｅ　ＰＣＲの反応条件としては、例えば、反応液中のｄＮＴＰ（ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＡＴＰ又はｄＴＴＰ）のいずれか１種、２種又は３種の配合割合を他のｄＮＴＰに比べて減らした組成とする条件が挙げられる。これにより、ＤＮＡ合成の際、配合割合を減らしたｄＮＴＰが必要な箇所においては、誤って他のｄＮＴＰが用いられる可能性が高くなり、変異が導入される。また、他の反応条件としては、反応液中のＭｇＣｌ２及び／又はＭｎＣｌ２量を増やした組成とする条件も好ましく挙げられる。
（ｂ－２）ロドコッカス・ロドクロウスＪ１株由来改良型ニトリルヒドラターゼ及びその遺伝子
　本発明の改良型ニトリルヒドラターゼには、表１に示す変異を導入したタンパク質をコードした遺伝子が含まれる。
　このような改良型ニトリルヒドラターゼをコードするＤＮＡは、野生型ニトリルヒドラターゼ遺伝子を基に、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ　２ｎｄ　ｅｄ．，Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ（１９８９）、Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ　Ｗｉｌｅｙ　＆　Ｓｏｎｓ（１９８７－１９９７）等に記載の部位特異的変位誘発法に従って調製することができる。ＤＮＡに変異を導入するには、Ｋｕｎｋｅｌ法やＧａｐｐｅｄ　ｄｕｐｌｅｘ法等の公知手法により、部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット、例えばＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅＴＭ　ＸＬ　Ｓｉｔｅ－Ｄｉｒｅｃｔｅｄ　Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ　Ｋｉｔ（ストラタジーン社製）、ＧｅｎｅＴａｉｌｏｒＴＭ　Ｓｉｔｅ－Ｄｉｒｅｃｔｅｄ　Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ　Ｓｙｓｔｅｍ（インビトロジェン社製）、ＴａＫａＲａ　Ｓｉｔｅ－Ｄｉｒｅｃｔｅｄ　Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｍｕｔａｎ－Ｋ、Ｍｕｔａｎ－Ｓｕｐｅｒ　Ｅｘｐｒｅｓｓ　Ｋｍ等：タカラバイオ社製）等を用いて行うことができる。
　また、本発明の遺伝子としては、当該遺伝子の塩基配列と相補的な塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡも含まれる。
　このような改良型ニトリルヒドラターゼ遺伝子は、上記の通り野性型遺伝子に変異を導入することにより得ることができるが、当該遺伝子配列若しくはその相補配列、又はこれらの断片をプローブとして、コロニーハイブリダイゼーション、プラークハイブリダイゼーション、サザンブロット等の公知のハイブリダイゼーション法により、ｃＤＮＡライブラリー及びゲノムライブラリーから得ることもできる。ライブラリーは、公知の方法で作製されたものを利用することが可能であり、市販のｃＤＮＡライブラリー及びゲノムライブラリーを利用することも可能である。
　「ストリンジェントな条件」とは、ハイブリダイゼーション後の洗浄時の条件であって塩濃度が３００～２０００ｍＭ、温度が４０～７５℃、好ましくは塩濃度が６００～９００ｍＭ、温度が６５℃の条件を意味する。例えば、２×ＳＳＣで５０℃等の条件を挙げることができる。当業者であれば、このようなバッファーの塩濃度、温度等の条件に加えて、その他のプローブ濃度、プローブの長さ、反応時間等の諸条件を加味し、本発明のニトリルヒドラターゼをコードするＤＮＡを得るための条件を適宜設定することができる。
　ハイブリダイゼーション法の詳細な手順については、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ　２ｎｄ　ｅｄ．（Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ（１９８９））等を参照することができる。ハイブリダイズするＤＮＡとしては、本発明の遺伝子ＤＮＡに対して少なくとも４０％以上、好ましくは６０％、さらに好ましくは９０％以上の同一性を有する塩基配列を含むＤＮＡ又はその部分断片が挙げられる。
　野性型ニトリルヒドラターゼのアミノ酸配列のうちの特定のアミノ酸残基を置換するアミノ酸（置換後のアミノ酸）の種類は、いずれも、置換後のアミノ酸を含むポリペプチド（タンパク質）がニトリルヒドラターゼ活性を有する範囲で適宜選択することができ、限定はされない。
（ｃ）組換えベクター、形質転換体
　ニトリルヒドラターゼ遺伝子は、形質転換される宿主生物において発現可能なように、ベクターに組み込むことが必要である。例えば、ベクターとしてはプラスミドＤＮＡ、バクテリオファージＤＮＡ、レトロトランスポゾンＤＮＡ、人工染色体ＤＮＡなどが挙げられる。
　また、本発明において使用し得る宿主は、上記組換えベクターが導入された後、目的のニトリルヒドラターゼを発現することができる限り特に限定されるものではない。例えば、大腸菌及び枯草菌等の細菌、酵母、動物細胞、昆虫細胞、植物細胞等を用いることができる。大腸菌を宿主とする場合、発現効率の高い発現ベクター、例えばｔｒｃプロモーターを有する発現ベクターｐｋｋ２３３－２（アマシャムバイオサイエンス社製）又はｐＴｒｃ９９Ａ（アマシャムバイオサイエンス社製）などを用いることが好ましい。
　ベクターには、ニトリルヒドラターゼ遺伝子のほか、プロモーター、ターミネーター、エンハンサー、スプライシングシグナル、ポリＡ付加シグナル、選択マーカー、リボソーム結合配列（ＳＤ配列）等を連結することができる。なお、選択マーカーとしては、例えばカナマイシン耐性遺伝子、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子等が挙げられる。
　細菌を宿主とする場合、例えば、エシェリヒア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉ）が挙げられ、ロドコッカス菌としては、例えばロドコッカス・ロドクロウスＡＴＣＣ１２６７４、ロドコッカス・ロドクロウスＡＴＣＣ１７８９５、ロドコッカス・ロドクロウスＡＴＣＣ１９１４０等が挙げられる。これらのＡＴＣＣ株はアメリカンタイプカルチャーコレクションから入手できる。
　ニトリルヒドラターゼを発現する形質転換体の作製に際し、宿主に大腸菌を使用した場合、発現した大部分のニトリルヒドラターゼがインクルージョンボディーとなり不溶化するため、菌体活性の低い形質転換体が得られる。一方、ロドコッカス菌を宿主として使用した場合、ニトリルヒドラターゼは可溶性画分に存在するため、高活性な形質転換体が得られる。これらの形質転換体は目的に応じて選択すれば良いが、厳しい条件で改良型酵素を選抜する場合は高活性なロドコッカス菌の形質転換体を用いるのが好ましい。
　細菌への組換えベクターの導入方法としては、細菌にＤＮＡを導入する方法であれば特に限定されるものではない。例えばカルシウムイオンを用いる方法、エレクトロポレーション法等が挙げられる。
　酵母を宿主とする場合は、例えばサッカロミセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）、ピヒア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ　ｐａｓｔｏｒｉｓ）等が用いられる。酵母への組換えベクターの導入方法としては、酵母にＤＮＡを導入する方法であれば特に限定されず、例えばエレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、酢酸リチウム法等が挙げられる。
　動物細胞を宿主とする場合は、サル細胞ＣＯＳ－７、Ｖｅｒｏ、ＣＨＯ細胞、マウスＬ細胞、ラットＧＨ３、ヒトＦＬ細胞等が用いられる。動物細胞への組換えベクターの導入方法としては、例えばエレクトロポレーション法、リン酸カルシウム法、リポフェクション法等が挙げられる。
　昆虫細胞を宿主とする場合は、Ｓｆ９細胞、Ｓｆ２１細胞等が用いられる。昆虫細胞への組換えベクターの導入方法としては、例えばリン酸カルシウム法、リポフェクション法、エレクトロポレーション法等が用いられる。
　植物細胞を宿主とする場合は、タバコＢＹ－２細胞等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。植物細胞への組換えベクターの導入方法としては、例えばアグロバクテリウム法、パーティクルガン法、ＰＥＧ法、エレクトロポレーション法等が用いられる。
（ｄ）培養物及び改良型ニトリルヒドラターゼの製造方法
　本発明において、改良型ニトリルヒドラターゼは、上記形質転換体を培養し、得られる培養物から採取することにより製造することができる。
　本発明は当該培養物から改良型ニトリルヒドラターゼを採取することを特徴とする、改良型ニトリルヒドラターゼの製造方法をも含む。
　本発明において、「培養物」とは、培養上清、培養細胞、培養菌体、又は細胞若しくは菌体の破砕物のいずれをも意味するものである。本発明の形質転換体を培養する方法は、宿主の培養に用いられる通常の方法に従って行われる。目的の改良型ニトリルヒドラターゼは、上記培養物中に蓄積される。
　本発明の形質転換体を培養する培地は、宿主菌が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、形質転換体の培養を効率的に行うことができる培地であれば、天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。炭素源としては、グルコース、ガラクトース、フラクトース、スクロース、ラフィノース及びデンプン等の炭水化物、酢酸及びプロピオン酸等の有機酸、エタノール及びプロパノール等のアルコール類が挙げられる。窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム及びリン酸アンモニウム等の無機酸、若しくは有機酸のアンモニウム塩、又はその他の含窒素化合物が挙げられる。
　その他、ペプトン、酵母エキス、肉エキス、コーンスティープリカー、各種アミノ酸等を用いてもよい。無機物としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸亜鉛、硫酸銅、炭酸カルシウム等が挙げられる。また、必要に応じ、培養中の発泡を防ぐために消泡剤を添加してもよい。さらに、培地にはニトリルヒドラターゼの補欠分子であるコバルトイオンや鉄イオンを添加し、酵素の誘導剤となるニトリル類やアミド類を添加してもよい。
　培養中、ベクター及び目的遺伝子の脱落を防ぐために選択圧を掛けた状態で培養してもよい。すなわち、選択マーカーが薬剤耐性遺伝子である場合に相当する薬剤を培地に添加したり、選択マーカーが栄養要求性相補遺伝子である場合に相当する栄養因子を培地から除いたりしてもよい。
　また、選択マーカーが資化性付与遺伝子である場合は、相当する資化因子を必要に応じて唯一因子として添加することができる。例えば、アンピシリン耐性遺伝子を含むベクターで形質転換した大腸菌を培養する場合、培養中、必要に応じてアンピシリンを添加してもよい。
　プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した形質転換体を培養する場合は、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、イソプロピル－β－Ｄ－チオガラクトシド（ＩＰＴＧ）で誘導可能なプロモーターを有する発現ベクターで形質転換した形質転換体を培養するときには、ＩＰＴＧ等を培地に添加することができる。また、インドール酢酸（ＩＡＡ）で誘導可能なｔｒｐプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した形質転換体を培養するときには、ＩＡＡ等を培地に添加することができる。
　形質転換体の培養条件は、目的の改良型ニトリルヒドラターゼの生産性及び宿主の生育が妨げられない条件であれば特段限定されるものではないが、通常、１０℃～４０℃、好ましくは２０℃～３７℃で５～１００時間行う。ｐＨの調製は、無機又は有機酸、アルカリ溶液等を用いて行い、例えば大腸菌であれば６～９に調製する。
　培養方法としては、固体培養、静置培養、振盪培養、通気攪拌培養などが挙げられるが、特に大腸菌形質転換体を培養する場合には、振盪培養又は通気攪拌培養（ジャーファーメンター）により好気的条件下で培養することが好ましい。
　上記培養条件で培養すると、高収率で本発明の改良型ニトリルヒドラターゼを上記培養物中、すなわち、培養上清、培養細胞、培養菌体、又は細胞若しくは菌体の破砕物の少なくともいずれかに蓄積することができる。
　培養後、改良型ニトリルヒドラターゼが菌体内又は細胞内に生産される場合には、菌体又は細胞を破砕することにより、目的の改良型ニトリルヒドラターゼを採取することができる。菌体又は細胞の破砕方法としては、フレンチプレス又はホモジナイザーによる高圧処理、超音波処理、ガラスビーズ等による磨砕処理、リゾチーム、セルラーゼ又はペクチナーゼ等を用いる酵素処理、凍結融解処理、低張液処理、ファージによる溶菌誘導処理等を利用することができる。
　破砕後、必要に応じて菌体又は細胞の破砕残渣（細胞抽出液不溶性画分を含む）を除くことができる。残渣を除去する方法としては、例えば、遠心分離やろ過などが挙げられ、必要に応じて、凝集剤やろ過助剤等を使用して残渣除去効率を上げることもできる。残渣を除去した後に得られた上清は、細胞抽出液可溶性画分であり、粗精製した改良型ニトリルヒドラターゼ溶液とすることができる。
　また、改良型ニトリルヒドラターゼが菌体内又は細胞内に生産される場合、菌体や細胞そのものを遠心分離、膜分離等で回収して、未破砕のまま使用することも可能である。
　改良型ニトリルヒドラターゼが菌体外又は細胞外に生産される場合には、培養液をそのまま使用するか、遠心分離やろ過等により菌体又は細胞を除去する。その後、必要に応じて硫安沈澱による抽出等により前記培養物中から改良型ニトリルヒドラターゼを採取し、さらに必要に応じて透析、各種クロマトグラフィー（ゲルろ過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィー等）を用いて単離精製することもできる。
　形質転換体を培養して得られたニトリルヒドラターゼの生産収率は、例えば、培養液あたり、菌体湿重量又は乾燥重量あたり、粗酵素液タンパク質あたりなどの単位で、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ（ポリアクリルアミドゲル電気泳動）やニトリルヒドラターゼ活性測定などにより確認することができるが、特段限定されるものではない。ＳＤＳ－ＰＡＧＥは当業者であれば公知の方法を用いて行うことができる。また、ニトリルヒドラターゼ活性は、上述した活性の値を適用することができる。
　また、本発明においては、生細胞を全く使用することなく、無細胞タンパク質合成系を採用して改良型ニトリルヒドラターゼを産生することが可能である。
　無細胞タンパク質合成系とは、細胞抽出液を用いて試験管等の人工容器内でタンパク質を合成する系である。なお、本発明において使用される無細胞タンパク質合成系には、ＤＮＡを鋳型としてＲＮＡを合成する無細胞転写系も含まれる。
　この場合、上記の宿主に対応する生物は、下記の細胞抽出液の由来する生物に相当する。ここで、上記細胞抽出液は、真核細胞由来又は原核細胞由来の抽出液、例えば、小麦胚芽、大腸菌などの抽出液を使用することができる。なお、これらの細胞抽出液は濃縮されたものであっても濃縮されていないものであってもよい。
　細胞抽出液は、例えば限外濾過、透析、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）沈殿等によって得ることができる。さらに本発明において、無細胞タンパク質合成は、市販のキットを用いて行うこともできる。そのようなキットとしては、例えば試薬キットＰＲＯＴＥＩＯＳＴＭ（東洋紡）、ＴＮＴＴＭ　Ｓｙｓｔｅｍ（プロメガ）、合成装置のＰＧ－ＭａｔｅＴＭ（東洋紡）、ＲＴＳ（ロシュ・ダイアグノスティクス）などが挙げられる。
　上記のように無細胞タンパク質合成によって得られる改良型ニトリルヒドラターゼは、前述のように適宜クロマトグラフィーを選択して、精製することができる。
２．アミド化合物の製造方法
　上述のように製造された改良型ニトリルヒドラターゼは、酵素触媒として物質生産に利用することができる。例えば、ニトリル化合物に、上記改良型ニトリルヒドラターゼを接触させることにより、アミド化合物を生成する。そして、接触により生成されるアミド化合物を採取する。これにより、アミド化合物を製造することができる。
　酵素触媒としては、前述のように分離精製されたニトリルヒドラターゼを使用することができる。また、前述のように適当な宿主内で改良型ニトリルヒドラターゼ遺伝子が発現するように遺伝子導入を行い、宿主を培養した後の培養物、又は当該培養物の処理物を利用することができる。処理物としては、例えば、培養後の細胞をアクリルアミド等のゲルで包含したもの、グルタルアルデヒドで処理したもの、アルミナ、シリカ、ゼオライト及び珪藻土等の無機担体に担持したもの等が挙げられる。
　ここで、「接触」とは、改良型ニトリルヒドラターゼとニトリル化合物を同一の反応系又は培養系に存在させることを意味し、例えば、分離精製した改良型ニトリルヒドラターゼとニトリル化合物を混合すること、改良型ニトリルヒドラターゼ遺伝子を発現する細胞の培養容器にニトリル化合物を添加すること、当該細胞をニトリル化合物の存在下で培養すること、当該細胞の抽出液をニトリル化合物と混合することなどが含まれる。
　基質として使用されるニトリル化合物は、酵素の基質特異性、酵素の基質に対する安定性等を考慮して選択される。ニトリル化合物としては、アクリロニトリルが好ましい。反応方法、及び反応終了後のアミド化合物の採取方法は、基質及び酵素触媒の特性により適宜選択される。
　酵素触媒は、その活性が失活しない限り、リサイクル使用することが好ましい。失活の防止やリサイクルを容易にすることに鑑み、酵素触媒は処理物の形態で使用されることが好ましい。
　以下に、実施例を挙げて本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
　改良型ニトリルヒドラターゼ遺伝子の取得と評価（１）
（１）変異遺伝子ライブラリーの構築
　鋳型としたプラスミドとしては、βサブユニットのアミノ酸配列（配列番号２）のＮ末端のアミノ酸残基から数えて１６７残基下流のアミノ酸残基がアスパラギン（Ｎ）からセリン（Ｓ）に変異し、かつ、上記Ｎ末端のアミノ酸残基から数えて２１９残基下流のアミノ酸残基がバリン（Ｖ）からアラニン（Ａ）に変異し、かつ、上記Ｎ末端のアミノ酸残基から数えて５７残基下流のアミノ酸残基がセリン（Ｓ）からメチオニン（Ｍ）に変異し、かつ、上記Ｎ末端のアミノ酸残基から数えて１１４残基下流のアミノ酸残基がリジン（Ｋ）からチオｒシン（Ｙ）に変異し、かつ、上記Ｎ末端のアミノ酸残基から数えて１０７残基下流のアミノ酸残基がスレオニン（Ｔ）からリジン（Ｋ）に変異したプラスミドｐＥＲ８５５（特開２０１０－１７２２９５参照）の改変物であるｐＥＲ８５５Ａ（図１）を用いた。
　ベクターとして用いたｐＳＪ０３４はロドコッカス菌においてニトリルヒドラターゼを発現するプラスミドであり、ｐＳＪ０２３より特開平１０－３３７１８５号公報に示す方法で作製した。なお、ｐＳＪ０２３は形質転換体「Ｒ．ｒｈｏｄｏｃｈｒｏｕｓ　ＡＴＣＣ１２６７４／ｐＳＪ０２３」であり、受託番号ＦＥＲＭ　ＢＰ－６２３２として独立行政法人産業技術総合研究所　特許生物寄託センター（茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に平成９（１９９７）年３月４日付けで国際寄託されている。
　先ず、ニトリルヒドラターゼ遺伝子への変異導入を下記の手法で行った。
　＜ＰＣＲ反応液組成＞
滅菌水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　２０μｌ
ｐＥＲ８５５Ａ　（１ｎｇ／ｍｌ）　　　　　　　　　　１μｌ
Ｆｏｒｗａｒｄ　Ｐｒｉｍｅｒ　（１０ｍＭ）　　　　　２μｌ
Ｒｅｖｅｒｓｅ　Ｐｒｉｍｅｒ　（１０ｍＭ）　　　　　２μｌ
ＰｒｉｍｅＳＴＡＲ　ＭＡＸ　（２×）　　　　　　　２５μｌ
５０μｌ
　＜ＰＣＲ反応条件＞
（９８℃　１０秒、５５℃　５秒、７２℃で９０秒）×３０サイクル
　＜プライマー＞β１７の飽和変異プライマー
β１７ＲＭ－Ｆ    ｇｇａｔａｃｇｇａｃｃｇｇｔｃＮＮＳｔａｔｃａｇａａｇｇａｃｇａｇ　（配列番号５）
β１７ＲＭ－Ｒ    ｃｔｃｇｔｃｃｔｔｃｔｇａｔａＳＮＮｇａｃｃｇｇｔｃｃｇｔａｔｃｃ　（配列番号６）
　＜反応条件＞
　　（９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、７２℃で３分）×３０サイクル
　ＰＣＲ終了後、反応液５μｌを０．７％アガロースゲル電気泳動に供し、１１ｋｂの増幅断片を確認し、１μｌのＤｐｎＩ（キットに付属）をＰＣＲ反応液に添加して３７℃で１時間反応させ、鋳型プラスミドの除去を行った。反応終了液をＷｉｚａｒｄ　ＳＶ　Ｇｅｌ　ａｎｄ　ＰＣＲ　Ｃｌｅａｎ－Ｕｐ　Ｓｙｓｔｅ（プロメガ株式会社）で精製し、精製したＰＣＲ反応物を用いてＪＭ１０９に形質転換した。得られたコロニー数千個をプレートから回収し、ＱＩＡｐｒｅｐ　Ｓｐｉｎ　Ｍｉｎｉｐｒｅｐ　Ｋｉｔ（キアゲン社）を用いてプラスミドＤＮＡを抽出、変異遺伝子ライブラリーとした。
（２）ロドコッカス菌形質転換体の作製
　ロドコッカス・ロドクロウス　ＡＴＣＣ１２６７４株の対数増殖期の細胞を遠心分離器により集菌し、氷冷した滅菌水にて３回洗浄し、滅菌水に懸濁した。上記（１）で調製したプラスミド１μｌと菌体懸濁液１０μｌを混合して氷冷し、キュベットにプラスミドＤＮＡと菌体の懸濁液を入れ、遺伝子導入装置　Ｇｅｎｅ　Ｐｕｌｓｅｒ　ＩＩ（ＢＩＯ　ＲＡＤ）により２．０ＫＶ、２００　ＯＨＭＳで電気パルス処理を行った。
　電気パルス処理液の入ったキュベットを氷冷下１０分間静置し、３７℃で１０分間ヒートショクを行った。その後、キュベットにＭＹＫ培地（０．５％ポリペプトン、０．３％バクトイーストエキス、０．３％バクトモルトエキス、０．２％Ｋ２ＨＰＯ４、０．２％ＫＨ２ＰＯ４）５００μｌを加え、３０℃、５時間静置した後、５０μｇ／ｍｌカナマイシン入りＭＹＫ寒天培地に塗布した。３０℃、３日間培養後のコロニーを形質転換体とした。同様に比較株としてｐＥＲ８５５Ａの形質転換体を作製した。
（３）ロドコッカス菌形質転換体のアミド処理
　スクリーニングには、上記（２）で得られたニトリルヒドラターゼ遺伝子を含むロドコッカス菌形質転換体、及び比較株であるＡＴＣＣ１２６７４／ｐＥＲ８５５Ａを使用した。ＧＧＰＫ培地（１．５％グルコース、１％グルタミン酸ナトリウム、０．１％酵母エキス、０．０５％Ｋ２ＨＰＯ４、０．０５％ＫＨ２ＰＯ４、０．０５％ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、１％ＣｏＣｌ２、０．１％尿素、５０μｇ／ｍｌカナマイシン、ｐＨ７．２）を１ｍｌずつ入れた９６穴ディープウェルプレートに上記菌株を各々接種し、３０℃で３日間液体培養した。
　次に、得られた培養液の３０μｌを９６穴プレートに分注し、遠心分離によって培地を除き、最後に５０％アクリルアミド溶液を４０μｌ添加し、菌を懸濁した。高濃度アクリルアミド溶液に懸濁した形質転換体をインキュベーター中に置き、５０℃の温度下、３０分間の加熱処理で比較となる比較株を完全に失活させた。残存ニトリルヒドラターゼ活性は下記の方法で測定した。
　先ず、アクリルアミド処理をした形質転換体を５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）で洗浄し、以下の方法で活性測定を行った。試験管に洗浄した形質転換体と５０ｍＭ　リン酸緩衝液（ｐＨ７．０）を添加し、３０℃で１０分間プレインキュベートし、等量の５％アクリロニトリル溶液（ｐＨ７．０）を添加して１０分間反応させ、１Ｍリン酸を１／１０量添加することにより反応を停止させた。次に停止させた反応液から遠心分離によって形質転換体を除き、適当な濃度に希釈してＨＰＬＣにより分析した（ＷＡＫＯＳＩＬ　５Ｃ８（和光純薬社）２５０ｍｍ、５ｍＭリン酸を含んだ１０％アセトニトリル、移動相の流速１ｍｌ／ｍｉｎ及び紫外吸収検出器波長２６０ｎｍ）。尚、比較対照としてアクリルアミド処理を行わない各々の無処理菌を用いて活性測定を行い、得られた活性値を基準として、アクリルアミド処理後の残存活性を求めた。
　上記の方法で変異導入したニトリルヒドラターゼ遺伝子を有する数百個の形質転換体の中から、表３に示す高濃度アクリルアミドに耐性を有する変異酵素を４株選抜した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
（４）塩基配列の確認
　ニトリルヒドラターゼ遺伝子の塩基配列の確認をするため、得られた選抜株からプラスミドを回収した。ロドコッカス形質転換体を、１０ｍｌのＭＹＫ培地（ポリペプトン０．５％、バクトイーストエキス０．３％、マルツエキス０．３％、グルコース１％、カナマイシン５０μｇ／ｍｌ）に植菌した。２４時間培養した後に終濃度２％となるように滅菌した２０％グリシン溶液を添加し、さらに２４時間培養した。その後、遠心分離により菌体を回収し、菌体をＴＥＳ（１０ｍＭＴｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８）－１０ｍＭＮａＣｌ－１ｍＭＥＤＴＡ）緩衝液で洗浄後、２ｍｌの５０ｍＭＴｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８）－１２．５％シュークロース－１００ｍＭＮａＣｌ－１ｍｇ／ｍｌリゾチームに懸濁し、３７℃にて３時間振盪した。これに０．４ｍｌの１０％ＳＤＳを加え室温で穏やかに１時間振盪し、さらに２．１ｍｌの５Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．２）を添加し氷中で１時間静置した。その後、４℃にて１０，０００ｘｇ、１時間遠心し上清を得た。これに５倍量のエタノールを加え、－２０℃で３０分静置した後、１０，０００ｘｇ、２０分間遠心した。沈澱物を１０ｍｌの７０％エタノールで洗浄した後、１００μｌのＴＥ緩衝液に溶解しＤＮＡ溶液を得た。
　次に、ニトリルヒドラターゼを含む配列をＰＣＲ法で増幅した。
　＜ＰＣＲ反応液組成＞
　　鋳型プラスミド　　　　　　　　　　　　　　　　　　１μｌ
　　１０×　ＰＣＲ　Ｂｕｆｆｅｒ（ＮＥＢ社製）　　　１０μｌ
　　プライマーＮＨ－１９（５０μＭ）　　　　　　　　　１μｌ
　　プライマーＮＨ－２０（５０μＭ）　　　　　　　　　１μｌ
　　２．５ｍＭ　ｄＮＴＰｍｉｘ　　　　　　　　　　　　８μｌ
　　滅菌水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　７９μｌ
　　Ｔａｑ　ＤＮＡポリメラーゼ（ＮＥＢ社製）　　　　　１μｌ
　＜プライマー＞
ＮＨ－１９　ＧＣＣＴＣＴＡＧＡＴＡＴＣＧＣＣＡＴＴＣＣＧＴＴＧＣＣＧＧ（配列番号７）
ＮＨ－２０　ＡＣＣＣＴＧＣＡＧＧＣＴＣＧＧＣＧＣＡＣＣＧＧＡＴＧＣＣＣＡＣ（配列番号８）
　＜反応条件＞
　　（９４℃で３０秒、６５℃で３０秒、７２℃で３分）×３０サイクル。
　ＰＣＲ終了後、反応液５μｌを０．７％アガロースゲル電気泳動に供し、２．５ｋｂのＰＣＲ増幅産物の検出を行った。ＰＣＲ反応液はＥｘｏ－ＳＡＰ処理（アマシャムファルマシア）後、サイクルシークエンシング法により配列解析用サンプルを調製し、Ｂｅｃｋｍａｎ　ＣＥＱ－２０００ＸＬで解析を行った。結果を表４に示す。

Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
（５）アミド化合物耐性の評価
　（４）で取得した改良型ニトリルヒドラターゼのアミド化合物耐性を以下の手法で実施した。
　ＡＴＣＣ１２６７４／ｐＥＲ８５５Ａと、上記（２）の工程で得られた各形質転換体を１０ｍｌのＭＹＫ培地（５０μｇ／ｍｌカナマイシン）にそれぞれ接種し、３０℃にて２日間振盪培養し、１００ｍｌのＧＧＰＫ培地（１．５％グルコース、１％グルタミン酸ナトリウム、０．１％酵母エキス、０．０５％Ｋ２ＨＰＯ４、０．０５％ＫＨ２ＰＯ４、０．０５％ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、１％ＣｏＣｌ２、０．１％尿素、５０μｇ／ｍｌカナマイシン、ｐＨ７．２）に１％植菌を行った。３０℃で３日間振盪培養し、遠心分離により集菌した。
　得られた培養菌体の酵素活性は下記の方法で行った。菌体液０．２ｍｌと５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）４．８ｍｌとを混合し、さらに５．０％（ｗ／ｖ）のアクリロニトリルを含む５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）５ｍｌを混合液に加えて、１０℃で１０分間振盪しながら反応させた。次いで、菌体を濾別して、ガスクロマトグラフィーを用いて生成したアクリルアミドの量を定量した。
　＜分析条件＞
　分析機器：　ガスクロマトグラフＧＣ－１４Ｂ（島津製作所製）
　検出器：　ＦＩＤ（検出２００℃）
　カラム：　ポラパックＰＳ（ウォーターズ社製カラム充填剤）を充填した１ｍガラスカラム
　カラム温度：　１９０℃
　アクリルアミドの量からニトリルヒドラターゼ活性を換算した。ここで、ニトリルヒドラターゼ活性は、１分間に１μｍｏｌのアクリルアミドを生成する酵素量を１Ｕと定義する。
　次に、下記反応液組成及び反応条件で実験を行った。なお、反応に用いる各菌体懸濁液は、事前に測定した酵素活性から同一の活性量になるように１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）で適宜希釈した。比較対照として、比較株であるＡＴＣＣ１２６７４／　ｐＥＲ８５５Ａを使用した。
　＜反応液組成＞
　　５０％アクリルアミド溶液　　　　　　　　　　　　９４ｇ
　　アクリロニトリル　　　　　　　　　　　　　　　　　４ｇ
　　１Ｍリン酸緩衝液　　　　　　　　　　　　　　　　　１ｇ
　　菌液（同一の酵素活性単位（Ｕ）量）
　＜反応条件＞
　　攪拌しながら５時間反応（３０℃）
　反応開始前（０時間）、５時間後にそれぞれ反応液１ｍｌをサンプリングし、０．４５μｍのフィルターを用いて濾過し、得られた濾液をガスクロマトグラフィーに供した。残存するアクリロニトリルの割合（％）の分析結果を表５に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　上記結果より全ての改良型ニトリルヒドラターゼは、比較例であるｐＥＲ８５５Ａよりもアクリロニトリルの消費率が１０３％を超えていた。よって、改良型ニトリルヒドラターゼは、高濃度のアクリルアミド存在下でもニトリルヒドラターゼ活性が維持されていることから、アクリルアミドに対する耐性が向上していると言える。
改良型ニトリルヒドラターゼ遺伝子の取得と評価（２）
（１）ニトリルヒドラターゼへの変異導入と選抜
　実施例１で取得したｐＦＲ００５を鋳型として、さらにアクリルアミド耐性の向上した改良型ニトリルヒドラターゼの取得を試みた。使用したプライマーのみを変更し、実施例１と同様の手法（変異導入、ロドコッカス形質転換体の作成、ロドコッカス菌形質転換体のアミド処理方法、塩基配列の確認）を実施し、表６に選抜された変異酵素を取得した。
＜プライマー＞
β１５の飽和変異プライマー
β１５ＲＭ－Ｆ：ａｔｇａｃｃｇｇａｔａｃｇｇａＮＮＳｇｔｃｃｃｃｔａｔｃａｇａａｇ（配列９）
β１５ＲＭ－Ｒ：ｃｔｔｃｔｇａｔａｇｇｇｇａｃＳＮＮｔｃｃｇｔａｔｃｃｇｇｔｃａｔ（配列１０）
 
β９５の飽和変異プライマー
β９５ＲＭ－Ｆ：ａｃｃｇａａｇａａｇａｇｃｇａＮＮＳｃａｃｃｇｔｇｔｇｃａａｇａｇ（配列１１）
β９５ＲＭ－Ｒ：ｃｔｃｔｔｇｃａｃａｃｇｇｔｇＳＮＮｔｃｇｃｔｃｔｔｃｔｔｃｇｇｔ（配列１２）
 
β１０５の飽和変異プライマー
β１０５ＲＭ－Ｆ：ＧＡＧＡＴＣＣＴＴＧＡＧＧＧＴＮＮＳＴＡＣＡＣＧＧＡＣＡＧＧ（配列１３）
β１０５ＲＭ－Ｒ：ＣＣＴＧＴＣＣＧＴＧＴＡＳＮＮＡＣＣＣＴＣＡＡＧＧＡＴＣＴＣ（配列１４）
 
β１３３の飽和変異プライマー
β１３３ＲＭ－Ｆ：ｃａｃｇａｇｃｃｃｃａｃｔｃｃＮＮＳｇｃｇｃｔｔｃｃａｇｇａｇｃｇ（配列１５）
β１３３ＲＭ－Ｒ：ｃｇｃｔｃｃｔｇｇａａｇｃｇｃＳＮＮｇｇａｇｔｇｇｇｇｃｔｃｇｔｇ（配列１６）
 
β１４４の飽和変異プライマー
β１４４ＲＭ‐Ｆ：ｇｇａｇｃｃｇａｇｔｔｔｃｔｃｔＮＮＳｇｇｔｇａｃａａｇａｔｃ（配列１７）
β１４４ＲＭ‐Ｒ：ｇａｔｃｔｔｇｔｃａｃｃＳＮＮａｇａｇａａａｃｔｃｇｇｃｔｃｃ（配列１８）
 
β１６８の飽和変異プライマー
β１６８ＲＭ－ＦｃｇａａａｔａｔｇｔｇｃｇｇａｇｃＮＮＳａｔｃｇｇｇｇａａａｔｃｇ（配列１９）
β１６８ＲＭ－ＲｃｇａｔｔｔｃｃｃｃｇａｔＳＮＮｇｃｔｃｃｇｃａｃａｔａｔｔｔｃｇ（配列２０）
 
β１９０の飽和変異プライマー
β１９０ＲＭ－Ｆ：ｇａｇｃａｇｃｔｃｃｇｃｃｇｇｃｃｔｃＮＮＳｇａｃｇａｔｃｃｔｃｇ（配列２１）
β１９０ＲＭ－Ｒ：ｃｇａｇｇａｔｃｇｔｃＳＮＮｇａｇｇｃｃｇｇｃｇｇａｇｃｔｇｃｔｃ（配列２２）
 
α１２４の飽和変異プライマー
α１２４ＲＭ－Ｆ：ｇｔａｃａａｇａｇｃａｔｇＮＮＳｔａｃｃｇｇｔｃｃｃｇａｇｔｇｇ（配列２３）
α１２４ＲＭ－Ｒ：ｃｃａｃｔｃｇｇｇａｃｃｇｇｔａＳＮＮｃａｔｇｃｔｃｔｔｇｔａｃ（配列２４）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
（２）性能評価
　取得した改良型ニトリルヒドラターゼの性能評価を実施例１（５）と同様の手法で実施した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　上記結果より、全ての改良型ニトリルヒドラターゼは、比較例であるｐＥＲ８５５Ａよりもアクリロニトリルの消費率が１１７％を超えていた。よって、改良型ニトリルヒドラターゼは、高濃度のアクリルアミド存在下でもニトリルヒドラターゼ活性が維持されていることから、アクリルアミドに対する耐性が向上していると言える。
　改良型ニトリルヒドラターゼ遺伝子の取得と評価（３）
（１）ニトリルヒドラターゼへの変異導入と選抜
　実施例２で取得したｐＦＲ１０８Ａを鋳型として、さらにアクリルアミド耐性の向上した改良型ニトリルヒドラターゼの取得を試みた。使用したプライマーのみを変更し、実施例１と同様の手法（変異導入、ロドコッカス形質転換体の作成、ロドコッカス菌形質転換体のアミド処理方法、塩基配列の確認）を実施し、表８に選抜された変異酵素を取得した。尚、改良型ニトリルヒドラターゼを有する形質転換体の選抜は、５５℃の温度下、６０分間の熱処理を行い、それ以外は実施例１と同様の方法で行なった。
＜プライマー＞
α１７４の飽和変異プライマー
α１７４ＲＭ－Ｆ：ｇｃｃｇｇｃａｃｃｇａｃＮＮＳｔｇｇｔｃｃｇａｇｇａｇ（配列２５）
α１７４ＲＭ－Ｒ：ｃｔｃｃｔｃｇｇａｃｃａＳＮＮｇｔｃｇｇｔｇｃｃｇｇｃ（配列２６）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
（２）性能評価
　取得した改良型ニトリルヒドラターゼの性能評価を実施例１（５）と同様の手法で実施した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　上記結果より、全ての改良型ニトリルヒドラターゼは、比較例であるｐＥＲ８５５Ａよりもアクリロニトリルの消費率が１２４％を超えていた。よって、改良型ニトリルヒドラターゼは、高濃度のアクリルアミド存在下でもニトリルヒドラターゼ活性が維持されていることから、アクリルアミドに対する耐性が向上していると言える。
（１）ニトリルヒドラターゼへの変異導入と選抜
　実施例２で取得したｐＦＲ２１１を鋳型として、さらにアクリルアミド耐性の向上した改良型ニトリルヒドラターゼの取得を試みた。使用したプライマーのみを変更し、実施例３と同様の手法（変異導入、ロドコッカス形質転換体の作成、ロドコッカス菌形質転換体のアミド処理方法、塩基配列の確認）を実施し、表１０に選抜された変異酵素を取得した。
＜プライマー＞
β９５の飽和変異プライマー
β９５ＲＭ－Ｆ：ａｃｃｇａａｇａａｇａｇｃｇａＮＮＳｃａｃｃｇｔｇｔｇｃａａｇａｇ（配列２７）
β９５ＲＭ－Ｒ：ｃｔｃｔｔｇｃａｃａｃｇｇｔｇＳＮＮｔｃｇｃｔｃｔｔｃｔｔｃｇｇｔ（配列２８）
 
β１１２の飽和変異プライマー
β１１２ＲＭ－Ｆ：ＧＡＣＡＧＧＡＡＧＣＣＧＮＮＳＣＧＧＡＡＧＴＴＣＧＡＴＣＣＧ（配列２９）
β１１２ＲＭ－Ｒ：ＣＧＧＡＴＣＧＡＡＣＴＴＣＣＧＳＮＮＣＧＧＣＴＴＣＣＴＧＴＣ（配列３０）
 
β２１８の飽和変異プライマー
β２１８ＲＭ－Ｆ：ｇｇｇａａａｇａｃｇｔａｇｔｇＮＮＳｇｃｃｇａｔｃｔｃｔｇｇｇａａ（配列３１）
β２１８ＲＭ－Ｒ：ｔｔｃｃｃａｇａｇａｔｃｇｇｃＳＮＮｃａｃｔａｃｇｔｃｔｔｔｃｃｃ（配列３２）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
（２）性能評価
　取得した改良型ニトリルヒドラターゼの性能評価を実施例１（５）と同様の手法で実施した。結果を表１１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　上記結果より、全ての改良型ニトリルヒドラターゼは、比較例であるｐＥＲ８５５Ａよりもアクリロニトリルの消費率が１２５％を超えていた。よって、改良型ニトリルヒドラターゼは、高濃度のアクリルアミド存在下でもニトリルヒドラターゼ活性が維持されていることから、アクリルアミドに対する耐性が向上していた。
（１）ｐＦＲ３０６Ａの作製
　実施例４で取得したｐＦＲ３０６を鋳型として、Ｌβ１４４Ｓを野生型アミノ酸に置換した改良型ニトリルヒドラターゼを作製した。方法としては、下記のプライマーを使用し、実施例１と同様の方法でロドコッカス形質転換体を作製した。
＜プライマー＞
β１４４の変異を野生型に戻す
Ｆ＿Ｓβ１４４Ｌ－Ｆ：ＴＴＣＴＣＴＣＴＣＧＧＴＧＡＣＡＡＧＡＴＣＡＡＡＧＴＧ（配列３３）
Ｆ＿Ｓβ１４４Ｌ－Ｒ：ＧＴＣＡＣＣＧＡＧＡＧＡＧＡＡＡＣＴＣＧＧＣＴＣＣＧＣ（配列３４）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
（２）耐熱性の評価
　本発明で取得した改良型ニトリルヒドラターゼの性能評価を下記の手法で実施した。
　表１３に示す変異ニトリルヒドラターゼ遺伝子を含む形質転換体を実施例１（５）の方法で培養し、耐熱性の評価に用いた。得られた培養物を５０ｍＭリン酸緩衝液で適宜希釈し、７０℃のウォーターバスで１０分間熱処理に供した後、残存ニトリルヒドラターゼ活性の測定を行った。活性測定は実施例１（５）記載の方法に従った。比較対照として熱処理を行わず４℃で保冷したものをそれぞれの無処理菌として残存活性を求めた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
　比較例のｐＥＲ８５５Ａの残活性を１（１１％）とした時、改良型ニトリルヒドラターゼの残活性はいずれも３倍（３０％）を超えていた。よって、改良型ニトリルヒドラターゼの耐熱性は向上していた。
　実施例５で得た下記の形質転換体を用いて、高温反応時のアクリルアミド蓄積性を評価した。
　フタ付きのプラスチックチューブに１０ｍｌの５０ｍＭリン酸緩衝液と、仕込み活性量を併せて形質転換体を添加し、４０℃のウォーターバス中で振とうしながら１０分間プレインキュベートを行った。次にアクリロニトリルを各反応液に１ｍｌ添加して反応をスタートし、以後は所定の時間（２０分、４０分、時間、１時間３０分、２時間）に１ｍｌずつアクリロニトリを逐次添加しながら反応を継続し、反応３時間後の反応液をフィルターろ過し、ろ過液のアクリルアミド濃度をガスクロマトグラフィーで測定した。
　実験の結果、比較例のｐＥＲ８５５Ａは３２％のアクリルアミドが蓄積したのに対し、何れの改良型ニトリルヒドラターゼも４０％を超えるアクリルアミドが蓄積した。よって、改良型ニトリルヒドラターゼは高温蓄積性が向上していた。
　本発明により、改良型ニトリルヒドラターゼが提供される。本発明の改良型ニトリルヒドラターゼは、耐熱性、アミド化合物耐性及び高温蓄積性が向上している。このため、本発明の改良型ニトリルヒドラターゼを用いることで、ニトリル化合物からアミド化合物を効率良く製造することができる。
［配列表の説明］
配列番号１：Ｊ１菌由来のニトリルヒドラターゼβサブユニットの塩基配列
配列番号２：Ｊ１菌由来のニトリルヒドラターゼβサブユニットのアミノ酸配列
配列番号３：Ｊ１菌由来のニトリルヒドラターゼαサブユニットの塩基配列
配列番号４：Ｊ１菌由来のニトリルヒドラターゼαサブユニットのアミノ酸配列
配列番号５：β１７の飽和変異プライマー
配列番号６：β１７の飽和変異プライマー
配列番号７：ＮＨ－１９プライマー
配列番号８：ＮＨ－２０プライマー
配列番号９：β１５の飽和変異プライマー
配列番号１０：β１５の飽和変異プライマー
配列番号１１：β９５の飽和変異プライマー
配列番号１２：β９５の飽和変異プライマー
配列番号１３：β１０５の飽和変異プライマー
配列番号１４：β１０５の飽和変異プライマー
配列番号１５：β１３３の飽和変異プライマー
配列番号１６：β１３３の飽和変異プライマー
配列番号１７：β１４４の飽和変異プライマー
配列番号１８：β１４４の飽和変異プライマー
配列番号１９：β１６８の飽和変異プライマー
配列番号２０：β１６８の飽和変異プライマー
配列番号２１：β１９０の飽和変異プライマー
配列番号２２：β１９０の飽和変異プライマー
配列番号２３：α１２４の飽和変異プライマー
配列番号２４：α１２４の飽和変異プライマー
配列番号２５：α１７４の飽和変異プライマー
配列番号２６：α１７４の飽和変異プライマー
配列番号２７：β９５の飽和変異プライマー
配列番号２８：β９５の飽和変異プライマー
配列番号２９：β１１２の飽和変異プライマー
配列番号３０：β１１２の飽和変異プライマー
配列番号３１：β２１８の飽和変異プライマー
配列番号３２：β２１８の飽和変異プライマー
配列番号３３：β１４４の変異を野生型に戻すプライマー
配列番号３４：β１４４の変異を野生型に戻すプライマー
配列番号３５：Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ　Ｍ８のβサブユニット
配列番号３６：Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ　ｒｕｂｅｒ　ＴＨのβサブユニット
配列番号３７：Ｒ．ｐｙｒｉｄｉｎｏｖｏｒａｎｓ　ＭＷ３のβサブユニット
配列番号３８：Ｒ．ｐｙｒｉｄｉｎｏｖｏｒａｎｓ　Ｓ８５－２のβサブユニット
配列番号３９：Ｒ．ｐｙｒｉｄｉｎｏｖｏｒａｎｓ　ＭＳ－３８のβサブユニット
配列番号４０：Ｎｏｃａｒｄｉａ　ｓｐ　ＪＢＲｓのβサブユニット
配列番号４１：Ｎｏｃａｒｄｉａ　ＹＳ－２００２のβサブユニット
配列番号４２：Ｒ．ｒｈｏｄｏｃｒｏｕｓ　ＡＴＣＣ３９３８４のβサブユニット
配列番号４３：ｕｎｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ＳＰ１のβサブユニット
配列番号４４：ｕｎｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ＢＤ２のβサブユニット
配列番号４５：Ｃｏｍａｍｏｎａｓ　ｔｅｓｔｏｓｔｅｒｏｎｉのβサブユニット
配列番号４６：Ｇ．ｔｈｅｒｍｏｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｉｕｓ　Ｑ６のβサブユニット
配列番号４７：Ｐ．ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌａ　ＪＣＭ３０９５のβサブユニット
配列番号４８：Ｒ．ｒｈｏｄｏｃｒｏｕｓ　Ｃｒ４　のβサブユニット
配列番号４９：Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ　Ｍ８のαサブユニット
配列番号５０：Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ　ｒｕｂｅｒ　ＴＨ    αサブユニット
配列番号５１：Ｒ．ｐｙｒｉｄｉｎｏｖｏｒａｎｓ　ＭＷ３のαサブユニット
配列番号５２：Ｒ．ｐｙｒｉｄｉｎｏｖｏｒａｎｓ　Ｓ８５－２のαサブユニット
配列番号５３：Ｎｏｃａｒｄｉａ　ｓｐ　ＪＢＲｓのαサブユニット
配列番号５４：Ｎｏｃａｒｄｉａ　ＹＳ－２００２のαサブユニット
配列番号５５：ｕｎｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ＢＤ２のαサブユニット
配列番号５６：ｕｎｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ＳＰ１のαサブユニット
配列番号５７：Ｒ．ｒｈｏｄｏｃｒｏｕ　ＡＴＣＣ３９４８４のαサブユニット
配列番号５８：Ｓｉｎｏｒｈｉｚｏｂｉｕｍ　ｍｅｄｉｃａｅ　ＷＳＭ４１９のαサブユニット
配列番号５９：Ｐ．ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌａ　ＪＣＭ３０９５のαサブユニット
配列番号６０：Ｒ．ｒｈｏｄｏｃｒｏｕｓ　Ｃｒ４　のαサブユニット
配列番号６１：ロドコッカス属Ｎ－７７１株由来の鉄型ニトリルヒドラターゼαサブユニットのシステインクラスター
配列番号６２：Ｊ１菌由来のコバルト型ニトリルヒドラターゼαサブユニットのシステインクラスター

Claims (8)

  1. 　以下の（Ａ）又は（Ｂ）のタンパク質；
    （Ａ）野生型ニトリルヒドラターゼのアミノ酸配列において、下記（ａ）、（ｂ）、（ｃ）、（ｄ）及び（ｅ）のアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換され、さらに、下記（ｆ）～（ｑ）からなる群より選ばれる少なくとも１つのアミノ酸残基が他のアミノ酸残基に置換されたアミノ酸配列を含み、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有することを特徴とするタンパク質、
    　（ａ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１６７残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｂ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて２１９残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｃ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて５７残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｄ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１１４残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｅ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１０７残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｆ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて２１８残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｇ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１９０残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｈ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１６８残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｉ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１４４残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｊ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１３３残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｋ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１１２残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｌ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１０５残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｍ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて９５残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｎ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１７残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｏ）βサブユニットのアミノ酸配列においてＮ末端のアミノ酸残基から数えて１５残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｐ）αサブユニットのアミノ酸配列において、補欠分子結合領域を構成するアミノ酸配列Ｃ（Ｓ／Ｔ）ＬＣＳＣの最も下流側のＣ残基より６７残基下流のアミノ酸残基、
    　（ｑ）αサブユニットのアミノ酸配列において、補欠分子結合領域を構成するアミノ酸配列Ｃ（Ｓ／Ｔ）ＬＣＳＣの最も下流側のＣ残基より１７残基下流のアミノ酸残基。
    （Ｂ）（Ａ）のタンパク質のアミノ酸配列において、前記置換後のアミノ酸残基を除き、１又は数個のアミノ酸残基が欠失、置換及び／又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有することを特徴とするタンパク質。
  2. 　請求項１に記載のタンパク質をコードするＤＮＡ。
  3. 　請求項２に記載のＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、ニトリルヒドラターゼ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ。
  4. 　請求項２または３に記載の遺伝子ＤＮＡを含む組換えベクター。
  5. 　請求項４に記載の組換えベクターを含む形質転換体。
  6. 　請求項５に記載の形質転換体を培養して得られる培養物から採取されるニトリルヒドラターゼ。
  7. 　請求項５に記載の形質転換体を培養し、得られる培養物からニトリルヒドラターゼを採取することを特徴とする、ニトリルヒドラターゼの製造方法。
  8. 　請求項１に記載のタンパク質又は請求項５に記載の形質転換体を培養して得られる培養物若しくは当該培養物の処理物をニトリル化合物に接触させることを特徴とする、アミド化合物の製造方法。
     
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