WO2005103233A1

WO2005103233A1 - 培養歯根膜細胞シート、製造方法及びその利用方法

Info

Publication number: WO2005103233A1
Application number: PCT/JP2005/007853
Authority: WO
Inventors: Teruo Okano; Masateru Hasegawa; Masayuki Yamato; Akihiko Kikuchi; Isao Ishikawa
Original assignee: Cellseed Inc.
Priority date: 2004-04-25
Filing date: 2005-04-25
Publication date: 2005-11-03
Also published as: US9114192B2; US20080118474A1; JP6016751B2; EP1748064A1; EP1748064A4; JP4827729B2; EP1748064B1; JP2016182137A; JPWO2005103233A1; JP2014030430A; JP2011115604A

Abstract

　水に対する上限もしくは下限臨界溶解温度が０～８０°Cである温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上で細胞を特定の条件下で培養し、（１）培養液温度を上限臨界溶解温度以上または下限臨界溶解温度以下とし、（２）培養した培養歯根膜細胞シートをキャリアに密着させ、（３）そのままキャリアと共に剥離することにより製造された培養歯根膜細胞シートは、靭帯様微小構造を有し、歯根表面への生着性が極めて高く、高密度に標的細胞を移植させられ、積極的な歯周組織の再建をはかれる。さらに、移植する細胞シートの積層化を行い3次元的な極性を持たせることにより、一層効率良く付着器官を再構築させることができ、中等度歯周炎、重度歯周炎、歯肉退縮等の臨床応用が強く期待される。

Description

培養歯根膜細胞シート、製造方法及びその利用方法

技術分野

[0001] 本発明は、生物学、医学等の分野における培養歯根膜細胞シート、製造方法及びそれを利用した治療法に関する。

背景技術

[0002] 日本は高齢ィ匕社会を迎え、平均寿命は世界最高となって、る。人々の希望は単なる延命よりも、より良く生きるというクォリティー ·ォブ ·ライフ（QOL)に重点が置かれるようになつてきており、話すことと食べることは特に高齢者にとって生き甲斐に通じる重要な機能であり、その意味で歯の保存を含めた咀嚼器官の健康維持は QOLを左右する大きな要因といえる。咀嚼は食物摂取に欠かせない機能であり、しかも最近の咀嚼システムの研究では、咀嚼は脳細胞を刺激し精神'神経の発達や賦活化を促すこと、免疫機能を高めること、更には肥満を抑制する等の様々な全身機能への影響が明らかになりつつある。したがって歯を失うことによる咀嚼機能の衰えは、痴呆への道中を加速することや、生活習慣病などを引き起こす可能性につながる。現在歯周病に羅患している人口割合は 35〜65歳の中高年世代では 80%を越え、歯周治療における人々の要求も高くその内容も様々である。また歯周病の発症と進行には多くの関連因子が複雑に関与しており、これまで行われてきた口腔清掃を中心とした予防処置だけでは解決することはできない。不幸にも歯周病に力かり治療を行う場合、その多くは機能回復と審美的な改善を求めるものであり、現段階ではこれらの需要に対して、従来行われてきた非再生療法を中心とする治療法では不十分といわざるを得ず、失われた歯周組織を再生し得る革新的な治療法が求められて!/ヽる。

[0003] 歯は上皮を突き破って口腔内に露出しており、歯と歯肉との境界で上皮の連続性が失われており、生体の中でも極めて特殊な環境にある。歯と歯肉は「上皮性付着」と「結合組織性付着」によって構成されている。前者は接合上皮と呼ばれる上皮が、へミデスモゾームと基底板を介して歯面 (エナメル質）に接着している。後者は歯根膜 (歯周靭帯）により構成され、歯根面セメント質内にコラーゲン線維が石灰化しながら埋入し、その線維が歯槽骨内にも同じく石灰化しながら埋入し歯肉線維に移行することにより、歯を歯槽骨や歯肉と強固に結合させている。

[0004] 歯周病とは、プラーク細菌を原因とする歯周組織における炎症性疾患であり、「歯肉炎」と「歯周炎」に分類される。歯肉のみに炎症が限局した「歯肉炎」と、炎症が歯根膜、歯槽骨にいたり、歯根膜による付着が破壊された場合を「歯周炎」と呼ぶ。通常は歯肉炎から歯周炎へと進行し、歯牙の周囲にポケット (溝)を形成する。ポケットが深くなるにつれて、ポケット内のプラーク細菌が増殖し炎症がより深部へと進行する .全身的な修飾因子 (薬剤、血液疾患、免疫疾患、栄養状態、ストレス、疲労、喫煙等)が関与しているほか、歯軋り等の歯牙に対する力学的負担が過大となる場合に見られる曖合性外傷と呼ばれるような局所的な修解因子が、炎症を悪化させる。重度歯周炎に罹患して組織破壊が高度に進行した症例では、抜歯を免れても一度失われた歯周組織は元の形態機能を回復することはなぐ治癒後は著しい機能'審美障害が残り患者の QOLを低下させる大きな要因となっている。

[0005] 歯槽骨の吸収は歯周炎の特徴的な病態の一つである力それと同時に生ずる歯根セメント質および歯周靭帯 (歯根膜)の喪失が歯周炎の本態である。歯根膜はその名のとおり靭帯様構造を示し、歯根表面のセメント質を介して歯を歯槽骨のソケット内に懸架して強大な咬合圧に対するクッションの役割を果たし、また血管成分に富み代謝活性が高く歯周組織の恒常性の維持に重要な役割を果たして、る。半世紀近くにわたる歯周組織再生を目的とした数多くの研究にもかかわらず未だ適当な治療法が確立していないのは、歯槽骨だけではなくこの歯根膜組織を同時に再生させることが非常に困難だからである。歯根膜再生が伴わない場合には口腔内上皮の欠損部への進入や歯根の骨性癒着が生じて生物学的に不安定な状態で治癒することが明ら力になっており、これらは歯周炎の再発や歯の脱落を招く原因となる。

[0006] この歯周炎を治療するために、現在、スケーリング.ルートプレーニング（S ' RP)が行われている。これは、歯周炎に対する治療の基本となる術式で、歯周炎に羅患した部位において感染性の組織を機械的に除去し、主に細菌感染により汚染された歯根表面セメント質および歯根膜、歯肉組織を特殊な器具を用いて除去し、歯根面に周囲組織の付着しやす!/ヽ形態を付与させ自然治癒を期待する方法である。治癒形態はおもに処置根面に上皮が進行増殖して形成される上皮性付着が主体となる。この方法であれば、外科的処置が必要なぐ無麻酔もしくは局所的な浸潤麻酔のみで処置でき、審美的及び機能的に問題のない部位であれば必要十分な処置法である。し力しながら、進行した歯周炎において歯槽骨が破壊された症例では処置後に再感染が予想される場合、この処置法のみでは不十分である。また、歯牙の形態が複雑な部位では術式が困難となり易ぐこの場合は外科的処置法が適応となる。 S 'RPのみでは処置しきれない複雑な形態をもつ部位に対して、外科的に歯肉弁 (フラップ)を形成し明視下で治療するといつた外科的処置が施される。治癒形態は基本的には S ' RPと同じ上皮性付着を期待するものである。

[0007] こうした中、歯周組織を積極的に再建しょうとする再生医療技術が活発に研究され始めた。幾つかの技術は、すでに治療に利用されており、骨切除や骨移植、粘膜移植等が挙げられる。この歯槽骨移植としては、自家 '他家'異種骨移植'人工骨移植に分類される。主に自家骨移植が行われ、口腔内の別の部位力採取される骨片を骨欠損部に移植する方法である。また他家骨移植にぉヽては脱灰凍結乾燥他家移植骨 (DFDBA)が欧米で用いられ良好な臨床成績を上げて、る。人工骨では代表的なものでノヽイドロキシアバタイト (HA)が用いられる。治癒形態は S'RPのみに比較すると欠損部位における血餅の保持において有効に働く面もあり、上皮侵入を阻害すると同時に、歯根膜細胞が遊走しやすい条件を提供できると考えられるが、動物実験において治癒形態の主体はやはり新生セメント質及び歯根膜の再生を起こさない上皮性付着が主体となることが報告されている。自家骨移植は抗原性や感染の問題が最も低ぐ当然受給部に受け入れられやすい。また、骨移植材に骨伝導能'骨誘導能が期待できる利点がある。しかしながら、自家骨移植では必要量の移植骨を確保することが難しい。また、他家'異種骨移植は抗原性'感染性の問題が残っており、移植材の種類を問わず、骨欠損部位が大きぐ歯根面と移植骨が接する範囲が大き V、と歯牙の骨性癒着 (アンキローシス)を起こすと!ヽぅ問題点があった。

[0008] 1970年代後半から 80年代にかけてスカンジナヴィァの研究グループは、上皮組織および歯肉結合組織は歯根膜の再生能に欠け、また骨組織は歯根表面に対して骨性癒着を引き起こすことを確認し、歯根膜組織の再生には歯根膜組織由来の細胞が欠損部、特に歯根表面に存在することが必要であることを見出した。この概念に基づ、て考案されたのが組織再生誘導法 (GTR法)であり、この方法とは治癒過程において増殖速度が速く早期に欠損部に進入する上皮細胞を生体親和性遮断膜で抑制し、同時に欠損部のスペースメイキングを行うことにより歯根膜組織再生を可能にするものである。この方法は、現在、最も歯周組織再生が期待できる方法であり、スペースメイキングが容易な骨欠損形態を示す部位にぉ、て良好な成績を収めて、る。し力しながら、この方法では臨床術式が複雑であること、複雑な欠損形態を示す部位に関しては生体親和性膜を歯根面に正確に設置することが難しいこと、また治癒期間中は感染の問題力その膜上が歯肉弁で完全に被覆されていなければならず、予後が術式及び環境に左右され易い問題点があった。また、その生体親和性膜には吸収性と非吸収性があり、前者を使用した場合膜を除去するための再手術が必要となり、後者は再手術の必要はな、がスペースメイキングをする上で強度的に問題が残る。また残存歯根膜からの細胞遊走を期待しているため再生量が限られてしまう他、膜の保持という観点からも適応症例は垂直性骨欠損の一部だけになる。中高年に広く見られる広範型慢性歯周炎においては水平性骨吸収が主な病態であり、この GTRでは対応できなヽ場合が少なくな!/、。

[0009] このように、歯周組織の再生において歯根膜由来細胞が不可欠な因子であることが解力つていても、この GTR法をはじめとする従来の治療法は成長因子の応用はあるものの残存組織力の細胞遊走を期待するだけであり、そのため組織再生量は欠損形態あるいは残存歯根膜組織量に大きく影響され、その適応症が限られてしまうのが現状である。高度に破壊された歯周組織にぉヽては再生の基盤となる細胞を残存周囲組織からの遊走に期待するだけでは不充分であり外来性に供給することが必要であることが明らかになりつつある。歯周組織における再生療法の目的は、いかにこの上皮性付着による治癒を抑制し、歯根膜による結合組織性付着を獲得するかに焦点が置かれている。

[0010] 近年、その細胞移植法を行うことによって組織再生を目指す研究力 ^、くつか報告された。これらは単一の細胞を 3次元的マトリックスに播種し組織欠損部へ注入移植を行ったものが多、が、その、ずれも未だ期待した組織構築を実現するには至ってヽない。理由として考えられるのは細胞ソースの選択、そして組織欠損内において細胞分ィ匕の局在性をコントロールすることが難しいためであると考えられる。歯周組織再生には歯根表面にセメント質新生が伴うことが必須であり、軟組織である歯周靭帯のみならずこのセメント質、また歯槽骨という硬組織を同時に再生させ機能的に相互結合させる必要がある。これらの組織がそれぞれ異なる組織特異的な前駆細胞や成長因子の作用により時間差をもって形成されるならば、歯周組織再生における細胞移植法はより繊細なものでなければならな、。つまり単にスペースメイキングされた欠損部に単一の細胞を注入して生体内での組織分化に任せるのではなぐ細胞の配置場所を規定しそれぞれの部位に適切な細胞を配置することが必要とされる。

[0011] その際に必要となる細胞は、ガラス表面上あるいは種々の処理を行った合成高分子の表面上にて培養されてきた。例えば、ポリスチレンを材料とする表面処理、例えば Ί線照射、シリコーンコーティング等を行った種々の容器等が細胞培養用容器として普及している。このような細胞培養用容器を用いて培養 '増殖した細胞は、トリプシンのような蛋白分解酵素やィ匕学薬品により処理することで容器表面力剥離 ·回収される。しかし、上述のような化学薬品処理を施して増殖した細胞を回収する場合、処理工程が煩雑になり、不純物混入の可能性が多くなること、及び増殖した細胞が化学的処理により変成若しくは損傷し細胞本来の機能が損なわれる例があること等の欠点が指摘されていた。

[0012] 力かる欠点を克服するために、これまでいくつかの技術が提案されている。その中で、特に特願 2001— 226141号では、水に対する上限もしくは下限臨界溶解温度力^〜 80°Cである温度応答性ポリマーを基材表面に被覆した細胞培養支持体上で前眼部関連細胞を培養し、必要に応じて常法により培養細胞層を重層化させ、支持体の温度を変えるだけで培養した細胞シートを剥離させることで、十分な強度を持つた細胞シートの作製が可能となった。また、この細胞シートには基底膜様蛋白質も保持しており、上述したデイスパーゼ処理したものに比べ、組織への生着性も明らかに改善されている。また、国際出願公開公報 WO02Z08387号では温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上で心筋組織の細胞を培養し、心筋様細胞シートを得、その後、培養液温度を上限臨界溶解温度以上又は下限臨界溶解温度以下とし、培養した重層化細胞シートを高分子膜に密着させ、そのまま高分子膜と共に剥離させること、及びそれを所定の方法で 3次元構造化させることにより、構造欠陥の少ない、 in vitroでの心筋様組織として幾つかの機能を備えた細胞シート、及び 3次元構造が構築されることを見いだした。し力しながら、いずれの方法においても、歯周組織における再生療法を目的とした、歯根膜の再生、歯根膜による結合組織性付着を獲得するかにつ!、て検討されて!、な力つた。

発明の開示

発明が解決しょうとする課題

[0013] 本発明は、上記のような従来技術の問題点を解決することを意図してなされたものである。すなわち、本発明は、歯根表面への付着性が良好な高生着性培養歯根膜細胞シートを提供することを目的とする。また、本発明は、その製造法、並びに利用方法を提供することを目的とする。

課題を解決するための手段

[0014] 本発明者らは、上記課題を解決するために、種々の角度力も検討を加えて、研究開発を行った。その結果、温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した特定条件の細胞培養支持体上で歯根膜細胞を特定条件下で培養し、その後、培養液温度を上限臨界溶解温度以上または下限臨界溶解温度以下とし、培養した培養歯根膜細胞シートを特定のキャリアに密着させ、細胞シートの収縮を抑えながら、そのままキャリアと共に剥離することにより、歯根表面に極めて付着性の良い高生着性培養歯根膜細胞シートが得られることを見いだした。本発明は力かる知見に基づいて完成されたものである。

[0015] すなわち、本発明は、歯根表面に極めて良好に付着する、すなわち、高生着性の、キャリアに密着させた、培養歯根膜細胞シートを提供する。

[0016] また、本発明は、水に対する上限もしくは下限臨界溶解温度が 0〜80°Cである温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上で細胞を特定の条件下で培養し、その後、

(1)培養液温度を上限臨界溶解温度以上または下限臨界溶解温度以下とし、

(2)培養した歯根膜細胞シートをキャリアに密着させ、 (3)そのままキャリアと共に剥離する

ことを特徴とする高生着性培養歯根膜細胞シートの製造方法を提供する。

[0017] カ卩えて、本発明は、歯周組織の一部或いは全部を損傷もしくは欠損した患部を治療するための上記高生着性培養歯根膜細胞シートを提供する。

[0018] 更に加えて、本発明は、歯周組織の一部或いは全部を損傷もしくは欠損した患部に対し、上記高生着性培養歯根膜細胞シートを移植することを特徴とする治療法を提供する。

発明の効果

[0019] 本発明で得られる高生着性再生歯根膜細胞シートは歯根表面への生着性が極めて高ぐ例えば、 GTR法では受動的に周囲組織 (主に残存歯根膜)力の細胞遊走を期待するだけであつたが、本発明の細胞シートを用いることにより非常に高密度に標的細胞を移植することができる。また、治癒過程における上皮の侵入が大きな課題であるが、歯根表面に早期に細胞の定着が起きていればそれを防ぐことが出来る。本発明の細胞シートは歯根表面に速やかに定着し、上皮細胞の侵入を抑える上で有利に働く。さらに、移植する細胞シートの積層化を行い 3次元的な極性を持たせることにより、一層効率良く付着器官を再構築でき、中等度歯周炎、重度歯周炎、歯肉退縮等の臨床応用が強く期待される。したがって、本発明は細胞工学、医用工学、などの医学、生物学等の分野における極めて有用な発明である。

図面の簡単な説明

[0020] [図 1]図 1は、実施例 2に示す培養 21日後の細胞のようす (左図）、キャリアを用いずに剥離した際のようす (右図）を示すものである。

[図 2]図 2は、実施例 2に示す培養歯根膜細胞シートをァザン染色、並びに H— E染色した結果を示す写真である。

[図 3]図 3は、実施例 2に示す培養歯根膜細胞シート表面の走査型電子顕微鏡写真を 500倍 (左図）、 10000倍 (右図）で観察した結果を示す写真である。

[図 4]図 4は、実施例 2に示す培養歯根膜細胞シート表面の F—ァクチン、 I型コラーゲンを常法により染色した結果を示す図である。

[図 5]図 5は、実施例 2の培養歯根膜細胞シート (単層状)、実施例 3の 3層に積層化された細胞シートをァザン染色、並びに H— E染色した結果の比較検討を示す図である。

[図 6]図 6は、実施例 4、比較例 1、比較例 2に示す培養歯根膜細胞に残存するインテダリン j8 1を検討した結果を示す図である。

[図 7]図 7は、実施例 4、比較例 1、比較例 2に示す培養歯根膜細胞に残存するフイブロネクチンを検討した結果を示す図である。

[図 8]図 8は、実施例 5、比較例 3に示す術後 1週間後の歯周組織の治癒状態を示すものである。

[図 9]図 9は、実施例 5、比較例 3に示す術後 4週間後の歯周組織の治癒状態を示すものである。

発明を実施するための最良の形態

[0021] 本発明は、キャリアに密着された靭帯様微小構造（「靭帯様」とは、培養歯根膜細胞シートが歯根象牙質に密着、配向してヽる状態を指す)を有する培養歯根膜細胞シートを提供する。本発明の培養歯根膜細胞シートの作製に使用される好適な細胞として歯根膜線維芽細胞、或いはその歯根膜線維芽細胞にさらにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞、血管内皮細胞、間葉系幹細胞の少なくとも 1つ以上の細胞が混合されたものが挙げられる力その種類は、何ら制約されるものではない。本発明において、高生着性再生歯根膜細胞シートとは、上記した各種細胞が培養支持体上で単層状に培養され、その後、支持体より剥離されたシートを意味する。得られた細胞シートは培養時に培養支持体に接していた下側面とそれとは反対側の上側面を有する。細胞を培養する際、本発明で示す水に対する上限もしくは下限臨界溶解温度が 0〜80°Cである温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体を利用すれば、細胞シート下側面に細胞が培養時に自ら産生した接着性蛋白質が豊富に存在している。

[0022] 本発明の高生着性再生歯根膜細胞シートとは、上述した歯根膜線維芽細胞、或ヽはその歯根膜線維芽細胞にさらにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞、血管内皮細胞の、間葉系幹細胞少なくとも 1つ以上の細胞が混合された単層状のシートであっても良ぐまたそれを積層化したシートでも良い。ここで積層化シートとは、その高生着性再生歯根膜細胞シートが単独若しくは別の細胞力なるシートと組み合わされた状態のもでも良ぐ例えば、上述した歯根膜線維芽細胞、或いはその歯根膜線維芽細胞にさらにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞、血管内皮細胞、間葉系幹細胞の少なくとも 1つ以上の細胞が混合された細胞シートを重ね合わしたもの、上述した単層状細胞シートにこのものとは別のセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞の少なくとも 1つ以上の細胞力なる培養細胞シートを重ね合わしたもの等が挙げられるが特に制約されるものではない。またその積層する位置、順番、積層回数は特に制約されるものではないが、例えば、上述した歯根膜線維芽細胞、或いはその歯根膜線維芽細胞にさらにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞、血管内皮細胞、間葉系幹細胞の少なくとも 1つ以上の細胞が混合された単層状細胞シートの下側或いは上側の少なくとも一方もしくは双方に同じ細胞シートが積層化されたもの、上述した単層状細胞シートの下側或いは上側の少なくとも一方もしくは双方にこれとは別のセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞の少なくとも 1つ以上の細胞カゝらなる細胞シートが積層化されたもの、或いは歯根膜線維芽細胞、或いはその歯根膜線維芽細胞にさらにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞、血管内皮細胞、間葉系幹細胞の少なくとも 1つ以上の細胞が混合された単層状細胞シートに対し、同じ細胞シートと別のセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞の少なくとも 1つ以上の細胞力もなる細胞シートが積層化されたものでも良い。さらに、その積層化が歯根膜線維芽細胞、或いはその歯根膜線維芽細胞にさらにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞、血管内皮細胞、間葉系幹細胞の少なくとも 1つ以上の細胞が混合された単層状細胞シートの上側に骨芽細胞力なる細胞シートを重ね、下側にセメント芽細胞力なる細胞シートを重ね合わしたもの、歯根膜線維芽細胞、或いはその歯根膜線維芽細胞にさらにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞、血管内皮細胞、間葉系幹細胞の少なくとも 1つ以上の細胞が混合された単層状細胞シートの上側に歯肉線維芽細胞力なる細胞シートを重ね、その上にさらに骨芽細胞カもなる細胞シートを重ね、下側にセメント芽細胞力もなる細胞シートを重ね合わしたものでも良い。積層回数は 8回以下が良ぐ好ましくは 6回以下、さらに好ましくは 4 回以下が良い。 8回より多くなると積層化した中心部の細胞シートに酸素、栄養分が行き届かなくなり細胞死してしま、好ましくな、。

[0023] 本発明における上述した細胞を培養するための培地組成は特に限定されるものではなぐこれらの細胞を培養する際に通常使われているもので良い。例えば、歯根膜線維芽細胞、或いはその歯根膜線維芽細胞にさらにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞、血管内皮細胞、間葉系幹細胞の少なくとも 1つ以上の細胞が混合された細胞シートを培養する際の培地として、 α— MEM培地、 DMEM培地、或いはそれらの混合物に 10%ゥシ血清を混合したもの、或いはそのものにさらに 50 gZ ml濃度でァスコルビン酸 2リン酸を加えたものでも良い。

[0024] 本発明における高生着性培養歯根膜細胞シートは培養時にディスパーゼ、トリプシン等で代表される蛋白質分解酵素による損傷を受けていないものである。そのため、基材カゝら剥離された高生着性培養歯根膜細胞シートは、細胞—細胞間のデスモソーム構造が保持され、構造的欠陥が少なぐ強度の高いものである。また、本発明のシートは培養時に形成される細胞—基材間の基底膜様蛋白質も酵素による破壊を受けていない。このことにより、移植時において患部組織と良好に接着することができ、効率良い治療を実施することができるようになる。以上のことを具体的に説明すると、トリプシン等の通常の蛋白質分解酵素を使用した場合、細胞細胞間のデスモソーム構造及び細胞、基材間の基底膜様蛋白質等は殆ど保持されておらず、従って、細胞は個々に分かれた状態となって剥離される。その中で、蛋白質分解酵素であるデイスパーゼに関しては、細胞細胞間のデスモソーム構造については 10〜60%保持した状態で剥離させることができることで知られているが、細胞一基材間の基底膜様蛋白質等を殆ど破壊してしまうため、得られる細胞シートは強度の弱いものである。これに対して、本発明の細胞シートは、デスモソーム構造、基底膜様蛋白質共に 8 0%以上残存された状態のものであり、上述したような種々の効果を得ることができるものである。

[0025] 本発明における高生着性培養歯根膜細胞シートは生体組織である歯根表面に極めて良好に生着する。その性質は、支持体表面から剥離させた培養歯根膜細胞シートの収縮を抑えることで実現されることを見いだした。その際、培養歯根膜細胞シートの収縮率はシート内の何れの方向における長さにおいても 20%以下であることが望ましぐ好ましくは 10%以下、さらに好ましくは 5%以下であることが好ましい。シートの何れかの方向の長さにおいて 20%以上となると、剥離した細胞シートはたるんでしまい、その状態で生体組織に付着させても組織に密着させられず、本発明で示すところの高生着性は望めな、。

[0026] 培養歯根膜細胞シートを収縮させな!/、方法は、細胞シートを収縮させな、方法であれば何ら制約されるものではないが、例えば、支持体から培養歯根膜細胞シートを剥離させる際、これらの細胞シートに中心部を切り抜いたリング状のキャリアなどを密着させ、そのキャリアごと細胞シートを剥離する方法などが挙げられる。

[0027] 高生着性培養歯根膜細胞シートを密着させる際に使用するキャリアは、本発明の細胞シートが収縮しないように保持するための構造物であり、例えば高分子膜または高分子膜から成型された構造物、金属性治具などを使用することができる。例えば、キャリアの材質として高分子を使用する場合、その具体的な材質としてはポリビ-リデンジフルオライド（PVDF)、ポリプロピレン、ポリエチレン、セルロース及びその誘導体、紙類、キチン、キトサン、コラーゲン、ウレタン等を挙げることができる。

[0028] 本発明にお、て密着と!/、う場合、細胞シートが収縮しな、ように、細胞シートとキヤリアとの境界面において、キャリア上で細胞シートがずれたり移動したりしない状態のことをいい、物理的に結合することにより密着していても、両者のあいだに存在する液体 (例えば培養液、その他の等張液)を介して密着して、てもよ、。

[0029] キャリアの形状は、特に限定されるものではないが、例えば得られた高生着性培養歯根膜細胞シートを移植する際に、キャリアの一部に移植部位と同程度もしくは移植部位より大きく切り抜いたものを利用すると、細胞シートは切り抜かれた周囲の部分だけに固定され、切り抜かれた部分にある細胞シートを移植部位に当てるだけで良ぐ好都合である。

[0030] また、本発明における培養歯根膜細胞シートの特徴である歯根表面への高、生着性は、特定の培養条件下で実現される。すなわち、本発明の培養歯根膜細胞シートは、支持体表面上に歯根膜細胞を播種後、培養することで得られるが、支持体表面上で細胞がコンフルェント（満杯な状態）になってから 21日以下、好ましくは 15日以下、さらに 10日以下であることが好ましいことが判明した。 21日より多いと剥離した培養歯根膜細胞シートの最下層の細胞の活性が低下し、そのため付着性も低減してしま、、本発明に示すところの高生着性は望めなくなる。

[0031] 本発明の歯根表面とは、歯根部であれば特に限定されるものではなぐ一般には、歯周組織の一部或いは全部を損傷もしくは欠損した患部などが挙げられる。このような歯根表面に対し、本発明の高生着性培養歯根膜細胞シートの利用法は特に限定されないが、例えば、本発明の高生着性培養歯根膜細胞シートを被覆する方法が挙げられる。その際、培養歯根膜細胞シートを患部の大きさ、形状に沿って適宜切断しても良い。このように、本発明の高生着性培養歯根膜細胞シートとは、生体組織である歯根表面に極めて良好に付着できるものであり、従来技術力では全く得られなかつたものである。

[0032] 細胞培養支持体にお!ヽて基材の被覆に用いられる温度応答性ポリマーは、水溶液中で上限臨界溶解温度または下限臨界溶解温度 0°C〜80°C、より好ましくは 20°C 〜50°Cを有する。上限臨界溶解温度または下限臨界溶解温度が 80°Cを越えると細胞が死滅する可能性があるので好ましくない。また、上限臨界溶解温度または下限臨界溶解温度が 0°Cより低!、と一般に細胞増殖速度が極度に低下する力、または細胞が死滅してしまうため、やはり好ましくない。

[0033] 本発明に用いる温度応答性ポリマーはホモポリマー、コポリマーのいずれであってもよい。このような高分子としては、例えば、特開平 2— 211865号公報に記載されているポリマーが挙げられる。具体的には、例えば、以下のモノマーの単独重合または共重合によって得られる。使用し得るモノマーとしては、例えば、（メタ)アクリルアミド化合物、 N- (若しくは N, N—ジ)アルキル置換 (メタ)アクリルアミド誘導体、またはビュルエーテル誘導体が挙げられ、コポリマーの場合は、これらの中で任意の 2種以上を使用することができる。更には、上記モノマー以外のモノマー類との共重合、ポリマー同士のグラフトまたは共重合、あるいはポリマー、コポリマーの混合物を用いてもよい。また、ポリマー本来の性質を損なわない範囲で架橋することも可能である。

[0034] 被覆を施される基材としては、通常細胞培養に用いられるガラス、改質ガラス、ポリスチレン、ポリメチルメタタリレート等の化合物を初めとして、一般に形態付与が可能である物質、例えば、上記以外の高分子化合物、セラミックス類など全て用いることができる。

[0035] 温度応答性ポリマーの支持体への被覆方法は、特に制限されな!、が、例えば、特開平 2— 211865号公報に記載されている方法に従ってよい。すなわち、かかる被覆は、基材と上記モノマーまたはポリマーを、電子線照射 (ΕΒ)、 γ線照射、紫外線照射、プラズマ処理、コロナ処理、有機重合反応のいずれかにより、または塗布、混練等の物理的吸着等により行うことができる。

[0036] 温度応答性ポリマーの被覆量は、 0. 5〜5. 0 μ gZcm²の範囲が良ぐ好ましくは 1 . 0〜4. 0 g/cm²であり、さらに好ましくは 1. 2〜3. 5 g/cm²である。 0. 5 g Zcm²より少ない被覆量のとき、刺激を与えても当該高分子上の細胞は剥離し難ぐ作業効率が著しく悪くなり好ましくない。逆に 5. O /z gZcm²以上であると、その領域に細胞が付着し難ぐ細胞を十分に付着させることが困難となる。本発明における支持体の形態は特に制約されるものではないが、例えばディッシュ、マルチプレート、フラスコ、セルインサートなどが挙げられる。

[0037] 本発明にお、て、細胞の培養は上述のようにして製造された細胞培養支持体上で行われる。培地温度は、基材表面に被覆された前記ポリマーが上限臨界溶解温度を有する場合はその温度以下、また前記ポリマーが下限臨界溶解温度を有する場合はその温度以上であれば特に制限されない。しかし、培養細胞が増殖しないような低温域、あるいは培養細胞が死滅するような高温域における培養が不適切であることは言うまでもない。温度以外の培養条件は、常法に従えばよぐ特に制限されるものではない。例えば、使用する培地については、公知のゥシ胎児血清 (FCS)等の血清が添加されている培地でもよぐまた、このような血清が添加されていない無血清培地でもよい。

[0038] 本発明の方法において、培養した細胞を支持体材料カゝら剥離回収するには、培養された高生着性培養歯根膜細胞シートをキャリアに密着させ、細胞の付着した支持体材料の温度を支持体基材の被覆ポリマーの上限臨界溶解温度以上若しくは下限臨界溶解温度以下にすることによって、そのままキャリアとともに剥離することができる。なお、シートを剥離することは細胞を培養していた培養液中において行うことも、その他の等張液中において行うことも可能であり、目的に合わせて選択することができる。

[0039] 本発明では、細胞シートを患部に当てた後、細胞シートをキャリアからはがせば良い。そのはがし方は、何ら制約されるものではないが、例えば、キャリアを濡らしてキヤリアと細胞シートの密着性を弱めてはがす方法、或いはメス、はさみ、レーザー光、プラズマ波などの治具を用いても切断する方法でも良、。例えば上述したような一部を切り抜いたキャリアに密着した細胞シートを用いた場合、レーザー光などを用いて患部の境界線に沿って切断すると患部以外の余計なところへの細胞シートの付着を避けられ好都合である。

[0040] 本発明で示すところの高生着性再生歯根膜細胞シートと生体組織との固定方法は特に限定されるものではなぐ細胞シートと生体組織を生体内で使用可能な接着剤による接合、縫合しても良ぐ或いは本発明で示すところの高生着性培養歯根膜細胞シートは生体組織と速やかに生着するため、このような手段を用いずに患部に付着させるだけでも良い。

[0041] 本発明における積層化シートは、その積層方法は特に限定されるものではないが、上述したキャリアに密着した高生着性培養歯根膜細胞シートを以下のような方法で行えば良い。

(1)キャリアと密着した細胞シートを細胞培養支持体に付着させ、その後培地を加えることでキャリアを細胞シートからはがし、そして更に別のキャリアと密着した細胞シートを付着させることを繰り返すことで細胞シートを重層化させる方法。

(2)キャリアと密着した細胞シートを反転させ細胞培養支持体上でキャリア側で固定させ、細胞シート側に別の細胞シートを付着させ、その後培地を加えることでキャリアを細胞シートからはがし、再び別の細胞シートを付着させる操作を繰り返すことで細胞シートを重層化させる方法。

(3)キャリアと密着した細胞シート同士を細胞シート側で密着させる方法。

(4)キャリアと密着した細胞シートを生体の患部に当て、細胞シートを生体組織に付着させた後、キャリアをはがし、再び別の細胞シートを重ねていく方法。

[0042] 高生着性培養歯根膜細胞シートを高収率で剥離、回収する目的で、細胞培養支持体を軽くたたいたり、ゆらしたりする方法、更にはピペットを用いて培地を撹拌する方法等を単独で、あるいは併用して用いてもよい。力 tlえて、必要に応じて培養細胞は等張液等で洗浄して剥離回収してもよヽ。

[0043] 本発明に示される高生着性培養歯根膜細胞シートの用途は何ら制約されるものではないが、例えば度歯周炎、重度歯周炎及びその他の歯周関連疾患、歯肉退縮、歯肉炎等の歯肉関連疾患に有効である。

[0044] 上述の方法により得られた高生着性培養歯根膜細胞シートは、従来の方法により得られたものに比べて、剥離の際の非侵襲性の点で極めて優れており、移植用歯根膜等として臨床応用が強く期待される。特に、本発明の高生着性培養歯根膜細胞シートは従来の移植シートとは異なり、生体組織との高い生着性を有するため、極めて速く生体組織に生着する。このことから、 GTRでは受動的に周囲組織 (主に残存歯根膜)からの細胞遊走を期待するだけであつたが、この細胞シートを用いることにより非常に高密度に標的細胞を移植することができるようになる。また、自己の細胞を用いることから抗原性'感染性の問題を解決できる。細胞移植という観点カゝら見れば、コラ一ゲンゲル内で 3次元培養を行った細胞をゲルごと移植する研究、生体吸収性膜上に細胞を播種して培養を行、膜ごと移植する研究等が進められてヽるが、細胞密度に関しては圧倒的に細胞シートが勝っており、また吸収性膜などの介在物がない、純粋な細胞 ·細胞外基質成分のみの細胞シートの方が組織に定着する上で有利なのは明らかである。治癒過程における上皮の侵入が大きな課題であるが、歯根面にあらかじめ結合組織性細胞の定着が起きていればそれを防ぐことが出来る。この培養細胞の歯根面への定着にぉヽては、培養細胞の分泌した接着分子をふくむ細胞外基質を細胞と同時に非侵襲的に回収して移植するため、移植細胞の歯根面への早期定着にも有利に働くと予想される。歯牙の周囲に存在する付着器官はセメント質、歯根膜 (靭帯部） ·歯槽骨といった特殊な階層構造をもつ。これまでの研究で歯根膜組織を構築し得る細胞は歯周組織では歯槽骨でもなく歯肉でもなぐ歯根膜内のみに存在することが確認されている。また歯根膜内には様々な細胞が存在しており（支持歯槽骨を形成する骨芽細胞系細胞、歯根膜の靭帯を形成する線維芽細胞、セメント質を形成するセメント芽細胞、確認はされていないが組織幹細胞も当然存在すると思われる。）これらの細胞を分離する研究も進められていて、歯根膜から採取した細胞を分離して細胞シートを作製し、移植時に積層化を行!ヽ 3次元的な極性を持たせることにより、より効率よく付着器官を再構築できると考えている。以上のことは、患部の治療効率の向上、更には患者の負担の軽減もは力れ極めて有効な技術と考えられる。

実施例

以下に、本発明を実施例に基づいて更に詳しく説明するが、これらは本発明を何ら限定するものではない。

mi. 2

市販の 3. 5cm φ培養皿（ベタトン'ディッキンソン 'ラブウェア（Becton Dickinson Labware)社製ファルコン（FALCON) 3001)上に、 N—イソプロピルアクリルアミドモノマーを 53% (実施例 1)、 54% (実施例 2)になるようにイソプロピルアルコールに溶解させたものを 0. 07πιΓ塗布した。 0. 25MGyの強度の電子線を照射し、培養皿表面に N—イソプロピルアクリルアミドポリマー（PIPAAm)を固定ィ匕した。照射後、ィオン交換水により培養皿を洗浄し、残存モノマーおよび培養皿に結合していない PI PAAmを取り除き、クリーンベンチ内で乾燥し、エチレンオキサイドガスで滅菌することで細胞培養支持体材料を得た。基材表面における温度応答性ポリマー量を測定したところ、それぞれ 1. 8

(実施例1)、 2. 0 /z g/cm² (実施例 2)被覆されていることが分力つた。 F344系ヌードラットの上顎臼歯部力も歯根膜組織を採取し、常法に従!ヽ酵素処理することで歯根膜細胞を回収し、それぞれの支持体材料表面上に播種した（1 X 10⁵cells/3. 5cmDish)。培地として、 DMEM培地に 10%ゥシ血清、 50 g/mlになるようにァスコルビン酸 2リン酸を添カ卩したものを使用した。 37°C 、 5%CO下で培養した結果、何れの細胞培養支持体材料上の歯根膜細胞におい

2

ても正常に付着し、増殖した。培養 14日後に培養した細胞はコンフルェントの状態となり、さらに 7日間培養した細胞の上に直径 2mmの円状に切り抜いた直径 5mmのポリビユリデンジフルオライド (PVDF)膜から成型したキャリアをかぶせ、培地を静かに吸引し、細胞培養支持体材料ごと 20°Cで 30分インキュベートし冷却することで、何れの細胞培養支持体材料上の細胞もかぶせたキャリアと共に剥離させられた。得られた細胞シートは収縮率 5%以下の 1枚のシートとして十分に強度を持ったものであつた。なお、上記各実施例において、「低温処理」は 20°Cで 30分インキュベートという条件下で行われたが、本発明にお、て「低温処理」はこれらの温度及び時間に限定されな、。本発明における「低温処理」として好ま、温度条件は 0°C〜30°Cであり、好ましい処理時間は 2分〜 1時間である。実施例 2の培養 21日後の細胞のようすを図 1左図、キャリアを用いずに剥離した際のようすを図 1右図に示す。実施例 2で得られた培養歯根膜細胞シートを常法に従ってァザン染色、並びに H— E染色した結果を図 2に示す。また、実施例 2で得られた培養歯根膜細胞シート表面の走査型電子顕微鏡写真を 500倍 (左図）、 10000倍 (右図）で観察した結果を示す。細胞シート表面に歯根膜特有の構造が損傷を受けていないことが分かる。さらに、図 4では実施例 2で得られた培養歯根膜細胞シート表面の F—ァクチン、 I型コラーゲンを常法により染色した結果を示す。いずれの蛋白質も残存していることが分かり、本発明で得られる培養歯根膜細胞シートは低損傷なものであることが分力ゝる。

例 3

上述した市販の 3. 5cm φ培養皿（FALCON 3001)上に、 N—イソプロピルァクリルアミドモノマーを 55%になるようにイソプロピルアルコールに溶解させたものを 0. 07πιΓ塗布した以外は実施例 2と同様な方法で細胞培養支持体材料を得た。基材表面における温度応答性ポリマー量を測定したところ、 2.： L gZcm²被覆されていることが分力つた。 F344系ヌードラットの上顎臼歯部力も歯根膜組織を採取し、常法に従い酵素処理することでセメント芽細胞、骨芽細胞を回収し、それぞれの細胞を別々に支持体材料表面上に播種した（1 X 10⁵cells/3. 5cmDish)。培地として、 DME M培地に 10%ゥシ血清、 50 μ gZmlになるようにァスコルビン酸 2リン酸を添カ卩したものを使用した。 37°C、 5%CO下で培養した結果、細胞培養支持体材料上のいず

2

れの細胞においても正常に付着し、増殖した。いずれの細胞も培養 14日後にコンフルェントの状態となった。さらに 7日間培養した後、まずセメント芽細胞シートを支持体材料上に付着させたままの状態で、実施例 2で回収した培養歯根膜細胞シートを積層化した。その後、培養歯根膜細胞シートについているキャリアをはずし、セメント芽細胞シートと培養歯根膜細胞シートが積層化したものを得た。その際、この積層化シートは支持体表面に付着させたままの状態を保たせた。次に、コンフルェントになつた骨芽細胞シートを剥離させた。作業は実施例 2と同様な方法で行った。得られた骨芽細胞シートは収縮率 3%以下の 1枚のシートとして十分に強度を持ったものであつた。このものをセメント芽細胞シートと培養歯根膜細胞シートが積層化したシートの上に積層し、シート同士を付着させ、培養支持体表面力セメント芽細胞シート、培養歯根膜細胞シート、骨芽細胞シートの順に 3層に積層化された細胞シートを得た。最後に、セメント芽細胞シートが付着してヽる細胞培養支持体材料を冷却することで 3層に積層化された細胞シートを剥離した。図 5に実施例 2で得られた培養歯根膜細胞シート（単層状）、実施例 3で得られた 3層に積層化された細胞シートを常法に従つてァザン染色、並びに H—E染色した結果を示す。積層化することで膜厚が増えていることが分力ゝる。

例 4

実施例 2で得られた培養歯根膜細胞シートに存在する接着性蛋白質として知られているインテグリン j8 1、フイブロネクチンをィムノブロッテイング法で常法に従って確認した。得られた結果をそれぞれ図 6 (図中の T)、図 7 (図中の Τ)に示す。いずれの接着性蛋白質も高濃度に残存しており、本発明の細胞シートは高生着性が期待できる。上述した市販の 3. 5cm φ培養皿（FALCON 3001、温度応答性ポリマー未被覆)上で、実施例 2と同様な方法で歯根膜細胞を培養した。培養 21日後、トリプシン —EDTA処理を常法に従って行うことで培養した歯根膜細胞を回収した。得られた結果をそれぞれ図 6 (図中の E)、図 7 (図中の E)に示す。いずれの接着性蛋白質も低濃度しか残存していなぐ本発明の細胞シートとしては不適当なものであった。

2

上述した市販の 3. 5cm φ培養皿（FALCON 3001、温度応答性ポリマー未被覆)上で、実施例 2と同様な方法で歯根膜細胞を培養した。培養 21日後、培養した歯根膜細胞をラバープレートによって機械的に剥離回収した。得られた結果をそれぞれ図 6 (図中の S)、図 7 (図中の S)に示す。いずれの接着性蛋白質も高濃度に残存しているが、細胞シートが力学的な作用を受け切断されており、本発明の細胞シートとしては不適当なものであつた。

実施例 5

免疫不全小動物に歯周組織欠損部を作成し、このものへ実施例 2の培養歯根膜細胞シートを移植することを試みた。具体的には、 F344系ヌードラットの上顎臼歯部近心歯槽骨に骨欠損を作製し、セメント質を削除、歯根象牙質を露出させ実験的歯周組織欠損を作製した。実施例 2の培養歯根膜細胞シート下部を上述した露出象牙質面に被覆し、創傷面を保護することで移植を終えた。術後、 1週間後、 4週間後に移植部位を採取し、常法に従いホルマリン固定、 EDTA脱灰、パラフィン包埋の後、 5 μ m毎の連続切片を作製し、 H— E染色を施し、歯周組織の治癒過程を継時的に組織学的に観察した。 1週間後の組織の状態の結果を図 8 (b :組織全体像、 d:培養歯根膜細胞シート接着部拡大像）に示す。図 8dに示すように培養歯根膜細胞が歯根象牙質に密着していることが分かる。術後 4週間後の組織の状態の結果を図 9 (b :組織全体像、 d:培養歯根膜細胞シート接着部拡大像）に示す。図 9dに示すように培養歯根膜細胞シートが歯根象牙質に密着、配向しており、靭帯様組織になっていることが分かる。本発明の培養歯根膜細胞シートを移植することで歯周組織を再建できて、ることが分力る。実施例 5と同様に、 F344系ヌードラットの上顎臼歯部近心歯槽骨に骨欠損を作製し、セメント質を削除、歯根象牙質を露出させ実験的歯周組織欠損を作製した。その後、培養歯根膜細胞シートを移植することなく実施例 5と同様に組織切片を作製し、歯周組織の治癒過程を継時的に組織学的に観察した。 1週間後の組織の状態の結果を図 8 (a :組織全体像、 c :歯周組織欠損部拡大像）に示す。図 8cに示すように歯周組織欠損部がそのまま残っており治癒が進行していないことが分かる。術後 4週間後の組織の状態の結果を図 9 (a:組織全体像、 c :歯周組織欠損部拡大像）に示す。図 9cに示すように術後 4週間後においても歯周組織欠損部がそのまま残っており治癒がほとんど進行して！/ヽなヽことが分かる。本発明の培養歯根膜細胞シートを移植した実施例 5とは明らかに異なる状態であった。

産業上の利用可能性本発明に記載される高生着性再生歯根膜細胞シートであれば、歯根表面への生着性が極めて高ぐ高密度に標的細胞を移植させられ、積極的な歯周組織の再建をはかれる。さらに、移植する細胞シートの積層化を行い 3次元的な極性を持たせることにより、一層効率良く付着器官を再構築させることができ、中等度歯周炎、重度歯周炎、歯肉退縮等の臨床応用が強く期待される。したがって、本発明は細胞工学、医用工学、などの医学、生物学等の分野における極めて有用な発明である。

Claims

請求の範囲

[I] キャリアに密着させた、靭帯様微小構造を有する培養歯根膜細胞シート。

[2] 細胞シートが、歯根膜線維芽細胞、或いはそのものにさらにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞、血管内皮細胞の少なくとも 1つ以上の細胞が混合されたものであることを特徴とする請求項 1記載の培養歯根膜細胞シート。

[3] 細胞シートが積層化されたものである、請求項 1、 2のいずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シート。

[4] 積層化が請求項 2の細胞シートを重ね合わしたものである、請求項 3記載の培養歯根膜細胞シート。

[5] 積層化が請求項 2、 3のいずれかの細胞シートにセメント芽細胞、骨芽細胞、歯肉線維芽細胞の少なくとも 1つ以上の細胞力なる培養細胞シートを重ね合わしたものである、請求項 3、 4のいずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シート。

[6] 積層化が請求項 2、 3のいずれかの細胞シートの上側及び下側の双方に請求項 5 記載の細胞シートを重ね合わしたものであるでことを特徴とする請求項 4〜5のいずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シート。

[7] 積層化が請求項 2、 3のいずれかの細胞シートの上側に骨芽細胞力もなる細胞シートを重ね、下側にセメント芽細胞力もなる細胞シートを重ね合わしたものである、請求項 4〜6のいずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シート。

[8] 積層化が請求項 2、 3のいずれかの細胞シートの上側に歯肉線維芽細胞力もなる細胞シートを重ね、その上にさらに骨芽細胞力なる細胞シートを重ね、下側にセメント芽細胞力もなる細胞シートを重ね合わしたものである、請求項 4〜6のいずれか 1 項記載の培養歯根膜細胞シート。

[9] 蛋白質分解酵素による処理を施されることなく支持体から剥離され、剥離後の細胞シートの収縮率が 20%以下に保たれた、請求項 1〜8のいずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シート。

[10] 剥離する時期が、細胞が支持体表面でコンフルェントになってから 21日以内である、請求項 1〜9の、ずれ力 1項記載の培養歯根膜細胞シート。

[I I] 歯周組織の一部或いは全部を損傷もしくは欠損した患部を治療するための、請求項 1〜10のいずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シート。

[12] 治療が培養歯根膜細胞シートを歯根表面に対し被覆することを特徴とする請求項 1

1記載の培養歯根膜細胞シート。

[13] 治療が培養歯根膜細胞シートの下部側を歯根表面に被覆することを特徴とする請求項 11、 12の、ずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シート。

[14] 患部に被覆する際、患部の大きさ、形状に沿って切断された、請求項 11〜13のいずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シート。

[15] 水に対する上限もしくは下限臨界溶解温度が 0〜80°Cである温度応答性ポリマーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上で細胞を培養し、

(2)培養した培養歯根膜細胞シートをキャリアに密着させ、

(3)そのままキャリアと共に剥離する

ことを特徴とする、培養歯根膜細胞シートの製造方法。

[16] 温度応答性ポリマーが、ポリ（N—イソプロピルアクリルアミド)である、請求項 15記載の培養歯根膜細胞シートの製造方法。

[17] キャリアの形状が中心部を切り抜いたリング状のものであることを特徴とする、請求項 15、 16のいずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シートの製造方法。

[18] 剥離が蛋白質分解酵素による処理が施されていない、請求項 15〜 17のいずれか

1項記載の培養歯根膜細胞シートの製造方法。

[19] 歯周組織の一部或いは全部を損傷もしくは欠損した患部に対し、請求項 1〜14のいずれか 1項記載の培養歯根膜細胞シートを移植することを特徴とする治療法。

[20] 移植方法が歯根表面に対し被覆することを特徴とする、請求項 19記載の治療法。

[21] 歯根表面に被覆する際、培養歯根膜細胞シートを患部の大きさ、形状に沿って切断することを特徴とする、請求項 19、 20のいずれか 1項記載の治療法。

[22] 治療対象となる疾患が中等度歯周炎、重度歯周炎、歯肉退縮のいずれかであることを特徴とする、請求項 19〜21のいずれか 1項に記載の治療法。

[23] 靭帯様微小構造を有する培養歯根膜細胞シートの製造における温度応答性ポリマ一の使用。温度応答性ポリマーが、ポリ（N—イソプロピルアクリルアミド)である、請求項 23記載の使用。