KR20160058077A - L-트립토판 생산능이 강화된 에스케리키아속 미생물 및 이를 이용하여 l-트립토판을 생산하는 방법 - Google Patents

L-트립토판 생산능이 강화된 에스케리키아속 미생물 및 이를 이용하여 l-트립토판을 생산하는 방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 L-트립토판 생산능이 강화된 에스케리키아속 미생물 및 이를 이용하여 L-트립토판을 생산하는 방법에 관한 것이다. 보다 상세하게는, 본 발명은 트립토판 오페론의 억제 및 감쇠조절이 해제되고 안스라닐산염의 축적이 감소되어 L-트립토판 생산능이 강화된 대장균 변이주 및 이를 이용하여 L-트립토판을 생산하는 방법에 관한 것이다.

Description

L-트립토판 생산능이 강화된 에스케리키아속 미생물 및 이를 이용하여 L-트립토판을 생산하는 방법{A MICROORGANISM OF ESCHERICHIA COLI GENUS HAVING ENHANCED L-TRYPTOPHAN PRODUCING ACTIVITY AND METHOD FOR PRODUCING L-TRYPTOPHAN USING THE SAME}
본 발명은 L-트립토판 생산능이 강화된 에스케리키아속 미생물 및 이를 이용하여 L-트립토판을 생산하는 방법에 관한 것이다.
필수 아미노산 중 하나인 L-트립토판은 사료첨가제뿐만 아니라, 수액제 등의 의약품 원료 및 건강식품소재 등으로 널리 사용되어 왔으며, 화학합성법, 효소반응법, 발효법 등을 이용하여 생산되어 왔다.
그 중 최근의 생산 방향은 미생물에 의한 발효법으로, 사용되는 미생물들은 산업화 초기 화학적 돌연변이를 통한 유사체 내성 선별 균주들이 주로 사용되어 왔으나, 1990년대 유전자 재조합 기술의 급격한 발전과 분자수준의 조절 기작들이 규명됨에 따라 유전자 조작 기법을 이용한 대장균과 코리네박테리움 재조합 균주들이 주로 사용되고 있다.
미생물에 의한 트립토판 생산은 해당과정(glycolysis)의 중간 산물인 PEP(PhospoEnolPyruvate)와 5탄당 회로의 중간물질인 E4P(Erythrose-4-Phosphate)가 중합반응하여 만들어지는 DAHP(3-DeoxyD-arobino-heptulosonate-7-phosphate)로부터 시작된다. 이후 방향족 공통 생합성 경로를 거쳐 코리스민산(chorismate)으로부터 분기되는 생합성 경로로 이루어진다. 구체적으로는, 트립토판은 유전자 trpE로부터 합성되는 안스라닐산염 합성효소(anthranilate synthase, EC 4.1.3.27), 유전자 trpD로부터 합성되는 안스라닐산염 합성효소(anthranilate synthase, EC 4.1.3.27)와 안스라닐산염 PRPP 트랜스퍼라제(anthranilate PRPP transferase, EC 2.4.1.28), 유전자 trpC로부터 합성되는 인돌-3-글리세롤 인산 합성효소 (indole-3-glycerol phosphate synthase, EC 4.1.1.48)와 포스포라이보실 안스라닐산염 이성화효소(phosphoribosylanthranilate isomerase, EC 5.3.1.24), 유전자 trpB와 trpA에 의해 합성되는 트립토판 합성효소(tryptophan synthase, EC 4.2.1.20)에 의해 합성된다. 상기 반응을 매개하는 효소들을 암호화하는 유전자군인 trpEDCBA는 하나의 조절부위를 포함하는 오페론 구조로 염색체 내부에 존재한다.
트립토판 오페론은 세포가 요구하는 충분한 양의 트립토판을 생산할 수 있도록 통상적으로 활발히 전사하지만, 주변에 트립토판이 있으면 억제인자(repressor)가 트립토판과 결합하여 트립토판 오페론이 불활성화되므로 전사가 억제된다.
또한, 쓰레오닌, 페닐알라닌, 루이신, 트립토판, 히스티딘과 같은 아미노산 생합성 오페론의 경우, 감쇠기작(attenuation)이라는 또 다른 조절 기작을 가지고 있다(J Bacteriol.(1991) 173,2328-2340). 이 감쇠기작은 염색체상에서 프로모터와 오페론의 첫 번째 유전자 사이의 영역이 가지고 있는 특이한 서열구간에서, 아미노산이 부족한 조건에서는 mRNA의 구조가 해독 과정에 용이한 구조로 바뀌어 생합성 유전자의 발현을 촉진시키지만, 해당 아미노산이 풍부한 조건에서는 짧게 전사된 mRNA가 헤어핀 구조(hairpin structure)라고 명명된 3차원적 구조를 형성하여 해독과정을 막는 기작으로 알려져 있다(J Biol Chem., (1988) 263:609-612).
L-트립토판 생산균주의 개발 방향은 초기에는 최종 산물인 트립토판에 의해 저해를 받는 트립토판 생합성 경로 효소들의 피드백 저해를 극복하는 방법, 혹은 트립토판 생합성 효소의 발현 강화를 위해 염색체상이나 벡터 형태로 트립토판 오페론 유전자의 카피수를 늘리는 것과 같이 대사과정의 효소 합성 강화를 통한 효율화가 주된 목표였다(Appl. Environ. Microbiol.,(1982) 43:289-297; Appl. Microbiol. Biotechnol.,(1993) 40:301-305; Trends Biotechnol.,(1996) 14:250-256).
L-트립토판을 생산하는 능력을 미생물에 부여하기 위해서는 크게 화학적 돌연변이에 의해 트립토판 유사체 혹은 중간 산물인 안스라닐산염에 내성을 갖도록 선별하는 방법이나, 유전공학적 방법에 의해 개변되는 것이 있을 수 있다. 화학적 돌연변이에 의한 사례로는 대한민국 등록특허 제1987-0001813호, 대한민국 등록특허 제0949312호 등이 있을 수 있고, 유전공학적 방법을 이용한 사례로는 방향족 아미노산 경로로 들어오는 생합성을 증가시키기 위해 트랜스케토라아제(transketolase)를 암호화하는 tktA 유전자나, 갈락토오스 퍼미아제(galactose permease)를 암호화 하는 galP 유전자를 강화하여 E4P(Erythrose4-phosphate)나 PEP(phosphoenolpyruvate)의 공급을 각각 증가시키고, DAHP(3-deoxy-D-arabino-heptulosonate-7-phosphate) 합성효소의 피드백저해를 풀어주어 방향족 경로를 강화하는 방향의 전략을 도입한 균주(Trends Biotechnol.,(1996)14:250-256, Microbial Cell Factories (2009) 8:19), 혹은 트립토판 오페론 유전자를 벡터 혹은 염색체 내부로 추가 도입한 균주(Appl. Environ. Microbiol.,(1982) 43:289-297, Appl. Microbiol. Biotechnol.,(1993) 40:301-305)등 다양한 접근 방식이 있을 수 있다.
그러나, 생합성 효소의 피드백 저해를 해제하는 것과 함께 트립토판 오페론을 도입하여도, 오페론 유전자들의 전사수준에서 억제 및 감쇠와 같은 조절기작이 존재하기 때문에 당해 유전자를 강화시킨 만큼 트립토판 수율이 증가하지 않는 어려움이 있어 왔다.
본 발명자들은 L-트립토판을 생산하는 균주에서 오페론 유전자들의 전사수준의 억제 및 감쇠를 해제하는 방법 및 이를 이용해 트립토판 생합성 효소를 강화시킬 수 있는 방법을 고안하였다. 추가로, 여러 가지 종류의 트립토판 생산 균주가 트립토판 오페론을 강화함에 따라 중간 물질인 안스라닐산염이 축적되면서 수율이 상승하지 않는 문제를 해결하기 위하여, 트립토판 오페론 유전자 중 안스라닐산염 합성효소(anthranilate synthase, TrpE)를 암호화하는 유전자를 제외한 나머지 유전자군만을 피드백 저해나 억제기작 등의 조절기작이 해제된 형태로 발현시켜 트립토판의 생산수율은 상승하고, 안스라닐산염의 축적은 낮아진 트립토판 생산균주를 제작하였다.
본 발명의 목적은 트립토판 오페론의 억제 및 감쇠조절이 해제되고, 안스라닐산염의 축적이 감소되도록 변형된 L-트립토판의 생산능이 강화된 에스케리키아속 미생물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 에스케리키아속 미생물을 이용하여 L-트립토판을 생산하는 방법을 제공하는 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 내재적 트립토판 오페론에서 서열번호 1의 염기서열을 가지는 발현조절부위 중 서열번호 2의 염기서열을 가지는 리더펩티드(leader peptide)의 전체 또는 일부가 결손되어 L-트립토판의 생산능이 강화된 L-트립토판을 생산하는 재조합 에스케리키아속 미생물을 제공한다.
본 발명은 또한 상기 재조합 에스케리키아속 미생물을 배양하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 L-트립토판 생산방법을 제공한다.
본 발명에 따라 제조된 재조합 미생물은 안스라닐산염의 과다 축적현상을 해소하고, L-트립토판을 높은 수율로 생산하는 데에 유용하게 이용될 수 있다.
도 1은 대장균 염색체 내에 존재하는 트립토판 오페론 유전자와 그 조절 부위 및 본 명세서에 기술된 결실형태를 간단히 나타내는 도면이다.
A) 대장균 염색체 내에 존재하는 트립토판 오페론 유전자와 그 조절 부위(Ptrp)
B) Ptrp형태
C) 리더펩티드를 코딩하는 유전자 trpL이 결실된 형태(DtrpL)
D) 리더펩티드를 코딩하는 유전자 trpL 및 감쇠조절인자가 결실된 형태(Dtrp_att)
도 2는 트립토판 오페론 발현조절부위의 세기 측정을 위해 사용된 pCL-GFP 벡터를 나타내는 도면이다.
도 3은 트립토판 생합성 유전자 trpDCBA를 염색체 내로 도입하여 카피수를 증가시키기 위한 벡터 pINT17E-Patt-trpDCBA를 나타내는 도면이다.
이하, 본 발명을 자세히 설명한다.
본 발명은 내재적 트립토판 오페론에서 서열번호 1의 염기서열을 가지는 발현조절부위 중 서열번호 2의 염기서열을 가지는 리더펩티드(leader peptide)의 전체 또는 일부가 결손된, L-트립토판의 생산능이 강화된 재조합 에스케리키아속 미생물을 제공한다.
상기 용어 '트립토판 오페론(tryptophan operon or Trp operon)'은 trpEDCBA 유전자를 모두 포괄하는 전체 오페론을 나타내며, 서열번호 9로 기재되는 염기서열을 가진다.
본 발명에서 사용 가능한 L-트립토판 생산 미생물은 L-트립토판 생산능을 가지는 미생물이라면, 원핵 미생물 어느 것이나 포함된다. 예를 들면, 에스케리키아 (Escherichia) 속, 어위니아 (Erwinia) 속, 세라티아 (Serratia) 속, 프로비덴시아 (Providencia) 속, 코리네박테리움 (Corynebacterium) 속 및 브레비박테리움 (Brevibacterium)속에 속하는 미생물 균주가 포함될 수 있다. 바람직하게는, 에스케리키아 속에 속하는 미생물이고, 더 바람직하게는 대장균인 것을 특징으로 하는 미생물이다. 특히 바람직하게는, 상기 대장균은 안스라닐산염 합성효소(trpE), 안스라닐산염 PRPP 트랜스퍼라아제(trpD), 포스포라이보실 안스라닐산염 이성화효소 (trpC), 트립토판 합성효소(trpA, trpB)와 같은 트립토판 생합성 효소들의 활성이 강화되면서 피드백 해제 형태의 3-데옥시-D-아라비노헵툴로손산-7-인산 합성효소(aroG)를 이용하고, 3-데하이드로퀴닌산염 합성효소(aroB), 시킴산 탈수소효소(aroE), 시킴산 인산화효소(aroL), 5-에놀산피루빌시킴산-3-인산 합성효소(aroA), 코리슴산 합성효소(aroC)와 같은 방향족 생합성 경로의 효소활성이 강화되고, 트립토판 생합성 경로 중간물질인 세린과 PRPP의 공급을 강화하기 위해 포스포글리세린산 탈수소효소(serA) 혹은 케톨 전이효소(tktA)의 활성이 강화되고, 방향족 경로의 다른 가지인 프레펜산 탈수효소, 코리슴산 뮤타제(pheA) 혹은 프레펜산 탈수소효소, 코리슴산 뮤타제(tyrA)와 트립토판을 분해하거나 재유입하는 트립토판 가수분해효소(tnaA), 트립토판 트랜스포터 (tnaB, mtr)의 활성이 제거될 수 있다.
더욱 바람직하게는 본 발명에 따른 재조합 대장균 CA04-2004 (수탁번호 KCCM11246P)이다.
상기 용어 내재적 트립토판 오페론의 '발현조절부위(expression regulatory region)'는 프로모터(promoter), 리더펩티드(leader peptide) 및 내재적 감쇠조절인자(attenuator)가 포함된 영역을 의미하며, 바람직하게는 서열번호 1로 기재되는 염기 서열을 가진다.
상기 용어 '리더 펩티드(leader peptide)'는 유전자 개시코돈 상류의 선도배열에 의해 코딩되는 저분자량 펩티드를 의미하며, 바람직하게는 서열번호 2로 기재되는 염기 서열을 가진다. 이에 의해 발현되는 폴리펩티드는 서열번호 4로 기재되는 아미노산 서열을 가진다. 이 리더펩티드는 트립토판의 농도가 높으면 머리핀 구조를 형성함으로써 내재적 감쇠조절인자의 구조 형성을 촉진하여 전사를 종결한다.
본 발명에 있어 '결손(deletion)'은 목적 유전자의 개시코돈에 해당하는 염기서열로부터 종결코돈까지의 염기서열 영역 혹은 그 조절부위 염기서열 중 일부 혹은 전부를 염색체 내부에서 제거한 형태를 의미한다.
본 발명은 또한 서열번호 3의 염기서열을 가지는 내재적 감쇠조절인자(attenuator)의 전체 또는 일부가 더 결손되어 L-트립토판의 생산능이 강화된 것을 특징으로 하는 재조합 에스케리키아속 미생물을 제공한다.
상기 용어 '내재적 감쇠조절인자(endogeneous attenuator)'는 감쇠기작을 일으키는 발현조절부위 중 프로모터 및 리더펩티드를 제외한 서열번호 3의 염기서열을 가진 영역을 의미한다.
본 발명은 또한 트립토판 오페론이 암호화하는 단백질의 활성이 추가로 강화된 재조합 에스케리키아속 미생물을 제공한다.
본 발명은 또한 안스라닐산염 합성효소를 코딩하는 trpE 유전자를 제외한 트립토판 생합성 유전자군 trpDCBA에 의해 암호화된 단백질의 활성이 추가로 강화된 것을 특징으로 하는 재조합 에스케리키아속 미생물을 제공한다.
상기 용어 '트립토판 생합성 유전자군(tryptophan biosynthesis cluster)이라는 용어는 트립토판 오페론의 유전자들인 trpE, trpD, trpC, trpB, trpA 중 두 개 이상 조합으로 이루어진 유전자 형태를 의미한다. 바람직하게는, 서열번호 10의 염기서열을 가지는 trpDCBA 유전자군일 수 있으며, 여기에서 상기 trpD 유전자는 서열번호 37의 아미노산 서열을 가지는 단백질을 암호화하고, 상기 trpC 유전자는 서열번호 38의 아미노산 서열을 가지는 단백질을 암호화하고, 상기 trpB 유전자는 서열번호 39의 아미노산 서열을 가지는 단백질을 암호화하며, 상기 trpA 유전자는 서열번호 40의 아미노산 서열을 가지는 단백질을 암호화한다.
트립토판 오페론 중 trpE 유전자에 의해 암호화되는 안스라닐산염 합성효소를 제외한 트립토판 생합성 유전자군만의 활성을 강화시키는 이유는 트립토판 생산 균주가 트립토판 오페론을 강화함에 따라 중간 물질인 안스라닐산염이 축적되면서 수율이 상승하지 않는 문제를 해결하기 위함이다.
유전자의 발현을 강화시키는 방법으로는 1) 염색체 내 또는 세포 내 카피수를 증가시키거나, 2) 염색체의 자가 프로모터를 보다 강력한 형태의 외래 프로모터로 치환하거나 활성이 강화된 형태로 변형하는 방법이 있을 수 있다.
상기 카피수를 증가시키는 방법으로는 유전자를 벡터에 도입하여 발현을 강화시키는 방법이 있을 수 있다. 본 발명에서 사용 가능한 벡터는 플라스미드 벡터로서 pBR계, pUC계, pBluescriptII계, pGEM계, pTZ계, pCL계 및 pET계 등을 사용할 수 있다. 본 발명에서 사용 가능한 벡터는 특별히 제한되는 것이 아니며, 공지된 발현 벡터를 사용할 수 있다. 바람직하게는, pACYC177, pACYC184, pCL, pECCG117, pUC19, pBR322, pMW118, pCC1BAC 벡터 등을 사용할 수 있다. 가장 바람직하게는, pACYC177, pCL, pCC1BAC 벡터를 사용할 수 있다.
한편, 상기 이용 가능한 외래 프로모터의 형태는 trc, lac, tac 등 기 공지된 프로모터들이 있을 수 있으나, 이에 제한되지는 않는다. 또한, 염색체의 자가 프로모터를 보다 강력한 형태로 변형시키기 위해서 상기 기술한 바와 같이 리더펩티드의 전체 또는 일부를 결손시키거나 추가로 내재적 감쇠조절인자의 전체 또는 일부를 결손시킬 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 바람직한 구현에서, 본 발명은 내재적 트립토판 오페론의 서열번호 1의 염기서열을 가지는 발현조절부위 중 서열번호 2의 염기서열을 가지는 리더펩티드(leader peptide)의 전체 또는 일부가 결손되고, 서열번호 3의 염기서열을 가지는 내재적 감쇠조절인자(attenuator)의 전체 또는 일부가 결손되어 L-트립토판의 생산능이 강화되고, 추가로 안스라닐산염 합성효소를 코딩하는 trpE 유전자를 제외한 트립토판 생합성 유전자군 trpDCBA가 암호화하는 각각 서열번호 37, 38, 39 및 40의 아미노산 서열을 가지는 단백질의 활성을 강화시켜 제조된, L-트립토판을 생산하는 재조합 에스케리키아속 미생물을 제조하였으며, 이를 수탁번호 KCCM11246P로 기탁하였다.
본 발명은 또한 상기 L-트립토판의 생산능이 강화된 재조합 에스케리키아속 미생물을 배양하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 L-트립토판 생산방법을 제공한다.
본 발명의 바람직한 양상에서, 본 발명은 내재적 트립토판 오페론에서 서열번호 1의 염기서열을 가지는 발현조절부위 중 서열번호 2의 염기서열을 가지는 리더펩티드(leader peptide)의 전체 또는 일부가 결손되고, 서열번호 3의 염기서열을 가지는 내재적 감쇠조절인자(attenuator)의 전체 또는 일부가 결손되어 L-트립토판의 생산능이 강화되고, 추가로 안스라닐산염 합성효소를 코딩하는 trpE 유전자를 제외한 트립토판 생합성 유전자군 trpDCBA의 발현을 강화시켜 트립토판 오페론이 암호화하는 단백질의 활성이 강화되어, L-트립토판 생산능이 강화된 재조합 에스케리키아속 미생물을 배양하는 단계를 포함하는 방법을 제공한다.
본 발명의 미생물의 배양에 사용되는 배지 및 기타 배양조건은 통상의 에스케리키아속 미생물의 배양에 사용되는 배지이면 어느 것이나 사용될 수 있으나, 본 발명의 미생물의 요구 조건을 적절하게 만족시켜야 한다. 바람직하게는, 본 발명의 미생물을 적당한 탄소원, 질소원, 아미노산, 비타민 등을 함유한 통상의 배지 내에서 호기성 조건 하에서 온도, pH 등을 조절하면서 배양한다.
이때, 탄소원으로는 글루코오스, 프룩토오스, 수크로오스, 말토오스, 만니톨, 소르비톨과 같은 탄수화물, 당 알콜, 글리세롤, 피루브산, 락트산 및 시트르산과 같은 알콜 및 유기산, 글루탐산, 메티오닌 및 리신과 같은 아미노산 등이 포함된다. 전분 가수분해물, 당밀, 블랙스트랩 당밀, 쌀겨울, 카사버, 사탕수수찌꺼기 및 옥수수 침지액 같은 천연의 유기 영양원을 사용할 수 있으며, 바람직하게는 글루코오스 및 살균된 전처리 당밀(즉, 환원당으로 전환된 당밀) 등과 같은 탄수화물이고, 그 외의 적정량의 탄소원을 제한 없이 다양하게 이용할 수 있다.
질소원으로는 암모니아, 황산암모늄, 염화암모늄, 초산암모늄, 인산암모늄, 탄산안모늄, 및 질산암모늄과 같은 무기질소원; 글루탐산, 메티오닌, 글루타민과 같은 아미노산 및 펩톤, NZ-아민, 육류 추출물, 효모 추출물, 맥아 추출물, 옥수수 침지액, 카세인 가수분해물, 어류 또는 그의 분해생성물, 탈지 대두 케이크 또는 그의 분해생성물 등 유기질소원이 사용될 수 있다. 이들 질소원은 단독 또는 조합되어 사용될 수 있다.
상기 배지에는 인원으로서 인산 제1칼륨, 인산 제2칼륨 및 대응되는 소디움-함유 염이 포함될 수 있다. 무기화합물로는 염화나트륨, 염화칼슘, 염화철, 황산마그네슘, 황산철, 황산망간 및 탄산칼슘 등이 사용될 수 있으며, 그 외에 아미노산, 비타민 및 적절한 전구체 등이 포함될 수 있다. 이들 배지 또는 전구체는 배양물에 회분식 또는 연속식으로 첨가될 수 있다.
배양 중에 수산화암모늄, 수산화칼륨, 암모니아, 인산 및 황산과 같은 화합물을 배양물에 적절한 방식으로 첨가하여, 배양물의 pH를 조정할 수 있다. 또한, 배양 중에는 지방산 폴리글리콜 에스테르와 같은 소포제를 사용하여 기포 생성을 억제할 수 있다. 또한, 배양물의 호기 상태를 유지하기 위하여, 배양물 내로 산소 또는 산소 함유 기체를 주입하거나 혐기 및 미호기 상태를 유지하기 위해 기체의 주입 없이 혹은 질소, 수소 또는 이산화탄소 가스를 주입할 수 있다.
배양물의 온도는 보통 27℃ 내지 37℃, 바람직하게는 30℃ 내지 35℃이다. 배양 기간은 원하는 유용 물질의 생성량이 수득될 때까지 계속될 수 있으며, 바람직하게는 10 내지 100 시간이다.
본 발명의 상기 배양 단계에서 생산된 L-아미노산은 추가로 정제 또는 회수하는 단계를 포함할 수 있으며, 상기 정제 또는 회수 방법은 본 발명의 미생물의 배양방법, 예를 들어 회분식, 연속식 또는 유가식 배양 방법 등에 따라 당해 분야에 공지된 적합한 방법을 이용하여 배양액으로부터 목적하는 L-아미노산을 정제 또는 회수할 수 있다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명하고자 한다. 그러나, 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
< 실시예 >
실시예1 : 트립토판 생합성 발현조절부위의 해제를 위하여 리더펩티드가 제거된 형태의 발현조절부위와 GFP 융합 벡터의 제작
도 1에 나타낸 바와 같이, 프로모터(P), 리더펩티드(L) 및 감쇠조절인자(A)로 구성된 트립토판 오페론의 발현조절부위 중 리더펩티드(L)를 코딩하는 유전자인 trpL이 결손된 발현조절부위(이하 'DtrpL'이라 칭함; 도 1의 C에 해당)를 증폭하기 위하여, 미국생물자원센터 (American Type Culture Collection: ATCC)로부터 구매한 대장균 W3110 균주의 염색체(GenBank accession number AC000091)를 주형으로 중합효소연쇄반응(Polymerase Chain Reaction; 이하 'PCR법'이라 함)을 통하여 증폭하였다.
구체적으로, 프라이머 1과 2를 이용하여 94℃에서 1분간 변성, 58℃에서 30초간 어닐링, 72℃에서 30초간 중합하는 조건을 Pfu 폴리머라아제로 30회 반복하는 PCR 법을 통하여 5' 영역에 KpnI 제한효소 자리를 가진 155 bp 단편을 증폭하였다. 두 번째로, 프라이머 3과 4를 이용하여 상기 기재된 PCR 법을 통하여 3' 영역에 EcoRV 제한효소 자리를 가진 105 bp의 단편을 증폭하였다. 얻어진 DNA 단편들은 GeneAllR ExpinTM GEL SV키트(Seoul, Korea)로 분리한 후, 교차 PCR을 위한 주형으로 사용하였다.
상기 DtrpL을 만들기 위하여, 프라이머 1과 4를 이용하여 위에서 얻어진 두 DNA 단편을 주형으로 하여 교차 PCR을 수행하였다. 구체적으로, 상기 기재된 PCR 법을 통하여 245 bp의 단편을 증폭하였다(서열번호 5). 증폭된 단편은 제한효소 KpnI과 EcoRV로 처리한 후, 같은 효소로 처리된 pCL1920GFP(서열번호 8)로 접합(ligation)을 통해 pCL-DtrpL-GFP를 제작하였다.
트립토판 오페론의 발현조절부위 중 리더펩티드(L) 및 감쇠조절인자(A)를 코딩하는 유전자 부위가 함께 결손된 형태(이하 'Dtrp_att'라 칭함)를 증폭하기 위하여, 상기 대장균 W3110 균주의 염색체를 주형으로 프라이머 1과 5를 이용하여 상기 PCR 법을 통하여 5' 영역에 KpnI과 3' 영역에 EcoRV 제한효소 자리를 가진 148bp의 단편을 증폭하였다(서열번호 6). 증폭된 단편은 제한효소 KpnI과 EcoRV로 처리한 후, 같은 효소로 처리된 pCL1920GFP로 접합을 통해 pCL-Dtrp_att-GFP를 제작하였다.
또한, 향후 실험에서 대조군으로 사용하기 위한 야생형 발현조절부위를 가진 벡터를 만들기 위하여, 대장균 W3110 균주의 염색체를 주형으로 프라이머 1과 4를 이용하여 상기 기재된 PCR 법을 통하여 5' 영역에 KpnI과 3' 영역에 EcoRV 제한효소 자리를 가진 290 bp의 단편을 증폭하였다. 증폭된 단편은 제한효소 KpnI과 EcoRV로 처리한 후, 같은 효소로 처리된 pCL1920GFP로 접합을 통해 pCL-Ptrp-GFP를 제작하였다.
프라이머 1
5' TTAGGTACCGGCGCACTCCCGTTCTGGATA 3' (서열번호 11)
프라이머 2
5' ACTGCCCGTTGTCGATACCCTTTTTACGT 3' (서열번호 12)
프라이머 3
5' TCGACAACGGGCAGTGTATTCACCATG 3' (서열번호 13)
프라이머 4
5' AATGATATCTGTTATTCTCTAATTTTGTT 3' (서열번호 14)
프라이머 5
5' AATGATATCACCCTTTTTACGTGAACTTG 3' (서열번호 15)
실시예2 : GFP 의 발현량 측정
앞서 기술한 실시예 1에서 제작된 pCL-DtrpL-GFP, pCL-Dtrp_att-GFP 및 pCL-Ptrp-GFP 벡터를 야생형 균주인 대장균 W3110과 트립토판 생산균주인 대장균 KCCM10812P에 형질전환 방법을 통해 각각 도입한 후 GFP의 세기를 측정하였다.
본 실시예에 사용된 모균주인 대장균 KCCM10812P(대한민국 등록특허 10-0792095)는 L-페닐알라닌 생산능을 갖는 대장균 변이주(KFCC 10066, 대한민국 특허 1985-0001232)로부터 유래된 균주로, 염색체상의 트립토판 요구성이 해제되고, pheA, trpR, mtr 및 tnaAB 유전자가 불활성화되고, aroG, trpE 유전자가 변이된 것을 특징으로 하는 L-트립토판 생산능을 갖는 재조합 대장균이다.
구체적으로는, 250 ml 플라스크에 준비된 25 ml의 M9 배지(0.5% glucose + 2 g/L Yeast extract 첨가. KCCM10812의 경우에는 0.1g/L tyrosine, 0.1g/L phenylalanine 추가 첨가)에 균체를 1/100 (v/v)접종하고, 37℃에서 배양하여 해당 OD에서 원심 분리를 통해 균체를 회수하고, 회수된 균체는 1xTE로 1회 세척하여 GFP 측정에 사용하였다. GFP측정은 Synergy HT Multi-Mode Microplate Reader(Biotek, USA)를 사용하였다.
측정결과를 표 1에 나타내었다. OD1과 OD3은 각각 배양액을 적정 희석농도로 희석한 후, 시마즈사(Shimadzu)의 UV미니-1240(UVmini-1240) 흡광계를 이용하여 600 nm에서 측정한 OD 값을 나타낸다.
표 1 에 나타난 바와 같이, 야생형인 W3110균주의 경우 Ptrp의 상대강도를 1로 계산하였을 때, 리더펩티드와 감쇠조절인자가 제거된 Dtrp_att의 상대 강도가 OD값이 1일 경우(OD1)에는 약 7배, OD값이 3일 경우(OD3)에는 10배로 가장 강하였고, 리더펩티드만을 제거한 DtrpL은 야생형 발현조절부위(Ptrp)에 비해 약 1.5~2배 증가하였다. 그에 비해 생산균인 KCCM 10812P에 도입하였을 때는 Ptrp의 상대강도를 1로 계산하였을 때, 리더펩티드와 감쇠조절인자가 제거된 Dtrp_att의 상대 강도가 OD값이 1일 경우(OD1)에는 약 19배, OD값이 3일 경우(OD3)에는 27배로 가장 강하였고, 리더펩티드만을 제거한 DtrpL은 야생형 발현조절부위(Ptrp)에 비해 약 4배 증가하였다. 이 결과로 비추어볼 때, 야생형의 경우 생산균에 비해 약하긴 하나, 리더 펩티드 혹은 감쇠 조절인자의 제거에 따라 발현 증가가 나타남을 확인할 수 있다.
균주 프로모터 GFP 측정값 (fold)
OD1 OD3
W3110 Dtrp_att 6.5±0.7 9.6±1.1
DtrpL 1.5±0.2 2.4±0.3
Ptrp 1 1
KCCM10812P Dtrp_att 18.9±1.3 27±2.0
DtrpL 3.8±0.5 3.9±0.8
Ptrp 1 1
실시예 3 : 발현조절부위가 교체된 트립토판 오페론(trpEDCBA)을 가진 벡터의 제작
실시예 2의 결과를 바탕으로 트립토판 오페론 유전자를 벡터 형태로 강화하는 대장균을 제작하기 위하여, 모균주인 대장균 KCCM10812P의 염색체를 주형으로 프라이머 6과 7을 이용하여 상기 기재된 PCR 법을 통하여 6564 bp의 단편을 증폭하였다(서열번호 9).
증폭된 DNA단편은 GeneAllR ExpinTM GEL SV키트(Seoul, Korea)를 통해 회수한 후, 제한효소 EcoRV와 HindIII로 처리하여 준비하였다. 준비된 DNA 단편과 클로닝을 위하여 pCL-Dtrp_att-GFP, pCL-DtrpL-GFP, pCL-Ptrp_GFP 벡터는 EcoRV와 HindIII로 처리하여 GFP부분을 제거한 4291bp로 제작하였다. 준비된 벡터와 인서트(insert)는 접합 후 형질전환 방법을 통해 대장균 DH5a로 도입하였고, 이 과정을 거쳐 pCL-Dtrp_att-trpEDCBA, pCL-DtrpL-trpEDCBA, pCL-Ptrp_trpEDCBA 벡터를 각각 제작하였다.
프라이머 6
5' CCCGATATCATGCAAACACAAAAACCGAC 3' (서열번호 16)
프라이머 7
5' GGGAAGCTTAAAGGATCCGTGGGATTAACTGCGCGTCGCCGCTTT 3' (서열번호 17)
실시예 4: 발현조절부위가 교체되고 trpE 가 제외된 트립토판 생합성 유전자군( trpDCBA )을 가진 벡터의 제작
앞서 기술한 실시예 1에서 제작된 pCL-Dtrp_att-GFP, pCL-DtrpL-GFP, pCL-Ptrp_GFP벡터의 GFP 영역을 trpDCBA로 치환하는 벡터를 제작하기 위하여, pCL Dtrp_att-GFP, pCL-DtrpL-GFP, pCL-Ptrp_GFP 벡터를 EcoRV와 HindIII로 처리하여 GFP 부분을 제거한 4291bp로 제작하였다.
이후, 트립토판 오페론 중 trpDCBA 유전자를 벡터 형태로 강화하는 대장균을 제작하기 위하여, 모균주인 대장균 KCCM10812P 염색체를 주형으로 프라이머 7과 8을 이용하여 상기 기재된 PCR 법을 통하여 5002 bp의 단편을 증폭하였다 (서열번호 10).
증폭된 DNA 단편은 GeneAllR ExpinTM GEL SV키트(Seoul, Korea)을 통해 회수한 후, 제한효소 EcoRV와 HindIII로 처리하여 준비하였다. 준비된 벡터와 인서트는 접합 후 형질전환 방법을 통해 대장균 DH5a로 도입하였고, 그 결과 pCL-Dtrp_att-trpDCBA, pCL-DtrpL-trpDCBA, pCL-Ptrp_trpDCBA 벡터를 각각 제작하였다.
프라이머 8
5' AAAGATATCATGGCTGACATTCTGCTGCT 3' (서열번호 18)
실시예 5: 다양한 발현조절부위를 가진 트립토판 오페론 유전자의 낮은 카피 수 벡터 제작
대장균 내에서 낮은 카피수로 발현되는 대표적인 벡터는 pCC1BAC(Epicentre, USA)이다. 이 벡터를 사용하여 트립토판 오페론 유전자를 낮은 카피수로 발현시키기 위하여, 앞서 기술한 실시예 3과 4에서 제작된 pCL-Dtrp_att-trpEDCBA, pCL-DtrpL-trpEDCBA, pCL-Ptrp_trpEDCBA와 pCL-Dtrp_att-trpDCBA, pCL-DtrpL-trpDCBA, pCL-Ptrp_trpDCBA 벡터들을 제한효소 HindIII로 절단하였다.
절단 후 얻어진 DNA 단편들은 아가로스겔 전기영동 후 각각의 크기대로 절단하여 GeneAllR ExpinTM GEL SV키트(Seoul, Korea)를 사용하여 회수하였고, pCC1BAC의 HindIII 위치가 절단된 벡터를 이용하여 접합 후 형질전환 방법을 통해 대장균 DH5a로 도입하였다.
도입된 균주는 LB Cm 고체배지 (LB + 클로람페니콜 아가 플레이트)에 도말하여 Cm 내성을 지닌 균체를 대상으로 확인을 진행하여, pBAC-Dtrp_att-trpEDCBA, pBAC-DtrpL-trpEDCBA, pBAC-Ptrp_trpEDCBA와 pBAC-Dtrp_att-trpDCBA, pBAC-DtrpL-trpDCBA, pBAC-Ptrp_trpDCBA 벡터들을 제작하였다.
실시예 6: pheA 유전자가 불활성화된 대장균 균주의 제작
야생형 대장균 W3110 균주로부터 트립토판 생산균주에 가까운 균주를 제작하기 위하여 코리슴산 뮤타제(chorismate mutase)/프레펜산 탈수효소(prephenate dehydratase,CM-PDT)를 코딩하는 pheA 유전자(NCBI gene ID: 12934467)를 상동 재조합에 의한 결실에 의하여 불활성화시켰다. CM-PDT는 코리슴산(chorismate)으로부터 페닐알라닌(phenylalanine)을 생성하는 첫번째 단계에 있는 효소로, pheA유전자 결손은 페닐알라닌 생합성 경로를 억제하는데 사용되었다. 이를 위하여, Datsenko KA 등이 개발한 람다 레드 재조합효소(lambda Red recombinase)를 이용한 돌연변이 제작 기법인 1단계 불활성화(one step inactivation) 방법을 사용하였다(One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products, Datsenko KA, Wanner BL., Proc Natl Acad Sci U S A. 2000 Jun 6;97(12):6640-5). 유전자 내부로의 삽입을 확인하기 위한 마커로는 pUCprmfmloxP의 클로람페니콜 유전자를 사용하였다(대한민국 특허공개번호 제2009-0075549호).
상기 pheA 유전자의 일부분과 상기 pUCprmfmloxP 벡터의 클로람페니콜(Chloramphenicol) 내성 유전자의 일부 염기서열을 갖는 프라이머 9과 프라이머 10를 이용하고, 벡터 pUCprmfmloxP을 주형으로 하는 PCR에 의해 약 1200bp의 유전자 단편을 증폭하였다.
프라이머 9
5'-GGCCTCCCAAATCGGGGGGCCTTTTTTATTGATAACAAAAAGGCAACACTAGGTGACACTATAGAACGCG - 3' (서열번호 19)
프라이머10
5'-AACAGCCCAATACCTTCATTGAACGGGTGATTTCCCCTAACTCTTTCAATTAGTGGATCTGATGGGTACC -3' (서열번호 20)
상기 PCR 증폭을 통하여 얻어진 DNA 단편을 0.8% 아가로스겔에서 전기영동한 후 용리하여 2차 PCR의 주형으로 사용하였다. 2차 PCR은 1차 DNA 단편의 5' 및 3'영역의 20 bp의 상보적 염기서열을 가지도록 하였고, 추가적으로 pheA 유전자의 5'및 3' 영역을 더한 프라이머 11과 프라이머 12를 이용하여 용리된 1차 PCR 산물을 주형으로 다시 PCR에 의해 약 1300bp의 유전자 단편을 증폭하였다. 상기 과정을 거쳐 얻어진 DNA 단편을 0.8% 아가로스겔에서 전기영동한 후 용리하여 재조합에 사용하였다.
프라이머 11
5'-GAATGGGAGGCGTTTCGTCGTGTGAAACAGAATGCGAAGACGAACAATAAGGCCTCCCAAATCGGGGGGC -3' (서열번호 21)
프라이머 12
5-GGCACCTTTTCATCAGGTTGGATCAACAGGCACTACGTTCTCACTTGGGTAACAGCCCAATACCTTCATT -3' (서열번호 22)
Datsenko KA 등이 개발한 방법에 따라 벡터 pKD46으로 형질 전환된 W3110 대장균을 컴피턴트한 상태로 제조한 후, PCR 법으로 얻어진 1300 bp의 유전자 단편을 유입하여 형질전환시켰다. LB 배지에서 클로람페니콜 내성을 가지고 있는 균주를 선별하였으며, 다시 프라이머 13과 프라이머 14를 이용한 PCR로 얻어진 크기가 약 2500 bp의 유전자 단편으로 pheA 유전자가 결실되었다는 것을 확인하였다.
프라이머 13
5'- TTGAGTGTATCGCCAACGCG -3' (서열번호 23 )
프라이머 14
5'- AAAGCCGCGTGTTATTGCGT -3' (서열번호 24)
상기 선별된 클로람페니콜 내성을 가진 1차 재조합 균주에서 pKD46 벡터를 제거한 후, pJW168 벡터를 도입하여 클로람페니콜 마커 유전자를 균주로부터 제거하였다(Gene, (2000) 247, 255-264). 최종적으로 얻어진 균체는 프라이머 13과 14로 PCR을 통해 얻어진 약 500bp의 증폭산물로 의도한대로 결실이 이루어졌음을 확인하였고, 제작된 균주를 대장균 W3110 trpΔ1로 명명하였다.
실시예 7: tnaAB 유전자가 불활성화된 대장균 균주의 제작
상기 실시예 6에서 제작된 대장균 W3110 trpΔ1 균주로부터 트립토판 분해효소(tryptophanase)를 코딩하는 tnaA와 트립토판 임포터(importer)를 코딩하는 tnaB유전자의 오페론 형태인 tnaAB (NCBI gene ID: 12933600, 12933602) 유전자를 상동 재조합에 의하여 결실시켰다. 상기 결손을 통해 트립토판이 생성 후 분해되는 경로를 차단하고, 생성되어 배지 내로 분비된 트립토판의 세포 내로의 재이동을 막아 트립토판 생산균주의 특성을 부여할 수 있다. 이를 위하여, 실시예 6에서와 동일한 방법을 이용하여 상기 tnaAB 유전자의 일부분과 pUCprmfmloxP 유전자의 클로람페니콜 내성 유전자의 일부 염기서열을 갖는 프라이머 15와 프라이머 16을 이용하여 벡터 pUCprmfmloxP을 주형으로 하여 PCR법에 의해 약 1200bp의 유전자 단편을 증폭하였다. 또한, 상기 PCR 증폭을 통하여 얻어진 DNA 단편은 실시예 6에서와 같은 방법을 통해 프라이머 17과 프라이머 18을 이용한 PCR로 1300bp의 유전자 단편을 증폭하였다
프라이머 15
5'- TTAGCCAAATTTAGGTAACACGTTAAAGACGTTGCCGAACCAGCACAAAAAGGTGACACTATAGAACGCG - 3' (서열번호 25)
프라이머 16
5'- ATGAAGGATTATGTAATGGAAAACTTTAAACATCTCCCTGAACCGTTCCGTAGTGGATCTGATGGGTACC -3' (서열번호 26)
프라이머 17
5'- TGATTTCCTGAGAGGCAAGAAGCCAGCGAATGGCTGGCTTCTTGAAGGATTTAGCCAAATTTAGGTAACA -3' (서열번호 27)
프라이머 18
5'- AATCGGTATAGCAGATGTAATATTCACAGGGATCACTGTAATTAAAATAAATGAAGGATTATGTAATGGA -3' (서열번호 28)
tnaAB 유전자를 결손시키기 위하여, 실시예 6에서와 같은 방법으로 벡터 pKD46이 도입된 대장균 W3110 trpΔ1을 컴피턴트한 상태로 제조한 후, PCR 법으로 얻어진 1300 bp의 유전자 단편을 유입하여 형질전환시켰다. LB 배지에서 클로람페니콜 내성을 가지고 있는 균주를 선별하였으며, 다시 프라이머 19와 프라이머 20을 이용한 PCR로 얻어진 크기가 약 5400 bp로 tnaAB 유전자가 결실되었다는 것을 확인하였다.
프라이머 19
5'- CGGGATAAAGTAAAACCAGG -3' (서열번호 29)
프라이머 20
5'- CGGCGAAGGTAAGTTGATGA -3' (서열번호 30)
클로람페니콜 내성을 가진 1차 재조합 균주에서 실시예 6에서와 같은 방법으로 pKD46 벡터를 제거한 후, 클로람페니콜 마커 유전자를 균체로부터 제거하였다. 최종적으로 얻어진 균체는 프라이머 19와 20으로 PCR을 통해 얻어진 약 550 bp의 증폭산물로 의도 한대로 결실이 이루어졌음을 확인하였고, 제작된 균주를 대장균 W3110 trpΔ2로 명명하였다.
실시예 8: 다양한 발현 양상을 가진 트립토판 오페론을 가지는 균주들의 L-트립토판 생산성 확인
앞서 기술한 실시예 3, 4 및 5에 기술된 방법대로 제작된 벡터들을 도입한 대장균의 효과를 실시예 6및 7에서 만들어진 W3110 trpΔ2를 모균주로 하여 글루코스를 탄소원으로 평가를 진행하였다.
역가 평가를 위하여 균체를 백금이로 접종한 후, LB 고체 배지에서 밤새 배양하고, 하기 표 2에서와 같은 조성을 갖는 25 ml의 플라스크 역가 배지에 한 백금이 씩 접종하였다. 균주 접종 후 37℃, 200rpm에서 48시간 동안 배양하고, 그로부터 얻어진 결과를 표 3에 나타내었다. 모든 결과는 3개의 플라스크 결과의 평균값을 사용하였다.
조성물 농도 (리터당)
글루코오스 2 g
KH2PO4 1 g
(NH4)2SO4 12 g
NaCl 1 g
Na2HPO4·H2O 5 g
MgSO4·H2O 1 g
MnSO4·H2O 15 mg
CuSO4·H2O 3 mg
ZnSO4·H2O 30 mg
구연산나트륨 1 g
효모액기스 1 g
페닐알라닌 0.15 g
pH 6.8
모균주 벡터 L-트립토판
(g/L)**		 안스라닐산염
(mg/L) **
W3110 trpΔ2 pCL계열 pBAC계열
pCL1920 pCC1BAC 0.1 13
pCL-Ptrp_trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpEDCBA 0.4 56
pBAC-DtrpL-trpEDCBA 0.4 53
pBAC-Dtrp_att-trpEDCBA 0.5 61
pCL-DtrpL-trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpEDCBA 0.4 68
pBAC-DtrpL-trpEDCBA 0.5 73
pBAC-Dtrp_att-trpEDCBA 0.4 74
pCL-Dtrp_att-trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpEDCBA 0.6 89
pBAC-DtrpL-trpEDCBA 0.5 95
pBAC-Dtrp_att-trpEDCBA 0.7 98
pCL-Ptrp_trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpDCBA 0.5 34
pBAC-DtrpL-trpDCBA 0.6 35
pBAC-Dtrp_att-trpDCBA 0.6 40
pCL-DtrpL-trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpDCBA 0.5 45
pBAC-DtrpL-trpDCBA 0.5 42
pBAC-Dtrp_att-trpDCBA 0.6 38
pCL-Dtrp_att-trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpDCBA 0.7 36
pBAC-DtrpL-trpDCBA 0.8 28
pBAC-Dtrp_att-trpDCBA 1.0 29
상기 표 3의 결과에서 알 수 있듯이, 모균주인 대장균 W3110 trpΔ2에 여러 가지 벡터들을 조합으로 도입하였을 때, 트립토판 오페론만을 계속해서 강화시키면 안스라닐산염이 축적되면서 트립토판 수율에 긍정적 효과를 보이지 않는다. Trp 오페론을 강화하면서 동시에 trpDCBA를 강화하는 방향으로 변형된 균주는 트립토판 오페론만 강화되었을 때보다 안스라닐산염의 축적이 감소하면서 트립토판 수율에는 긍정적인 효과를 나타내는 것으로 보인다. 따라서, 축적된 안스라닐산염의 감소가 트립토판 생산균주에서는 L-트립토판의 최종 수율을 높이기 위한 좋은 방법이라는 것을 확인하였다.
실시예 9: 다양한 발현 양상을 가진 트립토판 오페론을 가지는 균주들의 L-트립토판 생산성 확인
실시예 3, 4 및 5에 기술된 방법대로 제작된 벡터들을 하기 표 5의 조합대로 트립토판 생산균주인 모균주 대장균 KCCM10812P에 도입하여 글루코스를 탄소원으로 역가평가를 진행하였다. 실시예 8의 결과에서와 같이, 트립토판 오페론의 강화와 더불어 trpDCBA의 강화도 중요한 것으로 보여, 트립토판을 생산하는 생산균주에서의 효과를 검증하고자 하였다.
역가 평가를 위하여 균체를 백금이로 접종한 후, LB 고체 배지에서 밤새 배양하고, 하기 표 4에서와 같은 조성을 갖는 25 ml의 플라스크 역가 배지에 한 백금이 씩 접종하였다. 균주 접종 후 37℃, 200rpm에서 48시간 동안 배양하고, 그로부터 얻어진 결과를 표 5에 나타내었다. 모든 결과는 3개의 플라스크 결과의 평균값을 사용하였다.
조성물 농도 (리터당)
글루코오스 60 g
K2HPO4 1 g
(NH4)2SO4 10 g
NaCl 1 g
MgSO4·H2O 1 g
구연산나트륨 5 g
효모액기스 2 g
탄산칼슘 40 g
구연산나트륨 5 g
페닐알라닌 0.15 g
타이로신 0.1 g
pH 6.8
벡터 OD 소모당
(g/L)*		 L-트립토판
(g/L)**		 안스라닐산염
(mg/L) **
pCL pBAC
pCL1920 pCC1BAC 13.5 53.0 7.0 1005
pCL-Ptrp_trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpEDCBA 14.0 52.1 7.2 1053
pBAC-DtrpL-trpEDCBA 14.2 51.0 7.5 1157
pBAC-Dtrp_att-trpEDCBA 13.8 52.6 7.1 1263
pCL-DtrpL-trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpEDCBA 13.9 50.0 7.5 1170
pBAC-DtrpL-trpEDCBA 13.7 51.6 7.3 1290
pBAC-Dtrp_att-trpEDCBA 13.6 49.8 7.8 1485
pCL-Dtrp_att-trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpEDCBA 13.8 49.8 7.5 1358
pBAC-DtrpL-trpEDCBA 13.1 47.6 7.6 1501
pBAC-Dtrp_att-trpEDCBA 12.7 45.3 7.5 1853
pCL-Ptrp_trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpDCBA 14.2 52.1 7.5 950
pBAC-DtrpL-trpDCBA 14.6 51.3 7.2 813
pBAC-Dtrp_att-trpDCBA 14.3 52.7 7.1 687
pCL-DtrpL-trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpDCBA 13.9 50.6 7.5 953
pBAC-DtrpL-trpDCBA 13.7 51.7 7.6 852
pBAC-Dtrp_att-trpDCBA 13.6 51.3 7.7 715
pCL-Dtrp_att-trpEDCBA pBAC-Ptrp_trpDCBA 13.2 51.6 8.0 1085
pBAC-DtrpL-trpDCBA 13.9 50.9 8.6 867
pBAC-Dtrp_att-trpDCBA 13.5 51.2 9.5 783
* 33시간 측정치
** 48시간 측정치
상기 표 5의 결과에서 알 수 있듯이, 모균주인 대장균 KCCM10812P에 여러 가지 벡터들을 조합으로 도입하였을 때, 트립토판 오페론만을 계속해서 강화시키면 안스라닐산염이 축적되면서 성장이 소폭 둔화되어 트립토판 수율에 긍정적 효과를 보이지 않는다. 반면, pCL벡터로 오페론을 강화하고, pBAC벡터로 trpDCBA를 강화하는 방향으로 변형된 균주는 트립토판 오페론만 강화되었을 때보다 안스라닐산염의 축적이 감소하면서 트립토판 수율에는 긍정적인 효과를 나타내는 것으로 보인다. 따라서, 축적된 안스라닐산염의 감소가 트립토판 생산균주에서는 L-트립토판의 최종 수율을 높이기 위한 좋은 방법이라는 것을 확인하였다.
실시예 10: 염색체 내 트립토판 생합성 유전자군 trpDCBA 의 카피수가 증가되 고 안스라닐산염이 감소된 균주 제작
실시예 9에서의 결과를 바탕으로 염색체 내 트립토판 생합성 유전자군 trpDCBA의 카피수를 증가시키기 위하여 벡터를 제작하였다.
실시예 5에서 언급된 pCL-Dtrp_att-trpDCBA로부터 Dtrp_att-trpDCBA 영역을 제한효소 EcoRI 및 BamH I으로 절단하여, 같은 제한효소로 절단한 pINT17E에 접합을 통하여 pINT17E-Patt-trpDCBA를 얻었다. 이후, 이것을 트립토판 생산균주로서 모균주인 대장균 KCCM10812P에 도입하여 트립토판 생합성 유전자군 trpDCBA의 카피수를 증가시키기 위하여, 실시예 6에서와 같이 Datsenko KA 등이 개발한 람다 레드 재조합효소(lambda Red recombinase)를 이용한 돌연변이 제작 기법인 1단계 불활성화 방법에 사용되는 pKD46을 사용하였다. 유전자 내부로의 삽입을 확인하기 위한 마커로는 pUCprmfmloxP의 클로람페니콜 유전자를 사용하였다. 먼저 pKD46을 도입한 모균주에 pINT17E-Patt-trpDCBA를 형질전환한 후, 37℃에서 1 내지 2일간 배양하여 콜로니를 얻었다. 얻어진 콜로니들을 대상으로 염색체 내부에 제대로 삽입되었는지의 여부를 프라이머 21과 프라이머 22을 이용하여 PCR로 약 2000 bp 단편을 증폭하여 확인하였다.
프라이머 21
5' TATTTGCTGTCACGAGCAGG 3' (서열번호 31)
프라이머 22
5' AGTTCCGGCATACAACCGGCTT 3' (서열번호 32)
클로람페니콜 내성을 가진 1차 재조합 균주에서 pKD46을 제거한 후, pJW168을 도입하여 클로람페니콜 마커 유전자를 균체로부터 제거하였다(Gene, (2000) 247, 255-264). 프라이머 23과 24를 이용하여 PCR을 통해 얻어진 약 5000 bp의 증폭 산물과 프라이머 25와 26을 통해 얻어진 약 6500 bp의 증폭산물로 염색체 내부에 내재적으로 존재하는 트립토판 오페론에 이어 연속적으로 trpDCBA가 존재하고 있음을 확인하고, 이를 KCCM10812P/ trpDCBA로 명명하였다.
프라이머 23
5' TAATACGACTCACTATAGGG 3' (서열번호 33)
프라이머 24
5' CTGTTGGGCGGAAAAATGAC 3' (서열번호 34)
프라이머 25
5' TGATCGCCAGGGTGCCGACG 3' (서열번호 35)
프라이머 26
5' CCCTATAGTGAGTCGTATTA 3' (서열번호 36)
앞서 얻어진 trpDCBA 카피수 증가 균주에 추가적으로 1 카피를 삽입하기 위하여, 앞서 만들어진 KCCM10812P/ trpDCBA 균주에 pKD46을 도입하고, pINT17E-Patt-trpDCBA 벡터를 KCCM10812P/trpDCBA/pKD46에 도입하여 앞서 기술한 방법대로 염색체 내에 2 카피가 삽입된 균주를 제작하였다. 제작된 균주는 KCCM10812P/ 2trpDCBA로 명명하였다. 이를 2011년 12월 29일자로 대한민국 서울 특별시 서대문구 홍제 1동 361-221 번지에 소재하는 국제기탁기관인 한국종균협회 부설 한국미생물보존센터에 수탁번호 KCCM11246P로 기탁하였다.
실시예 11: 트립토판 생합성 유전자군 trpDCBA 에 의하여 암호화되는 단백질의 활성이 증가된 L-트립토판 생산균주의 효과 확인
실시예 10에서 기술된 방법에 따라 트립토판 생산균주인 대장균 KCCM10812P에 trpDCBA가 추가 도입되어 트립토판 생합성 경로의 일부 효소의 활성이 강화된 KCCM10812P/trpDCBA를 글루코스를 탄소원으로 하여 역가 평가를 진행하였다.
역가 평가를 위하여 균체를 백금이로 접종한 후, LB 고체 배지에서 밤새 배양하고, 하기 표 4와 같은 조성을 갖는 25 ml의 플라스크 역가 배지에 한 백금이 씩 접종하였다. 균주 접종 후 37℃, 200rpm에서 48시간 동안 배양하고, 그로부터 얻어진 결과를 표 6에 나타내었다. 모든 결과는 3개의 플라스크 결과의 평균값을 사용하였다.
균주 OD 소모당
(g/L)*		 L-트립토판
(g/L)**		 안스라닐산염
(mg/L)
KCCM10812P 14.0 54.0 7.2 1020
KCCM10812P/ trpDCBA 14.5 54.5 7.9 630
KCCM10812P/ 2 trpDCBA 13.3 55.2 8.2 320
* 33시간 측정치
** 48시간 측정치
상기 표 6에서 보는 바와 같이, 염색체 내부에 트립토판 생합성 유전자군 trpDCBA를 한 카피 추가하였을 때에는 안스라닐산염의 농도가 39% 감소하나, 두 카피를 추가하였을 때에는 모균주 대비 69% 감소하는 결과를 얻을 수 있었다.
또한, L-트립토판 농도의 경우 각각 10%, 13% 증가하는 결과를 얻었다. 표 6에서 기술하고 있는 바와 같이, trpDCBA의 카피를 증가시켰을 때 글루코스 소모 속도가 소폭 감소하는 경우도 있지만, 전체적으로 살펴볼 때 트립토판 생합성 유전자군의 강화가 L-트립토판 농도의 증가와 안스라닐산염 농도 감소에 좋은 효과를 미침을 확인하였다.
이상의 설명으로부터, 본 발명이 속하는 기술분야의 당 업자는 본 발명이 그 기술적 사상이나 필수적 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 이와 관련하여, 이상에서 기술한 실시 예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적인 것이 아닌 것으로서 이해해야만 한다. 본 발명의 범위는 상기 상세한 설명보다는 후술하는 특허 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 등가 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.
한국미생물보존센터(국외) KCCM11246P 20111229
<110> CJ Cheiljedang Corporation <120> A MICROORGANISM OF ESCHERICHIA COLI GENUS HAVING ENHANCED L-TRYPTOPHAN PRODUCING ACTIVITY AND METHOD FOR PRODUCING L-TRYPTOPHAN USING THE SAME <130> PA16-0143 <150> 10-2012-0002906 <151> 2012-01-10 <160> 40 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 273 <212> DNA <213> Escherichia coli <400> 1 ggcgcactcc cgttctggat aatgtttttt gcgccgacat cataacggtt ctggcaaata 60 ttctgaaatg agctgttgac aattaatcat cgaactagtt aactagtacg caagttcacg 120 taaaaagggt atcgacaatg aaagcaattt tcgtactgaa aggttggtgg cgcacttcct 180 gaaacgggca gtgtattcac catgcgtaaa gcaatcagat acccagcccg cctaatgagc 240 gggctttttt ttgaacaaaa ttagagaata aca 273 <210> 2 <211> 45 <212> DNA <213> Escherichia coli <400> 2 atgaaagcaa ttttcgtact gaaaggttgg tggcgcactt cctga 45 <210> 3 <211> 91 <212> DNA <213> Escherichia coli <400> 3 aacgggcagt gtattcacca tgcgtaaagc aatcagatac ccagcccgcc taatgagcgg 60 gctttttttt gaacaaaatt agagaataac a 91 <210> 4 <211> 14 <212> PRT <213> Escherichia coli <400> 4 Met Lys Ala Ile Phe Val Leu Lys Gly Trp Trp Arg Thr Ser 1 5 10 <210> 5 <211> 245 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sequence of DtrpL <400> 5 ttaggtaccg gcgcactccc gttctggata atgttttttg cgccgacatc ataacggttc 60 tggcaaatat tctgaaatga gctgttgaca attaatcatc gaactagtta actagtacgc 120 aagttcacgt aaaaagggta tcgacaacgg gcagtgtatt caccatgcgt aaagcaatca 180 gatacccagc ccgcctaatg agcgggcttt tttttgaaca aaattagaga ataacagata 240 tcatt 245 <210> 6 <211> 148 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sequence of Dtrp_att <400> 6 ttaggtaccg gcgcactccc gttctggata atgttttttg cgccgacatc ataacggttc 60 tggcaaatat tctgaaatga gctgttgaca attaatcatc gaactagtta actagtacgc 120 aagttcacgt aaaaagggtg atatcatt 148 <210> 7 <211> 290 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sequence of Ptrp <400> 7 ttaggtaccg gcgcactccc gttctggata atgttttttg cgccgacatc ataacggttc 60 tggcaaatat tctgaatgag ctgttgacaa ttaatcatcg aactagttaa ctagtacgca 120 agttcacgta aaaagggtat cgacaatgaa agcaattttc gtactgaaag gttggtggcg 180 cacttcctga aacgggcagt gtattcacca tgcgtaaagc aatcagatac ccagcccgcc 240 taatgagcgg gctttttttt gaacaaaatt agagaataac agatatcatt 290 <210> 8 <211> 5025 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> sequence of pCL1920GFP <400> 8 aagcttttcg atcccttatt tgtagagctc atccatgcca tgtgtaatcc cagcagcagt 60 tacaaactca agaaggacca tgtggtcacg cttttcgttg ggatctttcg aaagggcaga 120 ttgtgtcgac aggtaatggt tgtctggtaa aaggacaggg ccatcgccaa ttggagtatt 180 ttgttgataa tggtctgcta gttgaacgga tccatcttca atgttgtggc gaattttgaa 240 gttagctttg attccattct tttgtttgtc tgccgtgatg tatacattgt gtgagttata 300 gttgtactcg agtttgtgtc cgagaatgtt tccatcttct ttaaaatcaa taccttttaa 360 ctcgatacga ttaacaaggg tatcaccttc aaacttgact tcagcacgcg tcttgtagtt 420 cccgtcatct ttgaaagata tagtgcgttc ctgtacataa ccttcgggca tggcactctt 480 gaaaaagtca tgccgtttca tatgatccgg ataacgggaa aagcattgaa caccataaga 540 gaaagtagtg acaagtgttg gccatggaac aggtagtttt ccagtagtgc aaataaattt 600 aagggtaagt tttccgtatg ttgcatcacc ttcaccctct ccactgacag aaaatttgtg 660 cccattaaca tcaccatcta attcaacaag aattgggaca actccagtga aaagttcttc 720 tcctttactc atgatatcgg gtaccgagct cgaattcact ggccgtcgtt ttacaacgtc 780 gtgactggga aaaccctggc gttacccaac ttaatcgcct tgcagcacat ccccctttcg 840 ccagctggcg taatagcgaa gaggcccgca ccgatcgccc ttcccaacag ttgcgcagcc 900 tgaatggcga atggcgcctg atgcggtatt ttctccttac gcatctgtgc ggtatttcac 960 accgcatatg gtgcactctc agtacaatct gctctgatgc cgcatagtta agccagcccc 1020 gacacccgcc aacacccgct gacgagctta gtaaagccct cgctagattt taatgcggat 1080 gttgcgatta cttcgccaac tattgcgata acaagaaaaa gccagccttt catgatatat 1140 ctcccaattt gtgtagggct tattatgcac gcttaaaaat aataaaagca gacttgacct 1200 gatagtttgg ctgtgagcaa ttatgtgctt agtgcatcta acgcttgagt taagccgcgc 1260 cgcgaagcgg cgtcggcttg aacgaattgt tagacattat ttgccgacta ccttggtgat 1320 ctcgcctttc acgtagtgga caaattcttc caactgatct gcgcgcgagg ccaagcgatc 1380 ttcttcttgt ccaagataag cctgtctagc ttcaagtatg acgggctgat actgggccgg 1440 caggcgctcc attgcccagt cggcagcgac atccttcggc gcgattttgc cggttactgc 1500 gctgtaccaa 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cactgggttc gtgccttcat ccgtttccac ggtgtgcgtc acccggcaac 2400 cttgggcagc agcgaagtcg aggcatttct gtcctggctg gcgaacgagc gcaaggtttc 2460 ggtctccacg catcgtcagg cattggcggc cttgctgttc ttctacggca aggtgctgtg 2520 cacggatctg ccctggcttc aggagatcgg aagacctcgg ccgtcgcggc gcttgccggt 2580 ggtgctgacc ccggatgaag tggttcgcat cctcggtttt ctggaaggcg agcatcgttt 2640 gttcgcccag cttctgtatg gaacgggcat gcggatcagt gagggtttgc aactgcgggt 2700 caaggatctg gatttcgatc acggcacgat catcgtgcgg gagggcaagg gctccaagga 2760 tcgggccttg atgttacccg agagcttggc acccagcctg cgcgagcagg ggaattaatt 2820 cccacgggtt ttgctgcccg caaacgggct gttctggtgt tgctagtttg ttatcagaat 2880 cgcagatccg gcttcagccg gtttgccggc tgaaagcgct atttcttcca gaattgccat 2940 gattttttcc ccacgggagg cgtcactggc tcccgtgttg tcggcagctt tgattcgata 3000 agcagcatcg cctgtttcag gctgtctatg tgtgactgtt gagctgtaac aagttgtctc 3060 aggtgttcaa tttcatgttc tagttgcttt gttttactgg tttcacctgt tctattaggt 3120 gttacatgct gttcatctgt tacattgtcg atctgttcat ggtgaacagc tttgaatgca 3180 ccaaaaactc 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acgatatttt gaaagcacga ggggaaatct gatggaacgc tacgaatctc tgtttgccca 4200 gttgaaggag cgcaaagaag gcgcattcgt tcctttcgtc acgctcggtg atccgggcat 4260 tgagcagtca ttgaaaatta tcgatacgct aattgaagcc ggtgctgacg cgctggagtt 4320 aggtatcccc ttctccgacc cactggcgga tggcccgacg attcaaaacg ccactctgcg 4380 cgcctttgcg gcaggtgtga ctccggcaca atgttttgaa atgctggcac tgattcgcca 4440 gaaacacccg accattccca ttggcctgtt gatgtatgcc aatctggtgt ttaacaaagg 4500 cattgatgag ttttatgccc agtgcgaaaa agtcggcgtc gattcggtgc tggttgccga 4560 tgtgccagtt gaagagtccg cgcccttccg ccaggccgcg ttgcgtcata atgtcgcacc 4620 tatcttcatc tgcccgccaa atgccgatga cgacctgctg cgccagatag cctcttacgg 4680 tcgtggttac acctatttgc tgtcacgagc aggcgtgacc ggcgcagaaa accgcgccgc 4740 gttacccctc aatcatctgg ttgcgaagct gaaagagtac aacgctgcac ctccattgca 4800 gggatttggt atttccgccc cggatcaggt aaaagcagcg attgatgcag gagctgcggg 4860 cgcgatttct ggttcggcca ttgttaaaat catcgagcaa catattaatg agccagagaa 4920 aatgctggcg gcactgaaag tttttgtaca accgatgaaa gcggcgacgc gcagttaatc 4980 ccacggatcc tttaagcttc cc 5002 <210> 11 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 1 <400> 11 ttaggtaccg gcgcactccc gttctggata 30 <210> 12 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 2 <400> 12 actgcccgtt gtcgataccc tttttacgt 29 <210> 13 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 3 <400> 13 tcgacaacgg gcagtgtatt caccatg 27 <210> 14 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 4 <400> 14 aatgatatct gttattctct aattttgtt 29 <210> 15 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 5 <400> 15 aatgatatca ccctttttac gtgaacttg 29 <210> 16 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 6 <400> 16 cccgatatca tgcaaacaca aaaaccgac 29 <210> 17 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 7 <400> 17 gggaagctta aaggatccgt gggattaact gcgcgtcgcc gcttt 45 <210> 18 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 8 <400> 18 aaagatatca tggctgacat tctgctgct 29 <210> 19 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 9 <400> 19 ggcctcccaa atcggggggc cttttttatt gataacaaaa aggcaacact aggtgacact 60 atagaacgcg 70 <210> 20 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 10 <400> 20 aacagcccaa taccttcatt gaacgggtga tttcccctaa ctctttcaat tagtggatct 60 gatgggtacc 70 <210> 21 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 11 <400> 21 gaatgggagg cgtttcgtcg tgtgaaacag aatgcgaaga cgaacaataa ggcctcccaa 60 atcggggggc 70 <210> 22 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 12 <400> 22 ggcacctttt catcaggttg gatcaacagg cactacgttc tcacttgggt aacagcccaa 60 taccttcatt 70 <210> 23 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 13 <400> 23 ttgagtgtat cgccaacgcg 20 <210> 24 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 14 <400> 24 aaagccgcgt gttattgcgt 20 <210> 25 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 15 <400> 25 ttagccaaat ttaggtaaca cgttaaagac gttgccgaac cagcacaaaa aggtgacact 60 atagaacgcg 70 <210> 26 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 16 <400> 26 atgaaggatt atgtaatgga aaactttaaa catctccctg aaccgttccg tagtggatct 60 gatgggtacc 70 <210> 27 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 17 <400> 27 tgatttcctg agaggcaaga agccagcgaa tggctggctt cttgaaggat ttagccaaat 60 ttaggtaaca 70 <210> 28 <211> 70 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 18 <400> 28 aatcggtata gcagatgtaa tattcacagg gatcactgta attaaaataa atgaaggatt 60 atgtaatgga 70 <210> 29 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 19 <400> 29 cgggataaag taaaaccagg 20 <210> 30 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 20 <400> 30 cggcgaaggt aagttgatga 20 <210> 31 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 21 <400> 31 tatttgctgt cacgagcagg 20 <210> 32 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 22 <400> 32 agttccggca tacaaccggc tt 22 <210> 33 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 23 <400> 33 taatacgact cactataggg 20 <210> 34 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 24 <400> 34 ctgttgggcg gaaaaatgac 20 <210> 35 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 25 <400> 35 tgatcgccag ggtgccgacg 20 <210> 36 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer 26 <400> 36 ccctatagtg agtcgtatta 20 <210> 37 <211> 531 <212> PRT <213> Escherichia coli <400> 37 Met Ala Asp Ile Leu Leu Leu Asp Asn Ile Asp Ser Phe Thr Tyr Asn 1 5 10 15 Leu Ala Asp Gln Leu Arg Ser Asn Gly His Asn Val Val Ile Tyr Arg 20 25 30 Asn His Ile Pro Ala Gln Thr Leu Ile Glu Arg Leu Ala Thr Met Ser 35 40 45 Asn Pro Val Leu Met Leu Ser Pro Gly Pro Gly Val Pro Ser Glu Ala 50 55 60 Gly Cys Met Pro Glu Leu Leu Thr Arg Leu Arg Gly Lys Leu Pro Ile 65 70 75 80 Ile Gly Ile Cys Leu Gly His Gln Ala Ile Val Glu Ala Tyr Gly Gly 85 90 95 Tyr Val Gly Gln Ala Gly Glu Ile Leu His Gly Lys Ala Ser Ser Ile 100 105 110 Glu His Asp Gly Gln Ala Met Phe Ala Gly Leu Thr Asn Pro Leu Pro 115 120 125 Val Ala Arg Tyr His Ser Leu Val Gly Ser Asn Ile Pro Ala Gly Leu 130 135 140 Thr Ile Asn Ala His Phe Asn Gly Met Val Met Ala Val Arg His Asp 145 150 155 160 Ala Asp Arg Val Cys Gly Phe Gln Phe His Pro Glu Ser Ile Leu Thr 165 170 175 Thr Gln Gly Ala Arg Leu Leu Glu Gln Thr Leu Ala Trp Ala Gln Gln 180 185 190 Lys Leu Glu Pro Ala Asn Thr Leu Gln Pro Ile Leu Glu Lys Leu Tyr 195 200 205 Gln Ala Gln Thr Leu Ser Gln Gln Glu Ser His Gln Leu Phe Ser Ala 210 215 220 Val Val Arg Gly Glu Leu Lys Pro Glu Gln Leu Ala Ala Ala Leu Val 225 230 235 240 Ser Met Lys Ile Arg Gly Glu His Pro Asn Glu Ile Ala Gly Ala Ala 245 250 255 Thr Ala Leu Leu Glu Asn Ala Ala Pro Phe Pro Arg Pro Asp Tyr Leu 260 265 270 Phe Ala Asp Ile Val Gly Thr Gly Gly Asp Gly Ser Asn Ser Ile Asn 275 280 285 Ile Ser Thr Ala Ser Ala Phe Val Ala Ala Ala Cys Gly Leu Lys Val 290 295 300 Ala Lys His Gly Asn Arg Ser Val Ser Ser Lys Ser Gly Ser Ser Asp 305 310 315 320 Leu Leu Ala Ala Phe Gly Ile Asn Leu Asp Met Asn Ala Asp Lys Ser 325 330 335 Arg Gln Ala Leu Asp Glu Leu Gly Val Cys Phe Leu Phe Ala Pro Lys 340 345 350 Tyr His Thr Gly Phe Arg His Ala Met Pro Val Arg Gln Gln Leu Lys 355 360 365 Thr Arg Thr Leu Phe Asn Val Leu Gly Pro Leu Ile Asn Pro Ala His 370 375 380 Pro Pro Leu Ala Leu Ile Gly Val Tyr Ser Pro Glu Leu Val Leu Pro 385 390 395 400 Ile Ala Glu Thr Leu Arg Val Leu Gly Tyr Gln Arg Ala Ala Val Val 405 410 415 His Ser Gly Gly Met Asp Glu Val Ser Leu His Ala Pro Thr Ile Val 420 425 430 Ala Glu Leu His Asp Gly Glu Ile Lys Ser Tyr Gln Leu Thr Ala Glu 435 440 445 Asp Phe Gly Leu Thr Pro Tyr His Gln Glu Gln Leu Ala Gly Gly Thr 450 455 460 Pro Glu Glu Asn Arg Asp Ile Leu Thr Arg Leu Leu Gln Gly Lys Gly 465 470 475 480 Asp Ala Ala His Glu Ala Ala Val Ala Ala Asn Val Ala Met Leu Met 485 490 495 Arg Leu His Gly His Glu Asp Leu Gln Ala Asn Ala Gln Thr Val Leu 500 505 510 Glu Val Leu Arg Ser Gly Ser Ala Tyr Asp Arg Val Thr Ala Leu Ala 515 520 525 Ala Arg Gly 530 <210> 38 <211> 452 <212> PRT <213> Escherichia coli <400> 38 Met Gln Thr Val Leu Ala Lys Ile Val Ala Asp Lys Ala Ile Trp Val 1 5 10 15 Glu Ala Arg Lys Gln Gln Gln Pro Leu Ala Ser Phe Gln Asn Glu Val 20 25 30 Gln Pro Ser Thr Arg His Phe Tyr Asp Ala Leu Gln Gly Ala Arg Thr 35 40 45 Ala Phe Ile Leu Glu Cys Lys Lys Ala Ser Pro Ser Lys Gly Val Ile 50 55 60 Arg Asp Asp Phe Asp Pro Ala Arg Ile Ala Ala Ile Tyr Lys His Tyr 65 70 75 80 Ala Ser Ala Ile Ser Val Leu Thr Asp Glu Lys Tyr Phe Gln Gly Ser 85 90 95 Phe Asn Phe Leu Pro Ile Val Ser Gln Ile Ala Pro Gln Pro Ile Leu 100 105 110 Cys Lys Asp Phe Ile Ile Asp Pro Tyr Gln Ile Tyr Leu Ala Arg Tyr 115 120 125 Tyr Gln Ala Asp Ala Cys Leu Leu Met Leu Ser Val Leu Asp Asp Asp 130 135 140 Gln Tyr Arg Gln Leu Ala Ala Val Ala His Ser Leu Glu Met Gly Val 145 150 155 160 Leu Thr Glu Val Ser Asn Glu Glu Glu Gln Glu Arg Ala Ile Ala Leu 165 170 175 Gly Ala Lys Val Val Gly Ile Asn Asn Arg Asp Leu Arg Asp Leu Ser 180 185 190 Ile Asp Leu Asn Arg Thr Arg Glu Leu Ala Pro Lys Leu Gly His Asn 195 200 205 Val Thr Val Ile Ser Glu Ser Gly Ile Asn Thr Tyr Ala Gln Val Arg 210 215 220 Glu Leu Ser His Phe Ala Asn Gly Phe Leu Ile Gly Ser Ala Leu Met 225 230 235 240 Ala His Asp Asp Leu His Ala Ala Val Arg Arg Val Leu Leu Gly Glu 245 250 255 Asn Lys Val Cys Gly Leu Thr Arg Gly Gln Asp Ala Lys Ala Ala Tyr 260 265 270 Asp Ala Gly Ala Ile Tyr Gly Gly Leu Ile Phe Val Ala Thr Ser Pro 275 280 285 Arg Cys Val Asn Val Glu Gln Ala Gln Glu Val Met Ala Ala Ala Pro 290 295 300 Leu Gln Tyr Val Gly Val Phe Arg Asn His Asp Ile Ala Asp Val Val 305 310 315 320 Asp Lys Ala Lys Val Leu Ser Leu Ala Ala Val Gln Leu His Gly Asn 325 330 335 Glu Glu Gln Leu Tyr Ile Asp Thr Leu Arg Glu Ala Leu Pro Ala His 340 345 350 Val Ala Ile Trp Lys Ala Leu Ser Val Gly Glu Thr Leu Pro Ala Arg 355 360 365 Glu Phe Gln His Val Asp Lys Tyr Val Leu Asp Asn Gly Gln Gly Gly 370 375 380 Ser Gly Gln Arg Phe Asp Trp Ser Leu Leu Asn Gly Gln Ser Leu Gly 385 390 395 400 Asn Val Leu Leu Ala Gly Gly Leu Gly Ala Asp Asn Cys Val Glu Ala 405 410 415 Ala Gln Thr Gly Cys Ala Gly Leu Asp Phe Asn Ser Ala Val Glu Ser 420 425 430 Gln Pro Gly Ile Lys Asp Ala Arg Leu Leu Ala Ser Val Phe Gln Thr 435 440 445 Leu Arg Ala Tyr 450 <210> 39 <211> 397 <212> PRT <213> Escherichia coli <400> 39 Met Thr Thr Leu Leu Asn Pro Tyr Phe Gly Glu Phe Gly Gly Met Tyr 1 5 10 15 Val Pro Gln Ile Leu Met Pro Ala Leu Arg Gln Leu Glu Glu Ala Phe 20 25 30 Val Ser Ala Gln Lys Asp Pro Glu Phe Gln Ala Gln Phe Asn Asp Leu 35 40 45 Leu Lys Asn Tyr Ala Gly Arg Pro Thr Ala Leu Thr Lys Cys Gln Asn 50 55 60 Ile Thr Ala Gly Thr Asn Thr Thr Leu Tyr Leu Lys Arg Glu Asp Leu 65 70 75 80 Leu His Gly Gly Ala His Lys Thr Asn Gln Val Leu Gly Gln Ala Leu 85 90 95 Leu Ala Lys Arg Met Gly Lys Thr Glu Ile Ile Ala Glu Thr Gly Ala 100 105 110 Gly Gln His Gly Val Ala Ser Ala Leu Ala Ser Ala Leu Leu Gly Leu 115 120 125 Lys Cys Arg Ile Tyr Met Gly Ala Lys Asp Val Glu Arg Gln Ser Pro 130 135 140 Asn Val Phe Arg Met Arg Leu Met Gly Ala Glu Val Ile Pro Val His 145 150 155 160 Ser Gly Ser Ala Thr Leu Lys Asp Ala Cys Asn Glu Ala Leu Arg Asp 165 170 175 Trp Ser Gly Ser Tyr Glu Thr Ala His Tyr Met Leu Gly Thr Ala Ala 180 185 190 Gly Pro His Pro Tyr Pro Thr Ile Val Arg Glu Phe Gln Arg Met Ile 195 200 205 Gly Glu Glu Thr Lys Ala Gln Ile Leu Glu Arg Glu Gly Arg Leu Pro 210 215 220 Asp Ala Val Ile Ala Cys Val Gly Gly Gly Ser Asn Ala Ile Gly Met 225 230 235 240 Phe Ala Asp Phe Ile Asn Glu Thr Asn Val Gly Leu Ile Gly Val Glu 245 250 255 Pro Gly Gly His Gly Ile Glu Thr Gly Glu His Gly Ala Pro Leu Lys 260 265 270 His Gly Arg Val Gly Ile Tyr Phe Gly Met Lys Ala Pro Met Met Gln 275 280 285 Thr Glu Asp Gly Gln Ile Glu Glu Ser Tyr Ser Ile Ser Ala Gly Leu 290 295 300 Asp Phe Pro Ser Val Gly Pro Gln His Ala Tyr Leu Asn Ser Thr Gly 305 310 315 320 Arg Ala Asp Tyr Val Ser Ile Thr Asp Asp Glu Ala Leu Glu Ala Phe 325 330 335 Lys Thr Leu Cys Leu His Glu Gly Ile Ile Pro Ala Leu Glu Ser Ser 340 345 350 His Ala Leu Ala His Ala Leu Lys Met Met Arg Glu Asn Pro Asp Lys 355 360 365 Glu Gln Leu Leu Val Val Asn Leu Ser Gly Arg Gly Asp Lys Asp Ile 370 375 380 Phe Thr Val His Asp Ile Leu Lys Ala Arg Gly Glu Ile 385 390 395 <210> 40 <211> 268 <212> PRT <213> Escherichia coli <400> 40 Met Glu Arg Tyr Glu Ser Leu Phe Ala Gln Leu Lys Glu Arg Lys Glu 1 5 10 15 Gly Ala Phe Val Pro Phe Val Thr Leu Gly Asp Pro Gly Ile Glu Gln 20 25 30 Ser Leu Lys Ile Ile Asp Thr Leu Ile Glu Ala Gly Ala Asp Ala Leu 35 40 45 Glu Leu Gly Ile Pro Phe Ser Asp Pro Leu Ala Asp Gly Pro Thr Ile 50 55 60 Gln Asn Ala Thr Leu Arg Ala Phe Ala Ala Gly Val Thr Pro Ala Gln 65 70 75 80 Cys Phe Glu Met Leu Ala Leu Ile Arg Gln Lys His Pro Thr Ile Pro 85 90 95 Ile Gly Leu Leu Met Tyr Ala Asn Leu Val Phe Asn Lys Gly Ile Asp 100 105 110 Glu Phe Tyr Ala Gln Cys Glu Lys Val Gly Val Asp Ser Val Leu Val 115 120 125 Ala Asp Val Pro Val Glu Glu Ser Ala Pro Phe Arg Gln Ala Ala Leu 130 135 140 Arg His Asn Val Ala Pro Ile Phe Ile Cys Pro Pro Asn Ala Asp Asp 145 150 155 160 Asp Leu Leu Arg Gln Ile Ala Ser Tyr Gly Arg Gly Tyr Thr Tyr Leu 165 170 175 Leu Ser Arg Ala Gly Val Thr Gly Ala Glu Asn Arg Ala Ala Leu Pro 180 185 190 Leu Asn His Leu Val Ala Lys Leu Lys Glu Tyr Asn Ala Ala Pro Pro 195 200 205 Leu Gln Gly Phe Gly Ile Ser Ala Pro Asp Gln Val Lys Ala Ala Ile 210 215 220 Asp Ala Gly Ala Ala Gly Ala Ile Ser Gly Ser Ala Ile Val Lys Ile 225 230 235 240 Ile Glu Gln His Ile Asn Glu Pro Glu Lys Met Leu Ala Ala Leu Lys 245 250 255 Val Phe Val Gln Pro Met Lys Ala Ala Thr Arg Ser 260 265

Claims (6)

  1. 내재적 트립토판 오페론에서 서열번호 1의 염기서열을 가지는 발현조절부위 중 서열번호 2의 염기서열을 가지는 리더펩티드(leader peptide)의 전체 또는 일부만이 결손된 것을 특징으로 하는 L-트립토판의 생산능이 강화된 재조합 에스케리키아속 미생물.
  2. 제1항에 있어서,
    트립토판 오페론이 암호화하는 단백질의 활성이 더 강화된 것을 특징으로 하는 L-트립토판의 생산능이 강화된 재조합 에스케리키아속 미생물.
  3. 제2항에 있어서,
    단백질들의 활성이 상기 단백질을 암호화하는 유전자의 염색체 내 또는 세포 내 카피수를 증가, 상기 염색체 내 유전자의 발현조절부위를 강력한 프로모터로 교체 또는 활성이 강화된 형태로 변형시키는 방법에 의해 강화되는 것을 특징으로 하는 L-트립토판의 생산능이 강화된 재조합 에스케리키아속 미생물.
  4. 제1항에 있어서,
    대장균인 것을 특징으로 하는 L-트립토판의 생산능이 강화된 재조합 에스케리키아속 미생물.
  5. 에스케리키아속 미생물의 내재적 트립토판 오페론에서 서열번호 1의 염기서열을 가지는 발현조절부위 중 서열번호 2의 염기서열을 가지는 리더펩티드(leader peptide)의 전체 또는 일부만을 결손시켜 제조된 재조합 L-트립토판 생산능이 강화된 에스케리키아속 미생물을 배양하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 L-트립토판 생산방법.
  6. 제5항에 있어서,
    상기 재조합 에스케리키아속 미생물이 대장균인 것을 특징으로 하는 L-트립토판 생산방법.
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