KR0170365B1 - 아미노기 전달 효소, 이의 제조방법 및 용도 - Google Patents

아미노기 전달 효소, 이의 제조방법 및 용도 Download PDF

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Description

아미노기 전달 효소, 이의 제조방법 및 용도
본 발명은 아미노기 전달 효소, 이의 제조방법 및 용도에 관한 것이다.
L-2-아미노-4-메틸포스피노부티르산(하기에서는 L-포스피노트리신 또는 L-PPT로 명칭) 또는 이의 염은 독일연방공화국 공개특허공보 제29 39 269호에도 기술되어 있는 바와 같이 화학적으로 용이하게 수득할 수 있는 라세미체의 활성 성분이다. 독일연방공화국 공개특허공보 제27 17 440호에 따르면, L-2-아미노-4-메틸포스피노부티르산의 염은 다수의 외떡잎 및 쌍떡잎, 일년생 및 다년생 잡초에 대해 매우 우수하고 광범위한 제초 활성을 갖는다. L-PPT 및 이의 상술한 유도체는 이의 활성이 라세미체의 2배이므로, L-PPT를 간단한 방법을 이용하여 대량으로 이용할 수 있게 하는 생성 방법의 개발이 필요하다.
L-PPT를 미생물을 이용한 생물학적 형질전환 방법으로 제조할 수 있음이 이미 기술되어 있다 (참조 : 유럽 특허 제02 48 357호) 이 특허에는 또한 이.콜라이(E.coli) DH-1이 적합한 전구체를 L-3급-루이신 및 L-포스피노트리신으로 전환시킬 수 있는 아미노기 전달효소를 갖는다는 것이 기술되어 있다.
본 발명에 이르러 이.콜라이 DH-1이 L-포스피노트리신을 생성하는 매우 높은 특이성을 갖는 특정한 아미노기 전달 효소를 합성한다는 것이 밝혀졌다.
따라서 본 발명은
1. - 분자량이 20,000내지 250,000 달톤이고,
- 등던점이 pH 3.0 내지 8.0이며,
- 최적 pH가 5.0내지 10.0의 범위이고,
- 아미노-그룹 공여체로서 L-포스피노트리신,
γ- 아미노부티르산 및 글루타메이트에 대하여 기질 특이성을 갖고 아미노-그룹 수용체로서 적합한 케토 화합물에 대해 기질 특이성을 갖는 이.콜라이 DH-1으로부터의 아미노기 전달효소,
2. 이 콜라이 DH-1을 배양한 후 언급한 아미노기 전달 효소를 분리시킴을 특징으로 하여, 상기 1의 아미노기 전달효소를 제조하는 방법, 및
3. 상기 1의 아미노기 전달 효소의 (3-카복시-3-옥소-프로필)-메틸-포스핀산의 L-포스피노트리신으로의 아미노기 전달 및 숙시네이트 세미알데하이드의 γ-아미노부티르산으로의 아미노기 전달을 위한 용도에 관한 것이다.
본 발명은 하기에서 특히 이의 바람직한 태양에서 상세히 기술된다. 본 발명은 특허청구범위에서 더욱 정의된다.
아미노기 전달 효소는 이.콜라이 DH-1 또는 적합한 돌연변이체 또는 변이체로부터 분리된다. 이 목적을 수행하기 위하여, 미생물을 이의 성장에 최적인 영양 배지중에서 배양한다. 미생물은 호기적으로 배양하며, 예를들어 필요한 경우 공기 또는 산소를 공급하면서 진탕 플라스크 또는 발효기중에서 진탕시키거나 교반시키면서 액침배양한다. 발효는 약 20내지 40℃, 바람직하게는 약 25내지 37℃, 특히 30내지 37℃의 온도 범위에서 수행할 수 있다. 미생물은 pH 5 내지 8.5, 바람직하게는 pH 5.5내지 8.0의 범위에서 배양한다. 이들 조건하에서, 세균은 통상 1내지 3일이 지난후 상당한 양의 효소를 축척한다. 아미노기 전달 효소의 합성은 대수기의 중간정도에서 출발하여 대수기 말기쯤에서 최대에 도달한다. 효소가 생성된후 활성 검정과 함께 HPLC 분석을 하거나 광도측정을 할 수 있다.
아미노기 전달 효소를 생성하기 위해 사용되는 영양용액은 0.2내지 5%, 바람직하게는 0.5내지 2%의 유기질소화합물 및 무기염을 함유한다. 적합한 유기 질소 화합물은 아미노산,펩톤,고기 추출물, 예를들어 옥수수, 밀, 콩, 대두 또는 목화의 제분된 씨, 알콜 생성시의 증류잔사, 고깃가루 또는 효모 추출물이다. 영양 용액에 함유될 수 있는 무기염의 예는 알칼리 금속 또는 알칼리 토금속,철,아연 및 망간의 염화물, 탄산염, 황산염 또는 인산염, 암모늄염 및 질산염이 있다.
효소의 분리 및 정제는 리소자임 분해, 황상 암모늄 침전, 이온 교환 및 겔 투과 크로마토그래피를 통한 통상의 방법으로 수행할 수 있다.
효소 제제는 분자량이 20,000 내지 250,000달톤, 바람직하게는 25,000내지 100,000, 특히 40,000내지 50,000달톤이고, 등전점이 pH3.0 내지 8.0, 바람직하게는 pH3.5 내지 5.5, 특히 pH4.0 내지 5.0인 것으로 특징지워질 수 있다. 효소 생성물의 최적 pH는 pH 5.0내지 10.0, 특히 8.0 내지 9.0이다.
정제된 아미노기 전달 효소의 처음의 33개의 N-말단 아미노산을 가스-상 서열분석기를 사용하여 분석하였으며 그 서열은 하기 식과 같다:
Met-Asn-Ser-Asn-Lys-Glu-Leu-Met-
Gln-Arg-Arg-Ser-Gln-Ala-Ile-Pro-Arg-Gly-Val-Gly-Gln-Ile-
His-Pro-Ile-Phe-Ala-Asp-Arg-Ala-Glu(Thr)-Asn-Asn(Gly).
이 아미노산 서열은 이전에 문헌에 기술된 아미노기전달 효소와 비슷하지 않다.
아미노기 전달 효소는 문헌에 공지된 억제제 O-(카복시메틸)-하이드록실아민, 특히 표준 검정 조건(실시예 3, 효소활성)하에 약 0.1내지 1μM O-(카복시-메틸)-하이드록실아민에 의해 50%억제될 수 있다.
조사에 의하면 효소는 고온에서 매우 안정하다. 따라서 다른 단백질을 열 변성시켜 아미노기 전달 효소로부터 분리시키기 위해 효소 정제시에 효소를 10분동안 70℃에서 항온처리할 수 있다.
20개의 단백질 생성 아미노산중 어떠한 것도 본 발명에 따른 아미노기 전달 효소를 사용하여 제조할 수 없다. 이 효소는 (3-카복시-3-옥소-프로필)-메틸포스핀산 뿐만아니라 숙시네이트 세미알데하이드 및 이의 에스테르에 대하여 특이성이 있으며, 이로부터 비-단백질 생성 아미노산 L-포스피노트리신 및 r-아미노부티르산이 글루타메이트로부터 아미노 그룹의 전달에 의해 제조될 수 있다. 사용될 수 있는 케토산의 적합한 에스테르는 특히 저급 알킬(C1-C6) 에스테르이다.
본 발명에 따라 유효량의 아미노기 전달 효소를 아미노기 전달을 위해 유리형태 또는 고정화된 형태로 사용할 수 있다. 독일연방공화국 공개특허공보 제32 37 341호 및 제32 43 591호에 기술된 방법과 같이 공지된 방법이 고정화에 적합하다. 이와 관련하여 아세테이트 그룹을 가수분해시킨후 옥시란 그룹으로 표면을 변형시킨 비닐 아세테이트와 디비닐에틸렌-우레아의 공중합체를 사용하는 것이 특히 유리하다. 본 발명에 따른 아미노기 전달 효소를 고효율로 이들 옥시란 그룹에 결합시킬 수 있다.
담체 물질에 결합된 효소는 매우 안정하고 장기간에 걸쳐 효소 활성을 거의 상실하지 않는 것으로 판명되었다. 필요한 경우에 효소를 소량의 약 5μM 피리독살 포스페이트로 재생시키는 것이 유리하다.
아미노기 전달 반응은 생리적 완충 용액중에서 수행하면, 효소 활성이 약 pH4 내지 12, 바람직하게는 pH8 내지 10의 범위에서 상당한 정도로는 역영향을 받지 않을 수 있다. 반응온도는 20내지 70℃의 범위일 수 있다. 이보다 낮은 온도에서는 효소 반응 속도가 더욱 느려지며, 보다 높은 온도에서는 효소가 더욱 불활성화된다. 효소 반응은 20내지 60℃, 바람직하게는 30내지 60℃, 특히 40 내지 55℃의 온도에서 수행한다.
글루타메이트 및 이의 염은 아미노 공여체로서 사용된다. α-케토산 또는 이의 에스테르에 대하여 등몰량 또는 과량의 아미노 공여체를 사용하는 것이 반응에 유리한 것으로 판명되었다. 1:1내지 5:1, 바람직하게는 1:1내지 2:1의 비율이 적합한 것으로 판명되었다. 반응 성분은 동시에 또는 연속하여 반응 혼합물에 물중의 용액으로서 가하거나 고체물질을 가할 수 있다.
형성된 생성물은 이온 교환 크로마토그래피법 및 분무 건조법을 이용한 공지된 방법으로 반응 용액으로부터 수득할 수 잇다. 하기 실시예로 본 발명을 더욱 설명한다. 달리 언급이 없는 한, %는 중량에 의한다.
[실시예 1 ]
[이.콜라이 DH-1의 배양 ]
본 발명에 따른 아미노기 전달 효소를 수득하기 위하여 세균 이.콜라이 DH-1을 동결-건조된 영구 보존 형태의 균주로부터 미생물 분야에서 통상적인 방법으로 배양한다. 처음에는 액체,멸균 완전 배지중에서 배양한다. 이어서 성장된 세균을 멸균 페트리 접시내의 고체 영양 배지상에 스트리킹하고 이어서 단일 콜로니를 액체 배지중에서 더욱 배양한다.
액체 배지 :
카세인으로부터의 펩톤 3.5 g/l
고기로부터의 펩톤 3.5 g/l
염화나트륨 5.1 g/l
pH 7.5
멸균 120 ℃,20분
고체 배지 : 액체 배지와 동일한 조성물 + 15g/l 한천-한천
본 발명에 따른 아미노기 전달 효소를 수득하기 위하여, 세균을 37℃에서 1분당 200회전하는 진탕기를 사용하여 1ℓ의 멸균 배지를 함유한 5ℓ삼각플라스크내의 액체 배지중에서 배양한다. 세균을 대수기의 말기쯤에 원심분리시켜 수거하여, 액체 질소중에 동결 건조시킨후, -80℃에서 저장한다.
[실시예 2]
[이.콜라이 DH-1으로부터 아미노기 전달 효소의 분리]
동결 건조된 세균을 완충액 A[20mM 인산염 완충액, 20μM 피리독살 포스페이트,10mM 머캅토에탄올(pH 7.0)] + 1mM 페닐메틸설포닐 플루오라이드 (PMSF)의 2배의 용적 (2ml/g 박테리아)중에 현탁시키고, 초음파(15분)로 붕해시킨다.
세포파편을 원심분리시켜 제거시키고, 청명한 상등액을 황산암모늄 침전법으로 분별시킨다. 40 내지 70%의 황산암모늄 포화 용액으로부터 침전되는 목적하는 아미노기 전달 효소의 활성물을 원심분리시켜 수득하고, 완충액 A중에 재현탁시킨후, 완충액 A의 50배의 용적에 대하여 투석시킨다.
투석물을 1mM α-케토글루타레이트의 존재하에 10분동안 70℃에서 가열하고, 변성된 단백질을 원심분리시켜 제거시킨다. 청명한 상등액을 0.45㎛ 막을 통하여 여과시키고, 이어서 완충액 A로 평형화시킨 4급 아미노 그룹을 갖는 아가로즈로 이루어진 음이온 교환기(Q-세파로즈 HP
Figure kpo00001
,파마시아)상에 로딩시킨다. 결합되지 않은 단백질을 완충액 A로 컬럼을 세척하여 제거시키고, 결합된 단백질은 선형 구배(완충액 A중의 0내지 1.0M KCl)로 컬럼으로부터 용출시켜 분획으로 수집한다. 아미노기 전달 효소는 약 0.3M KCl에서 컬럼으로부터 세척된다.
효소 활성을 갖는 분획을 합하고, 용적을 축소시키기 위하여 단백질을 용액(80% 황산암모늄 포화)으로부터 완전히 침전시키고, 10내지 400 킬로달톤의 분별 범위를 갖는 겔 여과 컬럼 [울트로겔(Ultrogel) AcA 44, 세르바(Serva)]상에서 분획화시킨다. 겔 여과에 사용되는 완충액은 20mM 피페라진 -M,N'-(2-에탄설폰산),10μM 피리독살 포스페이트, 5mM 2-머캅토에탄올, 0.1M KCl(pH 7.0)이다. 겔 여과시킨후 수득되는 효소 활성을 갖는 분획을 25mM 이미다졸(pH 7.5)에 대하여 투석시키고, 생성된 단백질을 폴리완충액 74 (파마시아)를 사용하여 폴리완충액 이온 교환기 94 (파마시아)상에서 이들의 등전점에 따라 분획화시킨다.
본 발명에 따른 아미노기 전달 효소는 pH 4.35에서 컬럼으로부터 용출된다. 효소 활성을 갖는 분획중의 단백질을 용액(80% 황산암모늄)으로부터 완전히 침전시키고, 완충액 A에 대하여 투석시킨후 4급 아미노 그룹을 갖는 아가로즈로 이루어진 고-분해성 음이온 교환기(모노 Q,파마시아)상에서 크로마토그래피한다.(완충액 시스템은 Q-세파로즈 HP에 대해 기술한 바와 같다).
모든 외인성 단백질은 이 정제 단계후에 아미노기 전달 효소로부터 제거된다.
[실시예 3]
[효소의 특성 분석]
- 분자량 : 약 44,000달톤(폴리아크릴아미드 SDS겔전기영동으로 측정)
- 등전점 : pH 4.35 (파마시아 제품의 PBE 94/폴리완충액 74 상에서 크로마토포커싱으로 측정)
- 효소활성 : 효소 활성은 아미노-그룹 수용체로서 α-케토글루타레이트의 존재하에서 L-PPT의 아미노기 전달로 측정하거나 (검정 1), 아미노-그룹 공여체로서 글루타메이트를 사용하여 (3-카복시-3-옥소-프로필)메틸-포스핀산으로부터 L-PPT의 생성으로 측정한다(검정 2), 두 검정에 의한 결과는 동등하며, 검정 1의 공정이 보다 간단하므로 통상 사용된다.
검정 1: 100mM 트리스-(하이드록시메틸)-아미노메탄(트리스)/10μM 피리독살 포스페이트(pH7.5)중의 10mM PPT, 10mM α-케토글루타레이트를 30분동안 30℃에서 반응시킨다. 형성된 글루타메이트를 문헌[참조:Methods in Enzymology, Vol. 113, pp. 245 이하 참조]에 기술된 바와 같이 글루타메이트디하이드로게나제와 연속반응시켜 측정한다.
검정 2 : PPT및 α-케토글루타레이트 대신 10mM(3-카복시-3-옥소-프로필)-메틸-포스핀산, 10mM 글루타메이트를 사용하여 검정 1에서와 같이 수행한다. 형성된 L-PPT는 아미노산 분석기를 사용하여 검정한다.
이들 검정법으로 측정한 정제된 단백질의 특이 효소 활성을 265nkat/mg 단백질 (1katal=1몰 전환/초)이다.
- 이렇게 하여 측정된 효소 반응의 최적 pH는 약 9이며, 최적 온도는 약 55℃이다.
- 정제된 아미노기 전달 효소의 처음 40개의 N-말단아미노산 서열을 가스-상 크로마토그래피로 측정하였으며 하기식과 같다:
Met-Asn-Ser-Asn-Lys-
Glu-Leu-Met-Gln-Arg-Arg-Ser-Gln-Ala-Ile-Pro-Arg-Gly-
Val-Gly-Gln-Ile-His-Pro-Ile-Phe-Ala-Asp-Arg-Ala-
Glu(Thr)-Asn-Asn(Gly)-20.
[실시예 4 ]
[정제된 아미노기 전달 효소를 사용한 L-PPT의 생성]
정제된 아미노기 전달 효소를 55℃에서 30g/l 나트륨(3-카복시-3-옥소-프로필)-메틸포스피네이트 및 60g/l L-글루타메이트를 사용하여 50mM 트리스/10μM 피리독살 포스페이트(pH 9.0) 중에서 0.1mg/ml(특이 효소 활성 15U/mg 단백질)의 농도로 항온처리한다. 샘플을 0내지 24시간의 항온처리시간동안 취한다. 샘플을 취한후 효소를 10분동안 95℃에서 변성시키고, 원심분리시켜 제거시킨후, 상등액을 아미노산 분석기를 사용하여 L-포스피노트리신의 형성을 조사한다. 수득된 전환률은 16.6g의 L-PPT/1/h이다. 이 수율은 또한 효소의 농도를 증가시킴으로써 명백히 증가시킬 수 있다. 반응이 완결된 후, 사용된 α-케토산의 94.3%가 L-PPT(28.3g/l)로 전환되었다.
[실시예 5 ]
[아미노기 전달 효소의 고정화]
실시예 2에서와 같이 부분적으로 정제된 효소 분획을 아미노기 전달 효소의 고정화에 사용한다. 이 효소 제제의 총 단백질중 약 20%가 아미노기 전달 효소이며, 효소 활성은 76.4nkat/ml(1kat=1katal=1몰 전환/초)이다. 1M인산칼륨 완충액(pH 8.0)중의 아미노기 전달 효소 제제 47ml을 리델 데하옌 (Riedel de Haen)사의 종합체 담체 VA-에폭시 바이오신쓰(VA-Epoxy Biosynth
Figure kpo00002
) 8g에 가하고, 혼합물을 2일 동안 실온에서 회전시킨다.
(1) 50mM 인산칼륨 완충액(pH 7.0), (2) 1M 인산칼륨 완충액(pH 8.0) 및 (3) 50mM 인산칼륨 완충액(pH 7.0)으로 세척한후, 습윤 수지 31g을 수득한다.
1시간동안 수지를 10mM2-머캅토에탄올(50mM 인산칼륨용액중)과 반응시켜 과량의 옥시란 그룹을 전환시킨다.
담체 수지는 결합후(64nkat/g 습윤 수지), 효소 활성이 1,975nkat로서 이는 55%의 결합율에 상당한다. 4℃에서 0.02% 나트륨 아자이드와 함께 50mM 인산칼륨 완충액 (pH7.0)중에 저장한다.
[실시예 6]
[고정화된 아미노기 전달 효소를 사용한 L-PPT의 생성]
실시예 5로부터의 결합된 아미노기 전달 효소를 컬럼반응기중에서 L-PPT를 생성하는데 사용한다. 이 목적을 수행하기 위하여 20ml 크로마토그래피 컬럼을 고정화된 아미노기 전달 효소로 충전시키고, 컬럼을 42℃에서 평형화 시킨후, 기질 용액 (20g/1 3-카복시-3-옥소-프로필-메틸-포스핀산(케토-PPT)/60g/1 L-글루탐산/10μM 피리독살 포스페이트,pH 8.0)을 0.5ml/분의 유속으로 컬럼을 통과시킨다. 컬럼을 통과한후, 사용된 케토 -PPT의 90.4%가 L-PPT로 전환되었다.

Claims (11)

  1. 분자량이 40,000 내지 50,000 달톤이고; 등전점이 pH 4.0 내지 5.0이며; 최적 pH가 8.0 내지 9.0이고; 및 아미노-그룹 공여체로서 글루타메이트와 함께, L-포스피노트리신을 제조하는 (3-카복시-3-옥소-프로필)-메틸-포스핀산 또는 이의 에스테르의 아미노기 전달반응, 및 γ-아미노부티르산을 제조하는 숙시네이트 세미알데하이드 또는 이의 에스테르의 아미노기 전달반응에 대하여 기질 특이성을 갖는 이.콜라이 DH-1으로부터의 아미노기 전달효소.
  2. 이.콜라이 DH-1을 배양한후 아미노기 전달효소를 분리시킴을 특징으로 하여, 제1항에서 청구된 아미노기 전달효소를 제조하는 방법.
  3. 제2항에 있어서, 배양을 20내지 40℃의 온도에서 수행하는 방법.
  4. 제3항에 있어서, 배양을 25내지 37℃의 온도에서 수행하는 방법.
  5. 제2항 내지 제4항중 어느 한 항에 있어서, 배양을 pH 5내지 8.5에서 수행하는 방법.
  6. 제5항에 있어서, 배양을 pH 5.5 내지 8.0에서 수행하는 방법.
  7. (3-카복시-3-옥소-프로필)-메틸-포스핀산 또는 이의 에스테르 및 숙시네이트 세미알데하이드 또는 이의 에스테르의 아미노기 전달반응에 제1항에서 청구된 아미노기 전달효소를 사용함을 특징으로 하는 아미노기 전달 방법.
  8. 제7항에 있어서, 아미노기 전달반응이 20 내지 60℃에서 수행되는 방법.
  9. 제7항 또는 제8항에 있어서, 아미노기 전달반응이 pH 4 내지 12에서 수행되는 방법.
  10. 제7항 또는 제8항에 있어서, 아미노기 전달효소가 고정화된 형태로 사용되는 방법.
  11. 제10항에 있어서, 담체 물질로서 비닐 아세테이트와 디비닐에틸렌-우레아와의 공중합체가 사용되는 방법.
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