JPS6344883A - 新規なヒアルロニダ−ゼsd−678およびその製造法 - Google Patents
新規なヒアルロニダ−ゼsd−678およびその製造法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[発明の属する技術分野]
本発明は、新規な酵素ヒアルロニダーゼSD−678お
よびその製造法に関する。
よびその製造法に関する。
[従来の技術とその問題点]
ヒアルロニダーゼは酸性ムコ多糖の一種であるヒアルロ
ン酸を分解する能力を有する酵素の総称であり、動物組
織およびある種の微生物の培養物中にその存在が知られ
ている。
ン酸を分解する能力を有する酵素の総称であり、動物組
織およびある種の微生物の培養物中にその存在が知られ
ている。
動物由来のヒアルロニダーゼとしては、例えば、牛や羊
の率丸から抽出・分離されたものが研究用試薬として市
販されおり、また、微生物由来のヒアルロニダーゼとし
ては、例えば、ストレプトマイセスーヒアルロリティカ
ス・ノブ・エスピー(Streptomyces hy
alurolyticus NOV、 SP、)の培養
物から分離されたものが研究用試薬として市販されてい
る。
の率丸から抽出・分離されたものが研究用試薬として市
販されおり、また、微生物由来のヒアルロニダーゼとし
ては、例えば、ストレプトマイセスーヒアルロリティカ
ス・ノブ・エスピー(Streptomyces hy
alurolyticus NOV、 SP、)の培養
物から分離されたものが研究用試薬として市販されてい
る。
一方、ヒアルロニダーゼのある種のものは、皮下注射に
おける薬剤の吸収拡散促進剤として使用されており、ま
た、内科領域においては心筋梗塞の治療剤として利用す
ることが検討されている。
おける薬剤の吸収拡散促進剤として使用されており、ま
た、内科領域においては心筋梗塞の治療剤として利用す
ることが検討されている。
従来、微生物由来のヒアルロニダーゼとしてはストレプ
トマイセス属、スタフィロコッカス属、ストレプトコツ
カス属、プロピオニバクテリウム属、ペプトストレプI
・コツカス属由来のヒアルロニダーゼが知られている。
トマイセス属、スタフィロコッカス属、ストレプトコツ
カス属、プロピオニバクテリウム属、ペプトストレプI
・コツカス属由来のヒアルロニダーゼが知られている。
本発明者等は種々研究の結果、従来のヒアルロニダーゼ
とは種々の点で性質の異なる新規なヒアルロニダーゼS
D−678をストレプトコッカス壷ディスガラクチ4
x (Streptococcusdysgalact
iae)の培養物中に見出し、鋭意研究の結果、本発明
を完成した。
とは種々の点で性質の異なる新規なヒアルロニダーゼS
D−678をストレプトコッカス壷ディスガラクチ4
x (Streptococcusdysgalact
iae)の培養物中に見出し、鋭意研究の結果、本発明
を完成した。
[発明の構成]
■、ヒアルロニダーゼSD−678の性質について:
本発明のヒアルロニダーゼSD−678は次のような理
化学的性質を有する。
化学的性質を有する。
a)作用:
エンドβ−ヘキソサミニダーゼ
b)基質特異性:
ヒアルロン酸およびコンドロイチンを分解し、コンドロ
イチン硫酸A、コンドロイチン硫酸C、デルマタン硫酸
、ヘパリン、ヘパラン硫酸およびケラト硫酸を分解せず
。
イチン硫酸A、コンドロイチン硫酸C、デルマタン硫酸
、ヘパリン、ヘパラン硫酸およびケラト硫酸を分解せず
。
ヒアルロニダーゼSD−678はヒアルロン酸に特異性
が高く、ヒアルロン酸を基質としたときの活性値を10
0%とすると、コンドロイチンを基質としたときの相対
活性値は約3%である。
が高く、ヒアルロン酸を基質としたときの活性値を10
0%とすると、コンドロイチンを基質としたときの相対
活性値は約3%である。
C)至適pHおよび安定pH範囲:
イ)至適PI(:PH5,8〜6.6
各種pHにおけるヒアルロニダーゼSD−678の酵素
活性を後記の力価測定法において、加える緩衝液を各種
pHの酢酸緩衝液、リン酸緩衝液又はトリス−マレイン
酸緩衝液に代えて測定した。ヒアルロニダーゼSD−6
78の至適pHは5.8〜6.6である。
活性を後記の力価測定法において、加える緩衝液を各種
pHの酢酸緩衝液、リン酸緩衝液又はトリス−マレイン
酸緩衝液に代えて測定した。ヒアルロニダーゼSD−6
78の至適pHは5.8〜6.6である。
口)安定pH:pH5、0〜9’、 0ヒアルロニダー
ゼSD−678をpH3、0〜10.0の各種pl(の
エチレンジアミン−酢酸緩衝液中、37℃で15分間放
置し′た後、後記の力価測定法に従ってその残存活性を
測定した。ヒアルロニダーゼSD−678はpH5、0
〜9 、0(7)範囲で安定である。
ゼSD−678をpH3、0〜10.0の各種pl(の
エチレンジアミン−酢酸緩衝液中、37℃で15分間放
置し′た後、後記の力価測定法に従ってその残存活性を
測定した。ヒアルロニダーゼSD−678はpH5、0
〜9 、0(7)範囲で安定である。
d)力価測定法:
ヒアルロン酸にヒアルロニダーゼSD−678を37℃
で作用させたとき、1分間に1マイクロモル(ILmo
le)の2−アセトアミド−2−デオキシ−3−0−(
β−D−グルコー4−エネビラノシルウロン酸)−D−
グルコース(以下「Δd 1−HAJと記す)を遊離さ
せる酵素量(力価)が1単位である。
で作用させたとき、1分間に1マイクロモル(ILmo
le)の2−アセトアミド−2−デオキシ−3−0−(
β−D−グルコー4−エネビラノシルウロン酸)−D−
グルコース(以下「Δd 1−HAJと記す)を遊離さ
せる酵素量(力価)が1単位である。
詳しくは、本酵素はヒアルロン酸又はコンドロイチンの
β−へキソサミニド結合を分解するリアーゼ(脱離酵素
)である。
β−へキソサミニド結合を分解するリアーゼ(脱離酵素
)である。
ヒアルロン酸に本酵素を作用させると、ヒアルロン酸か
ら不飽和三糖であるΔdi−HAを遊離させる。それゆ
え、ヒアルロン酸と本酵素を37℃で反応させ、反応物
中のΔdi−HAをMorgan−Elson法で測定
することにより力価を測定する。
ら不飽和三糖であるΔdi−HAを遊離させる。それゆ
え、ヒアルロン酸と本酵素を37℃で反応させ、反応物
中のΔdi−HAをMorgan−Elson法で測定
することにより力価を測定する。
詳細な力価測定法は以下に記す。
[ヒアルロニダーゼSD−678の力価測定法](イ)
ヒアルロン酸溶液の調製 ヒアルロン酸ナトリウム0.2gを水 に溶解し、全量を1004とする。
ヒアルロン酸溶液の調製 ヒアルロン酸ナトリウム0.2gを水 に溶解し、全量を1004とする。
(ロ)リン酸緩衝液の調製
リン酸水素二ナトリウム(Na2 HPO4・12H2
0)6.62gとリン酸二水素ナトリウム(NaH2P
O2m 2H20)11.32.gおよび牛血清アルブ
ミン0.2gを水に溶解し、全量をtoo。
0)6.62gとリン酸二水素ナトリウム(NaH2P
O2m 2H20)11.32.gおよび牛血清アルブ
ミン0.2gを水に溶解し、全量をtoo。
−とする。
(ハ)ホウ酸カリウム溶液の調製
ホウ酸カリウム(K2 B407・
4 H20) 5 gを水に溶解し、2Mの水酸化カリ
ウム水溶液でpHを9.0に調整した後、全量を100
m/とする。
ウム水溶液でpHを9.0に調整した後、全量を100
m/とする。
(ニ)p−ジメチルアミノベンズアルデヒド溶液の調製
p−ジメチルアミノベンズアルデヒド
16gを酢酸95−と塩酸5WIJの混液に溶解する。
(ホ)反応および測定
上記ヒアルロン酸溶液0.25−に上
記リン酸緩衝液0.25−を加えて撹拌した後、ヒアル
ロニダーゼSD−678の試料溶液0.14を加えて撹
拌し、 37℃で10分間反応させる。反応後、直ちにlOOo
Cで1分間加熱した後、氷水中で冷やし、上記ホウ酸カ
リウム溶液0.5m/を加えて撹拌し、ZoooCで7
分間加熱する。加熱後、氷水中で冷やし、これに酢酸5
wJと上記p−ジメチルアミノベンズアルデヒド溶液2
−を加えて撹拌し、37℃で20分間放置した後、比色
計を用いて585nmにおける吸光度を測定する。
ロニダーゼSD−678の試料溶液0.14を加えて撹
拌し、 37℃で10分間反応させる。反応後、直ちにlOOo
Cで1分間加熱した後、氷水中で冷やし、上記ホウ酸カ
リウム溶液0.5m/を加えて撹拌し、ZoooCで7
分間加熱する。加熱後、氷水中で冷やし、これに酢酸5
wJと上記p−ジメチルアミノベンズアルデヒド溶液2
−を加えて撹拌し、37℃で20分間放置した後、比色
計を用いて585nmにおける吸光度を測定する。
e)作用適温の範囲:
至適温度:37℃付近
作用温度:20〜50℃
ヒアルロニダーゼ5I)−678を前記の力価測定法の
反応温度を所定の温度に変えて10分間反応させ、それ
ぞれの温度での酵素活性を測定した1ヒアルロニダーゼ
SD−678の至適温度は37℃付近であり、作用適温
の範囲は20〜50℃である。
反応温度を所定の温度に変えて10分間反応させ、それ
ぞれの温度での酵素活性を測定した1ヒアルロニダーゼ
SD−678の至適温度は37℃付近であり、作用適温
の範囲は20〜50℃である。
f)p)l、温度などによる失活の条件:1)ヒアルロ
ニダーゼSD−678をpH4,5のエチレンジアミン
−酢酸緩衝液中、37℃で15分間放置することにより
約80%失活する。
ニダーゼSD−678をpH4,5のエチレンジアミン
−酢酸緩衝液中、37℃で15分間放置することにより
約80%失活する。
ii )ヒアルロニダーゼSD−678をpH7,2の
リン酸M衝液中、80℃で30分間放置することにより
約100%失活する。
リン酸M衝液中、80℃で30分間放置することにより
約100%失活する。
1ii)ヒアルロニダーゼSD−678を50mMの亜
硫酸ナトリウム、システィン又はメルカプトエタノール
を含むpH6、5のリン酸緩衝液中、37℃で10分間
放置することにより約100%失活する。
硫酸ナトリウム、システィン又はメルカプトエタノール
を含むpH6、5のリン酸緩衝液中、37℃で10分間
放置することにより約100%失活する。
g)阻害および安定化:
1)各種金属の塩化塩をヒアルロニダーゼSD−678
に加えて、前記の力価測定法で活性を測定したところ、
50mMの金属イオン濃度での主な阻害金属イオンはF
e2+、Cu ”+、Pb’2”、Hg2+−?l’、
これらは90%以上阻害する。また、Zn2+は約80
%、Cd2+は約40%阻害する。
に加えて、前記の力価測定法で活性を測定したところ、
50mMの金属イオン濃度での主な阻害金属イオンはF
e2+、Cu ”+、Pb’2”、Hg2+−?l’、
これらは90%以上阻害する。また、Zn2+は約80
%、Cd2+は約40%阻害する。
ii )ヒアルロニダーゼSD−6785単位を0.0
5Mリン酸緩衝液(p)16 、2) 1dに溶解し
た液およびヒアルロニダーゼSD−8785単位と牛血
清アルブミン0.25mg又はゼラチン0.25mgと
を0.05Mリン酸緩衝液(pH6、2) 1m/に溶
解した液を4℃に5日間放置し、その残存活性を測定す
るとき、牛血清アルブミン又はゼラチンを添加した液の
残存活性は約95%であるが、無添加の液の残存活性は
約25%であり、ヒアルロニダーゼSD=678は牛血
清アルブミン又はゼラチンの添加により安定化する。
5Mリン酸緩衝液(p)16 、2) 1dに溶解し
た液およびヒアルロニダーゼSD−8785単位と牛血
清アルブミン0.25mg又はゼラチン0.25mgと
を0.05Mリン酸緩衝液(pH6、2) 1m/に溶
解した液を4℃に5日間放置し、その残存活性を測定す
るとき、牛血清アルブミン又はゼラチンを添加した液の
残存活性は約95%であるが、無添加の液の残存活性は
約25%であり、ヒアルロニダーゼSD=678は牛血
清アルブミン又はゼラチンの添加により安定化する。
h)分子量
セファアクリルS−200を用いたゲルろ過法でヒアル
ロニダーゼSD−678の分子量を測定した。
ロニダーゼSD−678の分子量を測定した。
ヒアルロニダーゼSD−678のゲルろ過法テノ分子量
は125.OOO±10.’000である。
は125.OOO±10.’000である。
i)電気泳動による移動度
結晶構造の解析および元素分析は、ヒアルロニダーゼS
D−678が結晶化されていないので実施できない。そ
こで、ヒアルロニダーゼSD−678の電気泳動での移
動度を4111定した。
D−678が結晶化されていないので実施できない。そ
こで、ヒアルロニダーゼSD−678の電気泳動での移
動度を4111定した。
セルロースアセテート膜を支持体として1.0.05M
トリス−マレイン酸緩衝液(pH6,0)を用いて、0
、5 mA/ amで3σ分間通電してヒアルロニダ
ーゼSD−678(1)電気泳動を行い、陽極側に泳動
される牛血清アルブミンの移動度を+1.0とするとき
、ヒアルロニダーゼSD−678の移動度ハへ +0.
3である。
トリス−マレイン酸緩衝液(pH6,0)を用いて、0
、5 mA/ amで3σ分間通電してヒアルロニダ
ーゼSD−678(1)電気泳動を行い、陽極側に泳動
される牛血清アルブミンの移動度を+1.0とするとき
、ヒアルロニダーゼSD−678の移動度ハへ +0.
3である。
本発明に用いる微生物としては、ストレプトコッカス・
ディスガラクティエに属する菌株であれば如何なるもの
でもよい。かかる菌株としては、lID678号として
東京大学医科学研究所に寄託されているものが挙げられ
る。
ディスガラクティエに属する菌株であれば如何なるもの
でもよい。かかる菌株としては、lID678号として
東京大学医科学研究所に寄託されているものが挙げられ
る。
また、微生物としては、ストレプトコッカスeディスガ
ラクチイエを、例えば、xtlliI、γ線、紫外線等
の照射処理、又は、エチルメタンスルホネート、ニトロ
ングアニジン等の薬剤処理、形質転換、形質導入、接合
、遺伝子操作等の通常用いられる菌株変異処理方法によ
ってヒアルロニダーゼSD−678の生産能を高めたも
のを用いてもよい。
ラクチイエを、例えば、xtlliI、γ線、紫外線等
の照射処理、又は、エチルメタンスルホネート、ニトロ
ングアニジン等の薬剤処理、形質転換、形質導入、接合
、遺伝子操作等の通常用いられる菌株変異処理方法によ
ってヒアルロニダーゼSD−678の生産能を高めたも
のを用いてもよい。
従来のヒアルロニダーゼとの比較:
ヒアルロニダーゼSD−678は前記したような理化学
的性質を有している。
的性質を有している。
従来からヒアルロニダーゼは動物の組織やある種の微生
物の培養物中にその存在が知られている。
物の培養物中にその存在が知られている。
動物由来のヒアルロニダーゼはいずれも加水分解酵素で
あり、ヒアルロン酸に作用して4糖又は6糖を生成する
ことから、リアーゼであるヒアルロニダーゼSD−67
8とはその作用の点で異なっている。
あり、ヒアルロン酸に作用して4糖又は6糖を生成する
ことから、リアーゼであるヒアルロニダーゼSD−67
8とはその作用の点で異なっている。
一方、微生物由来のヒアルロニダーゼで、その理化学的
性質が検討されているヒアルロニダーゼとしては、スト
レプトマイセス・ヒアルロリイティカス・ノボ・エスピ
ー、ストレプトマイセス・コガネイエンスNo、j32
31、スタフィロコッカス争アウレウス、ペプトストレ
ブトコッヵス・エスピー84H14S、 プロピオニバ
クテリウム・アクネス又はストレプトコッカス・ピオゲ
ネスの産生ずるヒアルロニダーゼがある。
性質が検討されているヒアルロニダーゼとしては、スト
レプトマイセス・ヒアルロリイティカス・ノボ・エスピ
ー、ストレプトマイセス・コガネイエンスNo、j32
31、スタフィロコッカス争アウレウス、ペプトストレ
ブトコッヵス・エスピー84H14S、 プロピオニバ
クテリウム・アクネス又はストレプトコッカス・ピオゲ
ネスの産生ずるヒアルロニダーゼがある。
ここで、これらの微生物由来のヒアルロニダーゼとヒア
ルロニダーゼSD−678の性質を比較して表に示す。
ルロニダーゼSD−678の性質を比較して表に示す。
従来から知られている微生物由来のヒアルロニダーゼは
、ヒアルロン酸のβ−へキンサミニド結合を分解するリ
アーゼであり、作用の点ではいずれも共通している。
、ヒアルロン酸のβ−へキンサミニド結合を分解するリ
アーゼであり、作用の点ではいずれも共通している。
しかし、ストレプトマイセス、ペブトストレプトコッカ
スおよびプロピオニバクテリウム由来のヒアルロニダー
ゼとヒアルロニダーゼSD−678とは基質特異性、至
適pH1分子量などの点でその性質が異なる。また、ス
タフィロコッカス由来のヒアルロニダーゼとは至適PH
や分子量の点でその性質が異なる。
スおよびプロピオニバクテリウム由来のヒアルロニダー
ゼとヒアルロニダーゼSD−678とは基質特異性、至
適pH1分子量などの点でその性質が異なる。また、ス
タフィロコッカス由来のヒアルロニダーゼとは至適PH
や分子量の点でその性質が異なる。
ヒアルロニダーゼSD−678とストレプトコッカス・
ピオゲネスのヒアルロニダーゼとは分子量が異なり、ヒ
アルロニダーゼSD−678(7)方が分子量が大きい
。また、ヒアルロニダーゼSD−678の至適pH範囲
は広く、使用に際し有利である。更に、ストレプトコッ
カス・ピオゲネスのヒアルロニダーゼは酸化剤に対して
は不安定であるが、ヒアルロニダーゼSD−678は酸
化剤に対してほとんど影響を受けないので、酸化剤存在
下でヒアルロン酸を分解するときは本酵素の方が適して
いる。他方、ヒアルロニダーゼSD−678は還元剤に
よって失活するが、ストレプトコッカス争ピオゲネスの
ヒアルロニダーゼは還元剤によって安定化することが知
られている。
ピオゲネスのヒアルロニダーゼとは分子量が異なり、ヒ
アルロニダーゼSD−678(7)方が分子量が大きい
。また、ヒアルロニダーゼSD−678の至適pH範囲
は広く、使用に際し有利である。更に、ストレプトコッ
カス・ピオゲネスのヒアルロニダーゼは酸化剤に対して
は不安定であるが、ヒアルロニダーゼSD−678は酸
化剤に対してほとんど影響を受けないので、酸化剤存在
下でヒアルロン酸を分解するときは本酵素の方が適して
いる。他方、ヒアルロニダーゼSD−678は還元剤に
よって失活するが、ストレプトコッカス争ピオゲネスの
ヒアルロニダーゼは還元剤によって安定化することが知
られている。
次にヒアルロニダーゼSD−678とストレプトコッカ
ス・ピオゲネスのヒアルロニダーゼの抗血清を作成し、
血清学的性質を調べた。
ス・ピオゲネスのヒアルロニダーゼの抗血清を作成し、
血清学的性質を調べた。
[抗血清の調製]
ヒアルロニダーゼ5O−678又はストレプトコッカス
拳ピオゲネス由来のヒアルロニダーゼをそれぞれ100
単位生理的食塩液0.5dに溶解し、等量の完全アジュ
バントと混合して懸濁液を作成し、家兎の皮下に0.2
wJずつ5ケ所に皮下注射をした。この操作を1週間間
隔で3回行った後、2週間後にそれぞれに家兎から全血
採血し、血清を分離して、それぞれのヒアルロニダーゼ
の抗血清を得た。
拳ピオゲネス由来のヒアルロニダーゼをそれぞれ100
単位生理的食塩液0.5dに溶解し、等量の完全アジュ
バントと混合して懸濁液を作成し、家兎の皮下に0.2
wJずつ5ケ所に皮下注射をした。この操作を1週間間
隔で3回行った後、2週間後にそれぞれに家兎から全血
採血し、血清を分離して、それぞれのヒアルロニダーゼ
の抗血清を得た。
[抗血清との反応]
ヒアルロニダーゼSD−6781単位又はストレプI・
コツカス・ピオゲネス由来のヒアルロニダーゼ 1単位
を0.05Mリン酸緩衝液(pH6,2)0.5++1
/に溶解し、この液にそれぞれの抗血清0.5++tl
を加えて攪拌し、室温に15分間放置した後、前記力価
測定法でその力価を測定した。対照として正常家兎血清
を用いて同様に測定した。
コツカス・ピオゲネス由来のヒアルロニダーゼ 1単位
を0.05Mリン酸緩衝液(pH6,2)0.5++1
/に溶解し、この液にそれぞれの抗血清0.5++tl
を加えて攪拌し、室温に15分間放置した後、前記力価
測定法でその力価を測定した。対照として正常家兎血清
を用いて同様に測定した。
ヒアルロニダーゼSD−678の抗血清はヒアルロニダ
ーゼSD−678の酵素活性を阻害したが、正常家兎血
清およびストレプトコッカス・ピオゲネス由来のヒアル
ロニダーゼの抗血清は全く酵素活性を阻害しなかった。
ーゼSD−678の酵素活性を阻害したが、正常家兎血
清およびストレプトコッカス・ピオゲネス由来のヒアル
ロニダーゼの抗血清は全く酵素活性を阻害しなかった。
一方、ストレプトコッカス・ピオゲネス由来のヒアルロ
ニダーゼの抗血清はストレプトコッカス・ピオゲネス由
来のヒアルロニダーゼの酵素活性を阻害したが、ヒアル
ロニダーゼSD−678の抗血清および正常家兎血清で
はその酵素活性は全く阻害されなかった。
ニダーゼの抗血清はストレプトコッカス・ピオゲネス由
来のヒアルロニダーゼの酵素活性を阻害したが、ヒアル
ロニダーゼSD−678の抗血清および正常家兎血清で
はその酵素活性は全く阻害されなかった。
このようにヒアルロニダーゼSD−678の諸性質につ
いて、この出願前の公知のヒアルロニダーゼと比較検討
した結果1本発明のヒアルロニダーゼSD−678は従
来より公知の一物由来のヒアルロニダーゼおよび微生物
由来のヒアルロニダーゼとは種々の点で質的に相異して
いる新規な゛ヒアルロニダーゼであることが判明した。
いて、この出願前の公知のヒアルロニダーゼと比較検討
した結果1本発明のヒアルロニダーゼSD−678は従
来より公知の一物由来のヒアルロニダーゼおよび微生物
由来のヒアルロニダーゼとは種々の点で質的に相異して
いる新規な゛ヒアルロニダーゼであることが判明した。
一方、ヒアルロニダーゼSD−678の生産菌であるス
トレプトコッカス・ディスガラクティエは動物の皮膚な
どから分離される細菌であり、人に対する病原性はほと
んどないことが知られており、ヒアルロニダーゼSD−
678の生産に際しては一般的な設備を使用できる。他
方、ストレプトコッカス−ピオゲネスは人に対して病原
性を有するので、そのヒアルロニダーゼ生産に際しては
、充分に注意する必要がある。
トレプトコッカス・ディスガラクティエは動物の皮膚な
どから分離される細菌であり、人に対する病原性はほと
んどないことが知られており、ヒアルロニダーゼSD−
678の生産に際しては一般的な設備を使用できる。他
方、ストレプトコッカス−ピオゲネスは人に対して病原
性を有するので、そのヒアルロニダーゼ生産に際しては
、充分に注意する必要がある。
なお、ストレプトコッカス・ディスガラクティエI I
D−678又はストレプトコッカス・ピオゲネスlID
−715をそれぞれ血液寒天培地(極東製薬部)に接種
して、37℃で1晩培養した後、滅菌処理した酵母エキ
ス2%、ベプトン0.5%、リン酸水素二カリウム0.
4%、グルコース2%(pH7、2) 100td力ラ
ナル液体培地に菌を2白金耳接種し、37℃で24時間
振盪培養を行い、得られた培養物を遠心分離して培養上
清を得た。この培養上清のヒアルロニダーゼ活性を前記
の力価測定法で測定したところ、ストレプトコッカス・
ディスガラクティエの培養上清の粗酵素活性は230単
位であり、ストレプトコッカス・ピオゲネスlID−7
15の培養上清の粗酵素活性の約60倍であった。
D−678又はストレプトコッカス・ピオゲネスlID
−715をそれぞれ血液寒天培地(極東製薬部)に接種
して、37℃で1晩培養した後、滅菌処理した酵母エキ
ス2%、ベプトン0.5%、リン酸水素二カリウム0.
4%、グルコース2%(pH7、2) 100td力ラ
ナル液体培地に菌を2白金耳接種し、37℃で24時間
振盪培養を行い、得られた培養物を遠心分離して培養上
清を得た。この培養上清のヒアルロニダーゼ活性を前記
の力価測定法で測定したところ、ストレプトコッカス・
ディスガラクティエの培養上清の粗酵素活性は230単
位であり、ストレプトコッカス・ピオゲネスlID−7
15の培養上清の粗酵素活性の約60倍であった。
このよう&4このヒアルロニダーゼ507−678はス
トレプトコッカス・、ピオゲネス由来のヒアルロニダー
ゼより製造がしやすく、かつ、生産性がよい。
トレプトコッカス・、ピオゲネス由来のヒアルロニダー
ゼより製造がしやすく、かつ、生産性がよい。
II 、ヒアルロニダーゼSD−678の製造法につい
て: 本発明のヒアルロニダーゼ5O−678は、例えば、ス
トレプトコッカス・ディスガラクティエを培地に培養し
、得られる培養物からヒアルロニダーゼSD−678を
分離・精製することにより製造される。
て: 本発明のヒアルロニダーゼ5O−678は、例えば、ス
トレプトコッカス・ディスガラクティエを培地に培養し
、得られる培養物からヒアルロニダーゼSD−678を
分離・精製することにより製造される。
培養方法は一般的微生物培養方法に準ずれば、いずれの
方法でもよいが1通常は液体培地による振盪又は撹拌培
養法が有利である。
方法でもよいが1通常は液体培地による振盪又は撹拌培
養法が有利である。
培養に用いる培地としては、ストレプトコッカス・ディ
スガラクティエが栄養源として利用できる培地成分であ
ればよい。
スガラクティエが栄養源として利用できる培地成分であ
ればよい。
例えば、炭素源としては、グルコース、マンノース、i
a粉、糖蜜、液化澱粉、グリセリン等を用いることがで
きる。
a粉、糖蜜、液化澱粉、グリセリン等を用いることがで
きる。
また、窒素源としては、例えば肉エキス、酵母エキス、
ペプトン、カゼイン加水分解物、ゼラチン、コーンミー
ル、大豆粉、リン酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、
尿素等を用しζることができる。
ペプトン、カゼイン加水分解物、ゼラチン、コーンミー
ル、大豆粉、リン酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、
尿素等を用しζることができる。
また、リン酸水素二ナトリウム、リン酸二水素カリウム
、塩化カリウム、炭醜カルシウム、塩化マンガン、塩化
マグネシウム、硫酸ナトリウム等の各種無機塩類も必要
に応じて添加できる。
、塩化カリウム、炭醜カルシウム、塩化マンガン、塩化
マグネシウム、硫酸ナトリウム等の各種無機塩類も必要
に応じて添加できる。
一方、ヒアルロニダーゼ5I)−678誘導物質として
ヒアルロン酸、コンドロイチン又は部分的に脱硫酸化し
たコンドロイチン硫酸を培地に添加することにより、ヒ
アルロニダーゼSD−678の生産能を高めることがで
きる。
ヒアルロン酸、コンドロイチン又は部分的に脱硫酸化し
たコンドロイチン硫酸を培地に添加することにより、ヒ
アルロニダーゼSD−678の生産能を高めることがで
きる。
しかし、ヒアルロニダーゼSD−678は還元剤によっ
て失活するので、培地中に還元剤を添加することは好ま
しくない。
て失活するので、培地中に還元剤を添加することは好ま
しくない。
上記したような培地成分は適宜組合せても、また培地途
中で添加してもよい。
中で添加してもよい。
また、培養中発泡の著しい時には、例えば大豆油、亜麻
仁油等の植物油、オクチルアルコール等の高級アルコー
ル類、シリコン化合物等の消泡剤を適宜添加すればよい
。
仁油等の植物油、オクチルアルコール等の高級アルコー
ル類、シリコン化合物等の消泡剤を適宜添加すればよい
。
培養温度は37℃前後が適当であり、培養時間は10〜
30時間が適当である。
30時間が適当である。
培養容量の増大に従って適宜種培養を行うと好結果が得
られる。
られる。
以上述べた培養条件は使用菌株の特性に応じてそれぞれ
最適の条件を選択して適用される。
最適の条件を選択して適用される。
このようにして培養し、得られた培養物からヒアルロニ
ダーゼSD−678を分離精製する。
ダーゼSD−678を分離精製する。
ヒアルロニダーゼSD−678は主に培養物中の菌体外
に含有されている、ので、ろ過、遠心分離等の手段によ
り、培養物を菌体と培養液に分離し、一般酵素の精製法
によりヒアルロニダーゼSD−678を精製すればよい
。 、即ち、減圧濃縮、凍結乾燥、透析、硫安分別
、限外ろ過、遠心分離、イオン交換体を使用するクロマ
トグラフィー、ゲルろ過、有機溶媒を使用する分別沈殿
等の酵素の分離、精製手段を単独あるいは任意に組み合
わせて、また必要に応じて反復して用いることにより培
養ろ液からヒアルロニダーゼSD−678が分離、精製
、採取される。
に含有されている、ので、ろ過、遠心分離等の手段によ
り、培養物を菌体と培養液に分離し、一般酵素の精製法
によりヒアルロニダーゼSD−678を精製すればよい
。 、即ち、減圧濃縮、凍結乾燥、透析、硫安分別
、限外ろ過、遠心分離、イオン交換体を使用するクロマ
トグラフィー、ゲルろ過、有機溶媒を使用する分別沈殿
等の酵素の分離、精製手段を単独あるいは任意に組み合
わせて、また必要に応じて反復して用いることにより培
養ろ液からヒアルロニダーゼSD−678が分離、精製
、採取される。
[発明の実施例]
以下、実施例により本発明を更に詳細に説明するが、こ
れらの実施例は本発明の範囲を何ら制限するものではな
い。
れらの実施例は本発明の範囲を何ら制限するものではな
い。
実施例1
スI・レプトコッ力スeディスガラクチイエI ID−
678株をウマ血液寒天培地(極東製薬製)に接種して
、37℃で1晩培養した。
678株をウマ血液寒天培地(極東製薬製)に接種して
、37℃で1晩培養した。
次に、酵母エキス2%、ペプトン0.5%、リン酸水素
二カリウム0.4%、グルコース2%(pH7、2)か
らなる培地溶液を500d容坂ロフラスコ4木にそれぞ
れ100−入れ、121℃で15分間加圧滅菌した。こ
のフラスコに前記培養菌をそれぞれ2白金耳接種し、3
7℃で10時間培養した。
二カリウム0.4%、グルコース2%(pH7、2)か
らなる培地溶液を500d容坂ロフラスコ4木にそれぞ
れ100−入れ、121℃で15分間加圧滅菌した。こ
のフラスコに前記培養菌をそれぞれ2白金耳接種し、3
7℃で10時間培養した。
別に上記と同じ組成の培地溶液201を301のジャー
ファーメンタ−に入れ、121℃で20分間滅菌した後
、別に滅菌した1%ヒアルロン酸ナトリウム溶液2文を
無菌的に加えた後、前記の4木のフラスコ培養液を加え
て37℃で12時間j8養した。途中、培地cy)pH
は、3N NaOH溶液を適宜加えて中性に保つ。
ファーメンタ−に入れ、121℃で20分間滅菌した後
、別に滅菌した1%ヒアルロン酸ナトリウム溶液2文を
無菌的に加えた後、前記の4木のフラスコ培養液を加え
て37℃で12時間j8養した。途中、培地cy)pH
は、3N NaOH溶液を適宜加えて中性に保つ。
このようにして得られた培養液をラジオライト(昭和化
学工業製)をろ過助剤に用いてろ別し、ろ液を得た。こ
のろ液を10℃まで水冷し、70%飽和硫安濃度になる
ように硫安を加えて、撹拌した後、液温を10℃に保ち
ながら2時間放置した。
学工業製)をろ過助剤に用いてろ別し、ろ液を得た。こ
のろ液を10℃まで水冷し、70%飽和硫安濃度になる
ように硫安を加えて、撹拌した後、液温を10℃に保ち
ながら2時間放置した。
この塩析で生じた沈殿物を遠心分離して集め、0.02
5M)リス−塩酸緩衝液(pH7、8)50mlに溶解
した後、同じ緩衝液15文に対して20時間透析した。
5M)リス−塩酸緩衝液(pH7、8)50mlに溶解
した後、同じ緩衝液15文に対して20時間透析した。
次に、この掖をDEAE−セルロースを充填したカラム
を通過させ、カラムを0.025M)リス−塩酸緩衝液
で洗浄した後、0.2M NaC1を含む0.025
M)リス−塩酸緩衝液で溶出して、溶出液を集め、濃縮
した後、0.05Mリン酸緩衝液(pH5、8)に対し
て20時間透析した。この液をPhospho−セルロ
ースを充填したカラムに通過させ、0.05Mリン酸緩
衝液(p)15 、8)でよく洗浄した後、0.05M
のpH5,8とpH7、0のリン酸緩衝液を用いてpH
グラジェント溶出を行い、目的物を含む両分を集め20
−まで濃縮した。この液をセファアクリルS−300(
’ファルマシア社製)を充填したカラムでゲルろ過を行
い、目的物の溶出される両分を集めて凍結乾燥して、粉
末ヒアルロニダーゼSD−67812+*gを得た。
を通過させ、カラムを0.025M)リス−塩酸緩衝液
で洗浄した後、0.2M NaC1を含む0.025
M)リス−塩酸緩衝液で溶出して、溶出液を集め、濃縮
した後、0.05Mリン酸緩衝液(pH5、8)に対し
て20時間透析した。この液をPhospho−セルロ
ースを充填したカラムに通過させ、0.05Mリン酸緩
衝液(p)15 、8)でよく洗浄した後、0.05M
のpH5,8とpH7、0のリン酸緩衝液を用いてpH
グラジェント溶出を行い、目的物を含む両分を集め20
−まで濃縮した。この液をセファアクリルS−300(
’ファルマシア社製)を充填したカラムでゲルろ過を行
い、目的物の溶出される両分を集めて凍結乾燥して、粉
末ヒアルロニダーゼSD−67812+*gを得た。
こうして得たヒアルロニダーゼSD−678の比活性を
力価測定法に従って測定したところ1.500単位/■
gであった。
力価測定法に従って測定したところ1.500単位/■
gであった。
[発明の効果]
本発明によれば、新規なヒアルロニダーゼを提供するこ
とができる。
とができる。
Claims (2)
- (1)次の理化学的性質: 作用: エンドβ−ヘキソサミニダーゼ 基質特異性: ヒアルロン酸およびコンドロイチンを分解し、コンドロ
イチン硫酸A、コンドロイチン硫酸C、デルマタン硫酸
、ヘパリン、ヘパラン硫酸およびケラト硫酸を分解せず
。 至適pHおよび安定pH範囲: 至適pH pH5.8〜6.6 安定pH pH5.0〜9.0 作用適温の範囲: 至適温度:37℃付近 作用適温の範囲:20〜50℃ pH、温度などによる失活の条件: i)pH4.5のエチレンジアミン−酢酸緩衝液中、3
7℃で15分間放置することにより約80%失活する。 ii)pH7.2のリン酸緩衝液中、80℃で30分間
放置することにより約100%失活する。 iii)50mMの亜硫酸ナトリウム、システイン又は
メルカプトエタノールを含むpH6.5のリン酸緩衝液
中、37℃で10分間放置することにより約100%失
活する。 阻害および安定化: i)Fe^2^+、Cu^2^+、Pb^2^+および
Hg^2^+により阻害される。 ii)牛血清アルブミン又はゼラチンを加えることによ
り安定化する。 分子量: 125,000±10,000(セファアクリルS−2
00によるゲルろ過法) 電気泳動による移動度: セルロースアセテート膜を支持体として、 0.05Mトリスーマレイン酸緩衝液(pH6.0)を
用いて、0.5mA/cmで30分間通電して電気泳動
を行い、陽極側に泳動される牛血清アルブミンの移動度
を+1.0とするときの移動度は+0.3である。 を有することを特徴とするストレプトコッカス・ディス
ガラクティエ(Streptococcus dysg
alactiae)由来のヒアルロニダーゼSD−67
8。 - (2)ストレプトコッカス・ディスガラクティエ(St
reptococcus dysgalactiae)
又はその変異株を培地に培養し、得られた培養物からヒ
アルロニダーゼSD−678を分離、採取することを特
徴とするヒアルロニダーゼSD−678の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18861286A JPH0751064B2 (ja) | 1986-08-13 | 1986-08-13 | 新規なヒアルロニダ−ゼsd−678およびその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18861286A JPH0751064B2 (ja) | 1986-08-13 | 1986-08-13 | 新規なヒアルロニダ−ゼsd−678およびその製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6344883A true JPS6344883A (ja) | 1988-02-25 |
JPH0751064B2 JPH0751064B2 (ja) | 1995-06-05 |
Family
ID=16226723
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP18861286A Expired - Fee Related JPH0751064B2 (ja) | 1986-08-13 | 1986-08-13 | 新規なヒアルロニダ−ゼsd−678およびその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0751064B2 (ja) |
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JP2002533376A (ja) * | 1998-12-23 | 2002-10-08 | エスパルマ ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツング | ヒアルロン酸から加水分解によって製造されたフラグメント混合物を含有する皮膚保護剤 |
JP2014227350A (ja) * | 2013-05-20 | 2014-12-08 | 株式会社テクノーブル | 化粧料 |
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-
1986
- 1986-08-13 JP JP18861286A patent/JPH0751064B2/ja not_active Expired - Fee Related
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