JPH0876B2 - 核酸標的物の生成法 - Google Patents
核酸標的物の生成法Info
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- JPH0876B2 JPH0876B2 JP4310521A JP31052192A JPH0876B2 JP H0876 B2 JPH0876 B2 JP H0876B2 JP 4310521 A JP4310521 A JP 4310521A JP 31052192 A JP31052192 A JP 31052192A JP H0876 B2 JPH0876 B2 JP H0876B2
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Description
酸の調製法に関する。
たはリボ核酸(RNA)のいずれかの形態である。DN
AおよびRNAは、多数のヌクレオチド骨格から形成さ
れる高分子量ポリマーである。各ヌクレオチドは塩基
(プリンまたはピリミジン)、糖(リボースまたはデオ
キシリボース)およびリン酸分子からなる。DNAは、
糖デオキシリボースおよび塩基アデニン(A)、グアニ
ン(G)、シトシン(C)およびチミン(T)からな
る。
構成する。3つのヌクレオチド各々の配列は、翻訳の過
程において一つのアミノ酸のためのコードとして読まれ
うる(DNAは転写の過程において最初にRNAに変換
されなければならない)。それぞれの3つの塩基配列内
の塩基の組み合わせを変えることにより、別のアミノ酸
がコードされる。さまざまな3つの塩基配列の連結によ
り、アミノ酸配列は蛋白質およびポリペプチドを構成で
きる。一つの蛋白質の完全なコードユニットは遺伝子と
呼ばれる。ひとつまたは複数の遺伝子コピーが一つの生
物内に存在しうる。幾つかの遺伝子は数百から数千コピ
ー存在する。他の遺伝子は通常単一コピーで存在する。
物内で連結されて、高等生物においては染色体と呼ばれ
るより高度な構造単位が構成される。幾つかの下等生物
においては、プラスミドと呼ばれる染色体外ユニットの
遺伝子が存在する。遺伝子は互いに直接末端同士で連結
される必要はない。特定の非コード領域(即ちイントロ
ン:アミノ酸に翻訳されない塩基配列)が遺伝子間また
は遺伝子内において存在する。即ち、特定の生物のヌク
レオチド配列はゲノムと呼ばれるその生物の遺伝子構造
を決定する。(したがって、ひとつの生物から単離され
たDNAはゲノミックDNAと呼ばれる。)ほとんどの
生物のDNAは、二本鎖の形で形成されており、DNA
の二本の鎖は、接近した二重らせんにより対になってい
る。このモデルにおいて、対合している鎖同士はAとT
およびCとGの間で水素結合を形成している。即ち、一
方の鎖の配列がATCG(5’→3’)であれば相補鎖
はTAGC(3’→5’)となる。しかしながら、両方
の鎖は相補的な塩基対合様式においてのみ同じ遺伝子コ
ードを含む。したがって、いずれかのDNA鎖が読めれ
ば、コードしている方の遺伝子配列が決定される。
述はワトソン(Watson)、Molecular
Biology of the Gene、ベンジャミ
ン(W.J.Benjamin)、Inc.(第3版、
1977年)の特に6章−14章を参照せよ。
および決定は、多くの理由から重要である。第一に、多
くの疾患は正常な遺伝子のヌクレオチド配列が幾つかの
様式により変化を受けるという意味において遺伝的なも
のである。そのような変化は、ひとつの塩基が別の塩基
に置換されることにより生じる。3つの塩基が一つのア
ミノ酸を供給するので、一つの塩基の変化(点突然変異
とよばれる)が一つのアミノ酸の変更をもたらし、正常
な蛋白質の代わりに欠損蛋白質が細胞内で作られる。鎌
形赤血球貧血症は、一つの遺伝子内の一つの塩基の変化
により引き起こされる、そのような遺伝的欠損の古典的
な例である。一つの遺伝子の欠損により引き起こされる
疾患の例は、第IX因子欠損および第VIII因子欠
損、アデノシンデアミナーゼ欠損、プリンヌクレオチド
ホスホリラーゼ欠損、オルニチントランスカルバミラー
ゼ欠損、アルギニンスクシネートシンターゼ欠損、ベー
タサラセミア、α1抗トリプシン欠損、グルコセレブロ
シダーゼ欠損、フェニルアラニンヒドロキシラーゼ欠損
およびヒポキサンチン−グアニンホスホリボシルトラン
スフェラーゼ欠損を含む。さらに他の疾患、例えば癌
は、活性化、転座、転移、コピー数の増加および/また
はオンコジーンと呼ばれる、ゲノム内に存在することが
知られている遺伝子のサプレッションの除去により引き
起こされると信じられている。特定の癌について明らか
であると信じられているオンコジーンの例は、神経芽細
胞腫、網膜芽細胞腫および小細胞肺癌のN−mycおよ
び慢性骨髄性白血病のc−ablを含む。癌の診断に関
するオンコジーンの関連記述および特定のオンコジーン
のリストはワインバーグ(Weinberg)、Sc
i.Amer.,1983年11月、スラモン(Sla
mon)ら、Science,224:256(198
4)、米国特許第4,699,877号および第4,9
18,162号を参照せよ。
的なレベルで生じる遺伝的な変化がある。そのような変
化は、挿入、欠失および染色体内の転座を含み、また染
色体数の増加または減少を含む。前者の例として、その
ような変化は交さと呼ばれる現象によりもたらされ、一
つの染色体DNAの鎖がさまざまな長さの別の染色体D
NAと交換される。即ち、例えば正常な個体において、
蛋白質Xの遺伝子が第1染色体に存在する場合、交さ後
にその遺伝子が第4染色体に転座し(第4染色体から第
1染色体への同様な交換があってもなくても)、細胞は
Xを生産しない。
neuploidyと呼ばれる)において、各々の正確
な染色体コピー数を有する正常な個体の代わりに(例え
ば、XおよびY染色体以外の二本のヒト染色体)、違う
数になる。例えばヒトにおいては、ダウン症候群は正常
な2コピーの代わりに第21染色体を3コピー有する結
果になる。他の異数体状態は第13染色体と第18染色
体を含むトリソミーによりもたらされる。
よびウイルスにより引き起こされ、それらすべては自分
の核酸を有する。生物学的材料の試料中のこれら生物の
存在は、しばしば多くの慣用的な方法(例えば培養)に
より測定される。しかしながら、各々の生物は自分のゲ
ノムをもっているために、単一の種(幾つかの近縁種、
属またはより高いレベルの近縁種)に特定の核酸の遺伝
子または配列があれば、ゲノムはそれらの生物(または
種等々)に「跡(フィンガープリント)」を供給する。
本発明が適用されるウイルスの例はHIV,HPV,E
BV,HSV,B型肝炎ウイルスおよびC型肝炎ウイル
スおよびCMVを含む。本発明が適用される微生物の例
はバクテリアを含み、より特定すればヘモフィルスイン
フルエンザ、マイコプラズマ、レジュネラ、ミコバクテ
リア、クラミジア、カンジダ、淋菌、赤痢菌およびサル
モネラを含む。
定の配列を同定することにより、その配列が存在すれば
試料から核酸を単離し、そして配列を決定できる。多く
の方法がこの目的のために開発されて来た。
の配列が同定されることが重要なことであっても、本発
明の実施において標的配列が何かということまたはそれ
が如何にして同定されるかということは重要でない。核
酸試料中の標的配列の存在を検出するためのもっとも直
接的な手段は、標的配列に相補的なプローブ配列を合成
することである。(装置としては例えばアプライドバイ
オシステムズ社(Applied Biosystem
s)380Bが、この目的のための比較的短い核酸配列
を合成するために現在使用される。)そして合成された
プローブ配列は核酸配列を含む試料に用いることがで
き、そして標的配列が存在すれば該プローブはそれと反
応して反応産物を生成する。標的配列がなく、そして非
特異的な結合も阻止すれば、反応産物は生成されない。
合成プローブを検出可能な標識物で標識すれば、反応産
物は標識物の存在量を測定することにより検出できる。
サザンブロッティングは、この方法が使用される一つの
例である。
は、試料中に存在する標的配列のコピー数が少ない場合
に(即ち、107未満)容易に応用されないことであ
る。そのような場合、シグナルとノイズを区別すること
(即ち、プローブと標的配列間の真の結合と、プローブ
と非標的配列間の非特異的な結合を区別すること)が困
難である。この問題を解決するための一つの方法はシグ
ナルを増やすことである。したがって、試料中に存在す
る標的配列を増幅するために、多くの方法が述べられて
きた。
ラーゼチェインリアクション法(PCRと呼ばれる)が
あるが、それは米国特許第4,683,195号、第
4,683,202号および第4,800,159号に
詳細に記述されている。PCRにおいては、簡単に言え
ば標的配列の反対の相補鎖の領域に相補的な2つのプラ
イマーを調製することである。過剰量のデオキシヌクレ
オシド3リン酸をDNAポリメラーゼ(例えば、Taq
ポリメラーゼ)と共に反応混合物に加える。標的配列が
試料中に存在すれば、プライマーは標的配列に結合し、
そしてポリメラーゼは該プライマーから標的配列に沿っ
てヌクレオチドを付加することにより伸長合成反応を行
う。反応混合物の温度を上昇および低下させることによ
り、伸長合成されたプライマーは標的配列から解離する
ことにより反応産物を生成し、そして過剰量のプライマ
ーが標的配列および反応産物に結合することにより、反
応が繰り返される。
された欧州特許出願第320,308号に記述されてお
り、その内容はリガーゼチェインリアクション法(LC
Rと呼ばれる)である。LCRにおいて、二本の相補鎖
プローブの対が調製され、そして標的配列の存在下にお
いて、その対が、標的配列の反対の相補鎖と結合してと
なりあう。リガーゼの存在下において、2つのプローブ
の対が結合することにより、単一のユニットを生成す
る。PCRのように温度を上下させることにより、結合
していた連結ユニットは標的配列から解離し、そして過
剰量のプローブ対の連結のための標的配列として使用さ
れる。米国特許第4,883,750号は、LCRに類
似した、プローブ対を標的配列に結合させるための方法
を記述しているが、増幅工程は記述していない。
2日に公開されたPCT出願PCT/US87/008
80に記述されており、その方法はQベータレプリカー
ゼ法と呼ばれる。この方法によれば、標的配列に相補的
な領域を有するRNAの複製型配列をRNAポリメラー
ゼ存在下において試料に添加する。ポリメラーゼは複製
型配列をコピーし、これを次に検出できる。
日に公開された英国特許出願第2202 328号、お
よび1989年10月5日に公開されたPCT出願PC
T/US89/01025において記述されている。前
者の出願は、修飾されたプライマーを用いる、PCRに
類似の、温度および酵素依存性合成である。プライマー
は、捕捉モイエティ(Moiety)(例えばビオチ
ン)および/または探知器モイエティ(例えば酵素)を
用いて標識することにより修飾される。後者の出願にお
いては、過剰量の標識プローブを試料に添加する。標的
配列の存在下において、プローブが結合し、そして酵素
により分解される。分解後、標的配列は過剰量のプロー
ブにより結合していたときのままで解離する。標識プロ
ーブの分解は、標的配列の存在を示す。そして最後に、
1991年1月31日出願の米国特許第07/648,
257号が開示し、そして請求の範囲に記載しているこ
とは、制限酵素を使用した増幅の前に標的物を生成する
ことからなる、核酸の増幅法(鎖置換型増幅法と呼ばれ
る)である。
法それぞれは、増幅すべき所望の形で核酸配列が入手で
きるかどうかにより制約を受けうる。さらに、規定され
た5’末端および3’末端を有する(即ち、特定のヌク
レオチドの位置で終わってる)増幅可能な標的断片を生
成する要求は絶えず求められている到達点である。
マーを核酸配列にハイブリダイズさせ、(b)(a)の
上記プライマーの5’に位置する(a)の上記核酸配列
にプライマーをハイブリダイズさせ、そして(c)両方
のプライマーから合成することにより(a)の上記プラ
イマーを上記核酸から置換する工程からなる、核酸生成
法に関する。
行うために5’末端および3’末端が規定された標的核
酸配列を生成する方法に関する。
工程を実施することができ、何度も繰り返される。
法はさらに核酸断片を変成することにより一度だけ一本
鎖の標的配列を形成する工程を含む。核酸がRNAの場
合は、逆転写酵素を使用してRNAからDNAに変換す
ることが好ましい。
のは、各起源の標的鎖から多数の修飾されたニッキング
部位が生じるからである。従来報告されていたSDA法
はプライマーの結合前に標的物の制限酵素処理を含み、
そして一方の末端にのみ修飾されたニッキング部位を有
する2つの二本鎖断片のみを生成した。この制限酵素に
よる処理工程は規定された5’末端および3’末端を有
する標的断片を提供するために必要であった。その後
の、これら標的断片の3’末端へのSDAプライマーの
結合、およびその後の、クレノーを欠損したエキソヌク
レアーゼ(exo-クレノー)による伸長合成は、SD
Aが開始するための、ニッキング酵素の認識部位を提供
した。これに対して、本発明の標的物生成法は合計6つ
の修飾されたニッキング部位を有する4つの二本鎖断片
を生じる(図1を参照せよ)。さらに、標的配列は今
や、便利な周辺の制限部位を考慮せずに選択できる。最
後に付け加えれば、SDAは今や、二本鎖または一本鎖
のいずれの標的DNA標的試料にも適用できる。以前
は、標的物は制限酵素による分割のために二本鎖でなけ
ればならなかった。本明細書において使用されている、
ニッキングという言葉は二本鎖の認識部位内に存在する
2つの鎖のうちの一方だけを選択的に切断することを意
味する。
反応産物の分離法および/または検出法に関する。この
分離法は、磁気的な分離、膜による捕捉および固形支持
体上での捕捉を含む。各方法において、捕捉モイエティ
は磁気ビーズ、膜または固形支持体に結合される。そし
てビーズ、膜または固形支持体について、反応産物の存
在または不在をアッセイできる。捕捉モイエティの例
は、生成された反応産物に相補的な核酸配列およびプラ
イマーまたは反応産物に取り込まれるリセプターに対す
る抗体を含む。分離系は検出系と連動していてもしてい
なくてもよい。
ブまた鋳型として機能できる増幅産物を生成する方法に
関する。このフォーマットにおいて、上述の方法および
段階を使用することにより、増幅産物を生成する。そし
て、増幅産物を処理することにより、例えば制限酵素を
使用して増幅産物からニッキング酵素認識配列を除去で
きる。このようにして、認識配列は除去され、そして残
った増幅産物は他の系において使用できるプローブから
なる。
含むと予測されているどのような材料からも試料が単離
される。動物、好ましくは哺乳動物、より好ましくはヒ
トにおけるそのような材料源は、血液、骨髄、リンパ
球、硬組織(例えば、肝臓、脾臓、腎臓、肺、卵巣、等
々)、唾液、便および尿からなる。他の材料源は、生物
学的有機体を含むと予測されている、植物、土壌および
他の材料に由来する。
任意の方法により行うことができる。そのような方法
は、洗浄剤による溶解物、音波処理、ガラスビーズを用
いた振盪撹拌およびフレンチプレスの使用を含む。幾つ
かの例において、単離された核酸を精製することが有利
である(例えば、内在性ヌクレアーゼが存在すると
き)。これらの例において、核酸の精製はフェノール抽
出、クロマトグラフィー、イオン交換、ゲル電気泳動ま
たは密度に依存した遠心分離により実施される。
ゲノミックな核酸はDNAであり、二本鎖であると想定
する。
物生成法を始めるために、過剰量の4つのプライマーの
存在下で増幅すべき核酸(例えば標的物)を熱変成する
(図1)。2つのプライマー(S1およびS2)は典型的
なSDAプライマーであり、それらの3’末端に標的物
結合領域、および標的物の相補配列の5’に位置するニ
ッキング酵素認識配列を有する。2つのSDAプライマ
ー(S1およびS2)は指数的増幅に必要であり、SDA
プライマー(S1またはS2)のいずれか一方のみは一次
的増幅に必要である。他の2つのプライマー(B1およ
びB2)は単に標的物への結合領域からなる。(B1また
はB2のいずれか一方のみの上流のプライマーは絶対に
必要である。)S1およびS2は増幅される配列の周辺の
位置において標的物の二本の鎖の別々の鎖に結合する。
B1およびB2はそれぞれS1およびS2の上流に結合す
る。exo-クレノーは3つのデオキシヌクレオシド3
リン酸および1つの標識デオキシヌクレオシド3リン酸
を使用して、4つ全部のプライマーから同時に伸長合成
する。S1およびS2からの伸長合成により2つの産物、
S1−extおよびS2−extが形成される。B1およ
びB2の伸長合成により標的鋳型からS1−extおよび
S2−extが置換される。置換された一本鎖のS1−e
xtはS2およびB2の標的となる。同様に、置換された
S2−extはS1およびB1の標的となる。4つすべて
のプライマーは鋳型S1−extおよびS2−extの上
で伸長合成される。伸長合成と置換の工程を一緒に行う
ことにより、修飾されたニッキング酵素の認識部位を各
末端に有する2つの二本鎖断片と、修飾されたニッキン
グ酵素の認識部位を一方の末端のみに有する、より長い
2つの二本鎖断片とが生じる。工程を追ってこの方法を
記載してきたが、この方法は実際は同時に起こる。今
や、増幅法は、以下に記載されそして引用により本明細
書の一部をなす米国特許第07/648,257号にも
記載されている鎖置換型増幅法(SDA)により、実施
できる。
用的に行われていた制限酵素による処理工程の必要性を
排除する。即ち、便利な制限部位に囲まれた標的配列を
定める必要性を排除することにより、配列の標的物の選
択を単純化することに加えて、工程数およびコストが減
少する。さらに、本発明は、感度が増加し、増幅のため
の標的核酸配列の選択におけるより一層の自由をさらに
提供し、そして増幅に要する時間を少なくする。
幅法、例えばポリメラーゼチェインリアクション法(P
CR)、PCR Technology,エルリッヒ
(H.A.Erlich)編集、[ストックトン プレ
ス(Stockton Press)、ニューヨーク、
ニューヨーク州、1989]、転写に基づく増幅システ
ム(TAS)、Proc.Natl.Acad.Sc
i.USA 86:1173(1989)、ライゲーシ
ョン増幅反応(LAR)、Genomics 4:56
0(1989)、リガーゼに基づく増幅システム(LA
S)、Gene 89:117(1990)、および
Q.B.レプリカーゼ、ロメル(Lomell)ら、C
lin.Chem.35:1826(1989)、およ
び3SR、グアテリ(J.Guatelli)ら、Pr
oc.Natl.Acad.Sci.USA 87:1
874(1990)を用いて行うことができる。
法と共に用いるならば、いくつかの修飾がなされうる。
引き続く増幅をポリメラーゼチェインリアクション法に
より行うのであれば、プライマーはどのような認識配列
も含む必要はない。同様に、増幅をQベータレプリカー
ゼにより行うのであれば、認識配列は、Qベータレプリ
カーゼにより認識されるRNA配列の転写のためのRN
Aポリメラーゼのプロモーターを含むべきである(クラ
マー(F.R.Kramer)ら、Nature 33
9:401(1989))。3SRを使用してDNAを
増幅するのであれば、プライマーS1および/またはS2
は、RNAポリメラーゼのプロモーター部位を含むはず
である。φ29の複製システム(ジェネンテック社(G
enentech)、国際公開第90/10064号を
参照せよ)を使用して増幅を行うのであれば、S1およ
びS2は複製開始点の配列を含むはずである。
に何度も繰り返すことにより行うことができる。通常二
本鎖断片を変成するために加熱が適用される。このよう
な方法は、ニッキング酵素の必要性を排除し、そして修
飾されたヌクレオシドの必要性を排除する。即ち、この
方法は本質的に増幅法となる。
HincIIを増幅のためのニッキング酵素として使用
するSDAにより、標的核酸配列が増幅できる。図1の
最後の4つの標的断片は自動的に増幅サイクルの「定常
状態」の連続に入るが、その際、HincIIは一方の
鎖がホスホロチオエート化されている(hemipho
sphorothioate)認識部位にニックを入
れ、そしてexo-クレノーは反対側のSDAプライマ
ーの標的となる下流の鎖を置換しながらニックの3’末
端から伸長合成する(図2)。これらの工程は増幅の過
程において連続的に繰り返される。例えば、図2の工程
の約23回の繰り返しまたはサイクルから107倍の増
幅が理論的に得られる(223=107)。図2において
置換された各々の鎖は、5’末端に配列5’GACおよ
び3’末端に相補配列5’GTCを含む。5’GACはニ
ック部位の3’に位置するHincII認識配列の一部
である。
鎖断片を詳細に説明することにより、より明らかになる
であろう。HincIIが、S1プライマー配列を含む
断片の左末端の、一方の鎖がホスホロチオエート化され
ている部位にニックを入れるならば、exo-クレノー
はニック部位から複製を開始し、そして5’末端に5’
GACを有する下流の鎖および3’末端のプライマーS
2の完全な相補配列を置換する。S2はこの置換された鎖
に結合し、そしてexo-クレノーは「dGTP,dC
TP,TTPおよびdATP(αS)を使用した重合」
による標識工程の産物として図2の右側に示される二本
鎖断片を形成するS2を伸長合成する。同様の反応が、
図1の下部に示された完全なセットの断片を用いて起こ
る。
マー(例えば、図1のS1およびS2を参照せよ)は通常
20−100ヌクレオチドを有する。約25−40ヌク
レオチドのプライマーが好ましい。この配列は、ハイス
トリンジェンシー条件においても結合が生じるように、
標的物上の配列に実質的に相同性であるべきである。次
の増幅工程に依存して、次にSDAを行うのであればエ
ンドヌクレアーゼにより認識され、またはポリメラーゼ
(DNAまたはRNA)、Qベータレプリカーゼ、複製
開始点を認識する酵素(例えばφ29)および類似物に
より認識される配列(5’末端に向かって)もプライマ
ーは含んでいなければならない(認識配列と呼ばれ
る)。認識配列は、SDAを使用する場合は通常はパリ
ンドロームでないが、このことは必ずしも必要でない。
2つのプライマーが好ましいが、絶対に必要とされるの
は1つだけであり、望むなら好きなだけのプライマーを
使用することができる(より多くのプライマーを使用す
ればより多くの増幅可能な標的物が生成される)。
よびB2を参照せよ)もすぐ上に記述されるような様式
で設計されるが、しかし第二のプライマーは認識配列を
含んでいてもよいが含む必要はなく、認識配列を含むこ
とが好ましい。好ましくは第二のセットのプライマーは
約8から約100ヌクレオチド塩基の長さ、より好まし
くは認識部位を含めて約25から約40ヌクレオチド塩
基の長さである。プライマーが認識部位を含まないのな
らば、約10から約25ヌクレオチド塩基の長さが好ま
しい。
流(5’)に結合すべきであり、ここで鎖置換活性を有
しかつ5’→3’エキソヌクレアーゼ活性を欠損するD
NAポリメラーゼにより伸長合成される。第二のプライ
マーが伸長合成されるにつれて、第一のプライマーの伸
長合成産物が置換される。外側プライマー(若しくは
「第二の」プライマー)は2つ使用することが好ましい
が、絶対に必要なのは1つだけであり(例えばB1)、
望むならば好きなだけの数を使用できる(標的物の生産
工程(図1)において使用されるプライマーが多けれ
ば、ニックを入れられ得る認識部位を含む増幅可能な標
的断片の数が増える。これはより多くの増幅率をもたら
す。)。
ることにより一本鎖にして、プライマーを標的鎖に結合
させる。反応温度を約95℃に上昇させることは核酸を
変成させるのに好ましい方法である。他の方法はpHを
上昇させることであるが、この方法はプライマーを標的
物に結合させるためにpHを低下させることを必要とす
る。
SDAを用いるのであれば、核酸を変成させる前または
変成させた後に、少なくとも一つが置換された(または
修飾された)過剰量の4つすべてのデオキシヌクレオシ
ド3リン酸、ポリメラーゼ、ニッキング酵素、および少
なくとも第一および第二のプライマーからなる混合物も
添加する。高温で核酸を変成するのであれば、高温耐性
酵素を使用しない限り、変成後に酵素を添加したほうが
よい。置換されたデオキシヌクレオチド3リン酸の修飾
は、置換されたデオキシヌクレオシドを含む鎖中におい
てはニッキング酵素による分割が阻害されるが他方の鎖
の分割は阻害されないような修飾にするべきである。こ
のような修飾されたデオキシヌクレオシド3リン酸の例
は、2’−デオキシアデノシン5’−O−(1−チオ3
リン酸)、5−メチルデオキシシチジン5’−3リン
酸、2’−デオキシウリジン5’−3リン酸および7−
デアザ−2’−デオキシグアノシン5’−3リン酸を含
みうる。
た後に実施してもよいことは認識されるべきである。例
えば、メチラーゼ、例えばM.TaqIを使用すること
により、合成鎖にメチル基を加えることができる。そし
て最後に述べれば、一方の鎖のみにニックを入れるニッ
キング酵素を使用するのであれば、修飾されたデオキシ
ヌクレオチドを使用する必要性は排除される。
分からなる混合物は、必要であればNMP(1−メチル
2ピロリジノン)、グリセロール、ポリ(エチレングリ
コール)、ジメチルスルフォキシドおよび/またはホル
ムアミドを含みうる。そのような有機溶剤を含むことは
バックグラウンドのハイブリダイゼーション反応を緩和
する助けとなると信じられる。
ているならば、ポリメラーゼは5’→3’エキソヌクレ
アーゼ活性を欠く必要がないことは認識されるべきであ
る。合成鎖全体の置換体の存在は、システムを不活性化
することなしにそのような活性を阻害するために機能す
る。
そして例えばPCR法を使用するのであれば、修飾され
たヌクレオチドを使用する必要はなく、またニッキング
酵素は必要ない。
おいて記述されたように、この方法において使用される
エンドヌクレアーゼは、認識配列の3’(または5’)
において鎖を切断するように選択するべきである。さら
にエンドヌクレアーゼは、ポリメラーゼの存在により標
的鎖内に生成する相補的な認識配列を切断しないように
選択され、さらに合理的な速度でニックの入った認識配
列を解離させるように選択されるべきである。高温耐性
である必要はない。エンドヌクレアーゼはHincI
I,HindII,AvaI,Fnu4HI,Tthl
llI,およびNciIが好ましい。
加えて、幾つかの代わりのニッキング酵素系を想定する
ことができる。例えば、クラスIISの制限酵素(例え
ば、FokI)は一本のポリペプチドユニット内に2つ
のDNA切断中心を含む。例えば部位特異的変異導入法
により、切断中心の一つが不活性化されていれば、その
結果生成されるニッキング酵素は、修飾されたデオキシ
ヌクレオシド3リン酸を必要とせずに増幅系において使
用できるであろう。もう一つの例として、制限酵素Ec
oRIは、正規でない認識部位において、または正規の
認識部位がオリゴプリン領域によりはさまれている場合
に、一方の鎖を選択的に切断することが示された(チェ
ルキング(Thielking)ら、(1990)Bi
ochemistry 29,4682;レザー(Le
sser)ら、(1990)Science 250,
776;ベンディッティとウエルズ(Venditti
&Wells)(1990)J.Biol.Chem.
266,16786)。他の例として、制限酵素Dpn
I(ニューイングランドバイオラブズ社、ベバリ、MA
から市販されている)は両鎖にme6dAを含む認識部
位を切断する。DpnIまたは類似の制限酵素は一方の
鎖がメチル化された認識部位のメチル含有鎖にニックを
入れることができる。このような系は、未修飾のデオキ
シヌクレオシド3リン酸と共にメチル化された認識部位
を含むSDAプライマー(S1およびS2)を用いるはず
である。別法として、特定の制限酵素は、一方の鎖がメ
チル化された認識部位のメチル化されていない鎖を切断
することが知られている(例えば、MspIとme5d
C)。このような系は、メチル化されたデオキシヌクレ
オシド3リン酸を使用するであろう。最終的には、複製
蛋白質の認識する複製開始点を使用して認識部位の一方
の鎖にニックを入れてもよい。
この方法に使用するための修飾されたdNTPを列挙し
たものである: 酵素 認識部位(5’−3’) 修飾されたdNTP HincII GTTGAC dATP(αS) HincII GTCAAC dGTP(αS) AvaI CCCGAG TTP(αS) AvaI CTCGGG dCTP(αS) NciI CCGGG dCTP(αS) HindII GTTGAC dATP(αS) HindII GTCAAC dGTP(αS) Fnu4HI GCGGC dCTP(αS) BstXI CCAAAACCCTGG TTP(αS) 配列番号:15 BstXI CCAGGTTTTGG dCTP(αS) 配列番号:16 BsmI AAAGCATTC TTP(αS) BsrI AACCAGT TTP(αS) BsaI GGTCTCTTTTTT dATP(αS) 配列番号:17 NlaIV GGAACC TTP(αS) NspI GCATGT dCTP(αS) NspI GCATGT dCTP(αS)および dGTP(αS) PflMI CCAGGTTTTGG dCTP(αS) 配列番号:18 HphI GGTGAGGATCGTTT dATP(αS) 配列番号:19 AlwI GGATCGTTTTT dATP(αS) 配列番号:20 FokI GGATGGCAT GTCTTTTGGG dCTP(αS) 配列番号:21 AccI GTAGAC dCTP(αS) AccI GTAGAC TTP(αS) AccI GTAGAC TTP(αS)および dCTP(αS) AccI GTCTAC dATP(αS) AccI GTCTAC dGTP(αS) AccI GTCTAC dATP(αS)および dGTP(αS) TthlllI GACCACGTC TTP(αS) TthlllI GACCACGTC TTP(αS)および dGTP(αS) TthlllI GACGTGGTC dCTP(αS) TthlllI GACGTGGTC dCTP(αS)および dATP(αS) SDAおよび標的物生成法のための、この方法に有用な
ポリメラーゼは、ニックから5’−3’方向に重合を開
始するものを含む。ポリメラーゼはニック下流の重合鎖
の置換もすべきであり、そして重要なことはあらゆる
5’→3’エキソヌクレアーゼ活性を欠いているべきで
ある。ポリメラーゼ、例えばDNAポリメラーゼIのク
レノー断片およびDNAポリメラーゼIのエキソヌクレ
アーゼ欠損クレノー断片およびBstポリメラーゼ由来
の同様の断片(バイオラッド社、リッチモンド、CA)
が有用である。シークエネース1.0およびシークエネ
ース2.0(米国バイオケミカル社)、T5DNAポリ
メラーゼおよびφ29DNAポリメラーゼも使用され
る。通常エキソヌクレアーゼ活性を有するポリメラーゼ
は、その活性がブロッキング剤の添加によりブロックさ
れるとそのような活性を「失った」と見なされうること
は認識すべきである。
温度を上下する必要がないことである。多くの増幅法
は、温度を上下することにより合成鎖から標的物を解離
する必要がある。この方法においては、変成後に単一の
温度を使用することができる。非特異的な結合を最少に
するために反応温度を十分に高く、しかし標的鎖にプロ
ーブが結合する時間を最少にするように反応温度を十分
に低く、ストリンジェンシーのレベルを設定すべきであ
る。さらに、適当な温度により酵素活性を十分に保護す
べきである。約37℃から約42℃が好ましい温度であ
ることが分かった。酵素および核酸の変成が避けられ
る。
る増幅までの、本発明の工程の簡単な概要は、過剰量の
4プライマーの存在下において熱変成された標的DNA
試料である(図1を参照せよ)。2つのプライマー(S
1およびS2)は典型的なSDAプライマーであり、それ
らの3’末端に標的結合領域、およびそれらの5’末端
にHincII認識配列(5’GTTGAC)を有す
る。他の2つのプライマー(B1およびB2)は単に標的
結合領域からなる(制限部位認識配列を含みうるが、そ
の必要はない)。S1およびS2は増幅される配列をはさ
んで標的と反対の鎖に結合する。B1およびB2はそれぞ
れS1およびS2の上流に結合する。exo-クレノーは
dGTP,dCTP,TTPおよびdATP(αS)を
使用して4つのプライマーから同時に伸長合成する。S
1およびS2からの伸長合成は2つの産物、S1−ext
およびS2−extを形成する。B1およびB2からの伸
長合成は起源の標的鋳型からのS1−extおよびS2−
extの置換をもたらす。置換された一本鎖S1−ex
tはS2およびB2の標的となる。同様に、置換されたS
2−extはS1およびB1の標的となる。S1−extお
よびS2−extの上ではすべての4つのプライマーが
伸長合成される。伸長合成と置換の工程を組み合わせる
ことにより、一方の鎖がホスホロチオエート化されてい
るHincII認識部位を各末端に有する2つの二本鎖
断片、および一方の末端のみがホスホロチオエート化さ
れているHincII部位を有する2つのより長い二本
鎖断片を生じる。これら4つの標的断片は直ちに増幅サ
イクルの「定常状態」の連続に入るが、その際、制限酵
素HincIIは一方の鎖がホスホロチオエート化され
ている認識部位にニックを入れ、そしてポリメラーゼe
xo-クレノーは反対のSDAプライマーのための標的
となる下流の鎖を置換しながらニックから複製を開始す
る(図2を参照せよ)。この増幅サイクルを連続的に繰
り返すことにより、過剰コピー数の標的物が生成される
(前述のとおり、SDAは使用できる多くの増幅法のう
ちの単なるひとつである)。
のための合成プローブまたは鋳型の一例が示されてい
る。この実施例において、鎖Pはプライマーを表し、エ
ンドヌクレアーゼHincIIにより認識される配列G
TTGACを5’末端に含む。標的物はすでに断片化さ
れ、一本鎖にされている。この方法において、プライマ
ーは標的物に結合し、そしてポリメラーゼ、デオキシヌ
クレオシド3リン酸およびαチオ置換デオキシアデノシ
ン3リン酸の存在下においてプライマーから標的物の長
さの分伸長合成されるが、標的物は認識配列を通って伸
長合成される。エンドヌクレアーゼHincIIの存在
下において、プライマー鎖はT−G残基間でニックを入
れられる。5’→3’エキソヌクレアーゼ活性を欠くポ
リメラーゼの存在下において、3’末端のニックから伸
長合成され、プライマー鎖の下流は、ニックから始まる
標的鎖から解離することにより、反応産物が生成され、
そして新しい鎖が合成される。要約すれば、新たに合成
された鎖もエンドヌクレアーゼによりニックが入り、そ
してポリメラーゼがこの鎖を置換してもう一つの鎖を生
成し、このようにして反応を故意に停止させるかまたは
試薬のうちの一つが使い尽くされるかのいずれかまで反
応が繰り返される。
特定の配列を認識してニックを入れる制限酵素を使用し
てもよいことは認識されるはずである。例えば、制限酵
素NciIを使用するのであれば、プライマーはNci
Iにより認識されるCCGGG配列を5’末端に含む。
制限酵素NciIの存在下においてプライマー鎖はC−
G残基間でニックを入れられる。
プローブまたは鋳型を生成する別法とは、2つのプライ
マー(S1およびS2)を使用する指数的SDAである
が、その際一方のプライマーは他方のプライマーと比較
して大過剰量である。その結果、他方の鎖に比較して一
方の一本鎖が過剰に生成される。
二本鎖標的断片のためのSDAの一例が示されている
(本発明の標的物の生成法に対比して)。2つのプライ
マー(P1およびP2)があり、それぞれは2つの標的配
列(T1およびT2)に相補的である。そして反応は図1
のように進行する。しかしながら、P1はT2により生成
された反応産物に結合し、P2はT1により生成された反
応産物に結合することは注意を要する。この様式におい
て、増幅は対数的に進行する。
る方法により検出できる。一つの方法は、ゲル電気泳動
による特定のサイズの反応産物の検出である。この方法
は使用したヌクレオチドが32Pのような放射性標識のと
きに特に有用である。他の方法はビオチンのような物理
的な標識を用いた標識ヌクレオチドの使用を含む。そし
て反応産物を含むビオチンはペルオキシダーゼのような
シグナルを発する酵素に結合したアビジンにより同定さ
れうる。
は、分離を要しない均一な系(ホモジニアスシステム)
および不均一な系(ヘテロジニアスシステム)を含む。
各系において、ひとつまたは複数の検出可能なマーカー
が使用され、好ましくは自動化された方法により、検出
系からの反応または放射が監視される。均一な系の例
は、蛍光偏光、酵素を介するイムノアッセイ、蛍光エネ
ルギー転移、ハイブリダイゼーション保護(例えばアク
リジニウムルミネッセンス)およびクローン化された酵
素のドナーイムノアッセイを含む。不均一な系の例は、
酵素標識(例えばペルオキシダーゼ、アルカリホスファ
ターゼおよびベータ−ガラクトシダーゼ)、蛍光標識
(例えば酵素標識および直接の蛍光標識[例えばフルオ
レセインおよびローダミン])、ケミルミネッセンスお
よびバイオルミネッセンスを含む。リポソームまたは他
の袋状粒子も染色剤または他の検出可能なマーカーによ
り満たされて、そのような検出系において使用されう
る。これらの系において、検出可能なマーカーは直接ま
たは間接に捕捉モイエティに結合でき、また反応産物は
リガンドにより認識されうるリセプターの存在下におい
て生成しうる。
を有する検出反応産物である。他の方法は、32Pでプロ
ーブ配列を放射標識し、そして例えば反応産物により発
せられる放射活性をそのままあるいは電気泳動により検
出する。さらなる方法は、プライマーに結合分子(例え
ばビオチン−アビジン)、および酵素(例えばアルカリ
ホスファターゼ)、蛍光染色剤(例えばフィコビリ蛋白
質)またはそれらの組み合わせを添加することにより化
学的に修飾する。他の方法は、反応産物に結合し、そし
てポリメラーゼ存在下において伸長合成反応される検出
プライマーの開発である。この検出プライマーは上述の
ように放射標識により、または化学的に修飾できる。こ
れらの方法の多くは、固相法並びに液相系に使用され
る。これらの方法並びに他の方法の多くは、米国特許第
4,358,535号、第4,705,886号、第
4,743,535号、第4,777,129号、第
4,767,699号、および第4,767,700号
に記述されている。
リアクションサイクルとして記述されうるが、その際、
間に入る熱変成工程は上流のプライマー(B1および
B2)の第二の組、および鎖置換活性を有しかつ5’→
3’エキソヌクレアーゼ活性を欠くDNAポリメラーゼ
の使用により置き換えられた。結果的にこの略図は、多
くの応用における使用のための、規定された5’末端お
よび3’末端を有する二本鎖断片を生成するための一般
的で便利な方法を示す。応用とは、S1およびS2中のニ
ッキング酵素認識配列を任意の適当な制限部位で置換す
ることにより図1の最後の生成断片をクローニングベク
ターに連結できるようにすること、(図1の略図は修飾
されたデオキシヌクレオシド3リン酸の使用を必要とし
ない)、SDAプライマー中のニッキング酵素認識配列
の一方または両方を転写の鋳型の生成のためにRNAポ
リメラーゼのプロモーター(例えばバクテリオファー
ジ)により置換すること、および鎖置換活性を有し、か
つ5’→3’エキソヌクレアーゼを欠損している逆転写
酵素を使用して、この技術を二本鎖cDNAの合成に適
用しうること(RNaseH活性を有する逆転写酵素は
必要ない)を含む。逆転写酵素の例はクレノーである
(マイヤー(T.W.Myers)ら、Biochem
istry 30:7661(1991))。
程と共に標的物を調製する使用法は、いかなる特定の応
用にも限定されない。本発明の標的物調製法および増幅
法が使用できる応用分野は、診断、RNAの増幅、(例
えば、遺伝子発現の監視)、珍しい機能的核酸分子のイ
ンビトロ選択および増幅において、(グリーン(Gre
en)ら、METHODS:A Companion
to Methodsin Enzymology
2:75−86(1991)を参照せよ)、長い配列の
増幅に続く内部配列の増幅(「入れ子式(neste
d)」増幅とも呼ばれる)、部位特異的変異導入、クロ
ーニング、配列決定、遺伝子診断、オンコジーンの診
断、未知の配列領域の増幅、およびオイルの流出の追跡
および安全性の証明のような非生物学的応用を含むがこ
れらに限定されない(エルリッヒ(Erlich)ら、
Science252:1643(1991)を参照せ
よ)。
の特定の態様を例示する。当業者には明らかなとおり、
さまざまな変化および修飾は、記述された本発明の目的
の範囲内で可能であり、そして予想される。
rculosis)の標的ゲノミックDNA量を変えた
100μlの反応物を調製した。標的配列はヒト型結核
菌のIS6110インサーションエレメント(inse
rtion element)のヌクレオチド977−
1023である(Nucleic Acids Res
earch 18,188(1990))。
S) 100μg/ml BSA 1mM DTT 1または10μg ヒト胎盤DNA 3%(v/v) 1−メチル2−ピロリジノン 1μM プライマー(配列番号10) 1μM プライマー(配列番号11) 1μM プライマー(配列番号12) 1μM プライマー(配列番号13) ヒト型結核菌のゲノミックDNA量を変える 各試料を98℃において3分間加熱した後37℃におい
て2分間置いた。次に、10ユニットのexo-クレノ
ー(ユナイテッドステイツバイオケミカル社(Unit
ed States Biochemical))およ
び300ユニットのHincII(ニューイングランド
バイオラブズ社(New England Biola
bs))を各試料に添加し、37℃においてインキュベ
ートした。試料アリコート(10μl)を2時間後に取
り以下の分析を行った。
番号14)を各10μlの試料アリコートに添加して9
5℃において2分間加熱後、37℃において2分間置い
た。2μlの1ユニット/μlクレノー(ベーリンガー
−マンハイム社(Boehringer−mannhe
im)、インディアナポリス、IN)を、次に変成ゲル
電気泳動により分析される試料に添加した。鎖置換増幅
法による生成物は32P−プライマー(配列番号14)か
ら35ないし56ヌクレオチドに伸長合成される。該当
するバンドを切り出し、そして液体シンチレーションカ
ウントを行った。その結果を要約する。
在した分子数 +完全な100μlのSDA反応におけるヒト胎盤DN
Aの量 #バックグラウンドを修正した @追跡量の標的物と不注意による汚染によるシグナル 増幅工程は5ゲノムコピーと0ゲノムコピーの標的ヒト
型結核菌配列の間で明らかに区別される。さらに、増幅
シグナルは最初の標的物の量に依存し、これによって定
量的増幅法および検出法のための手段が提供される。
okI制限段階を使用したSDAを例示する。アプライ
ドバイオシステムズ社380B装置および一次アミンを
3’末端に取り込む3’−アミン−ON CPGカラム
(クロンテックラボラトリーズ社(Clontech
Laboratories)、パロアルト、CA)を使
用して、2つのプライマーを合成した。ヌクレオチドを
アンモニウム塩により脱保護し、そして変成ゲル電気泳
動により精製した。プライマー配列は、配列番号1およ
び配列番号2であった。
M酢酸カリウム、10mM酢酸マグネシウム、1mM
DTT、12.5mM TRIS(pH7.9)によ
り、25℃において、プラスミドpBR322(ベーリ
ンガーマンハイム社、インディアナポリス、IN)を連
続希釈した。1μgの大腸菌DNAとさまざまな量のp
BR322を含む20μlの試料を、10ユニットのF
okI(ニューイングランドバイオラブス社、ビバリー
(Beverly)、MA)を用いて37℃において3
時間消化した。pBR322/大腸菌DNAのFokI
消化物を12.5mM酢酸カリウム、10mM酢酸マグ
ネシウム、1mM DTT、25℃の12.5mM T
RIS(pH7.9)、100μg/ml BSA、そ
れぞれ0.3mMのdATP、dGTP、TTP、dC
TP(αS)(ファルマシア社、ピスカタウエイ、N
J)および0.1μMのそれぞれのプライマーにより1
00μlに希釈した。4ユニットのDNAポリメラーゼ
Iの5’→3’エキソヌクレアーゼ欠損クレノー断片
(米国バイオケミカル社、クリーブランド、OH)およ
び48ユニットのNciI(ニューイングランドバイオ
ラブズ社)を添加して、1セットの試料を45℃におい
て4時間、鎖置換型増幅させた。第二のセットの試料
は、未増幅の標準として、ポリメラーゼおよびNciI
を添加せずに反応させた。
に特異的な検出プローブ、配列番号3を調製し、ポリヌ
クレオチドキナーゼを用いて32Pで標識した。増幅およ
び未増幅のFokI/pBR322/大腸菌DNA試料
の10μlアリコートを、2μlの1.8μM 32P標
識プローブ、0.5ユニット/μlのTaq DNAポ
リメラーゼ(ユナイテッドステイツバイオケミカル社)
と混合した。試料を95℃において2分間、50℃にお
いて5分間加熱し、50%尿素で急冷し、そして一部を
変成10%ポリアクリルアミドゲル電気泳動にて泳動し
た。増幅反応産物の存在は、43または60ヌクレオチ
ドの長さへの、32P標識検出プローブの伸長合成により
検出された。未増幅のFokI/pBR322は40ヌ
クレオチドへの伸長合成により示された。電気泳動の32
P標識バンドは、適当なバックグラウンドバンドを差し
引いて、液体シンチレーションカウンティングにより定
量された。結果を表1に示す。
のDNAの量が減少すると共に、1分あたりのカウント
数(CPM)も減少する。
DAを例示する。合成核酸標的物は、配列番号4を含ん
で構築された。制限酵素HincII(ニューイングラ
ンドバイオラブズ社)を使用した鎖置換型増幅のための
プライマーは、3’−アミン−オンCPGカラムを使用
して、3’−NH2キャップを供給するようにして合成
された。使用されたプライマーの配列は、配列番号5お
よび配列番号6であった。
番号7であった。すべての合成配列は、上記のアプライ
ドバイオシステムズ社380B装置により合成され、そ
して50%尿素を含む10%または15%ポリアクリル
アミドゲルにより精製された。切り出されたバンドは1
/2×TBE緩衝液中で電気的に溶出された。
ち、配列番号5および配列番号6)中に希釈することに
より、標的物/μlで600,000分子の最終保存濃
縮物が供給された。この混合物を3分間沸騰させ、37
℃において静置した。そして、プライマーの存在下にお
いてこの保存溶液の連続4倍の希釈液を調製した。(対
照には、増幅プライマーのみが存在する。)20μlの
希釈された保存溶液を混合物に添加することにより、最
終体積を60μlにした。成分の最終濃度は以下のとお
りである:20mM TRIS(pH7.2)(25
℃)、0.1μMのプライマー配列、20mM硫酸アン
モニウム、50mM塩化カリウム、50ユニットのHi
ncII、5ユニットのエキソヌクレアーゼ欠損クレノ
ーポリメラーゼ(米国バイオケミカル社)、1mM D
TT、5mM塩化マグネシウム、およびそれぞれ300
μMの5’dCTP,5’dGTP,5’dTTPおよ
び5’dATP(αS)。増幅反応は、37℃において
1時間または2時間行った。一つの反応セットには、1
時間後さらに50ユニットのHincIIを添加し、さ
らに1時間反応させた。
リコートを氷上に静置した。この10μlに、32Pで標
識されたばかりの捕捉プローブの1μM保存溶液を添加
した。この混合物を3分間沸騰し、37℃に冷やし、同
時に1μlの1ユニットのシークエネース2.0(米国
バイオケミカル社)を添加した。(この酵素は、捕捉プ
ローブが反応産物に結合している場合、あらゆる反応産
物の完全長に沿って捕捉プローブを重合する。)この伸
長合成反応は37℃において15分間行った。この混合
物に、50%尿素中の泳動染色液を等量添加した。50
%尿素を含む10%ポリアクリルアミドゲルにより泳動
する前に、試料を再び3分間沸騰させた。最初の60μ
lの反応混合物のうちの2.5μlに相当する量の試料
を泳動した。ゲルを除去した後、59Wにおいて1時間
から1.5時間電気泳動を行い、そして−70℃におい
て一晩フィルム上に置いた。露出後バンドを可視化し、
バンドを切り出し、そして液体シンチレーションにより
定量した。
間でSDAがはっきりと区別されることが理解できる。
ている。以下のプライマー配列が使用された:配列番号
8および配列番号9。
され、プラスミドpBR322内の標的配列を検出する
ために使用された。
okIにより、37℃において2時間消化し、そして
0.05mg/mlのヒト胎盤DNAのHphI消化
物、50mM塩化カリウム、20mM硫酸アンモニウ
ム、1mM DTTおよび20mMTRIS(25℃に
おいてpH7.2)により連続的に希釈した。0.5μ
gのヒト胎盤DNAおよびさまざまな量のpBR322
を含む10μlの試料を、50mM塩化カリウム、5m
M塩化マグネシウム、20mM硫酸アンモニウム、1m
M DTTおよび20mM TRIS(25℃において
pH7.2)、100μg/ml BSA、それぞれ
0.1mMのdGTP、TTP、dCTP(ファルマシ
ア社)、0.5mMのdATP(αS)(ファルマシア
社)および0.1μMの各プローブにより100μlに
希釈した。5ユニットのDNAポリメラーゼIの5’→
3’エキソヌクレアーゼ欠損クレノー断片および50ユ
ニットのHincIIを添加して、1セットの試料を3
9℃において3.5時間、鎖置換型増幅させた。第二の
セットの試料は、未増幅の標準として、ポリメラーゼお
よびHincIIを添加せずに反応させた。
含むpBR322検出プライマーを32Pで標識して使用
した。増幅および未増幅のFokI/pBR322/ヒ
ト胎盤DNA試料の10μlアリコートを、2μlの1
μM 32P標識検出プライマーと混合し、そして95℃
において2分間加熱した。次に、2ユニットのシークエ
ネース2.0を添加し、試料を37℃において5分間イ
ンキュベートした。試料を50%尿素により急冷し、そ
して変成10%ポリアクリルアミドゲル電気泳動にて泳
動した。増幅反応産物の存在は、54または75ヌクレ
オチドの長さへの、32P標識検出プライマーの伸長合成
により検出された。未増幅のFokI/pBR322は
50ヌクレオチドへの伸長合成により示された。32P標
識バンドの電気泳動は、適当なバックグラウンドバンド
を差し引いて、液体シンチレーションカウンティングに
より定量された。結果を表3に示す。
意によるpBR322の混入により、標的物に特異的な
バンド(54merおよび75mer)を僅かに生じ
た。
いて増幅されなかった試料と、104および103のpB
R322分子を含むそれぞれの試料との比較から、10
5倍以上の増幅率が示唆される。さらに、緩衝液の組成
とデオキシヌクレオシド3リン酸の濃度を調整すること
により、増幅効果が改良されることがわかった。硫酸ア
ンモニウムを含有し、相対的に低いpHおよびdATP
(αS):dGTPの率が5:1のときに、増幅効率を
高めることがわかった。
が、それらの詳細は限定されるものではなく、本発明の
趣旨および目的の範囲内でさまざまな均等物、変化およ
び修飾を用いてよいことは明らかであり、そのような均
等な態様はここに含まれるべきことが理解される。
の略図である。この図は、起源の標的配列を、図2に表
されている「定常状態」増幅法に移行させる最初の工程
を表す。標的DNA試料を熱変成させる。過剰に存在す
る4つのプライマー(B1,B2,S1およびS2)は、増
幅される配列の外側の位置で標的鎖に結合する。プライ
マーS1およびS2はそれらの5’末端にHincII認
識配列を有する。dGTP,dCTP,TTPおよびd
ATP(αS)を使用して、exo-クレノーにより4
つのプライマーから同時に伸長合成する。B1からの伸
長合成によりプライマーS1からの伸長合成産物(S1−
ext)が置換される。同様に、B2からの伸長合成に
よりS2伸長合成産物S2−extが置換される。B2お
よびS2は置換されたS1−extに結合する。B1およ
びS2は置換されたS2−extに結合する。鋳型S1−
extおよびS2−ext上の伸長合成および増幅によ
り、各末端の一方の鎖がホスホロチオエート化されてい
るHincII部位を有する2つの断片、および一方の
末端のみで一方の鎖がホスホロチオエート化されている
HincII部位を有する2つのより長い断片が生成さ
れる。HincIIのニッキングおよびexo-クレノ
ーによる伸長合成/増幅反応は、これら4つの断片から
開始し、図2に表されている「定常状態」の連続反応に
すぐにたどり着く。センスDNAおよびアンチセンスD
NAは細線と太線により区別される。HincII認識
配列は線上の伸び上がった部分により表される。
状態」の連続である。以下の反応工程は増幅の間連続的
に繰り返される。過剰に存在するのは2つのSDAプラ
イマー(S1およびS2)である。S1の3’末端が標的
(T1)となる置換鎖の3’末端に結合して5’が飛び
出た二本鎖を形成する。同様に、S2は置換鎖T2に結合
する。S1およびS2の5’の飛び出しは制限酵素Hin
cIIの認識配列(5’GTTGAC3’)を含む。e
xo-クレノーはdGTP,dCTP,TTPおよびd
ATP(αS)を使用して該二本鎖の3’末端から伸長
合成し、S1T1およびS2T2上に一方の鎖がホスホロチ
オエート化された認識部位を生成する。HincIIは
一方の鎖がホスホロチオエート化された認識部位の保護
されていないプライマー鎖にニックを入れ、修飾されて
いる相補鎖を完全なまま残す。exo-クレノーはS1T
1上のニックにおいて3’末端から伸長合成し、T2と機
能的に均等な下流の鎖を置換する。同様に、S2T2上の
ニックにおける伸長合成により、T1と機能的に均等な
下流の鎖が置換される。ニッキングおよび重合/置換工
程はS1T1およびS2T2上で連続的に繰り返されるが、
それはニックにおける伸長合成により、ニックを入れる
ことが可能なHincII認識部位を生じるからであ
る。標的の増幅は指数的であるが、それは標的S1とな
るS2T2から鎖が置換されると同時に標的S2となるS1
T1から鎖が置換されるからである。センスDNAおよ
びアンチセンスDNAは細線と太線により区別される。
HincII認識配列の一部5’GACおよびその相補
配列5’GTCは、それぞれ置換鎖の5’末端および
3’末端に存在し、小さな箱型で表される。
DAプライマーのみを使用する鎖置換型増幅法(SD
A)の工程を示す。
発明の標的物生成法との比較)、2つのSDAプライマ
ーを使用した鎖置換型増幅法(SDA)および制限消化
工程を示す。2つのSDAプライマーの使用は(ひとつ
のSDAの使用に対して)指数的に増幅物を生成する。
Claims (6)
- 【請求項1】(a)二本鎖標的核酸配列の一方の鎖の上
流に第1プライマーをハイブリダイズさせるが、その
際、該第1プライマーは制限酵素認識配列を5’に、お
よび標的核酸配列に相補的な配列を3’に含む増幅プラ
イマーであり、 (b)上記(a)の工程と同時に、上記第1プライマー
がハイブリダイズする領域の上流において、上記標的核
酸配列に第2プライマーをハイブリダイズさせるが、そ
の際、第2プライマーは標的核酸配列に相補的な配列の
みからなり、 (c)制限酵素認識配列を含む第1プライマーの伸長合
成産物が第2プライマーの伸長合成産物により標的核酸
から置換されるように、第1および第2プライマーを伸
長合成し、そして (d)認識配列を必要とするが加熱工程を含まない恒温
増幅反応により、置換された第1プライマー伸長合成産
物を増幅する工程からなる、核酸配列を生成および増幅
するための方法。 - 【請求項2】上記(a)〜(d)の工程に続き、さら
に、 (e)二本鎖標的核酸配列の他方の鎖の上流に第3プラ
イマーをハイブリダイズさせるが、その際、該第3プラ
イマーは制限酵素認識配列を5’に、および標的核酸配
列に相補的な配列を3’に含む増幅プライマーであり、 (f)上記(e)の工程と同時に、上記第3プライマー
がハイブリダイズする領域の上流において、上流標的核
酸配列に第4プライマーをハイブリダイズさせるが、そ
の際、第4プライマーは上記標的核酸配列の他方の鎖に
相補的な配列のみからなり、 (g)制限酵素認識配列を含む第3プライマーの伸長合
成産物が第4プライマーの伸長合成産物により標的核酸
から置換されるように、第3および第4プライマーを伸
長合成し、そして (h)認識配列を必要とするが加熱工程を含まない恒温
増幅反応により、置換された第3プライマー伸長合成産
物を増幅する工程を含む、請求項1記載の方法。 - 【請求項3】上記認識配列が、Qベータレプリカーゼ、
制限酵素、RNAポリメラーゼ、または複製配列の複製
開始点を認識する酵素により認識される、請求項1記載
の方法。 - 【請求項4】上記認識配列が制限酵素により認識され、
かつ、一方の鎖のみの選択的分割をもたらす少なくとも
ひとつのデオキシヌクレオシド3リン酸の存在下でプラ
イマーからの伸長合成が生じる、請求項3記載の方法。 - 【請求項5】上記認識配列が、制限酵素HincII,
AvaI,NciI,HindIII,Fnu4HI,
BstXI,BsmI,BsrI,BsaI,NlaI
V,NspI,PflMI,HphI,AlwI,Fo
kI,AccIおよびTthlllIからなる群より選
択される制限酵素により認識される配列である、請求項
4記載の方法。 - 【請求項6】(a)二本鎖標的核酸配列の一方の鎖の
5’末端に一本鎖プライマー(S1)をハイブリダイズ
させるが、その際、上記S1プライマーは、HincI
I認識配列を5’に、および上記標的配列に相補的な配
列を3’に含み、 (b)上記(a)の工程と同時に、上記二本鎖標的核酸
配列の他方の鎖の5’末端に一本鎖プライマー(S2)
をハイブリダイズさせるが、その際、上記S2プライマ
ーは、HincII認識配列を5’に、および上記標的
配列に相補的な配列を3’に含み、 (c)上記(a)の工程と同時に、上記S1プライマー
がハイブリダイズする領域の上流において、上記標的核
酸配列に置換用一本鎖プライマー(B1)をハイブリダ
イズさせるが、その際、上記B1プライマーは標的核酸
配列に相補的な配列のみからなり、 (d)上記(a)の工程と同時に、上記S2プライマー
がハイブリダイズする領域の上流において、上記標的核
酸配列に置換用一本鎖プライマー(B2)をハイブリダ
イズさせるが、その際、上記B2プライマーは標的核酸
配列に相補的な配列のみからなり、 (e)制限酵素認識配列を含むS1プライマーおよびS
2プライマーの伸長合成産物がそれぞれB1プライマー
およびB2プライマーの伸長合成産物により標的核酸か
ら置換されるように、dGTP,dCTP,dTTPお
よびdATP(αS)の存在下でS1、S2、B1およ
びB2プライマーを伸長合成し、 (f)S1プライマーおよびB1プライマーを、上記S
2プライマーの伸長合成産物にハイブリダイズさせ、 (g)S2プライマーおよびB2プライマーを、上記S
1プライマーの伸長合成産物にハイブリダイズさせ、 (h)制限酵素認識配列を含むS1プライマーおよびS
2プライマーの伸長合成産物がそれぞれB1プライマー
およびB2プライマーの伸長合成産物により標的核酸か
ら置換されるように、dGTP,dCTP,dTTPお
よびdATP(αS)の存在下でS1、S2、B1およ
びB2プライマーを伸長合成し、 (i)合成された一本鎖の伸長合成産物を互いの相補鎖
とハイブリダイズさせて二本鎖にし、そして (j)HincII認識配列において制限酵素Hinc
IIがニックを入れることにより、第2伸長合成産物を
増幅する工程からなる、核酸配列を生成および増幅する
ための方法。
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