JP2009516525A - 複合的核酸検出法 - Google Patents
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Abstract
Description
a)標的特異的ヌクレオチド配列1(T1);
b)一般的リバースプライマー結合部位;
c)結合対の第一の要素として作用する、またはそれを有する、ヌクレオチド配列;
d)固有切断配列;
e)一般的フォワードプライマー結合部位;
f)ZIPコード配列;および
g)標的特異的ヌクレオチド配列2(T2)、
ここで、ハイブリダイゼーション(および外側末端のライゲーション)後にパドロックプローブが環状分子を形成するように、T1配列およびT2配列は同一標的上の近接するヌクレオチド領域に対して相補的であるように設計される。項目c)およびd)の機能性は組み合わせることが可能であり、すなわち、固有切断配列は結合対の第一の要素として作用するヌクレオチド配列として機能しうる。あるいは、結合対の第一の要素はデスチオビオチン部分であり、かつデスチオビオチン部分を有するヌクレオチドは、好ましくはチミジンリンカーを通してポリウラシル配列に結合される。固有切断配列は好ましくは、ポリウラシル配列のようなモノヌクレオチド配列である。一般的フォワードプライマー結合部位はT7 RNAポリメラーゼ認識部位を含みうる。ZIPコード配列はアレイ上のヌクレオチド配列の相補鎖である態様が好ましい。
a)標的特異的ヌクレオチド配列1(T1);
b)固有リバースプライマー結合部位;
c)結合対の第一の要素として作用する、またはそれを有する、ヌクレオチド配列;
d)固有切断配列;
e)固有フォワードプライマー結合部位;および
f)標的特異的ヌクレオチド配列2(T2)、
ここで、ハイブリダイゼーション(および外側両末端のライゲーション)後にパドロックプローブが環状分子を形成するように、T1配列およびT2配列は同一標的上の近接するヌクレオチド領域に対して相補的であるように設計される。項目c)およびd)の機能性は組み合わせることが可能であり、すなわち、固有切断配列は結合対の第一の要素として作用するヌクレオチド配列として機能しうる。あるいは、結合対の第一の要素はデスチオビオチン部分である。固有切断配列は好ましくは、ポリウラシル配列のようなモノヌクレオチド配列である。任意で、この態様のパドロック核酸プローブは、好ましくは固有フォワードプライマー結合部位とT2配列との間に、汎用ZIPコード配列を含む。
a.標的へのハイブリダイゼーションが可能な標的特異的配列を有する一つまたは複数の本発明のパドロックヌクレオチドプローブを、標的を含む試料に添加する段階;
b.パドロックヌクレオチドプローブを標的にアニーリングさせる段階;
c.ライゲーションによりパドロックプローブの環状化する段階;
d.結合対の第二の要素により被覆された固形支持体と接触させることにより、パドロックヌクレオチドプローブを捕捉する段階;
e.固有切断配列での切断により、パドロックヌクレオチドプローブを線状化する段階;
f.任意の未結合オリゴヌクレオチドを除去するために、ビーズを洗浄する段階;
g.固形支持体からPLPプローブを溶出する段階;
h.ZIPコード配列を検出する段階。
i.一般的プライマーを使用して、パドロックヌクレオチドプローブを増幅する段階;
j.増幅されたパドロックヌクレオチドプローブを標識する段階;
k.パドロックヌクレオチドプローブと、ZIPコード配列とのハイブリダイズが可能な少なくとも一つの配列とのハイブリダイゼーションにより、ZIPコードの存在を試験する段階であって、好ましくはハイブリダイゼーションが(マイクロ)アレイのような固形支持体において行われる段階。
i.パドロックヌクレオチドプローブと、ZIPコード配列とのハイブリダイズが可能な少なくとも一つの配列とのハイブリダイゼーションにより、ZIPコードの存在を試験する段階であって、好ましくはハイブリダイゼーションが(マイクロ)アレイまたは金ビーズのような固形支持体で行われる段階、
j.パドロックの結合対の第一の要素に方向付けられた蛍光プローブ、または蛍光標識されたBiobarcode標識金ビーズを用いて、ハイブリダイズしたパドロックヌクレオチドプローブを固形支持体上で標識する段階。
a.標的へのハイブリダイゼーションが可能な標的特異的配列を有する一つまたは複数のパドロックヌクレオチドプローブを、標的を含む試料に添加する段階;
b.パドロックヌクレオチドプローブを標的にアニーリングさせる段階;
c.ライゲーションによりパドロックプローブを環状化する段階;
d.結合対の第二の要素により被覆された固形支持体を使用し、パドロックヌクレオチドプローブを捕捉する段階;
e.固有切断配列での切断により、パドロックヌクレオチドプローブを線状化する段階;
f.固形支持体からパドロックプローブを溶出する段階;
g.固有プライマーを使用して、溶出されたパドロックヌクレオチドプローブを増幅する段階;
h.増幅を測定および検出する段階。
「ハイブリッド」という用語は二本鎖核酸分子、すなわち、相補ヌクレオチドの間で形成された水素結合による二重鎖を意味する。「ハイブリダイズ」または「アニール」という用語は核酸配列の一本鎖が相補ヌクレオチドの間で水素結合を通して二本鎖らせん状部位を形成する過程を意味する。
本発明はとりわけ複合的アッセイにおいて、パドロックプローブ(PLP)の使用に付随する問題の一つである、連続的なPCR段階における未ライゲーション型PLPのバックグラウンド増幅に対する解決策を提供する。パドロックプローブも交差反応的ライゲーションの結果として、線状二量体を形成する傾向を有しており、対応するライゲーション産物は容易にエキソヌクレアーゼ消化により環状化プローブと区別されうる。エキソヌクレアーゼ処理によりそのような線状モノマーおよびダイマーの分子数をほぼ三桁の規模減少させ、環状化プローブへの影響は無視できる。
;酵素F-TflIIにより切断される
;酵素F-TflIIにより切断される
;酵素H-DreIにより切断される
酵素I-BmoIにより切断される
である。
図7上部に描画されるような一般的構造に準じた標準的パドロックプローブ(PLP)は、それらのPLPセットが全て、汎用フォワードおよびリバースプライマー結合部位として命名される、同一の汎用フォワードおよびリバースプライマー結合部位を含む様式で設計される。これらのプライマー結合部位はフレキシブルであり、その限りにおいて、プライマー結合部位の配列はパドロックプローブの他の部分とは実質的に異なり、従って、汎用プライマーを使用する増幅段階がプローブの残りの相同配列により阻害されないよう注意が払われるべきである。
PRIロックプローブの一般的構造は以下に説明されるように、汎用ジップコードが任意の特徴であるとの注記を伴う図7中央部に与えられている。上述の標準的パドロックプローブとの違いは、プライマー結合部位が固有プライマー結合部位であり、一方任意のZIPコードは汎用性である点に注意。
LUNAプローブも上記に記載された標準的パドロックプローブの変種であり、違いは汎用フォワードプライマー結合部位がT7ポリメラーゼ認識部位を含むことである。ハイブリダイゼーション反応が完了する際、標的配列へハイブリダイズしたPLPは酵素リガーゼの反応混合物への添加によりライゲーションされる。その後、好ましくは未ライゲーション型DNAがエキソヌクレアーゼ分解により除去される。このエキソヌクレアーゼ処理は、3'〜5'エキソヌクレアーゼもしくは5'〜3'エキソヌクレアーゼのいずれか、または双方、または両活性を組み合わせたエキソヌクレアーゼを用いて遂行されうる。本発明にとって、これらのエキソヌクレアーゼがいかなるエンドヌクレアーゼ活性をも有さないことが最も重要である。次に、プローブは例えば、ストレプトアビジン共役した磁性ビーズ(ストレプトアビジンが固定化されたカラム、もしくは膜のような、別の、ストレプトアビジンで被覆された固形支持体)を使用して捕捉され、かつ試料から分離される。続いて、プローブは十分量のウラシル-N-グリコシダーゼおよびエンドIVヌクレアーゼの添加によりウラシル部位で切断される。リバースプライマーの添加およびAMV逆転写酵素の存在により、T7部位はRNAポリメラーゼが接近しやすくなり、これは全てのLUNAプローブに共通でかつ固定温度での一般的NASBA増幅の開始点として使用される(Compton, J, 1991, Nature 350: 91-92.; Kievits, T, van Gemen, B, Van Strijp, D, Schukkink, R, Dirks, M, Adriaanse, H, Malek, L, Sooknanan, R and Lens, P. 1991, J. Virol. Methods 35: 273-286; Leone, G, van Schijndel, H, van Gemen, B, Kramer, FR, and Schoen, CD. 1998, Nucleic Acids Research 26: 2150-2155.)。NASBA反応は増幅(3)を生産するための二つのプライマーと共に、AMV逆転写酵素(RT)、RNアーゼH (RNaseH)およびT7 RNAポリメラーゼの同時活性に基づく。この過程は単一の温度(41℃)で起こる。
アレイベースの複合的解析アプローチを用いて、増幅産物は、遊離した3'末端を有する相補ZIP(cZIP)-Codeオリゴヌクレオチドが固定化された(図14)異なるマトリクス(アレイまたはLuminexビーズ)上に収集される(Gordon RF, McDade RL, 1997, Multiplexed quantification of human IgG, IgA, and IgM with the Flowmetrix system. Clinical Chemistry, 43: 1799-1801)。アレイを用いて、プローブアドレスで参照できる部位が標的同定のため使用される。Luminexビーズは色彩コードされたビーズである;特徴的なLuminexビーズを伴う増幅産物の対合が標的同定のタグとして使用される。Luminexアプローチを用いて、本発明者らは溶液中にアレイを有する。cZIP-Code配列(約20〜25ヌクレオチドの任意の非標的配列)の導入により、標的配列と独立した双方のマトリックス上での増幅産物の検出が可能になる。cZIP-Codeを含むアレイまたはLuminexビーズは独立しているため、記載されたアッセイ系は異なる適用分野へも改変可能である。
溶液ベースの複合的アプローチを用いて、固定温度において反応したパドロックプローブの増幅が汎用NASBAを用いて遂行される。異なるパドロックプローブ毎のZIP-Codeが、NASBAでのモレキュラービーコン(molecular beacon)のための認識部位として使用される(Leone, G. et al, 上記)。モレキュラービーコンはステムループ構造を有する一本鎖のオリゴヌクレオチドである。ループ部分は標的核酸の相補配列を含み、一方ステムは標的とは無関係でかつ二本鎖構造を有する。ステムの一つのアームは蛍光色素を用いて標識され、かつ他のアームは非蛍光消光剤を用いて標識される。この状態で、エネルギーは消光剤へ移行されかつ熱として発散されるため、プローブは蛍光を産生しない。モレキュラービーコンが標的へハイブリダイズする際、蛍光体および消光剤を分離する立体配置的変化を経て、結合したプローブは明るい蛍光を発する(Tyagi, S. and Kramer, F.R. (1996) Nature Biotechnol., 14, 303-308)。この増幅の間、蛍光ベースの同定が遂行される。PLPとNASBAの組み合わせは、異なるRNA/DNA標的配列の複合的検出にとって新規であり、LUNA:リガーゼ依存的汎用NASBAと命名されている(図14)。とりわけ、PLPへのT7認識部位の取り込みおよびssRNAを生み出す汎用NASBAは、より低い標的検出レベルを許容する効率的な複合的検出方法の開発における新たな特徴である。この手法とマイクロアレイ技術を組み合わせることにより、異なる標的の複合的解析のための一般的手段となる。
実施例1:植物病原性微生物の複合的診断
本研究で使用された核酸
病原体は出願人の培養収集に由来した(表1)。ゲノムDNAは以前に記載されているように抽出された(Bonants, P., Hagenaar-de Weerdt, M., van Gent-Pelzer, M., Lacourt, I., Cooke D. and Duncan, J. (1997) Detection and identification of Phytophthora fragariae Hickman by the polymerase chain reaction. Eur. J. of Plant Pathol., 103, 345-355)。
Genbank由来および独立した配列決定研究由来の関連核酸配列はBioEdit(http://www.mbio.ncsu.edu/BioEdit.bioedit.html)中に装備されているClustalWの使用により並列された。各標的群について診断配列が同定された。識別ヌクレオチドが3'アーム領域に結合し、かつある一定の安定性判断基準に一致すると考えられる様式において、潜在的なPLP標的相補領域が選択された(「結果」を参照)。アーム配列の結合強度を特徴付ける融解温度(Tm)がHyther(商標)(http://ozone2.chem.wayne.edu/)中に装備されている最短距離法を使用して算出された。予測パラメーターはライゲーション条件([Na+]=0.025 M;[Mg2+]=0.01 M;T=65℃および[oligo]=2.5*10-11 M)と一致するように設定された。特異性は密接に関連した非標的配列を伴うPLPの3'末端に、強固に不安的化するミスマッチを配置することにより保証された。表2Aおよび3A中に列挙された標的オリゴヌクレオチドを伴うPLPはEurogentec S.A.(Seraing, Belgium)により合成された。PLPアーム配列は汎用プライマー結合部位
およびZipCode配列と組み合わせられた。固有の識別子はPLPの二次構造を最小限にする様式でGeneFlex(商標)TagArrayセット(Affymetrix)から選択された。二次構造予測はMFold(http://www.bioinfo.rpi.edu/applications/mfold/)の使用により遂行された。効率的なライゲーションを阻害する可能性がある強固な二次構造を回避するため、必要な場合はPLPアーム配列も調節された。
ゲノムDNAはEcoRI、HindIIIおよびBamHI(New England Biolabs)を使用した30分間の消化により断片化され、かつ示された量で鋳型として使用された。サイクル化ライゲーションは、20 mM Tris-HCl pH 9.0、25 mM KCH3COO、10 mM Mg(CH3COO)2、10 mM DTT、1 mM NAD、0.1% Triton X-100、20 ng超音波破砕サケ精子DNA、2.4 U Taqリガーゼ (New England Biolabs)、および25 pM PLPを含む10 μL反応混合物中で遂行された。複合的検出のため、個々のPLP濃度は比較可能な工程を成し遂げるよう調節され、25〜200 pMの範囲であった。反応混合物は氷上で作成され、かつ迅速にサーマルサイクラーへ移行された。95℃で5分間の後、20サイクルの95℃、30秒間および65℃、5分間の工程が遂行され、続いて95℃で15分間不活性化された。ライゲーション後、10 μLのエキソヌクレアーゼ混合物(10 mM Tris-HCl pH9.0、4.4 mM MgCl2、0.1 mg/ml BSA、0.5 UエキソヌクレアーゼI(USB)、および0.5 UエキソヌクレアーゼIII(USB))が各反応へ添加され、かつ試料は37℃で2時間保温され、続いて95℃で2.5時間不活性化された。
ライゲーションされたPLPの増幅はABI Prism 7700 Sequence Detector System(Applied Biosystems)およびqPCRキット(Eurogentec)を使用してリアルタイムで続けられた。25μLの反応混合物は、2.5μL 10Xリアルタイム緩衝液、3 mM MgCl2、dTTP/dUTPを含む200 nMの各dNTP、100 nM P-Frag TaqManプローブ
、300 nMプライマーP1-f20
、およびP2-r20
、0.6 U Hot Gold Start polymerase、0.6 U UNGおよび、鋳型として3 μLライゲーション-エキソ混合物を含んだ。反応混合物は当初50℃で2分間保温され、続いて95℃10分間の変性、ならびに40サイクルの95℃、15秒間および60℃、1分間の工程が続いた。蛍光は各サイクルの第二段階で記録された。
マイクロアレイハイブリダイゼーションのため、環状化PLPは、大量のssDNAアンプリコンを産生するためにLATE-PCR(linear-after-the-exponential PCR)(Sanchez, J.A., Pierce, K.E., Rice, J.E. and Wangh, L.J. (2004) Linear-after-the-exponential (LATE)-PCR: an advanced method of asymmetric PCR and its uses in quantitative real-time analysis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 101, 1933-1938.)で増幅された。プライマーの長さは、10倍の濃度の違いにもかかわらず同様の融解温度を有するよう調節された。PLPは1X Pfu緩衝液(Stratagene)、200 nM各dNTP、500 nM Cy3またはCy5標識されたP1-f19プライマー
、50 nM P2-r20プライマー、0.375 U Pfu(Stratagene)および3 μLのライゲーション-エキソ混合物を鋳型として含む25 μLの反応混合物中で増幅された。反応の温度プロファイルは以下であった:95℃で5分間、40サイクルの51℃、2秒間、72℃、5秒間および95℃、15秒間の工程が遂行され、その後反応物は直ちに10℃で冷却された。PLPのアンプリコンはアレイへの適用前にアガロースゲル電気泳動で解析された。
C12リンカーおよび5'NH2群を保持する相補ZipCode(cZipCode)オリゴヌクレオチド(図4)が合成され、かつ製造業者の使用説明書(Schott Nexterion)に従いNexterion MPX-E16エポキシ被膜スライド上にIsogen B.V.(Utrecht, The Netherlands)によりスポットされた。端的には、50 nLの1.5 mM cZipCode溶液はSMP4ピン(Telechem)が装備されたOmniGrid100接触分配系(Genomic Solutions)を使用して50%の相対湿度でスポットされた。75%湿度で1時間保温後、非共役プローブは65℃で30分間、300 mMビシン(bicine)pH8.0、300 mM NaCl、および0.1% SDS中で洗浄により除去され、続いて脱イオン水でリンスおよび250 gで2分間の回転により乾燥された。アレイは使用まで乾燥器中に室温暗所で保管された。
ハイブリダイゼーションに先立ち、アレイは洗浄され、かつ製造業者の使用説明書に従い官能基がブロックされた。ハイブリダイゼーション混合物は3 M TMAC、0.1%サルコシル(sarkosyl)、50 mM Tris-HCl pH8.0、4 mM Na2EDTA中で5 μLのCy3標識された試料、および5 μLのCy5標識されたバックグラウンド対照試料により構成された。Cy5標識されたハイブリダイゼーション対照は50 μlの最終容量中、20 pMの最終濃度で添加された。各スライドについて、ハイブリダイゼーション試料のうち一つは同一の陽性ライゲーション反応に相当するCy5およびCy3標識アンプリコンを含み、これは色素偏向の補正に役立った(色素補正試料)。混合物は99℃で10分間熱せられ、かつ氷上で迅速に冷却された。サブアレイのための分離チャンバーを作製するため、16穴シリコン高次構造(Schott Nexterion)がアレイへ装着された。各穴へ40 μlの試料を添加後、チャンバーは密閉され、かつアレイは55℃において高湿度で一晩ハイブリダイズされた。後に隔離器が除去され、かつスライドは55℃で5分間事前保温された1X SSC/0.2% SDS中で一度、ならびに室温でさらに1分間、各々、0.1X SSC/0.2% SDS中、および0.1X SSC中で二回洗浄された。最終的に、スライドは250 gで2分間の回転により乾燥された。
マイクロアレイは、Cy3のためのGreNe 543 nmレーザー、およびCy5蛍光測定のためのHeNe 633nmレーザーを含む共焦点ScanArray(登録商標)4000レーザースキャン系(Packard GSI Lumonics)を使用して解析された。レーザー出力は双方のレーザーとも70%で固定され、一方PMT(photomultiplier tube power)はシグナル強度に依存して45〜65%の範囲であった。蛍光輝度はQuantArray(登録商標)(Packard GSI Lumonics)を使用して定量され、かつパラメーター「平均シグナル-平均局部バックグラウンド」(平均Cy3-Bまたは平均Cy5-B)、および「平均局部バックグラウンド」(B)は更なる算出において使用された。色素補正係数は、同一であるが異なる色の試料がハイブリダイズしたサブアレイに基づき、各スライドおよびスキャナー設定について別々に算出された(陽性スポットに基づく(平均Cy3-B)/(平均Cy5-B)の平均値)。他のサブアレイのアッセイバックグラウンドはスポットごとに「平均Cy5-B掛ける色素補正係数」として算出された。絶対シグナル輝度は「平均Cy3-B引くアッセイバックグラウンド」と定義され、かつログスケールに変換された(シグナル= log2(絶対シグナル))。もし「平均Cy3-B」が「アッセイバックグラウンド」より低い場合は、シグナルはゼロと評価された。シグナルの有意性を評価するため、本発明者らは対応するアッセイバックグラウンドと比較し、かつ信頼性係数と称されたlog2(絶対シグナル/アッセイバックグラウンド)を算出した。プローブは三つ組で3回スポットされた(9つ並列)。アウトライアー(outlier)を排除した後、シグナルおよび信頼性係数がプローブについて平均化され、かつ標準偏差(SD)が算出された。プローブのシグナルは、信頼性係数が1より高い場合は陽性とみなされ(すなわち、シグナルはアッセイバックグラウンドの最低二倍)、かつ平均のCy3シグナルは平均の局部Cy3バックグラウンド(カットオフ値)の二倍より高かった。
ライゲーション特異性およびPLP設計ストラテジーの評価
非常に類似した非標的DNA分子が標的DNAより極めて高濃度で潜在的に存在しうるため、診断適用のためにはライゲーションにおける高い識別力が最も重要である。従って、本発明者らは診断アッセイ設計が後に外挿されうるよう、単一ミスマッチの最大限の識別のための反応条件およびPLP設計を最適化することを目標とした。
上記の原則に基づき、本発明者らは10種の経済的に重要な植物病原体を標的にするPLPを設計した(表3A)。本発明者らは各場合において、rRNAオペロンのITS領域内に識別エリアを選択した。これは、それらが高コピー数(1)であり、これはアッセイの感度を有意に増加させる可能性があるためである。さらに、ITS領域は系統学的研究においても広く使用されており(11)、かつ信頼できるアッセイ設計を保証する可能性のある、多数の配列が植物病原体について利用可能である。Genbankで利用可能な配列、および独立した配列研究から取得される配列が並列され、かつ各標的生物体の診断領域が選択された。好ましくは、本発明者らは、一つを上回る識別ヌクレオチドおよび標的種/亜群内での非常に少数の多型位置を含む領域を選択した。3'アーム配列は14〜18ヌクレオチド長でかつおよそ40℃のTmを有するよう選択された(表3B)。一般に、非標的配列へ結合した場合、3'アーム配列は識別領域へハイブリダイズし、かつ3'末端に高度に不安定化するミスマッチまたはギャップを含んでいた。5'アーム配列は27〜37ヌクレオチド長であった。階層的診断解析の試みとして、本発明者らは、全てのフィトフトラ(Phytophthora)種を標的にし、かつ関連するオオマイセテス(oomycetes)と区別する属特異的PLPも設計した。標的相補領域を選択した後、それらは汎用プライマー結合部位配列と組み合わせられ、かつ固有ZipCode配列が各プローブについて選択された。
開発された11個のPLP混合物は様々なゲノムDNA上にライゲーションされ、エキソヌクレアーゼで処理され、かつCy3標識されたフォワードプライマーを使用したLATE-PCRへ供された。標識されたPLPアンプリコンは、単一スライド上で16試料の同時アッセイが可能である複数チャンバー、低密度汎用マイクロアレイ上で解析された(図4)。本発明者らの実験において使用されたタグアレイは、沈着エリア全体にわたり分布した90個のハイブリダイゼーション対照プローブと共に、9回の反復実験中で30個のプローブを含んだ。この配置により、他の病原体を標的にするPLPセットの今後の拡張が許容され、かつ高処理量のスクリーニングが可能になる(図8参照)。
原理の証明であるPRIロックプローブを実証する試験的規模の研究
設計
提案された原理を試験するための試験的規模の複合的検出系を作製するため、経済的に重要な植物病原体を標的として三つのPRIロックプローブが設計された(図7)。増幅を測定するため、LNA(ロック核酸(locked nucleic acids))を含む汎用TaqManプローブが設計された。アッセイの特異性は各プローブについて最も類似した非標的生物体のDNAを試験することにより実証されると考えられる(表5)。標的識別は単一または数個のヌクレオチドのみに基づいて達成されるので、この試験系は汎用基盤における極めて特異的、定量的な解析についてもPRIロックの潜在的可能性を示す。
最初に、本発明者らは設計されたPRIロックプローブの同起源標的上への特異的ライゲーション、および、汎用TaqManプローブとの組み合わせにおける固有プライマー対の使用による特異的増幅を試験した。各PRIロックプローブは500 pg標的ゲノムDNA上でライゲーションされ、かつ使用されたPRIロックプローブに依存した特異的増幅は22〜25のCt値により観察された(図12)。標的DNA非存在下では、いかなるシグナルも観察されなかった。
PRIロックベースの検出の遂行を評価するため、本発明者らは単一または複数の標的病原体を用いた複合的反応を遂行した(表6)。リアルタイムPCRで観察されたCt値が単一反応で観察されたものと比較された。
定量の線形範囲は、三つ全てのPRIロックプローブについて標的DNAの希釈系列を使用して解析された。生成された校正曲線は、後に続く実験において標的の定量のために使用可能である。現在のところ、本発明者らは三つのうち二つのPRIロックプローブについて、定量の線形範囲は四桁のみであることを観察ており、これは、より高い標的濃度においてライゲーション収率が標的濃度の増加に伴い線形様式ではもはや増加しないためである(図13)。計画された将来的適用においては、適用されたPRIロックプローブ濃度の実質的増加(100X)により定量範囲が有意に増加することが期待される。
原理の証明であるLUNAプローブを実証する試験的規模の研究
背景
標的DNA上でのLUNAプローブのライゲーション後、任意の残留する非環状化(未連結)パドロックプローブがエキソヌクレアーゼ処理により除去されることが可能であり、続いて、デスチオビオチン部分とストレプトアビジン磁性ビーズとの結合によりプローブの捕捉が行われる。洗浄段階後、残留する環状化プローブは、5'T7 RNAポリメラーゼ認識部位と汎用リバースプライマー結合部位の3'末端との間に取り込まれたウラシルヌクレオチドの位置でウラシル-N-グリコシダーゼ/エンドIVヌクレアーゼを用いて消化される。全てのパドロックプローブに共通の相補T7部位の解離は、固定温度での一般的NASBA増幅の開始点として作用する(図14〜15参照)。
上記の手法に従い(実施例1参照)、図7下部に示されるようなLUNAプローブが設計された。
フィトフトラ・カクトルムおよびベルティシリウム・ダーリエの配列に基づき、2つの点突然変異特異的LUNAプローブが設計された。プローブの3'末端の突然変異は、突然変異が5'末端に位置する場合よりもより良好に識別される。プローブの特異性は非対称設計および高いライゲーション温度と共に大きく増加する。最適の設計において、LUNAプローブの3'アームは37〜40℃の融解温度(Tm)を有し、5'アームは65〜70℃のTmを有している。LUNAライゲーション段階の特異性は、密接に関連した(非)病原性種を用いて検証されており、かつ点突然変異特異的であるよう見受けられる。
複合性およびダイナミック検出レンジはこのLUNA検出系の重要なパラメーターである。それらのパラメーターを検証するため、植物病原性フィトフトラ・カクトルムおよびベルティシリウム・ダーリエのゲノムDNAが抽出され、かつ異なる濃度および比率において試験され、かつ伝統的PCRと比較された(図17、18)。
PLP P-fragによる単一ミスマッチ識別の評価およびPLP設計ストラテジーの最適化。(A)ライゲーション特異性を特徴付けるために使用されたPLP P-fragおよび標的オリゴヌクレオチド。PLP配列は標的相補領域を示すため描かれている;5'および3'末端が示されている。相補オリゴヌクレオチド配列におけるミスマッチは逆転色により強調されている。線および斜線は連続的配列を示す。(B)ライゲーション効率およびミスマッチ識別に対する、ミスマッチの位置および型の効果。PLP標的相補領域の長さ(L)および融解温度(Tm)が示されている。ライゲーション型PLPを定量するためのCt値が三つの独立した実験において決定された。再現性を示すため、標準偏差とともにCt値の平均が示されている。識別係数はライゲーション産物の収率における倍差として算出され、△Ct値および増幅効率(E=0.81)に基づき決定された。(C)PLP設計ストラテジーの比較。PLPの特性は(B)に示されている。△Ctの算出において、Ct0は、各々の完全に一致する標的のライゲーション反応のCtを意味する。
(A)開発された診断PLPの標的相補領域およびZipCode配列。最も類似の非標的配列から標的を識別するために使用された、ヌクレオチドまたは欠失によるギャップには下線を引いてある。灰色の四角は標的群内における多型を示している。(B)PLPセットの設計および実験的特性。プローブは標的種/亜群にちなんで名付けられた。PLP標的相補領域の長さ(L)および融解温度(Tm)が示されている。既知の最も類似した非標的生物由来の標的配列を識別するヌクレオチドの数が各PLPについて示されている。感度は、標準的アッセイ条件下で検出可能であった、完全一致のオリゴヌクレオチドの最低濃度として定義された。識別範囲は標的および非標的オリゴヌクレオチドの間の最低検出濃度の規模の違いを示す。
マイクロアレイ上での解析による、開発された複合的PLPセットを使用した病原体検出。各試料およびプローブの組み合わせについて、9回反復実験の平均値シグナル(±標準偏差)が上列左側に示されており、シグナルはlog2(平均Cy3-局所的バックグラウンド-アッセイバックグラウンド)として算出された。方法の信頼性は各スポットについて、信頼性係数と称される、log2(絶対シグナル/アッセイバックグラウンド)を算出することにより評価された。平均値(±標準偏差)は下列右に並列されている。陽性の判定基準は:平均Cy3>2*平均Cy3局所的バックグラウンド(カットオフ値)および信頼性係数>1であった。陽性シグナルは強調され、太字体で示されている。(A)単一病原体のDNA解析。(B)等比率で存在する病原体DNAの人工的混合物の試験。(C)検出のダイナミックレンジ:異なる比率でのミロテシウム・ロリドゥムおよびフザリウム・オキシスポルムのDNAの解析。
Claims (26)
- 5'から3'の方向へ、
a)標的特異的ヌクレオチド配列1(T1)
b)一般的リバースプライマー結合部位
c)結合対の第一の要素として作用する、またはそれを有する、ヌクレオチド配列
d)固有切断配列
e)一般的フォワードプライマー結合部位
f)ZIPコード配列
g)標的特異的ヌクレオチド配列2(T2)
を含む標準的パドロック(padlock)ヌクレオチドプローブであって、
ハイブリダイゼーション(および外側末端のライゲーション)後に該パドロックプローブが環状分子を形成するように、T1配列およびT2配列が同一標的上の近接するヌクレオチド領域に対して相補的であるように設計される、標準的パドロックヌクレオチドプローブ。 - 固有切断配列がポリウラシル配列である、請求項1記載のパドロックプローブ。
- ポリウラシル配列が結合対の第一の要素として機能する、請求項2記載のパドロックプローブ。
- T7 RNAポリメラーゼ認識部位も含むことを特徴とする、請求項1〜3のいずれか一項記載のパドロックプローブ。
- T7 RNAポリメラーゼ認識部位が一般的フォワードプライマー結合部位の5'側に位置する、請求項4記載のパドロックプローブ。
- ZIPコードがアレイ上または他の要素上のヌクレオチド配列の相補鎖である、請求項1〜5のいずれか一項記載のパドロックプローブ。
- 5'から3'の方向へ、
a)標的特異的ヌクレオチド配列1(T1)
b)固有リバースプライマー結合部位
c)結合対の第一の要素として作用する、またはそれを有する、ヌクレオチド配列
d)固有切断配列
e)固有フォワードプライマー結合部位
f)標的特異的ヌクレオチド配列2(T2)、
を含むパドロックヌクレオチドプローブ(PRIロック)であって、
ハイブリダイゼーション(および外側末端のライゲーション)後に該パドロックプローブが環状分子を形成するように、T1配列およびT2配列が同一標的上の近接するヌクレオチド領域に対して相補的であるように設計される、パドロックヌクレオチドプローブ。 - 固有切断配列がポリウラシル配列である、請求項7記載のパドロックプローブ。
- 固有フォワードプライマー結合部位と標的特異的ヌクレオチド配列2(T2)との間に位置する汎用Zipコードを含む、請求項7または8記載のパドロックプローブ。
- 結合対の第一の要素がデスチオビオチンである、請求項1〜9のいずれか一項記載のパドロックプローブ。
- ポリウラシル配列が、2〜100ヌクレオチド、好ましくは2〜50ヌクレオチド、より好ましくは2〜255ヌクレオチド、最も好ましくは3〜10ヌクレオチドを含む、請求項1〜10のいずれか一項記載のパドロックプローブ。
- 第一の標的特異的配列(T1)が、約10〜約75ヌクレオチド長、好ましくは約20〜約50ヌクレオチド長、および最も好ましくは約25〜約40ヌクレオチド長である、請求項1〜11のいずれか一項記載のパドロックプローブ。
- 第二の標的特異的配列(T2)が、約10〜約30ヌクレオチド長、好ましくは約10〜約20ヌクレオチド長である、請求項1〜12のいずれか一項記載のパドロックプローブ。
- 以下の段階を含む、標的ヌクレオチド配列の検出のための方法:
a.標的へのハイブリダイゼーションが可能な標的特異的配列を有する、請求項1〜6のいずれか一項記載のパドロックヌクレオチドプローブの一つまたは複数を、標的を含む試料へ添加する段階;
b.パドロックヌクレオチドプローブを標的にアニーリングさせる段階;
c.パドロックヌクレオチドプローブをそれ自体にライゲーションする段階;
d.結合対の第二の要素により被覆された固形支持体と接触させることにより、パドロックヌクレオチドプローブを捕捉する段階;
e.パドロックヌクレオチドプローブを線状化する段階;
f.任意の未結合オリゴヌクレオチドを除去するために、固形支持体を洗浄する段階;
g.固形支持体からPLPプローブを溶出する段階;
h.ZIPコードを検出する段階。 - ZIPコードを検出する段階が、
i.一般的プライマーを使用してパドロックヌクレオチドプローブを増幅する段階;
j.増幅されたパドロックヌクレオチドプローブを標識する段階;
k.パドロックヌクレオチドプローブと、ZIPコードとのハイブリダイゼーションが可能な少なくとも一つの配列とのハイブリダイゼーションにより、ZIPコードの存在を試験する段階であって、好ましくはハイブリダイゼーションが(マイクロ)アレイのような固形支持体において行われる段階
を含む、請求項13記載の方法。 - ZIPコードを検出する段階が、
i.パドロックヌクレオチドプローブと、ZIPコードとのハイブリダイゼーションが可能な少なくとも一つの配列とのハイブリダイゼーションにより、ZIPコードの存在を試験する段階であって、好ましくはハイブリダイゼーションが(マイクロ)アレイまたは金ビーズのような固形支持体において行われる段階;および
j.パドロックプローブの結合対の第一の要素に方向付けられた蛍光プローブ、または蛍光標識されたBiobarcode標識金ビーズを用いて、ハイブリダイズしたパドロックヌクレオチドプローブを固形支持体上で標識する段階
を含む、請求項13記載の方法。 - 以下の段階を含む、標的ヌクレオチド配列を検出するための方法:
a.標的へのハイブリダイゼーションが可能な標的特異的配列を有する、一つまたは複数のパドロックヌクレオチドプローブを、標的を含む試料へ添加する段階;
b.パドロックヌクレオチドプローブを標的にアニーリングさせる段階;
c.ライゲーションによりパドロックプローブを環状化する段階;
d.結合対の第二の要素により被覆された固形支持体を使用して、パドロックヌクレオチドプローブを捕捉する段階;
e.パドロックヌクレオチドプローブを線状化する段階;
f.固形支持体からパドロックヌクレオチドプローブを溶出する段階;
g.固有プライマーを使用して溶出されたパドロックヌクレオチドプローブを増幅する段階;
h.増幅を測定および/または検出する段階。 - 増幅を測定および/または検出する段階が、インターカレート色素、好ましくはエチジウムブロマイドまたはSYBR Greenを使用して行われる、請求項17記載の方法。
- 増幅を測定および/または検出する段階が、汎用プローブ、好ましくはTaqManプローブを使用して行われる、請求項17記載の方法。
- 固有切断配列がポリウラシル配列であり、線状化がウラシル-N-グリコシダーゼおよびエンドヌクレアーゼIVを用いた処理により達成される、請求項14〜19のいずれか一項記載の方法。
- 結合対の第二の要素がストレプトアビジンである、請求項14〜20のいずれか一項記載の方法。
- 固形支持体からプローブを溶出するためにビオチンが使用される、請求項21記載の方法。
- パドロックヌクレオチドプローブを捕捉する段階の前に水酸化ナトリウムによる変性段階が行われる、請求項14〜22のいずれか一項記載の方法。
- 固形支持体がビーズまたはカラムである、請求項14〜23のいずれか一項記載の方法。
- ヌクレオチド配列の複合的検出のための、請求項1〜11のいずれか一項記載のパドロックプローブの使用。
- 各パドロックプローブが固有の標的を認識するように設計されている、請求項1〜11のいずれか一項記載のパドロックプローブの複数を含む、キット。
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