JPH08501080A

JPH08501080A - ビス‐スタウロスポリンおよびＫ‐２５２ａ誘導体

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Publication number: JPH08501080A
Application number: JP6504731A
Authority: JP
Inventors: ルイス，マイケル・イー; ネフ，ニコラ; ロバーツ−ルイス，ジル; 力村形; 博満斉藤; 譲松田; コウアー，ジェイムズ・シイ
Original assignee: セファロン，インコーポレイテッド; 協和醗酵工業機式会社
Priority date: 1992-07-24
Filing date: 1993-07-26
Publication date: 1996-02-06
Anticipated expiration: 2021-04-05
Also published as: NO307446B1; EP0651754A4; NO305481B1; PT768312E; EP1002534B1; JP2003113184A; ATE152111T1; EP0651754B1; DE69329397T2; ES2101331T3; US5461146A; EP0768312B1; AU675236B2; HUT71239A; NO950242D0; ATE196142T1; DE69329397D1; HU225341B1; GR3034917T3; EP0768312A2

Abstract

(57)【要約】本発明は、新規なＫ-２５２ａ誘導体、ならびに、スタウロスポリンの新規なビス-Ｎ-置換誘導体をその要旨とする。また、新規なスタウロスポリン誘導体またはＫ-２５２ａの特異化機能性誘導体のいずれかを投与することを特徴とする疾患ニューン細胞を治療する方法をもその要旨とする。

Description

【発明の詳細な説明】ビス-スタウロスポリンおよびＫ-２５２ａ誘導体発明の背景プロテインキナーゼは、アミノ酸をリン酸化することにより数多くの細胞性タンパク質を化学的に修飾するよう作用する広範なクラスの酵素である。プロテインキナーゼの阻害剤は構造的に変化に富み、神経系および他の組織に対して種々の（時として、相反する）作用を有する。所与のプロテインキナーゼ阻害剤は、２以上のプロテインキナーゼに対して影響を及ぼし得る。例えば、ノカルジオプシス（Nocardiopsis）属の種およびアクチノマデュラ（Actinomadula ）属の種の培養ブロスから単離されたアルカロイド様物質であるＫ２５２-ａは、元来、プロテインキナーゼＣ阻害剤であると報告されたが、続いてプロテインキナーゼＡおよびＧ、ミオシン軽鎖キナーゼ、およびｔｒｋ（神経成長因子［ＮＧＦ］により活性化されるチロシンキナーゼであり、後者は末梢、知覚および交感神経の生存性を促進する向神経性タンパク質である）も阻害することが見い出された。この後者の作用と一致して、Ｋ−２５２ａは、ＮＧＦのＰＣ−１２細胞（ラット副腎髄質腫瘍由来のクロム親和性細胞である褐色細胞腫）に対する向神経性の作用を阻害し、かつ後根神経節ニューロンおよび海馬ニューロンの生存性を促進する。しかしながら、それは広範囲な濃度にて細胞毒性であることが見い出され、幾人かの研究者をして、これがイン・ビボ（in vivo）で限定された有用性しか有しないと結論付けさせることとなった。Ｋ-２５２ａに関連する微生物アルカロイドであるスタウロスポリン（stauro- sporine）もまた、異なったプロテインキナーゼおよび細胞型に対して種々の作用を有する。スタウロスポリンは、ＰＣ-１２細胞に対してＮＧＦ様の作用を有すること、ならびに虚血後の損傷からアレネズミの海馬を保護することが見い出された。それは、ラットの前脳基底野においてコリン作動性ニューロンへの傷害を逆行させることができる。Ｋ-２５２ａおよびスタウロスポリンは、腫瘍阻害剤として提唱されてきた。スタウロスポリンは、殺虫剤として提供されてきた。メチルアミンの窒素原子が置換されてヒドロカルビル基またはアシル基を有するスタウロスポリンの誘導体が製造され、以下の：腫瘍阻害、炎症阻害、免疫調節、および心血管および中枢神経系の疾患治療の用途が提唱されている。発明の概要本発明は、一の態様において、式： [Stau]-N(CH₃)-W-N(CH₃)-[Stau] (I) ［式中、［Ｓtau］は、式：の残基を表し、Ｗはビス（カルバミル）またはビス（チオカルバミル）基： -C(=Y)-NH-W'-NH-C(=Y)- を表し、ここに、Ｗ’は２-２０個の炭素原子のヒドロカルビレン基であって、ＹはＯまたはＳを意味する］によって表される新規なスタウロスポリンのビス-Ｎ-置換誘導体をその要旨とする。また、本発明は、式（II-４）：［式中、Ｒ¹、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は、各々独立してＨ、Ｘはヒドロキシメチル（ＣＨ₂ＯＨ）であって、ＲはＯＣＨ₃を意味する］によって表されるＫ-２５２ａの新規な誘導体をその要旨とする。また、本発明は、式：［式中、Ｒ¹、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は、各々独立してＨ、ＸはＣＨ₂-ＮＨ-Ｓerであって、ＲはＯＨを意味する］によって表されるＫ-２５２ａの新規な誘導体をその要旨とする。また、本発明には、以下の式（II-４９）：［式中、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は、各々Ｈ、ＲはＯＨ、Ｒ¹はＣＨ₂ＳＯ₂Ｃ₂Ｈ₅であって、ＸはＣＯ₂ＣＨ₃を意味する］によって表される化合物も包含される。また、本発明には、以下の式（II-３８）：［式中、Ｒ¹、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は、各々Ｈ、ＲはＯＨであって、ＸはＣＨ₂ＮＨＣＯ₂Ｃ₆Ｈ₅を意味する］によって表される化合物も包含される。また、本発明には、以下の式（II-４５）：［式中、Ｒ¹およびＲ²は、各々Ｂｒ、ＲはＯＨ、Ｚ¹およびＺ²は各々Ｈであって、ＸはＣＯＮＨＣ₆Ｈ₅を意味する］によって表される化合物も包含される。また、本発明には、以下の式（II-５７）：［式中、Ｒ¹、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は、各々Ｈ、ＲはＯＨであって、ＸはＣＨ₂ＮＨＣＯ₂ＣＨ₃を意味する］によって表される化合物も包含される。また、本発明には、以下の式（Ｖ）：［式中、ＸはＣＯ₂Ｒ⁵（ここで、Ｒ⁵は低級アルキルを表す）またはＣＨ₂ＮＨＣＯ₂Ｒ⁶（ここで、Ｒ⁶は低級アルキルまたはアリールを表す）を表し；Ｒ¹は水素またはＣＨ₂ＳＯ₂Ｒ⁷（ここで、Ｒ⁷は低級アルキルを表す）を表すが、但し、Ｘ＝ＣＯ₂Ｒ⁵であって、Ｒ¹＝水素の組合せは除外される］で示される化合物も包される。式（Ｖ）における基の定義において、低級アルキルは、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、sec-ブチル、tert-ブチル、ペンチル、ネオペンチルおよびヘキシルのごとき、１ないし６個、好ましくは、１ないし３個の炭素原子を有する直鎖または分岐鎖のアルキル基を意味する。アリールは、フェニルおよびナフチルのごとき、６ないし１０個の炭素原子を有するアリール基を意味する。式Ｖの化合物は、医薬上許容される塩の形態とすることができる。化合物（Ｖ）の医薬上許容される塩は、医薬上許容される酸付加塩、金属塩、アンモニウム塩、有機アミン付加塩、およびアミノ酸付加塩を包含する。医薬上許容される酸付加塩の例としては、塩酸塩、硫酸塩およびリン酸塩のごとき無機酸付加塩、ならびに、酢酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、酒石酸塩およびクエン酸塩のごとき有機酸付加塩がある。医薬上許容される金属塩の例としては、ナトリウム塩およびカリウム塩のごときアルカリ金属塩、マグネシウム塩およびカルシウム塩のごときアルカリ土類金属塩、アルミニウム塩および亜鉛塩がある。医薬上許容されるアンモニウム塩の例としては、アンモニウム塩およびテトラエチルアンモニウム塩がある。医薬上許容される有機アミン付加塩の例としては、モルホリンおよびピペリジンとの塩がある。医薬上許容されるアミノ酸付加塩の例としては、リジン、グリシンおよびフェニルアラニンとの塩がある。もう１つの態様において、本発明は、哺乳動物、例えば、ヒトにスタウロスポリンの新規なビス-置換誘導体のうち１種の治療量を投与することにより、コリン作動性ニューロン、線条体ニューロン、および感覚ニューロン、例えば、後根神経節ニューロンの機能を高める方法をその要旨とする。該治療は、栄養因子、好ましくはニューロトロフィックファミリーのメンバー、最も好ましくは神経成長因子（ＮＧＦ）と組み合わせてなしうる。ニューロトロフィックファミリーは、ＮＧＦに対し高い相同性を有するタンパク質群であって、ＮＧＦに加えて、脳由来栄養因子（ＢＤＮＦ；レイブロック（Leibrock）ら、ネイチヤー（Nature）第３４１巻：１４９-１５２頁、１９８９年）；ニュートロフィル-３（neutroph il-３）（ＮＴ-３；ホーン（Hohn）ら、ネイチャー（Nature）第３４４巻：３３９-３４１頁、１９９０年）；およびニューロトロフィック-５（neurotrophic- ５）（ＮＴ-５；バークマイヤー（Berkemeier）ら、ニューロン（Neuron）第７巻：８５７-８６６頁、１９９１年）も包含する。もう１つの態様において、本発明は、スタウロスポリンの新規なビス-置換誘導体のうちの１種の治療量を、例えば、ヒトのごとき哺乳動物に投与することにより、興奮性アミノ酸により誘導される変性から該哺乳動物の神経細胞を保護する方法をその要旨とする。かかる変性が起こり得る病患は、アルツハイマー病；運動ニューロンの疾患、例えば、筋萎縮性側索硬化症；パーキンソン病；脳血管疾患、例えば、虚血状態；ＡＩＤＳ痴呆；癲癇；ハンチントン舞踏病；ならびに、脳または脊髄への振盪または穿通損傷を包含する。該治療は、栄養因子、好ましくは、ニューロトロフィンファミリーのメンバー、最も好ましくは神経成長因子（ＮＧＦ）と組み合わせてなしうる。もう１つの態様において、本発明は、表１に示すいずれかの置換基を有する式：によって表されるＫ-２５２ａの機能性誘導体の治療量を、哺乳動物、例えば、ヒトに、投与することにより、該哺乳動物において、コリン作動性ニューロン、線条体ニューロン、および感覚ニューロン、例えば、後根神経節ニューロンの機能を高める方法をその要旨とする。：（１）Ｚ¹およびＺ²は共に水素であるか、または一緒になって酸素である；（２）ＮＨ-アミノ酸連結は、当該アミノ酸のカルボキシル基を介するアミド結合である；（３）ＸおよびＲは一緒になって連結基を形成する；（４）Ｒ³はＣＨ₂ＣＨ＝ＣＨ₂；Ｒ⁴はＨである；（５）Ｒ³およびＲ⁴は各々Ｈである；（６）Ｒ³およびＲ⁴は各々ＣＨ₂ＣＨ＝ＣＨ₂である；（７）化合物は塩酸塩の形態である；（８）Ｒ³はＨであって、Ｒ⁴はＣＨ₂ＣＨ＝ＣＨ₂である；（９）IV-１およびIV-４は２つの成分の１．５ないし１．０混合物である。該治療は、栄養因子、好ましくは、ニューロトロフィンファミリーのメンバー、最も好ましくは神経成長因子（ＮＧＦ）と組み合わせてなし得る。該方法は、ハンチントン舞踏病を治療するのに用いることができる。好ましい態様において、本発明は、式（II）または（III）：によって表されるＫ−２５２ａの機能性誘導体の治療量を哺乳動物、例えば、ヒトに投与することによって、後根神経節神経細胞の機能を高める方法をその要旨とし、該式（II）または（III）の誘導体は以下の置換基を有する。（１）Ｒ²は水素、但し、化合物II-２０およびII-３２の場合はＲ²＝Ｂｒである；（２）Ｚ¹およびＺ²は共に水素であるか、または、示した場合は一緒になって酸素を表す；（３）ＸおよびＲは一緒になって連結基を形成する。該治療は、栄養因子、好ましくは、ニューロトロフィンファミリーのメンバー、最も好ましくは神経成長因子（ＮＧＦ）と組み合わせてなし得る。好ましい態様において、本発明は、式（II）：［式中、Ｒ¹およびＲ²は各々Ｈ、ＸはＣＯ₂ＣＨ₃、ＲはＯＨであって、Ｚ¹およびＺ²は各々Ｈを意味する］によって表されるＫ-２５２ａの治療量を哺乳動物、例えば、ヒトに投与することにより、該哺乳動物のコリン作動性ニューロンの機能を高める方法をその要旨とする。該治療は、栄養因子、好ましくは、ニューロトロフィンファミリーのメンバー、最も好ましくは神経成長因子（ＮＧＦ）と組み合わせてなすことができ、また、ハンチントン舞踏病を治療するのに用いることができる。好ましい態様において、本発明は、式（II）、（III）または（IV）：によって表されるＫ-２５２ａまたはＫ-２５２ａの機能性誘導体の治療量を哺乳動物、例えば、ヒトに投与することによって、線条体神経細胞の生存性および／または機能を高める方法をその要旨とするが、式（II）、（III）、または（IV ）の化合物は以下の置換基を有する。［式中、以下の置換基がある：（１）Ｚ¹およびＺ²は共に水素であるか、または示す場合は一緒になって酸素を表す；（２）Ｒ³はＣＨ₂-ＣＨ＝ＣＨ₂；Ｒ⁴はＨである。該治療は、栄養因子、好ましくは、ニューロトロフィンファミリーのメンバー、最も好ましくは神経成長因子と組み合わせてなすことができ、また、ハンチントン舞踏病を治療するのに用いることができる。本発明の他の要旨および利点は、以下のその好ましい具体例の記載および請求の範囲から明らかとなるであろう。好ましい具体例の記載まず、図面を説明する。図面Ｆig.１は、ＰＣ-１２細胞における基底オルニチンデカルボキシラーゼ（ＯＤＣ）活性に対するＫ-２５２ａ、１，６-ヘキサメチレン-ビス-（カルバミルスタウロスポリン）（ＨＢＣＳ）およびスタウロスポリンの効果を示すグラフである。Ｆig.２は、ＰＣ-１２細胞におけるＮＧＦ-剌激性ＯＤＣ活性に対するスタウロスポリン、ＨＢＣＳおよびＫ−２５２ａの効果を示すグラフである。Ｆig.３は、ＰＣ-１２細胞におけるＯＤＣ活性に対するＨＢＣＳのＮＧＦ-強化効果を示すグラフである。Ｆig.４は、ラット胚脊髄培養におけるコリンアセチルトランスフェラーゼ（ＣhＡＴ）比活性に対するＫ-２５２ａの効果を示すグラフである。Ｆig.５は、ラット胚脊髄培養におけるＣhＡＴ活性に対するＫ-２５２ａの経時的な効果を示すグラフである。Ｆig.６は、ニワトリ胚後根神経節ニューロンの生存性に対するＫ-２５２ａの効果を示すグラフである。Ｆig.７は、ニワトリ胚後根神経節ニューロンの生存性に対するＫ-２５２ａ機能性誘導体の効果を示すグラフである。Ｆig.８は、ラット胚脊髄培養におけるＣhＡＴ活性に対するＫ-２５２ａ機能性誘導体の効果を示すグラフである。Ｆig.９は、ラット海馬へのカイニン酸塩（kainate）誘導性の障害に対するＫ -２５２ａの効果を示すグラフである。Ｆig.１０は、ラット海馬におけるカイニン酸塩誘導性のスペクトリンのタンパク質加水分解に対するＫ-２５２ａの効果を示すグラフである。Ｆig.１１は、該海馬へのカイニン酸塩誘導性の障害に対するＨＢＣＳの効果を示すグラフである。Ｆig.１２は、ラット海馬におけるカイニン酸塩誘導性のスペクトリンのタンパク質加水分解に対するＫ-２５２ａアナログの効果を示すグラフである。Ｆig.１３は、ラット脊髄培養におけるＣｈＡＴ活性に対するＫ-２５２ａ誘導体の相対活性を示す表である。Ｆig.１４は、ニワトリ後根神経節培養におけるニューロンの生存性に対するＫ-２５２ａ誘導体の相対活性を示す表である。Ｆig.１５は、Ｋ-２５２ａの存在下の線条体ニューロンの生存性を示すグラフである。Ｆig.１６は、Ｋ-２５２ａの存在下の線条細胞の生存性を示すグラフである。Ｆig.１７は、Ｋ-２５２ａの存在または不存在下にて培養した線条体ニューロンの光学顕微鏡写真である。Ｆig.１８は、ラット線条体培養におけるニューロン生存性に対するＫ-２５２ａ誘導体の相対活性を示す表である。Ｆig.１９は、出発化合物Ｃからの化合物Ｈの合成を示す。Ｆig.２０は、出発化合物Ｊからの化合物II-４５の合成を示す。スタウロスポリン誘導体本発明は、スタウロスポリンの新規なビス-Ｎ-置換誘導体、ならびに、神経病、特に、障害され、損傷し、軸索変性が進行しているか、死滅する危険性が上昇しているかのいずれかの神経細胞、あるいは損われたコリン作動活性により特徴付けられる疾患についての治療剤としてのその使用に関する。これらの疾患は、興奮性アミノ酸により誘導されるものを包含する。これらの新規な誘導体の治療剤としての使用は、誘導体単独の使用、および、栄養因子（好ましくは、ニューロトロフィンファミリーのメンバー、最も好ましくは神経成長因子、ＮＧＦ）の外因的投与と組み合わせた該誘導体の使用を包含する。本発明の範囲内の化合物は、式： [Stau]-N(CH3)-W-N(CH3)-[Stau] (I) ［式中、［Ｓtau］は、式：の残基を表し、Ｗはビス（カルバミル）またはビス（チオカルバミル）基： -C(=Y)-NH-W'-NH-C(=Y)- を表し、ここで、Ｗ’は２-２０個の炭素原子のヒドロカルビレン基であって、ＹはＯまたはＳを意味する］によって表すことができる。Ｗ’は、好ましくは、非置換の、または１-３個の炭素原子の１-３個のアルキル基で置換された２-１０個の炭素原子のアルキレン基；非置換の、または１-３個の炭素原子のアルキル基、塩素原子もしくは臭素原子の１-３個で置換された６-１２個の炭素原子のアリーレン基である。Ｗ’は、特に好ましくは、ヘキサメチレンおよび１，４-フェニレンである。Ｙは、好ましくはＯである。式（Ｉ）の化合物は、カルバメートおよびチオカルバメートの製造に関する当該分野において公知の方法により製造できる。好ましくは、該化合物は、ビス- ジイソシアネートまたはビス-ジイソチオシアネートとスタウロスポリンとを反応させて、式（Ｉ）（式中、各々、Ｙ＝ＯまたはＹ＝Ｓ）の化合物を得ることによって製造できる。用いるのに適する中間体ビス-ジイソシアネートおよびビス-ジイソチオシアネートは：１，６-ジイソシアネートヘキサントルエン-２，６-ジイソシアネートベンゼン-１，２-ジイソシアネート２-メチル-１，５-ジイソシアネートペンタンナフタレン-２，６ジイソシアネート１，６-ジイソチオシアネートヘキサン１，４-ジイソチオシアネートブタントルエン-２，４-ジイソシアネートベンゼン-１，４-ジイソシアネート１，２-ジイソシアネートエタンナフタレン-１，５-ジイソシアネート１，５-ジイソシアネートペンタンベンゼン-１，４-ジイソチオシアネート２-メチル-１，５-ジイソチオシアネートペンタンを包含する。イソシアネートおよびイソチオシアネートの製造のレビューについては、リヒターおよびウルリッヒによる刊行物を参照されたい（リヒター（Richter）およびウルリッヒ（Ulrich）「ザ・ケミストリー・オブ・サイネーテス・アンド・ゼア・チオ・デリバティブズ（The Chemistry of Cyanates and Their Thio Deriv atives）」、第２版、ウイリー（Wiley）、ニュー・ヨーク（New York）、１９７７年）。該化合物は、好ましくは、ホスゲン（Ｙ＝Ｏ）またはチオホスゲン（Ｙ＝Ｓ）と対応するジアミンとの反応により製造する。別製法を用いることもできる。例えば、エチレン尿素とホスゲンとを反応させ、続いて加熱することにより１，２-ジイソシアネートエタンを製造することができる。Ｋ-２５２ａ誘導体また、本発明は、障害され、損傷し、軸索変性が進行しているか、死滅の危険にあるニューロンにより特徴付けられる、ある種の神経病または障害における治療剤としての、Ｋ-２５２ａの特定の機能性誘導体の使用にも振向される。該機能性誘導体は、単独で、または栄養因子（好ましくは、ニューロトロフィンファミリーのメンバー、最も好ましくは神経成長因子、ＮＧＦ）と組み合わせて投与することができる。Ｋ-２５２ａの「機能性誘導体」とは、例えば、神経細胞生存性を促進する能力、または神経繊維（例えば、軸索）成長を促進する能力、またはコリン作動性神経細胞機能を高める能力、または感覚細胞（例えば、後根神経節神経細胞）の機能を高める能力、または線条体ニューロンの機能および／または生存性を高める能力のごとき、本明細書中で神経保護活性（neuroprotectiv e activity）と定義する所望の生物学的活性を有する、該分子の修飾形態を定義する。かかる分子修飾は、分子の溶解性、吸着性、（例えば、血液脳関門および細胞膜を通っての）輸送性、生物学的半減期等を改善することができる。別法として、あるいはさらに、ある種の基は、当該分子の毒性を減じることができ、あるいは、当該分子の望ましくないいずれの副作用も除去または緩和することができる。本発明の範囲内の化合物は、本発明の範囲内の化合物を示す後記の表４中の置換基を有する、以下の式（II）［以下、化合物（II）という］、式（III）［以下、化合物（III）という］、および式（IV）［以下、化合物（IV）という］：によって表すことができる。本発明のＫ-２５２ａの機能性誘導体は、当業者に公知の方法を用いる化学合成によってデ・ノボ（de novo）で製造し得る。例えば、化合物IIの製造に用いる方法は、ムラカタ（Murakata）ら（出典明示して本明細書の一部とみなす米国特許第４，９２３，９８６号）により記載されている。化合物IIIの製造に用いる方法は、ムーディー（Moody）ら（ジャーナル・オブ・オーガニック・ケミストリー（J.Org.Chem.）第５７巻：２１０５-２１１４頁（１９９２年））；ステグリッヒ（Steglich）ら（アンギュ・ケム・イント・エド・イングル（Angew.Chem.Int.Ed.Engl.）第１９巻：４５９-４６０頁（１９８０年）；ナカニシ（Nakanishi）ら（ジャーナル・オブ・アンチバイオティクス（J.Antibiotics）第３９巻：１０６６-１０７１頁（１９８６年））；ならびに、特願昭６０-２９５１７２号（１９８５年）により記載されている。さらに、特願昭６０-２９５１７３号（１９８５年）中に化合物II-１、９、１２および１５；特願昭６２-３２７８５８号（１９８７年）中に化合物II-２、３、４、２４、２５および２６；特願昭６２-３２７８５９号（１９８７年）中に化合物II-２０；および、明治製菓（株）（Meiji Seika Kaisha Ltd.）によって、特願昭６０-２５７６５２号（１９８５年）中に化合物II-１０の方法が記載されている。表４：Ｋ-２５２ａ⁽¹⁰⁾の機能性誘導体（１）Ｚ¹およびＺ²は共に水素であるか、または示す場合は、一緒になって酸素を表す。（２）ＮＨ-アミノ酸連結は、当該アミノ酸のカルボキシル基を介してのアミド結合である。（３）ＸおよびＲは一緒になって連結基を形成する。（４）Ｒ³はＣＨ₂ＣＨ＝ＣＨ₂；Ｒ⁴はＨである。（５）Ｒ³およびＲ⁴は、各々Ｈである。（６）Ｒ³およびＲ⁴は、各々ＣＨ₂ＣＨ＝ＣＨ₂である。（７）化合物は、塩酸塩の形態である。（８）Ｒ³はＨであって、Ｒ⁴はＣＨ₂ＣＨ＝ＣＨ₂である。（９）IV-１およびIV-４は、２つの成分の１．５ないし１．０混合物である。（１０）Ｋ-２５２ａ自体については、Ｒ¹＝Ｒ＝Ｈ、Ｘ＝ＣＯ₂ＣＨ₃、Ｒ＝ＯＨ、Ｚ¹ およびＺ²＝Ｈである。また、本発明は、前記に供した式（II）および表４（脚注１０）に示した置換基によって表されるＫ-２５２ａの治療量を投与することにより、コリン作動性ニューロンの機能を高める方法も包含する。この化合物は、当該分野にて記載されている方法によって製造する（マツダ（Matsuda）ら、米国特許第４，５５４，４０２号；カセ（Kase）ら、ジャーナル・オブ・アンチバイオティクス（J.An tibiotics）第３７巻：１０５９-１０６５頁（１９８６年）参照）。「コリン作動性ニューロンの機能を高める」とは、コリン作動性神経細胞の生存性、および／または神経繊維（例えば、軸索）の成長を促進すること、および／または神経細胞のコリン作動活性を高めることを意味する。Ｋ-２５２ａは、栄養因子、好ましくはニューロトロフィンファミリーのメンバー、最も好ましくは神経成長因子（ＮＧＦ）と共に、あるいはそれ無しで投与することができる。化合物の用途以下にさらに詳細に記載するように、本発明は、単独で、またはＮＧＦのごとき栄養因子と組み合わせてのＫ-２５２ａの機能性誘導体または式Ｉの化合物の、特に、障害され、損傷し、軸索変性が進行しているか死滅の危険性が上昇している神経細胞により特徴付けられるか、損われたコリン作動活性により特徴付けられる神経病の治療剤としての、新規な用途を提供する。これらの疾病としては、興奮性アミノ酸により誘導されるものを包含する。栄養因子との組合せも含む本発明の化合物の生物活性は、（全て以下に詳記する）培養ＰＣ-１２細胞・オルニチンデカルボキシラーゼ・アッセイ、培養脊髄・コリンアセチルトランスフェラーゼ・アッセイ、培養後根神経節ニューロン・生存アッセイ、培養線条体ニューロン・生存アッセイ、またはイン・ビボ・興奮性毒素神経保護・アッセイにより簡便に検定し得る。かくして、本発明の化合物は、前記した、神経病あるいは神経細胞の死滅または不全の危険性が高まることにより特徴付けられる障害に苦しむヒトまたは他の哺乳動物への投与に有用である。これらの神経病および障害としては：アルツハイマー病；筋萎縮性側索硬化症を含む運動ニューロン疾患；パーキンソン病；脳卒中または他の虚血性障害；ハンチントン舞踏病；ＡＩＤＳ痴呆；癲癇；脳または脊髄の振盪または穿通損傷；および末梢神経障害を包含するが、これらに限定されるものではない。本明細書中にて提供する化合物は、医薬上許容される非毒性の賦形剤および担体と混合することにより医薬組成物に製剤化することができる。前記したごとく、かかる組成物は、非経口投与で用いるために、特に液状の溶液または懸濁液の形態に；経口投与には、特に錠剤またはカプセル剤の形態に；または鼻腔内投与には、特に粉末剤、点鼻液またはエアロゾールの形態に製造することができる。該組成物は、都合よくは、単位用量形態にて投与でき、例えば、レミントンズ・ファーマシューティカル・サイエンシーズ（Remington's Pharmaceutical Sci ences）（マック・パブ社（Mack Pub.Co.）、ペンシルバニア州、イーストン（E aston,ＰＡ）（１９８０年））に記載されているごとく医薬分野でよく知られた方法のいずれによっても製造できる。非経口投与用の製剤には、通常の賦形剤である滅菌水またはセーライン、ポリエチレングリコールのごときポリアルキレングリコール、野菜起源の油、水素化ナフタレン等を含有させることができる。特に、生適合性、生分解性のラクチド重合体、ラクチド／グリコール酸共重合体、またはポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン共重合体は、有効成分化合物の放出を制御する有用な賦形剤となり得る。これらの有効成分化合物のための他の潜在的に有用な非経口デリバリーシステムとしては、エチレン-酢酸ビニル共重合体粒子、浸透圧ポンプ、移植可能な注入システムおよびリポソームを包含する。吸入投与用の製剤は、例えば、ラクトースを賦形剤として含有させるか、または、例えばポリオキシエチレン-９-ラウリルエーテル、グリココレートおよびデオキシコレートを含有する水溶液、または点鼻液形態にて投与する油性溶液とするか、または鼻腔内に適用するゲルとすることができる。非経口投与用の製剤には、バッカル投与用のグリココレート、直腸投与用にメトキシサリチレート、または膣投与用にはクエン酸を含有させることもできる。本発明の該物質は、薬剤中にて単独の有効剤として用いることができるか、または、例えば、末梢神経障害のごとき神経の疾病または不全におけるニューロン生存性または軸索の成長を容易ならしめる他の成長因子のような、他の有効成分と組み合わせて用いることもできる。治療組成物における本明細書中に記載した該化合物の濃度は、投与すべき該薬剤の用量、用いる該化合物の化学的な特性（例えば、疎水性）、および投与経路を含めた多くの要因に応じて変動するであろう。一般的に、本発明の化合物は、約０．１ないし１０％ｗ／ｖの非経口投与用の化合物を含有する水溶性生理緩衝液中にて提供できる。典型的な用量範囲は、約１μｇ／ｋｇ体重／日ないし約１ｇ／ｋｇ体重／日；好ましい用量範囲は約０．０１ｍｇ／ｋｇ体重／日ないし１００ｍｇ／ｋｇ／体重／日である。投与すべき薬剤の好ましい用量は、該神経病の型および進行の程度、個々の患者の総じての健康状態、選択した化合物の相対的な生物学的効率、該化合物賦形剤の製剤、およびその投与経路のごとき変数に依存するようである。以下の実施例により本発明をさらに説明する。これらの実施例は、添付した請求の範囲のみによって決定される本発明の範囲を限定するものと解釈されるべきでない。実施例１１，６-ヘキサメチレン-ビス-（カルバミルスタウロスポリン）（ＨＢＣＳ）（硫酸マグネシウム無水和物上で乾燥させた）エチル酢酸１．００ｍｌ中のスタウロスポリン（カミヤ・バイオメディカル社（Kamiya Biomedical Company）、カリフォルニア州、サウザンド・オークス（Thousand Oaks,CA））１．０ｍｇの溶液（２．１５マイクロモル）を、乾燥した酢酸エチル１．０ｍｌ中のヘキサメチレン-ビス-イソシアネート１０．７５ｍｇの溶液１７μｌ（１．０８マイクロモル）で処理した。コハク色ガラス製反応バイアル中の該反応混合物を、室温にて２日間放置した。６００μｇ重量の結晶性沈殿物を分離した。その組成を高速原子衝撃質量分析（ＦＡＢ-ＭＳ）より確認した。Ｍ＋Ｈ⁺計算値＝１１０２Ｍ＋Ｎａ⁺計算値＝１１２４実測値＝１１０２実測値＝１１２４この生成物および続いて記載する全てのスタウロスポリン誘導体は、遮光性のガラス製バイアル中で保存した。実施例２ｐ-フェニレン-ビス-（カルバミルスタウロスポリン）（ＰＢＣＳ）乾燥した酢酸エチル１．００ｍｌ中のスタウロスポリン１．０ｍｇの溶液（２．１５マイクロモル）を、乾燥した酢酸エチル１．００ｍｌ中のｐ-フェニレンジイソシアネート（トランス・ワールド・ケミカルズ社（Trans World Chemical s）社Ｐ１５８６-１）３．８３ｍｇから調製した溶液４５μｌ（１．０８マイクロモル）で処理した。該反応混合物を一晩放置した。白色沈殿物が生じた。次いで、石油エーテル０．５ｍｌを添加した。該混合物を、真空乾燥した焼結-ガラス漏斗へ濾過した。合計０．９０ｍｇの結晶性生成物を収集し、高速原子衝撃質量分析によりｐ-フェニレン-ビス-（カルバミルスタウロスポリン）であることと同定された。Ｍ＋Ｈ⁺計算値＝１０９３実測値＝１０９３調製例ＡＮ-フェニルカルバミルスタウロスポリン（ＰＣＳ）文献：米国特許第５，０９３，３３０号乾燥した酢酸エチル１．５０ｍｌ中のスタウロスポリン２．０ｍｇ（４．３０マイクロモル）の溶液を、乾燥した酢酸エチル０．９９０ｍｌ中のフェニルイソシアネート１０μｌの溶液４６８μｌ（４．３０マイクロモル）で処理した。該溶液を一晩放置し、ヘキサデ３ｍｌを少量ずつ添加した。２．３９ｍｇ重量の無色の結晶を得た。酢酸エチル１ｍｌおよび石油エーテル２ｍｌからこの生成物を再結晶した後に、結晶性生成物１．７５ｍｇを単離した。同様な調製から、Ｎ-フェニルカルバミルスタウロスポリンとしての生成物の組成がＦＡＳ-ＭＳによって確認された。Ｍ＋Ｈ⁺計算値＝５８６実測値＝５８６調製例ＢＮ-フェニルチオカルバミルスタウロスポリン（ＰＴＣＳ）酢酸エチル１．００ｍｌ中のスタウロスポリン１．０ｍｇ（２．１５マイクロモル）の溶液を、酢酸エチル１．００ｍｌ中のフェニルイソチオシアネート１０ μｌのストック溶液２６μｌで処理した。このアリコートは、フェニルイソチオシアネート２９０μｇ（２．１５マイクロモル）を含有していた。該反応混合物を２５℃に一晩維持し、次いでヘキサデ２．０ｍｌを添加した。得られた結晶性生成物を濾別し、ヘクサデで洗浄し、アルゴンガス気流で乾燥した。ＦＡＢ-ＭＳ計算値：Ｍ＋Ｈ⁺＝６０２実測値＝６０２調製例ＣＮ-エチルカルバミルスタウロスポリン（ＥＣＳ）酢酸エチル９００μｌ中のスタウロスポリン０．９ｍｇ（１．９３マイクロモル）の溶液を、１．９３マイクロモルのエチルイソシアネート（乾燥した酢酸エチル２．００ｍｌ中のエチルイソシアネート９．０５ｍｇのストック溶液３０．２μｌ）で処理した。該反応混合物を２５℃に一晩維持し、ヘクサデ２．０ｍｌを添加した。結晶性生成物を分離し、乾燥した。ＦＡＢ-ＭＳ計算値：Ｍ＋Ｈ⁺＝５３８Ｍ＋Ｎａ⁺＝５６０実測値＝５３８＝５６０実施例３化合物II-４化合物Ａ（９６２ｍｇ，２mmol）を、テトラヒドロフラン３０ｍｌおよびメタノール１０ｍｌの混合液に溶解し、次いで、氷冷下に、ホウ水素化ナトリウム７６０ｍｇ（２０mmol）をそれに添加し、続いて同温度にて４時間、さらに室温にて１２時間撹拌した。それに３Ｎ塩酸を添加した後に、該溶液を塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウム上で乾燥し、続いて該溶媒を蒸発させた。該残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム／メタノール＝９８／２）によって精製して８８２ｍｇの化合物II-４を得た（収率９７％）。融点：１３０-１４０℃ ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＤＭＳＯ-ｄ₆）：δ（ｐｐｍ）：２．０３２（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ＝５．０，１３．９Ｈｚ），２．２３１（３Ｈ，ｓ），２．９６７（３Ｈ，ｓ），３．６０９（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ＝７．６，１３．４Ｈｚ），３．９５９（２Ｈ，ｍ），５．０００（Ｈ，ｓ），５．２６８（１Ｈ，ｔ，Ｊ＝５．３Ｈｚ），７．０６５（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ＝４．９，７．３Ｈｚ），７．２５４-８．０３８（７Ｈ，ｍ），８．５６５（１Ｈ，ｓ），９．２０６（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝７．８Ｈｚ）実施例４化合物II-１４化合物Ｂ（３９３ｍｇ、０．９mmolを、テトラヒドロフラン２５ｍｌに溶解し、次いで、氷冷下にて、カルボベンゾキシ-Ｌ-セリン３０９ｍｇ（１．３５mmol ）、Ｎ-オキシスクシンイミド１５６ｍｇ（１．３５mmol）、４-メチルモルホリン０．１ｍｌ（０．９mmol）およびジシクロヘキシルカルボジイミド２７９ｍｇ（１．３５mmol）を含有するテトラヒドロフラン３ｍｌを添加し、続いて１２時間撹拌した。該反応混合物を濾過し、該溶媒を蒸発させた。その残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム／メタノール＝９９／１）によって精製して４２９ｍｇの化合物Ｃを得た（収率７２％）。融点：１８８-１９３℃ ＳＩＭＳ（ｍ／ｚ）：６６０（Ｍ＋１）⁺ 化合物Ｃ（３９９ｍｇ）を、ジメチルホルムアミド１０ｍｌに溶解し、次いで、炭素上の１０％パラジウム３００ｍｇを添加し、続いて水素気流下５０℃にて７時間撹拌した。該反応混合物をセライトを通して濾過し、該溶媒を蒸発させた。その残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム／メタノール／２８％水酸化アンモニウム＝９０／１０／１）によって精製し、得られた生成物をテトラヒドロフラン５ｍｌに溶解し、続いて１．７Ｎ塩酸／酢酸エチル５ｍｌおよびジエチルエーテル１０ｍｌを添加した。濾過によって該溶液から沈殿物を分離して、２３４ｍｇの化合物II-１４を得た（収率６９％）。融点：＞３００℃ ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＤＭＳＯ-ｄ₆＋Ｄ₂Ｏ）δ（ｐｐｍ）：１．９２-２．２８（１Ｈ，ｍ），２．２０（３Ｈ，ｓ），２．８４-３．１２（７Ｈ，ｍ），３．４０-４．２０（５Ｈ，ｍ），５．０４（２Ｈ，ｓ），６．９８（１Ｈ，ｍ），７．２４ -８．２０（７Ｈ，ｍ），８．７６（１Ｈ，ｂｒｓ），９．２２（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝８Ｈｚ）ＳＩＭＳ（ｍ／ｚ）：５２７（Ｍ＋２）⁺ 実施例５ＰＣ-１２細胞は、ラット副腎髄質の腫瘍より生じたクローン化集団であって、ＮＧＦの作用を研究するための極めて有用で広範に研究されたモデルであることが判明している（グロフ（Guroff）、セル・カルチャー・イン・ザ・ニューロサイズ（Cell Culture in the Neurosciences）、プレナム・パブリッシング・コーポレーション（Plenum Publishing Corporation）、１９８５年、第８章、２４５-２７２頁）。これらの細胞に対するＮＧＦの特に強い１つの作用は、オルニチンデカルボキシラーゼ（ＯＤＣ）活性の急激な剌激、すなわち２００ｎＭのＫ-２５２ａによって遮断されると報告された効果（コイズミ（Koizumi）ら、１９８８年）である。本実施例の実験においては、（ジイ・グロフ博士（Dr.G.G uroff）から入手した）ＰＣ-１２細胞を６×１０⁴細胞／ｃｍ²の密度にて４８- ウェルプレート中で培養し、薬物ビヒクル（０．５％ＤＭＳＯ）、スタウロスポリン、またはＨＢＣＳと共にインキュベートした。Ｋ-２５２ａおよびスタウロスポリンは、カミヤ・バイオメディカル（Kamiya Biomedical）社から商業的に入手可能である。薬物添加４時間後に、ヒュッフ（Huff）らにより記載されているごとくに（ヒュッフ（Huff）ら、ジャーナル・オブ・セル・バイオロジー（J. Cell Biol.）第８８巻：１８９-１９８頁、１９８１年）、ＯＤＣアッセイのために該細胞を収穫した。これら３つの全ての化合物では、ＯＤＣ活性が誘導された（すなわち、上昇した）が、活性および効率において顕著な相違があった（Ｆig.１）。Ｋ-２５２ａは用量依存的にＯＤＣ活性を誘導し、効果は２ｎＭで認められ、２００ｎＭで最大まで上昇した（３６．３倍誘導）。スタウロスポリンの効果は、同様に２ｎＭで認められたが、２０ｎＭでピークに達し（３４．７倍誘導）、２００ｎＭでは顕著に下降した。ＨＢＣＳも同様に２ｎＭで誘導したが、より高濃度においては効果が上昇しなかった。従って、その最大効率は他の２つの化合物のそれよりもはるかに低かった（６．５倍誘導）。もう１つの実験において、ＰＴＣＳ、ＰＣＳおよびＥＣＳ（７）ＰＣ-１２細胞ＯＤＣ活性に対する効果をＫ-２５２ａのそれと比較した。２００ｎＭ濃度において、Ｋ-２５２ａの活性を１００％と表すと、ＰＴＣＳはＫ-２５２ａ活性の７１．４％を示し、一方ＰＣＳおよびＥＣＳは、各々、Ｋ-２５２ａ活性の８８．９％および６１．９％を示した。しかしながら、プロテインキナーゼＣ阻害剤Ｈ-７は、プロテインキナーゼＣ活性を阻害することが知られている濃度（ナカダテ（Nakadate）ら、バイオケミカル・ファーマコロジー（Bi ochem.Pharmacol.）第３７巻：１５４１-１５４５頁、１９８８年）である３０ μＭではＯＤＣ活性を誘導しなかった。前記した濃度の該化合物の存在または不存在下に、１０ｎｇ／ｍｌ細胞培地のＮＧＦを添加し、続いて前記したごとく該細胞のＯＤＣアッセイを行うことにより、Ｋ-２５２ａ、スタウロスポリンおよびＨＢＣＳのＮＧＦ生物活性を強化および／または阻害する能力を評価した（Ｆig.２）。ＮＧＦのこの濃度は、当該化合物の強化または阻害効果が検出できるように中程度の誘導を供するために選択した。２００ｎＭにおいてＫ-２５２ａは、コイズミ（Koizumi）らにより１９８８年に報告されているごとく、ＯＤＣのＮＧＦ誘導を阻害したが、驚くべきことには、さらに低濃度（２ｎＭおよび２０ｎＭ）においても該誘導を強化した。２ｎＭにおいてのスタウロスポリンもまた、ＮＧＦによる該誘導を強化したが、この効果はさらに高濃度（２０ｎＭおよび２００ｎＭ）においては失われた。対照的に、ＨＢＣＳは、試験した全ての濃度でＮＧＦの該効果を強化した。この顕著な効果を、ＨＢＣＳ単独の適度なＯＤＣ−誘導効果に比して、Ｆig.３に示す。実施例６（以下に記載するごとき）標準的な方法によりラット胎児から調製した解離脊髄培養にて、コリンアセチルトランスフェラーゼ（ＣhＡＴ）活性に対するＫ-２５２ａの効果を検定した。ＣhＡＴは、神経伝達物質であるアセチルコリンの合成を触媒する酵素であって、コリン作動性ニューロンに特異的な生化学マーカーでもある。脊髄においては、大部分のコリン作動性ニューロンは運動ニューロンである。かくして、この酵素のアッセイを、コリン作動性ニューロンの生存性および／またはこの酵素の調節に対する因子（または因子群）の効果の指標として用いることができる。細胞が基体に付着し得るよう平板培養してから２-３時間インキュベートた後に、示した濃度にてＫ-２５２ａを培養に添加した。ＣhＡＴ活性は培養中で４８時間後に測定した。その結果脊髄培養中のＫ-２５２ａは、用量依存的にＣhＡＴ活性を上昇させ、２００-３００ｎＭにて最大効率に達した（２-ないし３-倍上昇）（Ｆig.４）。さらに高濃度では、ＣhＡＴ活性が低下する結果となった（Ｆ ig.４）。７日間までにわたるさらに長期の培養インキュベート期間では、ＣhＡＴ活性の基底野レベルが下降するため、ＣhＡＴ活性は４-ないし５-倍上昇した（Ｆig.５）。この培養系においては、基本（対照）条件では経時的に変性および死滅する運動ニューロン数が増加した（マクマナマン（McManaman）ら、デベロップメンタル・バイオロジー（Developmental Biol.)第１２５巻：３１１-３２０頁、１９８８年）。Ｆig.４およびＦig.５双方に示す結果は、培養開始日にＫ−２５２ａを単独で適用した結果であり、脊髄コリン作動性ニューロンの生存性および／または該酵素自体の調節に対する効果が持続したことを示している。方法：ラット胎児脊髄細胞の解離培養での実験は、記載されているごとく一般的に行った（スミス（Smith）ら、ジャーナル・オブ・セル・バイオロジー（J.Cel l Biol.）第１０１巻：１６０８-１６２１頁、１９８５年）。組織のトリプシン解離を用いた当業者に公知の標準的技術により、１４日胚齢のラットから摘出した脊髄から解離細胞を調製した（スミス（Smith）ら、１９８５年）。細胞を、無血清Ｎ２培地中のポリ-１-オルニチンで被覆したプラスチック組織培養ウェルに６×１０⁵細胞／ｃｍ²にて撒き（平板培養し）、５％ＣＯ₂／９５％空気の湿度調整下３７℃にて（ボッテンシュタイン（Bottenstein）およびサト（Sato）、プロシーディングス・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンシーズ・イン・ユー・エス・エイ（ＰＮＡＳＵＳＡ）第７６巻：５１４-５１７頁、１９７９年）、４８時間インキュベートた。イシダ（Ishida）およびデグチ（Deguchi）（ジャーナル・オブ・ニューロサイエンス（J.Neurosci.）第３巻：１８１８-１８２３頁、１９８３年）、ならびにマクマナマン（McManaman）ら（前掲、（１９８８年））に準じて、フォナム（Fonnum）の方法（ジャーナル・オブ・ニューロケミストリー（J.Neur ochem.）第２４巻：４０７-４０９頁、１９７５年）の変法を用いてＣhＡＴ活性を測定した。活性は、ビシンコニン酸（bicinchonicic acid）／Ｃｕ⁺⁺反応（ＢＣＡタンパク質アッセイ試薬（ＢＣＡ protein assay reagent）、イリノイ州、ロックランド、ピース（Pierce,Rockland,I1）により測定した全タンパク質に対して補正した。実施例７Ｋ-２５２ａの１００種を超える機能性誘導体を脊髄ＣｈＡＴアッセイで試験しそれらの相対効率を測定した。Ｆig.８に示すデータは、３００および３０ｎＭで試験したオリジナルの機能性誘導体のうち２８種が３００ｎＭにてＣhＡＴ活性を有意に上昇させたことを示している。１つの機能性誘導体、化合物II-２１も３０ｎＭにて活性を有していた（基底野レベルに対して３０％のＣhＡＴ活性の上昇）。この化合物は、３０ｎＭにてＣhＡＴ活性をかなり上昇させるものがＫ-２５２ａまたは残りのアナログのうちにないため、これらよりさらに強力であった。Ｆig.１３は、ラット脊髄培養において、有意にＣhＡＴ活性を上昇させるオリジナルの２８種のＫ-２５２ａ誘導体、ならびに３０種のさらなる誘導体（化合物II-２９ないしII-３４、II-３６ないしII-５６、およびIV-１ないしIV-３の全て）の効果を示す。実施例８Ｋ-２５２ａならびに５０種の機能性誘導体を後根神経節細胞の生存性を促進するそれらの能力につき評価した。細胞生存性は、生育可能な染料のアナログであってフルオレセイン二酢酸であるカルセインＡＭ（calcein ＡＭ）の取込みにより測定した。カルセインは、生存細胞により取り込れ、細胞内で、生存細胞の無傷の膜により保持される蛍光性の塩に分解される。生存ニューロンの顕微鏡計数は、フルオロメーター生存率アッセイで得た相対的蛍光値に直接相関する。かくして、この方法は、所与の培養の全細胞集団中の生存細胞の、信頼性がありかつ定量的な測定を提供した。後根神経節ニューロン生存性は、濃度依存的にＫ−２５２ａにより促進された；約１００ｎＭで最大活性が観察された（Ｆig.６）。試験した５０種のアナログのうち２４種は、ＤＲＧニューロン生存性を促進するのに活性であり、そのうち２２種についてＦig.７に示す。これら全てのアナログは、脊髄ＣhＡＴ活性を上昇させるのにおいても活性であった（実施例５、Ｆig.８参照）。オリジナルの２２種ならびに２種のさらなる活性なアナログ（II-３０、II-３２）をＦig. １４に示す。２４種の活性な機能性誘導体で刺激された後根神経節ニューロンの顕微鏡観察は、神経繊維の成長も同様に促進されることを示した。方法：後根神経節を８日胚齢のニワトリの胚から摘出し、続いてのディスパーゼ（Dispase）（中性プロテアーゼ、コラボレイティブ・リサーチ（Collaborati ve Research）社）解離により解離細胞を調製した。ニューロンを、ポリ-Ｌ-オルニチンおよびラミニンで被覆した９６ウェルプレートに低密度（１．８×１０⁴ 細胞／ｃｍ²）にて撒いた。細胞は、５％ＣＯ₂／９５％空気、湿度調整下３７ ℃にて、無血清Ｎ２培地中で４８時間培養した（ボッテンシュタイン（Bottenst ein）およびサト（Sato）、１９７９年）。細胞生存性は、前記した生存フルオロメーターアッセイを用いて、４８時間にて計測した。実施例９興奮性アミノ酸であるカイニン酸（カイニン酸塩）の齧歯動物の脳の空洞への直接的な浸出は、海馬の錐体細胞のニューロン変性を起こす。このニューロンの死滅は、細胞骨格タンパク質であるスペクトリンのタンパク質加水分解の著しい上昇により特徴付けられる。スペクトリン分解生成物は、カイニン酸塩投与後２４時間以内に海馬ホモジネート中で測定できる。スペクトリンのタンパク質加水分解の程度は、海馬の錐体細胞のニューロンの死滅の程度と高い相関があり（シーマン（Ｓｉｍａｎ）ら、ジャーナル・オブ・ニューロサイエンス（J.Neurosci. ）第９巻：１５７９-１５９０頁、１９８９年）、従って、スペクトリンのタンパク質加水分解は、興奮性アミノ酸-誘導性のニューロン変性の優れた生化学マーカーである。内因性興奮性アミノ酸の過剰な放出は、脳卒中および他の虚血性障害；アルツハイマー病；筋萎縮性硬化症を含む運動神経疾患；パーキンソン病；ハンチントン舞踏病；ＡＩＤＳ痴呆；癲癇；ならびに脳または脊髄の振盪および穿通損傷を含めた多くの神経疾患および不全の病因と関連があるとされてきた。Ｆig.９は、海馬におけるカイニン酸塩-誘導性ニューロン変性に対するＫ-２５２ａの効果を示している。カニューレ処理を施したオスおよびメスのスプラーグードーリーラット（Sprague-Dawley rat）に、脳の大脳外側空洞（icv）に直接カイニン酸塩（０．６μｇ）を注射する３０分前ならびに約３および２４時間後に、０．４μｇのＫ-２５２ａまたはビヒクルを摂取させた。以下に記載するごとき組織学的分析のため、２週間後に該脳を摘出し、凍結し、切断して染色した。示したデータは各群につき損傷された海馬の亜領域の平均数士Ｓ．Ｅ．Ｍ．である。Ｋ-２５２ａは、海馬内の損傷領域数を３．８６±０．７８（Ｋ-２５２ａ不存在）から１．１８±０．４（Ｋ-２５２ａ存在）に顕著に減じた。Ｆig.１０は、海馬における、カイニン酸塩−誘導性のスペクトリン分解に対するＫ-２５２ａの効果を示す。メスのスプラーグードーリーラットに、icv注入によって、神経毒性用量のカイニン酸塩（０．６μｇ）と共に、０．４μｇのＫ -２５２ａまたはビヒクルを摂取させた。偽対照動物には、ビヒクルの注入を摂取させたがカイニン酸塩またはＫ-２５２ａを摂取させなかった。２４時間後に、後根海馬ホモジネートを、以下に記載するごとくにスペクトリン分解生成物につき分析した。スペクトリンのタンパク質分解の程度は、偽対照値に対する各群のスペクトリン分解生成物の％増加として表す。データは、各群のスペクトリン分解生成物の平均％増加（偽対照＝１００％）±Ｓ．Ｅ．Ｍ．値を示す。Ｋ-２５２ａのｉｃｖ注入は、スペクトリンタンパク質分解の程度を、偽対照値の約１４０±１５％（Ｋ-２５２ａ不存在）から約１０２±１０％（Ｋ-２５２ａ存在）に顕著に減じた。実施例１０Ｆig.１１は、海馬における、カイニン酸塩-誘導性ニューロン変性に対するＨＢＣＳの効果を示す。カニューレ処理を施したメスのスプラーグ-ドーリーラットに、icv注入によって、カイニン酸塩（０．６μｇ）を摂取させる４０分前および約４時間後に、０．８μｇのＨＢＣＳまたはビヒクルを摂取させた。後記するごとく、組織学的な分析のため、２週間後に該脳を摘出し、凍結し、解離させて染色した。示したデータは各群につき損傷された海馬の亜領域の平均数士Ｓ．Ｅ．Ｍ．である。ＨＢＣＳは、海馬内の損傷領域数を２．５±０．６（ＨＢＣＳ処理せず）から１．３±０．５（ＨＢＣＳ処理した）に顕著に減じた。実施例１１Ｆig.１２は、海馬における、３種のＫ-２５２ａ機能性誘導体のカイニン酸塩 -誘導性スペクトリン分解に対する効果を比較する。メスのスプラーグ-ドーリーラットに、icv注入によって、神経毒性用量のカイニン酸塩（０．６μｇ）と共に、０．４μｇのＫ-２５２ａまたは化合物III-１もしくはII-２１またはビヒクルを摂取させた。偽対照動物には、ビヒクルの注入を摂取させたがカイニン酸塩またはＫ-２５２ａ誘導体は摂取させなかった。２４時間後に、後根海馬ホモジネートを、後記するごとく、スペクトリン分解生成物につき分析した。スペクトリンのタンパク質分解の程度は、偽対照値に対する各群についてのスペクトリン分解生成物の％増加として表す。示したデータは、各群につきスペクトリン分解生成物の平均％増加（偽対照＝１００％）±Ｓ．Ｅ．Ｍ．を示す。Ｋ-２５２ａのｉｃｖ注入は、スペクトリンのタンパク質分解の程度を、偽対照値の約１２８ ±９％（ビヒクル処理）から約１０４±４％（Ｋ-２５２ａ存在）に減じた。Ｋ- ２５２ａ誘導体、III-１およびII-２１は、カイニン酸塩-誘導性スペクトリンタンパク質分解を阻害できなかった。Ｆig.９-１２の方法カイニン酸塩注入様式：Ｋ-２５２ａまたはその誘導体のカイニン酸塩-誘導性ニューロン損傷に対する効果を以下のごとくに評価した：成体のオスまたはメスのスプラーグ-ドーリーラット（１７５-２５０ｇ）をネンブタール（Nembutal）（５０ｍｇ／ｋｇ，ｉｐ）で麻酔し、個々の場合について、示した用量および注入スケジュールを用いたicv注入によって、カイニン酸塩処理（５μｌ）の前または後に、合計５μｌにて、薬剤を投与するか、あるいはビヒクルで処理した。対照動物には、カイニン酸塩および薬剤注入の代わりに担体を受けた。解剖学的な研究のため、icv注入は、薬剤注入の約１週間前に埋め込み、定位置：ブレグマの前−後で、ブレグマの１．５ｍｍ外側であって頭骸頂点から４．４ｍｍ腹側、に設置したカニューレ（プラスチック・ワン（Plastic One）、バージニア州、ローンオーク（Roano ke,ＶＡ））を介してデリバリーした。この処理様式の結果は、以下に記載する解剖学的分析を用いて２週間後に評価した。Ｋ-２５２ａまたはその誘導体のカイニン酸塩−誘導性スペクトリンタンパク質加水分解への効果を評価する実験において、麻酔したラットには、前記した定位置に設置した１０μｌハミルトン（Hamilton）シリンジを介して、カイニン酸塩と同時に５μｌの薬物またはビヒクルのicv注入を摂取させた。２４時間後にこれらのラットを殺し、以下に記載するごとく生化学的分析に付した。解剖学的および生化学的分析解剖学的分析は、以下のごとくに行った。処理２週間後に断頭によりラットを殺し、脳を迅速に摘出し、ドライアイスで凍結した。各脳からの一連のスライドに載せた冠状切片をチオニンで染色し、顕微鏡観察した。海馬への損傷は、錐体細胞の喪失を被っている該脳の左および右側の双方につき、海馬の４種の解剖学的定義領域（出典明示して本明細書の一部とみなす、シェパード（Shepard）、１９７９年、「ザ・シナプチック・オーガニゼーション・オブ・ザ・ブレイン（ The Synaptic Organization of the Brain）」オックスフオード（Oxford）、３１０頁に記載されているロレンテ番号（Lorente de No）の分類に従ったＣＡ１- ４）の全数を合計することにより定量化した。生化学的分析は、以下のごとくに行った。脳スペクトリン（フォドリン）のカルペイン（Calpain）Ｉ−感受性のタンパク質加水分解は、シーマンらにより記載されているイムノブロット分析（１９８８年、ニューロン（Neuron）、第１巻：２７９-２８７、出典明示して本明細書の一部とみなす）を用いて海馬のホモジネートにて評価した。簡単に述べると、処理２４時間後に断頭によりラットを殺し、後根海馬を迅速に脳から摘出し、０．１ｍＭフッ化フェニルメチルスルホニルを含有する２０ｍＭTris-ＨＣｌ（ｐＨ７．４）中でホモジナイズした。ＳＤＳ- ＰＡＧＥによって各ホモジネートのアリコートからタンパク質を分離し、イムノブロット分析を用いて各試料中のカイニン酸塩-誘導性スペクトリン分解の量を定量した。実施例１２Ｋ-２５２ａを、線条体培養中における生存性を促進するその能力につき評価した。線条体は１７日胚齢のラット胚から切除し、細胞はディスパーゼ（中性プロテアーゼ、コラボラティブ・リサーチ（Collaborative Research）社）によって解離させた。ニューロンを、ウェルを予めポリ-１-オルニチンおよびラミリンで被覆した９６ウェルプレートに５×１０⁴／ウェル（１．５×１０⁵／ｃｍ²）にて撒いた。細胞は、５％ＣＯ₂／９５％空気、湿度調整下３７℃にて、０．０５％ウシ血清アルブミンを含有する無血清Ｎ２培地中で培養した（ボッテンシュタイン（Bottenstein）およびサト（Sato）、１９７９年）。細胞生存性は、それを撒いて５日後に、実施例８に記載したカルセイン生存フルオロメトリーアッセイを用いて評価した。線条体ニューロンの生存性は、Ｋ-２５２ａによって濃度依存的に上昇した。最大活性は７５ｎＭのＫ-２５２ａで認められ、対照に対して３-４倍の効率が得られた（Ｆig.１５）。対照培養においては、０日目にプレートしたニューロンの９０％が５日以内に死滅したが、一方、Ｋ-２５２ａで処理した培養においては該ニューロンの５０％が生存していた（Ｆig.１６）。線条体ニューロンにおける生存性効果は培養３日後に起こり、少なくとも培養７日間維持された。培養開始日のＫ-２５２ａの単独適用から、これらの結果は、ある種のニューロン集団に対して生存性効果が維持されることを示す。Ｆig.１７は、対照培養または７５ｎＭのＫ-２５２ａで処理した培養から撮影した一対の光学顕微鏡写真である。７５ｎＭのＫ-２５２ａが存在するこれらの培養において、細胞生存性およびニューロン成長が高められていた。実施例１３実施例１０の線条体細胞生存アッセイにおけるＫ-２５２ａの３１種の機能性誘導体の強化性および効率を測定するため、該誘導体を試験した。Ｆig.１８は、線条体ニューロンの生存性を促進する１８種のＫ-２５２ａ誘導体のデータを示している。化合物（Ｖ）の製造プロセス化合物（Ｖ）の製造プロセスを以下に記載する。プロセス１化合物（Ｖ-１）［Ｒ¹がＣＨ₂ＳＯ₂Ｒ⁷であって、ＸがＣＯ₂Ｒ⁵である化合物（Ｖ）］は以下の反応工程：（Ｒ⁵は低級アルキルまたはＣＨ₂ＮＨＣＯ₂Ｒ⁶を表し、ここにＲ⁶は低級アルキルまたはアリールを表し；Ｒ⁷は低級アルキルを表す）により製造できる。該出発化合物（Ａ）は、（出典明示して本明細書の一部とみなす）特開昭６３ -２９５５８８号に開示されている。化合物（Ｖ-１）は、化合物（Ａ）を１〜１．５当量の酸化剤で処理することによって得ることができる。該酸化剤の例は、ｍ-クロロ過安息香酸である。反応溶媒としては、塩化メチレン、クロロホルムまたは二塩化エチレン等のごときハロゲン化炭化水素を用いる。該反応は−２０〜３０℃にて０．５〜１時間で完了する。プロセス２化合物（Ｖ-２）［Ｒ¹が水素であって、ＸがＣＨ₂ＮＨＣＯ₂Ｒ⁶である化合物（Ｖ）］は、以下の反応工程：［Ｒ⁶は低級アルキルまたはアリールを表す］によって製造できる。出発化合物（Ｂ）は、（出典明示して本明細書の一部とみなす）特開昭６２- １５５２８５号に開示されている。化合物（Ｖ-２）は、１〜３当量の塩基の存在下で化合物（Ｂ）と１〜３当量のＣｌＣＯ₂Ｒ⁶とを反応させることにより得ることができる。該塩基の例はトリエチルアミンである。反応溶媒としては、塩化メチレン、クロロホルムまたは二塩化エチレンのごときハロゲン化炭化水素等を用いる。該反応は-１０〜３０℃ にて０．５〜３時間で完了する。実施例１４化合物II-４９化合物（Ａ-１；Ｒ⁵＝ＣＨ₃であってＲ⁷＝Ｃ₂Ｈ₅）（２７ｍｇ、０．０５mmol ）を、クロロホルム１ｍｌに溶解し、次いで、氷冷下、ｍ-クロロ過安息香酸１０ｍｇ（０．０６mmol）をそれに添加し、続いて同温度にて４５分間撹拌した。クロロホルムで希釈した後に、該混合物を、８％チオ硫酸ナトリウム水溶液、飽和重炭酸ナトリウム水溶液、水、および食塩水で順次洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥した。溶媒を蒸発させた後に、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム/メタノール＝９５/５）に付して１７．７ｍｇの化合物II-４９を得た（収率６２％）。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＤＭＳＯ-ｄ₆）δ（ｐｐｍ）：１．２９８（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．５Ｈｚ），２．０３７（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ-５．０，１４．１Ｈｚ），２．１５３（３Ｈ，ｓ），３．０９６（２Ｈ，ｑ，Ｊ=７．５Ｈｚ），３．２６６（２Ｈ，ｓ），３．９２９（３Ｈ，ｓ），４．９８５（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１７．０Ｈｚ），５．０４３（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１７．０Ｈｚ），６．３４８（１Ｈ，ｓ），７．１４７（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．９，７．１Ｈｚ），７．３４５-８．０７０（６Ｈ，ｍ），８．６１２（１Ｈ，ｓ），９．２３２（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１．５Ｈｚ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：５７４（Ｍ＋１）⁺ 実施例１５化合物II-５７化合物（Ｂ）（４３．８ｍｇ、０．１mmol）を、テトラヒドロフラン１ｍｌに溶解し、次いで、クロロギ酸メチル９．３μｌ（０．１２mmol）およびトリエチルアミン２８μｌ（０．２mmol）をそれに添加し、続いて、氷冷下、５０分間撹拌した。テトラヒドロフランで希釈した後、混合物を食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥した。溶媒を蒸発させた後に、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム/メタノール＝９９/１）に付して３２．６ｍｇの化合物II-５７を得た。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＣＤＣｌ₃）δ（ｐｐｍ）：２．０９９（３Ｈ，ｓ），２．６７９（１Ｈ，ｍ），３．２０４（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=６．７ｍ，１３．８Ｈｚ），３．８３７（３Ｈ，ｓ），４．４４６（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１７．３Ｈｚ），４．６３４（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１７．６Ｈｚ），５．４９７（１Ｈ，ｂｒｓ），６．５９１（１Ｈ，ｂｒｓ），７．０１０-８．０３７（７Ｈ，ｍ），８．５９２（１Ｈ，ｄ，Ｊ=６．６Ｈｚ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：４９７（Ｍ＋１）⁺ 実施例１６化合物II-３８化合物（Ｂ）４３．８ｍｇ（０．１mmol）およびクロロギ酸フェニル１５μｌを用いて実施例１５と実質的に同じ方法を繰り返して、２７．８ｍｇの化合物II -３８を得た（収率５０％）。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＣＤＣｌ₃）δ（ｐｐｍ）：２．１１１（３Ｈ，ｓ），２．８９０（１Ｈ，ｂｒｄ，Ｊ=１３．７Ｈｚ），３．２６２（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=７．５，１３．９Ｈｚ），３．７４２（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１３．４Ｈｚ），３．９６７（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１２．９Ｈｚ），４．５８２（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１６．３Ｈｚ），５．３４２（１Ｈ，ｂｒｓ），５．９０６（１Ｈ，ｂｒｓ），６．５５０（１Ｈ，ｂｒｓ），７．００５-８．０４２（１２Ｈ，ｍ），８．５９６（１Ｈ，ｄ，Ｊ=７．６Ｈｚ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：５５９（Ｍ＋１）⁺ 実施例１７（化合物Ｃからの化合物Ｈの合成をＦig.１９に示す）化合物II-３９化合物（Ｃ）（特開昭６３−２９５５８８号公報；出典明示して本明細書の一部とみなす）（２０ｍｇ、０．０３５mmol）を、クロロホルム１ｍｌに溶解し、次いで、トリエチルアミン１４．６μｌ（０．１０５mmol）およびエチルイソシアネート１３．９μｌ（０．１７５mmol）それに添加し、続いて、室温にて２時間撹拌した。該溶液にメタノール１ｍｌを添加し、続いて、クロロホルムで希釈した。混合物を、水および食塩水で順次洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥した。溶媒を蒸発させた後に、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム/メタノール＝９８/２）に付して２１ｍｇの化合物（Ｄ）を得た（収率８４％）。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＣＤＣｌ₃）δ（ｐｐｍ）：１．１９５（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．２Ｈｚ），１．２２２（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．２Ｈｚ），１．６６４（３Ｈ，ｓ），２．１９４（３Ｈ，ｓ），２．５５５（３Ｈ，ｓ），３．３４６（４Ｈ，ｑ，Ｊ= ７．２Ｈｚ），３．８２０（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=７．５，１４．６Ｈｚ），３．９３８（３Ｈ，ｓ），５．０３６（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１７．７Ｈｚ），５．１２５（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１７．２Ｈｚ），６．７４５（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．８，７．４Ｈｚ），７．２６０-７．８９８（５Ｈ，ｍ），８．６９０（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１．９Ｈｚ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：７２４（Ｍ＋１）⁺ 化合物（Ｄ）（９ｍｇ、０．０１２mmol）を、テトラヒドロフラン０．２ｍｌおよびメタノール０．２ｍｌの混合液に溶解し、次いで、２８％ナトリウムメトキシド/ メタノール２μｌをそれに添加し、続いて、室温にて１０分間撹拌した。溶液に５％クエン酸水溶液０．１ｍｌを添加し、続いて、クロロホルムで希釈した。混合物を水および食塩水で順次洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥した。溶媒を蒸発させた後に、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム/メタノール＝９/１）に付して、８ｍｇの化合物II-３９を得た。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＤＭＳＯ-ｄ₆）δ（ｐｐｍ）：１．０８６（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．１Ｈｚ），１．０９９（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．１Ｈｚ），１．９４８（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．８，１４．１Ｈｚ），２．１０７（３Ｈ，ｓ），３．１５８（４Ｈ，ｍ），３．９１０（３Ｈ，ｓ），４．８８０（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１７．７Ｈｚ），４．９３１（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１６．９Ｈｚ），７．０２８（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=５．０，７．１Ｈｚ），７．３３２-８．２８７（５Ｈ，ｍ），８．８３８（１Ｈ，ｄ，Ｊ=２．１Ｈｚ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：６４０（Ｍ＋１）⁺ 実施例１８化合物II-５１およびII-５６化合物（Ｅ）（特開昭６３−２９５５８８号；前掲）（６０．７ｍｇ、０．１ mmol）を、クロロホルム５ｍｌおよびメタノール１ｍｌの混合液に溶解し、次いで、氷冷下、ホウ水素化ナトリウム１１ｍｇ（０．３mmol）をそれに添加し、続いて、同温度にて１５分間撹拌した。クロロホルムで希釈した後に、混合物を水および食塩水で順次洗浄し、炭酸カリウム上で乾燥した。溶媒を蒸発させた後に、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム/メタノール/トリエチルアミン=９８/２/０．５）に付して、３６ｍｇの化合物（Ｆ）を得た（収率５９％）。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＤＭＳＯ-ｄ₆）δ（ｐｐｍ）：１．６５０（３Ｈ，ｓ），２．０２７（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．９，１４．５Ｈｚ），２．１２６（３Ｈ，ｓ），３．８４３（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=７．４，１４．５Ｈｚ），３．８９１（３Ｈ，ｓ），４．６０７（２Ｈ，ｓ），４．６７３（２Ｈ，ｓ），５．１２５（２Ｈ，ｓ），７．０９９（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=５．０，７．３Ｈｚ），７．４３７-７．９０７（５Ｈ，ｍ），８．８１２（１Ｈ，ｄ，Ｊ=０．８Ｈｚ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：６１２（Ｍ＋１）⁺ 化合物（Ｆ）（１５９ｍｇ、０．２６mmol）をクロロホルム１５ｍｌに溶解し、次いで、エタンチオール０．８ｍｌ（１０．４mmol）およびショウノウスルホン酸２４ｍｇ（０．１０４ｍｇ）をそれに添加し、続いて、室温にて１２時間撹拌した。溶液を、飽和重炭酸ナトリウム水溶液、水、および食塩水で順次洗浄し、硫酸ナトリウム上で乾燥した。溶媒を蒸発させた後に、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（酢酸エチル/トルエン＝１/９-クロロホルム/メタノール＝９９ /１）に付して４３ｍｇの化合物（Ｇ）および７５ｍｇの化合物（Ｈ）を得た。化合物（Ｇ） ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＣＤＣｌ₃）δ（ｐｐｍ）：１．２９２（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．４Ｈｚ），１．２９７（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．４Ｈｚ），１．７９９（３Ｈ，ｓ），２．１４１（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=５．０，１４．５Ｈｚ），２．２５６（３Ｈ，ｓ），２．５３２（２Ｈ，ｑ，Ｊ=７．４Ｈｚ），２．５５３（２Ｈ，ｑ，Ｊ=７．４Ｈｚ），２．８６９（３Ｈ，ｓ），３．９７１（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=７．５，１４．５Ｈｚ），３．９９２（２Ｈ，ｓ），４．００５（３Ｈ，ｓ），４．０２１（２Ｈ，ｓ），５．４１６（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=１７．５Ｈｚ），５．４５９（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１７．４Ｈｚ），６．９８９（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=５．１，７．４Ｈｚ），７．５０９-７．９６３（５Ｈ，ｍ），９．１３４（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１．２Ｈｚ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：７００（Ｍ＋１）⁺ 化合物（Ｈ） ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＣＤＣｌ₃）δ（ｐｐｍ）：１．２９４（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．４Ｈｚ），１．７９９（３Ｈ，ｓ），２．１４９（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=５．０，１４．６Ｈｚ），２．２７３（３Ｈ，ｓ），２．５３３（２Ｈ，ｑ，Ｊ=７．４Ｈｚ），２．８１３（３Ｈ，ｓ），３．９７２（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=７．４，１４．６Ｈｚ），４．００８（３Ｈ，ｓ），４．０１５（２Ｈ，ｓ），４．９５１（２Ｈ，ｓ），５．３７７（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１７．４Ｈｚ），５．４１８（１Ｈ，ｄ，Ｊ= １７．４Ｈｚ），６．９７３（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=５．０，７．５Ｈｚ），７．４８１-８．０３７（５Ｈ，ｍ），９．０９３（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１．２Ｈｚ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：６５６（Ｍ＋１）⁺ 化合物（Ｇ）３４ｍｇを用いて、実施例１７と実質的に同じ方法を繰り返して、１８．７ｍｇの化合物II-５１を得た。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＣＤＣｌ₃）δ（ｐｐｍ）：１．３００（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．４Ｈｚ），１．３２５（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．４Ｈｚ），２．１８５（３Ｈ，ｓ），２．５１４（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．８，１４．５Ｈｚ），２．５４０（２Ｈ，ｑ，Ｊ=７．４Ｈｚ），２．５５５（２Ｈ，ｑ，Ｊ=７．４Ｈｚ），３．３８４（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=７．５，１４．５Ｈｚ），３．９４１（２Ｈ，ｓ），３．９７６（２Ｈ，ｓ），４．０９４（３Ｈ，ｓ），４．８３６（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１６．４Ｈｚ），４．９１０（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１６．３Ｈｚ），５．７８１（１Ｈ，ｓ），６．８４５（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．８，７．５Ｈｚ），７．３７１-７．８４３（５Ｈ，ｍ），８．９９８（１Ｈ，ｓ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：６１６（Ｍ＋１）⁺ 化合物（Ｈ）３０ｍｇを用い、実施例１７と実質的に同じ方法を繰り返して、２０．４ｍｇの化合物II-５６を得た。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＣＤＣｌ₃）δ（ｐｐｍ）：１．２８０（３Ｈ，ｔ，Ｊ=７．４Ｈｚ），２．１４４（３Ｈ，ｓ），２．３９１（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．９，１４．５Ｈｚ），２．５１７（２Ｈ，ｑ，Ｊ=７．４Ｈｚ），３．３２０（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=７．４，１４．５Ｈｚ），３．８８５（２Ｈ，ｓ），４．０６９（３Ｈ，ｓ），４．５２１（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１６．３Ｈｚ），４．６３１（１Ｈ，ｄ，Ｊ= １６．７Ｈｚ），４．８０４（２Ｈ，ｓ），５．７６９（１Ｈ，ｓ），６．８３０（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．８，７．４Ｈｚ），７．３７５-７．７７１（５Ｈ，ｍ），８．９３４（１Ｈ，ｓ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：５７２（Ｍ＋１）⁺ 実施例１９化合物IV-２化合物（Ｊ）（特開昭６２−１２０３８８号；出典明示して本明細書の一部とみなす）（５０ｍｇ、０．０９mmol）を、トリフルオロ酢酸０．５ｍｌおよび３ＮＨＣｌ５０μｌの混合液に溶解し、溶液を室温にて２日間撹拌した。濾過により沈殿物を回収し、高速液体クロマトグラフィー（ユニシル（Unisil）₅Ｃ₁₈ ；メタノール/水＝８/２）に付して８．４ｍｇの化合物（IV-２）を得た。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＤＭＳＯ-ｄ₆）δ（ｐｐｍ）：４．９４７（２Ｈ，ｓ），７．３００-８．０１０（６Ｈ，ｍ），８．２４９（１Ｈ，ｓ），９．２６６（１Ｈ，ｄ，Ｊ=２．０Ｈｚ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：３９０（Ｍ＋１）⁺ 実施例２０化合物II-４５は、Ｆig.２０に示した反応段階により製造できる。出発化合物（Ｊ）は、特開昭６２−１２０３８８号（出典明示して本明細書の一部とみなす）に開示されている。化合物II-４５化合物（Ｊ）（２００ｍｇ）を、ジメチルホルムアミド１ｍｌに溶解し、次いで、水酸化ナトリウム２３．５ｍｇの水溶液０．２５ｍｌをそれに添加し、続いて、室温にて４時間撹拌した。１Ｎ塩酸を添加して、溶液のｐＨを１-２に調整し、濾過により沈殿物を収集して１７８ｍｇの化合物（Ｋ）を得た（収率９１％）。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＤＭＳＯ-ｄ₆）δ（ｐｐｍ）：１．９６５（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．８，１４．０Ｈｚ），２．１８４（３Ｈ，ｓ），３．３６４（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ =７．５，１４．０Ｈｚ），５．０２９（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１８．１Ｈｚ），５．０７１（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１８．０Ｈｚ），７．１３３（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．９，７．５Ｈｚ），７．５９５-８．１８９（５Ｈ，ｍ），８．７３３（１Ｈ，ｓ），９．３９８（１Ｈ，ｄ，Ｊ=２．１Ｈｚ）化合物（Ｋ）（１６８ｍｇ）を、ピリジン３ｍｌに溶解し、次いで、無水酢酸０．４４ｍｌ（４．７mmol）をそれに添加し、続いて、室温にて４時間撹拌した。溶媒を蒸発させた後に、１Ｎ塩酸４ｍｌを残渣に添加し、濾過により沈殿物を収集して１８２ｍｇの化合物（Ｌ）を得た（定量的収率）。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＤＭＳＯ-ｄ₆）δ（ｐｐｍ）：１．６８４（３Ｈ，ｓ），２．１３５（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．９，１４．４Ｈｚ），２．２５２（３Ｈ，ｓ），３．８６５（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=７．６，１４．５Ｈｚ），５．０６３（２Ｈ，ｓ），７．２５５（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ＝４．９，７．５Ｈｚ），７．６１２-８．５８２（５Ｈ，ｍ），８．７６０（１Ｈ，ｓ），９．３８９（１Ｈ，ｄ，Ｊ=２．１Ｈｚ）化合物（Ｌ）（１７２ｍｇ）を、塩化チオニルに懸濁し、続いて、９０℃にて４．５時間撹拌した。溶媒を蒸発させた後に、ジエチルエーテルを残渣に添加し、濾過により沈殿物を収集して１８０ｍｇの化合物（Ｍ）を得た。化合物（Ｍ）（６７ｍｇ、０．１mmol）を二塩化エチレン２ｍｌに溶解し、次いで、氷冷下、テトラヒドロフラン中のアニリン１８０μｌをそれに添加し、続いて、同温度にて１時間撹拌した。溶媒を蒸発させた後に、残渣をテトラヒドロフラン２ｍｌおよびメタノール０．５ｍｌの混合液に溶解し、次いで、１ＮのＮａＯＨ１ｍｌをそれに添加し、続いて室温にて３時間撹拌した。溶液に１Ｎ塩酸（１．２ｍｌ）を添加して中和し、続いてテトラヒドロフランで希釈した。該混合物を食塩水で洗浄し硫酸ナトリウム上で乾燥した。溶媒を蒸発させた後に、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（クロロホルム/メタノール＝９８/２）に付して化合物II-４５（単離された化合物Ｎ５６ｍｇから１３ｍｇ）を得た。 ¹Ｈ-ＮＭＲ（ＤＭＳＯ-ｄ₆）δ（ｐｐｍ）：２．１１０（１Ｈ，ｄｄ，Ｊ=４．９，１３．９Ｈｚ），２．１７５（３Ｈ，ｓ），５．０１９（１Ｈ，ｄ，Ｊ= １８．１Ｈｚ），５．０８８（１Ｈ，ｄ，Ｊ=１８．０Ｈｚ），６．８８７（１Ｈ，ｓ），７．１１９-８．２０１（１１Ｈ，ｍ），８．７１１（１Ｈ，ｓ），９．３９１（１Ｈ，ｄ，Ｊ=２．２Ｈｚ），１０．０７１（１Ｈ，ｓ）ＦＡＢ-ＭＳ（ｍ/ｚ）：６８７（Ｍ＋１）⁺ 他の具体例も、以下の請求の範囲内に包含される。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者ネフ，ニコラアメリカ合衆国19086ペンシルベニア州、ローズ・バリー、トッドモーデン・ドライブ59番 (72)発明者ロバーツ−ルイス，ジルアメリカ合衆国19350ペンシルベニア州、ランデンバーグ、ビルズ・ウエイ23番 (72)発明者村形力東京都八王子市別所２―11―２―702 (72)発明者斉藤博満静岡県三島市徳倉５―15―23 (72)発明者松田譲東京都小金井市貫井南町１―22―７ (72)発明者コウアー，ジェイムズ・シイアメリカ合衆国19348ペンシルベニア州、ケネット・スクエア、ウィロウ・グレン・ロード605番

Claims

【特許請求の範囲】１．式： [Stau]-N(CH₃)-W-N(CH₃)-[Stau] （Ｉ）［式中、［Ｓtau］は式：の残基を表し、Ｗは式： -C(=Y)-NH-W'-NH-C(=Y)- の基を表し、ここに、Ｗ’は２−２０個の炭素原子のヒドロカルビレン基であって、ＹはＯまたはＳを意味する］で示される組成物。２．請求項１記載の組成物の治療量を哺乳動物に投与することを特徴とする哺乳動物において感覚ニューロンの機能を高める方法。３．該感覚ニューロンがコリン作動性ニューロン、線条体ニューロン、または後根神経節ニューロンである請求項２記載の方法。４．請求項１記載の組成物の治療量を哺乳動物に投与することを特徴とする興奮性アミノ酸により誘導される神経細胞変性を治療する方法。５．該神経細胞変性がアルツハイマー病と関連している請求項４記載の方法。６．該神経細胞変性が運動ニューロン病と関連している請求項４記載の方法。７．該運動ニューロン病が筋萎縮硬化症である請求項６記載の方法。８．該神経細胞変性がパーキンソン病と関連している請求項４記載の方法。９．該神経細胞変性が脳血管疾患と関連している請求項４記載の方法。１０．該脳血管疾患が虚血症である請求項９記載の方法。１１．該神経細胞変性がＡＩＤＳ痴呆と関連している請求項４記載の方法。１２．該神経細胞変性が癲癇と関連している請求項４記載の方法。１３．該神経細胞変性が脳への振盪損傷と関連している請求項４記載の方法。１４．該神経細胞変性が脊髄への振盪損傷と関連している請求項４記載の方法。１５．該神経細胞変性が脳への穿通損傷と関連している請求項４記載の方法。１６．該神経細胞変性が脊髄への穿通損傷と関連している請求項４記載の方法。１７．該神経細胞変性がハンチントン舞踏病と関連している請求項４記載の方法。１８．哺乳動物に、式：［式中、以下の置換基がある：（１）Ｚ¹およびＺ²は共に水素であるか、または示す場合は一緒になって酸素を表す；（２）ＮＨ−アミノ酸連合は、該アミノ酸のカルボキシル基を介するアミド結合である；（３）ＸおよびＲは、一緒になって連結基を形成する；（４）Ｒ³はＣＨ₂ＣＨ＝ＣＨ₂；Ｒ⁴はＨである；（５）Ｒ³およびＲ⁴は各々Ｈである；（６）Ｒ³およびＲ⁴は各々ＣＨ₂ＣＨ＝ＣＨ₂である；（７）化合物は塩酸塩の形態である；（８）Ｒ³はＨであってＲ⁴はＣＨ₂ＣＨ＝ＣＨ₂であり；（９）IV−１およびIV−４は、２つの成分の１．５ないし１．０混合物である］で示されるＫ−２５２ａの機能性誘導体の治療量を投与することを特徴とする、該哺乳動物において、感覚ニューロン、コリン作動性ニューロン、および線条体ニューロンよりなる群から選択されるニューロンの機能を高める方法。１９．該ニューロンがコリン作動性ニューロンである請求項１８記載の方法。２０．該感覚ニューロンが後根神経節ニューロンであって、該機能性誘導体が式（II）または（III）：［式中、以下の置換基がある：（１）Ｒ²は水素、但し化合物II-２０およびII-３２においてはＲ²＝Ｂｒ；（２）Ｚ¹およびＺ²は共に水素であるか、または示す場合は一緒になって酸素を表す；（３）ＸおよびＲは一緒になって連結基を形成する］で示される請求項１８記載の方法。２１．該組成物を神経栄養因子と組み合わせて投与する請求項２記載の方法。２２．該組成物を栄養因子と組み合わせて投与する請求項４記載の方法。２３．該機能性誘導体を栄養因子と組み合わせて投与する請求項１８記載の方法。２４．該機能性誘導体を栄養因子と組み合わせて投与する請求項２０記載の方法。２５．該栄養因子がニューロトロフィンファミリーのメンバーである請求項２１、２２、２３または２４記載の方法。２６．該ニューロトロフィンファミリーのメンバーが神経成長因子（ＮＧＦ）である請求項２５記載の方法。２７．該ニューロンがコリン作動性ニューロンであって、該機能性誘導体が、式（II）：［式中、Ｒ¹およびＲ²はＨ、ＸはＣＯ₂ＣＨ₃、ＲはＯＨであって、Ｚ¹およびＺ² は各々Ｈを意味する］で示される請求項１８記載の方法。２８．該ニューロンが線条体ニューロンであって、該機能性誘導体が式（II）、（III）または（IV）：［式中、以下の置換基がある：（１）Ｚ¹およびＺ²は共に水素であるか、または示す場合は一緒になって酸素を表す；（２）Ｒ³はＣＨ₂-ＣＨ＝ＣＨ₂；Ｒ⁴はＨを意味する］で示される請求項１８記載の方法。２９．該方法をハンチントン舞踏病の治療に用いる請求項１９、２７または２８記載の方法。３０．式（II-４）：［式中、Ｒ¹、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は各々Ｈ、ＸはＣＨ₂ＯＨであって、ＲはＯＣＨ₃を意味する］で示される組成物。３１．式（II-１４）：［式中、Ｒ¹、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は各々Ｈ、ＸはＣＨ₂-ＮＨ-Ｓｅｒであって、ＲはＯＨを意味する］で示される組成物。３２．式（II-４９）：［式中、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は各々Ｈ、ＲはＯＨ、Ｒ¹はＣＨ₂ＳＯ₂Ｃ₂Ｈ₅であって、ＸはＣＯ₂ＣＨ₃を意味する］で示される組成物。３３．式（II-３８）：［式中、Ｒ¹、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は各々Ｈ、ＲはＯＨであって、ＸはＣＨ₂ＮＨＣＯ₂Ｃ₆Ｈ₅を意味する］で示される組成物。３４．式（II-４５）：［式中、Ｒ¹およびＲ²は各々Ｂｒ、ＲはＯＨ、Ｚ¹およびＺ²は各々Ｈであって、ＸはＣＯＮＨＣ₆Ｈ₅を意味する］で示される組成物。３５．式（II-５７）：［式中、Ｒ¹、Ｒ²、Ｚ¹およびＺ²は各々Ｈ、ＲはＯＨであって、ＸはＣＨ₂ＮＨＣＯ₂ＣＨ₃を意味する］で示される組成物。３６．式（Ｖ）：［式中：ＸはＣＯ₂Ｒ⁵またはＣＨ₂ＮＨＣＯ₂Ｒ⁶を表し；Ｒ¹は水素またはＣＨ₂ＳＯ₂Ｒ⁷を表し；Ｒ⁵は低級アルキルを表し；Ｒ⁶は低級アルキルまたはアリールを表し；およびＲ⁷は低級アルキルを表すが；但し、Ｘ＝ＣＯ₂Ｒ⁵の場合、Ｒ¹は水素ではない］で示される組成物。