JPH0523749B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
〔産業上の利用分野〕
本発明は、微生物によるメナキノン−4の製造
法に関する。メナキノン−4は、医薬用のビタミ
ンK2として知られており、血液の凝固を促進す
る脂溶性ビタミンで抗出血性作用を有する重要な
生理活性物質である。 〔従来技術、発明が解決しようとする問題点〕 メナキノン−4の製造法としては、合成法およ
び動植物組織からの抽出法が知られているが、合
成法は原料の入手が困難な上コスト高であり、又
動植物組織からの抽出法も資源が限られ抽出操作
が煩雑なことも加わつてコスト高をまぬがれな
い。 反面、メナキノン−4を生産する微生物を見出
すことが出来れば、微生物を工業的に大量に生産
できるので、非常に有利であるが、今までメナキ
ノン−4を効率的に生産する微生物は見出されて
いない。 本発明は、前記の事情に鑑みてなされたもの
で、微生物によるメナキノン−4の生産を目的と
するものである。 〔問題点を解決するための手段〕 前記目的を達成すべく、本発明者が鋭意検討を
重ねた結果、フラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)に属しメナキノン
−4を生産しない菌株を親株として、変異処理を
行ない、メナキノン−4を生産する菌株を得るこ
とに成功し、本発明を完成した。 すなわち本発明は、フラボバクテリウム アク
アタイル(Flavobacterium aquatile)に属しメ
ナキノン−4を生産する微生物を培養して、メナ
キノン−4を菌体内に生成せしめ、これを採取す
ることを特徴とするメナキノン−4の製造法であ
る。 変異処理を行なう親株としては、フラボバクテ
リウム アクアタイル(Flavobacterium
aquatile)に属しメナキノン−5以上の側鎖にイ
ソプレン単位5以上を有するメナキノン生産微生
物が用いられる。これらフラボバクテリウム ア
クアタイル(Flavobacterium aquatile)に属す
るすべてのメナキノン生産微生物を親株としてこ
れを変異処理することにより、メナキノン−4を
生産する変異株を取得することは可能である。 変異処理方法としては、通常行なわれている方
法でよいが、就中、UV処理、N−メチル−N′−
ニトロ−N−ニトロソグアニジン(NTG)処理
およびエチルメタノサルフアネート(EMS)処
理などが好ましい。 変異処理した後のメナキノン−4生産変異株の
取得は、いろいろな方法−たとえばランダムスク
リーニング法、あるいは薬剤耐性株、薬剤感受性
株からのスクリーニング等の方法により行なうこ
とができる。薬剤としては、通常はメナキノン生
合成阻害物質が使用されるが、メナキノン生合成
阻害物質としてたとえば1−ヒドロキシ−2−ナ
フトエ酸、ウスニン酸およびメナジオン等があ
る。 メナキノン−4生産株を得る方法を以下に記
す。親株として、フラボバクテリウム アクアタ
イル(Flavobacterium aquatile)No.238−7(微
工研菌寄第8113号)を用いた。本菌株は、自然界
より新たに分離した菌株であるが、その分類学的
特徴からバージエイズ マニユアル オブ シス
テマテイツク バクテリオロジー 第1巻
(1984)によりフラボバクテリウム アクアタイ
ル(Flavobacterium aquatile)と同定した。こ
の菌の菌学的性質は、「ビタミン58巻 p.409〜
419(1984)」に記載されている。 フラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)No.238−7からたと
えばつぎのようにしてメナキノン−4生産菌が得
られる。すなわちペプトン−グリセロール液体培
地(M31培地)(グリセロール 10g、ポリペプ
トン 15g、酵母エキス 1g、K2HPO4 3
g、NaCl 2g、MgSO4・7H2O 0.2g およ
び純水 1000ml、PH7.0)で30℃、24時間生育さ
せたフラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)No.238−7をN−メ
チル−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジン
100μg/mlを含む0.1Mリン酸緩衝液(PH 7.0)
中に108個/mlとなるように懸濁し、30℃30分間
振盪した。その後遠心分離で集菌した菌体を、
0.1Mリン酸緩衝液で洗浄後、同様な緩衝液中に
106/mlとなるように懸濁した。1−ヒドロキシ
−2−ナフトエ酸 350μg/mlを含むペプトン
−グリセロール寒天培地(前記ペプトン−グリセ
ロール液体培地に寒天 20g/を添加したも
の)上に上記懸濁液0.1mlを塗布し、出現したコ
ロニーを1−ヒドロキシ−2−ナフトエ酸耐性株
として採取した。これらの耐性株の中からメナキ
ノン−4を生産するフラボバクテリウム アクア
タイル(Flavobacterium aquatile)HNA 250
−15(微工研菌寄第8114号)を得た。さらに、フ
ラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)HNA 250−15を親
株として、たとえばつぎのようにしてメナキノン
−4の生産性がより高い菌が得られる。すなわち
ペプトン−グリセロール液体培地で30℃、24時間
生育させたフラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)HNA 250−15を
0.1Mリン酸緩衝液(PH7.0)中に108個/mlとなる
ように懸濁させ、UV処理(10w紫外線ランプ2
本、40cm)を30秒間行なつた。ウスニン酸 4μ
g/mlを含むペプトン−グリセロール寒天培地上
に前記処理液0.1mlを塗布し、出現したコロニー
をウスニン酸耐性株として採取した。これらの耐
性株の中から、親株(HNA 250−15)に比べて
明らかに高いメナキノン−4生産性を有するフラ
ボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)USNr−2(微工研
菌寄第8115号)を得た。 さらに、フラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)USNr−2を親株と
して、たとえばつぎのようにしてメナキノン−4
の生産性がさらに一層高い菌が得られた。すなわ
ち変異処理は前記と同様なUV処理とした。メナ
ジオン 20μg/mlを含むペプトン−グリセロー
ル寒天培地上に前記処理液0.1mlを塗布し、こゝ
で出現したコロニーをメナジオン耐性株として採
取した。これらの耐性株の中から親株(USNr−
2)に比べてメナキノン−4生産性が明らかに一
層高いフラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)K3−15(微工研菌寄
第8116号)を得た。 これらのメナキノン−4生産微生物を培養する
に当つて用いられる栄養培地は、炭素源、窒素源
および無機塩などを含有する微生物の培養に用い
られる通常の培地が用いられる。 上記炭素源としては、これら微生物が資化しう
るものであればいずれでもよく、グルコース、フ
ラクトース、シユークロース、マルトース、廃糖
蜜、デン粉、デン粉加水分解物等の炭水化物、グ
リセロール、ソルビトール等の糖アルコール、ア
スパラギン酸、グルタミン酸、リジン、アラニ
ン、グリシン、プロリン、メチオニン等のアミノ
酸類、乳酸、ピルビン酸、酢酸、リンゴ酸、ギ
酸、コハク酸、フマール酸、クエン酸、プロピオ
ン酸、脂肪酸等の有機酸類、エタノール、プロパ
ノール、ブタノール等のアルコール類を単独ある
いは組合わせて使用できる。これらのうち特にグ
リセロールが好ましい。 窒素源としては、硫酸アンモニウム、尿素、硝
酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、ペプト
ン、肉エキス等が用いられる。これらのうちポリ
ペプトンが特に好ましい。 無機塩類としては、リン酸塩、マグネシウム
塩、鉄塩、その他必要に応じて微量金属塩が用い
られ、更にアミノ酸、核酸、ビタミン、酵母エキ
ス、麦芽エキス等生育促進物質も使用される。一
般にKH2PO4、NaClおよび酵母エキスをそれぞ
れ添加した場合にはメナキノン−4の含有量は増
大される。又使用菌株が栄養要求性を示す場合に
は、その要求性物質を培地に添加する。 更に、これら微生物の培養に当つて用いられる
上記培地に、イソペンテニルアルコール、ジメチ
ルアリルアルコール、ゲラニオール、フアルネソ
ールなどのアルコール類およびシキミ酸、D−サ
クシニル安息香酸、L−チロシン、パラヒドロキ
シフエニルピルビン酸、セダーウツドオイル、α
−ピネン、ジフエニルアミンなどを添加すること
により、無添加に比して菌体内のメナキノン−4
の蓄積量が増大する傾向にある。 微生物の培養はPH5〜8.5、培養温度20〜40℃
で1〜5日間好気的に振盪又は通気攪拌培養する
ことによつて行なわれる。なお通気量は溶存酸素
が制限因子とならぬように十分な量とされる必要
がある。メナキノン−4は微生物菌体中にほとん
ど全て蓄積されるので、培養液を遠心分離、又は
ろ過して菌体を分離した後、菌体から抽出、単離
される。 菌体からメナキノン−4を単離するには、常法
をそのまま適用できる。例えば、生菌体あるいは
乾燥菌体をアセトン中に懸濁し、60℃で2時間抽
出する。この抽出物を濃縮後、エーテルで抽出
し、シリカゲルカラムクロマトグラフイーを行な
い、メナキノン−4画分を分取し、濃縮して得ら
れる。 本発明のメナキノン−4の同定は、高速液体ク
ロマトグラフイー、薄層クロマトグラフイー、
UV及びIRスペクトル、マススペクトル等の結果
からメナキノン−4であることを確認した。又定
量法としては高速液体クロマトグラフイー法を使
用した。 〔実施例〕 以下実施例にて具体的に説明する。 実施例 1 グリセロール 10g/、ポリペプトン 15
g/、酵母エキス 1g/、K2HPO42g/
、NaCl 2g/、MgSO4・7H2O 0.2g/
を含有する培地(PH7.0)−グリセロール液体培
地(M31培地)−1.5を3容の小型ジヤーフア
ーメンターに入れ、120℃、30分間加熱殺菌を行
ない、同じ培地を用いて30℃で1日間前培養(フ
ラスコ培養)されたフラボバクテリウム アクア
タイル(Flavobacterium aquatile)K3−15を接
種し、アンモニア水を添加することによりPHを
7.0に調節しながら、培養温度30℃で通気攪拌培
養を行なつた。対照としてフラボバクテリウム
アクアタイル(Flavobacterium aquatile)238
−7、同HNA 250−15、同USNr−2を全く同
じ方法で培養した。70時間培養した後の、培養液
及び乾燥菌体1g当りのメナキノン−4の含量を
測定した結果を第1表に示す。
法に関する。メナキノン−4は、医薬用のビタミ
ンK2として知られており、血液の凝固を促進す
る脂溶性ビタミンで抗出血性作用を有する重要な
生理活性物質である。 〔従来技術、発明が解決しようとする問題点〕 メナキノン−4の製造法としては、合成法およ
び動植物組織からの抽出法が知られているが、合
成法は原料の入手が困難な上コスト高であり、又
動植物組織からの抽出法も資源が限られ抽出操作
が煩雑なことも加わつてコスト高をまぬがれな
い。 反面、メナキノン−4を生産する微生物を見出
すことが出来れば、微生物を工業的に大量に生産
できるので、非常に有利であるが、今までメナキ
ノン−4を効率的に生産する微生物は見出されて
いない。 本発明は、前記の事情に鑑みてなされたもの
で、微生物によるメナキノン−4の生産を目的と
するものである。 〔問題点を解決するための手段〕 前記目的を達成すべく、本発明者が鋭意検討を
重ねた結果、フラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)に属しメナキノン
−4を生産しない菌株を親株として、変異処理を
行ない、メナキノン−4を生産する菌株を得るこ
とに成功し、本発明を完成した。 すなわち本発明は、フラボバクテリウム アク
アタイル(Flavobacterium aquatile)に属しメ
ナキノン−4を生産する微生物を培養して、メナ
キノン−4を菌体内に生成せしめ、これを採取す
ることを特徴とするメナキノン−4の製造法であ
る。 変異処理を行なう親株としては、フラボバクテ
リウム アクアタイル(Flavobacterium
aquatile)に属しメナキノン−5以上の側鎖にイ
ソプレン単位5以上を有するメナキノン生産微生
物が用いられる。これらフラボバクテリウム ア
クアタイル(Flavobacterium aquatile)に属す
るすべてのメナキノン生産微生物を親株としてこ
れを変異処理することにより、メナキノン−4を
生産する変異株を取得することは可能である。 変異処理方法としては、通常行なわれている方
法でよいが、就中、UV処理、N−メチル−N′−
ニトロ−N−ニトロソグアニジン(NTG)処理
およびエチルメタノサルフアネート(EMS)処
理などが好ましい。 変異処理した後のメナキノン−4生産変異株の
取得は、いろいろな方法−たとえばランダムスク
リーニング法、あるいは薬剤耐性株、薬剤感受性
株からのスクリーニング等の方法により行なうこ
とができる。薬剤としては、通常はメナキノン生
合成阻害物質が使用されるが、メナキノン生合成
阻害物質としてたとえば1−ヒドロキシ−2−ナ
フトエ酸、ウスニン酸およびメナジオン等があ
る。 メナキノン−4生産株を得る方法を以下に記
す。親株として、フラボバクテリウム アクアタ
イル(Flavobacterium aquatile)No.238−7(微
工研菌寄第8113号)を用いた。本菌株は、自然界
より新たに分離した菌株であるが、その分類学的
特徴からバージエイズ マニユアル オブ シス
テマテイツク バクテリオロジー 第1巻
(1984)によりフラボバクテリウム アクアタイ
ル(Flavobacterium aquatile)と同定した。こ
の菌の菌学的性質は、「ビタミン58巻 p.409〜
419(1984)」に記載されている。 フラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)No.238−7からたと
えばつぎのようにしてメナキノン−4生産菌が得
られる。すなわちペプトン−グリセロール液体培
地(M31培地)(グリセロール 10g、ポリペプ
トン 15g、酵母エキス 1g、K2HPO4 3
g、NaCl 2g、MgSO4・7H2O 0.2g およ
び純水 1000ml、PH7.0)で30℃、24時間生育さ
せたフラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)No.238−7をN−メ
チル−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジン
100μg/mlを含む0.1Mリン酸緩衝液(PH 7.0)
中に108個/mlとなるように懸濁し、30℃30分間
振盪した。その後遠心分離で集菌した菌体を、
0.1Mリン酸緩衝液で洗浄後、同様な緩衝液中に
106/mlとなるように懸濁した。1−ヒドロキシ
−2−ナフトエ酸 350μg/mlを含むペプトン
−グリセロール寒天培地(前記ペプトン−グリセ
ロール液体培地に寒天 20g/を添加したも
の)上に上記懸濁液0.1mlを塗布し、出現したコ
ロニーを1−ヒドロキシ−2−ナフトエ酸耐性株
として採取した。これらの耐性株の中からメナキ
ノン−4を生産するフラボバクテリウム アクア
タイル(Flavobacterium aquatile)HNA 250
−15(微工研菌寄第8114号)を得た。さらに、フ
ラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)HNA 250−15を親
株として、たとえばつぎのようにしてメナキノン
−4の生産性がより高い菌が得られる。すなわち
ペプトン−グリセロール液体培地で30℃、24時間
生育させたフラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)HNA 250−15を
0.1Mリン酸緩衝液(PH7.0)中に108個/mlとなる
ように懸濁させ、UV処理(10w紫外線ランプ2
本、40cm)を30秒間行なつた。ウスニン酸 4μ
g/mlを含むペプトン−グリセロール寒天培地上
に前記処理液0.1mlを塗布し、出現したコロニー
をウスニン酸耐性株として採取した。これらの耐
性株の中から、親株(HNA 250−15)に比べて
明らかに高いメナキノン−4生産性を有するフラ
ボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)USNr−2(微工研
菌寄第8115号)を得た。 さらに、フラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)USNr−2を親株と
して、たとえばつぎのようにしてメナキノン−4
の生産性がさらに一層高い菌が得られた。すなわ
ち変異処理は前記と同様なUV処理とした。メナ
ジオン 20μg/mlを含むペプトン−グリセロー
ル寒天培地上に前記処理液0.1mlを塗布し、こゝ
で出現したコロニーをメナジオン耐性株として採
取した。これらの耐性株の中から親株(USNr−
2)に比べてメナキノン−4生産性が明らかに一
層高いフラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)K3−15(微工研菌寄
第8116号)を得た。 これらのメナキノン−4生産微生物を培養する
に当つて用いられる栄養培地は、炭素源、窒素源
および無機塩などを含有する微生物の培養に用い
られる通常の培地が用いられる。 上記炭素源としては、これら微生物が資化しう
るものであればいずれでもよく、グルコース、フ
ラクトース、シユークロース、マルトース、廃糖
蜜、デン粉、デン粉加水分解物等の炭水化物、グ
リセロール、ソルビトール等の糖アルコール、ア
スパラギン酸、グルタミン酸、リジン、アラニ
ン、グリシン、プロリン、メチオニン等のアミノ
酸類、乳酸、ピルビン酸、酢酸、リンゴ酸、ギ
酸、コハク酸、フマール酸、クエン酸、プロピオ
ン酸、脂肪酸等の有機酸類、エタノール、プロパ
ノール、ブタノール等のアルコール類を単独ある
いは組合わせて使用できる。これらのうち特にグ
リセロールが好ましい。 窒素源としては、硫酸アンモニウム、尿素、硝
酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、ペプト
ン、肉エキス等が用いられる。これらのうちポリ
ペプトンが特に好ましい。 無機塩類としては、リン酸塩、マグネシウム
塩、鉄塩、その他必要に応じて微量金属塩が用い
られ、更にアミノ酸、核酸、ビタミン、酵母エキ
ス、麦芽エキス等生育促進物質も使用される。一
般にKH2PO4、NaClおよび酵母エキスをそれぞ
れ添加した場合にはメナキノン−4の含有量は増
大される。又使用菌株が栄養要求性を示す場合に
は、その要求性物質を培地に添加する。 更に、これら微生物の培養に当つて用いられる
上記培地に、イソペンテニルアルコール、ジメチ
ルアリルアルコール、ゲラニオール、フアルネソ
ールなどのアルコール類およびシキミ酸、D−サ
クシニル安息香酸、L−チロシン、パラヒドロキ
シフエニルピルビン酸、セダーウツドオイル、α
−ピネン、ジフエニルアミンなどを添加すること
により、無添加に比して菌体内のメナキノン−4
の蓄積量が増大する傾向にある。 微生物の培養はPH5〜8.5、培養温度20〜40℃
で1〜5日間好気的に振盪又は通気攪拌培養する
ことによつて行なわれる。なお通気量は溶存酸素
が制限因子とならぬように十分な量とされる必要
がある。メナキノン−4は微生物菌体中にほとん
ど全て蓄積されるので、培養液を遠心分離、又は
ろ過して菌体を分離した後、菌体から抽出、単離
される。 菌体からメナキノン−4を単離するには、常法
をそのまま適用できる。例えば、生菌体あるいは
乾燥菌体をアセトン中に懸濁し、60℃で2時間抽
出する。この抽出物を濃縮後、エーテルで抽出
し、シリカゲルカラムクロマトグラフイーを行な
い、メナキノン−4画分を分取し、濃縮して得ら
れる。 本発明のメナキノン−4の同定は、高速液体ク
ロマトグラフイー、薄層クロマトグラフイー、
UV及びIRスペクトル、マススペクトル等の結果
からメナキノン−4であることを確認した。又定
量法としては高速液体クロマトグラフイー法を使
用した。 〔実施例〕 以下実施例にて具体的に説明する。 実施例 1 グリセロール 10g/、ポリペプトン 15
g/、酵母エキス 1g/、K2HPO42g/
、NaCl 2g/、MgSO4・7H2O 0.2g/
を含有する培地(PH7.0)−グリセロール液体培
地(M31培地)−1.5を3容の小型ジヤーフア
ーメンターに入れ、120℃、30分間加熱殺菌を行
ない、同じ培地を用いて30℃で1日間前培養(フ
ラスコ培養)されたフラボバクテリウム アクア
タイル(Flavobacterium aquatile)K3−15を接
種し、アンモニア水を添加することによりPHを
7.0に調節しながら、培養温度30℃で通気攪拌培
養を行なつた。対照としてフラボバクテリウム
アクアタイル(Flavobacterium aquatile)238
−7、同HNA 250−15、同USNr−2を全く同
じ方法で培養した。70時間培養した後の、培養液
及び乾燥菌体1g当りのメナキノン−4の含量を
測定した結果を第1表に示す。
【表】
実施例 2
グリセロール 50g/、ポリペプトン 20
g/、酵母エキス 3g/、K2HPO46g/
、NaCl 2g/およびMgSO4・7H2O0.2
g/を含有する培地(PH7.0)1.5を3容の
小型ジヤーフアーメンターに入れ、120℃、30分
間加熱殺菌を行ない、実施例1のグリセロール培
地を用いて30℃で1日間前培養(フラスコ培養)
されたフラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)K3−15を接種し、
アンモニア水を添加することによりPHを7.0に調
節しながら培養温度28℃で通気攪拌培養を行なつ
た。 7日間培養を行なつたところ、菌体濃度10g/
であり、乾燥菌体1g当りのメナキノン−4含
量は、8.3mg/g・cellであつた。 実施例 3 培地に、セダー ウツド オイル(Cedar
woud oil)を0.4g/添加した以外は、実施例
2と同様にしてフラボバクテリウム アクアタイ
ル(Flavobacterium aquatile)K3−15の培養を
行なつた。培養日数と、菌体濃度、菌体中メナキ
ノン−4含量、培養液中メナキノン生産量の関係
を第2表に示す。
g/、酵母エキス 3g/、K2HPO46g/
、NaCl 2g/およびMgSO4・7H2O0.2
g/を含有する培地(PH7.0)1.5を3容の
小型ジヤーフアーメンターに入れ、120℃、30分
間加熱殺菌を行ない、実施例1のグリセロール培
地を用いて30℃で1日間前培養(フラスコ培養)
されたフラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)K3−15を接種し、
アンモニア水を添加することによりPHを7.0に調
節しながら培養温度28℃で通気攪拌培養を行なつ
た。 7日間培養を行なつたところ、菌体濃度10g/
であり、乾燥菌体1g当りのメナキノン−4含
量は、8.3mg/g・cellであつた。 実施例 3 培地に、セダー ウツド オイル(Cedar
woud oil)を0.4g/添加した以外は、実施例
2と同様にしてフラボバクテリウム アクアタイ
ル(Flavobacterium aquatile)K3−15の培養を
行なつた。培養日数と、菌体濃度、菌体中メナキ
ノン−4含量、培養液中メナキノン生産量の関係
を第2表に示す。
本発明によれば、医薬品として価値の高いメナ
キノン−4を微生物を培養することにより、容易
に得ることが出来る。
キノン−4を微生物を培養することにより、容易
に得ることが出来る。
Claims (1)
- 1 フラボバクテリウム アクアタイル
(Flavobacterium aquatile)に属しメナキノン
−4を生産する能力を有する微生物を培養してメ
ナキノン−4を菌体内に生成せしめ、これを採取
することを特徴とするメナキノン−4の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP5545885A JPS61216696A (ja) | 1985-03-19 | 1985-03-19 | メナキノン−4の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP5545885A JPS61216696A (ja) | 1985-03-19 | 1985-03-19 | メナキノン−4の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61216696A JPS61216696A (ja) | 1986-09-26 |
JPH0523749B2 true JPH0523749B2 (ja) | 1993-04-05 |
Family
ID=12999156
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP5545885A Granted JPS61216696A (ja) | 1985-03-19 | 1985-03-19 | メナキノン−4の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS61216696A (ja) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2797295B2 (ja) * | 1987-02-13 | 1998-09-17 | 三菱瓦斯化学株式会社 | 新規微生物および新規微生物を使用するメナキノン−4の製造法 |
JP5599319B2 (ja) * | 2008-11-04 | 2014-10-01 | 協和発酵バイオ株式会社 | メナキノン−4の製造法 |
CN113308500A (zh) * | 2021-06-22 | 2021-08-27 | 山东润德生物科技有限公司 | 一种从发酵液中提取维生素k2的方法 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61173792A (ja) * | 1985-01-29 | 1986-08-05 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | メナキノン−4の製造法 |
-
1985
- 1985-03-19 JP JP5545885A patent/JPS61216696A/ja active Granted
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61173792A (ja) * | 1985-01-29 | 1986-08-05 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | メナキノン−4の製造法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS61216696A (ja) | 1986-09-26 |
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