JPH0330674A - サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼの固定化による該酵素の作用変換方法 - Google Patents
サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼの固定化による該酵素の作用変換方法Info
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- JPH0330674A JPH0330674A JP16519189A JP16519189A JPH0330674A JP H0330674 A JPH0330674 A JP H0330674A JP 16519189 A JP16519189 A JP 16519189A JP 16519189 A JP16519189 A JP 16519189A JP H0330674 A JPH0330674 A JP H0330674A
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- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、サイクロデキストリングルカノトランスフェ
ラーゼ(CGTaseと略す)の固定化による該酵素の
作用変換方法に間するものである。
ラーゼ(CGTaseと略す)の固定化による該酵素の
作用変換方法に間するものである。
本発明の方法によりCにTa5eは環化反応(サイクロ
デキストリン合成反応)または糖転移反応を選択的に行
わせることができるようになり、サイクロデキストリン
またはネオトレハロース、コージビオース、ニゲロース
などを効率的に生産できる。
デキストリン合成反応)または糖転移反応を選択的に行
わせることができるようになり、サイクロデキストリン
またはネオトレハロース、コージビオース、ニゲロース
などを効率的に生産できる。
尚、ここでいう糖転移反応とはマルトース、マルトトリ
オースなとのα−1,4グルカンからα刊、2(コージ
ビオース)、 α−1,3にニゲロース)、 α−1,
4(マルトース)、 α−1,6(イソマルトース)、
α−1,1−β(ネオトレハロース)など′の三糖類、
および五糖類以上の糖を新たに生成する作用であり、こ
れらを転移筒と呼称する。
オースなとのα−1,4グルカンからα刊、2(コージ
ビオース)、 α−1,3にニゲロース)、 α−1,
4(マルトース)、 α−1,6(イソマルトース)、
α−1,1−β(ネオトレハロース)など′の三糖類、
および五糖類以上の糖を新たに生成する作用であり、こ
れらを転移筒と呼称する。
CGTaseは本来、分子内転移である環状糖合成反応
(環化、cyclization) : 分子間転移
である開環糖転移反応(couρling)、直鎖糖分
子間糖転移反応(disproportionaLio
n)および加水分解の4作用を触媒することが知られて
いる。これらの反応は同時に起こるので、各種の糖が生
成し、サイクロデキストリンまたは転移糖を選択的に生
成させることはできなかった。
(環化、cyclization) : 分子間転移
である開環糖転移反応(couρling)、直鎖糖分
子間糖転移反応(disproportionaLio
n)および加水分解の4作用を触媒することが知られて
いる。これらの反応は同時に起こるので、各種の糖が生
成し、サイクロデキストリンまたは転移糖を選択的に生
成させることはできなかった。
これまで、酵素の固定化については各種の方法が開発さ
れ、研究例も多く、CGTaseについても例えば、
T、Kato and K、1Iorikosh
i: 1mmobilizedCyclodextr
in Glucanotransferase of
an Alka−ophilic Bacillus
sp、 No、38−2. Carboh drate
Research、 26.595(+984)、日本
公開特許公報、昭03−421397などがある。
れ、研究例も多く、CGTaseについても例えば、
T、Kato and K、1Iorikosh
i: 1mmobilizedCyclodextr
in Glucanotransferase of
an Alka−ophilic Bacillus
sp、 No、38−2. Carboh drate
Research、 26.595(+984)、日本
公開特許公報、昭03−421397などがある。
しかし、これらの方法は、単にCGTaseをダイヤイ
オン、ポリアクリロニトリル、シリカゲルなどに固定化
して、本来のCGTase活性を全体として発iHさせ
てサイクロデキストリンを生産することを目的とするも
ので、積極的にCGTaseの各種作用を個別に発現さ
せることはできなかった。
オン、ポリアクリロニトリル、シリカゲルなどに固定化
して、本来のCGTase活性を全体として発iHさせ
てサイクロデキストリンを生産することを目的とするも
ので、積極的にCGTaseの各種作用を個別に発現さ
せることはできなかった。
また、本発明者らは、これまでBacillusL旧口
」コ」」のCGTaseを澱粉糖に作用させるとα−1
,4結合以外の結合を持つオリゴ糖が生成することを報
告し、この中でもα−1,1−β結合という自然界では
ほとんど見られない非還元性二muの製法も確立してい
る(日本公開特許公報、昭63−218492)。
」コ」」のCGTaseを澱粉糖に作用させるとα−1
,4結合以外の結合を持つオリゴ糖が生成することを報
告し、この中でもα−1,1−β結合という自然界では
ほとんど見られない非還元性二muの製法も確立してい
る(日本公開特許公報、昭63−218492)。
そこで本発明者らは、先ず、CGTaseの各種作用を
個別に測定する方法を確立した。すなわち、■分子内転
移であるサイクロデキストリン合成活性については、可
溶性澱粉を基質とし反応実施後グルコアミラーゼ処理し
、サイクロデキストリン以外のデキストリンを全てグル
コースとした後にシリカ−NH2タイプの高速液クロカ
ラムでサイクロデキストリンを定量する方法を用い、
また■分子間糖転移活性については、マルトースを基質
とし遊離してくるグルコース量をグルコースオキシダー
ゼ法または高速液グロにより定量する方法を用い た。
個別に測定する方法を確立した。すなわち、■分子内転
移であるサイクロデキストリン合成活性については、可
溶性澱粉を基質とし反応実施後グルコアミラーゼ処理し
、サイクロデキストリン以外のデキストリンを全てグル
コースとした後にシリカ−NH2タイプの高速液クロカ
ラムでサイクロデキストリンを定量する方法を用い、
また■分子間糖転移活性については、マルトースを基質
とし遊離してくるグルコース量をグルコースオキシダー
ゼ法または高速液グロにより定量する方法を用い た。
水沫を用いて、固定化した(GTaseの全てについて
、二種の反応速度を測定し、何れかの作用を選択的に発
現する固定化酵素剤を見い出し、それを調製することを
目的として鋭意研究を重ねてきた。
、二種の反応速度を測定し、何れかの作用を選択的に発
現する固定化酵素剤を見い出し、それを調製することを
目的として鋭意研究を重ねてきた。
そこで本発明者らは、各種の固定化基材を集め、各種方
法でCGTaseを固定化して、2つの活性測定法を用
いて検討した結果、CGTaseの活性は固定化担体を
選択することにより、分子内転移であるサイクロデキス
トリン合成活性と分子間糖転移活性をそれぞれ主として
発現することを見い出した。
法でCGTaseを固定化して、2つの活性測定法を用
いて検討した結果、CGTaseの活性は固定化担体を
選択することにより、分子内転移であるサイクロデキス
トリン合成活性と分子間糖転移活性をそれぞれ主として
発現することを見い出した。
これまでは、疎水性結合トビをもつ樹脂などに固定化し
たCGTaseについては、その活性を通常、ヨウ素澱
粉反応で澱粉分解活性を検出していたので、転移活性、
サイクロデキストリン合成活性のみが発現していてもネ
ガテブと判定されていた。
たCGTaseについては、その活性を通常、ヨウ素澱
粉反応で澱粉分解活性を検出していたので、転移活性、
サイクロデキストリン合成活性のみが発現していてもネ
ガテブと判定されていた。
尚、CGTaseのIIvi素から精製標品までの各精
製段階における両者の活性比は同じであることから、こ
れらの活性部位は同一酵素蛋白上に存在することが示唆
される。
製段階における両者の活性比は同じであることから、こ
れらの活性部位は同一酵素蛋白上に存在することが示唆
される。
本発明を以下に示す。
l)サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ
を固定化して該酵素の作用を変換する方法・ 2)固定化基材がイオン交換樹脂、キトサンビーズのい
ずれかである上記方法。
を固定化して該酵素の作用を変換する方法・ 2)固定化基材がイオン交換樹脂、キトサンビーズのい
ずれかである上記方法。
3)アニオン交換樹脂および/・またはキトサンビーズ
によりサイクロデキストリングルカノトランスフェラー
ゼを固定化し、糖転移反応を選択的に発現する酵素に変
換する方法。
によりサイクロデキストリングルカノトランスフェラー
ゼを固定化し、糖転移反応を選択的に発現する酵素に変
換する方法。
4)カチオン交換樹脂によりサイクロデキストリングル
カノトランスフェラーゼを固定化し、環化反応を選択的
に発現する酵素に変換する方法。
カノトランスフェラーゼを固定化し、環化反応を選択的
に発現する酵素に変換する方法。
5)固定化に際し、グルタルアルデヒドなとの架橋剤を
用いる上記2〜4項記載の方法。
用いる上記2〜4項記載の方法。
固定化基材としては、イオン交換樹脂、″キトサンビー
ズな主として用いたが、この他の固定化基材でも選択す
れば本発明の方法に適用できる。
ズな主として用いたが、この他の固定化基材でも選択す
れば本発明の方法に適用できる。
イオン交換樹脂としては、陰イオン交換樹脂、陽イオン
交換樹脂があり、製品としてはオルガノ社のアンバーラ
イト、三菱化成社のダイヤイオン、ダウ・ケミカル社の
ダウエックスなどがある。
交換樹脂があり、製品としてはオルガノ社のアンバーラ
イト、三菱化成社のダイヤイオン、ダウ・ケミカル社の
ダウエックスなどがある。
キトサンは、グルコサミンがβ−1,4結合しているセ
ルロース類似の分子構造を持った多糖類で、その分子内
にアミノ基を何している為、グルタルアルデヒド等の架
橋剤を用いて容易に酵素なとの蛋白質を固定化すること
が可能である。最近、キトサンをビーズ状に成形した製
品や、キトサンに4々の架橋処理を行い物理的強度や耐
酸性を高めたビーズ状の製品が市販されている。
ルロース類似の分子構造を持った多糖類で、その分子内
にアミノ基を何している為、グルタルアルデヒド等の架
橋剤を用いて容易に酵素なとの蛋白質を固定化すること
が可能である。最近、キトサンをビーズ状に成形した製
品や、キトサンに4々の架橋処理を行い物理的強度や耐
酸性を高めたビーズ状の製品が市販されている。
以下に固定化方法を述べる。
尚、固定化基材、固定化方法は以下にのべることに限っ
たものではなく、担体としてはCGTaseを固定化で
きるものであれば、本発明の方法に利用できる。
たものではなく、担体としてはCGTaseを固定化で
きるものであれば、本発明の方法に利用できる。
固定化担体としてイオン交換樹脂を用いた場合、吸着法
では、担体1gに対しCG T a se、 例えば
Bac i l −1us maceransのCG
Taseを400国際単位(サイクロデキストリン合成
活性)添加し30℃、2時間振盪後、0.1M酢M緩衝
液(pH6,0)で洗浄し固定化酵素を得た。
では、担体1gに対しCG T a se、 例えば
Bac i l −1us maceransのCG
Taseを400国際単位(サイクロデキストリン合成
活性)添加し30℃、2時間振盪後、0.1M酢M緩衝
液(pH6,0)で洗浄し固定化酵素を得た。
固定化を強固にするために、架橋剤としてグルタルアル
デヒドを用いる方法では担体1gに71シ5工のグルタ
ルアルデヒドを1−加え30℃、2tl1間振盪し、緩
iij液で洗浄後は吸着法と同様にBaci l 1u
sffl a Ce r a IT Sの#累を400
単債添加し2時間振盪後緩衝ταで洗浄し固定化酵素を
得た。
デヒドを用いる方法では担体1gに71シ5工のグルタ
ルアルデヒドを1−加え30℃、2tl1間振盪し、緩
iij液で洗浄後は吸着法と同様にBaci l 1u
sffl a Ce r a IT Sの#累を400
単債添加し2時間振盪後緩衝ταで洗浄し固定化酵素を
得た。
キトサンビーズを用いた場合も同様にして固定化酵素を
得た。
得た。
架橋剤を用いる場合、架橋剤としてはグルタルアルデヒ
ドが広く用いられているが、この他、ビスジアゾベンジ
ジン、ヘキサメチレンジイソシアナート、 トルエンジ
イソシアナート、ヘキサメチレンジイソチオシアナート
、N、N’−エチしンビスマレインイミドなとがあり、
これらを選択するかまたは組み合わせて用いることもで
き、ゲニピンを架橋剤として用いる場合は、ゲニピンを
l工(W/V)とし、担体と酵素との架橋反応は40℃
で一夜行った。
ドが広く用いられているが、この他、ビスジアゾベンジ
ジン、ヘキサメチレンジイソシアナート、 トルエンジ
イソシアナート、ヘキサメチレンジイソチオシアナート
、N、N’−エチしンビスマレインイミドなとがあり、
これらを選択するかまたは組み合わせて用いることもで
き、ゲニピンを架橋剤として用いる場合は、ゲニピンを
l工(W/V)とし、担体と酵素との架橋反応は40℃
で一夜行った。
この他の共有結合法、イオン結合法、物理的吸ml法、
架橋法、包括法など各種の固定化法でも本発明の方法を
適用できる。また、本発明に基づいて、他の固定化基材
およびまたは各種架橋剤との」合せての固定によりCG
Tase作用を変換できる可能性は充分に予想できる。
架橋法、包括法など各種の固定化法でも本発明の方法を
適用できる。また、本発明に基づいて、他の固定化基材
およびまたは各種架橋剤との」合せての固定によりCG
Tase作用を変換できる可能性は充分に予想できる。
固定化用の酵素剤としては1lacillus mac
eranに躯、好アルカリ性Bacillus sp、
などのCGTase生産菌由来のものであればいずれで
も使用でき、精製酵素から粗酵素標品までの各種ell
!段階のものが用いられるが、担体当りの活性を高める
ためには澱粉吸脱着ζこより部分精製した酵素標品、さ
らには硫安塩析により精製した酵素剤の使用が望ましい
。
eranに躯、好アルカリ性Bacillus sp、
などのCGTase生産菌由来のものであればいずれで
も使用でき、精製酵素から粗酵素標品までの各種ell
!段階のものが用いられるが、担体当りの活性を高める
ためには澱粉吸脱着ζこより部分精製した酵素標品、さ
らには硫安塩析により精製した酵素剤の使用が望ましい
。
これらの方法で得られた固定化酵素について、蛋白の固
定化率及び活性の発現率について調べた結果を表1に示
す1表中、CERはカチオン交)!!!樹脂、AERは
アニオン交19樹脂、CBはキトサンビーズである。ま
たグルタルアルデヒド、処理したものについては(G)
で示した。蛋白の固定化率については、洗浄Z夜中の蛋
白量を測定して添加蛋白量から差し弓くことによって求
め、酵素活性については前述の三方法について実施し初
発活性を10ozとしたときの発現率で示した。■がサ
イクロデキストリン合成活性で、■が転移活性を示す。
定化率及び活性の発現率について調べた結果を表1に示
す1表中、CERはカチオン交)!!!樹脂、AERは
アニオン交19樹脂、CBはキトサンビーズである。ま
たグルタルアルデヒド、処理したものについては(G)
で示した。蛋白の固定化率については、洗浄Z夜中の蛋
白量を測定して添加蛋白量から差し弓くことによって求
め、酵素活性については前述の三方法について実施し初
発活性を10ozとしたときの発現率で示した。■がサ
イクロデキストリン合成活性で、■が転移活性を示す。
尚、ここでの活性表示は1分間に各々1μモルのサイク
ロデキストリン合成能、グルコース生成能である。
ロデキストリン合成能、グルコース生成能である。
カチオン交換樹脂にっては、蛋白吸着率は何れにおいて
も高いll!Iを示した。活性発現についてはNo、l
がサイクロデキストリン合成活性で高い値を示したが、
その他は痕跡程度であり、転移活性は全く発現しなかフ
た。
も高いll!Iを示した。活性発現についてはNo、l
がサイクロデキストリン合成活性で高い値を示したが、
その他は痕跡程度であり、転移活性は全く発現しなかフ
た。
アニオン交換樹脂については、蛋白吸着率は担体により
差異があるが、固定化後の活性発現についてはグルタル
アルデヒド処理の有無に係らずサイクロデキストリン合
成活性がほとんど発現せず転移活性が30〜40xの発
現率であった。
差異があるが、固定化後の活性発現についてはグルタル
アルデヒド処理の有無に係らずサイクロデキストリン合
成活性がほとんど発現せず転移活性が30〜40xの発
現率であった。
キトサンビーズについては、何れも902程度の蛋白吸
If率を示し、アニオン交換樹脂と同様にサイクロデキ
ストリン合成活性はほとんど示さず、転移活性について
は何れも50x程の高い活性発131率を示した。
If率を示し、アニオン交換樹脂と同様にサイクロデキ
ストリン合成活性はほとんど示さず、転移活性について
は何れも50x程の高い活性発131率を示した。
表I CGTaseの固定化による各種活性の発現率
このように大まかに、CGTaseは■アニオン交換樹
脂およびまたはキトサンビーズにより固定化し、糖転移
反応を選択的に発現する酵素に変換することができ、■
カチオン交換樹脂により固定化し、環化反応を選択的に
発現する酵素に変換することができる。
このように大まかに、CGTaseは■アニオン交換樹
脂およびまたはキトサンビーズにより固定化し、糖転移
反応を選択的に発現する酵素に変換することができ、■
カチオン交換樹脂により固定化し、環化反応を選択的に
発現する酵素に変換することができる。
以下に実施例をあげて本発明をさらに詳しく説明するが
、これらに限定されるものではない。
、これらに限定されるものではない。
実施例1.担体く三菱化成製、カチオン交換樹脂、すに
−10) Igに対しBacillus macer
ans の精製酵素を400国際単位(サイクロデキ
ストリン合成活性)添加し、2時間振盪後、酢酸緩衝液
で洗浄し、蛋白固定化率93X、サイクロデキストリン
合成活性発現率2?tの固定化酵素を得た6本固定化酵
素は糖分子間転移作用を殆ど示さず、したがって、可溶
性澱粉を基質として用いた場合、過剰のヨウ素液の反応
液への添加によりヨウ素−澱粉反応の青色を示す。
−10) Igに対しBacillus macer
ans の精製酵素を400国際単位(サイクロデキ
ストリン合成活性)添加し、2時間振盪後、酢酸緩衝液
で洗浄し、蛋白固定化率93X、サイクロデキストリン
合成活性発現率2?tの固定化酵素を得た6本固定化酵
素は糖分子間転移作用を殆ど示さず、したがって、可溶
性澱粉を基質として用いた場合、過剰のヨウ素液の反応
液への添加によりヨウ素−澱粉反応の青色を示す。
実施例2.担体(三菱化成製、アニオン交換樹脂、V^
−20)を用いた以外は実施例1と同様にして固定化率
。45z1 転移活性発現率41Xの固定化酵素を得
た。
−20)を用いた以外は実施例1と同様にして固定化率
。45z1 転移活性発現率41Xの固定化酵素を得
た。
本固定化酵素のサイクロデキストリン合成活性発現率は
0.2xと著しく低い。
0.2xと著しく低い。
実施例3.担体(三菱化成製、アニオン交換樹脂、WA
−30) Igに対し、5Iのグルタルアルデヒド(架
橋剤)を1−加え、2時間振盪し、酢酸緩衝液で洗浄後
は実施例1と同様にして、固定化率641、転移活性発
現率47にの固定化酵素を得た0本固定化酵素のサイク
ロデキストリン合成活性発現率は0.4xと著し く
低い。
−30) Igに対し、5Iのグルタルアルデヒド(架
橋剤)を1−加え、2時間振盪し、酢酸緩衝液で洗浄後
は実施例1と同様にして、固定化率641、転移活性発
現率47にの固定化酵素を得た0本固定化酵素のサイク
ロデキストリン合成活性発現率は0.4xと著し く
低い。
実施例4.担体く富士紡績製、キトサンビーズ、BCl
l−2510)を用いた以外は実施例1と同様にして固
定化率94K、転移活性発現率42にの固定化酵素を得
た0本固定化酵素のサイクロデキストリン合成活性発現
率は0.2xと著しく低い。
l−2510)を用いた以外は実施例1と同様にして固
定化率94K、転移活性発現率42にの固定化酵素を得
た0本固定化酵素のサイクロデキストリン合成活性発現
率は0.2xと著しく低い。
実施例5、担体(富士紡績製、キトサンビーズ、BCW
−2510)を用いた以外は実施例3と同様にして固定
化率91!、転移活性発現率48Xの固定化酵素を得た
0本固定化酵素のサイクロデキストリン合成活性発現率
はO,lXと著しく低い。
−2510)を用いた以外は実施例3と同様にして固定
化率91!、転移活性発現率48Xの固定化酵素を得た
0本固定化酵素のサイクロデキストリン合成活性発現率
はO,lXと著しく低い。
CGTaseを固定化担体を選択して固定化することで
酵素の反応様式を変化させ、多糖分子内転移であるサイ
クロデキストリン合成活性または糖分子間転移反応であ
るα・1,4グルカンからのニゲロース、ネオトレハロ
ース、コージビオース、イソマルトース合成反応を主と
して起こさせ、これらの糖を選択的に生成させることが
できる。さらに、酵素の繰り返し利用ができ、経済性が
著しく高まる。
酵素の反応様式を変化させ、多糖分子内転移であるサイ
クロデキストリン合成活性または糖分子間転移反応であ
るα・1,4グルカンからのニゲロース、ネオトレハロ
ース、コージビオース、イソマルトース合成反応を主と
して起こさせ、これらの糖を選択的に生成させることが
できる。さらに、酵素の繰り返し利用ができ、経済性が
著しく高まる。
したがって、本発明の方法で製造された酵素剤はサイク
ロデキストリン、ネオトレハロース、ニゲロース、コー
ジビオースなどの食品素材を連続的に効率的に製造する
システム用に利用できる。
ロデキストリン、ネオトレハロース、ニゲロース、コー
ジビオースなどの食品素材を連続的に効率的に製造する
システム用に利用できる。
基質としてはマルトース純品に限らず、マルトース混合
物、デキストリン、マルトトリオ−スル澱粉までの混合
物でもよい。固定化酵素カラムにより得られた反応液は
通常の脱塩、脱色工程、例えば陽イオン交換樹脂及び陰
イオン交換樹脂等のカラムに通液することて連続的に精
製することができる。
物、デキストリン、マルトトリオ−スル澱粉までの混合
物でもよい。固定化酵素カラムにより得られた反応液は
通常の脱塩、脱色工程、例えば陽イオン交換樹脂及び陰
イオン交換樹脂等のカラムに通液することて連続的に精
製することができる。
本発明のシステムを用いれは、サイクロデキストリンま
たはニゲロース、ネ第1・レバロースなとを主として含
む糖混合2夜が得られるが、 さらに、これらの純度を
高めるには、固定化酵素反応工程と、市販のゲル濾過剤
やイオン交換樹脂、活性炭等のカラムクロマトグラフィ
ー、または種々の膜を用いた膜外MJ縮などと組み合わ
せることも考えられる。カラムクロマトグラフィー、ま
たは膜分離等で得られた、これら以外の糖類は、副産物
として利用することもてきる。
たはニゲロース、ネ第1・レバロースなとを主として含
む糖混合2夜が得られるが、 さらに、これらの純度を
高めるには、固定化酵素反応工程と、市販のゲル濾過剤
やイオン交換樹脂、活性炭等のカラムクロマトグラフィ
ー、または種々の膜を用いた膜外MJ縮などと組み合わ
せることも考えられる。カラムクロマトグラフィー、ま
たは膜分離等で得られた、これら以外の糖類は、副産物
として利用することもてきる。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ
を固定化して該酵素の作用を変換する方法。 2)固定化基材がイオン交換樹脂、キトサンビーズのい
ずれかである請求項1記載の方法。 3)アニオン交換樹脂および/またはキトサンビーズに
よりサイクロデキストリングルカノトランスフエラーゼ
を固定化し、糖転移反応を選択的に発現する酵素に変換
する方法。4)カチオン交換樹脂によりサイクロデキス
トリングルカノトランスフェラーゼを固定化し、環化反
応を選択的に発現する酵素に変換する方法。 5)固定化に際し、グルタルアルデヒドなどの架橋剤を
用いる請求項2、3、4記載の方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1165191A JPH0771489B2 (ja) | 1989-06-29 | 1989-06-29 | 転移糖の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1165191A JPH0771489B2 (ja) | 1989-06-29 | 1989-06-29 | 転移糖の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0330674A true JPH0330674A (ja) | 1991-02-08 |
JPH0771489B2 JPH0771489B2 (ja) | 1995-08-02 |
Family
ID=15807569
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1165191A Expired - Fee Related JPH0771489B2 (ja) | 1989-06-29 | 1989-06-29 | 転移糖の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0771489B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2002000290A (ja) * | 2000-06-20 | 2002-01-08 | Cci Corp | 固定化酵素を用いたクロマノール配糖体組成物の製造方法 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61185196A (ja) * | 1985-02-14 | 1986-08-18 | Shokuhin Sangyo Baioriakutaa Syst Gijutsu Kenkyu Kumiai | サイクロデキストリンの生成方法 |
JPS61185188A (ja) * | 1985-02-14 | 1986-08-18 | Shokuhin Sangyo Baioriakutaa Syst Gijutsu Kenkyu Kumiai | 固定化酵素 |
JPS6344886A (ja) * | 1986-08-13 | 1988-02-25 | Japanese Res & Dev Assoc Bio Reactor Syst Food Ind | 固定化酵素 |
JPS63196290A (ja) * | 1987-02-09 | 1988-08-15 | Nippon Shokuhin Kako Ltd | 固定化酵素 |
-
1989
- 1989-06-29 JP JP1165191A patent/JPH0771489B2/ja not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61185196A (ja) * | 1985-02-14 | 1986-08-18 | Shokuhin Sangyo Baioriakutaa Syst Gijutsu Kenkyu Kumiai | サイクロデキストリンの生成方法 |
JPS61185188A (ja) * | 1985-02-14 | 1986-08-18 | Shokuhin Sangyo Baioriakutaa Syst Gijutsu Kenkyu Kumiai | 固定化酵素 |
JPS6344886A (ja) * | 1986-08-13 | 1988-02-25 | Japanese Res & Dev Assoc Bio Reactor Syst Food Ind | 固定化酵素 |
JPS63196290A (ja) * | 1987-02-09 | 1988-08-15 | Nippon Shokuhin Kako Ltd | 固定化酵素 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0771489B2 (ja) | 1995-08-02 |
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