JPH0310629B2 - - Google Patents
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- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
- C07D487/00—Heterocyclic compounds containing nitrogen atoms as the only ring hetero atoms in the condensed system, not provided for by groups C07D451/00 - C07D477/00
- C07D487/02—Heterocyclic compounds containing nitrogen atoms as the only ring hetero atoms in the condensed system, not provided for by groups C07D451/00 - C07D477/00 in which the condensed system contains two hetero rings
- C07D487/06—Peri-condensed systems
-
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- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
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Description
【発明の詳細な説明】
抗生物質CC−1065は、合衆国特許第4169888号
で化学的及び物理的変数によつて明らかにされ特
許請求される。その後抗生物質CC−1065の構造
は「抗生物質CC−1065の構造の立証(Structure
Proof of Amtibiotic CC−1065)」デイー・ジ
ー・マーチン(D.G.Martin)、シー・ジー・シデ
スター(C.G.Chidester)、デイー・ジエー・デユ
チヤンプ(D.J.Duchamp)、及びエス・エイ・ミ
ズサク(S.A.Mizsak)、J.Antibiot.33巻902頁
(1980年)で明らかにされたとおり解明された。
抗生物質CC−1065の構造を式1に示す。抗生物
質CC−1065は三つの断片の系からなり、分子の
最も不安定な部分は1,2,8,8a−シクロプ
ロパ〔C〕ベンゾ〔1,2−b:4,3−b′〕ジ
ピロール−4(5H)−オンであり、本明細書では
これは化合物(12)として示す。抗生物質CC−
1065の減成によつてこの断片を得ようとする試み
は失敗した。このため、化合物(12)を得る先行
技術の方法は知られていない。
で化学的及び物理的変数によつて明らかにされ特
許請求される。その後抗生物質CC−1065の構造
は「抗生物質CC−1065の構造の立証(Structure
Proof of Amtibiotic CC−1065)」デイー・ジ
ー・マーチン(D.G.Martin)、シー・ジー・シデ
スター(C.G.Chidester)、デイー・ジエー・デユ
チヤンプ(D.J.Duchamp)、及びエス・エイ・ミ
ズサク(S.A.Mizsak)、J.Antibiot.33巻902頁
(1980年)で明らかにされたとおり解明された。
抗生物質CC−1065の構造を式1に示す。抗生物
質CC−1065は三つの断片の系からなり、分子の
最も不安定な部分は1,2,8,8a−シクロプ
ロパ〔C〕ベンゾ〔1,2−b:4,3−b′〕ジ
ピロール−4(5H)−オンであり、本明細書では
これは化合物(12)として示す。抗生物質CC−
1065の減成によつてこの断片を得ようとする試み
は失敗した。このため、化合物(12)を得る先行
技術の方法は知られていない。
本発明の化合物(12)は式2で明らかにされた
11段階方法によつてつくられる。本化合物、並び
に本明細書で明らかにされたある中間体類は、あ
る細菌、例えば枯草菌(Bacillus subtilis)、肺
炎杆菌、ザルチーナ・ルテア菌(Sarcina
lutea)、黄色ブドウ球菌、及びミコバクテリウ
ム・アビウム菌(Mycobacterium avium)菌に
対して活性がある。従つてこれらの化合物は、洗
つて積み重ねた食器類の黄色ブドウ球菌で汚染さ
れたものを消毒するのに使用できる。更に本発明
の抗菌活性化合物は洗濯した衣類の制菌リンス剤
として、及び含浸紙と含浸織物の制菌リンス剤と
して使用でき、又平板検定法や微生物培地で感受
性菌の生育を抑制するのにも有用である。一般
に、本発明の抗菌活性化合物は、合衆国特許第
4169888号で抗生物質CC−1065号に対して明らか
にされたものと同じ方法で使用できる。これらの
用途は抗生物質の技術で周知である。従つてこの
微生物学的手法は、このような使い方を行なう当
業者に容易に利用できるものである。
11段階方法によつてつくられる。本化合物、並び
に本明細書で明らかにされたある中間体類は、あ
る細菌、例えば枯草菌(Bacillus subtilis)、肺
炎杆菌、ザルチーナ・ルテア菌(Sarcina
lutea)、黄色ブドウ球菌、及びミコバクテリウ
ム・アビウム菌(Mycobacterium avium)菌に
対して活性がある。従つてこれらの化合物は、洗
つて積み重ねた食器類の黄色ブドウ球菌で汚染さ
れたものを消毒するのに使用できる。更に本発明
の抗菌活性化合物は洗濯した衣類の制菌リンス剤
として、及び含浸紙と含浸織物の制菌リンス剤と
して使用でき、又平板検定法や微生物培地で感受
性菌の生育を抑制するのにも有用である。一般
に、本発明の抗菌活性化合物は、合衆国特許第
4169888号で抗生物質CC−1065号に対して明らか
にされたものと同じ方法で使用できる。これらの
用途は抗生物質の技術で周知である。従つてこの
微生物学的手法は、このような使い方を行なう当
業者に容易に利用できるものである。
上記のように、化合物(12)をつくる11段階方
法は式2に示してある。この段階は以下のとおり
である。
法は式2に示してある。この段階は以下のとおり
である。
段階1−合成手掛りの第一段階(芳香族の親核性
置換)は、ジエイ・ブールデーズ(J.
Bourdais)及びシー・マヤー(C.Mahieu)、
Compt.Redux〔C〕、263巻84頁(1966年)に
記載されている。又ジエイ・ブールデーズ及
びシー・ジヤーメイン(C.Germain)、Tet.
Letters 195(1970年)も参照のこと。種々の
R1基は文献(段階8の下で詳細に述べてい
る適当な参考文献)に記載の手順により、(1)
のフエノール前駆物質上に導入できる。使用
される種々のマロネート類、β−ケトエステ
ル類及びβ−ジケトン類はすべて既知化合物
類である。
置換)は、ジエイ・ブールデーズ(J.
Bourdais)及びシー・マヤー(C.Mahieu)、
Compt.Redux〔C〕、263巻84頁(1966年)に
記載されている。又ジエイ・ブールデーズ及
びシー・ジヤーメイン(C.Germain)、Tet.
Letters 195(1970年)も参照のこと。種々の
R1基は文献(段階8の下で詳細に述べてい
る適当な参考文献)に記載の手順により、(1)
のフエノール前駆物質上に導入できる。使用
される種々のマロネート類、β−ケトエステ
ル類及びβ−ジケトン類はすべて既知化合物
類である。
段階2−還元。
段階3−官能器の交換。特に本明細書に記載の化
学は、X=SO2CH3の場合である。例えばメ
シレート又はトシレートは、ピリジン(塩化
メチレンのような溶媒を加えた場合と加えな
い場合)、又はトリアルキルアミン類(溶媒
を伴う)のような他の酸受容体及び対応する
塩化スルホニルを使用して、この技術で知ら
れた標準条件下でつくることができる。4の
ハロゲン類似体類は、Ph3P/CCl4(CBr4)
とN−ヨードサクシンイミド/トリフエニル
ホスフインのようなこの技術で知られた標準
手順によつてつくることができる。
学は、X=SO2CH3の場合である。例えばメ
シレート又はトシレートは、ピリジン(塩化
メチレンのような溶媒を加えた場合と加えな
い場合)、又はトリアルキルアミン類(溶媒
を伴う)のような他の酸受容体及び対応する
塩化スルホニルを使用して、この技術で知ら
れた標準条件下でつくることができる。4の
ハロゲン類似体類は、Ph3P/CCl4(CBr4)
とN−ヨードサクシンイミド/トリフエニル
ホスフインのようなこの技術で知られた標準
手順によつてつくることができる。
段階4−還元−環化。この段階はインドリン類
(ジヒドロインドール類)の新規調製法であ
る。これはニトロからアミノ基への還元と、
それと同時に起る分子内環化を含み、(5)を生
ずる。本明細書で詳細に記載する還元段階
は、第三級アミンの存在下にアルコール中で
H2、PtO2を利用している。これらはこの技
術で標準的な水素添加条件である。又パラジ
ウム又はニツケル触媒も使用でき、ピリジン
のような、第三級アミン以外の塩基も使用で
きる。代わりの還元事情では酸中のFe又は
Ticl3、又はSnCl2を使用できる。これは次に
(5)への環化を起すために、塩基処理を含む別
の段階を必要とするであろう。鉄による還元
の一例はFe/CH3CO2H/CH3CH2OHを使
う(ジー・エス・ポンチセロ(G.S.
Ponticello)及びジエイ・ジエイ・ボールド
ウイン(J.J.Baldwin)、J.Org.Chem.44巻
4003頁(1979年))。R1=CH2Ph又は−
CH2CH=CH2の場合にはこれらの条件が必
要となる。
(ジヒドロインドール類)の新規調製法であ
る。これはニトロからアミノ基への還元と、
それと同時に起る分子内環化を含み、(5)を生
ずる。本明細書で詳細に記載する還元段階
は、第三級アミンの存在下にアルコール中で
H2、PtO2を利用している。これらはこの技
術で標準的な水素添加条件である。又パラジ
ウム又はニツケル触媒も使用でき、ピリジン
のような、第三級アミン以外の塩基も使用で
きる。代わりの還元事情では酸中のFe又は
Ticl3、又はSnCl2を使用できる。これは次に
(5)への環化を起すために、塩基処理を含む別
の段階を必要とするであろう。鉄による還元
の一例はFe/CH3CO2H/CH3CH2OHを使
う(ジー・エス・ポンチセロ(G.S.
Ponticello)及びジエイ・ジエイ・ボールド
ウイン(J.J.Baldwin)、J.Org.Chem.44巻
4003頁(1979年))。R1=CH2Ph又は−
CH2CH=CH2の場合にはこれらの条件が必
要となる。
ニトロ還元に続いて、その場でのインドー
ルへの環化を行なう考え方は、エイ・デイ
ー・バツチヨ(A.D.Batcho)及びダブリユ
ー・ライムグリユーバー(W.Leimgruber)、
ドイツ公開特許公報第2057840号(1971年)
が進めてきたものであり、インドールへの還
元的環化の古いライセルト(Reissert)手順
より著しい改良法である(アール・ジエイ・
サンドバーグ(R.J.Sundberg)、「インドー
ルの化学(The Chemistry of Indoles)」
176−183頁、アカデミツク・プレス、ニユー
ヨーク、1970年を参照)。
ルへの環化を行なう考え方は、エイ・デイ
ー・バツチヨ(A.D.Batcho)及びダブリユ
ー・ライムグリユーバー(W.Leimgruber)、
ドイツ公開特許公報第2057840号(1971年)
が進めてきたものであり、インドールへの還
元的環化の古いライセルト(Reissert)手順
より著しい改良法である(アール・ジエイ・
サンドバーグ(R.J.Sundberg)、「インドー
ルの化学(The Chemistry of Indoles)」
176−183頁、アカデミツク・プレス、ニユー
ヨーク、1970年を参照)。
段階5−不安定な基の置換。この段階は、段階8
の化学反応でXが両立できないために必要と
なる。これは標準的な条件(アセトン、
DMF又はアルコール中のアルカリカルボキ
シレート)の下で、Xをアセテート又はC1
〜C5のアルキルカルボン酸の共役塩基と置
換することからなる。X=SO2CH3の時には
或る程度の加水分解も起りうるから、(6)の単
離の前に無水酢酸で反応混合物を処理する。
の化学反応でXが両立できないために必要と
なる。これは標準的な条件(アセトン、
DMF又はアルコール中のアルカリカルボキ
シレート)の下で、Xをアセテート又はC1
〜C5のアルキルカルボン酸の共役塩基と置
換することからなる。X=SO2CH3の時には
或る程度の加水分解も起りうるから、(6)の単
離の前に無水酢酸で反応混合物を処理する。
段階6−ニトロ化は、酢酸、無水酢酸、硫酸、酢
酸/H2O、アルコール及びニトロアルカン
類中の硝酸を含めた文献中に記載の種々の条
件下に実施できる。この反応の領或選択性は
得られた分光分析データによつて支持され
る。
酸/H2O、アルコール及びニトロアルカン
類中の硝酸を含めた文献中に記載の種々の条
件下に実施できる。この反応の領或選択性は
得られた分光分析データによつて支持され
る。
段階7−ニトロからアミノ基への還元は、段階4
の同じ化学反応の説明に従うが、但し塩基を
省略する。
の同じ化学反応の説明に従うが、但し塩基を
省略する。
段階8−インドール合成。この手順は概略ガスマ
ンのインドール化学〔ピー・ジー・ガスマン
(P.G.Gassman)等、J.Am.Chem.Soc.96巻
5494頁、5508頁、5512頁、(1974年)〕に基づ
いている。ガスマンの研究では開示又は示唆
されていない幾つかの変更を要する。化学的
なりゆきの順序と中間体のあるものは式3に
示してある。α−チオメチルエステル類は既
知のものである。本方法はクロロスルホニウ
ム錯体Aを使用し、これをアニリン(6)と反応
させることで、公表されたガスマン径路から
はずれている。ガスマンはアニリンのクロロ
アミンをつくり、これをチオエーテルと反応
させてオキシンドールをつくつている。第二
に、本方法では二つの異なる塩基を使用し、
一方ガスマンはアニリン2当量に続いて塩基
2を使う。トリエチルアミン、ジイソプロピ
ルエチルアミン、ビス(1,8−ジメチルア
ミノ)ナフタリン等は、塩基1としても塩基
2としても双方にうまく働くが、塩基1とし
て好ましいのはビス(1,8−ジメチルアミ
ン)ナフタリンで、塩基2としてはトリエチ
ルアミンである。クロロホルム、アセトニト
リル、テトラヒドロフラン(THF)及び塩
化メチレンのようないろいろな溶媒が使用で
き、後者が好ましい。温度範囲は−50ないし
−80゜であり、不活性雰囲気下に反応を行な
う。オキシンドールBへの環化は、ガスマン
が記載しているように、酸の触媒作用(2N
HCl、エーテル及び/又は酢酸エチル)によ
つて最もよく促進される。
ンのインドール化学〔ピー・ジー・ガスマン
(P.G.Gassman)等、J.Am.Chem.Soc.96巻
5494頁、5508頁、5512頁、(1974年)〕に基づ
いている。ガスマンの研究では開示又は示唆
されていない幾つかの変更を要する。化学的
なりゆきの順序と中間体のあるものは式3に
示してある。α−チオメチルエステル類は既
知のものである。本方法はクロロスルホニウ
ム錯体Aを使用し、これをアニリン(6)と反応
させることで、公表されたガスマン径路から
はずれている。ガスマンはアニリンのクロロ
アミンをつくり、これをチオエーテルと反応
させてオキシンドールをつくつている。第二
に、本方法では二つの異なる塩基を使用し、
一方ガスマンはアニリン2当量に続いて塩基
2を使う。トリエチルアミン、ジイソプロピ
ルエチルアミン、ビス(1,8−ジメチルア
ミノ)ナフタリン等は、塩基1としても塩基
2としても双方にうまく働くが、塩基1とし
て好ましいのはビス(1,8−ジメチルアミ
ン)ナフタリンで、塩基2としてはトリエチ
ルアミンである。クロロホルム、アセトニト
リル、テトラヒドロフラン(THF)及び塩
化メチレンのようないろいろな溶媒が使用で
き、後者が好ましい。温度範囲は−50ないし
−80゜であり、不活性雰囲気下に反応を行な
う。オキシンドールBへの環化は、ガスマン
が記載しているように、酸の触媒作用(2N
HCl、エーテル及び/又は酢酸エチル)によ
つて最もよく促進される。
最終の(9)への還元(還元除去)は、水素化
アルミニウムリチウム(ガスマンの記載のと
おり)又はジボラン型の試薬で達成でき、後
者が圧倒的にすぐれている。好ましい試薬は
24時間室温におけるTHF中の(CH3)2S・
BH3である。
アルミニウムリチウム(ガスマンの記載のと
おり)又はジボラン型の試薬で達成でき、後
者が圧倒的にすぐれている。好ましい試薬は
24時間室温におけるTHF中の(CH3)2S・
BH3である。
段階9−この脱保護段階(R1の除去)は、実施
例8のR1=CH3で詳細に記載されている。
メチルエーテルの開裂を含めて多くの手順が
この技術に記載されているが、不活性雰囲気
下(95〜100゜)のヘキサメチルホスホリツク
トリアミド(HMPA)中のアルキルメルカ
プチドだけが有効とわかつた〔エス・シー・
ウエルチ(S.C.Welch)及びエイ・エス・シ
ー・ピー・ラオ(A.S.C.P.Rao)、Tet.
Letters 505号(1977年)及びテイー・アー
ル・ケリー(T.R.Kelly)、エツチ・エム・
ダリ(H.M.Dali)及びダブリユー・ジー・
ツアン(W.G.Tsang)、Tet.Letters、3859号
(1977年)、又はジクロロエタン中のMe2S・
BBr3(ピー・ジー・ウイラード(P.G.
Willard)及びシー・ビー・フライル(C.B.
Fryhle)、Tet.Letters 3731号(1980年)〕。
R1=CH2Phの時には、標準的な水添分解条
件(H2、Pd/C)が脱保護化に十分適して
いる〔Org.Reactions 7巻263頁(1953
年)〕。R1=CH2SCH3の時には、アセトニト
リル/H2O中の塩化第二水銀がエーテルを
除去する(アール・エイ・ホルトン(R.A.
Holton)及びアール・ジー・デービス(R.
G.Davis)、Tet.Letters 533号(1977年)〕。
R1=CH2OCH3の時には、酢酸のような温和
な酸がフエノール10を生ずる〔J.Med.
Chem.9巻1頁(1966年)又はSynthesis 244
(1976年)〕。しかし実際には、この保護基は
段階6で失われるが、標準条件下に段階7に
先立つて再導入できる。R1=−
CH2OCH2CH2OCH3の時には、フエノール
がCH2Cl2中のZnBr2又はTiCl4でつくれる
〔Tet.Letters 809号(1976年)〕。R1=−
CH2CH=CH2の時には、幾つかの2段階手
順がエーテルの脱保護を行なう〔アルコール
中のPd/C、Ang.Chem.Int.Ed.15巻558頁
(1976年);ジオキサン中のSeO2、
CH3CO2H、Tet.Letters 2885号(1970年);
t−BuOK、DMSO、続いてアセトン中の
H2SO4、J.Chem.Soc.1903(1965年);アルコ
ール中のRhCl(PPh3)3、DABCO、続いてPH
2、J.Org.Chem.38巻3224頁(1973年)〕。R1
=−CH2CH2Si(R2)3の時には、脱保護は
Bu4NFで行なわれる〔エツチ・ガーラツク
(H.Gerlach)等、Helv.Chim.Acta.60巻
3039頁(1977年)〕。
例8のR1=CH3で詳細に記載されている。
メチルエーテルの開裂を含めて多くの手順が
この技術に記載されているが、不活性雰囲気
下(95〜100゜)のヘキサメチルホスホリツク
トリアミド(HMPA)中のアルキルメルカ
プチドだけが有効とわかつた〔エス・シー・
ウエルチ(S.C.Welch)及びエイ・エス・シ
ー・ピー・ラオ(A.S.C.P.Rao)、Tet.
Letters 505号(1977年)及びテイー・アー
ル・ケリー(T.R.Kelly)、エツチ・エム・
ダリ(H.M.Dali)及びダブリユー・ジー・
ツアン(W.G.Tsang)、Tet.Letters、3859号
(1977年)、又はジクロロエタン中のMe2S・
BBr3(ピー・ジー・ウイラード(P.G.
Willard)及びシー・ビー・フライル(C.B.
Fryhle)、Tet.Letters 3731号(1980年)〕。
R1=CH2Phの時には、標準的な水添分解条
件(H2、Pd/C)が脱保護化に十分適して
いる〔Org.Reactions 7巻263頁(1953
年)〕。R1=CH2SCH3の時には、アセトニト
リル/H2O中の塩化第二水銀がエーテルを
除去する(アール・エイ・ホルトン(R.A.
Holton)及びアール・ジー・デービス(R.
G.Davis)、Tet.Letters 533号(1977年)〕。
R1=CH2OCH3の時には、酢酸のような温和
な酸がフエノール10を生ずる〔J.Med.
Chem.9巻1頁(1966年)又はSynthesis 244
(1976年)〕。しかし実際には、この保護基は
段階6で失われるが、標準条件下に段階7に
先立つて再導入できる。R1=−
CH2OCH2CH2OCH3の時には、フエノール
がCH2Cl2中のZnBr2又はTiCl4でつくれる
〔Tet.Letters 809号(1976年)〕。R1=−
CH2CH=CH2の時には、幾つかの2段階手
順がエーテルの脱保護を行なう〔アルコール
中のPd/C、Ang.Chem.Int.Ed.15巻558頁
(1976年);ジオキサン中のSeO2、
CH3CO2H、Tet.Letters 2885号(1970年);
t−BuOK、DMSO、続いてアセトン中の
H2SO4、J.Chem.Soc.1903(1965年);アルコ
ール中のRhCl(PPh3)3、DABCO、続いてPH
2、J.Org.Chem.38巻3224頁(1973年)〕。R1
=−CH2CH2Si(R2)3の時には、脱保護は
Bu4NFで行なわれる〔エツチ・ガーラツク
(H.Gerlach)等、Helv.Chim.Acta.60巻
3039頁(1977年)〕。
段階10−段階3を参照
段階11−この段階(X=Brの時)はシリカゲル
と接触させて促進され、またプロトン性溶媒
中に放置しても生ずる。この反応は第三級ア
ミン、ピリジン、t−ブトキシド等のような
塩基及び重炭酸塩や炭酸塩のような弱塩基水
溶液の存在下にも進行する。
と接触させて促進され、またプロトン性溶媒
中に放置しても生ずる。この反応は第三級ア
ミン、ピリジン、t−ブトキシド等のような
塩基及び重炭酸塩や炭酸塩のような弱塩基水
溶液の存在下にも進行する。
以下の実施例は本発明の生成物及び方法の例示
であるが、限定的に考えられてはならない。他に
注意がなければ、百分率はすべて重量、溶媒混合
物の割合はすべて容量による。
であるが、限定的に考えられてはならない。他に
注意がなければ、百分率はすべて重量、溶媒混合
物の割合はすべて容量による。
参考例 1
アリールジエチルマロネート(2)から2−アリー
ル−1,3−プロパンジオール(3)の製造 氷水浴中で冷却されたN2のTHF400mlにトル
エン400ml中の水素化ジイソブチルアルミニウム
(DIBAL)100g(0.70モル)を加える。このかき
まぜた溶液に、THF100ml中のアリールマロネー
ト(2)33.0g(0.105モル)を加える。添加速度は5゜よ
り低い反応温度を保つように調節される。添加が
終了したあと、氷浴を除く。計3時間の反応時間
後、溶液を冷い3N HCl(約1.5)へ少量ずつか
きまぜながら添加して反応を停止させる。次に混
合物をEtOAc 1と続いてCH2Cl2 1000mlで抽
出する。一緒にした有機相をNa2SO4上で乾燥
し、赤茶色の残留物(21.2g)まで濃縮する。残
留物のシリカゲル500g上で60%EtOAc/ヘキサ
ン→100%EtOAcの勾配での溶離液によるクロマ
トグラフイで、ジオール(3)(U−62598)11.7g
(収率49%)を薄赤色の油として生ずる(冷凍庫
で放置しておくと固まる)。
ル−1,3−プロパンジオール(3)の製造 氷水浴中で冷却されたN2のTHF400mlにトル
エン400ml中の水素化ジイソブチルアルミニウム
(DIBAL)100g(0.70モル)を加える。このかき
まぜた溶液に、THF100ml中のアリールマロネー
ト(2)33.0g(0.105モル)を加える。添加速度は5゜よ
り低い反応温度を保つように調節される。添加が
終了したあと、氷浴を除く。計3時間の反応時間
後、溶液を冷い3N HCl(約1.5)へ少量ずつか
きまぜながら添加して反応を停止させる。次に混
合物をEtOAc 1と続いてCH2Cl2 1000mlで抽
出する。一緒にした有機相をNa2SO4上で乾燥
し、赤茶色の残留物(21.2g)まで濃縮する。残
留物のシリカゲル500g上で60%EtOAc/ヘキサ
ン→100%EtOAcの勾配での溶離液によるクロマ
トグラフイで、ジオール(3)(U−62598)11.7g
(収率49%)を薄赤色の油として生ずる(冷凍庫
で放置しておくと固まる)。
NMR(CDCl3):7.5〜7.0(m,3H),3.80(s,
3H)、4.0−3.3(m,7H−2OHを含
む)。
3H)、4.0−3.3(m,7H−2OHを含
む)。
MS.C10H13NO5 計算値:227.0794
測定値:227.0780
分析:計算値:C,52.86,H,5.76,N,6.16
測定値:C,53.40,H,5.77,N,5.99
参考例 2
2−アリール−1,3−プロパンジオール(3)か
ら2−アリール−1,3−プロパンジオールビ
スメシレート(4)の調製 N2下に0〜5゜で乾燥ピリジン100ml中のジオー
ル(3)4.7g(0.2モル)にかきまぜながら塩化メタン
スルホニル6.8g(0.06モル)と加える。5゜で30分、
室温で90分かきまぜてから、溶液を真空中で濃縮
し、CH2Cl2/1N HCl中に取上げる。有機相を
分離し、Na2SO4上で乾燥し、残留物まで濃縮す
る。EtOAcとすり砕くと、灰色がかつた白色の
固体を生じ、母液をシリカゲル(EtOAc溶離液)
上のクロマトグラフイにかけると、全収量6.65g
(収率86%)、融点122〜123゜(アセトンから再結
晶)の化合物(4)ビスメシレート(U−62597)を
生ずる。
ら2−アリール−1,3−プロパンジオールビ
スメシレート(4)の調製 N2下に0〜5゜で乾燥ピリジン100ml中のジオー
ル(3)4.7g(0.2モル)にかきまぜながら塩化メタン
スルホニル6.8g(0.06モル)と加える。5゜で30分、
室温で90分かきまぜてから、溶液を真空中で濃縮
し、CH2Cl2/1N HCl中に取上げる。有機相を
分離し、Na2SO4上で乾燥し、残留物まで濃縮す
る。EtOAcとすり砕くと、灰色がかつた白色の
固体を生じ、母液をシリカゲル(EtOAc溶離液)
上のクロマトグラフイにかけると、全収量6.65g
(収率86%)、融点122〜123゜(アセトンから再結
晶)の化合物(4)ビスメシレート(U−62597)を
生ずる。
NMR(Acet−d6):7.7−7.2(m,3H),4.62(d,
4H,J=JHz),4.11(t,1H,J=
7Hz),3.92(s,3H),3.06(s,
6H)。
4H,J=JHz),4.11(t,1H,J=
7Hz),3.92(s,3H),3.06(s,
6H)。
分析:C12H17NO9S2に対し、
計算値 C,37.59,H,4.47,N,3.65
測定値 C,37.35,H,4.44,N,3.59
この化合物を培養基のL1210ハツカネズミ白血
病細胞に対して標準試験管希釈検定で検定し、次
の結果を得た。
病細胞に対して標準試験管希釈検定で検定し、次
の結果を得た。
ID50(μg/ml)=6.0 ID90(μg/ml)=18
参考例 3
2−アリール−1,3−プロパンジオールビス
メシレート(4)から6−メトキシインドリンビス
メシレート(5)の調製 THF30ml:EtOAc20ml、及び無水エタノール
150ml中の化合物(4)1.91g(0.005モル)にトリエチ
ルアミン1.5mlとPtO2400mgを加える。この溶液を
振とうしながら水素圧0.492−0.703Kg/cm2(7−
10psi)下に30分置く。次に反応溶液をセライト
上でろ過し、真空中で濃縮する。真空中で数回
CH2Cl2と共沸させてから、残留物をCH2Cl2100
ml中に最終的に取り上げ、氷浴中でN2下に冷却
する。かきまぜた溶液にトリエチルアミン1.5ml
を加える。続いて塩化メタンスルホニル900μ
を滴加する。30分かきまぜてから、溶液を60分間
室温となるまゝにする。次に溶液1N HClで洗
い、NaSO4上で乾燥し、濃縮する。残留物をシ
リカゲル150g上で60%EtOAc/ヘキサン500mlに
続いて80%溶離液1000mlで急速にクロマトグラフ
イにかけ、灰色がかつた白色の固体、融点122〜
123゜(エタノールから再結晶)の化合物(5)、6−
メトキシインドリンビスメシレート(U−62586)
1.3g(収率78%)を回収した。
メシレート(4)から6−メトキシインドリンビス
メシレート(5)の調製 THF30ml:EtOAc20ml、及び無水エタノール
150ml中の化合物(4)1.91g(0.005モル)にトリエチ
ルアミン1.5mlとPtO2400mgを加える。この溶液を
振とうしながら水素圧0.492−0.703Kg/cm2(7−
10psi)下に30分置く。次に反応溶液をセライト
上でろ過し、真空中で濃縮する。真空中で数回
CH2Cl2と共沸させてから、残留物をCH2Cl2100
ml中に最終的に取り上げ、氷浴中でN2下に冷却
する。かきまぜた溶液にトリエチルアミン1.5ml
を加える。続いて塩化メタンスルホニル900μ
を滴加する。30分かきまぜてから、溶液を60分間
室温となるまゝにする。次に溶液1N HClで洗
い、NaSO4上で乾燥し、濃縮する。残留物をシ
リカゲル150g上で60%EtOAc/ヘキサン500mlに
続いて80%溶離液1000mlで急速にクロマトグラフ
イにかけ、灰色がかつた白色の固体、融点122〜
123゜(エタノールから再結晶)の化合物(5)、6−
メトキシインドリンビスメシレート(U−62586)
1.3g(収率78%)を回収した。
NMR(DMF−d7):7.36(d,1H,J=8.5Hz),
7.00(d,1H,J=2Hz),6.69(dd,
1H,J=2,8.5Hz),4.47(2H,d,
J=6Hz),4.3−3.6(m,3H),3.80
(s,3H),3.20(s,3H),3.07(s,
3H)。
7.00(d,1H,J=2Hz),6.69(dd,
1H,J=2,8.5Hz),4.47(2H,d,
J=6Hz),4.3−3.6(m,3H),3.80
(s,3H),3.20(s,3H),3.07(s,
3H)。
分析:C12H17NS2O6に対し、
計算値 C,42.97,H,5.11,N,4.18
測定値 C,42.87,H,5.27,N,4.29
この化合物を標準的な試験管希釈検定により、
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
ID50(μg/ml)=4.8 ID90(μg/ml)=10
参考例 4
6−メトキシインドリンビスメシレート(5)から
6−メトキシインドリンアセテート(6)の調製 DMF30mlの6−メトキシインドリンビスメシ
レート(5)13.0g(39ミリモル)に、無水エタノール
800mlに続いて酢酸ナトリウム32gを加える。こ
の不均一系混合物をN2下に24時間還流し、冷却
して真空中で濃縮する。残留物を無水酢酸100ml
で2時間(室温でかきまぜながら)処理し、次に
真空中で濃縮する。残留物をCH2Cl2/H2O中に
取上げ、有機相を分離し、Na2SO4上で乾燥し、
木炭に通してろ過し、油まで濃縮する。油が固ま
つて化合物(6)の6−メトキシインドリンアセテー
ト11.6gを生ずる(100%、必要なら、60%
EtOAc/ヘキサン溶離液を使用するシリカゲル
クロマトグラフイによつてそれ以上の精製が可能
である)。
6−メトキシインドリンアセテート(6)の調製 DMF30mlの6−メトキシインドリンビスメシ
レート(5)13.0g(39ミリモル)に、無水エタノール
800mlに続いて酢酸ナトリウム32gを加える。こ
の不均一系混合物をN2下に24時間還流し、冷却
して真空中で濃縮する。残留物を無水酢酸100ml
で2時間(室温でかきまぜながら)処理し、次に
真空中で濃縮する。残留物をCH2Cl2/H2O中に
取上げ、有機相を分離し、Na2SO4上で乾燥し、
木炭に通してろ過し、油まで濃縮する。油が固ま
つて化合物(6)の6−メトキシインドリンアセテー
ト11.6gを生ずる(100%、必要なら、60%
EtOAc/ヘキサン溶離液を使用するシリカゲル
クロマトグラフイによつてそれ以上の精製が可能
である)。
NMR(CDCl3):7.17(d,1H,J=8.5Hz),7.02
(d,1H,J=2Hz),6.60(dd,1H,
J=2,8.5Hz),4.18(d,2H,J=
6Hz),4.1−3.4(m,3H),3.78(s,
3H),2.91(s,3H),2.05(s,3H)。
(d,1H,J=2Hz),6.60(dd,1H,
J=2,8.5Hz),4.18(d,2H,J=
6Hz),4.1−3.4(m,3H),3.78(s,
3H),2.91(s,3H),2.05(s,3H)。
分析 C13H17NO5Sに対し、
計算値:C,52.16,H,5.76,N,4.68
測定値:C,52.13,H,5.79,N,5.27
MS:計算値:229.0827
測定値:299.0823
参考例 5
6−メトキシインドリンアセテート(6)から5−
ニトロ−6−メトキシインドリンアセテート(7)
の調製 ニトロメタン20ml中の6−メトキシインドリン
アセテート(6)500mg(1.67ミリモル)に90%
HNO390μを加える。冷却された(0〜5゜)反
応溶液を30分かきまぜ、次に室温に30分暖める。
溶液をCH2Cl2及び重炭酸ナトリウム水溶液で希
釈する。有機相を分離し、Na2SO4上で乾燥し、
濃縮する。残留物をシリカゲル50g上のクロマト
グラフイ(60%EtOAc/ヘキサン溶離液→100%
EtOAc)にかけると、黄色固体、融点175〜177゜
(エタノールから再結晶)の化合物(7)、5−ニト
ロ−6−メトキシインドリンアセテート(U−
62696)440mg(収率76%)を生ずる。
ニトロ−6−メトキシインドリンアセテート(7)
の調製 ニトロメタン20ml中の6−メトキシインドリン
アセテート(6)500mg(1.67ミリモル)に90%
HNO390μを加える。冷却された(0〜5゜)反
応溶液を30分かきまぜ、次に室温に30分暖める。
溶液をCH2Cl2及び重炭酸ナトリウム水溶液で希
釈する。有機相を分離し、Na2SO4上で乾燥し、
濃縮する。残留物をシリカゲル50g上のクロマト
グラフイ(60%EtOAc/ヘキサン溶離液→100%
EtOAc)にかけると、黄色固体、融点175〜177゜
(エタノールから再結晶)の化合物(7)、5−ニト
ロ−6−メトキシインドリンアセテート(U−
62696)440mg(収率76%)を生ずる。
NMR(DMF−d7):7.91(s,1H),7.20(s,
1H),4.27(d,2H,J=6Hz),4.3
−3.7(m,3H),3.98(s,3H),3.17
(s,3H),2.07(s,3H)。
1H),4.27(d,2H,J=6Hz),4.3
−3.7(m,3H),3.98(s,3H),3.17
(s,3H),2.07(s,3H)。
分析:C13H16N2O7Sに対し
計算値 C,45.34,H,4.68,N,8.14
測定値 C,44.81,H,4.77,N,8.16
この化合物を標準的な試験管希釈検定により、
培養基中のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対し
て検定し、次の結果を得た。
培養基中のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対し
て検定し、次の結果を得た。
ID50(μg/ml)=>50 ID90(μg/ml)=>50
参考例 6
5−ニトロ−6−メトキシインドリンアセテー
ト(7)から5−アミノ−6−メトキシインドリン
アセテート(8)の調製 THF50ml及び無水エタノール150ml中の5−ニ
トロ−6−メトキシインドリンアセテート(7)4.5g
(13ミリモル)にPtO2500mgを加え、H20.703Kg/
cm2(10psi)下に、摂取がやむまで(約60分)振
とうする。ろ過して真空中で濃縮する。濃縮後、
生成物3.0gが析出する。これをろ別し、母液をシ
リカゲル100g上でEtOAc溶離液で急速にクロマ
トグラフイ処理すると、追加0.6gを生ずる。化合
物(8)の5−アミノ−6−メトキシインドリンアセ
テート(U−62697)の全収率(3.6g)は88%,
融点134〜135゜,(アセトン/シクロヘキサンか
ら)。
ト(7)から5−アミノ−6−メトキシインドリン
アセテート(8)の調製 THF50ml及び無水エタノール150ml中の5−ニ
トロ−6−メトキシインドリンアセテート(7)4.5g
(13ミリモル)にPtO2500mgを加え、H20.703Kg/
cm2(10psi)下に、摂取がやむまで(約60分)振
とうする。ろ過して真空中で濃縮する。濃縮後、
生成物3.0gが析出する。これをろ別し、母液をシ
リカゲル100g上でEtOAc溶離液で急速にクロマ
トグラフイ処理すると、追加0.6gを生ずる。化合
物(8)の5−アミノ−6−メトキシインドリンアセ
テート(U−62697)の全収率(3.6g)は88%,
融点134〜135゜,(アセトン/シクロヘキサンか
ら)。
NMR(CDCl3):7.02(s,1H),6.65(s,1H),
4.16(d,2H,J=6Hz),4.1−3.5
(m,3H),3.83(s,3H),3.6(br,
s,2H)),2.83(s,3H)。
4.16(d,2H,J=6Hz),4.1−3.5
(m,3H),3.83(s,3H),3.6(br,
s,2H)),2.83(s,3H)。
分析:C13H18N2O5Sに対し
計算値 C,49.67,H,5.77,N,8.91
測定値 C,49.74,H,5.72,H,8.94
この化合物を標準的な試験管希釈検定により、
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
ID50(μg/ml)=>50 ID90(μg/ml)=>50
参考例 7
5−アミノ−6−メトキシインドリンアセテート
(8)から4,5−ピロロ−6−メトキシインドリン
(9)の調製 窒素下に−75゜で乾燥CH2Cl214mlにCl2/
CH2Cl2溶液(20μ Cl2/ml CH2Cl2)6.0mlを
加える。このかきまぜた溶液にCH3(CH3S)
CHCO2CO2H5370μ(2.5ミリモル)〔イー・エ
ツチ・ウイツク(E.H.Wick)、テイー・ヤマニ
シ(T.Yamanishi)、エツチ・シー.ワーサイマ
ー(H.C.Wertheimer)、ワイ・イー・ホフ(Y.
E.Hoff)、ビー・エフ・プロクター(B.F.
Proctor)及びエス・エイ・ゴールドブリス(S.
A.Goldblith)、J.Agr.Food Chem.9巻289頁
(1961年)の手順により、CH3(Br)CHCO2C2H5
とメチルメルカプチドから調製〕を加える。5分
後、乾燥CH2Cl23.0ml中の1,8−ビスジメチル
アミノナフタリン470mg(2.2ミリモル)とアニリ
ノインドリン(8)628mg(2.0ミリモル)の溶液を15
分にわたつて滴加する。赤い溶液を−75゜で2時
間かきまぜ、次にCH2Cl2650μ中のトリエチル
アミン350μを数分間に滴加する。冷却浴を除
去する。反応溶液が室温に達するとき、真空中で
これを短時間濃縮する。残留物にEtOAc5ml、エ
ーテル25ml及び2N HCl6mlを加え、2時間激し
くかきまぜる。有機相を分離し、水層を
EtOAc/Et2O(1:1)で抽出する。有機相を一
緒にし、Na2SO4上で乾燥し、濃縮する。この時
点で残留物をTHF10ml中に取上げ、2M BH3・
SMe23.0mlにより、窒素下に室温で一夜処理す
る。その代わりに、酸処理から誘導されるジアス
テレオマーのオキシンドール(B)をこの時点で、シ
リカゲルクロマトグラフイ(50g、60%EtOAc/
ヘキサンないし90%EtOAc/ヘキサン)によつ
て単離できる。
(8)から4,5−ピロロ−6−メトキシインドリン
(9)の調製 窒素下に−75゜で乾燥CH2Cl214mlにCl2/
CH2Cl2溶液(20μ Cl2/ml CH2Cl2)6.0mlを
加える。このかきまぜた溶液にCH3(CH3S)
CHCO2CO2H5370μ(2.5ミリモル)〔イー・エ
ツチ・ウイツク(E.H.Wick)、テイー・ヤマニ
シ(T.Yamanishi)、エツチ・シー.ワーサイマ
ー(H.C.Wertheimer)、ワイ・イー・ホフ(Y.
E.Hoff)、ビー・エフ・プロクター(B.F.
Proctor)及びエス・エイ・ゴールドブリス(S.
A.Goldblith)、J.Agr.Food Chem.9巻289頁
(1961年)の手順により、CH3(Br)CHCO2C2H5
とメチルメルカプチドから調製〕を加える。5分
後、乾燥CH2Cl23.0ml中の1,8−ビスジメチル
アミノナフタリン470mg(2.2ミリモル)とアニリ
ノインドリン(8)628mg(2.0ミリモル)の溶液を15
分にわたつて滴加する。赤い溶液を−75゜で2時
間かきまぜ、次にCH2Cl2650μ中のトリエチル
アミン350μを数分間に滴加する。冷却浴を除
去する。反応溶液が室温に達するとき、真空中で
これを短時間濃縮する。残留物にEtOAc5ml、エ
ーテル25ml及び2N HCl6mlを加え、2時間激し
くかきまぜる。有機相を分離し、水層を
EtOAc/Et2O(1:1)で抽出する。有機相を一
緒にし、Na2SO4上で乾燥し、濃縮する。この時
点で残留物をTHF10ml中に取上げ、2M BH3・
SMe23.0mlにより、窒素下に室温で一夜処理す
る。その代わりに、酸処理から誘導されるジアス
テレオマーのオキシンドール(B)をこの時点で、シ
リカゲルクロマトグラフイ(50g、60%EtOAc/
ヘキサンないし90%EtOAc/ヘキサン)によつ
て単離できる。
GC−MS:m/e M+414(15%),227(100%)
−2′1%SE−30 NMR(CDCl3):8.4(br.s,1H),7.11(s,1H),
4.5−3.7(m,5H),3.90(s,3H),
2.95(s,3H),2.10(s,3H),1.92
(s,3H),1.82(s,3H)−主要部ジ
アステレオマー(2.5/1);少量部ジ
アステレオマーは次の相違を示す。−
SCH3と−CH3に対しては1.99(s,
3H),1.76(s,3H)に、NHは7.7,
CH2帯域は4.3〜3.6ppmにある。
−2′1%SE−30 NMR(CDCl3):8.4(br.s,1H),7.11(s,1H),
4.5−3.7(m,5H),3.90(s,3H),
2.95(s,3H),2.10(s,3H),1.92
(s,3H),1.82(s,3H)−主要部ジ
アステレオマー(2.5/1);少量部ジ
アステレオマーは次の相違を示す。−
SCH3と−CH3に対しては1.99(s,
3H),1.76(s,3H)に、NHは7.7,
CH2帯域は4.3〜3.6ppmにある。
酸処理からの水相を中和し、CH2Cl2で抽出す
る。CH2Cl2溶液を乾燥し、濃縮し、50%アセト
ン/シクロヘキサンによりシリカゲル上のクロマ
トグラフイにかけると、出発材料(アニリノイン
ドリン)の回収40%と脱アシル化された出発材料
20%を生ずる。
る。CH2Cl2溶液を乾燥し、濃縮し、50%アセト
ン/シクロヘキサンによりシリカゲル上のクロマ
トグラフイにかけると、出発材料(アニリノイン
ドリン)の回収40%と脱アシル化された出発材料
20%を生ずる。
(Bへの)ボランジメチルサルフアイド還元性
除去反応を、ガス発生がやむまで1N HClによつ
て停止させて仕上げ、CH2Cl2/H2O中に取り上
げる。分離した有機相をNa2SO4上で乾燥し、濃
縮する。残留物をシリカゲル上のクロマトグラフ
イ(50%アセトン/シクロヘキサン)にかける
と、生成物(9)155mgを生ずる。単離収率25%、回
収された出発材料に基づいて85%。融点182〜
183゜(160゜で相変化、クロロホルムから再結晶)。
生成物4,5−ピロロ−6−メトキシインドリン
(9)(U−62233)。
除去反応を、ガス発生がやむまで1N HClによつ
て停止させて仕上げ、CH2Cl2/H2O中に取り上
げる。分離した有機相をNa2SO4上で乾燥し、濃
縮する。残留物をシリカゲル上のクロマトグラフ
イ(50%アセトン/シクロヘキサン)にかける
と、生成物(9)155mgを生ずる。単離収率25%、回
収された出発材料に基づいて85%。融点182〜
183゜(160゜で相変化、クロロホルムから再結晶)。
生成物4,5−ピロロ−6−メトキシインドリン
(9)(U−62233)。
NMR(CDCl3):8.3(br.s,1H),6.96(s,2H),
4.2−3.5(m,5H+OH),3.92(s,
3H),2.87(s,3H),2.41(s,3H)。
4.2−3.5(m,5H+OH),3.92(s,
3H),2.87(s,3H),2.41(s,3H)。
分析 C14H18N2O4Sに対し、
計算値 C,54.17,H,5.84,N,9.03
測定値 C,53.49,H,5.96,N,9.42
GC−MS:O−アセテート−m/eM+352(13
%),213(100%)−2′−1%SE−30、温度150
〜260゜(10゜/分),単一ピーク。
%),213(100%)−2′−1%SE−30、温度150
〜260゜(10゜/分),単一ピーク。
この化合物を標準的な試験管希釈検定により、
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
ID50(μg/ml)=>4 ID90(μg/ml)=>4
参考例 8
4,5−ピロロ−6−メトキシインドリン(9)か
ら4,5−ピロロ−6−ヒドロキシインドリン
(10)の調製 乾燥し脱ガス処理したHMPA(ヘキサメチル燐
酸トリアミド)10mlに、室温でブチルメルカプタ
ン350μを加える。氷水浴中で溶液を冷却し、
ヘキサン中の1.5Mn−BuLi2.0mlを滴加する。反
応を室温まで下げてから、インドール(9)100mg
(0.3ミリモル)をかきまぜながら加える。溶液を
100゜に2.5時間加熱する。TLC(50%アセトン/シ
クロヘキサン)によつて反応を追跡し、転化が約
75%終了になつたら(ワニリン/燐酸噴霧によ
る)、加熱を終える。冷却された溶液を1N HCl
(100ml)に注ぎ、20mlEtOAcで抽出する。分離
された有機相を追加の水50mlで洗う。水相を一緒
にし、EtOAc20mlで逆抽出する。次に有機相を
一緒にし、Na2SO4上で乾燥し、真空中で濃縮
し、シリカゲル100gのカラムに入れ、50%アセ
トン/シクロヘキサンで溶離する。出発材料25mg
と生成物(10)の4,5−ピロロ−6−ヒドロキシイ
ンドリン(U−62370)45mgを生ずる(単離収率
44%、回収された出発材料に基づいて69%)。
ら4,5−ピロロ−6−ヒドロキシインドリン
(10)の調製 乾燥し脱ガス処理したHMPA(ヘキサメチル燐
酸トリアミド)10mlに、室温でブチルメルカプタ
ン350μを加える。氷水浴中で溶液を冷却し、
ヘキサン中の1.5Mn−BuLi2.0mlを滴加する。反
応を室温まで下げてから、インドール(9)100mg
(0.3ミリモル)をかきまぜながら加える。溶液を
100゜に2.5時間加熱する。TLC(50%アセトン/シ
クロヘキサン)によつて反応を追跡し、転化が約
75%終了になつたら(ワニリン/燐酸噴霧によ
る)、加熱を終える。冷却された溶液を1N HCl
(100ml)に注ぎ、20mlEtOAcで抽出する。分離
された有機相を追加の水50mlで洗う。水相を一緒
にし、EtOAc20mlで逆抽出する。次に有機相を
一緒にし、Na2SO4上で乾燥し、真空中で濃縮
し、シリカゲル100gのカラムに入れ、50%アセ
トン/シクロヘキサンで溶離する。出発材料25mg
と生成物(10)の4,5−ピロロ−6−ヒドロキシイ
ンドリン(U−62370)45mgを生ずる(単離収率
44%、回収された出発材料に基づいて69%)。
NMR(Acet−d6):7.8(br.s,1H),7.03(s,
1H),6.83(s,1H),4.25−3.25(m,
5H),2.86(s,3H),2.36(s,3H) この生成物を無水酢酸1.0mlとNaOAc20mgで一
夜処理し、CH2Cl2/H2O中に取り上げる。有機
相を分離し、Na2SO4上で乾燥し、濃縮する。
1H),6.83(s,1H),4.25−3.25(m,
5H),2.86(s,3H),2.36(s,3H) この生成物を無水酢酸1.0mlとNaOAc20mgで一
夜処理し、CH2Cl2/H2O中に取り上げる。有機
相を分離し、Na2SO4上で乾燥し、濃縮する。
NMR(CDCl3):7.8(br.s,1H),7.16(s,1H),
6.97(s,1H),4.42,4.20(dd,2H),
4.2−3.7(m,3H),2.86(s,3H),
2.40(s,3H),2.35(s,3H),2.06
(s,3H) GC−MS:m/eM+380(25%),199(100%)−
2′−1%SE−30 この化合物を標準的な試験管希釈検定により、
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
6.97(s,1H),4.42,4.20(dd,2H),
4.2−3.7(m,3H),2.86(s,3H),
2.40(s,3H),2.35(s,3H),2.06
(s,3H) GC−MS:m/eM+380(25%),199(100%)−
2′−1%SE−30 この化合物を標準的な試験管希釈検定により、
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
ID50(μg/ml)=>5 ID90(μg/ml)=>5
参考例 9
4,5−ピロロ−6−ヒドロキシインドリンア
ルコール(10)からの4,5−ピロロ−6−ヒドロ
キシインドリンブロマイド(11)の調製(方法
の発明の第1段階) 乾燥アセトニトリル1.0ml中のアルコール基質
25mg(65ミクロモル)に、室温で窒素化に
CBr433mg(100μモル)及びトリフエニルホスフ
イン(Ph3P)26mg(100ミクロモル)を加える。
30分かきまぜてから、追加のCBr411mgとPh3P8
mgを加える。計60分後、反応をCH2Cl2/H2O中
に取り上げる。有機相を分離し、Na2SO4上で乾
燥し、濃縮する。20×20cmの250μシリカゲル板
3板の上に残留物を置き、50%アセトン/シクロ
ヘキサンで溶離する。Rf値の高い生成物(0.64;
アルコールのRf=0.45)、すなわち化合物(11)
の4,5−ピロロ−6−ヒドロキシインドリンブ
ロマイド(U−62694)約8mgを回収する。
ルコール(10)からの4,5−ピロロ−6−ヒドロ
キシインドリンブロマイド(11)の調製(方法
の発明の第1段階) 乾燥アセトニトリル1.0ml中のアルコール基質
25mg(65ミクロモル)に、室温で窒素化に
CBr433mg(100μモル)及びトリフエニルホスフ
イン(Ph3P)26mg(100ミクロモル)を加える。
30分かきまぜてから、追加のCBr411mgとPh3P8
mgを加える。計60分後、反応をCH2Cl2/H2O中
に取り上げる。有機相を分離し、Na2SO4上で乾
燥し、濃縮する。20×20cmの250μシリカゲル板
3板の上に残留物を置き、50%アセトン/シクロ
ヘキサンで溶離する。Rf値の高い生成物(0.64;
アルコールのRf=0.45)、すなわち化合物(11)
の4,5−ピロロ−6−ヒドロキシインドリンブ
ロマイド(U−62694)約8mgを回収する。
NMR(CDCl3):8.5(br.s,1H),7.1(s,1H),
6.9(s,1H),4.23(d,2H,J=6
Hz),4.0−3.5(m,3H),2.89(s,
3H),2.38(s,3H)。
6.9(s,1H),4.23(d,2H,J=6
Hz),4.0−3.5(m,3H),2.89(s,
3H),2.38(s,3H)。
バイルシユタイン試験:陽性
MS:C16H23N2O3 79BrSSiに対し、
計算値 430.0382 測定値 430.0375
(モノ−TMS);m/eM+430/432(14%),271
(90%),147(100%)。
(90%),147(100%)。
この化合物を標準試験管希釈検定により、培養
基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して検定
し、次の結果を得た。
基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して検定
し、次の結果を得た。
ID50(μg/ml)=0.12 ID90(μg/ml)=0.37
参考例 10
4,5−ピロロ−6−ヒドロキシインドリンア
ルコール(10)からの4,5−ピロロ−6−ヒドロ
キシインドリンメシレート(11)の調製 ピリジン1.0ml中のアルコール基質(10)20mg(65
ミクロミリモル)に、氷浴中でかきまぜながら
N2下に塩化メタンスルホニル8μ(70ミクロモ
ル)を加える。30分後、CH3SO2Clの追加20μ
を加え、全反応時間60分後、2N HCL/CH2Cl2
で仕上げる。有機相を分離し、Na2SO4上で乾燥
し、濃縮する。TLCはほとんどの低いRf値の生
成物(50%アセトン/シクロヘキサン中0.28、ア
ルコールのRf=0.46)と幾分の高いRf値の生成
物(0.66)とを示している。分離用TLC(20×20
cm、250μシリカゲル板3枚)は、高いRfの材料
(NMRはただ一つのCH3SO2基を示した。おそら
くこれはクロライドである)2mg及び低いRfの
材料すなわち化合物(11)(U−62695)9mgを生
ずる。
ルコール(10)からの4,5−ピロロ−6−ヒドロ
キシインドリンメシレート(11)の調製 ピリジン1.0ml中のアルコール基質(10)20mg(65
ミクロミリモル)に、氷浴中でかきまぜながら
N2下に塩化メタンスルホニル8μ(70ミクロモ
ル)を加える。30分後、CH3SO2Clの追加20μ
を加え、全反応時間60分後、2N HCL/CH2Cl2
で仕上げる。有機相を分離し、Na2SO4上で乾燥
し、濃縮する。TLCはほとんどの低いRf値の生
成物(50%アセトン/シクロヘキサン中0.28、ア
ルコールのRf=0.46)と幾分の高いRf値の生成
物(0.66)とを示している。分離用TLC(20×20
cm、250μシリカゲル板3枚)は、高いRfの材料
(NMRはただ一つのCH3SO2基を示した。おそら
くこれはクロライドである)2mg及び低いRfの
材料すなわち化合物(11)(U−62695)9mgを生
ずる。
NMR(Acet−d6):8.6(br.s,1H),6.97(s,
1H),6.74(s,1H),4.3(m,2H),
4.1−3.6(m,3H),2.96(s,3H),
2.79(s,3H),2.26(s,3H)。
1H),6.74(s,1H),4.3(m,2H),
4.1−3.6(m,3H),2.96(s,3H),
2.79(s,3H),2.26(s,3H)。
この化合物を標準的な試験管希釈検定により、
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
ID50(μg/ml)=1.0 ID90(μg/ml)=3.3
実施例 1
1,2,8,8a−シクロプロパ〔c〕ベンゾ
〔1,2−b:4,3−b′〕ジピロール−4
(5H)−オン(12)、N−(メチルスルホニル)−
の調製(方法の発明の第2段階) 4,5−ピロロ−6−ヒドロキシインドリンブ
ロマイド(段階10)をくる手順に従うが、高い
Rf(0.64)の生成物ブロマイドを単離する代わり
に仕上げる前の反応混合物を真空中で濃縮し、厚
い層のシリカゲル板に直接に適用する場合には、
新しい低いRfの帯(0.32)が認められ、化合物
(12)として回収される。
〔1,2−b:4,3−b′〕ジピロール−4
(5H)−オン(12)、N−(メチルスルホニル)−
の調製(方法の発明の第2段階) 4,5−ピロロ−6−ヒドロキシインドリンブ
ロマイド(段階10)をくる手順に従うが、高い
Rf(0.64)の生成物ブロマイドを単離する代わり
に仕上げる前の反応混合物を真空中で濃縮し、厚
い層のシリカゲル板に直接に適用する場合には、
新しい低いRfの帯(0.32)が認められ、化合物
(12)として回収される。
NMR(CDCl3):9.5(br.s,1H),6.83(dd,Ha),
6.34(s,Hb),4.10(d,Hc),3.93
(dd,Hd),3.04(s,3H),2.93(m,
He),2.00(d,3H),1.97(dd,Hf),
1,37(dd,Hg)。
6.34(s,Hb),4.10(d,Hc),3.93
(dd,Hd),3.04(s,3H),2.93(m,
He),2.00(d,3H),1.97(dd,Hf),
1,37(dd,Hg)。
Jc,e=0.0Hz Je,g=4.4
Jc,d=9.7 Jf,g=4.4
Jd,e=4.7 JNH,a=2.0
Je,f=7.7 Ja,CH3=<1.0
MS:BSTFA(1%TMS−Clを含有するDMF)
によるシリル化はm/eM+386/388(22、生成
物+Me3SiClに対して12%)を生じた。
によるシリル化はm/eM+386/388(22、生成
物+Me3SiClに対して12%)を生じた。
UV:(メタノール)λ224、272、338
この化合物を標準的な試験管希釈検定により、
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
培養基のL1210ハツカネズミ白血病細胞に対して
検定し、次の結果を得た。
ID50(μg/ml)=0.13 ID90(μg/ml)=0.42
実施例 2
化合物(12)の代わりの調製
塩化メチレン1ml中の4,5−ピロロ−6−ヒ
ドロキシインドリンブロマイド(又はメシレー
ト)(0.1ミリモル)にジイソプロピルエチルアミ
ン0.1ミリモルを加え、N2下に室温で24時間かき
まぜる。反応溶液を塩化メチレン10mlに取り上
げ、0.1N HClで洗い、Na2SO4上で乾燥すると、
所望の生成物を生ずる。シリカゲルクロマトグラ
フイで更に精製できる。
ドロキシインドリンブロマイド(又はメシレー
ト)(0.1ミリモル)にジイソプロピルエチルアミ
ン0.1ミリモルを加え、N2下に室温で24時間かき
まぜる。反応溶液を塩化メチレン10mlに取り上
げ、0.1N HClで洗い、Na2SO4上で乾燥すると、
所望の生成物を生ずる。シリカゲルクロマトグラ
フイで更に精製できる。
化合物(11)及び(12)は枯草菌、肺炎杆菌、
S.ルテア菌、黄色ブドウ球菌及びM.アビウム菌
に対して抗菌活性を示す。
S.ルテア菌、黄色ブドウ球菌及びM.アビウム菌
に対して抗菌活性を示す。
定 義
R1=CH3−、−CH2Ph、CH2=CHCH2−、−
CH2SCH3、−CH2OCH3、−
CH2OCH2CH2OCH3、−CH2CCl3、−
CH2CH2Si(R2)3 R2=(C1〜5)アルキル R4=SO2R2 X=SO2R2、Cl、Br、I 本明細書で使用の1〜2個又は1〜5個の炭素
原子のアルキルは、メチル、エチル、プロピル、
ブチル、ペンチル、及びそれらの分枝鎖異性体類
を包含する。
CH2SCH3、−CH2OCH3、−
CH2OCH2CH2OCH3、−CH2CCl3、−
CH2CH2Si(R2)3 R2=(C1〜5)アルキル R4=SO2R2 X=SO2R2、Cl、Br、I 本明細書で使用の1〜2個又は1〜5個の炭素
原子のアルキルは、メチル、エチル、プロピル、
ブチル、ペンチル、及びそれらの分枝鎖異性体類
を包含する。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 式【式】の化合物 〔式中R2は1〜5個の炭素原子のアルキルで
ある〕。 2 式 〔式中R2は1〜5個の炭素原子のアルキルで
ある〕の化合物をトリフエニルホスフイン/四ハ
ロゲン化炭素と反応させ、適当な時間後、塩基を
加えて望みの化合物を生じさせることからなる 式 〔式中R2は上で定義されたとおり〕の化合物
の製法。 3 式 の化合物をトリフエニルホスフイン/四ハロゲン
化合物と反応させ、適当な時間後に塩基を加えて
所望の化合物を生じさせることからなる、 式 の化合物の、特許請求の範囲第2項に記載の製
法。
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US20783880A | 1980-11-18 | 1980-11-18 |
Related Child Applications (3)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2134241A Division JPH0314581A (ja) | 1980-11-18 | 1990-05-25 | 抗生物質cc―1065断片 |
JP2134243A Division JPH0314561A (ja) | 1980-11-18 | 1990-05-25 | 抗生物質cc―1065断片 |
JP2134242A Division JPH0314545A (ja) | 1980-11-18 | 1990-05-25 | 抗生物質cc―1065断片製造の中間体 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS57114589A JPS57114589A (en) | 1982-07-16 |
JPH0310629B2 true JPH0310629B2 (ja) | 1991-02-14 |
Family
ID=22772188
Family Applications (4)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP56183170A Granted JPS57114589A (en) | 1980-11-18 | 1981-11-17 | Antibiotic cc-1065 fragment |
JP2134243A Granted JPH0314561A (ja) | 1980-11-18 | 1990-05-25 | 抗生物質cc―1065断片 |
JP2134242A Granted JPH0314545A (ja) | 1980-11-18 | 1990-05-25 | 抗生物質cc―1065断片製造の中間体 |
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---|---|---|---|
JP2134243A Granted JPH0314561A (ja) | 1980-11-18 | 1990-05-25 | 抗生物質cc―1065断片 |
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JP2134241A Granted JPH0314581A (ja) | 1980-11-18 | 1990-05-25 | 抗生物質cc―1065断片 |
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-
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- 1990-05-25 JP JP2134241A patent/JPH0314581A/ja active Granted
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GB2087884A (en) | 1982-06-03 |
DE3142143C2 (ja) | 1992-07-30 |
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