JPH01187093A - 発酵法によるl―スレオニンの製造法 - Google Patents

発酵法によるl―スレオニンの製造法

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JPH01187093A
JPH01187093A JP63012779A JP1277988A JPH01187093A JP H01187093 A JPH01187093 A JP H01187093A JP 63012779 A JP63012779 A JP 63012779A JP 1277988 A JP1277988 A JP 1277988A JP H01187093 A JPH01187093 A JP H01187093A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 (産業上の利用分野) 本発明は発酵法によるL−スレオニン(以下スレオニン
と略記)の製造法に関する。スレオニンは飼料用、医薬
品用に利用される重要なアミノ酸でおる。
(本発明が解決しようとする課題) 従来1発酵法によるスレオニンの製造法としてはブレビ
バクテリウム属細菌のスレオニンアナログであるα−ア
ミノ−β−とドロキシ吉草酸(以下AH′vと略記)に
耐性を有する変異株を使用する方法(Agrla 、B
lol 、 Ch@m、、 34(3)448−456
 (1970) 。
特公昭45−26708’)が知られている。この方法
はAHV耐性変異株のうち、スレオニンによるフィート
ノ童ツク阻害の解除されたホモセリンデヒドロダナーゼ
(以下器と略記)を持つ株を用いる方法である(J、B
ioehsm、、 68 、859−866(1970
) )。この方法によるスレオニン生成収率は低く、シ
たがって飼料用に利用できる程安価ではない。そこで収
率向上のためにリジン生産株から変異誘導されることが
多い。この場合しばしばリジンを一生するためにスレオ
ニン収率が十分でなく、培養液からの分srより困難と
している。
(課題を解決するための手段) 本発明者らは上述の課題を解決するために種々検討の結
果、ブレビバクテリウム属細菌からのジヒドロジピコリ
ン酸シンターゼ(以下DPSと略記)欠失あるいは低下
変異株がスレオニンを生産することを見出し次。これら
の変異株は肋のスレオニンによるフィードバック阻害が
解除されていないため、公知菌とは異なる新型のスレオ
ニン生産株である。
後述のようにこれらの変異株のスレオニン収率は従来型
の生産株とほぼ同じである。またDPSはリノン生合成
経路上の第一酵素であるため、これの欠失あるいは低下
変異株1に誘導すればリジンの副生を軽減することがで
き、さらに、この変異は従来型のそれと全く異なる性質
であるため、従来型の株に重ね合せることでスレオニン
収率の向上も期待できる。
本発明のスレオニン製造法において用いられる微生物は
、ブレビバクテリウム属に属するDP8欠失あるいは低
下味である。この性質の他にさらにHDのフィードバッ
ク阻害解除、L−メチオニン要求性、L−インロイシン
要求性、エチオニyil、リジンアナログ耐性、ピルビ
ン酸キナーゼ欠失などを付与すると生産能tさらに向上
させることができる。
本発明の変異株の親株はいわゆるL−グルタミン酸生産
菌として知られているブレビバクテリウム属の微生物で
あり1例えば次のような菌?R1−あげることができる
ブレビ恍りデリウム フラブム         AT
CC14067プレビペクテリクム□デイパリカタム 
       ATCC14020ブレビiクテリウム
 ラクトファーメンタム    A’L’CCl386
9プAタジテリウム ロゼラム          A
TCC13825本発明で用いる変異株はこれら上述の
凶昧t−i株として変位操作を施してDPSの欠失ある
いは低下を付与することによって得られる。なお変異操
作は通常の方法1例えば紫外線照射或いはN−メチ)v
−N’−ニトロ−N−ニトロソグアニジンC以下NGと
略記)、亜硝酸等の化学薬剤処理により行うことができ
る。DPS人失あるいは低下変異株は変異処理後、AH
V耐性で且つスレオニンを生産する株を選択し、これら
の味のDPS活性を測定することにより分離できる。特
に親株としてアスI譬ルトキナーセ(以下AKと略記)
のスレオニンとリジンによる相乗阻害解除型のリジン生
産株を用いる場合は、得られ7’h AHV耐性スレオ
ニン生産株のうち、スレオニン生産量に比較しリジン副
生量が少い株を選択することでさらに効率よ(DP8欠
失株を得ることができる。
以下に本発明の使用菌株の一例プレビパクテリウム フ
ラバムAJ 12360(FERM P−121)の具
体的誘導方法を述べる。本菌株はブレビバクテリウム 
フラバムAJ 14067から誘導されたアスパラギン
酸生産株AJ 11955(FERMP−6665、特
開昭を親株として誘導され比。ブレビバクテリウムフラ
バムAJ 11955を150μm7−のNGで30℃
15分処理した。次いでAHV 101/lとリジン5
1/lt−含む第1表に示したグルコース最少寒天平板
培地(直径9cIIL)に平板あたりの菌数が約105
となるように接種し、5日間培養後に比視したコロニー
を耐性株として第2表に示した完全寒天平板培地に釣菌
した。次にこれらの株金試験管に31R1分注した第3
表に示したスレオニン生産用培地(硫酸アンモニ9ム7
011/11 、大豆加水分解物301!Ll/It−
含む培地を用いたが、この組成を以後単にN70S30
と略記する)に接種し、30℃で72時間振盪培養し、
スレオニンを生産する株七選択した。これらのうち最高
の生産能を示した変異株AJ 12360は、後述の方
法で測定したところ。
也のフィードバック阻害は親株と変わらないが、DP8
活性は欠失してい友(第4表)。
次に親株としてスレオニンとリジンによる相乗阻害の解
除されたAKを有するリジン生産株ブレビバクテリウム
 7ラパム AC664株を用いて得られfl:、DP
S久失欠失いは低下味AJ 、12361〜2(FER
MP−9?22〜3)の具体的誘導方法について述べる
。AC664株f:6001111/−のNGで30℃
、15分処理した。次いでNG処理菌体を2〜51/l
のAHV t−含む第5表に示した酢酸−ピルピン酸寒
天平板培地に平板あたりの菌数が約10 個となるよう
に接種し、12日間培養後までに出現したコロニーヲ耐
性株として釣菌した。これらの株のスレオニン、リシン
生産能を前述の培養方法で調べた。ただしスレオニン生
産用培地としてはN25 B3&の組成のものを用いた
。スレオニン生産量に比べてリジン副生量が少い5株を
選択した。これらのうち、第6表に示L7’j! 5K
AJ12361〜2 、 DAIIO03a”’t”H
Dのフィードバック阻害は親株と変わらないが、DPS
活性が欠失あるいは低下していた。なおリジン副生量の
少い株を選択した理由は、DP8はジアミノピメリン酸
(以下DAPと略記)、リジン生合成経路上の反応を触
媒する酵素であるため、DPS欠失株′においてはリジ
ン生産量が大幅に低下すると考えられるからである。実
際、これら3株は。
第6表に示し次ように、同じ親株から誘導された従来か
ら知られているスレオニンによるフィードバック阻害の
解除されe HD t−持つスレオニン生産株の代表法
AJ 12363 (FERMP−’?1?、24 )
に比べ、リジン/スレオニン比カ低かりft−6なお、
スレオニン生産量は後述の方法により。
リジン生産iは酸性ニンヒドリン法により測定した。ま
たDPS活性は次のように測定し友。第3表に示したス
レオニン生産用培地にDAP 111/l t−添加し
た培地t−5oo−容振盪フラスコに2011L1分注
し、加熱滅菌した。九だしAJ 12360株にはN5
0S30゜AJ12361〜2 、 DAIIO株には
N25835の組成のものを使用した。これにあらかじ
め第2表に示し比完全寒天平板培地にDAP 111/
l 、  L−ヒスチジン塩酸塩3009/Jを添加し
た培地で30℃、24時間培養した菌体t−1白金耳接
種し、30℃で40時間振盪培養後集菌し、0.2チ塩
化カリウム溶液で洗浄した。・この洗浄歯体t50mM
リン酸カリウム緩衝液(m7.0)に懸濁し、超音波処
理後遠心分離して得た上溝を、同バッファーを用いてセ
ファデックス025カラムでグルろかして粗酵素液を調
製した。活性測定は第7表に示した反応液で30℃、1
0分間反応を行わせた後、 1W1tの0.05N塩酸
を添加して反応を停止し、消費されたピルビン酸量を第
8表に示した反応液を用いて340nmにおける吸光度
変化を測定することによ抄求めた。
なお反応の対照riDL−アス/4ルテートーβ−セミ
アルデヒド無添加系とした。冊活性は次のように測定し
た。粗酵素液の調製は前述のDP8の活性測定と同様の
方法で行っ九が、緩衝液として50raMリン酸カリウ
ム緩衝液の代りに0.5M塩化カリウムを含む0.1M
リン酸カリウム緩衝液(PH7,0)t−用いた。活性
測定は第9表に示した反応系で340nmの吸光度の減
少を測定することにより行った。
反応の対照はDL−アスパルテート−β−七きアルデヒ
ド無添加系とした。
次にDPS fi失株AJ 12360 、 AJ 1
2361 OAHV耐性変性度れらの親株と比較した。
AH’/耐性度は、DAP111/1.ジピコリン酸5
089/1.およびAJ 12361とその親株AC6
64の場合にはさらに生育促進物質としてL−ヒスチジ
ン塩酸塩t−300Q/l添加し念第2表に示した完全
寒天平板培地で30℃。
24時間培養した菌体を、第1θ表に示したグルコース
最少液体培地で洗浄後、試験管に3d分注した同培地に
接種し、24時間振盪培養後の培養液の562 nmに
おける吸光度t−AHV添加、無添加条件で測定比較す
ることにより求めた。なおこのグルコース最少液体培地
には生育促進物質としてAJ12361とAC664株
の場合にFiL−ヒスチジン塩酸塩t−200ダ/l 
、 AJ12360とAJ 11955株の場合にはD
APとリジンを各々5oOq/l添加した。
特にDAPあるいはDAPとリジンはDPS久失欠失い
は低下株の生育をしばしば促進したので、これまでの実
験においても必要に応じて液体、平板培地にDAP f
:添加している。第11表に示したようにいずれのDP
8欠失株とも親株に比較して加による生育阻害を受けに
くくなっており、ARM耐性を獲得していた。
スレオニン生産用の培養培地は特に制限するところはな
く、炭素源、窒素源、無機塩及び必要ならば有機微量栄
養素を含有する通常の培地である。
炭素源としては炭水化物(グルコース、フラクトース或
いはデンプン。セルロース等の加水分解物。
糖蜜等)、有機酸(酢酸、クエン酸等)、アルコール(
グリセリン、エタノール等)、或いは炭化水素(ノルマ
ルノやラフイン等)が使用できる。窒素源としては硫酸
アンモニウム、尿素、硝酸アンモニウム、リン酸アンモ
ニウム、塩化アンモニウム、アンモニアガス、その他を
、無機塩としてはリン酸塩、マグネシクム塩、カルシウ
ム塩、鉄塩。
マンガン塩、その他微量金属塩等を必要に応じて使用す
る。有機微量栄養素としては、栄養要求性のある場合に
は該当するアミノ酸、ビタミン、脂肪酸類、有機塩基物
質等を適量添加し、必要に応じて更に生育促進物質とし
てアミノ酸、ビタミン。
味液(登録商標、大豆加水分解物)#酵母エキス。
ペグトン、カザミノ酸等が使用できる。特にDPS欠失
あるいは低下株の場合は、DAP −? DAPとリジ
ンの添加によって生育が促進され、良好な結果が得られ
ることが多い。
培養条件は通常の方法でpH5ないし9、温度は20な
いし40℃で好気的条件下に24ないし72時間培養す
れば良い。培養中に−が下がる場合には炭酸カルシウム
を別殺菌して加えるか又はアンモニア水、アンモニアガ
ス等のアルカリで中和する。又有機酸を炭素源とする場
合は−の上昇金鉱酸又は有機酸で中和する。
スレオニンの単離採取は常法によりて行いうル。
得られたものは薄層クロマトグラム上のRf値及び微生
物定量法による生物活性値により、スレオニン標品のそ
れらと一致することを確めスレオニンと同定した。スレ
オニンの定量はロイコノストックメセンテロイデス(A
TCC8042) を用いる微生物定量法に従りて行っ
た。
以下実施例にて説明する。
実施例1゜ 第3表に示し比スレオニン生産用培地(N50S30)
201を500−容振盪フラスコに分注し、加熱滅菌し
た。これにあらかじめDAP filll 、ジピコリ
ン酸50ダ/lt−添加し次第2表の完全寒天平板培地
で30℃、24時間培養したDPS欠失株AJ 123
60およびその親株AJ11955の函体を一白金耳接
種し。
30℃で72時間娠盪培養し比。それぞれの培養液中の
スレオニン生成fは、10.7g/l 、 OI/1(
検出限界以下)であった。
実施例2゜ スレオニン生産用培地としてN25S35の組成のもの
を用い、完全培地にL−ヒスチジン塩酸塩を300〜/
l添加した以外は実施例1と全く同様にDPS久失欠失
J12361 、 DAIIO、DP8低下低下J12
362゜親株AC664および従来型生産株AJ 12
363  t”培養した。それぞれの培養液中のスレオ
ニン生成量は9.0 、6.3 、6.2 、0 、8
.9 fillであった。
第1表  ダルコース最少平板培地組成グルコース  
      2011/1硫酸アンモニウム     
 10 #KW2PO410# MgSO4・7H200,4# F @SO4・7H2010ダ/l MnSO444H208,1’ チアミン塩酸塩      0.1〃 ビオチン         0.3# 寒天          201171p87.0  
(NaOH) 第2表  完全寒天平板培地組成 ポリベグトン      10 fill酵母エキス 
      lO# NaCA           5  aグルコース 
       5 # 寒天          201 p)17.0  (NaOH) 第3表   スレオニン生産用培地 ダルコース         10011/1硫酸アン
モニクム*70# KH2PO41# MgSO4・71120        0.4 #F
@SO4・7H20104/j MnSO4・4H208,1M チアミン塩酸塩       0.21ビオチン   
       0・3#大豆加水分解物(全窒素321
/l)*3oWLl/1ph7.Q  (NaOH) *硫酸アンモニウム7011/It、大豆加水分解物3
0m1/lの組成の場合N70S30と表記する。
AJ11955(親株)  63.6       9
8AJ12360 (変異株)  0        
 98*   nrnol/min/If  prot
・ln** スレオニンImhll存在下における阻害
度(チ)第5表   酢酸−ピルピン酸寒天平板培地組
成酢酸           5gZl ピルビン酸ナトリウム        5 #硫酸アン
モニウム     5 〃 KH2PO41# MgSO4・7H200,4# F @S04・7H2010〜/j MriSO4−4H208,1# チアミン塩酸塩      0.1 ピオチン         0.5 HEPES           23.89/1生育
促進物質        * 寒天          2011/1pH7,0(N
aOH) *酵母工中ス0.411/11 、 L−シスチン、!
、−アラニン各209/1L−)リグトフ丁ン、L−フ
ェニルアラニン、L−チロシン、L−リジン塩酸塩、L
−メチオニン、L−アルギニン塩酸塩各3004//第
7表    ジヒドロジピコリン酸シンターゼ測定用反
応液組成 イミダゾール・塩酸緩衝液(pi(7,4)     
50  mMピルビン酸ナトリウム         
2.5 mM粗酵素液              Q
、1m/第8表    ピルビン酸測定用反応液組成ト
リス鷹酸緩衝液(pH7,5)        100
mMNADH20,15rnM 乳酸脱水素酵素           20ttll第
7表の反応停止済反応液     02TILtリン酸
カリウム緩衝液(pH7,0)      100mM
DL−アス/すVテート−β−セずアルデヒド    
 0.2 mM第10表  グルコース最少液体培地組
成グルコース           201/1硫酸ア
ンモニウム       10 #KH2PO41# MgSO4−7H200,4# F@so4” 7H2010”9 MnSO4・4H20B−1’ チアミン塩酸塩         0.1#ビオチン 
           0.31尿素        
    39/1pH7,3(NaO)1) 第11表  DPS欠失株のAHV耐性度* M■無添
加区の生育度’1f001とする。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1)ブレビバクテリウム属に属し、ジヒドロジピコリン
    酸シンターゼが欠失または低下した変異株を液体培地に
    培養し、培養液中にL−スレオニンを生成蓄積せしめ、
    これを採取することを特徴とするL−スレオニンの製造
    法。 2)ブレビバクテリウム属に属しα−アミノ−β−ヒド
    ロキシ吉草酸に耐性を有し、かつジヒドロジピコリン酸
    シンターゼが欠失または低下した変異株を液体培地に培
    養し、培養液中にL−スレオニンを生成蓄積せしめ、こ
    れを採取することを特徴とするL−スレオニンの製造法
JP63012779A 1988-01-21 1988-01-21 発酵法によるl―スレオニンの製造法 Expired - Lifetime JP2600750B2 (ja)

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JPS5945895A (ja) * 1982-09-08 1984-03-14 Ajinomoto Co Inc 発酵法によるl−アスパラギン酸の製造法

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