JPH01187093A - 発酵法によるl―スレオニンの製造法 - Google Patents
発酵法によるl―スレオニンの製造法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
- C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
- C12P13/08—Lysine; Diaminopimelic acid; Threonine; Valine
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は発酵法によるL−スレオニン(以下スレオニン
と略記)の製造法に関する。スレオニンは飼料用、医薬
品用に利用される重要なアミノ酸でおる。
と略記)の製造法に関する。スレオニンは飼料用、医薬
品用に利用される重要なアミノ酸でおる。
(本発明が解決しようとする課題)
従来1発酵法によるスレオニンの製造法としてはブレビ
バクテリウム属細菌のスレオニンアナログであるα−ア
ミノ−β−とドロキシ吉草酸(以下AH′vと略記)に
耐性を有する変異株を使用する方法(Agrla 、B
lol 、 Ch@m、、 34(3)448−456
(1970) 。
バクテリウム属細菌のスレオニンアナログであるα−ア
ミノ−β−とドロキシ吉草酸(以下AH′vと略記)に
耐性を有する変異株を使用する方法(Agrla 、B
lol 、 Ch@m、、 34(3)448−456
(1970) 。
特公昭45−26708’)が知られている。この方法
はAHV耐性変異株のうち、スレオニンによるフィート
ノ童ツク阻害の解除されたホモセリンデヒドロダナーゼ
(以下器と略記)を持つ株を用いる方法である(J、B
ioehsm、、 68 、859−866(1970
) )。この方法によるスレオニン生成収率は低く、シ
たがって飼料用に利用できる程安価ではない。そこで収
率向上のためにリジン生産株から変異誘導されることが
多い。この場合しばしばリジンを一生するためにスレオ
ニン収率が十分でなく、培養液からの分srより困難と
している。
はAHV耐性変異株のうち、スレオニンによるフィート
ノ童ツク阻害の解除されたホモセリンデヒドロダナーゼ
(以下器と略記)を持つ株を用いる方法である(J、B
ioehsm、、 68 、859−866(1970
) )。この方法によるスレオニン生成収率は低く、シ
たがって飼料用に利用できる程安価ではない。そこで収
率向上のためにリジン生産株から変異誘導されることが
多い。この場合しばしばリジンを一生するためにスレオ
ニン収率が十分でなく、培養液からの分srより困難と
している。
(課題を解決するための手段)
本発明者らは上述の課題を解決するために種々検討の結
果、ブレビバクテリウム属細菌からのジヒドロジピコリ
ン酸シンターゼ(以下DPSと略記)欠失あるいは低下
変異株がスレオニンを生産することを見出し次。これら
の変異株は肋のスレオニンによるフィードバック阻害が
解除されていないため、公知菌とは異なる新型のスレオ
ニン生産株である。
果、ブレビバクテリウム属細菌からのジヒドロジピコリ
ン酸シンターゼ(以下DPSと略記)欠失あるいは低下
変異株がスレオニンを生産することを見出し次。これら
の変異株は肋のスレオニンによるフィードバック阻害が
解除されていないため、公知菌とは異なる新型のスレオ
ニン生産株である。
後述のようにこれらの変異株のスレオニン収率は従来型
の生産株とほぼ同じである。またDPSはリノン生合成
経路上の第一酵素であるため、これの欠失あるいは低下
変異株1に誘導すればリジンの副生を軽減することがで
き、さらに、この変異は従来型のそれと全く異なる性質
であるため、従来型の株に重ね合せることでスレオニン
収率の向上も期待できる。
の生産株とほぼ同じである。またDPSはリノン生合成
経路上の第一酵素であるため、これの欠失あるいは低下
変異株1に誘導すればリジンの副生を軽減することがで
き、さらに、この変異は従来型のそれと全く異なる性質
であるため、従来型の株に重ね合せることでスレオニン
収率の向上も期待できる。
本発明のスレオニン製造法において用いられる微生物は
、ブレビバクテリウム属に属するDP8欠失あるいは低
下味である。この性質の他にさらにHDのフィードバッ
ク阻害解除、L−メチオニン要求性、L−インロイシン
要求性、エチオニyil、リジンアナログ耐性、ピルビ
ン酸キナーゼ欠失などを付与すると生産能tさらに向上
させることができる。
、ブレビバクテリウム属に属するDP8欠失あるいは低
下味である。この性質の他にさらにHDのフィードバッ
ク阻害解除、L−メチオニン要求性、L−インロイシン
要求性、エチオニyil、リジンアナログ耐性、ピルビ
ン酸キナーゼ欠失などを付与すると生産能tさらに向上
させることができる。
本発明の変異株の親株はいわゆるL−グルタミン酸生産
菌として知られているブレビバクテリウム属の微生物で
あり1例えば次のような菌?R1−あげることができる
。
菌として知られているブレビバクテリウム属の微生物で
あり1例えば次のような菌?R1−あげることができる
。
ブレビ恍りデリウム フラブム AT
CC14067プレビペクテリクム□デイパリカタム
ATCC14020ブレビiクテリウム
ラクトファーメンタム A’L’CCl386
9プAタジテリウム ロゼラム A
TCC13825本発明で用いる変異株はこれら上述の
凶昧t−i株として変位操作を施してDPSの欠失ある
いは低下を付与することによって得られる。なお変異操
作は通常の方法1例えば紫外線照射或いはN−メチ)v
−N’−ニトロ−N−ニトロソグアニジンC以下NGと
略記)、亜硝酸等の化学薬剤処理により行うことができ
る。DPS人失あるいは低下変異株は変異処理後、AH
V耐性で且つスレオニンを生産する株を選択し、これら
の味のDPS活性を測定することにより分離できる。特
に親株としてアスI譬ルトキナーセ(以下AKと略記)
のスレオニンとリジンによる相乗阻害解除型のリジン生
産株を用いる場合は、得られ7’h AHV耐性スレオ
ニン生産株のうち、スレオニン生産量に比較しリジン副
生量が少い株を選択することでさらに効率よ(DP8欠
失株を得ることができる。
CC14067プレビペクテリクム□デイパリカタム
ATCC14020ブレビiクテリウム
ラクトファーメンタム A’L’CCl386
9プAタジテリウム ロゼラム A
TCC13825本発明で用いる変異株はこれら上述の
凶昧t−i株として変位操作を施してDPSの欠失ある
いは低下を付与することによって得られる。なお変異操
作は通常の方法1例えば紫外線照射或いはN−メチ)v
−N’−ニトロ−N−ニトロソグアニジンC以下NGと
略記)、亜硝酸等の化学薬剤処理により行うことができ
る。DPS人失あるいは低下変異株は変異処理後、AH
V耐性で且つスレオニンを生産する株を選択し、これら
の味のDPS活性を測定することにより分離できる。特
に親株としてアスI譬ルトキナーセ(以下AKと略記)
のスレオニンとリジンによる相乗阻害解除型のリジン生
産株を用いる場合は、得られ7’h AHV耐性スレオ
ニン生産株のうち、スレオニン生産量に比較しリジン副
生量が少い株を選択することでさらに効率よ(DP8欠
失株を得ることができる。
以下に本発明の使用菌株の一例プレビパクテリウム フ
ラバムAJ 12360(FERM P−121)の具
体的誘導方法を述べる。本菌株はブレビバクテリウム
フラバムAJ 14067から誘導されたアスパラギン
酸生産株AJ 11955(FERMP−6665、特
開昭を親株として誘導され比。ブレビバクテリウムフラ
バムAJ 11955を150μm7−のNGで30℃
。
ラバムAJ 12360(FERM P−121)の具
体的誘導方法を述べる。本菌株はブレビバクテリウム
フラバムAJ 14067から誘導されたアスパラギン
酸生産株AJ 11955(FERMP−6665、特
開昭を親株として誘導され比。ブレビバクテリウムフラ
バムAJ 11955を150μm7−のNGで30℃
。
15分処理した。次いでAHV 101/lとリジン5
1/lt−含む第1表に示したグルコース最少寒天平板
培地(直径9cIIL)に平板あたりの菌数が約105
となるように接種し、5日間培養後に比視したコロニー
を耐性株として第2表に示した完全寒天平板培地に釣菌
した。次にこれらの株金試験管に31R1分注した第3
表に示したスレオニン生産用培地(硫酸アンモニ9ム7
011/11 、大豆加水分解物301!Ll/It−
含む培地を用いたが、この組成を以後単にN70S30
と略記する)に接種し、30℃で72時間振盪培養し、
スレオニンを生産する株七選択した。これらのうち最高
の生産能を示した変異株AJ 12360は、後述の方
法で測定したところ。
1/lt−含む第1表に示したグルコース最少寒天平板
培地(直径9cIIL)に平板あたりの菌数が約105
となるように接種し、5日間培養後に比視したコロニー
を耐性株として第2表に示した完全寒天平板培地に釣菌
した。次にこれらの株金試験管に31R1分注した第3
表に示したスレオニン生産用培地(硫酸アンモニ9ム7
011/11 、大豆加水分解物301!Ll/It−
含む培地を用いたが、この組成を以後単にN70S30
と略記する)に接種し、30℃で72時間振盪培養し、
スレオニンを生産する株七選択した。これらのうち最高
の生産能を示した変異株AJ 12360は、後述の方
法で測定したところ。
也のフィードバック阻害は親株と変わらないが、DP8
活性は欠失してい友(第4表)。
活性は欠失してい友(第4表)。
次に親株としてスレオニンとリジンによる相乗阻害の解
除されたAKを有するリジン生産株ブレビバクテリウム
7ラパム AC664株を用いて得られfl:、DP
S久失欠失いは低下味AJ 、12361〜2(FER
MP−9?22〜3)の具体的誘導方法について述べる
。AC664株f:6001111/−のNGで30℃
、15分処理した。次いでNG処理菌体を2〜51/l
のAHV t−含む第5表に示した酢酸−ピルピン酸寒
天平板培地に平板あたりの菌数が約10 個となるよう
に接種し、12日間培養後までに出現したコロニーヲ耐
性株として釣菌した。これらの株のスレオニン、リシン
生産能を前述の培養方法で調べた。ただしスレオニン生
産用培地としてはN25 B3&の組成のものを用いた
。スレオニン生産量に比べてリジン副生量が少い5株を
選択した。これらのうち、第6表に示L7’j! 5K
AJ12361〜2 、 DAIIO03a”’t”H
Dのフィードバック阻害は親株と変わらないが、DPS
活性が欠失あるいは低下していた。なおリジン副生量の
少い株を選択した理由は、DP8はジアミノピメリン酸
(以下DAPと略記)、リジン生合成経路上の反応を触
媒する酵素であるため、DPS欠失株′においてはリジ
ン生産量が大幅に低下すると考えられるからである。実
際、これら3株は。
除されたAKを有するリジン生産株ブレビバクテリウム
7ラパム AC664株を用いて得られfl:、DP
S久失欠失いは低下味AJ 、12361〜2(FER
MP−9?22〜3)の具体的誘導方法について述べる
。AC664株f:6001111/−のNGで30℃
、15分処理した。次いでNG処理菌体を2〜51/l
のAHV t−含む第5表に示した酢酸−ピルピン酸寒
天平板培地に平板あたりの菌数が約10 個となるよう
に接種し、12日間培養後までに出現したコロニーヲ耐
性株として釣菌した。これらの株のスレオニン、リシン
生産能を前述の培養方法で調べた。ただしスレオニン生
産用培地としてはN25 B3&の組成のものを用いた
。スレオニン生産量に比べてリジン副生量が少い5株を
選択した。これらのうち、第6表に示L7’j! 5K
AJ12361〜2 、 DAIIO03a”’t”H
Dのフィードバック阻害は親株と変わらないが、DPS
活性が欠失あるいは低下していた。なおリジン副生量の
少い株を選択した理由は、DP8はジアミノピメリン酸
(以下DAPと略記)、リジン生合成経路上の反応を触
媒する酵素であるため、DPS欠失株′においてはリジ
ン生産量が大幅に低下すると考えられるからである。実
際、これら3株は。
第6表に示し次ように、同じ親株から誘導された従来か
ら知られているスレオニンによるフィードバック阻害の
解除されe HD t−持つスレオニン生産株の代表法
AJ 12363 (FERMP−’?1?、24 )
に比べ、リジン/スレオニン比カ低かりft−6なお、
スレオニン生産量は後述の方法により。
ら知られているスレオニンによるフィードバック阻害の
解除されe HD t−持つスレオニン生産株の代表法
AJ 12363 (FERMP−’?1?、24 )
に比べ、リジン/スレオニン比カ低かりft−6なお、
スレオニン生産量は後述の方法により。
リジン生産iは酸性ニンヒドリン法により測定した。ま
たDPS活性は次のように測定し友。第3表に示したス
レオニン生産用培地にDAP 111/l t−添加し
た培地t−5oo−容振盪フラスコに2011L1分注
し、加熱滅菌した。九だしAJ 12360株にはN5
0S30゜AJ12361〜2 、 DAIIO株には
N25835の組成のものを使用した。これにあらかじ
め第2表に示し比完全寒天平板培地にDAP 111/
l 、 L−ヒスチジン塩酸塩3009/Jを添加し
た培地で30℃、24時間培養した菌体t−1白金耳接
種し、30℃で40時間振盪培養後集菌し、0.2チ塩
化カリウム溶液で洗浄した。・この洗浄歯体t50mM
リン酸カリウム緩衝液(m7.0)に懸濁し、超音波処
理後遠心分離して得た上溝を、同バッファーを用いてセ
ファデックス025カラムでグルろかして粗酵素液を調
製した。活性測定は第7表に示した反応液で30℃、1
0分間反応を行わせた後、 1W1tの0.05N塩酸
を添加して反応を停止し、消費されたピルビン酸量を第
8表に示した反応液を用いて340nmにおける吸光度
変化を測定することによ抄求めた。
たDPS活性は次のように測定し友。第3表に示したス
レオニン生産用培地にDAP 111/l t−添加し
た培地t−5oo−容振盪フラスコに2011L1分注
し、加熱滅菌した。九だしAJ 12360株にはN5
0S30゜AJ12361〜2 、 DAIIO株には
N25835の組成のものを使用した。これにあらかじ
め第2表に示し比完全寒天平板培地にDAP 111/
l 、 L−ヒスチジン塩酸塩3009/Jを添加し
た培地で30℃、24時間培養した菌体t−1白金耳接
種し、30℃で40時間振盪培養後集菌し、0.2チ塩
化カリウム溶液で洗浄した。・この洗浄歯体t50mM
リン酸カリウム緩衝液(m7.0)に懸濁し、超音波処
理後遠心分離して得た上溝を、同バッファーを用いてセ
ファデックス025カラムでグルろかして粗酵素液を調
製した。活性測定は第7表に示した反応液で30℃、1
0分間反応を行わせた後、 1W1tの0.05N塩酸
を添加して反応を停止し、消費されたピルビン酸量を第
8表に示した反応液を用いて340nmにおける吸光度
変化を測定することによ抄求めた。
なお反応の対照riDL−アス/4ルテートーβ−セミ
アルデヒド無添加系とした。冊活性は次のように測定し
た。粗酵素液の調製は前述のDP8の活性測定と同様の
方法で行っ九が、緩衝液として50raMリン酸カリウ
ム緩衝液の代りに0.5M塩化カリウムを含む0.1M
リン酸カリウム緩衝液(PH7,0)t−用いた。活性
測定は第9表に示した反応系で340nmの吸光度の減
少を測定することにより行った。
アルデヒド無添加系とした。冊活性は次のように測定し
た。粗酵素液の調製は前述のDP8の活性測定と同様の
方法で行っ九が、緩衝液として50raMリン酸カリウ
ム緩衝液の代りに0.5M塩化カリウムを含む0.1M
リン酸カリウム緩衝液(PH7,0)t−用いた。活性
測定は第9表に示した反応系で340nmの吸光度の減
少を測定することにより行った。
反応の対照はDL−アスパルテート−β−七きアルデヒ
ド無添加系とした。
ド無添加系とした。
次にDPS fi失株AJ 12360 、 AJ 1
2361 OAHV耐性変性度れらの親株と比較した。
2361 OAHV耐性変性度れらの親株と比較した。
AH’/耐性度は、DAP111/1.ジピコリン酸5
089/1.およびAJ 12361とその親株AC6
64の場合にはさらに生育促進物質としてL−ヒスチジ
ン塩酸塩t−300Q/l添加し念第2表に示した完全
寒天平板培地で30℃。
089/1.およびAJ 12361とその親株AC6
64の場合にはさらに生育促進物質としてL−ヒスチジ
ン塩酸塩t−300Q/l添加し念第2表に示した完全
寒天平板培地で30℃。
24時間培養した菌体を、第1θ表に示したグルコース
最少液体培地で洗浄後、試験管に3d分注した同培地に
接種し、24時間振盪培養後の培養液の562 nmに
おける吸光度t−AHV添加、無添加条件で測定比較す
ることにより求めた。なおこのグルコース最少液体培地
には生育促進物質としてAJ12361とAC664株
の場合にFiL−ヒスチジン塩酸塩t−200ダ/l
、 AJ12360とAJ 11955株の場合にはD
APとリジンを各々5oOq/l添加した。
最少液体培地で洗浄後、試験管に3d分注した同培地に
接種し、24時間振盪培養後の培養液の562 nmに
おける吸光度t−AHV添加、無添加条件で測定比較す
ることにより求めた。なおこのグルコース最少液体培地
には生育促進物質としてAJ12361とAC664株
の場合にFiL−ヒスチジン塩酸塩t−200ダ/l
、 AJ12360とAJ 11955株の場合にはD
APとリジンを各々5oOq/l添加した。
特にDAPあるいはDAPとリジンはDPS久失欠失い
は低下株の生育をしばしば促進したので、これまでの実
験においても必要に応じて液体、平板培地にDAP f
:添加している。第11表に示したようにいずれのDP
8欠失株とも親株に比較して加による生育阻害を受けに
くくなっており、ARM耐性を獲得していた。
は低下株の生育をしばしば促進したので、これまでの実
験においても必要に応じて液体、平板培地にDAP f
:添加している。第11表に示したようにいずれのDP
8欠失株とも親株に比較して加による生育阻害を受けに
くくなっており、ARM耐性を獲得していた。
スレオニン生産用の培養培地は特に制限するところはな
く、炭素源、窒素源、無機塩及び必要ならば有機微量栄
養素を含有する通常の培地である。
く、炭素源、窒素源、無機塩及び必要ならば有機微量栄
養素を含有する通常の培地である。
炭素源としては炭水化物(グルコース、フラクトース或
いはデンプン。セルロース等の加水分解物。
いはデンプン。セルロース等の加水分解物。
糖蜜等)、有機酸(酢酸、クエン酸等)、アルコール(
グリセリン、エタノール等)、或いは炭化水素(ノルマ
ルノやラフイン等)が使用できる。窒素源としては硫酸
アンモニウム、尿素、硝酸アンモニウム、リン酸アンモ
ニウム、塩化アンモニウム、アンモニアガス、その他を
、無機塩としてはリン酸塩、マグネシクム塩、カルシウ
ム塩、鉄塩。
グリセリン、エタノール等)、或いは炭化水素(ノルマ
ルノやラフイン等)が使用できる。窒素源としては硫酸
アンモニウム、尿素、硝酸アンモニウム、リン酸アンモ
ニウム、塩化アンモニウム、アンモニアガス、その他を
、無機塩としてはリン酸塩、マグネシクム塩、カルシウ
ム塩、鉄塩。
マンガン塩、その他微量金属塩等を必要に応じて使用す
る。有機微量栄養素としては、栄養要求性のある場合に
は該当するアミノ酸、ビタミン、脂肪酸類、有機塩基物
質等を適量添加し、必要に応じて更に生育促進物質とし
てアミノ酸、ビタミン。
る。有機微量栄養素としては、栄養要求性のある場合に
は該当するアミノ酸、ビタミン、脂肪酸類、有機塩基物
質等を適量添加し、必要に応じて更に生育促進物質とし
てアミノ酸、ビタミン。
味液(登録商標、大豆加水分解物)#酵母エキス。
ペグトン、カザミノ酸等が使用できる。特にDPS欠失
あるいは低下株の場合は、DAP −? DAPとリジ
ンの添加によって生育が促進され、良好な結果が得られ
ることが多い。
あるいは低下株の場合は、DAP −? DAPとリジ
ンの添加によって生育が促進され、良好な結果が得られ
ることが多い。
培養条件は通常の方法でpH5ないし9、温度は20な
いし40℃で好気的条件下に24ないし72時間培養す
れば良い。培養中に−が下がる場合には炭酸カルシウム
を別殺菌して加えるか又はアンモニア水、アンモニアガ
ス等のアルカリで中和する。又有機酸を炭素源とする場
合は−の上昇金鉱酸又は有機酸で中和する。
いし40℃で好気的条件下に24ないし72時間培養す
れば良い。培養中に−が下がる場合には炭酸カルシウム
を別殺菌して加えるか又はアンモニア水、アンモニアガ
ス等のアルカリで中和する。又有機酸を炭素源とする場
合は−の上昇金鉱酸又は有機酸で中和する。
スレオニンの単離採取は常法によりて行いうル。
得られたものは薄層クロマトグラム上のRf値及び微生
物定量法による生物活性値により、スレオニン標品のそ
れらと一致することを確めスレオニンと同定した。スレ
オニンの定量はロイコノストックメセンテロイデス(A
TCC8042) を用いる微生物定量法に従りて行っ
た。
物定量法による生物活性値により、スレオニン標品のそ
れらと一致することを確めスレオニンと同定した。スレ
オニンの定量はロイコノストックメセンテロイデス(A
TCC8042) を用いる微生物定量法に従りて行っ
た。
以下実施例にて説明する。
実施例1゜
第3表に示し比スレオニン生産用培地(N50S30)
201を500−容振盪フラスコに分注し、加熱滅菌し
た。これにあらかじめDAP filll 、ジピコリ
ン酸50ダ/lt−添加し次第2表の完全寒天平板培地
で30℃、24時間培養したDPS欠失株AJ 123
60およびその親株AJ11955の函体を一白金耳接
種し。
201を500−容振盪フラスコに分注し、加熱滅菌し
た。これにあらかじめDAP filll 、ジピコリ
ン酸50ダ/lt−添加し次第2表の完全寒天平板培地
で30℃、24時間培養したDPS欠失株AJ 123
60およびその親株AJ11955の函体を一白金耳接
種し。
30℃で72時間娠盪培養し比。それぞれの培養液中の
スレオニン生成fは、10.7g/l 、 OI/1(
検出限界以下)であった。
スレオニン生成fは、10.7g/l 、 OI/1(
検出限界以下)であった。
実施例2゜
スレオニン生産用培地としてN25S35の組成のもの
を用い、完全培地にL−ヒスチジン塩酸塩を300〜/
l添加した以外は実施例1と全く同様にDPS久失欠失
J12361 、 DAIIO、DP8低下低下J12
362゜親株AC664および従来型生産株AJ 12
363 t”培養した。それぞれの培養液中のスレオ
ニン生成量は9.0 、6.3 、6.2 、0 、8
.9 fillであった。
を用い、完全培地にL−ヒスチジン塩酸塩を300〜/
l添加した以外は実施例1と全く同様にDPS久失欠失
J12361 、 DAIIO、DP8低下低下J12
362゜親株AC664および従来型生産株AJ 12
363 t”培養した。それぞれの培養液中のスレオ
ニン生成量は9.0 、6.3 、6.2 、0 、8
.9 fillであった。
第1表 ダルコース最少平板培地組成グルコース
2011/1硫酸アンモニウム
10 #KW2PO410# MgSO4・7H200,4# F @SO4・7H2010ダ/l MnSO444H208,1’ チアミン塩酸塩 0.1〃 ビオチン 0.3# 寒天 201171p87.0
(NaOH) 第2表 完全寒天平板培地組成 ポリベグトン 10 fill酵母エキス
lO# NaCA 5 aグルコース
5 # 寒天 201 p)17.0 (NaOH) 第3表 スレオニン生産用培地 ダルコース 10011/1硫酸アン
モニクム*70# KH2PO41# MgSO4・71120 0.4 #F
@SO4・7H20104/j MnSO4・4H208,1M チアミン塩酸塩 0.21ビオチン
0・3#大豆加水分解物(全窒素321
/l)*3oWLl/1ph7.Q (NaOH) *硫酸アンモニウム7011/It、大豆加水分解物3
0m1/lの組成の場合N70S30と表記する。
2011/1硫酸アンモニウム
10 #KW2PO410# MgSO4・7H200,4# F @SO4・7H2010ダ/l MnSO444H208,1’ チアミン塩酸塩 0.1〃 ビオチン 0.3# 寒天 201171p87.0
(NaOH) 第2表 完全寒天平板培地組成 ポリベグトン 10 fill酵母エキス
lO# NaCA 5 aグルコース
5 # 寒天 201 p)17.0 (NaOH) 第3表 スレオニン生産用培地 ダルコース 10011/1硫酸アン
モニクム*70# KH2PO41# MgSO4・71120 0.4 #F
@SO4・7H20104/j MnSO4・4H208,1M チアミン塩酸塩 0.21ビオチン
0・3#大豆加水分解物(全窒素321
/l)*3oWLl/1ph7.Q (NaOH) *硫酸アンモニウム7011/It、大豆加水分解物3
0m1/lの組成の場合N70S30と表記する。
AJ11955(親株) 63.6 9
8AJ12360 (変異株) 0
98* nrnol/min/If prot
・ln** スレオニンImhll存在下における阻害
度(チ)第5表 酢酸−ピルピン酸寒天平板培地組
成酢酸 5gZl ピルビン酸ナトリウム 5 #硫酸アン
モニウム 5 〃 KH2PO41# MgSO4・7H200,4# F @S04・7H2010〜/j MriSO4−4H208,1# チアミン塩酸塩 0.1 ピオチン 0.5 HEPES 23.89/1生育
促進物質 * 寒天 2011/1pH7,0(N
aOH) *酵母工中ス0.411/11 、 L−シスチン、!
、−アラニン各209/1L−)リグトフ丁ン、L−フ
ェニルアラニン、L−チロシン、L−リジン塩酸塩、L
−メチオニン、L−アルギニン塩酸塩各3004//第
7表 ジヒドロジピコリン酸シンターゼ測定用反
応液組成 イミダゾール・塩酸緩衝液(pi(7,4)
50 mMピルビン酸ナトリウム
2.5 mM粗酵素液 Q
、1m/第8表 ピルビン酸測定用反応液組成ト
リス鷹酸緩衝液(pH7,5) 100
mMNADH20,15rnM 乳酸脱水素酵素 20ttll第
7表の反応停止済反応液 02TILtリン酸
カリウム緩衝液(pH7,0) 100mM
DL−アス/すVテート−β−セずアルデヒド
0.2 mM第10表 グルコース最少液体培地組
成グルコース 201/1硫酸ア
ンモニウム 10 #KH2PO41# MgSO4−7H200,4# F@so4” 7H2010”9 MnSO4・4H20B−1’ チアミン塩酸塩 0.1#ビオチン
0.31尿素
39/1pH7,3(NaO)1) 第11表 DPS欠失株のAHV耐性度* M■無添
加区の生育度’1f001とする。
8AJ12360 (変異株) 0
98* nrnol/min/If prot
・ln** スレオニンImhll存在下における阻害
度(チ)第5表 酢酸−ピルピン酸寒天平板培地組
成酢酸 5gZl ピルビン酸ナトリウム 5 #硫酸アン
モニウム 5 〃 KH2PO41# MgSO4・7H200,4# F @S04・7H2010〜/j MriSO4−4H208,1# チアミン塩酸塩 0.1 ピオチン 0.5 HEPES 23.89/1生育
促進物質 * 寒天 2011/1pH7,0(N
aOH) *酵母工中ス0.411/11 、 L−シスチン、!
、−アラニン各209/1L−)リグトフ丁ン、L−フ
ェニルアラニン、L−チロシン、L−リジン塩酸塩、L
−メチオニン、L−アルギニン塩酸塩各3004//第
7表 ジヒドロジピコリン酸シンターゼ測定用反
応液組成 イミダゾール・塩酸緩衝液(pi(7,4)
50 mMピルビン酸ナトリウム
2.5 mM粗酵素液 Q
、1m/第8表 ピルビン酸測定用反応液組成ト
リス鷹酸緩衝液(pH7,5) 100
mMNADH20,15rnM 乳酸脱水素酵素 20ttll第
7表の反応停止済反応液 02TILtリン酸
カリウム緩衝液(pH7,0) 100mM
DL−アス/すVテート−β−セずアルデヒド
0.2 mM第10表 グルコース最少液体培地組
成グルコース 201/1硫酸ア
ンモニウム 10 #KH2PO41# MgSO4−7H200,4# F@so4” 7H2010”9 MnSO4・4H20B−1’ チアミン塩酸塩 0.1#ビオチン
0.31尿素
39/1pH7,3(NaO)1) 第11表 DPS欠失株のAHV耐性度* M■無添
加区の生育度’1f001とする。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)ブレビバクテリウム属に属し、ジヒドロジピコリン
酸シンターゼが欠失または低下した変異株を液体培地に
培養し、培養液中にL−スレオニンを生成蓄積せしめ、
これを採取することを特徴とするL−スレオニンの製造
法。 2)ブレビバクテリウム属に属しα−アミノ−β−ヒド
ロキシ吉草酸に耐性を有し、かつジヒドロジピコリン酸
シンターゼが欠失または低下した変異株を液体培地に培
養し、培養液中にL−スレオニンを生成蓄積せしめ、こ
れを採取することを特徴とするL−スレオニンの製造法
。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63012779A JP2600750B2 (ja) | 1988-01-21 | 1988-01-21 | 発酵法によるl―スレオニンの製造法 |
FR898900716A FR2626286B1 (fr) | 1988-01-21 | 1989-01-20 | Procede de production de la l-threonine par fermentation |
US07/299,653 US5077207A (en) | 1988-01-21 | 1989-01-23 | Process for the production of L-threonine by fermentation |
CN89100572A CN1053221C (zh) | 1988-01-21 | 1989-01-28 | 用发酵法生产l-苏氨酸的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63012779A JP2600750B2 (ja) | 1988-01-21 | 1988-01-21 | 発酵法によるl―スレオニンの製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01187093A true JPH01187093A (ja) | 1989-07-26 |
JP2600750B2 JP2600750B2 (ja) | 1997-04-16 |
Family
ID=11814892
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63012779A Expired - Lifetime JP2600750B2 (ja) | 1988-01-21 | 1988-01-21 | 発酵法によるl―スレオニンの製造法 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5077207A (ja) |
JP (1) | JP2600750B2 (ja) |
CN (1) | CN1053221C (ja) |
FR (1) | FR2626286B1 (ja) |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5939307A (en) * | 1996-07-30 | 1999-08-17 | The Archer-Daniels-Midland Company | Strains of Escherichia coli, methods of preparing the same and use thereof in fermentation processes for l-threonine production |
US6984512B1 (en) * | 1999-08-02 | 2006-01-10 | Archer-Daniels-Midland Company | Bacterial strains, methods of preparing the same and use thereof in fermentation processes for L-lysine production |
US7220571B2 (en) * | 2000-09-28 | 2007-05-22 | Archer-Daniels-Midland Company | Escherichia coli strains which over-produce L-threonine and processes for the production of L-threonine by fermentation |
KR100608085B1 (ko) * | 2004-02-05 | 2006-08-02 | 씨제이 주식회사 | tyrR 유전자가 불활성화된 L-쓰레오닌 생성 미생물,그를 제조하는 방법 및 상기 미생물을 이용한L-쓰레오닌의 제조방법 |
US7723097B2 (en) * | 2005-03-11 | 2010-05-25 | Archer-Daniels-Midland Company | Escherichia coli strains that over-produce L-threonine and processes for their production |
US8187842B2 (en) * | 2005-06-20 | 2012-05-29 | Archer Daniels Midland Company | Altered glyoxylate shunt for improved production of aspartate-derived amino acids and chemicals |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5945895A (ja) * | 1982-09-08 | 1984-03-14 | Ajinomoto Co Inc | 発酵法によるl−アスパラギン酸の製造法 |
-
1988
- 1988-01-21 JP JP63012779A patent/JP2600750B2/ja not_active Expired - Lifetime
-
1989
- 1989-01-20 FR FR898900716A patent/FR2626286B1/fr not_active Expired - Fee Related
- 1989-01-23 US US07/299,653 patent/US5077207A/en not_active Expired - Lifetime
- 1989-01-28 CN CN89100572A patent/CN1053221C/zh not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
FR2626286A1 (fr) | 1989-07-28 |
CN1044498A (zh) | 1990-08-08 |
JP2600750B2 (ja) | 1997-04-16 |
CN1053221C (zh) | 2000-06-07 |
US5077207A (en) | 1991-12-31 |
FR2626286B1 (fr) | 1994-06-17 |
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JPH0555115B2 (ja) |