JP7408098B2 - Rnaポリメラーゼバリアント - Google Patents
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Description
本出願は、2017年8月18日に出願された米国仮出願第62/547,677号、2018年2月9日に出願された米国仮出願第62/628,484号、及び2018年3月5日に出願された米国仮出願第62/638,684号、2018年5月29日に出願された米国仮出願第62/677,527号の35U.S.C.§119(e)下の利益を主張し、それらの各出願は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
RNAポリメラーゼ(DNA依存性RNAポリメラーゼ)は、成長中のRNA鎖の3´末端へのリボヌクレオチドの連続的な付加を触媒する酵素であり(5´→3´方向のRNAの転写)、ヌクレオシド三リン酸(NTP)を酵素の基質として作用し、ヌクレオチドの配列はDNA鋳型によって特定される。転写は、塩基の相補的対合に依存する。二重ヘリックスの2本の鎖は局所的に分離し、分離した鎖の1つは鋳型(DNA鋳型)として機能する。次いで、RNAポリメラーゼは、鋳型中の相補的な塩基によって、DNA鋳型上の遊離ヌクレオチドのアライメントを触媒する。したがって、ポリメラーゼが成長中のRNA鎖の3´末端へのリボヌクレオチドの連続的な追加を触媒する場合、RNAポリメラーゼはRNAポリメラーゼ活性を有するとみなす。
本開示のRNAポリメラーゼバリアントは、WT RNAポリメラーゼと比較して少なくとも1つのアミノ酸置換を含む。例えば、配列番号1のアミノ酸配列を有するWT T7 RNAポリメラーゼに関して、43位のセリンは「野生型アミノ酸」とみなされ、43位のセリンのアラニンへの置換は高いヘリックス性向を有する「アミノ酸置換」とみなされる。
リボ核酸(RNA)合成のための共転写キャッピング方法も本明細書で提供される。すなわち、RNAは「ワンポット(one-pot)」反応で生成され、別々のキャッピング反応を必要としない。したがって、本方法は、いくつかの実施形態では、RNA転写物を生成するためのインビトロ転写反応条件下で、ポリヌクレオチド鋳型をT7 RNAポリメラーゼバリアント、ヌクレオシド三リン酸、及びキャップ類似体と反応させることを含む。
環B2及び環B3はそれぞれ独立して、核酸塩基または修飾核酸塩基であり、
X2はO、S(O)p、NR24、またはCR25R26であり、pは0、1、または2であり、
Y0は、OまたはCR6R7であり、
Y1は、O、S(O)n、CR6R7、またはNR8であり、nは0、1、または2であり、
各---は、単結合または不存在であり、各---が単結合の場合、YiはO、S(O)n、CR6R7、またはNR8であり、各---が不存在である場合、Y1は空(void)であり、
Y2は、(OP(O)R4)m(mは0、1、または2である)または-O-(CR40R41)u-Q0-(CR42R43)v-であり、ここで、Q0は結合、O、S(O)r、NR44、またはCR45R46であり、rは0、1、または2であり、u及びvの各々は、独立して、1、2、3または4であり、
各R2及びR2´は、独立して、ハロ、LNA、またはOR3であり、
各R3は、独立して、H、C1-C6アルキル、C2-C6アルケニル、またはC2-C6アルキニルであり、R3は、C1-C6アルキル、C2-C6アルケニル、またはC2-C6アルキニルである場合、ハロ、OH、または1つ以上のOHもしくはOC(O)-C1-C6アルキルで任意選択により置換されたC1-C6アルコキシルのうちの1つ以上で任意選択により置換され、
各R4及びR4´は、独立して、H、ハロ、C1-C6アルキル、OH、SH、SeH、またはBH3 -であり、
R6、R7、及びR8の各々は、独立して、-Q1-T1であり、ここで、Q1は、結合、またはハロ、シアノ、OH、及びC1-C6アルコキシのうちの1つ以上で任意選択により置換されたC1-C3アルキルリンカーであり、T1は、H、ハロ、OH、COOH、シアノ、またはRs1であり、ここで、Rs1は、C1-C3アルキル、C2-C6アルケニル、C2-C6アルキニル、C1-C6アルコキシル、C(O)O-C1-C6アルキル、C3-C8シクロアルキル、C6-C10アリール、NR31R32、(NR31R32R33)+、4~12員のヘテロシクロアルキル、または5もしくは6員のヘテロアリールであり、Rs1は、ハロ、OH、オキソ、C1-C6アルキル、COOH、C(O)O-C1-C6アルキル、シアノ、C1-C6アルコキシル、NR31R32、(NR31R32R33)+、C3-C8シクロアルキル、C6-C10アリール、4~12員のヘテロシクロアルキル、及び5または6員のヘテロアリールからなる群から選択される1つ以上の置換基で任意選択により置換され、
R10、R11、R12、R13R14、及びR15の各々は、独立して、-Q2-T2であり、ここで、Q2は、結合、またはハロ、シアノ、OH、及びC1-C6アルコキシのうちの1つ以上で任意選択により置換されたC1-C3アルキルリンカーであり、T2は、H、ハロ、OH、NH2、シアノ、NO2、N3、Rs2、またはORs2であり、ここで、Rs2は、C1-C6アルキル、C2-C6アルケニル、C2-C6アルキニル、C3-C8シクロアルキル、C6-C10アリール、NHC(O)-C1-C6アルキル、NR31R32、(NR31R32R33)+、4~12員のヘテロシクロアルキル、または5もしくは6員のヘテロアリールあり、Rs2は、ハロ、OH、オキソ、C1-C6アルキル、COOH、C(O)O-C1-C6アルキル、シアノ、C1-C6アルコキシル、NR31R32、(NR31R32R33)+、C3-C8シクロアルキル、C6-C10アリール,4~12員のヘテロシクロアルキル、及び5または6員のヘテロアリールからなる群から選択される1つ以上の置換基で任意選択により置換され、あるいはR12はR14と一緒にオキソであり、またはR13はR15と一緒にオキソであり、
R20、R21、R22、及びR23の各々は、独立して、-Q3-T3であり、ここで、Q3は、結合、またはハロ、シアノ、OH、及びC1-C6アルコキシのうちの1つ以上で任意選択により置換されたC1-C3アルキルリンカーであり、T3は、H、ハロ、OH、NH2、シアノ、NO2、N3、RS3、またはORS3であり、ここで、RS3は、C1-C6アルキル、C2-C6アルケニル、C2-C6アルキニル、C3-C8シクロアルキル、C6-C10アリール、NHC(O)-C1-C6アルキル、モノ-C1-C6アルキルアミノ、ジ-C1-C6アルキルアミノ、4~12員のヘテロシクロアルキル、または5もしくは6員のヘテロアリールあり、Rs3は、ハロ、OH、オキソ、C1-C6アルキル、COOH、C(O)O-C1-C6アルキル、シアノ、C1-C6アルコキシル、アミノ、モノ-C1-C6アルキルアミノ、ジ-C1-C6アルキルアミノ、C3-C8シクロアルキル、C6-C10アリール、4~12員のヘテロシクロアルキル、及び5または6員のヘテロアリールからなる群から選択される1つ以上の置換基で任意選択により置換され、
R24、R25、及びR26の各々は、独立して、HまたはC1-C6アルキルであり、
R27及びR28の各々は、独立して、HまたはOR29であり、あるいはR27及びR28は一緒になって、O-R30-Oを形成し、各R29は、独立して、H、C1-C6アルキル、C2-C6アルケニル、またはC2-C6アルキニルであり、R29、は、C1-C6アルキル、C2-C6アルケニル、またはC2-C6アルキニルである場合、ハロ、OH、または1つ以上のOHもしくはOC(O)-C1-C6アルキルで任意選択により置換されたC1-C6アルコキシルのうちの1つ以上で任意選択により置換され、
R30は、ハロ、OH、及びC1-C6アルコキシルのうちの1つ以上で任意選択により置換されたC1-C6アルキレンであり、
R31、R32、及びR33の各々は、独立して、H、C1-C6アルキル、C3-C8シクロアルキル、C6-C10アリール、4~12員のヘテロシクロアルキル、または5または6員のヘテロアリールであり、
R40、R41、R42、及びR43の各々は、独立して、H、ハロ、OH、シアノ、N3、OP(O)R47R48、または1つ以上のOP(O)R47R48で任意選択により置換されたC1-C6アルキルであり、あるいは1つのR41及び1つのR43は、それらが結合している炭素原子及びQ0と一緒になって、C4-C10シクロアルキル、4~14員のヘテロシクロアルキル、C6-C10アリール、または5~14員のヘテロアリールを形成し、シクロアルキル、ヘテロシクロアルキル、フェニル、または5~6員のヘテロアリールの各々は、OH、ハロ、シアノ、N3、オキソ、OP(O)R47R48、C1-C6アルキル、C1-C6ハロアルキル、COOH、C(O)O-C1-C6アルキル、C1-C6アルコキシル、C1-C6ハロアルコキシル、アミノ、モノ-C1-C6アルキルアミノ、及びジ-C1-C6アルキルアミノのうちの1つ以上で任意選択により置換され、
R44は、H、C1-C6アルキル、またはアミン保護基であり、
R45及びR46の各々は、独立して、H、OP(O)R47R48、または1つ以上のOP(O)R47R48で任意選択により置換されたC1-C6アルキルであり、
R47及びR48の各々は、独立して、H、ハロ、C1-C6アルキル、OH、SH、SeH、またはBH3 -である。
本開示のいくつかの態様は、RNA転写物の生成をもたらす条件下で、DNA鋳型をRNAポリメラーゼ(例えば、T7 RNAポリメラーゼバリアントなどのT7 RNAポリメラーゼ)と接触させることを含む、RNA転写物(例えば、mRNA転写物)を生成(合成)する方法を提供する。
本開示に従って生成されたRNA転写物には、mRNA(修飾mRNA及び/または非修飾RNAを含む)、lncRNA、自己複製RNA、環状RNA、CRISPRガイドRNAなどが含まれる。実施形態では、RNAは、ポリペプチド(例えば、治療用ポリペプチド)をコードするRNA(例えばmRNAまたは自己複製RNA)である。したがって、本開示のRNAポリメラーゼバリアントを使用して生成されたRNA転写物は、非常に多くの用途で使用され得る。
本開示のT7 RNAPバリアントは、いくつかの実施形態では、IVT反応においてトリヌクレオチドキャップなどのキャップ類似体と組み合わせて使用されるとき、IVT後の精製がなくても、検出可能なサイトカイン応答を誘導しないRNAを生成する。したがって、いくつかの実施形態では、IVT RNA及び薬学的に許容される賦形剤を含む組成物であって、IVT後の精製なしで、サイトカイン誘導RNA混入物を実質的に含まない(例えば、含まないか、または10%未満、1%未満、0.1%未満、または0.01%未満含む)、該組成物が本明細書で提供される。
本開示のRNAポリメラーゼバリアントを含むインビトロ転写キットなどのキットも本明細書で提供される。キットは、本明細書に記載の任意の1つ以上(少なくとも1つ)のIVT成分及び任意の1つ以上(少なくとも1つ)のRNAポリメラーゼバリアントを含み得る。例えば、キットは、緩衝系、NTP、及び位置E42、S43、Y44、E45、M46、G47、A255、R257、A258、G259、A260、L261及び/またはA262における少なくとも1つ(もしくは少なくとも2つ、または少なくとも3つ)のアミノ酸置換ならびに任意選択によりC末端において少なくとも1つのアミノ酸付加を有する配列番号1、99、または100のアミノ酸配列を有するT7 RNAポリメラーゼバリアントを含み得る。
本開示の追加の実施形態には、以下の番号の段落のものが包含される:
段落1.リボ核酸(RNA)ポリメラーゼバリアントであって、野生型RNAポリメラーゼと比較して、前記RNAポリメラーゼバリアントが開始複合体から伸長複合体に移行するにつれて前記RNAポリメラーゼバリアントの少なくとも1つのループ構造にヘリックス構造へのコンフォメーション変化を受けさせる少なくとも1つのアミノ酸置換を含む、前記リボ核酸(RNA)ポリメラーゼバリアント。
RNA転写物を生成するためのインビトロ転写反応条件下で、ポリヌクレオチド鋳型を(a)T7 RNAポリメラーゼバリアントであって、野生型RNAポリメラーゼと比較して、前記RNAポリメラーゼバリアントが開始複合体から伸長複合体に移行するにつれてRNAポリメラーゼバリアントの少なくとも1つのループ構造にヘリックス構造へのコンフォメーション変化を受けさせる少なくとも1つのアミノ酸置換を含む、前記T7 RNAポリメラーゼバリアント、(b)ヌクレオシド三リン酸、及び(c)配列GpppA2′OmepGを含むトリヌクレオチドキャップと反応させることを含むプロセスによって生成され、前記ポリヌクレオチド鋳型が、鋳型位置+1に2´-デオキシチミジン残基を含む、請求項65~71のいずれか1項に記載の組成物。
hEPO DNA鋳型、ならびに(1)野生型(WT)T7 RNAポリメラーゼ(WT #1及びWT #2)、(2)G47A C末端G T7 RNAポリメラーゼバリアント(「G47A*」)(配列番号110)、及び(3)S43A C末端G T7 RNAポリメラーゼバリアント(「S43A*」)(配列番号108)を使用して、インビトロ転写反応を行った。DBAA(ジブチルアンモニウムアセテート)HPLC分析は、すべてのhEPO転写物の純度がほぼ同じであったことを示した(図1)。
BJ線維芽細胞を、実施例2に記載されるIVT反応により生成されたhEPO mRNAでトランスフェクトした。mRNAを、精製しないか、または逆相(RP)クロマトグラフィーにより精製した。図2(左のグラフ)に示されるように、S43A* T7 RNAポリメラーゼバリアントまたはG47A* T7 RNAポリメラーゼバリアントを使用して生成された精製されていないmRNAは、WT T7ポリメラーゼを使用して生成された精製されたmRNAと同程度に「コールド(cold)」(サイトカイン応答を示さなかった)であった。ほぼ同等のmRNA発現レベルを、図2(右のグラフ)に示す。これらの実験で使用されたmRNAは、いずれのヌクレオチド修飾も含まなかった。
標準dsRNA ELISAを使用して、非修飾hEPO mRNA(図7)またはm1ψヌクレオチド修飾(図8、上のグラフ)もしくはmo5Uヌクレオチド修飾(図8、下のグラフ)のいずれかを含むhEPO mRNAを生成するために使用されるIVT反応におけるdsRNA混入物(例えば、40ヌクレオチド塩基対よりも長い)を評価した。dsRNAアッセイは、S43A* T7 RNAポリメラーゼバリアント及びG47A* T7 RNAポリメラーゼバリアントが、WT T7 RNAポリメラーゼよりも少ないdsRNAを生成したことを示した(図7及び図8)。
転写物の3′不均一性は、RNAse T1消化を使用して測定することができる。RNAse T1は、Gヌクレオチドの後にmRNAを特異的に切断する。エンドヌクレオチド切断は、5′水酸化物(OH)及び3′一リン酸(mP)「瘢痕」をもたらす。したがって、RNAse T1消化は、3′末端で鋳型のない付加を有する及び有さない転写物を区別するために使用され得る。この実施例では、実施例2で生成されたhEPO mRNAは、ポリAテール及びXbaI制限部位(例えば、AnUCUAG)で終了する。WT T7 RNAポリメラーゼを使用して生成されたhEPO mRNA、S43A* T7 RNAポリメラーゼバリアント、またはG47A* T7 RNAポリメラーゼバリアントを、RNAse T1で消化し、LCMSによって分析して、オリゴフィンガープリントを生成した。均質な3′末端(5´OH/3´OH)は、32780Daでピークに達することが見出されたが、一方で、「瘢痕」(5´OH/3´mP)は、32860Daでピークに達した(図9A)。「瘢痕」は、転写物が、カルボキシ末端で鋳型のない付加を有したことを示す。T7 RNAポリメラーゼバリアントを使用して生成されたhEPO mRNA、S43A*、またはG47A*は、より高い3′末端集団分布を有し、それらがより均質な3′末端及び改善された3′末端不均一性を有することを示す(図9B)。
アッセイを使用して、T7 RNAPバリアント、G47A*、及びS43A*によって生成された鋳型のない付加の程度を調べた。このアッセイでは、酵素ポリメラーゼを使用してライゲーションレフトマーを作製した(例えば、図11Aを参照のこと)。次いで、レフトマーを、5´-モノリン酸化ライトマーRNAにすぐ隣接する完全に相補的なDNAスプリントにアニーリングした。DNAスプリントは、典型的には、40nt長であり、ライトマーは、典型的には、5´末端においてフルオロフォアで修飾される。次いで、DNAリガーゼIを、触媒条件下で添加し、反応がEDTAでクエンチされる前に、所望の反応時間の間、ライゲーションを進めた。次いで、混合物を、変性ポリアクリルアミドゲル(PAGE-D)に充填される前に、95℃で5分間4Mの尿素中で変性した(図11B)。ゲル中のアクリルアミドのパーセンテージは、予期される構築物の長さによるが、典型的には、>50ntのレフトマー長については6%アクリルアミド、及び典型的なmRNAの長さにアプローチするレフトマーについては20%アクリルアミドである。6%アクリルアミドゲルを、一定の180Vで25分間実行し、20%アクリルアミドゲルを、一定の180Vで120分間実行した。次いで、ゲルを、ライトマー及び新しくライゲーションされた産物に存在するフルオロフォアに適切な励起波長及び発光波長を使用してTyphoonまたは同様のスキャナーで画像化した。ライトマー及びライゲーションされた産物は、サイズに基づくゲル上で異なって移動し、2つのバンドの強度は、ライゲーション反応の効率に正確に対応するであろう。レフトマーの酵素合成の間の鋳型のないヌクレオチド付加の程度がより大きいほど、予期されるライゲーション収量はより低い。
標準インビトロ転写(IVT)アッセイでは、T7 RNAポリメラーゼは、5′GTPで転写を開始することが好ましい。そのような標準IVTアッセイによって生成された一本鎖RNA(ssRNA)分子は、別々の酵素キャッピングステップを必要とする(図13)。例えば、キャップ1 RNA(7mGpppN2′-Om-RNA)は、ワクシニアキャッピング及び2´-O-メチルトランスフェラーゼ(2´OMTase)を使用してキャッピングアッセイにおいて生成され得る。キャップ1は、典型的には、細胞における効率的なタンパク質翻訳及びmRNA安定性のために使用される。しかしながら、いくつかのmRNA配列は、キャッピングすることが難しく、キャッピング/メチル化酵素は、非常に高価である。
実施例7に記載される共転写キャッピングアッセイを使用して、転写開始が5´-GTP(Gstart)または5´-ATP(Astart)を必要とするモデル構築物へのキャッピング効率を比較した。5′UTR及び47-mer RNAオリゴヌクレオチドをコードするモデル構築物を、IVTの鋳型として使用した。全RNA産物を、質量分析によって評価し、結果は、Astart構築物が、Gstart構築物と比較して GAGまたはGmAGトリヌクレオチドをより効率的に組み込むことを示す(図18A)。データはここでは示されていないが、Cstart及びUstart構築物が少量のキャップされた生成物を生成したこともまた観察された。
1-メチル-シュードウリジンで化学修飾されたmRNAの共転写キャッピングもまた評価した。3つのモデル構築物を使用した:hEPO、Luc(ルシフェラーゼをコードする)、及びeGFP。すべてのIVT鋳型は、Astart鋳型であった。鋳型は、PCR断片またはプラスミドであり得る。キャッピングアッセイ反応混合物は、鋳型、T7 RNAポリメラーゼバリアントG47A*、7.5mMのNTP、及び7.5mMのトリヌクレオチド(GAGまたはGmAG)を含んだ。NTP中のUTPを、1-メチルシュードウリジンで置き換えて、化学修飾されたmRNAを生成した。ワクシニアキャップ1を、標準キャッピングアッセイにおいて生成対照として使用した。mRNA産物を、RNase Hキャップアッセイ、T1フィンガープリンティング、及びフラグメントアナライザーを使用して分析し、それらの完全性を判定した。サイトカイン応答を誘発すること及びBJ線維芽細胞においてコードされたタンパク質を発現することにおけるmRNA産物の能力もまた試験した。
G47A*ポリメラーゼは、翻訳されたタンパク質のC末端で余分なグリシン(「フットグリシン」)を含む。フットグリシンの存在を、トリプシン消化及び精製されたG47A*タンパク質の質量分析によって確認した(データには示されていない)。G47A*のC末端フット領域の役割を、G47A*の活性部位に対するその近接のために、より詳細に試験した。
実施例5のように、フットグリシンを有するWTまたはG47A* T7 RNAPを使用して生成されたhEPO mRNAを、RNAse T1で消化し、LCMSによって分析して、オリゴフィンガープリントを生成した。WT T7 RNAP IVT反応を、NTPの等モル濃度(WT EQ)またはGTP及びATP(WTアルファ(A))のモル過剰のいずれかで行った。LCMS分析は、均質な3′末端(5´OH/3´OH)は、32780Daでピークに達し、「瘢痕」(5´OH/3´mP)は、32860Daでピークに達することを明らかにした(図24A)。「瘢痕」は、転写物が、3´末端で鋳型のない付加を有したことを示す。WT T7 RNAP及びNTPの等モル濃度(WT EQ)を使用して生成されたhEPO mRNAは、3´末端集団分布を減少し、減少された3´均一性及び鋳型のない付加を有するより多くのランオン生成物を示す(図24B)。しかしながら、フットグリシンを有するG47A* T7 RNAPを使用して生成されたhEPO mRNAは、より高い3′末端集団分布を有し、それらはより均質な3′末端を有し、3′末端の不均一性を改善したことを示す(図24B)。
hEPO mRNA生成物への免疫応答を刺激することにおけるT7 RNAPフットグリシンの役割は、実施例7のように、BJ線維芽細胞におけるサイトカイン(IFNβ)生成を誘発するそれらの能力を評価することによって評価した。興味深いことに、WT T7 RNAP生成された非修飾及びシュードウリジン修飾hEPO mRNAが、高いサイトカイン応答を誘発したが、一方で、フットグリシン生成された非修飾及びシュードウリジン修飾hEPO mRNAを有するWT T7 RNAPは、BJ線維芽細胞においてより少ないサイトカイン生成を刺激した(図25)。フットグリシンを有するG47A*バリアント T7 RNAPによって生成されたhEPO mRNAは、BJ線維芽細胞においてサイトカイン生成を刺激することをしそびれて、免疫応答を誘発しそびれることにおいてフットグリシン及びG47A T7 RNAポリメラーゼバリアントの間の相加的効果を示す(図25)。
アッセイを開発して、WT及びG47AバリアントT7 RNAPによって生成されたhEPO mRNA種へのフットグリシン残基の効果を調べた。試験されたT7 RNAPは、以下の通りであった。(1)WT+G(フットグリシン)、(2)G47Aバリアント、または(3)G47Aバリアント+G(G47A*バリアント)。IVT反応は、列挙されるT7 RNAPのうちの1つ、shORFan鋳型、NTP(非修飾または修飾されたUTPのいずれか)、及び32P-CTPを含んだ。反応を、所望の長さの時間の後にEDTAで終了した。次いで、反応混合物を、変性ポリアクリルアミドゲル(20%アクリルアミド)に充填される前に、95℃で5分間4Mの尿素中で変性した(図26A)。ゲルを20ワットで30分間、次いで40ワットで2時間実行した。画像を、Typhoonスキャナーを使用する画像化の前にホスフォイメージャースクリーンに移動した(1時間の露光時間)。32P-CTPの使用は、完全長生成物(shORFan mRNAを示す)、ランオン転写生成物(上の箱)(図26A)、及び逆相補mRNA産物(図26A、下の箱)を標識する。結果はまた、以下の表10に要約される。これらのデータは、フットグリシンを有するT7 RNAPが、WTまたはG47A T7 RNAPのいずれかより少ない混入dsRNAに関連することを示す(図26A(下の箱)及び図26B)。さらに、フットグリシンは、WTまたはG47AバリアントT7 RNAPと比較して、減少されたランオン転写(図26A(上の箱)、図26B)と関連する。
インビトロ転写mRNAは、典型的には、例えば、逆相クロマトグラフィー(RP)によって精製され、サイトカイン誘発不純物(dsRNA)及びプロセス不純物(例えば、タンパク質/DNA)を除去し、全RNA純度を改善する。しかしながら、この精製プロセスはしばしば、mRNA産物の著しい喪失をもたらす。RPを排除することは、ターンアラウンドタイムを低減し、大規模に動作及び操作複雑性を排除し、費用を節約する。さらに、RP中に使用される高温度が、mRNAの画分を加水分解することができるため、RPを排除することは、mRNA発現レベルを増加させる。したがって、RPの必要性を排除するためにmRNA産物及び精製戦略を開発した。この実施例に提供される方法によって生成されたmRNAは、「トリヌクレオチドキャップされたG47A* mRNA」 と称され、それは、G47A* T7 RNAPバリアント(G47A置換及び追加のC末端Gを有する)を使用するインビトロ転写アッセイにおいてトリヌクレオチドGpppA2′OmepGで共転写でキャップされているmRNAである。
この実施例では、ヒトエリスロポエチン(hEPO)をコードするmRNAの単回の0.5mpk用量を、MC3脂質ナノ粒子中に配合し、6週間(1日目、8日目、15日目、22日目、29日目、及び36日目に)C57Bl/6マウス(n=5)に毎週投与した。以下のmRNAを投与した。(1)NTPの等モル濃度の存在下で野生型T7ポリメラーゼを使用して生成され、オリゴdT精製によって精製された非修飾mRNA(化学Aプロセス1 dT)、(2)GTP/ATPの過剰濃度の存在下で野生型T7ポリメラーゼを使用して生成され、逆相クロマトグラフィーによって精製されたシュードウリジン修飾mRNA(化学Bプロセス2 RP)、(3)GTP/ATPの過剰濃度の存在下で野生型T7ポリメラーゼを使用して生成され、オリゴdT精製によって精製されたシュードウリジン修飾mRNA(化学Bプロセス2 dT)、(4)NTPの等モル濃度の存在下で野生型T7ポリメラーゼを使用して生成され、オリゴdT精製によって精製されたシュードウリジン修飾mRNA(化学Bプロセス1 dT)、(5)逆相クロマトグラフィーによって精製されたシュードウリジン修飾トリヌクレオチドキャップされたG47A* mRNA(G47A* T7 RNAPバリアントを使用してキャップ及び生成されたトリヌクレオチド)(化学Bプロセス3 RP)、(6)オリゴdT精製によって精製されたシュードウリジン修飾トリヌクレオチドキャップG47A* mRNA(化学Bプロセス3 dT)、ならびに(7)G47A* T7 RNAPバリアントを使用して生成され、オリゴdT精製によって精製されたキャップされていないシュードウリジン修飾mRNA(化学Bプロセス4 dT))。各用量後6時間、以下を評価した:血清サイトカインレベル、mRNA発現、及び抗-PEG IgMレベル。B細胞活性化を、36日目の用量後6時間評価した。化学Aは、非修飾ウリジン三リン酸ヌクレオチドの使用を示し、化学Bは、1-メチル-シュードウリジン三リン酸ヌクレオチドの使用を示す。プロセス1は、IVT及びワクシニアキャップ1における等モルNTPを指し、プロセス2は、4:2:1:1のGTP:ATP:CTP:UTP及びワクシニアキャップ1を含むIVTを指し、プロセス3は、IVTにおける等モルNTP及びGAGを指し、プロセス4は、IVT及びキャップなしにおける等モルNTPを指す。
mRNAを、プロセス1(等モルNTP)またはプロセス2(4:2:1:1のGTP:ATP:CTP:UTP)を使用してWTまたはG47A*酵素のいずれかで調製した。次世代シーケンシング(NGS)について、mRNAを、逆転写酵素によってcDNAに変換し、アダプターをライゲーションしてシーケンシングライブラリを準備した。NGSデータを、親配列と比較し、観察された任意のインデルを表にした。インデル頻度は、WT及びG47A*に匹敵した(図37A)。同様に、NGSデータを、任意の点変異について分析した。点変異頻度は、WT及びG47A*に匹敵した(図37B)。
Claims (19)
- T7リボ核酸(RNA)ポリメラーゼバリアントであって、配列番号1と少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくとも99%の同一性を有するアミノ酸配列を含み、野生型T7 RNAポリメラーゼと比較して、前記T7 RNAポリメラーゼバリアントが開始複合体から伸長複合体に移行するにつれて前記T7 RNAポリメラーゼバリアントのループ構造にヘリックス構造へのコンフォメーション変化を受けさせるアミノ酸置換を含み、前記アミノ酸置換がG47位のアラニン(G47A)である、前記リボ核酸(RNA)ポリメラーゼバリアント。
- 前記ループ構造が、Cヘリックス構造中にある、請求項1に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- 前記ループ構造が、Cリンカー構造中にある、請求項1に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- 前記T7 RNAポリメラーゼが、E42、S43、Y44、E45、M46、A255、R257、A258、G259、A260、L261、及びA262から選択される位置に高ヘリックス性向アミノ酸のアミノ酸置換をさらに含むように修飾された配列番号1と少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項1から3のいずれか一項に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- E42、S43、Y44、E45、M46、A255、R257、A258、G259、A260、L261、及びA262から選択される少なくとも1つの位置にアミノ酸置換をさらに含むように修飾された配列番号1と少なくとも90%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項4に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- 前記アミノ酸置換が、アラニン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、リジン、グルタミン、及びグルタミン酸から選択される、請求項4又は5に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- 前記アミノ酸置換が、アラニン(S43A)である、請求項6に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- 追加のC末端アミノ酸をさらに含む、請求項1~7のいずれか1項に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- 前記追加のC末端アミノ酸が、グリシン(G)を含む、請求項8に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- 前記RNAポリメラーゼバリアントが、配列番号110のアミノ酸配列を含む、請求項3に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- FAFAXn(配列番号171)モチーフを含むC末端を含み、Xが任意のアミノ酸であり、nがゼロより大きい任意の整数である、請求項8に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- XAFAXnモチーフ、FXFAXnモチーフ、FAXAXnモチーフ、またはFAFXXnモチーフを含むC末端を含み、各Xが任意のアミノ酸であり、nはゼロより大きい任意の整数である、請求項11に記載のRNAポリメラーゼバリアント。
- RNA転写物の生成をもたらす条件下で、DNA鋳型を請求項1~12のいずれか1項に記載のRNAポリメラーゼバリアントと接触させることを含む、リボ核酸(RNA)を生成する方法。
- RNA転写物の生成をもたらす条件下で、ヌクレオシド三リン酸及び緩衝液の存在下において、DNA鋳型を請求項1~12のいずれか1項に記載のRNAポリメラーゼバリアントと接触させることを含む、インビトロ転写(IVT)反応を行う方法。
- 請求項1~12のいずれか1項に記載のRNAポリメラーゼバリアントをコードする核酸。
- 請求項1~12のいずれか1項に記載のRNAポリメラーゼバリアント及び任意選択によりインビトロ転写(IVT)試薬を含む、組成物またはキット。
- RNA転写物を生成するためのインビトロ転写反応条件下で、ポリヌクレオチド鋳型を請求項1~12のいずれか一項に記載のT7 RNAポリメラーゼバリアント、ヌクレオシド三リン酸、及びキャップ類似体と反応させることを含む、リボ核酸(RNA)合成のための共転写キャッピング方法。
- 前記キャップ類似体が、ジヌクレオチドキャップ、トリヌクレオチドキャップ、またはテトラヌクレオチドキャップである、請求項17に記載の方法。
- 前記トリヌクレオチドキャップが、GpppA2′OmepGである、請求項18に記載の方法。
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