JP7403661B2 - Khk阻害効果を有する化合物 - Google Patents
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Description
2019年12月24日出願のCN201911347364.6;
2020年01月15日出願のCN202010042685.1;
2020年03月30日出願のCN202010237894.1;
2020年04月30日出願のCN202010365981.5;
2020年05月27日出願のCN202010463222.2;
2020年08月13日出願のCN202010813320.4;
2020年09月29日出願のCN202011051594.0;および
2020年12月16日出願のCN202011490305.7
に基づく優先権を主張する。
本発明は、KHK阻害効果を有する一群の化合物またはその薬学的に許容される塩およびKHKキナーゼの異常発現と関連する疾患のための医薬の製造におけるその使用に関する。特に、本発明は、式(III)により表される化合物またはその薬学的に許容される塩に関する。
非アルコール性脂肪性肝疾患(NAFLD)は、先進国および先進地域で約15%~40%の高有病率であり、NAFLD患者の10~20%が非アルコール性脂肪肝炎(NASH)を発症する。NASHの世界の推定発生率は5~7%であり、糖尿病集団における発生率は22%に上昇する。注目すべき点は、NASH患者の約15~25%が硬変を発症することである。NASHは、現在米国で肝移植の2番目に多い原因であり、2020年に米国で肝移植の1番の原因になると予測されている。NASHの処置に対して現在承認されている薬物はない。
本発明は、次の式
T1はNから選択され、かつT2はCRaから選択されるかまたはT2はNから選択され、かつT1はCRaから選択され;
R1およびRaは、それらが直接結合している炭素原子と一体となって、
好ましくは、R1およびRaは、それらが直接結合している炭素原子と一体となって、
各E1およびE2はN、NH、O、CH、CH2およびSからなる群から独立して選択され;
E3およびE4はCHおよびNからなる群から独立して選択され;
T3およびT4はCHおよびNからなる群から独立して選択され;
各RはH、ハロ、CN、NH2、OH、C1-3アルキルおよびC1-3アルコキシからなる群から独立して選択され、該C1-3アルキルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
各Rbはハロ、シアノおよびC1-3アルキルからなる群から独立して選択され、該C1-3アルキルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
nは0、1および2から選択され;
L1は単結合およびNHからなる群から選択され;
L2は単結合、-(CH2)m-、
mは0、1および2から選択され;
qは1および2から選択され;
環Aは4~8員ヘテロシクロアルキル、C3-6シクロアルキル、フェニルおよび5~6員ヘテロアリールからなる群から選択され;
R1およびRaがそれらが直接結合する炭素原子と一体となって環
該「4~8員ヘテロシクロアルキルおよび5~6員ヘテロアリール」はO、SおよびNからなる群から独立して選択される1個、2個または3個のヘテロ原子を含む。〕
により表される化合物から選択される化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する。
からなる群から選択され、これら
T1はNから選択され、かつT2はCRaから選択されるかまたはT2はNから選択され、かつT1はCRaから選択され;
R1およびRaはそれらが直接結合している炭素原子と一体となって
E1およびE2は各々独立してNH、O、CHおよびSからなる群から選択され;
L1は単結合およびNHからなる群から選択され;
L2は-(CH2)m-から選択され;
mは0、1および2から選択され;
環Aは
各Rbはハロおよびメチルからなる群から独立して選択される。〕
により表される化合物から選択される化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する。
T1はNから選択され、かつT2はCRaから選択されるかまたはT2はNから選択され、かつT1はCRaから選択され;
R1およびRaはそれらが直接結合している炭素原子と一体となって
E1およびE2は各々独立してN、NH、O、CHおよびSからなる群から選択され;
L1は単結合およびNHからなる群から選択され;
L2は-(CH2)m-から選択され;
mは0、1および2から選択され;
環Aは
各Rbはハロおよびメチルからなる群から独立して選択される。〕
により表される化合物から選択される化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する。
T1はNから選択され、かつT2はCRaから選択されるかまたはT2はNから選択され、かつT1はCRaから選択され;
R1およびRaはそれらが直接結合している炭素原子と一体となって
E1およびE2は各々独立してN、NH、O、CRおよびSからなる群から選択され;
RはHおよびメチルからなる群から選択され;
各Rbはハロ、シアノおよびC1-3アルキルからなる群から独立して選択され、該C1-3アルキルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
L1は単結合およびNHからなる群から選択され;
L2は単結合、-(CH2)m-および-CH=CH-からなる群から選択され;
mは0、1および2から選択され;
nは0、1および2から選択され;そして
環Aは
により表される化合物から選択される化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する。
T1はNから選択され、かつT2はCRaから選択されるかまたはT2はNから選択され、かつT1はCRaから選択され;
R1およびRaはそれらが直接結合している炭素原子と一体となって
各E1およびE2は独立してN、NH、O、CHおよびSからなる群から選択され;
各Rは独立してH、ハロ、CNおよびメチルからなる群から選択され、該メチルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
各Rbはハロ、シアノおよびC1-3アルキルからなる群から独立して選択され、該C1-3アルキルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
nは0、1および2から選択され;
L1は単結合およびNHからなる群から選択され;
L2は単結合、-(CH2)m-および-CH=CH-からなる群から選択され;
mは0、1および2から選択され;
環Aは4~7員ヘテロシクロアルキル、C3-6シクロアルキルおよびフェニルから選択され;
該「4~7員ヘテロシクロアルキル」はO、SおよびNからなる群から独立して選択される1個、2個または3個のヘテロ原子を含む。〕
により表される化合物から選択される化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する。
T1はNから選択され、かつT2はCRaから選択されるかまたはT2はNから選択され、かつT1はCRaから選択され;
R1およびRaはそれらが直接結合している炭素原子と一体となって
各E1およびE2は独立してN、NH、O、CHおよびSからなる群から選択され;
各Rは独立してH、ハロ、CNおよびメチルからなる群から選択され、該メチルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
各Rbはハロ、シアノおよびC1-3アルキルからなる群から独立して選択され、該C1-3アルキルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
nは0、1および2から選択され;
L1は単結合およびNHからなる群から選択され;
L2は単結合、-(CH2)m-、-CH=CH-および-O(CH2)q-からなる群から選択され;
mは0、1および2から選択され;
qは1および2から選択され;
環Aは4~7員ヘテロシクロアルキル、C3-6シクロアルキル、フェニルおよび5~6員ヘテロアリールから選択され;
該「4~7員ヘテロシクロアルキルおよび5~6員ヘテロアリール」はO、SおよびNからなる群から独立して選択される1個、2個または3個のヘテロ原子を含む。〕
から選択される化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する。
T1はNから選択され、かつT2はCRaから選択されるかまたはT2はNから選択され、かつT1はCRaから選択され;
R1およびRaはそれらが直接結合している炭素原子と一体となって
各E1およびE2は独立してN、NH、O、CHおよびSからなる群から選択され;
各RはH、ハロゲン、CNおよびメチルからなる群から独立して選択され、該メチルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
各Rbはハロ、シアノおよびC1-3アルキルからなる群から独立して選択され、該C1-3アルキルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
nは0、1および2から選択され;
L1は単結合およびNHからなる群から選択され;
L2は単結合、-(CH2)m-、-CH=CH-および-O(CH2)q-からなる群から選択され;
mは0、1および2から選択され;
qは1および2から選択され;
環Aは4~7員ヘテロシクロアルキル、C3-6シクロアルキル、フェニルおよび5~6員ヘテロアリールからなる群から選択され;
該「4~7員ヘテロシクロアルキルおよび5~6員ヘテロアリール」はO、SおよびNからなる群から独立して選択される1個、2個または3個のヘテロ原子を含む。〕
により表される化合物から選択される化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する。
T1はNから選択され、かつT2はCRaから選択されるかまたはT2はNから選択され、かつT1はCRaから選択され;
R1およびRaはそれらが直接結合している炭素原子と一体となって
各E1およびE2は独立してN、NH、O、CHおよびSからなる群から選択され;
各Rは独立してH、ハロ、CNおよびメチルからなる群から選択され、該メチルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
各Rbはハロ、シアノおよびC1-3アルキルからなる群から独立して選択され、該C1-3アルキルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
nは0、1および2から選択され;
L1は単結合およびNHからなる群から選択され;
L2は単結合、-(CH2)m-、-CH=CH-および-O(CH2)q-からなる群から選択され;
mは0、1および2から選択され;
qは1および2から選択され;
環Aは4~7員ヘテロシクロアルキル、C3-6シクロアルキル、フェニルおよび5~6員ヘテロアリールからなる群から選択され;
R1およびRaがそれらが直接結合する炭素原子と一体となって環
該「4~7員ヘテロシクロアルキルおよび5~6員ヘテロアリール」はO、SおよびNからなる群から独立して選択される1個、2個または3個のヘテロ原子を含む。〕
により表される化合物から選択される化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する。
からなる群から選択される。
新規KHK阻害剤として、本発明の化合物は、ヒト起源KHK酵素に対する強力な阻害性活性、肝ミクロソームにおける優れた代謝安定性、ラットおよびマウスにおける肝組織への高選択性およびインビボフルクトース代謝に対する強力な阻害効果を有する。
特に断らない限り、ここで使用する次の語句は、次の意味を有する。特定の語句は、特定の定義がなくても不明確または不明瞭と見なしてはならず、その通常の意味を有すると解釈されるべきである。ここで商品名が使用されるとき、その対応する商品またはその活性成分をいうことを意図する。
本発明を、本発明に対するあらゆる不利な限定を課すことを意味しない、実施例により、さらに詳細に記載する。本発明は、ここで詳細にかつその特定の実施態様を参照して記載されているが、本発明の精神および範囲から逸脱することなく、本発明の特定の実施態様に種々の変化および修飾を付し得ることは、当業者には明らかである。
化合物A-1_1(600.0mg、5.30mmol)を、カリウムtert-ブトキシド(655.19mg、5.84mmol)のテトラヒドロフラン(15.0mL)溶液に-40℃で加え、次いでA-1_1a(730.47mg、5.57mmol)をゆっくり滴下し、反応物を0℃で1.5時間撹拌した。反応完了後、3mLの酢酸を0℃でゆっくり加え、20分間撹拌した。80mLの水を加え、混合した液体をEtOAc(50mL)で2回抽出した。有機相を乾燥させ、次いで乾固するまで回転蒸発させて溶媒を除去し、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、化合物A-1_2を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 10.07 (br s, 1H), 8.31 (s, 1H), 4.46 (q, J = 7.2 Hz, 2H), 4.33 (q, J = 7.2 Hz, 2H), 1.46 (t, J = 7.2 Hz, 3H), 1.36 (t, J = 7.2 Hz, 3H)
化合物A-1_2(826.0mg、3.38mmol)をEtOH(0.8mL)に加え、40℃で20分間撹拌し、その時点で固体は完全に溶解した。H2O(2.0mL)を加え、10分間撹拌した。次いで、30%水性アンモニア(5.92g、50.63mmol)を加え、80℃に加熱し、2時間撹拌し、濾過した。フィルターケーキをエタノール(1×5mL)で洗浄し、真空乾燥して化合物A-1_3を得て、それを次工程で直接使用した。1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ = 11.00 - 10.33 (m, 1H), 8.58 (s, 1H), 7.99 - 7.66 (m, 2H), 4.23 (q, J = 7.2 Hz, 2H), 1.26 (t, J = 7.2 Hz, 3H)
化合物A-1_3(400.0mg、1.86mmol)をN-メチルピロリジノン(5.0mL)に溶解し、カリウムtert-ブトキシド(625.63mg、5.58mmol)を加え、混合物を110℃で1時間撹拌した。反応系は、紅梅色懸濁液であった。反応完了後、4mLの酢酸および20mLの水を加え、室温で1時間撹拌し、濾過した。フィルターケーキを乾燥させて、化合物A-1_4を得た。1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ = 12.64 - 11.52 (m, 1H), 11.27 (br s, 1H), 8.70 (s, 1H)
化合物A-1_4(229.0mg、1.35mmol)をオキシ塩化リン(4.3mL)に加え、DIPEA(2g、15.47mmol)を加え、反応物を110℃で30時間撹拌した。反応完了後、反応液を室温に冷却し、回転蒸発させて溶媒を除去し、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、化合物A-1を得た。
合成スキーム:
化合物A-8_1(2.05g、10.00mmol)のMeOH(50mL)溶液にナトリウムメトキシド(3.24g、59.98mmol)を加え、混合物を0℃で12時間撹拌した。TLC(PE:EtOAc=3:1)は反応の完了を示し、LCMSは反応物が比較的澄明であることを示し、標的生成物MSが検出された。反応液を直接回転蒸発させて、乾固した。残留物に100mLのジクロロメタンを加え、室温で半時間スラリー化し、濾過した。フィルターケーキをジクロロメタン(20mL×2)で洗浄した。濾液を回転蒸発させて乾固して、A-8_2を得た。
化合物A-8_2(1.0g、5.10mmol)のTHF(10mL)溶液にn-ブチルリチウム(2.5M、3.06mL)を、-70℃でN2保護下に滴下し、混合物を1時間撹拌し、次いでN-フルオロベンゼンスルホンイミド(NFSI)(3.21g、10.19mmol)のTHF(30mL)溶液を滴下し、混合物をさらに15分間撹拌し、次いで25℃に温め、30分間撹拌した。TLC(PE:EtOAc=3:1)は反応の完了を示し、標的生成物MSがLCMSにより検出された。反応液を水(50mL)で注意深く反応停止させた。酢酸エチル(30mL×3)で抽出後、有機層を合わせ、回転蒸発させて乾固して、粗製生成物を得た。粗製生成物をフラッシュカラム(ISCO(登録商標);24g SepaFlash(登録商標)シリカカラム、溶離剤:0~18%EtOAc/PE、流速:30mL/分)で精製して、化合物A-8_3を得た。
化合物A-8_3(600mg、2.60mmol)のTHF(3mL)溶液に濃塩酸(12M、10mL)を加え、混合物を90℃で12時間撹拌した。LCMSは反応の完了を示し、標的生成物MSが検出された。反応液を濾過して、沈殿固体を集めた。フィルターケーキを小量の酢酸エチル(0.5mL×2)で洗浄し、できるだけ排水した。次いで、固体を50mLの酢酸エチルに懸濁し、回転蒸発させて乾固して、化合物A-8_4を得た。1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ = 11.86 (s, 1H), 11.27 (s, 1H), 11.32 - 11.23 (m, 1H), 7.20 (s, 1H)
化合物A-8_4(400mg、1.97mmol)のPOCl3(16.50g、107.61mmol)懸濁液にDIPEA(765.44mg、5.92mmol)を滴下し、混合物は、帯赤褐色透明液体となった。混合物を110℃で12時間撹拌した。TLC(PE:EtOAc=3:1)は反応の完了を示した。反応液を室温に冷却し、次いで減圧下濃縮して、過剰のPOCl3を除去した。残留物を酢酸エチル(50mL)に溶解し、50mLの水で洗浄した。水相を酢酸エチル(20mL×2)で抽出した。有機相を合わせ、飽和塩水(10mL)で洗浄し、回転蒸発させて乾固して、粗製生成物A-8を得て、それを次工程で直接使用した。
合成スキーム:
化合物A-8_2(1g、5.10mmol)のTHF(15mL)溶液にNCS(1.02g、7.64mmol)を加え、混合物を撹拌下、80℃で16時間反応させた。TLC(PE:EtOAc=3:1)は、ほぼ半分が残る出発物質の不完全な消費を示し、LCMSも、出発物質の半分の残存を示した。さらにNCS(0.5g、0.75当量)を加え、混合物をさらに撹拌下、80℃で6時間反応させた。TLC(PE:EtOAc=3:1)は、反応がほぼ完了したことを示した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固した。粗製生成物をフラッシュカラム(ISCO(登録商標);24g SepaFlash(登録商標)シリカカラム、溶離剤:0~18%EtOAc/PE、流速:20mL/分)で精製して、化合物A-9_2を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 7.11 (s, 1H), 4.11 (s, 3H), 4.06 (s, 3H)
合成スキーム:
化合物A-8_2(1g、5.10mmol)のTHF(15mL)溶液にNBS(1.36g、7.64mmol)を加え、混合物を撹拌下、80℃で12時間反応させた。反応液を回転蒸発させて乾固した。粗製生成物をフラッシュカラム(ISCO(登録商標);40g SepaFlash(登録商標)シリカカラム、溶離剤:0~18%EtOAc/PE、流速:30mL/分)で精製して、化合物A-10_2を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 7.19 (d, J = 0.8 Hz, 1H), 4.02 (s, 3H), 3.96 (s, 3H)
THF(2.5mL)のTHF(2.5mL)溶液に、-70℃でN2保護下にn-ブチルリチウム(2.5M、450μL)を滴下した。-70℃で1時間撹拌後、N-フルオロベンゼンスルホンイミド(NFSI)(460mg、1.46mmol)のTHF(5mL)溶液を滴下し、混合物をさらに撹拌下-70℃で15分間反応させ、次いで25℃に温め、30分間撹拌した。TLC(PE:EtOAc=3:1)は反応の完了を示した。反応液を水(50mL)で注意深く反応停止させ、酢酸エチル(30mL×3)で抽出した。有機相を合わせ、回転蒸発させて乾固して、粗製生成物を得た。粗製生成物をフラッシュカラム(ISCO(登録商標);12g SepaFlash(登録商標)シリカカラム、溶離剤:0~18%EtOAc/PE、流速:20mL/分)で精製して、化合物A-10_3を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 6.53 (br s, 1H), 4.01 (br s, 3H), 3.95 (br s, 3H)
合成スキーム:
A-11_1(50g、264.49mmol)、NaOMe(100g、1.85mol)をMeOH(500mL)に溶解し、反応物を80℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LC-MSは出発物質シグナルの消失と生成物シグナルの出現を示し、TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固し、水(500mL)を加え、EtOAc(400mL)で抽出した。有機相を回転蒸発させて乾固して、A-11_2を得た。
3000mL三つ口フラスコに、A-11_2(90g、499.44mmol)およびCHCl3(1000mL)、続いてm-クロロ過安息香酸(287.23g、1.41mmol、85%純度)を加え、反応物を30℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LCMSは出発物質シグナルが消失せず、生成物シグナルが産生されたことを示し、TLC(ジクロロメタン:メタノール=10:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を濾過し、フィルターケーキをジクロロメタン(500mL)で洗浄した。濾液を飽和ナトリウム亜硫酸溶液(500gのナトリウム亜硫酸を2.5L溶液に調製した)にゆっくり加え、酸化剤を消費させるため、1時間撹拌した。層を分離し、水相を1000mLのジクロロメタンで洗浄した。有機相を合わせ、回転蒸発させて乾固し、1000mLのメチルtert-ブチルエーテルを加え、飽和炭酸ナトリウム溶液(500mL×3)で洗浄した。水相を合わせ、500mLのメチルtert-ブチルエーテルで洗浄した。(炭酸ナトリウム溶液)水相を合わせ、クロロホルム(2L×4)で抽出した。クロロホルム有機相を合わせ、回転蒸発させて乾固して、A-11_3を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 4.24 - 4.11 (m, 3H), 4.06 - 3.95 (m, 3H), 3.20 (t, J = 7.8 Hz, 2H), 2.86 (t, J = 7.7 Hz, 2H), 2.28 - 2.15 (m, 2H)
1000mL一口フラスコに、A-11_3(59g、300.71mmol)を加え、酢酸無水物(250mL)を加え、反応物を80℃で5時間、窒素保護下に撹拌した。LCMSは出発物質シグナルの消失と生成物シグナルの出現を示し、TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を水(500mL)にゆっくり加え、酢酸エチル(300mL×2)で抽出した。有機相を直接回転蒸発させて、乾固して、粗製生成物を得た。粗製生成物をフラッシュシリカカラム(ISCOケーキ、330g SepaFlashシリカカラム、溶離剤:0~10%EtOAc/PE、流速:100mL/分)で精製して、A-11_4を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 6.12 - 5.90 (m, 1H), 4.02 (d, J = 7.0 Hz, 6H), 2.95 - 2.82 (m, 1H), 2.78 - 2.57 (m, 2H), 2.14 (s, 3H), 2.08 - 1.96 (m, 1H)
1000mL一口フラスコに、A-11_4(40g、167.9mmol)およびTHF(400mL)/H2O(100mL)、続いてLiOH.H2O(14g、335.8mmol)を加え、反応物を20℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LCMSは、出発物質シグナルの消失および生成物シグナルの出現を示した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固した。粗製生成物をフラッシュシリカカラム(ISCO 330g SepaFlashシリカカラム、溶離剤:0~20%EtOAc/PE、流速35mL/分)で精製して、A-11_5を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 5.10 (t, J = 7.0 Hz, 1H), 4.10 - 3.96 (m, 6H), 2.88 (ddd, J = 2.8, 8.9, 15.4 Hz, 1H), 2.70 - 2.48 (m, 2H), 2.12 - 1.94 (m, 1H)
5L三つ口フラスコに、A-11_5(150g、764.52mmol)およびDCM(1500mL)、続いてDess-Martinペルヨージナン(660g、1.56mol)を加え、反応物を20℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LCMSは出発物質シグナルの消失と生成物シグナルの出現を示し、TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を直接濾過し、フィルターケーキを酢酸エチル(200mL)で洗浄した。濾液を直接回転蒸発させて、乾固した。フラッシュシリカカラム(ISCOケーキ、330g SepaFlashフラッシュシリカカラム、溶離剤:0~10%EtOAc/PE、流速:100mL/分)で精製して、A-11_6を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 4.02 (d, J = 8.3 Hz, 6H), 2.92 - 2.82 (m, 2H), 2.71 - 2.62 (m, 2H)
1000mL一口フラスコに、A-11_6(50g、257.48mmol)およびDCM(500mL)、続いてDAST(122g、756.88mmol、100mL)を加え、反応物を30℃で20時間、窒素保護下に撹拌した。反応液を氷水(2000mL)にゆっくり加えて反応停止させ、フィルターケーキをジクロロメタン(2000mL)で洗浄した。濾液を直接回転蒸発させて、乾固した。フラッシュシリカカラム(ISCOケーキ、330g SepaFlashシリカカラム、溶離剤:0~10%EtOAc/PE、流速:100mL/分)で精製して、A-11_7を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 3.98 (d, J = 5.1 Hz, 6H), 2.83 - 2.70 (m, 2H), 2.62 - 2.41 (m, 2H)
1000mL一口フラスコに、A-11_7(50g、231.28mmol)およびTHF(100mL)、続いて濃塩酸(500mL)を加え、反応物を80℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。反応液を室温にゆっくり冷却し、濁った液体を濾過し、フィルターケーキを酢酸エチル(50mL)で洗浄して、A-11_8を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 11.85 (br s, 1H), 11.36 - 11.12 (m, 1H), 2.61 - 2.52 (m, 4H)
1000mL一口フラスコに、A-11_8(34g、180.72mmol)を加え、POCl3(206mL)を加え、反応物を120℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。反応液を回転蒸発させて乾固し、ジクロロメタン(500mL)で希釈し、次いで水(1500mL)にゆっくり加えて反応停止させ、次いでジクロロメタン(1000mL×3)で抽出した。有機相を合わせ、回転蒸発させて乾固して、A-11を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 3.16 - 3.01 (m, 2H), 2.85 - 2.65 (m, 2H)
合成スキーム:
化合物B-5_1(2g、8.72mmol)およびHCl/MeOH(4M、2.18mL)をMeOH(20mL)に加え、反応物を70℃で1時間撹拌した。LCMSは反応の完了を示した。反応液を回転蒸発させて乾固して、粗製化合物B-5の塩酸塩を得て、それをさらに精製することなく直接次工程で使用した。
合成スキーム:
50mL丸底フラスコで、化合物B-6_1(1.2g、4.36mmol)をHCl/MeOH(20mL)に溶解し、反応フラスコを70℃で1時間撹拌した。TLC(PE:EtOAc=1:1)は反応の完了を示した。反応液を減圧して、化合物B-6_2を得た。
100mL丸底フラスコで、化合物B-6_2(600mg、2.07mmol)をMeOH(10mL)に溶解し、フラスコ内の空気を窒素で置換し、次いでPd/C(220.69mg、207.38μmol)を加え、フラスコの空気を3回水素バルーンで置き換え、水素バルーン(15psi)雰囲気下、混合物を10℃で10分間撹拌した。TLC(PE:EtOAc=1:1)は反応の完了を示し、出発物質スポットは消失した。反応液をセライトで濾過し、フィルターケーキをMeOH(50mL)で洗浄し、集めた濾液を減圧下濃縮した。濃縮後、化合物B-6を得た。1H NMR (400 MHz, CD3OD) δ = 3.72 (d, J = 1.6 Hz, 3H), 3.51 - 3.39 (m, 3H), 3.27 (br d, J = 19.2 Hz, 1H), 2.21 - 1.97 (m, 3H), 1.41 - 1.27 (m, 2H)
合成スキーム:
100mL丸底フラスコで、化合物G-2_1(500mg、2.87mmol)および炭酸カリウム(1.19g、8.61mmol)をTHF(5mL)に溶解し、次いでエチルブロモアセテート(958mg、5.74mmol、634.44μL)を加え、反応物を60℃で12時間撹拌した。TLC(PE:EtOAc=1:1)は反応の完了を示し、出発物質スポットは消失した。反応完了後、溶媒を回転蒸発により除去して乾固して、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、G-2を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 8.35 (s, 1H), 8.27 (d, J = 2.5 Hz, 1H), 7.39 (t, J = 2.1 Hz, 1H), 4.67 (s, 2H), 4.30 (q, J = 7.3 Hz, 2H), 1.34 - 1.30 (m, 3H)
合成スキーム:
A-3(5g、24.38mmol)およびNaOH(4.88g、121.91mmol)をTHF(25mL)/H2O(25mL)に溶解し、反応物を20℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LC-MSは出発物質シグナルの消失と生成物シグナルの出現を示し、TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を希塩酸(2M)でpH2.3に調節し、水(20mL)を加え、EtOAc(60mL)で抽出した。有機相を回転蒸発させて乾固して、H-1_1を得た。
250mL三つ口フラスコに、H-1_1(4.5g、24.11mmol)およびアセトニトリル(100mL)、続いてC-1(9.51g、31.35mmol)および炭酸カリウム(10.00g、72.34mmol)を加え、反応物を80℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LCMSは出発物質シグナルが消失せず、生成物シグナルの出現を示し、TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を直接濾過した。フィルターケーキを酢酸エチル(30mL)で洗浄し、濾液を直接回転蒸発させて、乾固して、H-1_2を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 11.01 (br s, 1H), 7.24 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 6.80 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 4.81 - 4.58 (m, 1H), 4.32 (dt, J = 5.3, 8.9 Hz, 1H), 4.21 - 4.02 (m, 1H), 2.70 - 2.49 (m, 1H), 2.15 - 2.01 (m, 1H), 1.58 (d, J = 6.5 Hz, 3H)
250mL三つ口フラスコに、H-1_2(5g、22.60mmol)を加え、ジクロロメタン(50mL)に溶解した。トリフルオロ酢酸無水物(6.86g、67.79mmol、9.44mL)を0℃でゆっくり滴下し、反応物を20℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LCMSは出発物質シグナルの消失と生成物シグナルの出現を示し、TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を氷水(200mL)にゆっくり加え、飽和重炭酸ナトリウム溶液でpH7~8に調節し、酢酸エチル(200mL×2)で抽出した。有機相を直接回転蒸発させて、乾固して、粗製生成物を得た。粗製生成物をフラッシュシリカカラム(溶離剤:0~20%EtOAc/PE、流速:35mL/分)で精製して、化合物H-lを得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 7.06 - 6.91 (m, 2H), 4.55 - 4.42 (m, 1H), 4.12 - 3.93 (m, 2H), 2.55 - 2.37 (m, 1H), 2.06 - 1.89 (m, 1H), 1.48 (d, J = 6.0 Hz, 3H)
B-101(3g、9.76mmol)をDCM(50mL)に溶解し、反応温度を-70℃に下げ、DIBALH(1M、19.52mL)を-70℃で反応液にゆっくり加え、反応物を-70℃で1時間撹拌した。LCMSは、出発物質シグナルの消失および生成物シグナルの出現を示した。メタノール(20mL)を-70℃でゆっくり滴下して、反応停止させた。ゆっくり室温に戻した後、メタノール(100mL)を加え、撹拌および濾過した。フィルターケーキを20mLのメタノールで洗浄し、有機相を回転蒸発させて乾固した。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:40)で精製して、化合物B-10_2を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 7.35 (d, J = 7.0 Hz, 4H), 7.24 - 7.17 (m, 4H), 7.15 - 7.07 (m, 2H), 4.46 (s, 1H), 3.48 (dd, J = 6.3, 11.3 Hz, 1H), 3.33 - 3.17 (m, 5H), 1.15 - 1.03 (m, 1H), 0.68 (dd, J = 5.5, 8.5 Hz, 1H), 0.31 (t, J = 5.5 Hz, 1H)
B-10_2(1g、3.58mmol)およびTEA(543.30mg、5.37mmol、747.32μL)をDCM(5mL)に溶解し、反応溶液を0℃にゆっくり下げ、MsCl(0.62g、5.41mmol、418.92μL)を0℃でゆっくり滴下し、反応物を20℃で1時間撹拌した。TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は出発物質シグナルの消失および新規スポットの形成を示した。反応液を氷水(40mL)にゆっくり加えて反応停止させ、飽和水性重炭酸ナトリウム溶液を加えて約pH7に調節し、DCM(50mL×2)で抽出した。有機相を回転蒸発させて乾固して、化合物B-10_3を得た。
B-10_3(1.1g、1.54mmol、50%純度)をDMSO(12mL)に溶解し、NaCN(247.50mg、5.05mmol)をゆっくり加え、反応物を80℃で12時間撹拌した。LCMSは、出発物質シグナルの消失および生成物シグナルの出現を示した。TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は出発物質シグナルの消失および新規スポットの形成を示した。反応液を氷水(30mL)にゆっくり加え、酢酸エチル(40mL×2)で抽出した。有機相を合わせ、飽和塩水(40mL)で洗浄した。有機相を回転蒸発させて乾固した。水相を塩基性次亜塩素酸ナトリウム溶液にゆっくり加えて反応停止させ。粗製生成物をフラッシュシリカカラム(ISCO(登録商標);20g SepaFlash(登録商標)シリカカラム、溶離剤:0~20%酢酸エチル/石油エーテル、流速:35mL/分)で精製して、化合物B-10_4を得た。
50mL一口フラスコに、B-10_4(0.6g、2.19mmol)を加え、次いでHCl/MeOH(4M、6.00mL)をゆっくり加え、反応物を80℃で12時間撹拌した。LCMSは、出発物質シグナルの消失および生成物シグナルの出現を示した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固して、化合物B-10_5を得た。
B-10_5(0.4g、1.24mmol)をMeOH(10mL)に溶解し、Pd/C(0.05g、1.24mmol、10%パラジウム含量)を窒素保護下に加え、反応物を水素化チャンバーに配置し、3回水素で置換し、H2(2.51mg、1.24mmol)圧を45psiに維持した後、50℃で12時間撹拌した。LCMSは出発物質シグナルの消失を示した。TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は出発物質シグナルの消失および新規スポットの形成を示した。反応液をセライトで濾過し、フィルターケーキをメタノール(30mL)で洗浄した。濾液を回転蒸発させて乾固して、化合物B-10を得た。1H NMR (400 MHz, CD3OD) δ 4.28 - 4.11 (m, 4H), 3.74 (s, 3H), 2.54 - 2.42 (m, 1H), 2.29 - 2.16 (m, 1H), 1.35 - 1.26 (m, 1H), 0.67 - 0.56 (m, 1H), 0.69 - 0.54 (m, 1H)
化合物B-1(中間体B-1を、特許WO2017115205A1の53頁に記載のメチル(1R,5S,6S)-3-アザビシクロ[3.1.0]ヘキシ-6-イルアセテート塩酸塩の合成方法により合成した)(3.7g、23.84mmol)をDCM(200.0mL)に溶解し、-65℃に下げ、化合物A-1(4.9g、23.78mmol)のDCM(100.0mL)溶液をゆっくり滴下し、続いて、DIPEA(7.68g、59.45mmol)をゆっくり滴下した。反応物を-65℃で1時間撹拌し、次いで25℃に温め、2時間撹拌した。反応完了後、溶媒を回転蒸発により除去して、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、WX001_1を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 8.68 (s, 1H), 4.78 (m, 1H), 4.26 (m, 1H), 4.04 (m, 1H), 3.74 (m, 1H), 3.71 (s, 3H), 2.42 - 2.27 (m, 2H), 1.69 (m, 1H), 1.65 - 1.50 (m, 1H), 0.96 (m, 1H)
化合物WX001_1(3.9g、12.01mmol)を、C-1の塩酸塩(1.5g、21.09mmol)のTHF(100.0mL)溶液に数回で加え、続いてDIPEA(3.10g、24.02mmol)を滴下し、反応物を65℃で12時間撹拌した。反応完了後、溶媒を回転蒸発により除去して、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、化合物WX001_2を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 8.27 (s, 1H), 4.71 (m, 1H), 4.51 - 4.40 (m, 1H), 4.18 (m, 1H), 4.08 - 3.85 (m, 3H), 3.80 - 3.60 (m, 4H), 2.42 - 2.26 (m, 3H), 1.96 (m, 1H), 1.64 (m, 2H), 1.54 (d, J = 6.3 Hz, 3H), 1.02 - 0.93 (m, 1H)
化合物WX001_2(4.0g、11.13mmol)をTHF(100.0mL)およびH2O(100.0mL)に溶解し、水酸化リチウム一水和物(1.40g、33.38mmol)を加え、反応物を20℃で4時間撹拌した。反応完了後、200mLの水を加え、1N 塩酸を加えて、pHを4~5に調節した。溶媒を回転蒸発により除去した。生成物を25mLのDMSOを加えて溶解し、濾過して不溶性無機塩を除去した。粗製生成物のDMSO溶液を分取HPLC(分離方法:Welch Xtimate C18 150mm*25mm*5μm;移動相:[水(0.225%FA)-ACN];B(ACN)%:45%~75%、8分)で精製して、化合物WX001を得た。
化合物B-3(40g、129.28mmol)をDCM(300.0mL)に溶解し、0℃に冷却し、化合物A-11(27g、119.99mmol)のDCM(200.0mL)溶液をゆっくり滴下し、続いてDIPEA(46.52g、359.97mmol)をゆっくり滴下した。反応物を0℃で3時間撹拌した。反応完了後、溶媒を回転蒸発により除去して乾固して、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、WX035_1を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 4.73 - 4.23 (m, 4H), 3.72 (d, J = 5.5 Hz, 3H), 3.07 - 2.90 (m, 2H), 2.67 - 2.48 (m, 2H), 1.93 (br d, J = 9.5 Hz, 1H), 1.72 - 1.51 (m, 1H), 1.75 - 1.49 (m, 1H)
化合物WX035_1(35g、106.15mmol)をC-1の塩酸塩(38.65g、127.38mmol)のアセトニトリル(350.0mL)溶液に数回で加え、次いでK2CO3(44g、318.44mmol)を滴下し、反応物を80℃で12時間撹拌した。反応は完了し、次いで直接濾過し、濾液を回転蒸発させて乾固して、WX035_2を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 4.49 - 4.35 (m, 2H), 4.33 - 4.17 (m, 3H), 4.07 (dt, J = 5.0, 8.8 Hz, 1H), 3.74 (s, 3H), 2.87 - 2.77 (m, 2H), 2.53 - 2.36 (m, 3H), 1.97 - 1.86 (m, 2H), 1.50 (d, J = 6.0 Hz, 3H), 1.39 (t, J = 5.5 Hz, 1H), 1.32 - 1.26 (m, 1H), 1.30 - 1.24 (m, 1H)
化合物WX035_2(36g、98.8mmol)をTHF(350.0mL)およびH2O(70.0mL)に溶解し、水酸化リチウム一水和物(8.29g、197.59mmol)を加え、反応物を20℃で12時間撹拌した。反応完了後、200mLの水を加え、1N 塩酸を加えて、pHを5~6に調節した。酢酸エチル(300mL)で抽出した。溶媒を回転蒸発により除去した。生成物を25mLのMeOHを加えて溶解し、濾過して不溶性無機塩を除去した。粗製生成物のDMSO溶液を分取HPLC(分離方法:カラムタイプ:PhenomenexLuna C8 250*50mm*10μm;移動相:[H2O(0.1%TFA)-MeOH];B%:5%~60%、25分)で精製して、化合物WX035を得た。
化合物WX035(35g、99.9mmol)をSFC(カラムタイプ:DAICEL Chiralpak IG(250mm*30mm,10μm);移動相:B:[0.1%NH3H2OMeOH];B%:40%~40%、8分)で分離して、化合物WX042(ee%:99.58%、RT=3.061分)およびWX043(ee%:98.76%、RT=3.922)を得た。
化合物A-12(10g、48.77mmol)およびNaOMe(21.08g、390.12mmol)をMeOH(200mL)に溶解し、反応物を80℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固し、水(60mL)を加え、酢酸エチル(80mL×2)で抽出した。有機相を合わせ、回転蒸発させて乾固して、WX023_2を得た。
化合物WX023_2(1g、5.10mmol)およびBr2(1.22g、7.64mmol、394.07μL)をHOAc(20mL)に溶解し、反応物を120℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を室温に冷却し、直接回転蒸発させて乾固し、30分間撹拌しながら水(20mL)を加えた。混合物を濾過し、フィルターケーキを水(10mL)で洗浄し、集めて、化合物WX023_3を得た。
50mL一口フラスコに、化合物WX023_3(900.00mg、3.64mmol)およびDIPEA(1.41g、10.93mmol)、続いてPOCl3(14.85g、96.85mmol)を加え、反応物を120℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を水(50mL)にゆっくり加え、ジクロロメタン(50mL×3)で抽出した。濾液を直接回転蒸発させて、乾固した。粗製生成物をフラッシュシリカカラム(ISCO(登録商標);40g SepaFlash(登録商標)シリカカラム、溶離剤:0~15%EtOAc/PE、流速:35mL/分)で精製して、化合物WX023_4を得た。
化合物WX023_4(0.2g、704.32μmol)、中間体B-1(131.17mg、845.19μmol)およびDIPEA(273.08mg、2.11mmol)をDCM(2mL)に溶解し、反応物を40℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。TLC(石油エーテル:酢酸エチル=3:1)は新しいスポットの形成を示した。反応液を直接濾過した。フィルターケーキを酢酸エチル(20mL)で洗浄し、濾液を直接回転蒸発させて、乾固して、化合物WX023_5を得た。
化合物WX023_5(0.2g、496.66μmol)、中間体C-1(166.00mg、547.10μmol)およびK2CO3(204.00mg、1.48mmol)をアセトニトリル(3mL)に溶解し、反応物を90℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LCMSは、出発物質シグナルの消失および生成物シグナルの発生を示した。反応液を濾過した。フィルターケーキを酢酸エチル(20mL)で洗浄し、濾液を回転蒸発させて乾固して、化合物WX023_6を得た。
化合物WX023_6(0.2g、457.30μmol)およびZn(CN)2(161.09mg、1.37mmol、87.08μL)をDMA(2mL)に溶解し、トリ-tert-ブチルホスフィンパラジウム(233.70mg、457.30μmol)を窒素保護下に加え、反応物を130℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LCMSは、出発物質シグナルの消失および生成物シグナルの発生を示した。反応液を濾過した。フィルターケーキを酢酸エチル(20mL)で洗浄し、濾液を回転蒸発させて乾固し、フラッシュシリカカラム(ISCO(登録商標);12g SepaFlash(登録商標)シリカカラム、溶離剤:0~20%EtOAc/PE、流速:35mL/分)で精製して、化合物WX023_7を得た。
化合物WX023_7(120mg、312.93μmol)およびLiOH.H2O(39.40mg、938.80μmol)をTHF(2mL)/H2O(2mL)に溶解し、反応物を20℃で12時間、窒素保護下に撹拌した。LCMSは、出発物質シグナルの消失および生成物シグナルの発生を示した。反応物を1M 希塩酸でpH7~8に調節し、酢酸エチル(20mL)で抽出した。有機相を回転蒸発させて乾固した。残留物をHPLC(カラムタイプ:Welch Xtimate C18 100mm*25mm*3μm;移動相:[水(0.225%FA)-ACN];B(ACN)%:6%~46%、8分)で精製して、化合物WX023を得た。
A-2(100mg、485.31μmol)をDCM(20mL)に25℃で溶解し、次いで-78℃に冷却し、C-1の塩酸塩(51.93mg、485.31μmol)およびDIPEA(188.17mg、1.46mmol、253.59mL)をゆっくり加え(15分以内)、反応物を25℃に戻し、2時間撹拌した。TLCによる検出(PE:EtOAc=10:1)は反応の完了を示した。溶媒を直接減圧下濃縮して、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、化合物WX005_1を得た。LCMS(5-95/1.5分):0.930分、[M+H]+=240.9。
WX005_1(100mg、415.43μmol)をTHF(15mL)に、25℃で溶解し、B-1(64.47mg、415.43μmol)およびDIPEA(161.08mg、1.25mmol、217.08mL)を加え、反応物を70℃で24時間撹拌した。TLCによる検出(PE:EtOAc=10:1)は反応の完了を示した。溶媒を直接減圧下濃縮して、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、化合物WX005_2を得た。LCMS(10-80/7分):2.516分、[M+H]+=360.2。
化合物WX005_2(30mg、83.46μmol)をH2O(5mL)およびTHF(5mL)に、25℃で溶解し、LiOH.H2O(10.51mg、250.39μmol)を加え、反応物を25℃で0.5時間撹拌した。TLCによる検出(PE:EtOAc=10:1)は反応の完了を示した。溶媒を直接減圧下濃縮して、粗製生成物を得た。粗製生成物を分取HPLC(分離方法:Welch Xtimate C18 150mm*25mm*5μm;移動相:[水(0.225%FA)-ACN];B(ACN)%:45%~75%、8分)で精製して、化合物WX005を得た。
10mLサムボトル(thumb bottle)に、A-3(5g、24.38mmol)およびtert-ブチルカルバメート(4.28g、36.57mmol)を加え、THF(50mL)に溶解し、窒素を通し、Cs2CO3(23.83g、73.15mmol)、Pd(dba)2(701.01mg、1.22mmol)およびXantphos(705.41mg、1.22mmol、0.05当量)を加え、窒素を通し、反応物を80℃で12時間撹拌した。反応物を60mLの水に加え、DCM(60mL×2)で抽出した。有機相を合わせ、飽和塩水(60mL)で洗浄し、回転蒸発させて乾固して、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、WX010_1を得た。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ = 10.74 (s, 1H), 7.82 (d, J = 6.3 Hz, 1H), 7.74 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 1.52 (s, 9H)
100mLナス型フラスコに、WX010_1(5g、17.50mmol)を加え、DCM(50mL)に溶解し、次いでTFA(71.76g、629.32mmol)をゆっくり加え、反応物を20℃で12時間撹拌した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固し、酢酸エチル(50mL)を加え、飽和重炭酸ナトリウム溶液(30mL×2)で洗浄した。有機相を回転蒸発させて乾固して、WX010_2を得た。1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ = 8.02 (br s, 2H), 7.62 - 7.52 (m, 2H)
10mLサムボトルに、WX010_2(3g、16.16mmol)およびC-1(1.24g、24.24mmol)を加え、DMF(30mL)に溶解し、温度を0℃に下げ、DIPEA(6.27g、48.48mmol)を加え、反応物を80℃で12時間撹拌した。反応液を20mLの水に加え、DCM(20mL×2)で抽出した。有機相を合わせ、飽和塩水(20mL)で洗浄した。有機相を回転蒸発させて乾固して、粗製生成物を得た。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、WX010_3を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ = 6.96 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 6.82 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 5.36 - 4.97 (m, 2H), 4.59 - 4.42 (m, 1H), 4.17 - 3.91 (m, 2H), 2.42 (dtd, J = 4.9, 8.6, 10.8 Hz, 1H), 1.97 (tdd, J = 6.7, 8.9, 10.7 Hz, 1H), 1.55 (d, J = 6.3 Hz, 3H)
化合物WX010_3(220mg、1.01mmol)、D-1(245mg、1.01mmol)および炭酸セシウム(989.60mg、3.04mmol)を、N2保護下に10mLサムボトル中のTHF(5mL)に加え、続いてPd2(dba)3(46.35mg、50.62μmol)およびXantphos(29.29mg、50.62μmol)を加え、反応物を70℃で12時間撹拌した。LCMSは反応の完了を示した。反応液を濾過し、EtOAc(20mL)で洗浄した。濾液を水(20mL)で洗浄した後、有機相を直接回転蒸発させて、乾固した。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:40)で精製して、化合物WX010_4を得た。
10mLサムボトルに、化合物WX010_4(68mg、183.56μmol)を加え、THF(2mL)に溶解し、H2O(2mL)、次いでLiOH.H2O(7.70mg、183.56μmol)を加え、反応物を20℃で1時間撹拌した。LCMSは反応の完了を示した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固し、3mLのMeOHを加えて溶解し、濾過した。濾液を分取HPLC(分離方法:Welch Xtimate C18 150mm*25mm*5μm;移動相:[水(0.225%FA)-ACN];B(ACN)%:45%~75%、8分)で精製して、化合物WX010を得た。
50mLの反応フラスコに、E-1(0.8g、3.29mmol)、F-1(1.25g、4.94mmol)を加え、ジオキサン(10mL)に溶解し、酢酸カリウム(968.90mg、9.87mmol)およびPd(dppf)Cl2(134.37mg、183.64μmol)を加え、反応物を90℃で12時間撹拌した。LCMSは反応の完了を示した。反応液に20mLの水を加え、EtOAc(20mL×2)で抽出した。有機相を合わせ、飽和塩水(20mL)で洗浄し、次いで回転蒸発させて乾固した。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:10)で精製して、化合物WX016_1を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 7.61 - 7.55 (m, 2H), 7.25 - 7.21 (m, 2H), 3.60 (s, 3H), 2.89 (t, J = 8.0 Hz, 2H), 2.62 - 2.51 (m, 2H), 1.27 (s, 12H)
50mLの反応フラスコに、化合物WX016_1(0.2g、689.27μmol)およびA-3(0.19g、921.76μmol)を加え、トルエン(1mL)/EtOH(0.5mL)/H2O(0.5mL)に溶解し、K2CO3(254.79mg、1.84mmol、2当量)およびPd(PPh3)4(53.26mg、46.09μmol)を加え、反応物を90℃で9時間撹拌した。LCMSは生成物MSを検出した。反応物を20mLの水に加え、EtOAc(20mL×2)で抽出した。有機相を合わせ、飽和塩水(20mL)で洗浄した。有機相を回転蒸発させて乾固した。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:40)で精製して、化合物WX016_2を得た。
10mLサムボトルに、化合物WX016_2(115mg、348.11μmol)およびC-1の塩酸塩(74.47mg、696.23μmol)を加え、THF(1mL)に溶解し、次いでDIPEA(121.27mL、696.23μmol)を加え、反応物を70℃で9時間撹拌した。LCMSは反応の完了を示した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固して、粗製WX016-3を得た。粗製生成物を次反応で直接使用した。
10mLサムボトルに、化合物WX016_3(115mg、316.31μmol)を加え、THF(2mL)に溶解し、H2O(2mL)、次いでLiOH.H2O(13.27mg、316.31μmol)を加え、反応物を20℃で12時間撹拌した。LCMSは反応の完了を示した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固し、MeOH(3mL)を加えて溶解し、濾過した。濾液を分取HPLC(分離方法:Welch Xtimate C18 150mm*25mm*5μm;移動相:[水(0.225%FA)-ACN];B(ACN)%:45%~75%、8分)で精製して、化合物WX016を得た。
50mLの反応フラスコに、G-1(200mg、819.39μmol)およびF-1(312.11mg、1.23mmol)を加え、ジオキサン(10mL)に溶解し、酢酸カリウム(160.83mg、1.64mmol)およびPd(dppf)Cl2(59.96mg、81.94μmol)を加え、反応物を90℃で12時間撹拌した。LCMSは反応の完了を示した。反応液を20mLの水を加え、EtOAc(20mL×2)で抽出した。有機相を合わせ、飽和塩水(20mL)で洗浄し、回転蒸発させて乾固した。粗製化合物WX033_1を、精製することなく次工程で直接使用した。
50mLの反応フラスコに、化合物WX033_1(197.62mg、416.03μmol)およびH-1(140mg、396.22μmol)を加え、ジオキサン(8mL)に溶解し、K3PO4(2M、396.22μL)およびPd(dppf)Cl2(28.99mg、39.62μmol)を加え、反応物を90℃で4時間撹拌した。LCMSは生成物MSを検出した。反応物を20mLの水に加え、EtOAc(20mL×2)で抽出した。有機相を合わせ、飽和塩水(20mL)で洗浄し、回転蒸発させて乾固した。粗製生成物を自動化カラムクロマトグラフィー(100~200メッシュ、溶離剤:PE:EtOAc=100:1~100:50)で精製して、化合物WX033_2を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 8.70 (d, J = 5.2 Hz, 1H), 7.71 - 7.67 (m, 1H), 7.63 - 7.61 (m, 1H), 7.29 (s, 1H), 7.07 (d, J = 6.0 Hz, 1H), 4.63 - 4.58 (m, 1H), 4.25 - 4.15 (m, 2H), 3.70 (s, 3H), 3.25 (t, J = 7.6 Hz, 2H), 2.89 (t, J = 7.6Hz, 2H), 2.54 - 2.49 (m, 1H), 2.04 - 2.00 (m, 1H), 1.62 (d, J = 6.4 Hz, 3H)
10mLサムボトルに、化合物WX033_2(150mg、272.76μmol)を加え、THF(2mL)に溶解し、H2O(2mL)、次いで水酸化ナトリウム(2M、681.91μ)を加え、反応物を20℃で12時間撹拌した。LCMSは反応の完了を示した。反応液を直接回転蒸発させて、乾固し、MeOH(3mL)を加えて溶解し、濾過した。濾液を分取HPLC(分離方法:Welch Xtimate C18 150mm*25mm*5μm;移動相:[水(0.225%FA)-ACN];B(ACN)%:45%~75%、8分)で精製して、化合物WX033を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 8.69 - 8.60 (m, 1H), 7.88 - 7.79 (m, 1H), 7.77 - 7.69 (m, 1H), 7.48 - 7.39 (m, 1H), 7.32 - 7.23 (m, 1H), 4.68 - 4.55 (m, 1H), 4.24 - 4.04 (m, 2H), 3.22 (t, J = 7.2 Hz, 2H), 2.84 (t, J = 7.2 Hz, 2H), 2.63 - 2.48 (m, 1H), 2.14 - 2.03 (m, 1H), 1.61 (d, J = 6.4 Hz, 3H)
試験例1:ケトヘキソキナーゼアッセイ(KHKアッセイ)
A. 主材料
1. EnVisionマルチラベルリーダー、Perkin Elmer;
2. OptiPlate 384ウェルマイクロプレート、Perkin Elmer、Cat. No. 6007290;
3. 組み換えヒトケトヘキソキナーゼ(KHK)、R&D_Cat. No.: 8177-HK-020、Lot No.: DDFK0117092;
4. フルクトース(D(-)-フルクトース)、SCR Cat. No.: 36003034;および
5. ADP-Gloキナーゼアッセイキット、Promega_Cat. No.: V9101。
a)キナーゼ反応
1. 50mM ヒドロキシエチルピペラジンエタンチオスルホン酸(Hepes)、140mM KCl、3.5mM MgCl2および0.01%ウシ血清アルブミン(BSA)を含む、希釈緩衝液、pH7.4の調製。
2. 2.5倍濃縮されたケトヘキソキナーゼの作業溶液を、50nM ケトヘキソキナーゼおよび12.5mM フルクトースを含む希釈緩衝液で調製した。
3. 2.5倍濃縮されたアデノシン三リン酸(ATP)の作業溶液を、250μM濃度で希釈緩衝液で調製した。
4. 各化合物を、500μMから開始して、3倍希釈で9濃度点希釈した。反応系中の化合物の最終濃度は10μMから開始し、ジメチルスルホキシド(DMSO)の最終濃度は2%であった。
5. 96ウェルプレートを反応プレートとして調製し、各ウェルに2.5倍濃度で6μLのケトヘキソキナーゼ作業溶液を加え、さらに各ウェルに3μLの化合物作業溶液を加えた後、室温で5分間インキュベートした。
6. 各列の最初のウェルは化合物の陽性対照であり、すなわち化合物およびケトヘキソキナーゼの代わりに、同じ体積の緩衝液を加えた。最後のウェルは化合物の陰性対照であり、すなわち化合物の代わりに同じ体積の希釈緩衝液を加えた。
7. 6μLのATP作業溶液を96ウェル反応プレートの各ウェルに加えて、キナーゼ反応を開始させた。キナーゼ反応物を28℃の一定温度ヒーターで1時間インキュベートした。
1. 384プレートを検出プレートとして調節し、まず5μLのADP-Glo試薬を加えた。
2. 反応プレートからの5μLキナーゼ反応混合物を各ウェルに加え、28℃の一定温度ヒーターで30分間インキュベートした。
3. 10μLキナーゼ検出試薬を各ウェルに加え、28℃の一定温度ヒーターで30分間インキュベートした。
4. 検出プレートをEnVisionマルチラベルリーダーに入れて、化学発光シグナルを読んだ。
結論:本発明の化合物は、ヒト起源KHK酵素に対する強力な阻害活性を有する。
A. 主材料
1. CHO-hERG細胞株(hERGチャネルを安定に発現するチャイニーズハムスター卵巣細胞)を、Shanghai Institute of Materia Medica, Chinese Academy of Sciencesで社内で構築した;
2. 陽性対照化合物:シサプリド、Sigma Aldrich, Cat. No.: C4740 - 10mg;
3. パッチクランプアンプAxopatch 200B, Taser International Inc.。
a)細胞培養
hERGを安定に発現するCHO細胞を、直径35mmの細胞培養皿で培養し、37℃および5%CO2のインキュベーターに入れ、48時間毎に1:5比で継代した。培養培地の配合:90%F12(Invitrogen)、10%ウシ胎児血清(Gibco)、100μg/mLのG418(Invitrogen)および100μg/mLのハイグロマイシンB(Invitrogen)。アッセイ当日、細胞培養培地を吸引した。細胞外液で1回濯いだ後、0.25%トリプシン-EDTA(Invitrogen)溶液を加え、室温で3~5分間消化させた。消化液を吸引した。細胞外液に再懸濁後、細胞を、さらなる使用のための電気生理学的記録のための試験皿に移した。
細胞外液は月1回調製することを要する。細胞内液は密封し、-20℃で凍結することを要する。細胞内液および細胞外液の組成を表3に示す。
化合物を、DMSOを用いて20mM原液に溶解した。アッセイ当日、化合物原液をDMSOで3倍連続希釈し、すなわち、10μLの化合物原液を20μLのDMSOに加えて、DMSOで連続希釈された、化合物の、それぞれ20mM、6.66mM、2.22mM、0.74mM、0.24mMおよび0.082mMである6つの中間濃度を得た。次いで、10μLの中間濃度化合物を4990μL細胞外液に加え、500倍希釈して試験する最終濃度とし、試験すべき最高濃度は40μMであり、それぞれ40μM、13.3μM、4.44μM、1.48μM、0.49μMおよび0.16μMであった。陽性対照化合物シサプリドの調製:150μMシサプリド原液を100%DMSOで3倍連続希釈し、すなわち、10μLの150μMシサプリド原液を20μLのDMSOに加えて、DMSOで連続希釈された、それぞれ150μM、50μM、16.7μM、5.56μMおよび1.85μMである5つの中間濃度のシサプリドを得た。次いで、10μLの中間濃度シサプリドを、4990μL細胞外液に加え、500倍希釈して試験する最終濃度とし、試験すべき最高濃度は300nMであり、それぞれ300nM、100nM、33.3nM、11.1nMおよび3.70nMであった。最終試験濃度でのDMSOの含量は0.2%を超えてはならず、この濃度のDMSOはhERGカリウムチャネルに影響なかった。
hERGカリウムチャネルを安定に発現するCHO(チャイニーズハムスター卵巣)細胞で、hERGカリウムチャネル電流を、ホールセルパッチクランプ技術を使用して、室温で記録した。ガラス微小電極を、ガラス電極ブランク(BF150-86-10, Sutter)をガラス電極製作器で引くことにより調製し、電極内液充填の先端抵抗性は約2~5MΩであった。ガラス微小電極をアンプ頭部に、挿入して、Axopatch 200B(Molecular Devices)パッチクランプアンプに接続した。クランピング電圧およびデータ記録を制御し、pClamp 10ソフトウェアを使用して、10kHzのサンプリング周波数および2kHzのフィルタリング周波数を用いてコンピューターにより記録した。ホールセル記録が得られた後、細胞を-80mVでクランプし、hERGカリウム電流を誘導する工程電圧(IhERG)は、-80mVから+20mVへの2秒の減極電圧、次いで1秒の-50mVへの再分極を行い、次いで-80mVに戻した。この電圧刺激を10秒毎に与え、投与過程を、hERGカリウム電流が安定と決定された後(1分)開始した。化合物濃度を、低試験濃度で開始して連続的に投与し、各試験濃度を少なくとも1分投与した。化合物の濃度あたり少なくとも3細胞(n≧3)を試験し、陽性化合物濃度あたり少なくとも2細胞(n≧2)を試験した。
各完全電流記録で、各化合物濃度のパーセント阻害を、陰性対照に対するピーク電流のパーセンテージに基づき、計算できる。用量-応答曲線を、具体的に下に示す標準的ヒルの式に適合させることにより得た。
I(C)=Ib+(Ifr-Ib)*cn/(IC50 n+cn)
(式中、Cは、試験した化合物濃度であり、nは勾配である。)
曲線あてはめおよび阻害率計算を、Qpatch分析ソフトウェアを使用して実施した。最低濃度での阻害率が半分阻害を超えるかまたは最高濃度での阻害率が半分阻害に達しないならば、化合物の対応するIC50は最低濃度より低いかまたはIC50値は最高濃度より高い。
A. 試験目的
試験化合物のヒト肝ミクロソームシトクロムP450アイソザイム(CYP1A2、CYP2C9、CYP2C19、CYP2D6およびCYP3A4)活性に対する阻害効果を決定した。
まず、試験化合物(10mM)を勾配で希釈して、それぞれ5mM、1.5mM、0.5mM、0.15mM、0.05mM、0.015mM、0.005mM作業溶液濃度の作業溶液(100×最終濃度)を調製し、同時に、P450アイソザイム(CYP1A2、CYP2C9、CYP2C19、CYP2D6およびCYP3A4)の各陽性阻害剤の作業溶液およびその特異的基質混合物を調製した。-80℃冷凍庫で凍結させたヒト肝ミクロソームを氷上で融解し、ヒト肝ミクロソームが全て溶解した後PB(リン酸緩衝液)で希釈して、一定濃度(0.253mg/mL)の作業溶液を調製した。20μlの基質混合物を反応プレート(ブランクウェルに20μLのPBを加えた)に加え、一方158μLのヒト肝ミクロソーム作業溶液を後の使用のために氷に乗せた反応プレートに加えた。この時点で、2μLの各濃度の試験化合物(N=1)および特異的阻害剤(N=2)を対応するウェルに加え、対応する有機溶媒を対照サンプル(試験化合物対照サンプルについて1:1 DMSO:MeOHおよび陽性対照サンプルについて1:9 DMSO:MeOH)として阻害剤不含有ベース(試験化合物または陽性阻害剤)に加えた。37℃水浴で10分間プレインキュベート後、20μLのコエンザイム因子(NADPH)溶液を反応プレートに加え、37℃水浴で10分間インキュベートした。400μLの冷アセトニトリル溶液(内部標準として200ng/mLのトルブタミドおよびラベタロール)を加えて、反応停止させた。反応プレートをシェーカーに乗せ、10分間振盪した。混合物を4,000rpmで20分間遠心分離し、200μl上清をサンプル希釈用の100μLの水に加えた。最後に、プレートを密封し、振盪し、良く混合し、LC/MS/MSにより検出した。
試験結果を表4に示す。
結論:本発明の化合物はCYP阻害性活性を示さなかった。
A. 試験目的
試験化合物の代謝安定性を、ヒト、CD-1マウス、ビーグル犬およびカニクイザルの肝ミクロソームで評価した。
まず、試験化合物(10mM)を2工程希釈に付し、100μMの中間濃度を100%メタノールで希釈し、10μMの作業溶液濃度をリン酸カリウム緩衝液で希釈した。それぞれT0、T5、T10、T20、T30、T60、BlankおよびNCF60と名付けた8個の96ウェルインキュベーションプレートを調製した。最初の6インキュベーションプレートの対応する反応時点はそれぞれ0分、5分、10分、20分、30分および60分であった;試験化合物または対照化合物をBlankプレートに加えなかった。NCF60プレートについて、NADPH再生系の溶液を、60分のインキュベーションでリン酸カリウム緩衝液に置き換えた。10μlの試験化合物作業溶液および80μLのミクロソーム作業溶液(肝ミクロソームタンパク質濃度は0.625mg/mLであった)をT0、T5、T10、T20、T30、T60およびNCF60プレートに別々に加え、Blankプレートにミクロソーム作業溶液のみを加え、次いで上記プレートを37℃水浴で約10分プレインキュベートした。プレインキュベーション後、NCF60プレートおよびT0プレート以外、NADPH再生系の10μLの作業溶液を各サンプルウェルに加えて、反応を開始させ、10μLリン酸カリウム緩衝液をNCF60プレートの各ウェルに加えた。それ故に、試験化合物または対照化合物のサンプルで、最終反応濃度の化合物、テストステロン、ジクロフェナクおよびプロパフェノンは1μMであり、肝ミクロソームの濃度は0.5mg/mLであり、反応系におけるDMSOおよびアセトニトリルの最終濃度はそれぞれ0.01%(v/v)および0.99%(v/v)であった。適切な時間インキュベーション後(例えば5分、10分、20分、30分および60分)、300μLの停止溶液(アセトニトリル中100ng/mLのトルブタミドおよび100ng/mLを試験した。ベタロール含有)を各サンプルウェルに加えて、反応停止させた;300μLの停止溶液を加え、次いで10μLのNADPH作業溶液をT0プレートに加えた。全サンプルプレートをよく振盪し、遠心分離器(3220×g)で20分間遠心分離し、次いでウェル当たり100μLの上清を液体クロマトグラフィータンデムマススペクトロメトリー分析用の300μLの精製水で希釈した。
A. 試験目的
SDラットにおける化合物のインビボ薬物動態を試験した。
化合物静脈内および経口投与後の齧歯類における薬物動態プロファイルを、標準的プロトコールにより試験した。本試験で、候補化合物を透明溶液または均質懸濁液として製剤化し、ラットに単回静脈内注射(IV、1mpk)および経口投与(PO、3mpk)により投与した。静脈内注射用媒体は、一定比率のPEG400の水溶液であり、経口投与用の媒体は、一定比率のメチルセルロースおよびTween 80の水溶液であった。全血を集め、血漿を調製した。薬物濃度をLC-MS/MSにより分析し、薬物動態パラメータをPhoenix WinNonlinソフトウェアにより計算した。
試験結果を表5に示す。
結論:本発明の化合物は、高バイオアベイラビリティを有する。
A. 試験目的
SDラットにおける化合物の組織分布を試験した。
本実験において、候補化合物を透明溶液として製剤化し、ラットに単回経口用量(PO、1mpk)で投与した。経口投与用媒体は、一定比率のメチルセルロースおよびTween 80の水溶液であった。全血を一定時間に集め、血漿を調製し、組織を対応する時間に集め、組織ホモジネートに調製した。薬物濃度をLC-MS/MSにより分析し、薬物動態パラメータをPhoenix WinNonlinソフトウェアにより計算した。
試験結果を表6に示す。
NDは、化合物濃度は検出限界に達するには低すぎることを示し、NAは試験を実施しなかったことを示す。
A. 実験目的
C57BL/6マウスにおける化合物の組織分布を試験した。
本試験において、候補化合物を透明溶液として製剤化し、マウスに単回経口用量(PO、1mpk)として投与した。経口投与用媒体は、一定比率のメチルセルロースおよびTween 80の水溶液であった。全血を一定時間に集め、血漿を調製し、組織を対応する時間に集め、組織ホモジネートに調製した。薬物濃度をLC-MS/MSにより分析し、薬物動態パラメータをPhoenix WinNonlinソフトウェアにより計算した。
A. 試験目的
高フルクトース摂取マウスのフルクトース含量における試験化合物の効果を調べた。
全動物を、動物室に1週間順化させ、通常の餌を与え、フルクトースを与える16時間前絶食させた。
1)実験を-0.5時間に開始した。対照群に一定体積の媒体(一定比率のメチルセルロースおよびTween 80の水溶液)を与え、試験群に一定用量の化合物溶液を与えた(投与体積は媒体と一致させた)。
2)0.5時間後かつフルクトース溶液投与前、血液サンプルを0時間に集め、続いて1g/kgの水性フルクトース溶液を経口投与した。
3)フルクトース投与後、血液サンプルを、0.25時間、0.5時間、1時間、2時間、3時間および8時間にマウスの伏在静脈から集め、フルクトース濃度をLC-MS/MSにより分析した。
試験結果を表7に示す。
結論:本発明の化合物は、マウスにおけるフルクトース代謝に強力な阻害効果を有する。
A. 試験目的
高フルクトース摂取ラットのフルクトース含量における試験化合物の効果を調べた。
全動物を動物室に少なくとも3日間順化させ、通常の餌を与え、フルクトースを与える16時間前絶食させた。
1. 試験を-1時間に開始した。対照群に一定体積の媒体を与え、実験群に一定用量の化合物溶液を与えた(一定比率のメチルセルロースおよびTween 80の水溶液)。
2. 1時間後かつフルクトース溶液投与前、血液サンプルを0時間に集め、続いて2g/kgの水性フルクトース溶液を経口投与した。
3. フルクトース投与後、血液サンプルを0.5時間、1時間、2時間、3時間および8時間にラットの頚静脈から集め、フルクトース濃度をLC-MS/MSにより分析した。
Claims (12)
- 式(III)
T1はNから選択され、かつT2はCRaから選択されるかまたはT2はNから選択され、かつT1はCRaから選択され;
R1およびRaは、それらが直接結合している炭素原子と一体となって
各E1およびE2はN、NH、O、CH、CH2およびSからなる群から独立して選択され;
E3およびE4はCHおよびNからなる群から独立して選択され;
T3およびT4は各々独立してNおよびCHからなる群から選択され;
各RはH、ハロ、CN、NH2、OH、C1-3アルキルおよびC1-3アルコキシからなる群から独立して選択され、該C1-3アルキルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
各Rbはハロ、シアノおよびC1-3アルキルからなる群から独立して選択され、該C1-3アルキルは場合により1個、2個または3個のFで置換されており;
nは0、1および2から選択され;
L1は単結合およびNHからなる群から選択され;
L2は単結合、-(CH2)m-、
mは0、1および2から選択され;
qは1および2から選択され;
環Aは4~8員ヘテロシクロアルキル、C3-6シクロアルキル、フェニルおよび5~6員ヘテロアリールからなる群から選択され;
R1およびRaがそれらが直接結合する炭素原子と一体となって環
該「4~8員ヘテロシクロアルキルおよび5~6員ヘテロアリール」はO、SおよびNからなる群から独立して選択される1個、2個または3個のヘテロ原子を含む。〕
により表される化合物またはその薬学的に許容される塩。 - 構造単位
- 構造単位
- 環Aが
- 各RがH、F、Cl、CN、CH3およびCF3からなる群から独立して選択される、請求項1の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- 各RbがF、Cl、シアノ、CH3およびCF3からなる群から独立して選択される、請求項1の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- L2が単結合、-CH2-、-CH2CH2-、-CH=CH-および-OCH2-からなる群から選択される、請求項1の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- 次のものからなる群から選択される、請求項1~7の何れかの化合物またはその薬学的に許容される塩。
- 次の式の何れかの化合物またはその薬学的に許容される塩。
- 次のものからなる群から選択される、化合物またはその薬学的に許容される塩。
- 治療用KHK阻害剤関連医薬の製造のための、請求項1~10の何れかの化合物またはその薬学的に許容される塩の使用。
- KHK阻害剤関連医薬が非アルコール性脂肪性肝疾患および非アルコール性脂肪性肝炎の処置用医薬である、請求項11の使用。
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