JP6931015B2 - SERPINA1 iRNA組成物およびその使用方法 - Google Patents
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Description
本願は米国仮出願No. 61/826,125(2013年5月22日出願)米国仮出願No. 61/898,695(2013年11月1日出願)、米国仮出願No. 61/979,727(2014年4月15日出願)、米国仮出願No. 61/989028(2014年5月6日出願)の優先権の利益を主張する。本願は、米国仮出願No. 61/561,710(2011年11月18日出願)およびPCT/US2012/065601(2012年11月16日出願)に関連する。各前記出願の全内容は本明細書の一部を構成する。
(配列表)
本願はASCIIフォーマットで電子化して提出した配列表を含み、これは本明細書の一部を構成する。該ASCIIコピー(2014年5月20日作製)は121301-00620 SL.txtという名であり、サイズが199,204バイトである。
以下により詳細に記載するように、本明細書は、1本鎖および2本鎖ポリヌクレオチド、例えばRNAi物質、例えば2本鎖iRNA物質、標的化Serpina1などの物質を含む組成物を開示する。Serpina1の発現を阻害し、Serpina1関連疾患、例えば、慢性肝疾患、肝炎、肝硬変、肝線維症、および/または肝細胞癌を治療するための本発明の組成物の使用方法も開示する。
デオキシ-修飾ヌクレオチド、ロックドヌクレオチド、脱塩基ヌクレオチド、2’-アミノ-修飾ヌクレオチド、2’-アルキル-修飾ヌクレオチド、モルホリノヌクレオチド、ホスホルアミデート、非天然塩基を含むヌクレオチド、5’-ホスホロチオエート基を含むヌクレ
オチド、およびコレステリル誘導体と結合した末端ヌクレオチドまたはドデカン酸ビスデシルアミド基からなる群から選ばれる。
センス: 5’np-Na-(XXX)i-Nb-YYY-Nb-(ZZZ)j-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-(X’X’X’)k-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-(Z’Z’Z’)l-Na’-nq’5’ (III)
[式中、
i、j、k、およびlはそれぞれ独立して0または1である;
p、p’、q、およびq’がそれぞれ独立して0〜6である;
NaおよびNa’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜25ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は少なくとも2の異なる
修飾ヌクレオチドを含む;
NbおよびNb’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜10ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す;
それぞれ存在していてもいなくてもよいnp、np’、nq、およびnq’はそれぞれ独立してオーバーハングヌクレオチドを表す;
XXX、YYY、ZZZ、X’X’X’、Y’Y’Y’、およびZ’Z’Z’はそれぞれ独立して3連続ヌクレオチド上の3つの同じ修飾の1モチーフを表す;
Nbの修飾はYの修飾と異なり、Nb’の修飾はY’の修飾と異なる;および
該センス鎖は少なくとも1のリガンドと結合している。]
で示される、RNAi物質を提供する。
基はユニバーサル塩基である。
センス: 5’np-Na-YYY-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-Y’Y’Y’-Na’-nq’5’ (IIIa)。
センス: 5’np-Na-YYY-Nb-ZZZ-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-Y’Y’Y’-Nb’-Z’Z’Z’-Na’-nq’5’ (IIIb)
[式中、NbおよびNb’はそれぞれ独立して1〜5修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す。]
で示される。
センス: 5’np-Na-XXX-Nb-YYY-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-X’X’X’-Nb’-Y’Y’Y’-Na’-nq’5’ (IIIc)
[式中、NbおよびNb’はそれぞれ独立して1〜5修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す。]
で示される。
センス: 5’np-Na-XXX-Nb-YYY-Nb-ZZZ-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-X’X’X’-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-Z’Z’Z’-Na’-nq’5’ (IIId)
[式中、NbおよびNb’はそれぞれ独立して1〜5修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、NaおよびNa’はそれぞれ独立して2〜10修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す。]
で示される。
クレオチドの修飾は2’-O-メチルまたは2’-フルオロ修飾である。
ある態様において、該アンチセンス鎖は5’末端に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合、3’末端に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み、該センス鎖は5’末端または3’末端に少なくとも2のホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含む。
バーハングヌクレオチドは標的mRNAと非相補的である。
ホロチオエートヌクレオチド間結合を含み、該アンチセンス鎖の実質的にすべての該ヌクレオチドが2’-O-メチル修飾および2’-フルオロ修飾からなる群から選ばれる修飾を含み、該アンチセンス鎖が5’末端に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合、3’末端に2ホ
スホロチオエートヌクレオチド間結合を含み、該センス鎖が3’末端の分岐鎖二価または三価リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体と結合している。
センス: 5’np-Na-(XXX)i-Nb-YYY-Nb-(ZZZ)j-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-(X’X’X’)k-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-(Z’Z’Z’)l-Na’-nq’5’ (III)
[式中、
i、j、k、およびlはそれぞれ独立して0または1である;
p、p’、q、およびq’がそれぞれ独立して0〜6である;
NaおよびNa’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜25ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は少なくとも2の異なる
修飾ヌクレオチドを含む;
NbおよびNb’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜10ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す;
それぞれ存在しても存在しなくてもよいnp、np’、nq、およびnq’はそれぞれ独立してオーバーハングヌクレオチドを表す;
XXX、YYY、ZZZ、X’X’X’、Y’Y’Y’、およびZ’Z’Z’はそれぞれ独立して3連続ヌクレオチド上の3つの同じ修飾の1モチーフを表し、該修飾は2’-O-メチルまたは2’-フル
オロ修飾である;
Nbの修飾はYの修飾と異なり、Nb’の修飾はY’の修飾と異なる;および
該センス鎖は少なくとも1のリガンドと結合している。]
で示されるRNAi物質を提供する。
センス: 5’np-Na-(XXX)i-Nb-YYY-Nb-(ZZZ)j-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-(X’X’X’)k-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-(Z’Z’Z’)l-Na’-nq’5’ (III)
[式中、
i、j、k、およびlはそれぞれ独立して0または1である;
それぞれ存在していてもいなくてもよいnp、nq、およびnq’はそれぞれ独立してオーバーハングヌクレオチドを表す;
p、q、およびq’はそれぞれ独立して0〜6である;
np’>0、および少なくとも1のnp’がホスホロチオエート結合を介して隣り合ったヌクレオチドと結合している;
NaおよびNa’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜25ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は少なくとも2の異なる
修飾ヌクレオチドを含む;
NbおよびNb’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜10ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す;
XXX、YYY、ZZZ、X’X’X’、Y’Y’Y’、およびZ’Z’Z’はそれぞれ独立して3連続ヌクレオチド上の3つの同じ修飾の1モチーフを表し、該修飾は2’-O-メチルまたは2’-フル
オロ修飾である;
Nbの修飾はYの修飾と異なり、Nb’の修飾はY’の修飾と異なる;および
該センス鎖は少なくとも1のリガンドと結合している。]
で示される、RNAi物質を提供する。
センス: 5’np-Na-(XXX)i-Nb-YYY-Nb-(ZZZ)j-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-(X’X’X’)k-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-(Z’Z’Z’)l-Na’-nq’5’ (III)
[式中、i、j、k、およびlはそれぞれ独立して0または1である;
それぞれ存在していてもいなくてもよいnp、nq、およびnq’はそれぞれ独立してオーバーハングヌクレオチドを表す;
p、q、およびq’がそれぞれ独立して0〜6である;
np’>0、および少なくとも1のnp’がホスホロチオエート結合を介して隣り合ったヌクレオチドと結合している;
NaおよびNa’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜25ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は少なくとも2の異なる
修飾ヌクレオチドを含む;
NbおよびNb’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜10ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す;
XXX、YYY、ZZZ、X’X’X’、Y’Y’Y’、およびZ’Z’Z’はそれぞれ独立して3連続ヌクレオチド上の3つの同じ修飾の1モチーフを表し、該修飾は2’-O-メチルまたは2’-フル
オロ修飾である;
Nbの修飾はYの修飾と異なり、Nb’の修飾はY’の修飾と異なる;および
該センス鎖は少なくとも1のリガンドと結合し、該リガンドは二価または三価の分岐鎖リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体である。]
で示されるRNAi物質を提供する。
センス: 5’np-Na-(XXX)i-Nb-YYY-Nb-(ZZZ)j-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-(X’X’X’)k-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-(Z’Z’Z’)l-Na’-nq’5’ (III)
[式中、i、j、k、およびlはそれぞれ独立して0または1である;
それぞれ存在していてもいなくてもよいnp、nq、およびnq’はそれぞれ独立してオーバーハングヌクレオチドを表す;
p、q、およびq’がそれぞれ独立して0〜6である;
np’>0、および少なくとも1のnp’がホスホロチオエート結合を介して隣り合ったヌクレオチドと結合している;
NaおよびNa’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜25ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は少なくとも2の異なる
修飾ヌクレオチドを含む;
NbおよびNb’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜10ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す;
XXX、YYY、ZZZ、X’X’X’、Y’Y’Y’、およびZ’Z’Z’はそれぞれ独立して3連続ヌクレオチド上の3つの同じ修飾の1モチーフを表し、該修飾は2’-O-メチルまたは2’-フル
オロ修飾である;
Nbの修飾はYの修飾と異なり、Nb’の修飾はY’の修飾と異なる;
該センス鎖は少なくとも1のホスホロチオエート結合を含む;および
該センス鎖は少なくとも1のリガンドと結合し、該リガンドは二価または三価の分岐鎖リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体である。]
で示されるRNAi物質を提供する。
センス: 5’np-Na -YYY-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-Y’Y’Y’-Na’-nq’5’ (IIIa)
[式中、それぞれ存在していてもいなくてもよいnp、nq、およびnq’はそれぞれ独立してオーバーハングヌクレオチドを表す;
p、q、およびq’がそれぞれ独立して0〜6である;
np’>0、および少なくとも1のnp’がホスホロチオエート結合を介して隣り合ったヌクレオチドと結合している;
NaおよびNa’はそれぞれ独立して修飾または非修飾またはそれらの組み合わせである0〜25ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は少なくとも2の異なる
修飾ヌクレオチドを含む;
YYYおよびY’Y’Y’はそれぞれ独立して3連続ヌクレオチド上の3つの同じ修飾の1モチーフを表し、該修飾は2’-O-メチルまたは2’-フルオロ修飾である;
該センス鎖は少なくとも1のホスホロチオエート結合を含む;および
該センス鎖は少なくとも1のリガンドと結合し、該リガンドは二価または三価の分岐鎖リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体である。]
で示されるRNAi物質を提供する。
基はユニバーサル塩基である。
該方法は、該対象に治療的有効量の本発明のRNAi物質、例えば2本鎖RNAi物質、組成物、ベクター、または医薬組成物を投与することにより対象を治療することを含む。
該方法は、該対象に治療的有効量の2本鎖RNAi物質を皮下投与することにより該対象を治療することを含み、該2本鎖RNAi物質は2本鎖領域を形成するセンス鎖とアンチセンス鎖を含み、該センス鎖は配列番号1、配列番号2、または配列番号3、配列番号4、配列番号5、配列番号6、配列番号7、配列番号8、配列番号9、配列番号10、または配列番号11のヌクレオチド配列のいずれかと3ヌクレオチド以下が異なる少なくとも15連続ヌクレオチドを含み、該アンチセンス鎖は配列番号15、配列番号16、または配列番号17、配列番号18、配列番号19、配列番号20、配列番号21、配列番号22、配列番号23、配列番号24、または配列番号25のヌクレオチド配列のいずれかと3ヌクレオチド以下が異なる少なくとも15連続ヌクレオチドを含み、該アンチセンス鎖の実質的にすべての該ヌクレオチドが2’-O-メチル修飾および2’-フルオロ修飾からなる群から選ばれる修飾を含み、該アンチセンス鎖が5’末端に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合、3’末端に2ホスホロチオエートヌクレ
オチド間結合を含み、該センス鎖の実質的にすべての該ヌクレオチドが2’-O-メチル修飾および2’-フルオロ修飾からなる群から選ばれる修飾を含み、該センス鎖が5’末端に2つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み、該センス鎖が3’末端の分岐鎖二価ま
たは三価リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体と結合している。
結合を含み、該センス鎖の実質的にすべての該ヌクレオチドが2’-O-メチル修飾および2’-フルオロ修飾からなる群から選ばれる修飾を含み、該センス鎖が5’末端に2つのホス
ホロチオエートヌクレオチド間結合を含み、該センス鎖が3’末端の分岐鎖二価または三価リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体と結合している。
別の態様において、該2本鎖RNAi物質を約10mg/kgの用量で投与する。さらに別の他の態様において、該2本鎖RNAi物質を約0.5mg/kgの用量で1週間に2回投与する。さらに別の態様において、該2本鎖RNAi物質を約10mg/kgの用量で隔週に投与する。さらに別の態様において、該2本鎖RNAi物質を約0.5〜約1mg/kgの用量で1週間に1回投与する。
合、3’末端に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み、該センス鎖の実質的にすべての該ヌクレオチドが2’-O-メチル修飾および2’-フルオロ修飾からなる群から選ばれる修飾を含み、該センス鎖が5’末端に2つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含
み、該センス鎖が3’末端の分岐鎖二価または三価リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体と結合している。
本発明は、例えば、1本鎖および2本鎖オリゴヌクレオチド、例えばRNAi物質、例えば2本鎖iRNA物質、標的化Serpina1などの物質を含む組成物を提供する。Serpina1発現を阻害し、Serpina1関連疾患、例えば肝疾患、例えば慢性肝疾患、肝炎、肝硬変、肝線維症、および/または肝細胞癌を治療するための本発明の組成物の使用方法も開示する。
I. 定義
、siRNAをRNA誘導サイレンシング複合体(RISC)に組み込み、1またはそれ以上のヘリカーゼがsiRNA2本鎖を解いて相補的アンチセンス鎖が標的認識をもたらすのを可能にする(Nykanen、et al.、(2001) Cell 107:309)。適切な標的mRNAと結合すると、RISC内の1またはそれ以上のエンドヌクレアーゼは標的を開裂しサイレンシングを誘導する(Elbashir、et al.、(2001) Genes Dev. 15:188)。したがって、ある局面において、本発明は、細胞内に生じた、標的遺伝子、すなわちSerpina1遺伝子のサイレンシングをもたらすRISC複合体の形成を促進する1本鎖RNA(siRNA)に関する。したがって、用語「siRNA」は、本明細書では上記RNAiについても用いる。
造を形成する各他の鎖の5’末端の間がヌクレオチドの連続した鎖以外の手段で共有結合している場合は、連結構造を「リンカー」という。RNA鎖は、同じかまたは異なる数のヌ
クレオチドを有しうる。塩基対の最大数は、dsRNAから2本鎖で存在するあらゆるオーバーハングを引いた最小鎖のヌクレオチド数である。2本鎖構造に加えて、RNAi物質は1またはそれ以上のヌクレオチドオーバーハングを含みうる。
突き出ているヌクレオチドを表す。「平滑」または「平滑末端」は、2本鎖RNAi物質の末端に不対ヌクレオチドがない、すなわちヌクレオチドオーバーハングがないことを意味する。「平滑末端」RNAi物質は、その全ての長さにわたり2本差である、すなわち該分子のいずれの末端にヌクレオチドオーバーハングがないdsRNAである。本発明のRNAi物質は、1末端にヌクレオチドオーバーハング(すなわち、1オーバーハング末端と1平滑末端を有する物質)または両末端にヌクレオチドオーバーハングを有するRNAi物質を含む。
クレオチドの相補的mRNA配列を核酸分解して、標的mRNAの開裂が生じる。したがって、ある態様において、本発明のRNAi物質のアンチセンス鎖は、アンチセンス鎖のシード領域に1ヌクレオチドミスマッチ、例えばアンチセンス鎖の5’末端末端から2〜8位のいずれかにミスマッチを含む。
表す。例えば、ポリヌクレオチドは、配列がSerpina1をコードするmRNAの非断続部分と実質的に相補的である場合はSerpina1 mRNAの少なくとも部分と相補的である。
組織試料は、組織、器官、または局所領域由来の試料を含みうる。例えば、試料は、特定の器官、器官の部分、または該器官内の液体または細胞由来でありうる。ある態様において、試料は肝臓(例えば全乾燥、または肝臓のある部分、または肝臓のある細胞種(例えば肝細胞など)由来でありうる。好ましい態様において、「対象由来の試料」は、対象由来の血液または血漿を表す。さらなる態様において、「対象由来の試料」は、対象由来の肝臓組織(またはそのサブコンポーネント)を表す。
II. 本発明のiRNA
バーハングは、1〜6ヌクレオチドの長さ、例えば、2〜6ヌクレオチドの長さ、1〜5ヌクレオチドの長さ、2〜5ヌクレオチドの長さ、1〜4ヌクレオチドの長さ、2〜4ヌクレオチドの長さ、1〜3ヌクレオチドの長さ、2〜3ヌクレオチドの長さ、または1〜2ヌクレオチドの長さでありうる。該オーバーハングは、1本鎖が他より長い結果かまたは同じ長さの2本の鎖が食い違いになっている結果でありうる。該オーバーハングは、標的mRNAとミスマッチを形成するか、または標的遺伝子配列と相補的であるか、または別の配列でありうる。第1鎖と第2鎖は、例えばヘアピンを形成するさらなる塩基により、または他の非塩基リンカーにより結合することができる。
)、2’-O-メトキシエチル-5-メチルシチジン(m5Ceo)、およびあらゆるそれらの組み合わせを含む修飾または非修飾ヌクレオチドでありうる。例えば、TTは、いずれかの鎖のいず
れかの末端がオーバーハング配列でありうる。該オーバーハングは、標的mRNAとミスマッチを形成するか、または標的遺伝子配列と相補的であるか、または別の配列でありうる。
2ヌクレオチド間にホスホロチオエートを有する2ヌクレオチドを含む。ある態様において、該オーバーハングは、該センス鎖、アンチセンス鎖、または両鎖の3’末端に存在する。ある態様において、この3’-オーバーハングは該アンチセンス鎖に存在する。ある態様
において、この3’-オーバーハングは該センス鎖に存在する。
うる。一般的には、該RNAiのアンチセンス鎖は、3’末端にヌクレオチドオーバーハングを有し、5’末端は平滑である。理論に縛られることを望まないが、該アンチセンス鎖の5
’末端の非対称平滑末端と該アンチセンス鎖の3’末端オーバーハングは、RISCプロセスにロードするガイド鎖に好都合である。
ートリーと塩基対になる塩基による置換、塩基(脱塩基ヌクレオチド)または結合塩基の除去;糖修飾(例えば、2’位または4’位)または糖の置換;および/またはホスホジエステル結合の修飾または置換を含む骨格修飾を含む。本明細書に記載の態様において有用なiR
NA化合物の具体例は、限定されるものではないが、修飾骨格を含むかまたは天然のヌクレオシド間結合を含まないRNAを含む。修飾骨格を有するRNAは、特に、該骨格中にリン原子を持たないものを含む。本明細書の目的において、当該分野で言及されることがあるように、ヌクレオシド間骨格中にリン原子を持たない修飾RNAもオリゴヌクレオシドと考えることができる。ある態様において、修飾iRNAはそのヌクレオシド間骨格中にリン原子を有するだろう。
-5’と5’-3’または2’-5’と5’-2’に結合している逆極性を有するものを含む。種々の塩、混合塩、および遊離塩形も含まれる。
アルカリルまたはO-アラルキル、SH、SCH3、OCN、Cl、Br、CN、CF3、OCF3、SOCH3、SO2CH3、ONO2、NO2、N3、NH2、ヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルカリル、アミノアルキルアミノ、ポリアルキルアミノ、置換シリル、RNA開裂基、レポーター基、インターカレーター、iRNAの薬物動態特性を改善する基、またはiRNAの薬力学的特性を改善する基、および同様の特性を有する他の置換基。ある態様において、該修飾は、2’-メトキシエトキシ(2’-O--CH2CH2OCH3、2’-O-(2-メトキシエチル)または2’-MOEとしても知られる)(Martin et al.、Helv. Chim. Acta、1995、78:486-504)、すなわち、アルコキシ-アルコ
キシ基を含む。別の典型的な修飾は、2’-ジメチルアミノオキシエトキシ、すなわち、本明細書の下記実施例に記載のO(CH2)2ON(CH3)2基(2’-DMAOEとしても知られる)、および2’-ジメチルアミノエトキシエトキシ(当該分野では2’-O-ジメチルアミノエトキシエチ
ル、または2’-DMAEOEとしても知られる)、すなわち2’-O--CH2--O--CH2--N(CH2)2を含む。
クレオチドの糖の3’位、または2’-5’結合dsRNA中、および5’末端ヌクレオチドの5’末端位になすこともできる。iRNAは、ペントフラノシル糖の代わりにシクロブチル部分な
どの糖模倣物も有しうる。そのような修飾糖構造の製造法を開示する典型的な米国特許は、限定されるものではないが、米国特許No. 4,981,957;5,118,800;5,319,080;5,359,044;5,393,878;5,446,137;5,466,786;5,514,785;5,519,134;5,567,811;5,576,427;5,591,722;5,597,909;5,610,300;5,627,053;5,639,873;5,646,265;5,658,873;5,670,633;および5,700,920を含む(このあるものは本願と共通の出願人である)。前記のそれぞれの全内容は本明細書の一部を構成する。
中のリボースを効果的に「ロックする」。siRNAにロックド核酸を付加すると、血清中のsiRNA安定性を増加し、非特異的作用を減少させることが示されている(Elmen、J. et al.、(2005) Nucleic Acids Research 33(1):439-447;Mook、OR. et al.、(2007) Mol Canc Ther 6(3):833-843;Grunweller、A. et al.、(2003) Nucleic Acids Research 31(12):3185-3193)。
本発明のある局面において、本発明の2本鎖RNAi物質は、例えば米国仮出願No. 61/561,710(2011年11月18日出願)またはPCT/US2012/065691(2012年11月16日出願)に開示されている(これらの全内容は本明細書の一部を構成する)。
’末端から11、12、13位の3連続ヌクレオチド上に3つの2’-O-メチルの少なくとも1のモチーフを含む。
2’-O-メチル修飾の少なくとも1のモチーフを含む。
メチル修飾の少なくとも1のモチーフを含む。
端が平滑であり、その他の末端が2ヌクレオチドオーバーハングを含む21ヌクレオチドのセンス鎖と23ヌクレオチドのアンチセンス鎖を含む。好ましくは、2ヌクレオチドのオーバーハングはアンチセンス鎖の3’末端にある。2ヌクレオチドのオーバーハングがアンチセンス鎖の3’末端にある場合は、3ヌクレオチドの2がオーバーハングヌクレオチドであり、第3ヌクレオチドがオーバーハングヌクレオチドの次の対のヌクレオチドである、末
端3ヌクレオチド間に2つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合がありうる。ある態様において、RNAi物質はさらにセンス鎖の5’末端とアンチセンス鎖の5’末端の両方の末端3ヌクレオチド間に2つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を有する。ある態様において、該モチーフの部分であるヌクレオチドを含むRNAi物質のセンス鎖とアンチセンス鎖のすべてのヌクレオチドは修飾ヌクレオチドである。ある態様において、各残基は独立して例えば交互モチーフ中、2’-O-メチルまたは3’-フルオロで修飾される。所望により、RNAi物質は、さらにリガンド(好ましくはGalNAc3)を含む。
ドの長さを有する第2鎖を含み、該第1鎖の3’末端と該第2鎖の5’末端は平滑末端を形成し、該第2鎖が該第1鎖よりその3’末端が1〜4ヌクレオチド長く、2本鎖領域が少なくとも
25ヌクレオチドの長さであり、該第2鎖が該第2鎖長の少なくとも19ヌクレオチドに沿って標的mRNAと十分相補的でRNAi物質を哺乳動物細胞中に導入すると標的遺伝子の発現が減少し、RNAi物質のダイサー開裂が第2鎖の3’末端を含むsiRNAを選択的に生じることにより哺乳動物における標的遺伝子の発現が減少する。所望により、RNAi物質はさらにリガンド
を含む。
の長さに応じて変化しうる。
ス-リン酸塩骨格の置換または修飾を含みうる同じまたは異なる修飾で修飾されうる。
飾は、2本鎖領域、1本鎖領域、またはその両方に生じうる。修飾は、RNAの2本鎖領域のみに生じうるか、またはRNAの1本鎖領域にのみ生じうる。例えば、非結合O位のホスホロチオエート修飾は、末端領域(例えば末端ヌクレオチドの位置)または鎖の最後の2、3、4、5、または10ヌクレオチドにのみ生じうるか、または2本鎖および1本鎖領域の特に末端に生じうる。5’末端(単数または複数)をリン酸化することができる。
ーハング中にプリンヌクレオチドを含むことが望ましいことがある。ある態様において、オーバーハング中にプリンヌクレオチドを含むことが望ましいことがある。ある態様において、3’または5’オーバーハング中のすべてまたはいくつかの塩基は例えば本明細書に記載の修飾で修飾されうる。修飾は、例えば、当該分野で知られた修飾によるリボ糖の2
’位の修飾の使用、例えば核酸塩基のリボ糖の代わりにデオキシリボヌクレオチド、2’-デオキシ-2’-フルオロ(2’-F)または2’-O-メチル修飾の使用、およびリン酸基の修飾(
例えばホスホロチオエート修飾)を含みうる。オーバーハングは標的配列とホモローガスである必要はない。
る。ある態様において、該センス鎖とアンチセンス鎖の各残基は独立して2’-O-メチルまたは2’-フルオロで修飾される。
しうる。別の例として、センス鎖とアンチセンス鎖間の修飾パターンの完全または部分的シフトがあるように、センス鎖中の交互モチーフは該鎖の5’-3’から「AABBAABB」で出発することがあり、アンチセンス鎖中の交互モチーフは2本鎖領域内の該鎖の5’-3’から
「BBAABBAA」で出発しうる。
の交互モチーフのパターンに対するシフトを有するものを含み、すなわち、センス鎖の2’-O-メチル修飾ヌクレオチドはアンチセンス鎖上の2’-F 修飾ヌクレオチドと塩基対化
する(逆もある)。センス鎖の1位は2’-F 修飾で出発することがあり、アンチセンス鎖の1位は2’-O-メチル修飾で出発しうる。
ハングヌクレオチドの次の対合ヌクレオチドである末端3ヌクレオチド間に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合がある。
族非水素結合塩基を含む。
対、例えば、非正準対合または正準対合以外、またはユニバーサル塩基を含む対合。
’末端から2本鎖領域内の最初の1、2または3塩基対の少なくとも1はAU塩基対である。例えば、アンチセンス鎖の5’末端から2本鎖領域内の最初の塩基対はAU塩基対である。
別の態様において、アンチセンス鎖の3’末端のヌクレオチドはデオキシチミン(dT)である。ある態様において、デオキシチミンヌクレオチドの短い配列、例えばセンスおよび/
またはアンチセンス鎖の3’末端の2 dTヌクレオチドがある。
5’np-Na-(XXX )i-Nb-YYY-Nb-(ZZZ )j-Na-nq 3’(I)
[式中、iおよびjはそれぞれ独立して0または1である;
pおよびqはそれぞれ独立して0〜6である;
Naはそれぞれ独立して0〜25修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は少なくとも2の異なる修飾ヌクレオチドを含む;
Nbはそれぞれ独立して0〜10修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す; NpおよびNqそれぞれ独立してオーバーハングヌクレオチドを表す;
NbおよびYは同じ修飾を有さない;および
XXX、YYY、およびZZZはそれぞれ独立して3連続ヌクレオチド上の3つの同じ修飾の1モチーフを表す。]。好ましくは、YYYはすべて2’-F 修飾ヌクレオチドである。
5’np-Na-YYY-Nb-ZZZ-Na-nq 3’(Ib);
5’np-Na-XXX-Nb-YYY-Na-nq 3’(Ic);または
5’np-Na-XXX-Nb-YYY-Nb-ZZZ-Na-nq 3’(Id)。
5’np-Na-YYY-Na-nq 3’(Ia)
で示されうる。
5’nq’-Na’-(Z’Z’Z’)k-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-(X’X’X’)l-N’a-np’3’(II)
[式中、kおよびlはそれぞれ独立して0または1である;
p’およびq’はそれぞれ独立して0〜6である;
Na’はそれぞれ独立して0〜25修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は
少なくとも2の異なる修飾ヌクレオチドを含む;
Nb’はそれぞれ独立して0〜10修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す;
Np’およびnq’はそれぞれ独立してオーバーハングヌクレオチドを表す;
Nb’およびY’は同じ修飾を有さない;および
X’X’X’、Y’Y’Y’およびZ’Z’Z’はそれぞれ独立して3連続ヌクレオチド上の3つの同じ修飾の1モチーフを表す。]。
ンチセンス鎖の9、10、11位;10、11、12位;11、12、13位;12、13、14位;または13、14、15位に生じうる(5’末端から第1ヌクレオチドから数え始めるか、または所望により、5’末端から2本鎖領域内の第1対合ヌクレオチドから数え始める)。
5’nq’-Na’-Z’Z’Z’-Nb’-Y’Y’Y’-Na’-np’3’(IIb);
5’nq’-Na’-Y’Y’Y’-Nb’-X’X’X’-np’3’(IIc);または
5’nq’-Na’-Z’Z’Z’-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-X’X’X’-Na’-np’3’(IId)。
れぞれ独立して2〜20、2〜15、または2〜10 修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す。
れぞれ独立して2〜20、2〜15、または2〜10 修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す。
を表す。Na’はそれぞれ独立して2〜20、2〜15、または2〜10 修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す。好ましくは、Nbは0、1、2、3、4、5または6である。
5’np’-Na’-Y’Y’Y’-Na’-nq’3’(Ia)
で示される。
チドは、それぞれ独立して2’-O-メチルまたは2’-フルオロで修飾される。特に各X、Y、Z、X’、Y’およびZ’は2’-O-メチル 修飾または2’-フルオロ修飾を表しうる。
る。Yは2’-F 修飾を表す)。センス鎖はさらに2本鎖領域の反対側の末端にウイング修飾としてXXXモチーフまたはZZZモチーフを含むことがあり、XXXおよびZZZはそれぞれ独立して2’-OMe 修飾または2’-F 修飾を表す。
端から2本鎖領域内の第1対合ヌクレオチドから数え始める。Y’は2’-O-メチル修飾を表す。)。アンチセンス鎖はさらに2本鎖領域の反対側の末端にウイング修飾としてX’X’X
’モチーフまたはZ’Z’Z’モチーフを含むことがあり、X’X’X’およびZ’Z’Z’はそれぞれ独立して2’-OMe 修飾または2’-F 修飾を表す。
センス: 5’np-Na-(XXX)i-Nb-YYY-Nb-(ZZZ)j-Na-nq 3’
アンチセンス: 3’np’-Na’-(X’X’X’)k-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-(Z’Z’Z’)l-Na’-nq’5'
(III)
[式中、i、j、k、およびlはそれぞれ独立して0または1である;
p、p’、q、およびq’はそれぞれ独立して0〜6である;
NaおよびNa’はそれぞれ独立して0〜25 修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は少なくとも2の異なる修飾ヌクレオチドを含む;
NbおよびNb’はそれぞれ独立して0〜10 修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す;
それぞれNp’、np、nq’、およびnq(それぞれ存在していてもいなくてもよい)は独立してオーバーハングヌクレオチドを表す;および
XXX、YYY、ZZZ、X’X’X’、Y’Y’Y’、およびZ’Z’Z’はそれぞれ独立して3連続ヌクレオチド上の3つの同じ修飾の1モチーフを表す。]。
5’np-Na-YYY-Na-nq 3’
3’np’-Na’-Y’Y’Y’-Na’nq’5’
(IIIa)
5’np-Na-YYY-Nb-ZZZ-Na-nq 3’
3’np’-Na’-Y’Y’Y’-Nb’-Z’Z’Z’-Na’nq’5’
(IIIb)
5’np-Na-XXX-Nb-YYY-Na-nq 3’
3’np’-Na’-X’X’X’-Nb’-Y’Y’Y’-Na’-nq’5'
(IIIc)
5’np-Na-XXX-Nb-YYY-Nb-ZZZ-Na-nq 3’
3’np’-Na’-X’X’X’-Nb’-Y’Y’Y’-Nb’-Z’Z’Z’-Na-nq’5’
(IIId)。
表す。それぞれNa は独立して2〜20、2〜15、または2〜10 修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す。
表す。Na、Na’はそれぞれ独立して2〜20、2〜15、または2〜10 修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表す。Na、Na’、NbおよびNb’はそれぞれ独立して交互パターンの修飾を含む。
2が対応するZ’ヌクレオチドと塩基対を形成するか;またはZヌクレオチドの3つすべてがすべて対応するZ’ヌクレオチドと塩基対を形成する。
2が対応するX’ヌクレオチドと塩基対を形成するか、またはXヌクレオチドの3つすべてがすべて対応するX’ヌクレオチドと塩基対を形成する。
ある態様において、Yヌクレオチドの修飾はY’ヌクレオチドの修飾と異なり、Zヌクレオチドの修飾はZ’ヌクレオチドの修飾と異なり、および/またはXヌクレオチドの修飾はX’
ヌクレオチドの修飾と異なる。
の態様において、RNAi物質が式(IIId)で示される場合は、Na修飾は2’-O-メチルまたは2’-フルオロ修飾であり、np’>0であり、少なくとも1のnp’が隣り合ったヌクレオチド
とホスホロチオエート結合を介して結合しており、センス鎖は二価または三価の分岐鎖リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体と結合している。別の態様において、RNAi物質が式(IIId)で示される場合は、Na修飾は2’-O-メチルまたは2’-フルオロ修飾であり、np’>0であり、少なくとも1のnp’は隣り合ったヌクレオチドとホスホロチ
オエート結合を介して結合しており、センス鎖は二価または三価の分岐鎖リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体と結合している。
リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体と結合している。
該リンカーは開裂性または非開裂性でありうる。所望により、該マルチマーはさらにリガンドを含む。各2本鎖は、同じ遺伝子または2つの異なる遺伝子を標的とすることができるか、または各2本鎖は2つの異なる標的部位の同じ遺伝子を標的とすることができる。
できるか、または各該物質は2つの異なる標的部位の同じ遺伝子を標的とすることができる。
A. リガンド
ドはセンス鎖の3’末端と結合する。好ましい態様において、リガンドはGalNAc リガンドである。特に好ましい態様において、リガンドはGalNAc3:
である。
と結合する:
[式中、XはOまたはSである。]。ある態様において、XはOである。
選択した標的に対する親和性の増強をもたらすリガンドは標的化リガンドともいう。
例えば、グリコシル化RGDペプチドは、αVβ3発現腫瘍細胞にiRNA物質を送達することができる(Haubner et al.、Jour. Nucl. Med.、42:326-336、2001)。増殖細胞中に豊富化されたマーカーを標的とするペプチドを用いることができる。例えば、ペプチドおよびペプチド模倣物を含むRGDは癌細胞、特にインテグリンを提示する細胞を標的とすることができる。したがって、RGD ペプチド、RGDを含む環状ペプチド、D-アミノ酸を含むRGDペプチド、および合成RGD模倣物を用いうる。RGDに加えて、インテグリンリガンドを標的とする他の部分を用いることができる。一般的には、そのようなリガンドを用いて増殖細胞および血管新生を制御することができる。好ましいこのタイプのリガンドのコンジュゲートは、PECAM-1、VEGF、または他の癌遺伝子、例えば本明細書に記載の癌遺伝子を標的とする。
天然または修飾ペプチド、例えば、DまたはL-ペプチド;α、β、またはγペプチド;N-メチルペプチド;アザペプチド;1またはそれ以上のアミドを有するペプチド、すなわち結合が1またはそれ以上のウレア、チオウレア、カルバメート、またはスルホニル尿素結合で置換したペプチド;または環状ペプチドを揺するものを含む。
テザー、例えば本明細書に記載の担体を介してオリゴヌクレオチドと結合する。リガンドまたはデザードリガンドは、モノマーを成長している鎖に組み込むとモノマー上に存在しうる。ある態様において、リガンドは、「前駆体」モノマーを成長している鎖内に組み込んだ後に「前駆体」モノマーにカップリングにより組み込むことができる。例えば、アミノ終端テザー(すなわち、結合リガンドがない)を有するモノマー(例えばTAP-(CH2)nNH2)を、成長しているオリゴヌクレオチド鎖に組み込むことができる。次の操作において(すなわち前駆体モノマーを該鎖に組み込んだ後に)、求電子基、例えばペンタフルオロフェニルエステルまたはアルデヒド基を有するリガンドを、リガンドの求電子基と前駆体モノマーのテザーの末端求核基をカップリングすることにより前駆体モノマーに結合させることができる。
ある態様において、2本鎖iRNA物質はセンス鎖と結合したリガンドを含む。他の態様において、2本鎖iRNA物質はアンチセンス鎖と結合したリガンドを含む。
含有結合(例えばホスホジエステル、ホスホロチオエート、ホスホロジチオテート、ホスホロアミデートなど)では、コンジュゲート部分はリン原子、またはリン原子と結合したO、N、またはS原子と直接結合することができる。アミンまたはアミド含有ヌクレオシド間結合(例えばPNA)では、コンジュゲート部分はアミンまたはアミドの窒素原子または隣り合った炭素原子と結合することができる。
[式中、q2A、q2B、q3A、q3B、q4A、q4B、q5A、q5B、およびq5Cは独立して存在ごとに0〜20を表し、反復単位は同じかまたは異なりうる;
P2A、P2B、P3A、P3B、P4A、P4B、P5A、P5B、P5C、T2A、T2B、T3A、T3B、T4A、T4B、T4A、T5B、T5Cは、それぞれ独立して存在ごとに、無か、CO、NH、O、S、OC(O)、NHC(O)、CH2、CH2NH、またはCH2Oである;
Q2A、Q2B、Q3A、Q3B、Q4A、Q4B、Q5A、Q5B、Q5Cは、独立して存在ごとに、無か、アルキレン、置換アルキレン(ここで、1またはそれ以上のメチレンはO、S、S(O)、SO2、N(RN)、C(R’)=C(R”)、C=C、またはC(O)の1またはそれ以上で断続または終端しうる。); R2A、R2B、R3A、R3B、R4A、R4B、R5A、R5B、R5Cは、それぞれ独立して存在ごとに、無
か、NH、O、S、CH2、C(O)O、C(O)NH、NHCH(Ra)C(O),-C(O)-CH(Ra)-NH-、CO、CH=N-O、
、またはヘテロサイクリルである;
L2A、L2B、L3A、L3B、L4A、L4B、L5A、L5BおよびL5Cはリガンドを表す(すなわち、それぞれ独立して存在ごとに単糖(例えばGalNAc)、二糖、三糖、四糖、オリゴ糖、または多糖);および
RaはHまたはアミノ酸側鎖である。]。
[式中、L5A、L5B、およびL5Cは、単糖、例えばGalNAc誘導体を表す。]。
III. 本発明のiRNAの送達
A. 本発明のiRNAをコードするベクター
複製欠陥ウイルスも好都合でありうる。異なるベクターが細胞のゲノムに組み込まれるかまたは組み込まれないだろう。該構築物は所望によりトランスフェクションのためのウイルス配列を含むことができる。あるいはまた、該構築物はエピソーム複製を可能にするベクター、例えばEPVおよびEBVベクターに組み込むことができる。iRNAを組換え発現させるための構築物は、一般的には標的細胞中でのiRNAの発現を保証するために調節エレメント、例えばプロモーター、エンハンサーなどを必要とするだろう。ベクターおよび構築物のために検討する他の局面をさらに以下に記載する。iRNAを送達するのに有用なベクターは、望む標的細胞または組織中でiRNAを発現させるのに充分な調節エレメント(プロモーター、エンハンサーなど)を含むだろう。調節エレメントは、構成的発現または調節/誘導性発現のいずれかをもたらすよう選ぶことができる。
ある態様において、iRNAは、例えばU6またはH1 RNAプロモーターまたはサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターを有する組換えAAVベクターから2つの分離した相補的1本鎖RNA分子を発現することができる。本発明のdsRNAを発現するのに適したAAVベクター、組換えAVベクターの構築方法、および該ベクターの標的細胞への送達方法は以下に記載されている:Samulski R et al.(1987)、J. Virol. 61: 3096-3101;Fisher K J et al.(1996)、J. Virol、70: 520-532;Samulski R et al.(1989)、J. Virol. 63: 3822-3826;米国特許No. 5,252,479;米国特許No. 5,139,941;国際特許出願No. WO 94/13788;および国際特許出願No. WO 93/24641(これらの内容は本明細書の一部を構成する)。
III. 本発明の医薬組成物
iRNAを含む医薬組成物は、Serpina1遺伝子の発現または活性と関連する疾患または障害、例えば、Serpina1欠乏関連疾患、例えばSerpina1欠乏肝疾患を治療するのに有用である。
そのような医薬組成物は送達方法に基づいて処方する。一例は、非経口送達(例えば静脈内(IV)送達により)を介して全身投与するために処方される組成物である。別の例は、例えば連続ポンプ注入などにより脳内に注入することにより脳実質中に直接送達するために処方する組成物である。
A. 膜分子アセンブリを含むiRNA製剤
正に荷電した核酸/リポソーム複合体は、負に荷電した細胞表面と結合し、エンドソームに内部移行する。エンドソーム内の酸性pHによりリポソームは破裂し、その内容物を細胞質中に放出する(Wang et al.、Biochem. Biophys. Res. Commun.、1987、147、980-985)。
一般的には、そのHLB値はその構造に応じて2〜約18の範囲である。非イオン性界面活性剤は、非イオン性エステル、例えば、エチレングリコールエステル、プロピレングリコールエステル、グリセリルエステル、ポリグリセリルエステル、ソルビタンエステル、スクロースエステル、およびエトキシル化エステルを含む。非イオン性アルカノールアミドおよびエーテル、例えば脂肪アルコールエトキシレート、プロポキシル化アルコール、およびエトキシル化/プロポキシル化ブロックポリマーもこのクラスに含まれる。ポリオキシエチレン界面活性剤は、非イオン性界面活性剤クラスの最も一般的なメンバーである。
B. 脂質粒子
ノ)エチル)ピペラジン-1-イル)エチルアザネジイル)ジドデカン-2-オール(Tech G1)、またはその混合物。カチオン性脂質は、粒子中に存在する総脂質の約20mol%〜約50mol%または約40mol%を含みうる。
望む粒子サイズ分布に応じて得られるナノ粒子混合物をサーモバレルエクストローダー(例えばLipex Extruder(Northern Lipids、Inc))などを用いポリカーボネート膜(例えば100nmカットオフ)を通して押し出すことができる。場合により押出工程を省略することができる。エタノール除去および同時の緩衝液交換は例えば透析または接線流ろ過により達成することができる。緩衝液は例えば約pH7、例えば約pH6.9、約pH7.0、約pH7.1、約pH7.2、約pH7.3、または約pH7.4のリン酸緩衝生理食塩水(PBS)と交換することができる。
式1
表A.
DSPC: ジステアロイルホスファチジルコリン
DPPC: ジパルミトイルホスファチジルコリン
PEG-DMG: PEG-ジジミリストイルグリセロール(C14-PEGまたはPEG-C14)(平均mol wt2000のPEG)
PEG-DSG: PEG-ジスチリルグリセロール(C18-PEGまたはPEG-C18)(平均mol wt2000のPEG)
PEG-cDMA:PEG-カルバモイル-1,2-ジミリスチルオキシプロピルアミン(平均mol wt2000のPEG)
LNP(l,2-ジリノレニルオキシ-N,N-ジメチルアミノプロパン(DLinDMA))含有製剤は、国際公開公報No. WO2009/127060(2009年4月15日出願)に記載されている(この内容は本明細書の一部を構成する)。
イオン性/カチオン性脂質の合成
すべての置換基は特記しない限り下記の通りである。
式Aの合成
[式中、R1およびR2は、独立してアルキル、アルケニルまたはアルキニルであり、それぞれが所望により置換されうる。R3およびR4は独立して低級アルキルであるかまたはR3およびR4は一緒になって所望により置換された複素環を形成しうる。]。ある態様において、該カチオン性脂質はXTC(2,2-ジリノレイル-4-ジメチルアミノエチル-[1,3]-ジオキソラン)である。一般的には、式Aの脂質は下記反応式1または2により製造することができる(ここで、すべての置換基は特記しない限り上記と同意義である。)。
反応式1
ケタール3のアミン4による処理は式Aの脂質を生じる。式Aの脂質は式5の有機塩を用いて対応するアンモニア塩に変換することができる(ここで、Xはハロゲン、ヒドロキシド、ホスフェート、またはサルフェートなど、から選ばれるアニオン対イオンである)。
反応式2
MC3の合成
ALNY-100の合成
516の合成
517Aおよび517Bの合成
517A-ピーク-1(白色固体)、5.13 g(96%). 1H-NMR(DMSO、400MHz):δ= 7.39-7.31(m、5H)、5.04(s、2H)、4.78-4.73(m、1H)、4.48-4.47(d、2H)、3.94-3.93(m、2H)、2.71(s、3H)、1.72-1.67(m、4H). LC-MS-[M+H]-266.3、[M+NH4 +]-283.5存在、HPLC-97.86%。立体化学をX線で確認した。
518の合成
化合物519を合成するための一般的手順
例えば、製剤を典型的には目視検査で特徴づける。製剤は凝集物や沈殿物を含まない白色半透明溶液であるべきである。脂質ナノ粒子の粒子サイズと粒子サイズ分布は、例えばMalvern Zetasizer Nano ZS(Malvern、USA)を用いる光散乱により測定することができる。
粒子は約20〜300nm、例えば40〜100nmのサイズであるべきである。粒子サイズ分布は単峰型であるべきである。該製剤および取り込み分画中の総dsRNA濃度を色素排除アッセイを用いて評価する。製造したdsRNAの試料を、製剤を破壊する界面活性剤、例えば0.5% Triton-X100の存在下または非存在下でRibogreen(Molecular Probes)などのRNA結合色素とインキュベーションすることができる。製剤中の総dsRNAを界面活性剤を含む試料からのシグナルと標準曲線と比較することにより測定することができる。取り込み分画を「遊離」dsRNA含有量(界面活性剤非存在下のシグナルで測定)を総dsRNA含有量から引いて決定する。取り込みdsRNAパーセントは典型的には>85%である。LNP製剤では、粒子サイズは、少なくとも30nm、少なくとも40nm、少なくとも50nm、少なくとも60nm、少なくとも70nm、少なくとも80nm、少なくとも90nm、少なくとも100nm、少なくとも110nm、および少なくとも120nmである。適切な範囲は、典型的には約少なくとも50nm〜約少なくとも110nm、約少なくとも60nm〜約少なくとも100nm、または約少なくとも80nm〜約少なくとも90nmである。
増粘剤、香味料、希釈剤、乳化剤、分散助剤、または結合剤が望ましい。ある態様において、経口用製剤は、本発明のdsRNAsを1またはそれ以上の浸透促進剤、界面活性剤、およびキレート剤と組み合わせて投与するものである。適切な界面活性剤は、脂肪酸および/またはそのエステルまたは塩、胆汁酸および/またはその塩を含む。適切な胆汁酸/塩は、ケノデオキシコール酸(CDCA)およびウルソデオキシケノデオキシコール酸(UDCA)、コール酸、デヒドロコール酸、デオキシコール酸、グルコール酸、グリコール酸、グリコデオキシコール酸、タウロコール酸、タウロデオキシコール酸、ナトリウムタウロ-24,25-ジヒドロ-フシデート、およびナトリウムグリコジヒドロフシデートを含む。適切な脂肪酸は、アラキドン酸、ウンデカン酸、オレイン酸、ラウリン酸、カプリル酸、カプリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、リノール酸、リノレン酸、ジカプレート、トリカプレート、モノオレイン、ジラウリン、グリセリル1-モノカプレート、1-ドデシルアザシクロヘプタン-2-オン、アシルカルニチン、アシルコリン、またはモノグリセリド、ジグリセリドまたはその医薬的に許容される塩(例えばナトリウム)を含む。ある態様において、浸透促進剤の組み合わせは、例えば脂肪酸/塩と胆汁酸/塩の組み合わせを用いる。
ある典型的な組み合わせは、ラウリン酸、カプリン酸、およびUDCAのナトリウム塩である。さらなる浸透促進剤は、ポリオキシエチレン-9-ラウリルエーテル、ポリオキシエチレン-20-セチルエーテルを含む。本発明のDsRNAはスプレー乾燥粒子を含む顆粒型でまたは複合して微小またはナノ粒子を形成して経口送達することができる。dsRNA複合剤は、ポリ-アミノ酸;ポリイミン;ポリアクリレート;ポリアルキルアクリレート、ポリオキシエタン、ポリアルキルシアノアクリレート;カチオン性ゼラチン、アルブミン、デンプン、アクリレート、ポリエチレングリコール(PEG)、およびデンプン;ポリアルキルシアノアクリレート;DEAE複合化ポリイミン、ポルラン、セルロース、およびデンプンを含む。
適切な複合剤は以下のものを含む:キトサン、N-トリメチルキトサン、ポリ-L-リジン、ポリヒスチジン、ポリオルニチン、ポリスペルミン、プロタミン、ポリビニルピリジン、ポリチオジエチルアミノメチルエチレンP(TDAE)、ポリアミノスチレン(例えば、p-アミノ)、ポリ(メチルシアノアクリレート)、ポリ(エチルシアノアクリレート)、ポリ(ブチルシアノアクリレート)、ポリ(イソブチルシアノアクリレート)、ポリ(イソヘキシルシアノアクリレート)、DEAE-メタクリレート、DEAE-ヘキシルアクリレート、DEAE-アクリルアミド、DEAE-アルブミンおよびDEAE-デキストラン、ポリメチルアクリレート、ポリヘキシルアクリレート、ポリ(D,L-乳酸)、ポリ(DL-乳酸-コ-グリコール酸(PLGA)、アルギネート、およびポリエチレングリコール(PEG)。dsRNAおよびその調製物の経口用製剤は、米国特許6,887,906、米国公開公報No. 20030027780、および米国特許No. 6,747,014に詳述されている(これらの内容は本明細書の一部を構成する)。
C. さらなる製剤
i. エマルジョン
ii. 微小エマルジョン
iii. 微小粒子
iv. 浸透促進剤
v. 担体
d Drug Dev.、1996、6、177-183)。
vi. 賦形剤
vii. 他の成分
IV. Serpina1発現の阻害方法
{(コントロール細胞のmRNA)−(処置細胞のmRNA)}・100%
(コントロール細胞のmRNA)
を用いてコントロール細胞中のmRNAレベルのパーセンテージで表すことにより評価する。
該部位は、特定種のレセプターを発現する細胞も含みうる。
V. Serpina1関連疾患の治療または予防方法
前記値の中間の値と範囲も本発明の部分であることを意図し、例えばRNAi物質を約0.015mg/kg〜約0.45mg/mgの用量で対象に投与することができる。
VI. キット
材料と方法
以下の材料と方法を実施例に用いた。
siRNAデザイン
Serpinal遺伝子は複数の交互転写産物を有する。NCBI遺伝子データベース(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene/)に注記されたすべてのヒトおよびカニクイザル(Macaca fascicularis;以後「cyno」)Serpinal転写産物を標的とするsiRNAを同定するためにsiRNAデザインを実施した。NCBI RefSeqコレクション由来の下記のヒト転写産物を用いた:Human-NM 000295.4、NM_001002235.2、NM_001002236.2、NM_001127700.1、NM_001127701.1、NM_001127702.1、NM_001127703.1、NM_001127704.1、NM_001127705.1、NM_001127706.1、NM_001127707.1。cyno転写産物を同定するためアカゲザル(Macaca mulatta)転写産物XM_001099255.2をSpideyアラインメントツール(www.ncbi.nlm.nih.gov/spidey/)を用いてM. fascicularisゲノムとアラインメントした。アカゲザルとcyno転写産物の全同一性パーセントは99.6%であった。コンセンサススプライス部位および完全長コーディングおよび非翻訳領域を保存するため、cyno転写産物をハンドアセンブルした。得られた転写産物は2064ヌクレオチド長であった。
siRNA合成
I. 一般的小および中規模RNA合成手順
イソプロピル)ホスホラミダイトモノマー、4-N-アセチルシチジン、6-N-ベンゾイルアデノシンおよび2-N-イソブチリルグアノシンン、および対応する2’-O-メチルおよび2’-フルオロホスホラミダイトを用いてRNAオリゴヌクレオチドを0.2〜500μmolの規模で合成し
た。該アミダイト溶液を0.1〜0.15M濃度で調製し、5-エチルチオ-1H-テトラゾール(アセトニトリル中0.25〜0.6M)を活性化剤として用いた。ルチジン:アセトニトリル(1:1)(v;v)中の0.2Mフェニルアセチルジスルフィド(PADS)、またはピリジン中の0.1M 3-(ジメチルアミノメチレン)アミノ-3H-1,2,4-ジチアゾール-5-チオン(DDTT)を酸化工程に用いて合成中にホスホロチオエート骨格修飾を導入した。合成が完結した後、該配列を固体支持体から開裂し、メチルアミン、次いでトリエチルアミン.3HFを用いて存在するあらゆる2’-O-t-ブチルジメチルシリル保護基を除去し脱保護した。
〜32%)水性アンモニアを用い、35℃で16hまたは55℃で5.5h脱保護した。アンモニア脱保護前に、オリゴヌクレオチドを固体支持体上で20分間アセトニトリルの0.5Mピペリジンで処理した。粗オリゴヌクレオチドをLC-MSおよび陰イオン交換HPLC(IEX-HPLC)により分析した。オリゴヌクレオチドの精製は、20mMリン酸塩、10%〜15%ACN、pH=8.5(緩衝液A)および20mMリン酸塩、10%〜15%ACN、1M NaBr、pH=8.5(緩衝液B)を用いるIEX HPLCにより行った。分画の純度を分析的HPLCにより分析した。適切な純度の生成物を含む分画をプールし、ロータリー蒸発装置で濃縮し、次いで脱塩した。試料をサイズ排除クロマトグラフィで脱塩し、凍結乾燥にて乾燥させた。等モル量のセンスおよびアンチセンス鎖を1xPBS緩衝液中でアニールし、対応するsiRNA2本鎖を作製した。
60℃で30minインキュベーションするか、または3:1(v/v)エタノールおよび濃(28〜32%)水性アンモニアを用い室温で30〜60min、次いで40℃で1.5時間インキュベーションして脱保護した。次に、粗オリゴヌクレオチドをアセトニトリル:アセトン(9:1)溶液中で沈殿させ、次いで遠心分離し、上清をデカントして精製した。粗オリゴヌクレオチドペレットを20mM NaOAc緩衝液に再懸濁し、LC-MSおよび陰イオン交換HPLCにより分析した。粗オリゴヌクレオチド配列を5mL HiTrap Sephadex G25カラム(GE Healthcare)を用い96深ウェルプレート中で脱塩した。各ウェル中に個々の配列に対応する約1.5mL試料を回収した。これらの精製し脱塩したオリゴヌクレオチドをLC-MSおよび陰イオン交換クロマトグラフィで分析した。Tecanロボットを用いて等量のセンスおよびアンチセンス配列をアニールして2本鎖を作製した。2本鎖の濃度を1xPBS緩衝液で10μMに調整した。
II. in vivo分析用のGalNAc結合オリゴヌクレオチドの合成
理した固体支持体およびテザーを介して結合したGalNAcリガンドを用いて0.2〜500μmol規模で合成した。5〜500μmol規模のGalNAcコンジュゲートを合成するため、RNAの上記合成プロトコルに次いで以下を適用した:ポリスチレンベースの合成支持体についてトルエン中の5%ジクロロ酢酸を合成中のDMT開裂に用いた。支持体からの開裂と脱保護は上記のごとく行った。ホスホロチオエート豊富配列(通常>5ホルホロチオエート)を最終5’-DMT基を除去せずに合成し(「DMT-オン」)、上記のごとく開裂および脱保護した後に水中の50mM酢酸アンモニウム(緩衝液A)および80%アセトニトリル中の50mM酢酸アンモニウム(緩衝液B)を用いる逆相HPLCで精製した。分画の純度を分析的HPLCおよび/またはLC-MSで分析した。適切な純度の生成物含有分画をプールし、ロータリー蒸発装置で濃縮した。DMT基を完結するまで水中の20%〜25%酢酸を用いて除去した。試料をサイズ排除クロマトグラフィで脱塩し、次いで凍結乾燥にて乾燥した。等モル量のセンスおよびアンチセンス鎖を1xPBS緩衝液中でアニールし、対応するsiRNA2本鎖を作製した。
むプレパックドカラムを用いて合成を行った。
ABI用量cDNA逆転写キット(Applied Biosystems、Foster City、CA、Cat #4368813)を用いるcDNA合成
細胞培養およびトランスフェクション
細胞を24時間インキュベーションし、次いでRNA精製した。単用量実験は10nMおよび0.1nM最終2本鎖濃度で行い、用量反応実験は10、1.67、0.27、0.046、0.0077、0.0013、0.00021、0.00004nMの最終2本鎖濃度で行った。
自由取り込みトランスフェクション
DYNABEADS mRNA単離キット(Invitrogen、part #:610-12)を用いる総RNA単離
磁気ビーズを磁気スタンドを用いて捕捉し、ビーズをかき乱さずに上清を除去した。上清を除去した後、溶解した細胞を残るビーズに加え、5分間混合した。上清を除去した後、磁気ビーズを150μl洗浄緩衝液Aで2回洗浄し、1分間混合した。ビーズを再度捕捉し、上清を除去した。次にビーズを150μl洗浄緩衝液Bで洗浄し、捕捉し、次いで上清を除去した。次に、ビーズを150μl溶出緩衝液で洗浄し、捕捉し、次いで上清を除去した。ビーズを2分間乾燥させた。乾燥後、50μlの溶出緩衝液を加え、70℃で5分間混合した。ビーズを磁石で5分間捕捉した。50μlの上清を除去し、別の96ウェルプレートに加えた。
リアルタイムPCR
0)である。
カニクイザルSerpina1およびGapdh TaqManプライマーおよびプローブ:
Serpina1:フォワードプライマー:ACTAAGGTCTTCAGCAATGGG(配列番号34);リバースプライマー:GCTTCAGTCCCTTTCTCATCG(配列番号35);Taqmanプローブ:TGGTCAGCACAGCCTTATGCACG(配列番号36)
Gapdh:フォワードプライマー:GCATCCTGGGCTACACTGA(配列番号37);リバースプライマー:TGGGTGTCGCTGTTGAAGTC(配列番号38);Taqmanプローブ:CCAGGTGGTCTCCTCC(配列番号39)。
表B:核酸配列表示に用いたヌクレオチドモノマーの略語
Serpina1 mRNAの配列にわたる一連のsiRNA2本鎖を、設計し、合成し、上記技術を用いてセンス鎖の3末端の三価GalNAcと結合させた。これら2本鎖の配列を表1に示す。種々のヌクレオチド修飾を有するこれらの同じ配列も合成し、三価GalNAcと結合した。修飾2本鎖の配列を表2に示す。
表1.Serpina1非修飾配列
上記の単用量アッセイにおけるこれら2本鎖のサブセットの有効性を評価した。表3は、示したGalNAC結合修飾iRNAでトランスフェクションした初代マウス肝細胞(Hep3b)における単用量スクリーニングの結果と、示したGalNAC結合修飾iRNAの初代カニクイザル肝細胞(PCH)における単用量自由取り込みスクリーニングの結果を示す。データは、Hep3B実験は非標識コントロール、AD-1955処理細胞に対する、またはPCH実験はナイーブ細胞に対する残存メッセージの割合で示す。
簡単には、トランスジェニックマウスに、第0日に表5に記載のiRNAの20mg/kg単用量を皮下注射した。血清を第-10、-5、0、3、5、7、10、および17日に採取し、循環Serpina1タンパク質の量をヒト特異的ELISAアッセイを用いて測定した。これらの分析結果を図1に示す。図1に示すように、AD-58681-6PSがこれらマウスの血清Serpina1タンパク質レベルを減少させるのに最も有効であった。
低IC50値の先の実施例に記載の5つのsiRNA2本鎖の効果をin vivoで試験した。siRNA2本鎖を、AAT-欠乏関連肝疾患の確立されたモデルであるヒトZ-AAT対立遺伝子を発現するトランスジェニックマウスに10mg/kgで注射した。マウスに第0日に投与し、血清ヒトAATを投与後21日間追跡した(図2A)。各点は、3匹のマウスの平均を表し、誤差バーは標準偏差を示す。マウスを第21日に屠殺し、肝臓を処理してmRNAレベルを測定した。グラフは、各群のGAPDHに対して正規化したhAAT mRNAを示す(図2B)。バーは平均を示し、誤差バーは標準偏差を示す。図2Aおよび2Bに示すように、AD59054がマウスのhAAT mRNAレベルを減少させるのに最も有効であった。
AAT-欠乏関連肝疾患のトランスジェニック動物モデルにおけるsiRNA2本鎖AD-59054の効果を種々の用量のsiRNA2本鎖AD-59054を皮下投与することにより測定した。種々の時間間隔で血清を採取し、ヒトAAT特異的ELISAを用いて血清hAATタンパク質レベルを測定した。
マウスで試験した種々の用量で達成された最大ノックダウンを示す効果曲線を図3Aに示す。各点は3匹のマウスの平均を示し、誤差バーは標準偏差を示す。AAT siRNAの0.3、1、3、または10mg/kgの単回投与後のノックダウンの持続時間を図3Bに示す。各データ点は3匹の動物平均であり、誤差バーは標準偏差を表す。hAATレベルは各動物の3回の前採血の平均に対して正規化した。siRNAをPBSを用いて投与し、したがって、PBS群を血清hAATレベルの変動性を示すコントロールに用いた。AAT siRNAの皮下投与は、血清hATTの用量依存性阻害をもたらし、3mg/kgの用量で>95%の最大阻害が得られた。1mg/kgの単用量は、40%レベルのhAATを少なくとも15日間維持した。また、動物にAD-59054を0.5mg/kgの用量で週2回投与した(図3C)。反復投与は蓄積反応と90%を超えるタンパク質抑制をもたらす。
各データ点は動物4匹の平均であり、誤差バーは標準偏差を示す。
トランスジェニックヒトZ-AAT発現マウスは加齢に伴って腫瘍を発現する。この実験は、この加齢マウスへの本発明のsiRNAの慢性投与がマウスの腫瘍発生率を減少させることができるか否かを決定するために計画した。具体的には、繊維化肝の加齢マウス(25〜46週齢)にsiRNA2本鎖AD-58681を慢性投与すると肝腫瘍の発生率が減少した。動物にPBSまたは10mg/kg AAT siRNAを隔週(Q2W)で11用量皮下投与し、最終投与後7日に屠殺した(図4A)。コントロールおよび処置群のhAAT mRNA、Col1a2 mRNA、およびPtPrc mRNAの肝臓レベルを測定した。AAT siRNA処置動物は、hAAT mRNAレベルの90%より高い減少を示した(図4B)。Col1a2 mRNAを線維症のマーカーとして測定し、このマーカーレベルはAAT siRNA処置動物で減少した(図4C)。PtPrc(CD45) mRNAを免疫細胞の存在に対するマーカーとして測定した(図4D)。罹患した肝臓では免疫細胞がより浸潤しており、図4Dに示すように動物をAAT siRNAで処置するとPtPrc mRNAレベルが有意に減少した。
上記のごとく、AD-59054は、in vivoで用量反応的なAATの永続的抑制を示した。しかしながら、AD-59054のヌクレオチド配列は、一般的な単ヌクレオチド多形(SNP)を含むAAT mRNA中の領域に及ぶ(参考SNP登録No.:rs1303(例えば、www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/SNP参照))。具体的には、SNPの位置は、AD-59054のアンチセンス鎖中の6位(5’から3’に)(すなわちAD-59054のシード領域内)のヌクレオチドに対応する。したがって、シード領域内のミスマッチは非特異的作用および/または効果の損失をもたらしうるので、該アンチセンス鎖の6位(5’から3’に)に種々の塩基を有するさらなる2本鎖をAD-59054の配列に基づいて製造した。該標的mRNAは、AD-59054のアンチセンス鎖の6位(5’から3’に)に対応
するAを有する。これら2本鎖の配列を表7に示す。表8は、三価GalNAcとの種々の化学修飾および結合を有するこれらの同じ2本鎖の配列を提供する。
容された。
、またはAD-61704を注射し、次いで上記のごとく測定した血清ヒトAATを投与後14日間追跡した(図6)。各点は、マウス3匹の平均を表し、誤差バーは標準偏差を表す。図6に示すように、AD-61719およびAD-61704も親AD-59054と同様に働く。
AD-61444を含むさらなる2本鎖をAD-59054の配列に基づいて作製した。AD-61444の修飾および非修飾センスおよびアンチセンス配列を表9に示す。
AD-59054、AD-61719、およびAD-61444の非ヒト霊長類における効果を1mg/kgまたは3mg/kgの単用量のAD-59054、AD-61719、またはAD-61444を投与することにより試験した。血清試料を、投与前5日、第0日、および第3、7、10、15、20、および30日に採取し、ヒトAAT特異的ELISAを用いて血清hAATタンパク質レベルを測定することによりAAT抑制の程度をモニターした。該化合物のいずれかを投与した動物の血清中のサイトカインまたはケモカインレベルの変化がなく、化合物の投与に関連した注射部位反応や薬剤関連健康問題はなかった。図7は、1mg/kgの単用量のAD-59054、AD-61719、またはAD-61444(7A)または3mg/kgの単用量のAD-59054、AD-61719、またはAD-61444(7B)がAATタンパク質の用量依存的な永続的低下をもたらすことを示す。
Claims (62)
- 細胞におけるSerpina1の発現を阻害する2本鎖RNAi物質であって、
該2本鎖RNAi物質が2本鎖領域を形成するセンス鎖およびアンチセンス鎖を含み、
該アンチセンス鎖が5’-UUUUGUUCAAUCAUUAAGAAGAC-3’(配列番号419)のヌクレオチド配列を含み、
センス鎖が19〜25ヌクレオチドの長さであり、アンチセンス鎖が23〜25ヌクレオチドの長さであり、
該センス鎖の本質的にすべてのヌクレオチドおよび該アンチセンス鎖の本質的にすべてのヌクレオチドが修飾ヌクレオチドであり、
少なくとも1つの鎖がリガンドと結合している2本鎖RNAi物質。 - 該センス鎖のすべてのヌクレオチドおよび該アンチセンス鎖のすべてのヌクレオチドが修飾ヌクレオチドである、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- 該修飾ヌクレオチドの少なくとも1が、3’末端デオキシチミン(dT)ヌクレオチド、2’-O-メチル修飾ヌクレオチド、2’-フルオロ修飾ヌクレオチド、2’-デオキシ-修飾ヌクレ
オチド、ロックドヌクレオチド、脱塩基ヌクレオチド、2’-アミノ-修飾ヌクレオチド、2’-アルキル-修飾ヌクレオチド、モルホリノヌクレオチド、ホスホルアミデート、非天然
塩基を含むヌクレオチド、5’-ホスホロチオエート基を含むヌクレオチド、およびコレステリル誘導体またはドデカン酸ビスデシルアミド基と結合した末端ヌクレオチドからなる群から選ばれる、請求項1に記載の2本鎖RNAi物質。 - 少なくとも1本鎖が少なくとも1のヌクレオチドの3’オーバーハングを含む、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- 少なくとも1本鎖が少なくとも2のヌクレオチドの3’オーバーハングを含む、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- 該2本鎖領域が長さ19〜21ヌクレオチド対である、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- 該2本鎖領域が長さ21〜23ヌクレオチド対である、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- センス鎖が19〜23ヌクレオチドの長さであり、アンチセンス鎖が23ヌクレオチドの長さである、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- 該ヌクレオチドの修飾が、LNA、HNA、CeNA、2’-メトキシエチル、2’-O-アルキル、2’-O-アリル、2’-C-アリル、2’-フルオロ、2’-デオキシ、2’-ヒドロキシル、およびそれらの組み合わせからなる群から選ばれる、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- 該ヌクレオチドの修飾が2’-O-メチルまたは2’-フルオロ修飾である、請求項9記載の2本鎖RNAi物質。
- 該リガンドが二価または三価の分岐鎖リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体である、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- 該リガンドが該センス鎖の3’末端に結合している、請求項12記載の2本鎖RNAi物質。
- さらに少なくとも1のホスホロチオエートまたはメチルホスホネートヌクレオチド間結合を含む、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- ホスホロチオエートまたはメチルホスホネートヌクレオチド間結合が1本鎖の3’末端にある、請求項15記載の2本鎖RNAi物質。
- 該鎖がアンチセンス鎖である、請求項16記載の2本鎖RNAi物質。
- 該鎖がセンス鎖である、請求項16記載の2本鎖RNAi物質。
- ホスホロチオエートまたはメチルホスホネートヌクレオチド間結合が1本鎖の5’末端にある、請求項15記載の2本鎖RNAi物質。
- 該鎖がアンチセンス鎖である、請求項19記載の2本鎖RNAi物質。
- 該鎖がセンス鎖である、請求項19記載の2本鎖RNAi物質。
- ホスホロチオエートまたはメチルホスホネートヌクレオチド間結合が1本鎖の5’末端と3’末端の両方にある、請求項15記載の2本鎖RNAi物質。
- 該鎖がアンチセンス鎖である、請求項22記載の2本鎖RNAi物質。
- 該RNAi物質が6〜8ホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含む、請求項15記載の2本鎖RNAi物質。
- アンチセンス鎖が5’末端に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合および3’末端に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み、センス鎖が5’末端または3’末端に少なくとも2のホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含む、請求項24記載の2本鎖RNAi物質。
- 該2本鎖のアンチセンス鎖の5’末端の1位の塩基対がAU塩基対である、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- センス鎖が全部で21ヌクレオチドを有し、アンチセンス鎖が全部で23ヌクレオチドを有する、請求項1記載の2本鎖RNAi物質。
- 細胞におけるSerpina1の発現を阻害する2本鎖RNAi物質であって、該2本鎖RNAi物質が2本鎖領域を形成するセンス鎖とアンチセンス鎖を含み、
該アンチセンス鎖が、5’-UUUUGUUCAAUCAUUAAGAAGAC-3’(配列番号419)のヌクレオチド配列を含み、
センス鎖が19〜25ヌクレオチドの長さであり、アンチセンス鎖が23〜25ヌクレオチドの長さであり、
該センス鎖の本質的にすべてのヌクレオチドが2’-O-メチル修飾および2’-フルオロ修飾からなる群から選ばれる修飾を含み、
該センス鎖が5’末端に2つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み、
該アンチセンス鎖の本質的にすべてのヌクレオチドが2’-O-メチル修飾および2’-フルオロ修飾からなる群から選ばれる修飾を含み、
該アンチセンス鎖が5’末端に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合および3’末端に2ホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み、
少なくとも1つの鎖が分岐鎖二価または三価リンカーを介して結合した1またはそれ以上のGalNAc誘導体と結合している2本鎖RNAi物質。 - 該センス鎖のすべてのヌクレオチドと該アンチセンス鎖のすべてのヌクレオチドが修飾を含む、請求項28記載の2本鎖RNAi物質。
- 請求項1〜29のいずれかに記載の2本鎖RNAi物質を含む単離細胞。
- 請求項1〜29のいずれかに記載の2本鎖RNAi物質を含む医薬組成物。
- 該2本鎖RNAi物質が非緩衝溶液中に存在する、請求項31記載の医薬組成物。
- 該非緩衝溶液が生理食塩水または水である、請求項32記載の医薬組成物。
- 該2本鎖RNAi物質が緩衝溶液中に存在する、請求項31記載の医薬組成物。
- 該緩衝溶液が、酢酸塩、クエン酸塩、プロラミン、炭酸塩、またはリン酸塩、またはそれらのあらゆる組み合わせを含む、請求項34記載の医薬組成物。
- 該緩衝溶液がリン酸緩衝生理食塩水(PBS)である、請求項35記載の医薬組成物。
- 細胞におけるSerpina1の発現を阻害するインビトロでの方法であって、
(a)細胞を、請求項1〜29のいずれかに記載の2本鎖RNAi物質、または請求項31〜36のいずれかに記載の医薬組成物と接触させ;
(b)工程(a)で作製した細胞をSerpina1遺伝子のmRNA転写産物を分解するのに充分な時間維持することにより、細胞におけるSerpina1遺伝子の発現を阻害することを含む方法。 - Serpina1発現が少なくとも約30%、約40%、約50%、約60%、約70%、約80%、約90%、約95%、約98%、または約100%阻害される、請求項37に記載の方法。
- Serpina1関連疾患を有する対象を治療することにおける使用のための組成物であって、治療的有効量の請求項1〜29のいずれかに記載の2本鎖RNAi物質または請求項31〜36のいずれかに記載の医薬組成物を含む組成物。
- 該対象がヒトである、請求項39記載の組成物。
- 該Serpina1関連疾患が肝疾患である、請求項39記載の組成物。
- 肝疾患が慢性肝疾患、肝炎、肝硬変、肝線維症、および/または肝細胞癌からなる群から選ばれる、請求項41記載の組成物。
- 2本鎖RNAi物質が約0.01mg/kg〜約10mg/kgまたは約0.5mg/kg〜約50mg/kgの用量で対象に投与するために使用される、請求項39記載の組成物。
- 2本鎖RNAi物質が皮下投与のために使用される、請求項43記載の組成物。
- 2本鎖RNAi物質が静脈内投与のために使用される、請求項43記載の組成物。
- Serpina1欠損変異体を有する対象の肝細胞癌の発生を阻害することにおける使用のための組成物であって、治療的有効量の請求項1〜29のいずれかに記載の2本鎖RNAi物質または請求項31〜36のいずれかに記載の医薬組成物を含む組成物。
- 該対象がヒトである、請求項46記載の組成物。
- 2本鎖RNAi物質が約0.01mg/kg〜約10mg/kgまたは約0.5mg/kg〜約50mg/kgの用量で対象に投与するために使用される、請求項46記載の組成物。
- 該2本鎖RNAi物質が皮下投与のために使用される、請求項48記載の組成物。
- 該2本鎖RNAi物質が静脈内投与のために使用される、請求項48記載の組成物。
- Serpina1欠損変異体を有する対象の肝臓中のミスホールドしたSerpina1の蓄積を減少させることにおける使用のための組成物であって、治療的有効量の請求項1〜29のいずれかに記載の2本鎖RNAi物質または請求項31〜36のいずれかに記載の医薬組成物を含む組成物。
- 該対象がヒトである、請求項51記載の組成物。
- 該2本鎖RNAi物質が約0.01mg/kg〜約10mg/kgまたは約0.5mg/kg〜約50mg/kgの用量で対象に投与するために使用される、請求項51記載の組成物。
- 該2本鎖RNAi物質が皮下投与のために使用される、請求項53記載の組成物。
- 該2本鎖RNAi物質が静脈内投与のために使用される、請求項53記載の組成物。
- XがOである、請求項14記載の2本鎖RNAi物質。
- 該センス鎖が5’-CUUCUUAAUGAUUGAACAAAA-3’(配列番号417)のヌクレオチド配列を含み、該アンチセンス鎖が5’-UUUUGUUCAAUCAUUAAGAAGAC-3’(配列番号419)のヌクレオチド配列を含む、請求項1または28に記載の2本鎖RNAi物質。
- 該センス鎖が5’-csusucuuaauGfAfuugaacaaaa-3’(配列番号418)のヌクレオチド配列を含み、該アンチセンス鎖が5’-usUfsuUfgUfuCfaAfucaUfuAfaGfaAfgsasc-3’(配列番号420)のヌクレオチド配列を含み、a、g、c、およびuはそれぞれ2’−O−メチル(2’−OMe)A、G、C、およびUであり;Af、Gf、CfおよびUfはそれぞれ2’−フルオロA、G、CおよびUであり;sはホスホロチオエート結合である、請求項1または28に記載の2本鎖RNAi物質。
- リガンドをさらに含む、請求項58に記載の2本鎖RNAi物質。
- 該センス鎖が5’-csusucuuaauGfAfuugaacaaaaL96-3’(配列番号418)のヌクレオチド配列からなり、該アンチセンス鎖が5’-usUfsuUfgUfuCfaAfucaUfuAfaGfaAfgsasc-3’(配列番号420)のヌクレオチド配列からなり、a、g、c、およびuはそれぞれ2’−O−メチル(2’−OMe)A、G、C、およびUであり;Af、Gf、CfおよびUfはそれぞれ2’−フルオロA、G、CおよびUであり;sはホスホロチオエート結合であり;L96はN−[トリス(GalNAc−アルキル)−アミドドデカノイル)]−4−ヒドロキシプロリノールである、請求項1または28に記載の2本鎖RNAi物質。
- センス鎖が21ヌクレオチドの長さであり、アンチセンス鎖が23ヌクレオチドの長さである、請求項1または28に記載の2本鎖RNAi物質。
- 対象が1またはそれ以上のSerpina1 Z対立遺伝子を有する、請求項39記載の組成物。
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