JP6599527B2 - コレステロール関連障害を治療または予防する方法 - Google Patents
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Description
本出願は、電子形式で配列表と共に出願される。配列表は、2012年5月10日に作成された、サイズが315KBであるA−1635−WO−PCT_Sequence_Listing.txtと題するファイルとして提供される。配列表の電子形式中の情報は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
本発明は、前駆タンパク質転換酵素サブチリシン/ケキシン9型(PCSK9)に対する抗体を含む、抗原結合タンパク質を用いて、高コレステロール血症、高脂血症、または脂質異常症等のコレステロール関連障害を治療または予防する方法に関する。薬学的製剤およびその製剤を生成する方法も記載される。
前述の概要および次の詳細な説明の両方は、例示および説明にすぎず、特許請求される本発明を制限しないことを理解されたい。本願において、単数形の使用は、具体的に別様に規定されていない限り、複数形を含む。本願において、「または」の使用は、別様に規定されていない限り、「および/または」を意味する。さらに、「含んでいる」という用語、ならびに「含む」および「含まれた」等の他の形態の使用は、限定的なものではない。また、「要素」または「成分」等の用語は、具体的に別様に規定されていない限り、1つのユニットを含む要素および成分、ならびに1つを超えるサブユニットを含む要素および成分の両方を包含する。また、「部分」という用語の使用は、構成部分の一部または構成成分の全体を含み得る。
・アルゴリズム: Needleman et al.,1970,J.Mol.Biol.48:443−453
・比較マトリックス: Henikoff et al.,1992,上記から得られるBLOSum62
・ギャップペナルティー: 12(但し、末端ギャップにはペナルティーはなし)
・ギャップ長ペナルティー:4
・類似性の閾値:0
1)疎水性:ノルロイシン、Met、Ala、Val、Leu、Ile、
2)中性親水性:Cys、Ser、Thr、Asn、Gln、
3)酸性:Asp、Glu、
4)塩基性:His、Lys、Arg、
5)鎖配向に影響を与える残基:Gly、Pro、および
6)芳香族:Trp、Tyr、Phe。
例えば、非保存的置換は、これらのクラスの1つのメンバーを別のクラスのメンバーと交換することを含み得る。このような置換された残基は、例えば、非ヒト抗体に相同であるヒト抗体の領域内に、または分子の非相同領域内に導入することができる。
前駆タンパク質転換酵素サブチリシンケキシン9型(PCSK9)は、低密度リポタンパク質受容体(LDLR)タンパク質のレベルの調節に関与しているセリンプロテアーゼである(Horton et al.,2007、Seidah and Prat,2007)。PCSK9は、セリンプロテアーゼのサブチリシン(S8)ファミリーのプロホルモン−前駆タンパク質転換酵素である(Seidah et al.,2003)。例となるヒトPCSK9アミノ酸配列が、図1A(下線が付されているタンパク質の「プロ」ドメインを示す)および図1B(太字のシグナル配列および下線が付されたプロドメインを示す)において、配列番号1および3として表される。例となるヒトPCSK9のコード配列が、配列番号2として表される(図1B)。本明細書に記載されるように、PCSK9タンパク質はまた、完全長PCSK9タンパク質の断片も含むことができる。PCSK9タンパク質の構造は、2つのグループによって解決され(Cunningham et al.,Nature Structural & Molecular Biology,2007およびPiper et al.,Structure,15:1−8,2007)、これらの両方の全体が、参照により本明細書に組み込まれる。PCSK9は、シグナル配列、N末端プロドメイン、サブチリシン様触媒ドメイン、およびC末端ドメインを含む。
本明細書に記載されるように、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、ヒト化抗体および/またはその一部を含むことができる。このような戦略の重要な実用的用途は、マウス液性免疫系の「ヒト化」である。
本明細書に記載されるように、PCSK9に結合する抗原結合タンパク質は、ヒト(すなわち、完全ヒト)抗体および/またはその一部を含むことができる。ある特定の実施形態では、重および軽鎖免疫グロブリン分子をコードするヌクレオチド配列、ならびに重および軽鎖免疫グロブリン分子を含むアミノ酸配列、特に、可変領域に対応する配列が提供される。ある特定の実施形態では、相補性決定領域(CDR)、特に、CDR1からCDR3に対応する配列が提供される。ある特定の実施形態によれば、このような免疫グロブリン分子を発現するハイブリドーマ細胞株が提供される。ある特定の実施形態によれば、このようなモノクローナル抗体を発現するハイブリドーマ細胞株が提供される。ある特定の実施形態では、ハイブリドーマ細胞株は、表2中に記載される細胞株のうちの少なくとも1つ、例えば、21B12、16F12、および31H4から選択される。ある特定の実施形態では、ヒトPCSK9に対する精製されたヒトモノクローナル抗体が提供される。
提供される他の抗体は、表2中に示されている可変重鎖および可変軽鎖の組み合わせまたはサブパートによって形成され、表2中の配列(配列全体または配列のサブパート(例えば、1つ以上のCDR))のアミノ酸配列に対して、それぞれ、少なくとも50%、50〜60、60〜70、70〜80%、80〜85%、85〜90%、90〜95%、95〜97%、97〜99%、または99%超の同一性を有する可変軽鎖および/または可変重鎖を含む上記に掲載されたABP変異体である。場合によっては、このような抗体は、少なくとも1つの重鎖および1つの軽鎖を含むが、他の例では、その変異型は、2つの同一の軽鎖および2つの同一の重鎖(またはそのサブパート)を含有する。幾つかの実施形態では、結合に影響を及ぼす変動および結合に影響を及ぼさないと思われる変動を観察することによって修飾することが可能な抗体の区画を特定するために、図2A〜3D中(ならびに13A〜13Jおよび他の実施形態では15A〜15Dおよび図48Aおよび48B中)の配列比較を使用することができる。例えば、類似の配列を比較することによって、修飾可能な区画(例えば、特定のアミノ酸)を特定し、ABPの機能性をなお保持しながら(または改善しながら)、それらをどのようにして修飾することができるかを特定することができる。幾つかの実施形態では、ABPの変異体は、図13A、13C、13F、13G、13H、13I、13J、ならびに/または48Aおよび48Bに図示されているコンセンサス基および配列を含み、変動は、図中に可変として特定される位置において可能である。図13A、13C、13F、13G、48A、および48Bに示されているCDRは、Chothia法(構造ループ領域の位置に基づく、例えば、“Standard conformations for the canonical structures of immunoglobulins,” Bissan Al−Lazikani,Arthur M.Lesk and Cyrus Chothia,Journal of Molecular Biology,273(4):927−948,7 November(1997)を参照)とKabat法(配列変動性に基づく、例えば、Sequences of Proteins of Immunological Interest,Fifth Edition. NIH Publication No.91−3242,Kabat et al.,(1991)を参照)のハイブリッド組み合わせに基づいて定義された。いずれかの方法によって決定されたそれぞれの残基は、CDR残基の最終リスト中に含められた(そして、図13A、13C、13F、13G、48A、および48Bに示されている)。図13H、13I、および13J中のCDRは、Kabat法のみによって得られた。特に特定されない限り、図13H〜13J中の定義されたコンセンサス配列、CDR、およびFRは、図13中において参照されているABPに対する表記CDRおよびFRを定義し、制御する。
ある特定の実施形態では、抗原結合タンパク質(抗体等)は、抗原(例えば、PCSK9)を用いた免疫化によって生成される。ある特定の実施形態では、抗体は、完全長PCSK9、PCSK9の可溶性形態、触媒ドメインのみ、図1A中に示されているPCSK9の成熟形態、PCSK9のスプライス変異形態、またはこれらの断片を用いた免疫化によって作製することができる。ある特定の実施形態では、本発明の抗体は、ポリクローナルもしくはモノクローナルであり得、および/または組換え抗体であり得る。ある特定の実施形態では、本発明の抗体は、例えば、ヒト抗体を生成することができるトランスジェニック動物の免疫化によって調製されたヒト抗体である(例えば、PCT公開出願第W093/12227号を参照)。
ある特定の実施形態では、ファージディスプレイ技術が、モノクローナル抗体を作製するために使用される。ある特定の実施形態では、このような技術は、完全ヒトモノクローナル抗体を生成する。ある特定の実施形態では、単一のFabまたはFv抗体断片をコードするポリヌクレオチドが、ファージ粒子の表面上に発現される。例えば、Hoogenboom et al.,J.Mol.Biol.,227:381(1991)、Marks et al.,J Mol Biol 222:581(1991)、米国特許第5,885,793号を参照のこと。ある特定の実施形態では、標的に対する親和性を有する抗体断片を特定するために、ファージが「スクリーニング」される。したがって、ある特定のそのようなプロセスは、糸状バクテリオファージの表面上への抗体断片レパートリーのディスプレイおよび標的へのそれらの結合によってファージのその後の選択を通じて免疫選択を模倣する。ある特定のそのような手法では、高親和性機能的中和抗体断片が単離される。(以下により詳しく論述されている)ある特定のそのような実施形態において、ヒト抗体遺伝子の完全なレパートリーは、末梢血リンパ球から天然に再配置されたヒトV遺伝子をクローニングすることによって作製される。例えば、Mullinax et al.,Proc Natl Acad Sci(USA),87:8095−8099(1990)を参照のこと。
抗PCSK9抗体が結合するエピトープが提供される。幾つかの実施形態では、本明細書に開示されている抗体によって結合されるエピトープが、特に有用である。幾つかの実施形態では、本明細書に開示される抗体によって結合されるエピトープのいずれかに結合する抗原結合タンパク質が有用である。幾つかの実施形態では、表2ならびに図2および3に列記される抗体のいずれかによって結合されるエピトープが、特に有用である。幾つかの実施形態では、エピトープは、触媒ドメインPCSK9上にある。
別の態様では、PCSK9への特異的結合に対して、本明細書に記載されるエピトープに結合する例となる抗体または機能的断片のうちの1つと競合する抗原結合タンパク質が提供される。そのような抗原結合タンパク質はまた、本明細書に例示される抗原結合タンパク質のうちの1つと同じエピトープまたは重複するエピトープにも結合し得る。例示される抗原結合タンパク質と同じエピトープと競合し、または結合する抗原結合タンパク質および断片は、同様な機能的特性を示すと予想される。例示される抗原結合タンパク質および断片には、表2および/または図2〜3に含まれる重および軽鎖可変、領域ドメイン、ならびにCDRを有するもの等、上述されるものが含まれる。したがって、具体例として、提供される抗原結合タンパク質には、以下を有する抗体または抗原結合タンパク質と競合するものが含まれる:
(a)図2〜3に列記される抗体に対して列記されるCDRの6つすべて、
(b)表2に列記される抗体に対して列記されるVHおよびVL、または
(c)表2に列記される抗体に対して特定される2つの軽鎖および2つの重鎖。
本発明は、PCSK9に対する抗原結合タンパク質を含有する薬学的製剤を提供する。本明細書で使用される「薬学的製剤」は、非経口投与(静脈内、筋肉内、皮下、噴霧、肺内、鼻腔内、または髄腔内等であるが、これらに限定されない)に適している、それを必要とする患者への薬学的に活性な薬物、すなわち、PCSK9に対する少なくとも1つの抗原結合タンパク質の無菌組成物であり、薬学的に許容される賦形剤、希釈剤、および連邦薬物管理機関または他の外国当局によって安全であると見なされる他の添加剤のみを含む。薬学的製剤には、液体、例えば、直接投与され得る水性溶液、および投与前に希釈剤を添加することによって溶液に再構成され得る凍結乾燥粉末を含む。患者への局所投与用の組成物、経口摂取用の組成物、および非経口的栄養補給用の組成物は、「薬学的製剤」という用語の範囲から特定的に除外される。
表2ならびに図2および/または3および/または図48Aおよび48B中に示されるPCSK9に対する抗原結合タンパク質のいずれかを、本発明の方法に従って患者に投与することができる。幾つかの実施形態では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、21B12、26H5、31H4、8A3、11F1、または8A1を含む。
当業者によって理解されるように、変動したコレステロール、LDL、LDLR、PCSK9、VLDL−C、アポタンパク質B(「ApoB」)、リポタンパク質A(「Lp(a)」)、トリグリセリド、HDL−C、非−HDL−C、および総コレステロールレベルと関連し、それらに伴い、またはそれらによって影響を受け得る障害は、本発明に記載されるPCSK9に対する抗原結合タンパク質によって対処することができる。一態様では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、血清コレステロールレベルの上昇と関連する、または血清コレステロールレベルの上昇が関連する障害を治療し、および/または予防し、および/または障害のリスクを減少させるための方法に使用することができる。一態様では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、PCSK9値の上昇と関連する、またはPCSK9値の上昇が関連する障害を治療し、および/または予防し、および/または障害のリスクを減少させるための方法に使用することができる。一態様では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、総コレステロールレベルの上昇と関連する、または総コレステロールレベルの上昇が関連する障害を治療し、および/または予防し、および/または障害のリスクを減少させるための方法に使用することができる。一態様では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、非HDLコレステロールレベルの上昇と関連する、または非HDLコレステロールレベルの上昇が関連する障害を治療し、および/または予防し、および/または障害のリスクを減少させるための方法に使用することができる。一態様では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、ApoBレベルの上昇と関連する、またはApoBレベルの上昇が関連する障害を治療し、および/または予防し、および/または障害のリスクを減少させるための方法に使用することができる。一態様では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、Lp(a)レベルの上昇と関連する、またはLp(a)レベルの上昇が関連する障害を治療し、および/または予防し、および/または障害のリスクを減少させるための方法に使用することができる。一態様では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、トリグリセリドレベルの上昇と関連する、またはトリグリセリドレベルの上昇が関連する障害を治療し、および/または予防し、および/または障害のリスクを減少させるための方法に使用することができる。一態様では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、VLDL−Cレベルの上昇と関連する、またはVLDL−Cレベルの上昇が関連する障害を治療し、および/または予防し、および/または障害のリスクを減少させるための方法に使用することができる。
ある特定の実施形態では、治療的有効量の1つ以上のPCSK9に対する抗原結合タンパク質および別の治療剤を投与することを含む、高コレステロール血症、高脂血症、または脂質異常症等のコレステロール関連障害を治療する方法が提供される。ある特定の実施形態では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、少なくとも1つの他の治療剤の投与前に投与される。ある特定の実施形態では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、少なくとも1つの他の治療剤の投与と同時に投与される。ある特定の実施形態では、PCSK9に対する抗原結合タンパク質は、少なくとも1つの他の治療剤の投与後に投与される。
幾つかの実施形態では、ABPは、診断用ツールとして使用される。ABPは、試料および/または対象中に存在するPCSK9の量をアッセイするために使用することができる。当業者によって理解されるように、このようなABPは中和ABPである必要はない。幾つかの実施形態では、診断用ABPは中和ABPではない。幾つかの実施形態では、診断用ABPは、中和ABPが結合するエピトープとは異なるエピトープに結合する。幾つかの実施形態では、2つのABPは互いに競合しない。
免疫化および力価測定
抗PCSK9抗体およびハイブリドーマの生成
PCSK9の成熟形態に対する抗体(図1A中の配列として示されており、プロドメインに下線が付されている)を、ヒト免疫グロブリン遺伝子を含有するマウスであるXenoMouse(登録商標)マウス(Abgenix,Fremont,CA)中で産生した。XenoMouse(登録商標)マウスの2つの群、群1および群2が、PCSK9に対する抗体を生成するために使用された。群1は、完全ヒトIgG2κおよびIgG2λ抗体を生成するXenoMouse(登録商標)株XMG2−KLのマウスを含んだ。群1のマウスを、ヒトPCSK9で免疫化した。参照としてのGenBank配列(NM_174936)を使用し、標準的組換え技術を用いてPCSK9を調製した。群2は、完全ヒトIgG4κおよびIgG4λ抗体を生成するXenoMouse(登録商標)株XMG4−KLのマウスを含んだ。群2のマウスも、ヒトPCSK9で免疫化した。
リンパ球の回収、B細胞の単離、融合、およびハイブリドーマの生成
この実施例は、免疫細胞がどのようにして回収され、ハイブリドーマがどのようにして生成されたかについて概説する。選択された免疫化マウスを頸椎脱臼によって殺処分し、それぞれのコホートから流入領域リンパ節を採集し、プールした。細胞を組織から放出させるために、DMEM中で磨り潰すことによって、リンパ系組織からB細胞を解離させ、細胞をDMEM中に懸濁した。細胞を計数し、穏やかに、但し、完全に細胞を再懸濁させるために、1億個のリンパ球につき0.9mLのDMEMを細胞沈降物に添加した。
PCSK9抗体の選択
本実施例は、様々なPCSK9抗原結合タンパク質がどのようにして特徴付けされ、選択されたかについて概説する。PCSK9に対する分泌された抗体の結合(実施例1および2において生成されたハイブリドーマから生成された)が評価された。抗体の選択は、結合データおよびLDLRへのPCSK9の結合の阻害および親和性に基づいた。以下に記載されるように、ELISAによって、可溶性PCSK9への結合を分析した。結合親和性を定量化するために、BIAcore(登録商標)(表面プラズモン共鳴)を使用した。
野生型PCSK9に結合する抗体に対する一次スクリーニングを行った。2つの採集物に対して、一次スクリーニングを行った。一次スクリーニングは、ELISAアッセイを含み、以下のプロトコルを用いて行った。
次いで、安定なハイブリドーマが確立されたことを確認するために、野生型PCSK9への結合に関して、3000の陽性を再スクリーニングした。スクリーニングは、以下のように行った。Costar3702培地結合384ウェルプレート(Corning Life Sciences)を使用した。このプレートを、40μL/ウェルの体積で、1XPBS/0.05%アジ化物中、3μg/mLのニュートラビジンで被覆した。プレートを、4℃で一晩インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置(Titertek,Huntsville,AL)を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。90μLの1XPBS/1%ミルクで、プレートを遮断し、室温で約30分間インキュベートした。次いで、M384プレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。捕捉試料は、V5タグを持たないb−PCSK9であり、40μL/ウェルの体積で、1XPBS/1%ミルク/10mM Ca2+中に0.9μg/mLで添加された。次いで、プレートを、室温で1時間インキュベートした。次に、3サイクル洗浄を用いて、プレートを洗浄した。10μLの上清を、40μLの1XPBS/1%ミルク/10mM Ca2+中に移し、室温で1.5時間インキュベートした。再度、3サイクル洗浄を用いて作動されるTitertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。1XPBS/1%ミルク/10mM Ca2+中、100ng/mL(1:4000)の濃度の40μL/ウェルのヤギ抗ヒトIgG Fc PODをプレートに添加し、このプレートを室温で1時間インキュベートした。3サイクル洗浄を用いて作動されるTitertekプレート洗浄装置を用いて、プレートをもう一度洗浄した。最後に、40μL/ウェルの1ステップTMB(Neogen,Lexington,Kentucky)をプレートに添加し、室温で30分後、40μL/ウェルの1N 塩酸を用いて反応停止処理を行った。Titertekプレートリーダーを用いて、450nmでODを直ちに読み取った。合計2441の陽性を、第2のスクリーニングで反復した。次いで、これらの抗体は、その後のスクリーニングにおいて使用された。
次いで、抗体がヒトおよびマウスPCSK9の両方に結合できることを確認するために、マウスPCSK9に対する交差反応性に関して、ハイブリドーマのパネルをスクリーニングした。交差反応スクリーニングにおいて、以下のプロトコルを使用した。Costar3702培地結合384ウェルプレート(Corning Life Sciences)を使用した。このプレートを、40μL/ウェルの体積で、1XPBS/0.05%アジ化物中、3μg/mLのニュートラビジンで被覆した。プレートを、4℃で一晩インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置(Titertek,Huntsville,AL)を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。90μLの1XPBS/1%ミルクで、プレートを遮断し、室温で約30分間インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。捕捉試料は、ビオチン化されたマウスPCSK9であり、40μL/ウェルの体積で、1XPBS/1%ミルク/10mM Ca2+中に1μg/mLで添加された。次いで、プレートを、室温で1時間インキュベートした。次に、3サイクル洗浄を用いて作動されるTitertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。50μLの上清を、プレートに移し、室温で1時間インキュベートした。再度、3サイクル洗浄を用いて、プレートを洗浄した。1XPBS/1%ミルク/10mM Ca2+中、100ng/mL(1:4000)の濃度の40μL/ウェルのヤギ抗ヒトIgG Fc PODをプレートに添加し、このプレートを室温で1時間インキュベートした。3サイクル洗浄を用いて、プレートをもう一度洗浄した。最後に、40μL/ウェルの1ステップTMB(Neogen,Lexington,Kentucky)をプレートに添加し、室温で30分後、40μL/ウェルの1N 塩酸を用いて反応停止処理を行った。Titertekプレートリーダーを用いて、450nmでODを直ちに読み取った。579抗体は、マウスPCSK9と交差反応することが観察された。次いで、これらの抗体は、その後のスクリーニングにおいて使用された。
PCSK9中のD374Y突然変異体は、ヒト集団において文書で証明されている(例えば、Timms KM et al,“A mutation in PCSK9 causing autosomal−dominant hypercholesterolemia in a Utah pedigree”,Hum.Genet.114:349−353,2004)。抗体が野生型に対して特異的であり、またはPCSK9のD374Y形態に結合されているかどうかを決定するために、次いで、試料は、突然変異体D374Yを含む突然変異体PCSK9配列への結合に関して、スクリーニングされた。スクリーニングのためのプロトコルは、以下の通りであった。Costar3702培地結合384ウェルプレート(Corning Life Sciences)をスクリーニングにおいて使用した。このプレートを、40μL/ウェルの体積で、1XPBS/0.05%アジ化物中、4μg/mLのニュートラビジンで被覆した。プレートを、4℃で一晩インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置(Titertek,Huntsville,AL)を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。90μLの1XPBS/1%ミルクで、プレートを遮断し、室温で約30分間インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。1XPBS/1%ミルク/10mMCa2+中、1μg/mLの濃度のビオチン化されたヒトPCSK9 D374Yでプレートを被覆し、室温で1時間インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。後期枯渇ハイブリドーマ培養上清をPBS/ミルク/Ca2+中に1:5希釈し(10mL+40mL)、室温で1時間インキュベートした。次に、1XPBS/1%ミルク/10mMCa2+中、1μg/mLで、40μL/ウェルのウサギ抗ヒトPCSK9(Cayman Chemical)およびヒト抗His1.2.3を1:2でプレート上に滴定し、次いで、これを室温で1時間インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。1XPBS/1%ミルク/10mM Ca2+中の100ng/mLの濃度(1:4000)の40μL/ウェルのヤギ抗ヒトIgG Fc HRPをプレートに添加し、このプレートを室温で1時間インキュベートした。1XPBS/1%ミルク/10mM Ca2+中の100ng/mLの濃度(1:4000)の40μL/ウェルのヤギ抗ウサギIgG Fc HRPをプレートに添加し、このプレートを室温で1時間インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。最後に、40μL/ウェルの1ステップTMB(Neogen,Lexington,Kentucky)をプレートに添加し、室温で30分後に、40μL/ウェルの1N 塩酸を用いて反応停止処理を行った。Titertekプレートリーダーを用いて、450nmでODを直ちに読み取った。野生型PCSK9に対する陽性ヒットの96%以上が、突然変異体PCSK9にも結合した。
LDLRへのPCSK9結合を遮断する抗体をスクリーニングするために、D374Y PCSK9突然変異体を用いたアッセイを開発した。LDLRに対してより高い結合親和性を有するので、このアッセイに対してこの突然変異体が使用され、より感度が高い受容体リガンド遮断アッセイの開発を可能とした。受容体リガンド遮断スクリーニングにおいて、以下のプロトコルを使用した。Costar3702培地結合384ウェルプレート(Corning Life Sciences)をスクリーニングにおいて使用した。このプレートを、40μL/ウェルの体積で、1XPBS/0.05%アジ化物中、2μg/mLのヤギ抗LDLR(R&D カタログ#AF2148)で被覆した。プレートを、4℃で一晩インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置(Titertek,Huntsville,AL)を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。90μLの1XPBS/1%ミルクでプレートを遮断し、室温で約30分間インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。捕捉試料は、LDLR(R&D、カタログ#2148LD/CF)であり、40μL/ウェルの体積で、1XPBS/1%ミルク/10mM Ca2+中に0.4μg/mLで添加された。次いで、プレートを、室温で1時間10分間インキュベートした。同時に、20ng/mLのビオチン化されたヒトD374Y PCSK9を、Nuncポリプロピレンプレート中の15μLのハイブリドーマ枯渇上清とともにインキュベートし、枯渇上清濃度を1:5希釈した。次いで、このプレートを室温で約1時間30分間事前にインキュベートした。次に、3サイクル洗浄を用いて作動されるTitertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。50μL/ウェルの事前にインキュベートした混合物を、LDLRで被覆されたELISAプレートに移し、室温で1時間インキュベートした。LDLRに結合されたb−PCSK9を検出するために、500ng/mLのアッセイ希釈液中の40μL/ウェルのストレプトアビジンHRPをプレートに添加した。プレートを、室温で1時間インキュベートした。再度、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。最後に、40μL/ウェルの1ステップTMB(Neogen,Lexington,Kentucky)をプレートに添加し、室温で30分後に、40μL/ウェルの1N 塩酸を用いて反応停止処理を行った。Titertekプレートリーダーを用いて、450nmでODを直ちに読み取った。スクリーニングは、PCSK9とLDLRウェルとの間の相互作用を遮断した特定された384の抗体を特定し、100の抗体が、相互作用を強く遮断した(OD<0.3)。これらの抗体は、PCSK9とLDLRとの結合相互作用を90%超阻害した(90%超の阻害)。
次いで、第1の大規模受容体リガンド阻害アッセイにおいて特定された中和物質の384メンバーのサブセットに対して、突然変異体酵素を用いて受容体リガンドアッセイを反復した。384メンバーの遮断物質サブセットアッセイのスクリーニングにおいて、大規模受容体リガンド遮断スクリーニングにおいて行われたものと同じプロトコルを使用した。この反復スクリーニングは、初期のスクリーニングデータを確認した。
3000の上清の初期パネルでは、野生型PCSK9に特異的に結合するが、huPCSK9(D374Y)突然変異体に結合しないことが示される86の抗体が存在した。LDLR受容体への野生型PCSK9結合を遮断する能力について、これらの86の上清を試験した。以下のプロトコルを使用した。Costar3702培地結合384ウェルプレート(Corning Life Sciences)をスクリーニングにおいて使用した。このプレートを、40μL/ウェルの体積で、1XPBS/0.05%アジ化物中、10μg/mLの抗His1.2.3で被覆した。プレートを、4℃で一晩インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置(Titertek,Huntsville,AL)を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。90μLの1XPBS/1%ミルクで、プレートを遮断し、室温で約30分間インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。LDLR(R&D Systems,#2148LD/CFまたはR&D Systems,#2148LD)を、40μL/ウェルの体積で、1XPBS/1%ミルク/10mM Ca2+中に5μg/mLで添加された。次いで、プレートを、室温で1時間インキュベートした。次に、3サイクル洗浄を用いて作動されるTitertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。同時に、ビオチン化されたヒト野生型PCSK9を、Nuncポリプロピレンプレート中のハイブリドーマ枯渇上清とともに事前にインキュベートした。22μLのハイブリドーマ上清を、1XPBS/1%ミルク/10mMCa2+中、583ng/mLの濃度33uLのb−PCSK9に移し、最終のb−PCSK9濃度=350ng/mLおよび1:2.5の最終希釈で枯渇上清を得た。次いで、プレートを、室温で1時間30分間事前にインキュベートした。50μL/ウェルの事前にインキュベートされた混合物を、LDLRが捕捉されたELISAプレート上に移し、室温で1時間インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。500ng/mLのアッセイ希釈液中の40μL/ウェルのストレプトアビジンHRPをプレートに添加した。プレートを、室温で1時間インキュベートした。次いで、Titertekプレート洗浄装置を用いて、プレートを洗浄した。3サイクル洗浄を行った。最後に、40μL/ウェルの1ステップTMB(Neogen,Lexington,Kentucky)をプレートに添加し、室温で30分後に、40μL/ウェルの1N 塩酸を用いて反応停止処理を行った。Titertekプレートリーダーを用いて、450nmでODを直ちに読み取った。
記載されるアッセイの結果に基づいて、PCSK9との所望の相互作用を有する抗体を生成するとして、幾つかのハイブリドーマ株が特定された。それぞれの株からの管理可能な数のクローンを単離するために、限外希釈を使用した。ハイブリドーマ株番号(例えば、21B12)およびクローン番号(例えば、21B12.1)によって、クローンを表記した。一般に、本明細書に記載されている機能的アッセイによって、特定の株の異なるクローン間には、差は検出されなかった。少数の例では、機能的アッセイにおいて異なる挙動を示した特定の株からクローンが特定され、例えば、25A7.1は、PCSK9/LDLRを遮断しないが、25A7.3(本明細書において、25A7と称される)は中和性であることが見出された。単離されたクローンはそれぞれ、50〜100mLのハイブリドーマ培地中で拡大させ、枯渇するまで(すなわち、約10%未満の細胞生存率)膨張させた。これらの培養物の上清中でのPCSK9に対する抗体の濃度および効力は、本明細書に記載されるようなELISAによって、およびインビトロ機能的試験によって決定された。本明細書に記載されるスクリーニングの結果として、PCSK9に対する抗体の最も高い力価を有するハイブリドーマを特定した。選択されたハイブリドーマを、図2A〜3Dおよび表2に示す。
ハイブリドーマからのヒト31H4 IgG4抗体の生成
この実施例は、一般に、抗原結合タンパク質のうちの1つがハイブリドーマ株からどのように生成されたかについて記載する。生成作業は、50mLの枯渇上清作製を使用した後、プロテインA精製を行った。Integra生成を大規模化し、その後実行した。ハイブリドーマ株31H4を、20mLの培地中のT75フラスコ中で増殖させた(Integra培地、表5)。ハイブリドーマがT75フラスコ中でほぼ集密状態になった時点で、Integraフラスコに移した(Integra Biosciences,Integra CL1000、カタログ#90 005)。
トランスフェクト細胞からの組換え31H4ヒトIgG2抗体の生成
本実施例は、31H4 IgG2抗体がトランスフェクト細胞からどのようにして生成されたかを概説している。一過性発現のために293細胞および安定な発現のためにCHO細胞が、31H4重および軽鎖をコードするプラスミドでトランスフェクトされた。細胞および細胞片を除去することによって、トランスフェクト細胞からの馴化培地を回収した。浄化された馴化培地をプロテインA−セファロースカラム上に装填した。任意に、培地をまず濃縮し、次いで、プロテインA−セファロースカラム上に装填することができる。徹底的なPBS洗浄によって、非特異的結合を除去した。プロテインAカラム上に結合された抗体タンパク質は、プロテインAカラムからの標準的な酸性抗体溶出(例えば、50mM クエン酸塩、pH3.0)によって回収された。プロテインAセファロースプール中の凝集した抗体タンパク質を、サイズ排除クロマトグラフィーまたはQセファロース樹脂等の陰イオン交換樹脂上の結合イオン交換クロマトグラフィーによって除去した。31H4タンパク質に対して特異的なIEX条件は、pH7.8〜8.0でQ−セファロースHPである。25カラム体積の10mM〜500mMのNaCl勾配を用いて、抗体を溶出した。
ハイブリドーマからのヒト21B12 IgG4抗体の生成
本実施例は、抗体21B12 IgG4がどのようにしてハイブリドーマから生成されたかを概説する。ハイブリドーマ株21B12を、培地中のT75フラスコ中で増殖させた(Integra培地、表5)。ハイブリドーマがT75フラスコ中でほぼ集密状態になった時点で、Integraフラスコに移した(Integra Biosciences,Integra CL1000、カタログ#90 005)。
1週間後、Integraフラスコの両チャンバーから培地を除去し、新鮮なIntegra培地と交換した。小チャンバーから採取された培地は、別々に保持された。増殖から2週間後、小チャンバーからの培地を再度採取した。1週目にハイブリドーマ株から採取された培地を、2週目にハイブリドーマ株から採取された培地と合わせた。ハイブリドーマ株から得られた採取された培地試料を遠心分離して、細胞および細胞片を除去して(3000rpmで15分)、得られた上清を濾過した(0.22μm)。浄化された馴化培地をプロテインA−セファロースカラム上に装填した。任意に、培地をまず濃縮し、次いで、プロテインA−セファロースカラム上に装填した。徹底的なPBS洗浄によって、非特異的結合を除去した。プロテインAカラム上に結合された抗体タンパク質は、プロテインAカラムからの標準的な酸性抗体溶出(例えば、50mM クエン酸塩、pH3.0)によって回収された。プロテインAセファロースプール中の凝集した抗体タンパク質を、サイズ排除クロマトグラフィーまたはQセファロース樹脂等の陰イオン交換樹脂上の結合イオン交換クロマトグラフィーによって除去した。21B12タンパク質に対して特異的なIEX条件は、pH7.8〜8.0でQ−セファロースHPである。25カラム体積の10mM〜500mMのNaCl勾配を用いて、抗体を溶出した。
トランスフェクト細胞からのヒト21B12 IgG2抗体の生成
本実施例は、21B12 IgG2抗体がトランスフェクト細胞からどのようにして生成されたかを概説している。細胞(一過性発現のために293細胞および安定な発現のためにCHO細胞)が、21B12重および軽鎖をコードするプラスミドでトランスフェクトされた。細胞および細胞片を除去することによって、ハイブリドーマ細胞からの馴化培地を回収した。浄化された馴化培地をプロテインA−セファロースカラム上に装填した。任意に、培地をまず濃縮し、次いで、プロテインA−セファロースカラム上に装填することができる。徹底的なPBS洗浄によって、非特異的結合を除去した。プロテインAカラム上に結合された抗体タンパク質は、プロテインAカラムからの標準的な酸性抗体溶出(例えば、50mM クエン酸塩、pH3.0)によって回収された。プロテインAセファロースプール中の凝集した抗体タンパク質を、サイズ排除クロマトグラフィーまたはSPセファロース樹脂等の陽イオン交換樹脂上の結合イオン交換クロマトグラフィーによって除去した。21B12タンパク質に対して特異的なIEX条件は、pH5.2でSP−セファロースHPである。20mM 酢酸ナトリウム緩衝剤中の10mM〜500mMのNaCl勾配を含有する緩衝液の25カラム体積で抗体を溶出した。
抗体重鎖および軽鎖の配列分析
次いで、Sanger(ジデオキシ)ヌクレオチド配列決定によって、上記抗体の軽鎖および重鎖に対する核酸およびアミノ酸配列を決定した。次いで、核酸配列に対してアミノ酸配列を推定した。可変ドメインに対する核酸配列を図3E〜3JJに示す。
PCSK9に対する抗体の結合の特徴付け
PCSK9に結合する多くの抗体が特定され、幾つかのアプローチが、結合の性質を定量化し、それをさらに特徴付けるために使用された。研究の一態様では、Biacore親和性分析が行われた。研究の別の態様では、KinExA(登録商標)親和性分析が行われた。これらの研究において使用された試料および緩衝剤を下の表6に示す。
この実施例に記載されるPCSK9に対する21B12抗体のBIAcore(登録商標)(表面プラズモン共鳴装置、Biacore,Inc.,Piscataway,NJ)親和性分析は、製造業者の説明書に従って行われた。
16F12および31H4のKinExA(登録商標)(Sapidyne Instruments,Inc.,Boise,ID)親和性分析が、製造業者の説明書に従って行われた。簡潔に述べると、Reacti−Gel(商標)(6x)(Pierce)を、ヒトV5タグ付加されたカニクイザルまたはHisタグ付加されたマウスPCSK9タンパク質のうちの1つを用いて事前に被覆し、BSAにより遮断した。次いで、10または100pMの抗体31H4およびPCSK9タンパク質のうちの1つを、PCSK9で被覆されたビーズを通過させる前に、室温で8時間、様々な濃度(0.1pM〜25nM)のPCSK9タンパク質とともにインキュベートした。ビーズが結合された31H4の量は、蛍光的に(Cy5)標識されたヤギ抗ヒトIgG(H+L)抗体(Jackson Immuno Research)によって定量化した。結合シグナルは、結合平衡で遊離31H4の濃度に比例する。平衡解離定数(KD)は、一部位均一結合モデルを用いて、競合曲線の2つの組の非線形回帰から得た。KinExA(登録商標)Proソフトウェアを分析において使用した。この分析において作製された結合曲線が、図4A〜4Fとして表されている。
D374Y PCSK9/LDLR結合を遮断することについての31H4および21B12の有効性
この実施例は、PCSK9 D374YのLDLRに結合する能力を遮断する上での、抗体の2つに対するIC50値を提供する。透明な384ウェルプレート(Costar)を、緩衝剤A(100mM カコジル酸ナトリウム、pH7.4)中で希釈された2マイクログラム/mLのヤギ抗LDL受容体抗体(R&D Systems)で被覆した。プレートを緩衝剤Aで十分に洗浄し、次いで、緩衝剤B(緩衝剤A中の1%ミルク)で2時間遮断した。洗浄後、緩衝剤C(10mM CaCl2が補充された緩衝剤B)中で希釈された0.4マイクログラム/mLのLDL受容体(R&D Systems)を用いて、プレートを1.5時間インキュベートした。このインキュベーションと同時に、緩衝剤A中に希釈された様々な濃度の31H4 IgG2、31H4 IgG4、21B12 IgG2、または21B12 IgG4抗体、または緩衝剤Aのみ(対照)とともに、20ng/mLのビオチン化されたD374Y PCSK9をインキュベートした。LDL受容体を含有するプレートを洗浄し、ビオチン化されたD374Y PCSK9/抗体の混合物をそれらに移し、室温で1時間インキュベートした。LDL受容体へのビオチン化されたD374Yの結合を、緩衝剤C中の500ng/mLのストレプトアビジン−HRP(Biosource)とともにインキュベートし、続いて、TMB基質(KPL)とともにインキュベートすることによって検出した。1N HClを用いて、このシグナルを消光し、450nmで吸光度を読み取った。
細胞LDL取り込みアッセイ
この実施例は、細胞によるLDL取り込みを減少させる様々な抗原結合タンパク質の能力を示す。10% FBSが補充されたDMEM培地(Mediatech,Inc)中の1ウェル当たり5×105細胞の濃度で、黒色透明底96ウェルプレート(Costar)中に、ヒトHepG2細胞を播種し、37℃(5% CO2)で一晩インキュベートした。PCSK9および抗体複合体を形成するために、取り込み緩衝剤(1% FBSを含むDMEM)中に希釈された様々な濃度の抗体または取り込み緩衝剤のみ(対照)とともに、室温で1時間、2μg/mLのD374YヒトPCSK9をインキュベートした。PBSで細胞を洗浄した後、D374Y PCSK9/抗体の混合物を細胞に移し、続いて、6μg/mLの最終濃度で、取り込み緩衝剤中にLDL−BODIPY(Invitrogen)を希釈した。37℃(5% CO2)で3時間のインキュベーション後、細胞をPBSで完全に洗浄し、480〜520nm(励起)および520〜600nm(発光)で、Safire(商標)(TECAN)によって、細胞蛍光シグナルを検出した。
6日間の研究における31H4抗体の血清コレステロール低下効果
PCSK9タンパク質に対する抗体療法を介した野生型(WT)マウスにおける総血清コレステロール(TC)低下を評価するために、以下の手順を行った。
6日間の研究におけるLDLRレベルに対する抗体31H4の効果
本実施例は、予測されるように、抗原結合タンパク質が時間とともに、対象におけるLDLRのレベルを変化させることを示す。LDLRレベルに対する抗体31H4の効果を確認するために、ウェスタンブロット分析を行った。実施例13に記載される殺処分したマウスから得られた50〜100mgの肝臓組織を、完全なプロテアーゼ阻害剤(Roche)を含有する0.3mLのRIPA緩衝剤(Santa Cruz Biotechnology Inc.)中に均質化した。ホモゲネートを氷上で30分間インキュベートし、細胞片をペレット化させるために遠心分離した。BioRadタンパク質アッセイ試薬(BioRad laboratories)を用いて、上清中のタンパク質濃度を測定した。70℃で10分間、100μgのタンパク質を変性させ、4〜12%のBis−Tris SDS勾配ゲル(Invitrogen)上で分離した。タンパク質を0.45μm PVDF膜(Invitrogen)に移し、5% 無脂肪ミルクを含有する洗浄緩衝剤(50mM Tris PH7.5、150mM NaCL、2mM CaCl2、および0.05% Tween20)中で、室温で1時間遮断した。次いで、ヤギ抗マウスLDLR抗体(R&D system)1:2000または抗βアクチン(sigma)1:2000を用いて、室温で1時間、ブロットのプローブ検査を行った。ブロットを短時間洗浄し、ウシ抗ヤギIgG−HRP(Santa Cruz Biotechnology Inc.)1:2000またはヤギ抗マウスIgG−HRP(Upstate)1:2000とともにインキュベートした。室温で1時間のインキュベーション後、ブロットを完全に洗浄し、ECLプラスキット(Amersham biosciences)を用いて、免疫反応性バンドを検出した。ウェスタンブロットは、図9に示されるように、抗体31H4の存在下でLDLRタンパク質レベルの増加を示した。
13日間の研究における抗体31H4の血清コレステロール低下効果
13日間の研究において、PCSK9タンパク質に対する抗体療法を介した野生型(WT)マウスにおける総血清コレステロール(TC)低下を評価するために、以下の手順を行った。
13日間の研究におけるHDLレベルに対する抗体31H4の効果
実施例15中の動物に対するHDLレベルも調べた。HDLレベルは、マウスにおいて減少した。より具体的には、10mg/kgで投与された動物は、3日目に、HDLレベルの33%の減少を示し、13日目までに、投与前レベルまで徐々に戻った。図10Bは、この実験の結果を示す。3日目に、34%のHDLレベルの減少があった。図10Bは、反復された13日の実験の結果を示す。
抗体の複数回投与は抗原結合ペプチドの継続的な利益をもたらす
追加の投与によるさらなる利益に関して、上記実施例において得られた結果を延長することができるかを確認するために、図11Aに示される投薬スケジュールを用いて実施例15および16の実験を反復した。結果を図11Bに示す。図11Bのグラフで見ることができるように、すべてのマウスが31H4抗原結合タンパク質の最初の注射を受けたので、マウスの両群は総血清コレステロールの著しい減少を示し、31H4 ABPのさらなる注射を受けたマウスは、総血清コレステロールの継続した減少を示したのに対して、対照注射を受けただけのマウスは、最終的には、総血清コレステロールの増加を示した。図11に関して、変化率は、t=0時間でのナイーブ動物に関するものである(*P<0.01、**P<0.001)。
コレステロール関連障害の治療のためのPCSK9抗体の使用
(コレステロール(血清コレステロール等)の減少が有益であり得る)コレステロール関連障害を示すヒト患者に、治療的有効量のPCSK9抗体31H4(または、例えば21B12)が投与される。治療中の定期的な時点で、障害の症候が沈静化したかどうかを判定するために、患者をモニターする。治療後に、PCSK9抗体を用いた治療を行っている患者は、治療されていない患者と比較して、血清コレステロールレベルの減少を有することが見出される。
高コレステロール血症の治療のためのPCSK9抗体の使用
高コレステロール血症の症候を示すヒト患者に、31H4(または、例えば21B12)等の治療的有効量のPCSK9抗体を投与する。治療中の定期的な時点で、血清コレステロールレベルが低下したかどうかを判定するために、ヒト患者をモニターする。治療後に、PCSK9抗体を用いた治療を受けている患者は、治療を受けていない関節炎患者と比較して、血清コレステロールレベルが減少していることが見出される。
冠状動脈性心臓病および/または再発性心血管事象の予防のためのPCSK9抗体の使用
冠状動脈性心臓病を発症するリスクを有するヒト患者を特定する。単独で、例えば、シンバスタチン等のスタチンと同時に、または順次に、31H4(または、例えば21B12)等の治療的有効量のPCSK9抗体を患者に投与する。治療中の定期的な時点で、患者の総血清コレステロールレベルが変化するかどうかを判定するために、ヒト患者をモニターする。予防的処置全体を通じて、PCSK9抗体を用いた治療を受けている患者は血清コレステロールが減少し、それによって、処置を受けていない患者と比較して、冠動脈性心臓病または再発性心血管事象に対するリスクを減少させることが見出される。
高コレステロール血症の予防のためのPCSK9抗原結合タンパク質の使用
高コレステロール血症を発症するリスクを示すヒト患者が、家族歴分析および/または生活様式、および/または現在のコレステロールレベルによって特定される。対象は、治療的有効量のPCSK9抗体31H4(または、例えば21B12)を定期的に投与される(例えば週に1回)。治療中の定期的な時点で、血清コレステロールレベルが減少したかどうかを判定するために、患者をモニターする。治療後に、PCSK9抗体を用いた治療を行っている対象は、治療されていない対象と比較して、血清コレステロールレベルが低下していることが見出される。
健常な対象におけるヒト抗PCSK9抗体の安全性、忍容性、薬物動態、および薬理学を評価するための第1相の無作為化、二重盲検、プラセボ対照、上昇する単回投与研究
この研究は、健常な対象におけるヒト抗PCSK9抗体(モノクローナル抗体21B12)の安全性、忍容性、PK、および薬理学(PD)(LDL−C)を評価するための無作為化、二重盲検、プラセボ対照、上昇する単回投与研究であった。対象は、7、21、70、210、もしくは420mgの用量での21B12の皮下投与、または対応するプラセボ;または21もしくは420mgの用量での21B12の静脈内投与、または対応するプラセボを受けるように、3:1の比率(21B12:プラセボ;7つのコホート中の合計56人の対象に対して1用量コホート当たり8人の対象)で無作為化された。
安定なスタチンの投与時の高脂血症を患っている対象におけるヒト抗PCSK9抗体の安全性、忍容性、薬物動態、および薬理学を評価するための第1相の無作為化、二重盲検、プラセボ対照、上昇する複数回投与研究
この研究は、現在、安定なスタチンの投与時の高脂血症の(例えば、高コレステロール血症の)対象における、ヒト抗PCSK9抗体(モノクローナル抗体21B12)を用いた、第1b相の無作為化、二重盲検、プラセボ対照、上昇する複数回投与研究である。この研究は、7つのコホートを有した。すべてのコホートに対する目的は、21B12の安全性、忍容性、および免疫原性の特徴付け、ならびにPKおよびPD(LDL−CおよびPCSK9)の特徴付けが含まれた。研究のコホート1〜5は、安定な低度から中等度のスタチンの投与時の高コレステロール血症の対象における21B12の用量漸増部分を示した。1ヶ月以上、安定的に毎日ロスバスタチンを40mg未満、アトルバスタチンを80mg未満、またはシンバスタチンを20〜80mgを処方されているLDL−C(70〜200mg/dL)を有するコホート1〜5の対象(コホート当たりn=8)がそれぞれ、21B12の5つの皮下投与の投与量のうちの1つ(14もしくは35mgを週1回で6回;または140mgもしくは280mgを隔週1回で3回;または420mgを4週間に1回で2回)を受けるように、3:1の比率で無作為化された。コホート6は、高用量のスタチン(アトルバスタチン80mgまたはロスバスタチン40mg)を投与されている高コレステロール血症の対象において行われた。このコホート中の対象(n=12)は、ロスバスタチン40mgまたはアトルバスタチン80mgのいずれかを処方され、それぞれ、21B12(140mgの皮下投与を隔週1回で3回)または対応するプラセボを受けるように、3:1の比率で無作為化された。コホート7は、(WHO基準を用いて識別された)ヘテロ接合型家族性高コレステロール血症を患っている対象において行われ、このコホート中の対象(n=6)はそれぞれ、21B12(140mgの皮下投与を隔週1回で3回)または対応するプラセボを受けるように、2:1の比率で無作為化された。明確にするために、コホート1は、14mgの用量の21B12の皮下投与を週1回で6回受けた。コホート2は、35mgの用量の21B12の皮下投与を週1回、6回受けた。コホート3は、140mgの用量の21B12の皮下投与を隔週1回で3回受けた。コホート4は、280mgの用量の21B12の皮下投与を隔週1回で3回受けた。コホート5は、420mgの用量の21B12の皮下投与を4週間に1回で2回受けた。
ヘテロ接合型家族性高コレステロール血症を患っている対象におけるヒト抗PCSK9抗体の忍容性および有効性を評価するための二重盲検、プラセボ対照研究
この研究の目的は、ヘテロ接合型家族性高コレステロール血症(HeFH)を患っている対象における低密度リポタンパク質コレステロール(LDL−C)のベースラインからのパーセント変化について、プラセボと比較したヒト抗PCSK9抗体(モノクローナル抗体21B12)の12週間の皮下投与(SC)の効果を評価することである。
責任医師の意見では、
漸増(uptitration)を必要としない。スクリーニング時の中央実験室で、空腹時のLDL−Cは、100mg/dL(2.6mmol/L)以上であり、空腹時のトリグリセリドは、400mg/dL(4.5mmol/L)以下でなければならない。
有効量のHMG−Co−Aレダクターゼ阻害剤を忍容できない高コレステロール血症患者における、エゼチミブと比較したLDL−Cに対するヒト抗PCSK9抗体の忍容性および有効性を評価するための無作為化研究
この研究の目的は、有効量のHMG−CoAレダクターゼ阻害剤を忍容できない高コレステロール血症患者における、低密度リポタンパク質コレステロール(LDL−C)のベースラインからのパーセント変化について、エゼチミブと比較したヒト抗PCSK9抗体(モノクローナル抗体21B12)の12週間の皮下投与(SC)の効果を評価することである。
10年間のフラミンガムリスクスコアが10%以下の高コレステロール血症患者における、LDL−Cに対するヒト抗PCSK9抗体の忍容性および有効性を評価するための無作為化、プラセボおよびエゼチミブ対照化、投与量範囲研究
この研究の目的は、10年間のフラミンガムリスクスコアが10%以下の高コレステロール血症患者において単剤療法として使用されるとき、低密度リポタンパク質コレステロール(LDL−C)のベースラインからのパーセント変化に対してプラセボと比較した2週間ごと(Q2W)または4週間ごと(Q4W)のヒト抗PCSK9抗体(モノクローナル抗体21B12)の12週間の皮下投与(SC)の効果を評価することであった。
高コレステロール血症患者における、HMG−Co−Aレダクターゼ阻害剤と組み合わせたLDL−Cに対するヒト抗PCSK9抗体の忍容性および有効性を評価するための二重盲検、無作為化、プラセボ対照、用量範囲研究
この研究の目的は、高コレステロール血症を患っている対象において、HMG−Co−Aレダクターゼ阻害剤(例えば、スタチン)に加えて使用されるとき、低密度リポタンパク質コレステロール(LDL−C)のベースラインからのパーセント変化に対する、プラセボと比較したヒト抗PCSK9抗体(モノクローナル抗体21B12)の2週間ごと(Q2W)または4週間ごと(Q4W)の12週間の皮下投与(SC)の効果を評価することである。
対象は、エゼチミブを用いてまたは用いることなく、LDL−Cスクリーニング前の少なくとも4週間安定な用量で、漸増を必要とせず、スタチンを常用していなければならない。スクリーニング時、空腹時のLDL−Cは、85mg/dL(2.2mmol/L)以上でなければならない。85mg/dL(2.2mmol/L)以上で100mg/dL(2.6mmol/L)未満の空腹時のLDL−Cのスクリーニングを伴う対象の登録は、全体の計画された登録のうちの約20%以下に限定される。空腹時のトリグリセリドは、スクリーニング時、中央実験室分析で判定されるように、400mg/dL(4.5mmol/L)以下でなければならない。
PCSK9 ABPは、スタチンの存在下でLDLRをさらに上方制御した
この実施例は、スタチンの存在下で使用されるとき、PCSK9に対するABPは、LDLRの利用可能性のさらなる増加をもたらしたことを示し、2つの併用によりさらなる利益が達成され得ることを示す。
コンセンサス配列
抗PCSK9 ABPのVHおよびVLに対応するCDRの標準的な系統発生学的分析を用いて、コンセンサス配列を決定した。VHまたはVLに対応する同じ配列内に隣接するCDRを保持することによって、コンセンサス配列を決定した。簡潔に言えば、比較アラインメントのプロセシングおよび系統発生の推論を容易にするために、VHまたはVLのいずれかの全可変ドメインに対応するアミノ酸配列をFASTAフォーマットに変換した。次に、VHまたはVLに対応する同じ配列内にCDRをなお隣接させながら、偶発的現象(例えば、共通の生殖系列フレームワークの継承を偶然共有する無関係の抗体等)に起因するアミノ酸位置重み付けバイアスを一切導入することなく、CDRのみの検査を行うことができるように、これらの配列のフレームワーク領域を、人工のリンカー配列(「bbbbbbbbbb」代用配列、非特異的な核酸構築物)と置き換えた。次いで、このフォーマットのVHまたはVL配列は、標準的なClutalW様アルゴリズムを使用するプログラム(Thompson et al.,1994,Nucleic Acids Res.22:4673〜4680を参照)を用いて、配列相同性アラインメント検索に供された。8.0のギャップ生成ペナルティーが、2.0のギャップ伸長ペナルティーとともに使用された。同様に、このプログラムは、分岐長の比較およびグループ分けを介して配列群の相同性および相違を構築し、図解するために、UPGMA法(相加平均を用いた重み付けされていないペアグループ法)または隣接連結法(Saitou and Nei,1987,Molecular Biology and Evolution 4:406〜425を参照)のいずれかを用いて配列相同性アラインメントに基づいて系統樹(系統発生樹の図解)を作成した。いずれの方法も、類似の結果をもたらしたが、UPGMA法はより単純で、より保守的な一群の仮説を使用するので、UPGMAによって得られた系統樹が最終的に使用された。グループ内の個々の配列のうち、100残基当たり15未満の置換を有するとして、配列の類似のグループ(スケールに関しては、系統樹の図解中の注釈を参照)が定義された、UPGMAによって得られた系統樹を作成し、コンセンサス配列集合を定義するために使用した。比較の結果を図13A〜13Jおよび図48〜49に示す。図13Eでは、クレードを形成する軽鎖中の配列が、重鎖中でもクレードであり、15未満の置換を有するように、グループが選択された。
PCSK9 ABP製剤の調製
UF/DF−限外濾過法/透析濾過法
薬物物質、例えば、抗体21B12および抗体11F1は、50cm2の大きさのMillipore Pellicon XLフィルター(再生セルロース、30,000分子量カットオフ)膜を使用して、ベンチスケールのMillipore TFF UF/DFシステムを用いて、安定剤を含む製剤緩衝液に緩衝液交換された。透析濾過ステップは、少なくとも10体積の透析濾過緩衝剤が交換されるまで行われた。一旦透析濾過ステップが完了すると、UF/DFシステムは、透析濾過モードに切り替えられ、それぞれの製剤は標的濃度レベルまで濃縮された。
低粘度を有する高濃度のPCSK9 ABP製剤
高濃度タンパク質の粘度に対する異なる賦形剤の効果を評価するために、粘度、安定性、および溶解性スクリーニングアッセイが、高濃度タンパク質製剤に対する賦形剤の粘度の調節物質を調べるために使用された。具体的には、例えば抗体21B12試料等のすべての試料の調製は、層流フード下で、無菌で行われた。試験されるべき試料の凍結乾燥により、高濃度タンパク質を達成するための簡易な方法を可能にした。1.5mLの70mg/mLのタンパク質(例えば21B12)を、3ccの凍結乾燥用ガラスバイアルに分注した。凍結乾燥は、VirTis実験室規模凍結乾燥機において一般的な凍結サイクルを用いて行われた。凍結乾燥緩衝剤は、1.0% スクロース、pH4.8を含む10mM L−グルタメートであった。凍結乾燥された試料(例えば、凍結乾燥された21B12試料)は、タンパク質の最終濃度が150〜200mg/mLになるまで、以下の表13に示される、約0.65mLの賦形剤緩衝剤を用いて個々に再構成された。再構成された試料は、溶解が完了するまで一晩放置した。次いで、以下に記載されるように、粘度を測定した。
もともと10mMの酢酸ナトリウム、9.0%(w/v) スクロース中の21B12からのスクロース除去は、約10mLの21B12をPierce Slide−A−Lyzer(Rockford,IL)透析カセットを加えて、完全な緩衝液交換のために4℃で3サイクル(2時間×2および16時間×1)、2Lの緩衝液に対して透析することによる透析を介して達成された。透析用緩衝液は、pH5.0で、(酢酸から作製された)10mM 酢酸ナトリウムを含有した。続いて、すべての試料は、Millipore Amicon UltraPrep Devices(Billerica,MA)を用いて濃縮され、試料体積が所望の濃度に必要とされる体積をわずかに下回るまで、Beckman Coulter Allegra 6R遠心分離機(Fullerton,California)中で、3000rpmで回転させた。
プロリン、ベンジルアルコール、クレアチニン、メチオニン、タウリン等の賦形剤は、粘度を低下させるために試験された。これらの賦形剤は、高濃度原液からの21B12製剤試料に個々に添加された。
粘度は、一定の25℃の循環水浴によって調節される試料カップの温度に合わさせながら、CPE−40スピンドルを備えるBrookfield LV−DVIIコーンおよびプレート粘度計(Middleboro,Massachusetts)を用いて測定された。500μLの試料を、ポジティブディスプレイスメントピペッターを用いて試料カップに加えた。試料カップを固定した後、スピンドルの回転速度を約80%のトルクが達成されるまで徐々に増加させた。この時点で、回転速度が停止し、粘度の読み出し、Rheocalcソフトウェアによって生成された。
高濃度11F1の粘度研究
表30は、25℃での様々な抗体濃度および様々な製剤中の11F1抗体の粘度を示す。
高濃度PCSK9 ABP製剤の安定性研究
高タンパク質PCSK9 ABP製剤に対する安定性の効果を評価するために、21B12の組成物が、以下の表31.1に示される異なる製剤中で製剤化された。製剤は、−30℃または4℃で、0週間、1ヶ月間、2ヶ月間、3ヶ月間、6ヶ月間、および1年間、指示された容器内でインキュベートされた。それぞれの製剤に関しては、それぞれの時点で、試料を、天然サイズ排除HPLC(SEC−HPLC)および光不明瞭化による不可視粒子検出(HIAC)によって抗体モノマーをモニタリングするためにそれぞれのパッケージから取り出した。
SEC−HPLCは、それらの流体力学的体積の差に基づいてタンパク質を分離する。より大きな流体力学的体積のタンパク質を有する分子は、より小さい体積を有する分子よりも早く溶出する。可変波長検出器を備えたAgilent HPLC上で、5μm 粒径を有するTSK−GEL G3000SWXL 7.8mm×300mmカラム(Tosoh Bioscience)を用いて、天然SEC−HPLCを行った。移動相は、100mM リン酸ナトリウム、250mM 塩化ナトリウム、pH6.8±0.1であった。流速は、0.5mL/分であった。カラム溶出液は、280nmでモニタリングされた。クロマトグラム内の積分ピーク面積を使用して、モノマーおよび高分子量種の分量を定量化した。
液体試料採取装置を有する光不明瞭化センサー(HIAC/Royco HRLD−150または同等物)を含む電気液体伝達(liquid−borne)粒子計数システム(HIAC/Royco 9703または同等物)は、所与の試験試料中の粒子数およびそれらのサイズ範囲を定量化する。液体中の粒子が光源と検出器との間を通過する場合に、それらは、検出器上に位置する光線を減退させるか、または「不明瞭化する」。粒子の濃度がセンサーの正常な範囲内にある場合に、これらの粒子は、1つずつ検出される。それぞれの粒子の検出ゾーンの通過は、光検出器上の入射光を減少させ、光検出器の電圧出力が一過的に減少する。電圧の変化は、存在する粒子数に機器によって変換される電気パルスとして登録する。この方法は、非特異性であり、それらの起源に関わらず粒子を測定する。モニタリングされた粒径は、10μmおよび25μmであった。
11F1の安定性研究
11F1の高濃度製剤(150mg/mL)を研究するために、幾つかの製剤が以下表32Aに示されるように、候補賦形剤を用いて作製された。製剤は、−30℃または4℃で、少なくとも6ヶ月間、指示された容器内で保存された。
液体試料採取装置を有する光不明瞭化センサー(HIAC/Royco HRLD−150または同等物)を含む電気液体伝達(liquid−borne)粒子計数システム(HIAC/Royco 9703または同等物)は、所与の試験試料中の粒子数およびそれらのサイズ範囲を定量化する。液体中の粒子が光源と検出器との間を通過する場合に、それらは、検出器上に位置する光線を減退させるか、または「不明瞭化する」。粒子の濃度がセンサーの正常な範囲内にある場合に、これらの粒子は、1つずつ検出される。それぞれの粒子の検出ゾーンの通過は、光検出器上の入射光を減少させ、光検出器の電圧出力が一過的に減少する。電圧の変化は、存在する粒子数に機器によって変換される電気パルスとして登録する。この方法は、非特異性であり、それらの起源に関わらず粒子を測定する。モニタリングされた粒径は、10μmおよび25μmであった。
11F1の結合特異性
このアッセイからの結果は、11F1がPCSK9に結合するが、PCSK1、PCSK2、PCSK7、またはフーリンには結合しないことを示し、このことはPCSK9に対する11F1の特異性を示す。
LDLR:PCSK9結合の11F1阻害の有効性
本実施例は、ナノモル濃度の11F1が、このアッセイの条件下でLDLRへのD374Yおよび野生型PCSK9の両方の結合を阻害することができることを示す。
細胞LDL取り込みを遮断する11F1の有効性
11F1は、インビトロでPCSK9とLDLRとの間の相互作用を遮断し、HepG2細胞中のPCSK9媒介によるLDL取り込みの減少を防ぐことができる。
マウスモデルにおけるアデノ随伴ウイルスを介して発現されたヒトPCSK9を遮断する11F1および8A3の有効性
抗PCSK9抗体11F1または8A3の単回静脈内ボーラス投与は、AAVによりヒトPCSK9を発現するマウスにおける血清非HDL−CおよびTCの有意な減少をもたらす。この実施例は、インビボでのヒトPCSK9の機能を遮断する両方の抗PCSK9抗体の有効性を示す。
WinNonlin Enterprise,バージョン5.1.1(Pharsight,St.Louis,MO)を用い、それぞれの対象に対して事前に決定された公称時点(nominal time point)を用い、血清濃度に対する非コンパートメント分析(NCA)を行った。末端排出速度定数および半減期を推定するためのデータ点は、濃縮−時間プロファイルの目視検査により選択された。報告されたNCAパラメータには、見かけの半減期(t1/2)、時間ゼロから最後に測定された濃度(AUC0−t)までの血清濃度−時間曲線下面積、および見かけの血清クリアランス(CL0−t)が含まれる。AUC0−tは、線形対数線形台形法則を用いて決定され、CL0−tは、Dose/AUC0−tによって算出された。11F1、8A3、および31H4抗体については。研究後の用量溶液分析は、実際の用量が、30mg/kgの標的の20%以内であったことを示した。しかしながら、IgG2対照については、分析は、実際の用量が、意図された標的のわずか40%であったことを示した。したがって、12mg/kgの訂正された用量が、IgG2対照用のCL0−t算出のために使用された。パラメータは、2つの有意な統計に対して報告された半減期を除いては、3つの有意な統計に対して報告された。
すべてのコレステロール結果は、平均±標準誤差として表された。すべての薬物動態学的データは、平均±標準偏差として表された。一元配置ANOVAによって決定された0.05のp値を閾値として使用して、同じ時点で、抗KLH IgG2対照抗体を注射された動物と抗PCSK9抗体を投与したものとの間の統計的優位性を決定した。
ベースラインを構築するために、ヒトPCSK9を発現する一部のマウスを抗体の注射前に殺処分し、血液を回収した。これらの動物における非HDL−C、HDL−C、およびTCレベルはそれぞれ、33±4、117±4、および183±9mg/dL(平均±平均誤差)であった。ナイーブ動物におけるPCSK9のレベルは、4921ng/mL±2044ng/mLであると判定された。
30mg/kgの静脈内投与で、11F1および8A3は、非常に類似した薬物動態学的挙動を有した(図39)。これらの2つの分子については、AUC0−tの曝露量、推定されたCL0−t、および見かけの半減期が同等であった(図40の表)。抗KLH IgG2対照抗体は、11F1および8A3よりも予想外に低いAUC0−tの曝露量を有したが、これは、意図された用量よりも低い抗体が投与されたためである可能性が高い(30mg/kgとは対照的に12mg/kg、用量溶液分析は、抗体濃度が標的の40%であることを示した。抗KLH IgG2対照抗体CL0−tは、訂正された用量を用いて算出された場合、11F1および8A3のものと同様であり、120時間を超える抗KLH IgG2対照抗体の見かけの半減期が推定された。AAVモデルにおいて投与された他の抗体と比較した場合に、11F1および8A3のCL0−t値が抗KLH IgG2対照抗体に対してより類似しているため、抗体配置に対するPCSK9リガンドの影響が、11F1および8A3に対してあまり生じないことをこれらのデータは示唆した。
マウスにおけるAAVによるヒトPCSK9の発現(約5μg/mL)は、約33mg/dLの血清非HDL−Cレベルにおいて生じた。30mg/kgの11F1の注射後、有意な血清非HDL−Cの低下が、注射から1、2、および4日目に観察された(対照動物と比較して、59%の最大値を有する)。TCの有意な低下は、4日目のみに見られた。8A3の注射は、対照動物と比較して、65%の最大値で非HDL−Cを低下させる類似パターンを生じた。しかしながら、8A3投与は、24%の最大値で、注射してから2日目のみ、有意なTC低下をもたらした。11F1または8A3のいずれを投与した動物においても、HDL−Cの有意な低下は観察されなかった。11F1および8A3の血清抗体レベルの分析は、抗KLH IgG2対照抗体に対して同様のプロファイルを示した。
カニクイザルにおける血清脂質に対する11F1、21B12、および8A3の単回皮下投与の効果
カニクイザルに対する11F1、8A3、または21B12の単回皮下投与は、血清LDL−CおよびTCの有意な低下をもたらす。この研究は、非ヒト霊長類における血清コレステロールを低下させる抗PCSK9抗体の能力を示した。
ベースラインを共変量として見なし、処置群を母数効果として見なす統計的モデルを、LDL−C、HDL−C、TC、およびトリグリセリドに対するそれぞれの時点で対数変換した反応に当てはめた。Tukeyの多重比較補正は、それぞれの時点で、ペアワイズ比較(pair wise comparison)を調整するために適用した。統計的有意性は、調整したp値を用いて、α=0.05で評価された。
11F1に対する最大のLDL−C低下が、注射してから9日間後に観察され、抗KLH IgG2対照抗体で処置したサル(対照動物)と比較して、LDL−Cが57%低下した。LDL−Cは、27日目に対照動物において観察されたものと同様のレベルまで戻った。21B12に対する最大のLDL−C低下が、注射してから3日後に観察され、対照動物と比較して、LDL−Cが64%低下した。LDL−Cは、6日目に対照動物と同様のレベルまで戻った。8A3に対する最大のLDL−C低下が、注射してから4日後に観察され、対照動物と比較して、LDL−Cが54%低下した。LDL−Cは、27日目に対照動物において観察されたものと同様のレベルまで戻った(図41)。
11F1に対する最大のTC低下が、注射してから9日間後に観察され、抗KLH IgG2対照抗体で処置したサル(対照動物)と比較して、TCが27%低下した。TCは、27日目に対照動物において観察されたものと同様のレベルまで戻った。21B12に対する最大のTC低下が、注射してから3日間後に観察され、対照動物と比較して、TCが20%低下した。TCは、4日目にビヒクルで処置したサルにおいて観察されたものと同様のレベルまで一時的に戻ったが、14日目〜18日目(両端の日を含む)の間で著しく低下した。8A3に対する最大のTC低下が、注射してから9日間後に観察され、対照動物と比較して、TCが22%低下した。TCは、30日目に対照動物において観察されたものと同様のレベルまで戻った(図42)。
平均して、それぞれの時点で、11F1または8A3で処置された動物に対するHDL−Cまたはトリグリセリドは、抗KLH IgG2対照抗体で処置したサルにおいて観察されたものと有意に異ならなかった(α=0.05の有意水準に基づく)。しかしながら、21B12は、単一の時点(注射してから18日目)でHDL−Cの統計的に有意な変化を引き起こした(図43および図45)。
血清ApoBレベルが、注射後、3、6、15、24、および33日目に測定された。11F1および8A3は、抗KLH IgG2対照抗体で処置したサルと比較して、3日目〜24日目でのApoB低下と関連していた(図46)。21B12は、3日目のみ統計的に有意に低いApoBレベルと関連していた。
処置による平均濃度時間プロファイルの要約プロットを748に示す。11F1、21B12、8A3、および抗KLH IgG2対照抗体を受けている動物に対して推定された平均薬物動態パラメータを図47の表に示す。
45日間の研究にわたって、TCおよびLDL−Cの統計的に有意な低下が、抗KLH IgG2対照抗体と比較して、11F1、21B12、または8A3を投与した動物において観察された。11F1は、2日目〜24日目(両端の日を含む)で(抗KLH IgG2対照抗体に対して)統計的に有意なLDL−C低下と関連していた。21B12は、包括的には、1日目〜4日目で(抗KLH IgG2対照抗体に対して)統計的に有意なLDL−C低下を示した。8A3は、包括的には、1日目〜24日目で(抗KLH IgG2対照抗体に対して)統計的に有意なLDL−C低下を示した。TCおよびApoBの変化は、すべての群でのLDL−Cにおいて観察された変化を反映した。11F1は、注射してから9日後、(同じ時点で抗KLH IgG2対照抗体に対して)LDL−Cの最大の低下(−57%)を達成した。21B12は、注射してから3日後、(同じ時点で抗KLH IgG2対照抗体に対して)LDL−Cの最大の低下(−64%)を達成した。8A3は、注射してから4日後、(同じ時点で抗KLH IgG2対照抗体に対して)LDL−Cの最大の低下(−54%)を達成した。21B12は、注射してから18日後、単一の時点で、HDL−Cが低下した。11F1または8A3投与後のHDL−Cレベルにおいて、統計的に有意な変化は観察されなかった。11F1、21B12、または8A3投与後のトリグリセリドレベルにおいて、統計的に有意な変化は観察されなかった。
ホモ接合型家族性高コレステロール血症を患っている対象におけるLDL−Cに対するヒト抗PCSK9抗体の安全性、忍容性、および有効性を評価するための二部研究
研究設計:これは2つの部分を含む研究である。パートAは、非盲検、単一アームの多施設試験的研究である。パートBは、広範な登録を有するが、その他は、パートAと同一の設計である、ヒト抗体21B12の二重盲検、無作為化、プラセボ対照、多施設研究である。試験対象患者基準/除外基準および評価スケジュールはいずれも、パートAおよびBに対して同じである。
試験対象患者基準には、以下が含まれる:
・12歳以上65歳以下の男性および女性
・ホモ接合型家族性高コレステロール血症の診断
・少なくとも4週間の安定した脂質低下療法
・130mg/dL(3.4mmol/L)超のLDLコレステロール
・400mg/dL(4.5mmol/L)未満のトリグリセリド
・スクリーニング時、40kg以上の体重。
除外基準には、以下が含まれる:
・無作為化する8週間以内にLDLまたは血漿吸着法
・ニューヨーク心臓病協会(NYHA)のクラスIIIもしくはIVまたは最新の左心室駆出分画率が30%未満
・無作為化する3ヶ月以内に心筋梗塞、不安定狭心症、経皮冠動脈インターベンション(PCI)、冠動脈バイパスグラフト(CABG)、または脳卒中
・心臓手術または血管再開通術が予定されている
・非制御の心不整脈
・非制御の高血圧症。
評価スケジュールには、有害事象(AE)および有意な有害事象(SAE)データ、バイタルサイン、併用薬、実験室での試験等の収集が含まれるが、これらに限定されない。
特許、特許出願、論文、および教科書等をふくむ本明細書中のすべての引用文献、ならびにそれらに引用された文献は、それらが既に引用されていない限り、ここで参照によりそれらの全体が本明細書に組み込まれる。参照により組み込まれた参照文献中に与えられている定義または用語のいずれもが本明細書に与えられている用語および論述と異なる場合には、本発明の用語および定義が優先する。
前記明細書は、当業者が本発明の実施を可能にするのに十分であると考えられる。前述の記載および実施例は、本発明のある特定の好ましい実施形態を詳述し、本発明者らによって想定される最良の様式を記載する。しかしながら、前記述が本文中でどれほど詳細に記載されているとしても、本発明は、多くの様式で実施することができ、本発明は、添付の特許請求の範囲およびそのあらゆる均等物に従って解釈すべきであることが理解されよう。
Claims (17)
- 安定な製剤であって、
(a)配列番号1のアミノ酸を含むPCSK9に特異的に結合する、70mg/mL〜150mg/mLの量で存在するモノクローナル抗体又はその断片、ここで、前記モノクローナル抗体又はその断片は、
i)配列番号158の相補性決定領域(CDR)1である軽鎖CDR1と、配列番号162のCDR2である軽鎖CDR2と、配列番号395のCDR3である軽鎖CDR3とであるCDRを含む軽鎖ポリペプチド、及び、配列番号308又は368のCDR1である重鎖CDR1と、配列番号175のCDR2である重鎖CDR2と、配列番号180のCDR3である重鎖CDR3とであるCDRを含む重鎖ポリペプチドを含むモノクローナル抗体又はその断片、又は
ii)配列番号23のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域、及び、配列番号49のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含むモノクローナル抗体又はその断片
である、
(b)10〜20mMの酢酸ナトリウム、
(c)アルギニン、クレアチニン、メチオニン、タウリン及びベンジルアルコールからなる群から選択される、0.5%w/v〜10%w/vの安定剤、並びに
(d)0.004%w/v〜0.01%w/vのポリソルベート20又はポリソルベート80、
を含み、
(e)pH5.0〜5.5
を有する、安定な製剤。 - モノクローナル抗体又はその断片が、
(a)配列番号156の軽鎖定常配列、
(b)配列番号157の軽鎖定常配列、
(c)配列番号154の重鎖定常配列、
(d)配列番号155の重鎖定常配列、
(e)配列番号156の軽鎖定常配列及び配列番号154の重鎖定常配列、
(f)配列番号157の軽鎖定常配列及び配列番号154の重鎖定常配列、
(g)配列番号156の軽鎖定常配列及び配列番号155の重鎖定常配列、又は
(h)配列番号157の軽鎖定常配列及び配列番号155の重鎖定常配列
をさらに含む請求項1に記載の安定な製剤。 - ポリソルベート20を含む、請求項1に記載の安定な製剤。
- ポリソルベート80を含む、請求項1に記載の安定な製剤。
- ポリソルベート20が0.004%w/vの量で存在する、請求項3に記載の安定な製
剤。 - ポリソルベート80が0.01%w/vの量で存在する、請求項4に記載の安定な製剤。
- 酢酸ナトリウムが20mMの量で存在する、請求項1に記載の安定な製剤。
- pH5.0を有する、請求項1に記載の安定な製剤。
- ポリソルベート80を含む、請求項2の安定な製剤。
- ポリソルベート80が0.01%w/vの量で存在する、請求項9に記載の安定な製剤。
- 酢酸ナトリウムが、20mMの量で存在する、請求項10に記載の安定な製剤。
- 患者のコレステロール関連障害を治療又は予防するための医薬の製造における、請求項1〜11のいずれか1項に記載の安定な製剤の使用。
- コレステロール関連障害が、家族性高コレステロール血症、非家族性高コレステロール血症、リポタンパク質(a)の上昇、心臓病、代謝症候群、糖尿病、冠状動脈性心臓病、脳卒中、心臓血管疾患、アルツハイマー病、末梢動脈疾患、高脂血症、及び脂質異常症からなる群から選択される、請求項12に記載の使用。
- 家族性高コレステロール血症が、ヘテロ接合型家族性高コレステロール血症及びホモ接合型家族性高コレステロール血症を含む、請求項13に記載の使用。
- モノクローナル抗体が、コレステロール関連障害を有する対象に140mgの投与量で2週間に1回投与される、コレステロール関連障害を治療又は予防するための請求項1〜11のいずれか1項に記載の安定な製剤。
- モノクローナル抗体が、コレステロール関連障害を有する対象に420mgの投与量で2週間に1回投与される、コレステロール関連障害を治療又は予防するための請求項1〜11のいずれか1項に記載の安定な製剤。
- モノクローナル抗体が、コレステロール関連障害を有する対象に420mgの投与量で1ヶ月に1回投与される、コレステロール関連障害を治療又は予防するための請求項1〜11のいずれか1項に記載の安定な製剤。
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