JP6513728B2 - Her3に特異的な結合分子及びそれらの使用 - Google Patents
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Description
本出願は、2012年11月12日に作製され、サイズ31.3キロバイトを有する、「Her3-100WO
1_SL」と題するテキストファイルとして、本出願と共に提出された配列表を、引用により
組み込んでいる。
本発明は、HER3に特異的に結合する組成物、及び癌治療のためのそのような組成物の使
用方法を提供する。
ヒト上皮細胞成長因子受容体3(HER3、Erbb3としても公知)は、受容体型タンパク質チロ
シンであり、且つEGFR(HER1/Erbb1)、HER2/Erbb2、HER3/Erbb3及びHER4/Erbb4からなる受
容体型タンパク質チロシンキナーゼ(RTK)の上皮細胞成長因子受容体(EGFR)EGFR/HERサブ
ファミリーに属する。EGFR及びHER2は、乳癌、結腸直腸癌、及び肺癌などの大範疇を含む
複数の固形腫瘍型の腫瘍発生を駆動するRTKの中で最もよく確立された発癌性RTKである。
EGFR及びHER2のチロシンキナーゼ活性は、それらの発癌活性に必須であることが示されて
いる。
ECD)、ECD内の二量体化ドメイン、膜貫通ドメイン、並びに細胞内タンパク質チロシンキ
ナーゼドメイン(TKD)及びC-末端リン酸化ドメインからなる(例えば、Kimらの文献、Bioch
em. J. 334, 189-195 (1998);Roepstorffらの文献、Histochem. Cell Biol. 129, 563-5
78 (2008)を参照されたい)。
ーメンバー(例えば、他のHER受容体)との二量体化及びその細胞内ドメインのリン酸転移
反応を促進することにより、受容体-媒介性シグナル伝達経路を活性化する。HER3は、恐
らくチロシンキナーゼドメイン内のある重要な残基の非保存的置換のために、検出可能な
チロシンキナーゼ活性を欠いていることが示されている。従って、このキナーゼ-欠損の
結果、HER3は、リン酸化を受け且つ機能的に活性であるためには、他のRTK、特にEGFR及
びHER2とヘテロ-二量体を形成することが必要となる。
キャフォールドタンパク質として働くことである。HER3は、リン酸化されるとコンセンサ
スPI3K/p85結合部位に似ている、6つのC-末端チロシン-含有モチーフのクラスターを含む
ことが示されている。その結果、HER3とのヘテロ二量体の形成により、上流の腫瘍駆動体
(onco-driver)であるEGFR、HER2、cMET及びFGFR2は、PI3K/AKT経路に最も効率的に連関す
ることができる。従ってHER3活性の喪失は、多岐にわたるRTKにより駆動された多様なシ
ステムにおいて癌の進行を阻止することができることを予想することは理にかなっている
。研究は、HER2-増幅された乳癌細胞におけるHER3 siRNAのノックダウンは、HER2 siRNA
のノックダウンに類似した抗-増殖作用につながることを示し、これはHER3を癌が決定的
に必要としていることを更に明らかにしている。
害薬、トラスツズマブなどのHER2モノクローナル抗体、更にはPI3K又はAKT又はMEKの小型
分子阻害剤を含む、多くの標的薬物に対する治療抵抗性をもたらすことに高度に関与する
ことがわかっている。このことは、HER3に、原発性腫瘍の減量に加え、初期の臨床反応に
もかかわらず決まって出現する癌抵抗性の問題の根絶の両方に関する確実な癌標的として
別の魅力的な積み重ね(another layer of attraction)を付け加えている。
存在下)又はリガンド-非依存性の方法を有する。HER2-HER3二量体に関して、低から中等
度のHER2発現を伴う細胞において、HER3は、リガンド-結合後のみHER2と複合体化するこ
とができ;対照的に、増幅されたHER2を伴う細胞(HER2 IHC 3+)において、これらは、HRG
なしに自発的に二量体を形成することが知られている(Junttilaらの文献、Cancer Cell.
15(5): 429-40 (2009))。トラスツズマブ/ハーセプチン(登録商標)(HER2 3+乳癌につい
て承認されたGenentech/Roche社のHER2モノクローナル抗体)は、リガンド-非依存性二量
体のみを破壊することができ、リガンド-依存性二量体はできないのに対し、ペルツズマ
ブ/オムニターグ(登録商標)(rhuMAb 2C4、臨床試験第3相にあるGenentech/Roche社のHER
2モノクローナル抗体)は、リガンド-依存性二量体のみを破壊することができることは、
初期の研究により明らかにされているので、リガンドの存在又は非存在下で形成された二
量体は、構造的に異なる。
ナルの多様化のみではなく、シグナル増幅のための手段でもある。HER3は、様々な細胞状
況においてリン酸化されることが示されている。例えば、HER3は、HER3を過剰発現してい
るヒト乳癌細胞のサブセットにおいて、チロシン残基上で構成的にリン酸化される(例え
ば、Krausらの文献、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90, 2900-2904 (1993);Kimらの文献
、Biochem. J. 334, 189-195 (1998);Schaeferらの文献、Cancer Res. 64, 3395-3405 (
2004);Schaeferらの文献、Neoplasia, 8, 612-622 (2006)を参照されたい)。従って、HE
R3リン酸化を効果的に妨害する療法が望まれている。
、造血系新生物、網膜芽細胞腫、メラノーマ、結腸直腸癌、胃癌、頭頸部癌、肺癌などの
いくつかの癌型において、過剰発現され及び/又は過剰活性化されることがわかっている
(例えば、Sithanandam及びAndersonの文献、Cancer Gene Ther. 15, 413-448 (2008)を参
照されたい)。概して、HER3は、EGFR、HER2、C-Met、及びFGFRIIを発現している癌におい
て活性化されることが多い。
andiらの文献、 Oncogene, 10, 1813-1821;DeFazioらの文献、Cancer, 87, 487-498;Na
iduらの文献、Br. J. Cancer, 78, 1385-1390)。従ってHER3は、増大した腫瘍の攻撃性及
び生存不良に関する診断マーカーとして使用することができる。PI3K/AKTの持続されたHE
R3活性化は、EGFR/HER2阻害剤に対する腫瘍抵抗性を説明することが繰り返し示されてい
る。
J. Cancer, 115, 519-527 (2005);Xueらの文献、Cancer Res. 66, 1418-1426 (2006)を
参照されたい)にもかかわらず、HER3は依然臨床介入の標的として大部分は正しく評価さ
れていない。ほとんどの現在の免疫療法は、HER2の作用を、特にHER2/HER3複合体のヘテ
ロ二量体化を阻害することに主として焦点を当てている(例えば、Sliwkowskiらの文献、J
. Biol. Chem. 269, 14661-14665 (1994)を参照されたい)。従って、様々な癌の診断、予
後予測、及び治療に使用することができるHER3-媒介性細胞シグナル伝達を効果的に阻害
する改善された免疫療法薬を提供することが、本発明の目的である。
本開示は、抗-HER3結合分子、例えば、抗体又はそれらの抗原-結合断片、例えば、リガ
ンド-依存性及び非依存性の両状況でHER3活性を抑制することが可能であるモノクローナ
ル抗体を提供する。対照的に、当該技術分野における他の抗-HER3モノクローナル抗体(例
えば、Ab #6(国際公開公報WO 2008/100624)及びU1-59(国際公開公報WO 2007077028;本明
細書ではAMGとも称される)は、リガンド-依存性HER3活性のみを抑制することができる。
同じく、増大した効力及び延長された半減期を伴い、その結果投与頻度が減り、投薬間隔
が長くなり、且つ投与容積がより小さい、親和性成熟された抗-HER3-結合分子も開示され
ている。本開示はまた、抗-HER3結合分子を投与することを含む、ヒト対象において、癌
などの疾患を治療する方法も提供する。一部の具体的態様において、2C2-誘導されたYTE
変異体ヒト抗体が使用される。
子又はそれらの抗原-結合断片であって、ここで該結合分子が、CL16又は2C2の重鎖可変領
域(VH)及び軽鎖可変領域(VL)を含む抗体又はそれらの抗原-結合断片と同じHER3エピトー
プへ特異的に結合する、単離された結合分子又はそれらの抗原-結合断片を提供する。同
じく、HER3へ特異的に結合し、且つCL16又は2C2のVH及びVLを含む抗体又はそれらの抗原-
結合断片により、HER3結合を競合的に阻害する、単離された結合分子又はそれらの抗原-
結合断片も提供する。
抗原結合断片であって、ここで該VLが、下記アミノ酸配列を含む:
(a)X1は、アミノ酸残基アルギニン(R)又はセリン(S)を表し、
(b)X2は、アミノ酸残基セリン(S)又はロイシン(L)を表し、
(c)X3は、アミノ酸残基セリン(S)又はグリシン(G)を表し、
(d)X4は、アミノ酸残基ロイシン(L)又はプロリン(P)を表し、
(e)X5は、アミノ酸残基アルギニン(R)、イソロイシン(I)、プロリン(P)又はセリン(S)
を表し、且つ
(f)X6は、アミノ酸残基バリン(V)又はアラニン(A)を表す。)、単離された結合分子又
はそれらの抗原結合断片を提供する。
の抗原結合断片であって、ここで該VHが、下記アミノ酸配列を含む:
は、アミノ酸残基チロシン(Y)、イソロイシン(I)又はバリン(V)を表す。)、単離された
結合分子又はそれらの抗原結合断片を提供する。
酸配列を含み:
(a)X1は、アミノ酸残基アルギニン(R)又はセリン(S)を表し、
(b)X2は、アミノ酸残基セリン(S)又はロイシン(L)を表し、
(c)X3は、アミノ酸残基セリン(S)又はグリシン(G)を表し、
(d)X4は、アミノ酸残基ロイシン(L)又はプロリン(P)を表し、
(e)X5は、アミノ酸残基アルギニン(R)、イソロイシン(I)、プロリン(P)又はセリン(S)
を表し、且つ
(f)X6は、アミノ酸残基バリン(V)又はアラニン(A)を表す。)、
並びに、該VHが、下記アミノ酸配列を含む:
X7は、アミノ酸残基チロシン(Y)、イソロイシン(I)又はバリン(V)を表す。)、単離され
た結合分子又はそれらの抗原結合断片を提供する。
抗原結合断片であって、ここで該VLが、配列番号:18、配列番号:19、又は配列番号:20と
同一であるか、又は4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一であるVL相補性決定領
域-1(VL-CDR1)アミノ酸配列を含む、単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片を提
供する。また本開示は、抗体VLを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそ
れらの抗原結合断片であって、ここで該VLが、配列番号:21と同一であるか、又は4、3、2
若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一であるVL相補性決定領域-2(VL-CDR2)アミノ酸配列
を含む、単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片を提供する。
の抗原結合断片であって、ここで該VLが、配列番号:22、配列番号:23、配列番号:24、配
列番号:25、配列番号:26、配列番号:27、配列番号:28、配列番号:29、又は配列番号:30と
同一であるか、又は4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一である相補性決定領域
-3(VL-CDR3)アミノ酸配列を含む、単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片を提供
する。また本開示は、抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれ
らの抗原結合断片であって、ここで該VHが、配列番号:31と同一であるか、又は4、3、2若
しくは1つのアミノ酸置換以外は同一である相補性決定領域-1(VH-CDR1)アミノ酸配列を含
む、単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片を提供する。
抗原結合断片であって、ここで該VHが、配列番号:32、配列番号:33、又は配列番号:34と
同一であるか、又は4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一である相補性決定領域
-2(VH-CDR2)アミノ酸配列を含む、単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片を提供
する。同じく、抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗
原結合断片であって、ここで該VHが、配列番号:35と同一であるか、又は4、3、2若しくは
1つのアミノ酸置換以外は同一である相補性決定領域-3(VH-CDR3)アミノ酸配列を含む、単
離された結合分子又はそれらの抗原結合断片も提供する。
結合断片であって、ここで該VLが、各々、配列番号:18、21及び22、配列番号:18、21、及
び26、配列番号:18、21、及び27、配列番号:20、21、及び22、配列番号:19、21、及び22
、配列番号:18、21、及び25、配列番号:18、21、及び28、配列番号:18、21、及び29、配
列番号:18、21、及び30、配列番号:18、21、及び23、配列番号:19、21、及び23、配列番
号:20、21、及び23、配列番号:18、21、及び24、又は配列番号:18、21、及び25と同一で
あるか、又は1以上のVL-CDRにおいて、4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一で
あるVL-CDR1、VL-CDR2、及びVL-CDR3アミノ酸配列を含む、単離された結合分子又はそれ
らの抗原結合断片を提供する。また本開示は、抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離
された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VHが、各々、配列番号:31
、32及び35、配列番号:31、33、及び35、又は配列番号:31、34、及び35と同一であるか、
又は1以上のVH-CDRにおいて、4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一であるVH-CD
R1、VH-CDR2、及びVH-CDR3アミノ酸配列を含む、単離された結合分子又はそれらの抗原結
合断片も提供する。
、31、32及び35、配列番号:18、21、27、31、32及び35、配列番号:20、21、22、31、32及
び35、配列番号:19、21、22、31、32及び35、配列番号:18、21、25、31、32及び35、配列
番号:18、21、28、31、32及び35、配列番号:18、21、29、31、32及び35、配列番号:18、2
1、30、31、32及び35、配列番号:18、21、23、31、32及び35、配列番号:19、21、23、31
、32及び35、配列番号:20、21、23、31、32及び35、配列番号:18、21、24、31、32及び35
、又は配列番号:18、21、25、31、32及び35と同一であるか、又は1以上のCDRにおいて、4
、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一であるVL-CDR1、VL-CRD2、VL-CDR3、VH-CDR
1、VH-CDR2、及びVH-CDR3アミノ酸配列を含んでなるVL及びVHを含む、HER3へ特異的に結
合する、単離された抗体又はそれらの抗原-結合断片を提供する。同じく、抗体VL及び抗
体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であっ
て、ここで該VLが、配列番号:1、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:5、配列番号:6、配
列番号:7、配列番号:8、配列番号:9、配列番号:10、配列番号:11、配列番号:14、配列番
号:15、配列番号:16、及び配列番号:17からなる群から選択される参照アミノ酸配列と少
なくとも約90%〜約100%同一であるアミノ酸配列を含む、単離された結合分子又はそれ
らの抗原結合断片も提供する。本開示はまた、抗体VL及び抗体VHを含むHER3へ特異的に結
合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VHが、配列番号
:2、配列番号:12及び配列番号:13からなる群から選択される参照アミノ酸配列と少なくと
も約90%〜約100%同一であるアミノ酸配列を含む、単離された結合分子又はそれらの抗
原結合断片も提供する。更に本開示は、HER3へ特異的に結合する単離された抗体又はそれ
らの抗原結合断片であって、ここで該抗体又は抗原結合断片が、配列番号:1、配列番号:3
、配列番号:4、配列番号:5、配列番号:6、配列番号:7、配列番号:8、配列番号:9、配列番
号:10、配列番号:11、配列番号:14、配列番号:15、配列番号:16、及び配列番号:17からな
る群から選択される参照アミノ酸配列と少なくとも約90%〜約100%同一である配列を含
むVLを含み、ここで該抗体又は抗原結合断片が、配列番号:2、配列番号:12及び配列番号:
13からなる群から選択される参照アミノ酸配列と少なくとも約90%〜約100%同一である
配列を含むVHを含む、単離された抗体又はそれらの抗原結合断片を提供する。
又はそれらの抗原結合断片を提供する。加えて本開示は、配列番号:3を含むVL及び配列番
号:2を含むVHを含む、単離された抗体又はそれらの抗原結合断片を提供する。更に本開示
は、配列番号:3の抗体VL、配列番号:2の抗体VH、及び配列番号:46のIgG1定常領域を含む
、HER3の細胞外ドメイン内のエピトープに特異的に結合する、単離された結合分子又はそ
れらの抗原-結合断片を提供する。同じく、配列番号:3の抗体VL、配列番号:2の抗体VH、
及び配列番号:46のIgG1定常領域からなる、HER3の細胞外ドメイン内のエピトープに特異
的に結合する、単離された結合分子又はそれらの抗原-結合断片も提供する。
本発明は、HER3に結合する分子及びそれらの抗原-結合断片を提供する。一部の態様に
おいて、そのような分子は、HER3に特異的に結合する抗体及びそれらの抗原-結合断片で
ある。関連したポリヌクレオチド、抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片を含有する組
成物、並びに抗-HER3抗体及び抗原-結合断片を作製する方法も提供される。対象における
癌の治療及び診断使用の方法のような、新規の抗-HER3抗体を使用する方法が、更に提供
される。
追加の定義は、本詳細な説明を通じて明記されている。
本発明を詳細に説明する前に、本発明は、具体的な組成物又は処理工程に限定されず、
それ自体は変動することができることは理解されなければならない。本明細書及び添付さ
れた請求項において使用される単数形「ひとつの(a、an、及びthe)」は、その文脈が別
に明確に指摘しない限りは、複数の指示対象を含む。用語「ひとつの(a又はan)」に加え
用語「1以上の」及び「少なくとも1つの」は、本文において互換的に使用することができ
る。
の特定された特徴又は成分の各々の具体的開示とみなされるべきである。従って本文にお
いて「A及び/又はB」などの語句において使用される用語「及び/又は」は、「A及びB」
、「A又はB」、「A(単独)」、及び「B(単独)」を含むことが意図されている。同様に、「
A、B、及び/又はC」などの語句において使用される用語「及び/又は」は、以下の態様
の各々を包含することが意図されている:A、B、及びC;A、B、又はC;A又はC;A又はB;
B又はC;A及びC;A及びB;B及びC;A(単独);B(単独);並びに、C(単独)。
示が関連した技術分野の業者に通常理解されるものと同じ意味を有する。例えば、「生体
臨床医学・分子生物学簡明辞典(Concise Dictionary of Biomedicine and Molecular Bio
logy)」、Juo, Pei-Show、第2版、2002年、CRC Press社;「細胞・分子生物学辞典(The D
ictionary of Cell and Molecular Biology)」、第3版、1999年、Academic Press社;及
び、「オックスフォード生化学・分子生物学辞典(Oxford Dictionary Of Biochemistry A
nd Molecular Biology)」、改訂版、2000年、Oxford University Press社は、本発明にお
いて使用される多くの用語の一般的辞典を当業者に提供する。
範囲は、その範囲の規定する数字を含む。別に指示しない限りは、アミノ酸配列は、左か
ら右へ、アミノからカルボキシ配向で記載される。本文に提供される表題は、様々な態様
を限定するものではなく、これらの態様は、全体として本明細書を参照することによりも
たらされ得る。従って、直後に定義された用語は、その全体において本明細書を参照する
ことにより、より完全に定義される。
onsisting of)」及び/又は「から本質的になる(consisting essentially of)」に関して
説明される別の類似の態様も提供されることは理解されなければならない。
により推奨される1文字表記によるかのいずれかにより、本文において言及される。同様
に、ヌクレオチドは、それらの一般に認められた1文字コードで言及される。
5,480,968号及びPlowmanらの文献、Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87, 4905-4909 (1990)
において説明されたように、ErbB3タンパク質をいう(同じく、文献においてHER3、ErbB3
受容体と称され);同じく、Kaniらの文献、Biochemistry, 44, 15842-15857 (2005)、並
びに、Cho及びLeahyの文献、Science, 297, 1330-1333 (2002)を参照されたい。完全長の
成熟したHER3タンパク質配列(リーダー配列を除く)は、図4に示された配列、並びに米国
特許第5,480,968号の配列番号:4から成熟タンパク質から切断される19個のアミノ酸のリ
ーダー配列を差し引いたものに対応している。
ブロックを含む、生物活性の何らかの統計学的に有意な減少をいう。例えば、「阻害」は
、生物活性の約10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%又は100%の減
少をいうことができる。従って、用語「阻害」又は「抑制」が例えばリガンド-媒介性HER
3リン酸化に対する作用を説明するために適用される場合は、この用語は、EGF-様リガン
ドにより誘導されたHER3のリン酸化を、未処置の(対照)細胞におけるリン酸化と比べ、統
計学的に有意に減少する、抗体又はそれらの抗原結合断片の能力をいう。HER3を発現して
いる細胞は、天然の細胞又は細胞株(例えば、癌細胞)であることができるか、あるいはHE
R3をコードしている核酸を宿主細胞へ導入することにより組換えにより作製することがで
きる。一態様において、抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原結合断片は、HER
3のリガンド媒介されたリン酸化を、下記「実施例」において説明されるように、例えば
ウェスタンブロット、それに続く抗-ホスホチロシン抗体によるプロービングによるか、
又はELISAにより決定されるように、少なくとも10%、又は少なくとも20%、又は少なく
とも30%、又は少なくとも40%、又は少なくとも50%、又は少なくとも60%、又は少なく
とも70%、又は少なくとも80%、又は少なくとも905、又は約100%阻害する。
している細胞の増殖を、抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片の非存
在下での増殖と比べ、統計学的に有意に減少する抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれ
らの抗原-結合断片の能力をいう。一態様において、HER3を発現している細胞(例えば癌細
胞)の増殖は、細胞を、抗-HER3結合分子、例えば本発明の抗体又はそれらの抗原-結合断
片と接触させた場合に、抗-HER3結合分子、例えば、抗体又はそれらの抗原-結合断片の非
存在下(対照条件)で測定された増殖と比べ、少なくとも10%、又は少なくとも20%、又は
少なくとも30%、又は少なくとも40%、又は少なくとも50%、又は少なくとも60%、又は
少なくとも70%、又は少なくとも80%、又は少なくとも90%、又は約100%減少すること
ができる。細胞の増殖は、細胞分裂の速度、細胞分裂を受けている細胞集団内の細胞の画
分、及び/又は終末分化若しくは細胞死に起因した細胞集団からの細胞喪失の割合(例え
ば、チミジン取込み)の測定を伴う当該技術分野において認められた技術を用いて、アッ
セイすることができる。
び任意の抗原結合断片又はそれらの一本鎖を含む。
2本の軽(L)鎖を含む。各重鎖は、重鎖可変領域(本文においてVHと略記)及び重鎖定常領域
で構成される。重鎖定常領域は、3つのドメイン、CH1、CH2、及びCH3で構成される。各軽
鎖は、軽鎖可変領域(本文においてVLと略記)及び軽鎖定常領域で構成される。軽鎖定常領
域は、1つのドメインCLで構成される。VH及びVL領域は更に、フレームワーク領域(FW)と
称されるより保存された領域が散在された、相補性決定領域(CDR)と称される超可変領域
に小分割される。VH及びVLの各々は、3つのCDR及び4つのFWにより構成され、アミノ-末端
からカルボキシ-末端へ以下の順番で配置される:FW1、CDR1、FW2、CDR2、FW3、CDR3、FW
4。重鎖及び軽鎖の可変領域は、抗原と相互作用する結合ドメインを含む。抗体の定常領
域は、免疫系の様々な細胞(例えば、エフェクター細胞)及び古典的補体系の第一成分(C1q
)を含む、宿主組織又は因子への免疫グロブリンの結合を媒介することができる。本開示
の例証的抗体は、クローン16(CL16)抗-HER3抗体(オリジナル及び生殖系列化)、例えば抗-
HER3 2C2抗体を含む親和性最適化されたクローン、及び例えば抗-HER3 2C2-YTE抗体を含
む血清半減期が最適化された抗-HER3抗体を含む。
のに復帰変異されていることを意味する。例えば、CL16「生殖系列化」抗体は、オリジナ
ルのCL16抗体から、VL領域のFW1へ、3つの点変異Y2S、E3V及びM20Iを導入することにより
作製される。
介して、タンパク質、ポリペプチド、ペプチド、糖、ポリヌクレオチド、脂質、又は前述
のものの組合せなどの標的を認識し且つこれに特異的に結合する、免疫グロブリン分子を
意味する。本文において使用される用語「抗体」は、無傷のポリクローナル抗体、無傷の
モノクローナル抗体、抗体断片(Fab、Fab'、F(ab')2、及びFv断片など)、一本鎖Fv(scFv)
変異体、少なくとも2つの無傷の抗体から作製された二重特異性抗体などの多重特異性抗
体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、抗体の抗原決定部分を含む融合タンパク質、並
びに抗体が所望の生物活性を示す限りは抗原認識部位を含む任意の他の修飾された免疫グ
ロブリン分子を包含している。抗体は、5つの免疫グロブリンの主要クラス:IgA、IgD、I
gE、IgG、及びIgM、又は各々、α、δ、ε、γ、及びμと称されるそれらの重鎖定常ドメ
インのアイデンティティを基にしたそれらのサブクラス(アイソタイプ)(例えば、IgG1、I
gG2、IgG3、IgG4、IgA1及びIgA2)のいずれかであることができる。異なる免疫グロブリン
のクラスは、異なり且つ周知のサブユニット構造及び三次元立体配置を有する。抗体は、
むき出し(naked)であるか、又は毒素、放射性同位元素などの他の分子にコンジュゲート
されることができる。
又は減少するものである。いくつかの態様において、遮断抗体又は拮抗抗体は、抗原の生
物活性を実質的に又は完全に阻害する。望ましくは、この生物活性は、10%、20%、30%
、50%、70%、80%、90%、95%、又は100%さえも減少される。
を標的化する治療薬又は診断試薬として有用であるように、十分な親和性でのHER3への結
合が可能である抗体をいう。抗-HER3抗体の無関係の非-HER3タンパク質への結合の程度は
、例えば、ラジオイムノアッセイ(RIA)、BIACORE(商標)(被検体として組換えHER3を、及
びリガンドとして抗体を使用するか、又はその逆も可)、又は当該技術分野において公知
の他の結合アッセイで測定された、該抗体のHER3への結合の約10%未満である。いくつか
の態様において、HER3に結合する抗体は、解離定数(KD) ≦1μM、≦100nM、≦10nM、≦1n
M、≦0.1nM、≦10pM、≦1pM、又は≦0.1pMを有する。
変領域をいう。抗体の抗原結合機能は、完全長抗体の断片により遂行され得ることは、当
該技術分野において公知である。抗体断片の例は、Fab、Fab'、F(ab')2、及びFv断片、線
状抗体、一本鎖抗体、及び抗体断片から形成された多重特異性抗体を含むが、これらに限
定されるものではない。
の結合に関与した、均一な抗体集団をいう。これは、典型的には異なる抗原決定基に対し
向けられた異なる抗体を含むポリクローナル抗体とは対照的である。用語「モノクローナ
ル抗体」は、無傷及び完全長の両方のモノクローナル抗体に加え、抗体断片(Fab、Fab'、
F(ab')2、Fvなど)、一本鎖(scFv)変異体、抗体部分を含む融合タンパク質、及び抗原認識
部位を含む任意の他の修飾された免疫グロブリン分子を包含している。更に「モノクロー
ナル抗体」とは、ハイブリドーマ、ファージ選択、組換え発現、及びトランスジェニック
動物を含むが、これらに限定されるものではない、多くの様式で作製されたそのような抗
体をいう。
る、非ヒト(例えばマウス)免疫グロブリンから誘導された抗体をいう。典型的には、ヒト
化抗体は、その中の相補性決定領域(CDR)由来の残基が、所望の特異性、親和性、及び能
力を有する非ヒト種(例えば、マウス、ラット、ウサギ、又はハムスター)のCDR由来の残
基により置き換えられている、ヒト免疫グロブリンである(Jonesらの文献、Nature, 321:
522-525, 1986;Riechmannらの文献、Nature, 332: 323-327, 1988;Verhoeyenらの文献
、Science, 239: 1534-1536, 1988)。場合によっては、ヒト免疫グロブリンのFvフレーム
ワーク領域(FW)の残基が、所望の特異性、親和性、及び能力を有する非ヒト種由来の抗体
内の対応する残基により置き換えられる。
めに、Fvフレームワーク領域中及び/又は置き換えられた非ヒト残基内のいずれかの追加
の残基の置換により修飾することができる。概して、ヒト化抗体は、非ヒト免疫グロブリ
ンに相当するCDR領域の全て又は実質的に全てを含むのに対し、FR領域の全て又は実質的
に全ては、ヒト免疫グロブリンコンセンサス配列のものである、少なくとも1つの、典型
的には2又は3の可変ドメインを実質的に全て含むであろう。またヒト化抗体は、免疫グロ
ブリン定常領域又はドメイン(Fc)の少なくとも一部、典型的にはヒト免疫グロブリンのそ
れを含むことができる。ヒト化抗体の作製に使用される方法の例は、米国特許第5,225,53
9号又は第5,639,641号に説明されている。
独又は組合せをいう。重鎖及び軽鎖の可変領域の各々は、超可変領域としても公知の3つ
の相補性決定領域(CDR)により結合された、4つのフレームワーク領域(FW)からなる。各鎖
内のCDRは、FW領域により密に近接してまとめて保持され、且つ他方の鎖のCDRと共に、抗
体の抗原-結合部位の形成に貢献する。CDRの決定には、少なくとも2つの技術が存在する
:(1)異種間の配列可変性をベースにしたアプローチ(すなわち、Kabatらの文献、「免疫
学的関心のあるタンパク質の配列(Sequences of Proteins of Immunological Interest)
」、(第5版、1991年、米国立衛生研究所(NIH)、ベセスダ、Md.));及び、(2)抗原-抗体複
合体の結晶学的研究をベースにしたアプローチ(Al-lazikaniらの文献、J. Molec. Biol.
273:927-948 (1997)))。加えて、CDRを決定するために、これら2つのアプローチの組合せ
が当該技術分野において使用されることが多い。
おおよそ軽鎖の残基1-107及び重鎖の残基1-113)(例えば、Kabatらの文献、「免疫学的関
心のある配列(Sequences of Immunological Interest)」、第5版、米国立衛生研究所(NIH
)、公衆衛生局(PHS)、ベセスダ、Md. (1991))。
るタンパク質の配列」第5版、米国立衛生研究所(NIH)、公衆衛生局(PHS)、ベセスダ、Md.
(1991)において、抗体の編集の重鎖可変ドメイン又は軽鎖可変ドメインについて使用さ
れる番号付けシステムをいう。この番号付けシステムを使用し、実際の線状アミノ酸配列
は、可変ドメインのFW又はCDRの短縮化又はそれへの挿入に対応するより少ない又は追加
のアミノ酸を含むことができる。例えば、重鎖可変ドメインは、H2の残基52の後に単独の
アミノ酸挿入(Kabatに従い残基52a)、及び重鎖FW残基82の後に挿入された残基(例えば、K
abatに従い残基82a、82b、及び82cなど)を含むことができる。
表1
体の配列の相同な領域のアラインメントにより決定される。Chothiaは代わりに、構造の
ループの位置に言及している(Chothia及びLeskの文献、J. Mol. Biol. 196: 901-917 (19
87))。Chothia CDR-H1ループの末端は、Kabat番号付け慣習を用いて番号付けた場合、そ
のループの長さに応じてH32とH34の間で変動する(これは、Kabat 番号付けスキームは、H
35A及びH35Bに挿入を配置するからであり;35Aも35Bも存在しない場合は、このループは3
2が末端であり;35Aのみが存在する場合は、このループは33が末端であり;35A及び35Bの
両方が存在する場合は、このループは34が末端である)。AbM超可変領域は、Kabat CDRとC
hothia構造ループの間の妥協点を表し、且つOxford Molecular's AbM抗体モデリングソフ
トウェアにより使用される。
号付けシステムを提供する。例えば、引用により本明細書中に組み込まれている、Lefran
c, M.P.らの文献、Dev. Comp. Immunol. 27: 55-77 (2003)を参照されたい。IMGT番号付
けシステムは、5,000を超える配列のアラインメント、構造データ、及び超可変ループの
特徴を基にし、且つ全ての種に関する可変領域とCDR領域の容易な比較を可能にする。IMG
T番号付けスキームに従い、VH-CDR1は、26から35位置にあり、VH-CDR2は、51から57位置
にあり、VH-CDR3は、93から102位置にあり、VL-CDR1は、27から32位置にあり、VL-CDR2は
、50から52位置にあり、及びVL-CDR3は、89から97位置にある。
対応し、すなわちKabat VH-CDR1は、31-35位置にあり、VH-CDR2は、50-65位置にあり、及
びVH-CDR3は、95-102位置にある。VL-CDR2及びVL-CDR3も、古典的Kabat番号付け位置に対
応し、すなわち各々、位置50-56及び89-97に対応する。本文において使用される用語「VL
-CDR1」又は「軽鎖CDR1」は、VL内のKabat位置23-34に位置した配列に対応する(対照的に
、Kabat番号付けスキームに従う古典的VL-CDR1位置は、位置24-34に対応する)。
体の定常領域を含むポリペプチドを含む。従ってFcとは、IgA、IgD、及びIgGの最後の2つ
の定常領域免疫グロブリンドメイン、並びにIgE及びIgMの最後の3つの定常領域免疫グロ
ブリンドメイン、並びにこれらのドメインへの可動性ヒンジN-末端をいう。IgA及びIgMに
関して、Fcは、J鎖を含んでよい。IgGに関して、Fcは、免疫グロブリンドメインCガンマ2
及びCガンマ3(Cγ2及びCγ3)、並びにCガンマ1(Cγ1)とCガンマ2(Cγ2)の間のヒンジを含
む。Fc領域の境界は変動することができるが、ヒトIgG重鎖Fc領域は通常、そのカルボキ
シル-末端に残基C226又はP230を含むように規定されており、ここでこの番号付けは、Kab
atに示されたEUインデックスに従う(Kabatらの文献、「免疫学的関心のあるタンパク質の
配列」、第5版、米国立衛生研究所(NIH)、公衆衛生局(PHS)、ベセスダ、Md. (1991))。Fc
は、単離されたこの領域、又は抗体、抗体断片、若しくはFc融合タンパク質の状況におけ
るこの領域を指すことができる。多型が、非限定的に、EUインデックスにより番号付けら
れた位置270、272、312、315、356、及び358を含む、多くの異なるFc位置で認められてお
り、従って提示された配列と、先行する技術における配列の間には、わずかな差が存在す
ることがある。
意の技術を用いて作製されたヒトにより産生された抗体に対応するアミノ酸配列を有する
抗体を意味する。このヒト抗体の定義は、無傷の又は完全長の抗体、それらの断片、並び
に/又は少なくとも1つのヒト重鎖及び/若しくは軽鎖ポリペプチドを含む抗体、例えば
マウス軽鎖とヒト重鎖ポリペプチドを含む抗体を含む。
する抗体をいう。典型的には、軽鎖及び重鎖の両方の可変領域は、所望の特異性、親和性
、及び能力を伴う哺乳動物の1つの種(例えば、マウス、ラット、ウサギなど)に由来した
抗体の可変領域に対応する一方で、その定常領域は、その種における免疫応答の誘発を避
けるために、別の種(通常ヒト)に由来した抗体における配列と相同である。
有する抗体の血清半減期を改善する、IgG1 Fcにおける変異をいう。YTE変異体は、IgG1の
重鎖へ導入された、3つの変異の組合せ、M252Y/S254T/T256E (EU番号付け、Kabatらの
文献、(1991)「免疫学的関心のあるタンパク質の配列」、米国立衛生研究所(NIH)、公衆
衛生局(PHS)、ワシントンD.C.)を含む。引用により本明細書中に組み込まれている、米国
特許第7,658,921号を参照されたい。YTE変異体は、抗体の血清半減期を、同じ抗体の野生
型と比べ、ほぼ4倍増大することが示されている(Dall'Acquaらの文献、J. Biol. Chem. 2
81: 23514-24 (2006))。同じく、引用により本明細書中に組み込まれている、米国特許第
7,083,784号を参照されたい。
ナー(例えば抗原)の間の、非共有的相互作用の総量の強度をいう。別に指摘しない限りは
、本文において使用される「結合親和性」とは、結合対のメンバー(例えば、抗体と抗原)
の間の1:1の相互作用を反映する、固有の結合親和性をいう。分子XのそのパートナーYに
関する親和性は、一般に解離定数(KD)により表すことができる。親和性は、本文に説明さ
れた方法を含む、当該技術分野において公知の一般的方法により測定することができる。
低-親和性抗体は一般に、抗原にゆっくり結合し、且つ迅速に解離する傾向があるのに対
し、高-親和性抗体は一般に、抗原により速く結合し、より長く結合し続ける傾向がある
。結合親和性を測定する多種多様な方法が、当該技術分野において公知であり、そのいく
つかは、本発明の目的のために使用することができる。
分子の阻害濃度の中央値である。機能アッセイにおいて、IC50は、生物学的反応を、その
最大の50%だけ減少する濃度である。リガンド-結合試験において、IC50は、受容体結合
を、最大特異的結合レベルの50%だけ減少する濃度である。IC50は、当該技術分野におい
て公知のいくつかの手段により、計算することができる。効力の改善は、例えば、親CL16
(クローン16)モノクローナル抗体に対して測定することにより、決定することができる。
少なくとも約2倍、少なくとも約4倍、少なくとも約6倍、少なくとも約8倍、少なくとも約
10倍、少なくとも約20倍、少なくとも約30倍、少なくとも約40倍、少なくとも約50倍、少
なくとも約60倍、少なくとも約70倍、少なくとも約80倍、少なくとも約90倍、少なくとも
約100倍、少なくとも約110倍、少なくとも約120倍、少なくとも約130倍、少なくとも約14
0倍、少なくとも約150倍、少なくとも約160倍、少なくとも約170倍、又は少なくとも約18
0倍又はそれよりも大きいことができる。
ナチュラルキラー(NK)細胞、好中球、及びマクロファージ)上に存在するFc受容体(FcR)に
結合された分泌されたIgが、これらの細胞傷害性エフェクター細胞を、抗原-保有する標
的細胞へ特異的に結合させ、引き続き細胞毒により標的細胞を殺傷することができる細胞
傷害の形をいう。標的細胞の表面に対し向けられた特異的高-親和性IgG抗体は、その細胞
傷害性細胞を「作動可能にし(arm)」、且つそのような殺傷に絶対必要である。標的細胞
の溶解は、細胞外であり、直接の細胞と細胞の接触を必要とし、且つ補体は関与しない。
抗体に加え、抗原-保有する標的細胞に特異的に結合する能力を有するFc領域を含む他の
タンパク質、具体的にはFc融合タンパク質は、細胞性細胞傷害に作用することができるこ
とが、企図されている。簡単にするために、Fc融合タンパク質の活性から生じる細胞性細
胞傷害は、本文においてADCC活性とも称される。
成物は、自然界には認められない形である、ポリペプチド、抗体、ポリヌクレオチド、ベ
クター、細胞、又は組成物である。単離されたポリペプチド、抗体、ポリヌクレオチド、
ベクター、細胞、又は組成物は、自然界に認められる形においては最早存在しない程度ま
で精製されているものを含む。一部の態様において、単離されている抗体、ポリヌクレオ
チド、ベクター、細胞、又は組成物は、実質的に純粋である。
どを含むが、これらに限定されるものではない、任意の動物(例えば哺乳動物)をいう。典
型的には、用語「対象」と「患者」は、ヒト対象に関して、本文において互換的に使用さ
れる。
つ該組成物が投与される対象に対し許容し難い毒性がある追加成分を含有しない、調製品
をいう。そのような組成物は、無菌であることができる。
のに十分な量である。「有効量」は、言及された目的に関して、経験的に、及び慣習的様
式で決定することができる。
抗体又は他の薬物の量をいう。
、抗体に直接又は間接に複合される検出可能な化合物又は組成物をいう。標識は、それ自
身検出可能であるか(例えば、放射性同位元素標識又は蛍光標識)、又は酵素標識の場合、
検出可能である基質化合物又は組成物の化学的変化を触媒することができる。
する」などの用語は、(1)診断された病理学的状態又は障害を治癒、緩徐化、症状の軽減
、及び/又は進行の停止する治療的手段、並びに(2)目標とされた病理的状態又は障害の
発症を防止及び/又は遅延する予防的又は防御的手段:の両方をいう。従って、治療が必
要なものは、既に障害を伴うもの;障害を有する傾向があるもの;及び、障害が防御され
るべきであるもの:を含む。いくつかの態様において、患者が、例えば、ある癌型の全体
的、部分的、又は一過性の寛解を示す場合、対象は、本発明の方法に従い癌を巧く「治療
」されている。
胞成長を特徴とする、哺乳動物における生理的状態をいうか又は説明する。癌の例として
は、腺癌を含む癌腫、リンパ腫、芽細胞腫、メラノーマ、肉腫、及び白血病が挙げられる
が、これらに限定されるものではない。そのような癌のより特定される例としては、扁平
上皮癌、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、消化管癌、ホジキン及び非ホジキンリンパ腫、膵臓
癌、膠芽細胞腫、神経膠腫、子宮頸癌、卵巣癌、肝臓の癌腫及び肝細胞癌などの肝臓癌、
膀胱癌、乳癌(ホルモン媒介性乳癌を含む、例えばInnesらの文献、Br. J. Cancer, 94:10
57-1065 (2006)参照)、結腸癌、結腸直腸癌、子宮内膜癌、骨髄腫(多発性骨髄腫など)、
唾液腺癌、腎細胞癌及びウィルムス腫瘍などの腎臓癌、基底細胞癌、メラノーマ、前立腺
癌、外陰癌、甲状腺癌、睾丸癌、食道癌、様々な型の頭頸部癌、並びに粘液性卵巣癌、胆
管癌(肝臓)及び乳頭状腎癌などの粘液起源の癌が挙げられる。
腺を形成する細胞である上皮細胞の癌をいう。癌腫の例は、皮膚、肺、結腸、胃、乳房、
前立腺及び甲状腺の腺の癌である。
ス癌遺伝子のヒトホモログ内の、特定の癌において認められる変異をいう。ヒトKRAS遺伝
子のmRNA配列の非限定的例は、Genbank寄託番号NM004985及びNM033360を含む。KRAS変異
は、膵臓腫瘍の73%において、結腸直腸腫瘍の35%において、卵巣腫瘍の16%において、
及び肺腫瘍の17%において認められることが報告されている。KRAS変異は一般に、ヒトKR
AS遺伝子のコドン12又は143において生じる。
のヌクレオチドのポリマーをいい、DNA及びRNAを含む。ヌクレオチドは、デオキシリボヌ
クレオチド、リボヌクレオチド、修飾されたヌクレオチド若しくは塩基、及び/若しくは
それらのアナログ、又はDNAポリメラーゼ若しくはRNAポリメラーゼによりポリマーに組み
込まれ得る任意の基質であることができる。ポリヌクレオチドは、メチル化されたヌクレ
オチド及びそれらのアナログなどの、修飾されたヌクレオチドを含むことができる。前記
説明は、RNA及びDNAを含む、本文において言及される全てのポリヌクレオチドに適用され
る。
ることが、一部の態様においては発現することが可能である、構築体を意味する。ベクタ
ーの例は、ウイルスベクター、裸のDNA又はRNA発現ベクター、プラスミド、コスミド又は
ファージベクター、陽イオン縮合剤に会合されたDNA又はRNA発現ベクター、リポソーム内
に被包されたDNA又はRNA発現ベクター、及びプロデューサー細胞などの特定の真核細胞を
含むが、これらに限定されるものではない。
リマーを指すよう、本文において互換的に使用される。このポリマーは、線状又は分岐す
ることができ、これは修飾されたアミノ酸を含むことができ、且つこれはアミノ酸以外に
より中断されることができる。これらの用語は、例えば、ジスルフィド結合形成、グリコ
シル化、脂質付加、アセチル化、リン酸化、又は標識成分との複合などの任意の他の操作
若しくは修飾など、天然に又は介入により修飾されたアミノ酸ポリマーも包含している。
この定義には、例えば、1以上のアミノ酸のアナログ(例えば、天然でないアミノ酸などを
含む)に加え、当該技術分野において公知の他の修飾を含むポリペプチドも含まれる。本
発明のポリペプチドは抗体を基にしているので、いくつかの態様において、本ポリペプチ
ドは、一本鎖又は会合された鎖として生じることができることは、理解されるべきである
。
性」とは、配列同一性の一部として保存的アミノ酸置換を考慮せずに、最大の対応に関し
て比較し且つ整列した(必要ならばギャップを導入する)場合に、同じであるか、又は同じ
であるヌクレオチド若しくはアミノ酸残基を特定の割合有する、2つ以上の配列又は部分
配列をいう。パーセント同一性は、配列比較ソフトウェア又はアルゴリズム用いて、ある
いは目視検査により、測定することができる。アミノ酸配列又はヌクレオチド配列のアラ
インメントを得るために使用することができる様々なアルゴリズム及びソフトウェアが、
当該技術分野において公知である。
Proc. Natl. Acad. Sci., 87: 2264-2268, 1990に説明され、Karlinらの文献、Proc. Nat
l. Acad. Sci., 90: 5873-5877, 1993において改訂され、且つNBLAST及びXBLASTプログラ
ムに組み込まれた、アルゴリズムである(Altschulらの文献、Nucleic Acids Res., 25: 3
389-3402, 1991)。いくつかの態様において、Gapped BLASTを、Altschulらの文献、Nucle
ic Acids Res. 25: 3389-3402, 1997に説明されたように、使用することができる。BLAST
-2、WU-BLAST-2(Altschulらの文献、Methods in Enzymology, 266: 460-480, 1996)、ALI
GN、ALIGN-2(Genentech社、サウスサンフランシスコ、カリフォルニア州)又はMegalign(D
NASTAR)は、配列を整列するために使用することができる追加の公表された利用可能なソ
フトウェアプログラムである。いくつかの態様において、2つのヌクレオチド配列間のパ
ーセント同一性は、GCGソフトウェアパッケージ内のGAPプログラムを用いて決定すること
ができる(例えば、NWSgapdna.CMPマトリクス、及びギャップウェイト40、50、60、70、若
しくは90、及びレングスウェイト1、2、3、4、5、若しくは6を使用して)。いくつかの別
の態様において、Needleman及びWunschのアルゴリズム(J. Mol. Biol. (48): 444-453 (1
970))を組み込んでいるGCGソフトウェアパッケージ内のGAPプログラムを使用し、2つのア
ミノ酸配列間のパーセント同一性を決定することができる(例えば、BLOSUM 62マトリクス
又はPAM250マトリクスのいずれか、ギャップウェイト16、14、12、10、8、6、若しくは4
、及びレングスウェイト1、2、3、4、5を使用して)。あるいは、いくつかの態様において
、ヌクレオチド配列又はアミノ酸配列間のパーセント同一性は、Myers及びMillerのアル
ゴリズムを用いて決定される(CABIOS, 4:11-17 (1989))。例えば、このパーセント同一性
は、ALIGNプログラム(バージョン2.0)を用い、且つ残基テーブル、ギャップレングスペナ
ルティ12及びギャップペナルティ4を伴うPAM120を用いて、決定することができる。特定
のアラインメントソフトウェアによる最大アラインメントのための好適なパラメータは、
当業者により決定することができる。いくつかの態様において、アラインメントソフトウ
ェアのデフォルトのパラメータが使用される。
ト同一性「X」は、100×(Y/Z)として計算され、ここでYは、第一及び第二の配列のアラ
インメント(目視検査によるか又は特定の配列整列化プログラムにより整列させたもの)に
おいて同一のマッチとしてスコア化されたアミノ酸残基の数であり、並びにZは、第二の
配列中の残基の総数である。第一の配列の長さが、第二の配列よりも長い場合は、第一の
配列の第二の配列に対するパーセント同一性は、第二の配列の第一の配列に対するパーセ
ント同一性よりも高くなるであろう。
残基により置き換えられるものである。類似の側鎖を有するアミノ酸残基のファミリーは
、当該技術分野において定義されており、これは塩基性側鎖(例えば、リジン、アルギニ
ン、ヒスチジン)、酸性側鎖(例えば、アスパラギン酸、グルタミン酸)、非帯電の極性側
鎖(例えば、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、チロシン、システイン)、
無極性側鎖(例えば、グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン
、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン)、β-分岐した側鎖(例えば、トレオ
ニン、バリン、イソロイシン)、及び芳香族側鎖(例えば、チロシン、フェニルアラニン、
トリプトファン、ヒスチジン)を含む。例えば、フェニルアラニンのチロシンとの置換は
、保存的置換である。いくつかの態様において、本発明のポリペプチド及び抗体の配列内
の保存的置換は、該アミノ酸配列を含むポリペプチド又は抗体の抗原への結合、すなわち
本ポリペプチド又は抗体が結合するHER3への結合を無効にしない。抗原結合を排除しない
ヌクレオチド及びアミノ酸の保存的置換を同定する方法は、当該技術分野において周知で
ある(例えば、Brummellらの文献、Biochem. 32: 1180-1187 (1993);Kobayashiらの文献
、Protein Eng. 12(10): 879-884 (1999);及び、Burksらの文献、Proc. Natl. Acad. Sc
i. USA 94: 412-417 (1997)を参照されたい)。
列」とは、VL又はVH鎖内のアミノ酸残基は、抗原結合に害を与えることなく修飾され易い
という情報を基に定められた、複合の又は一般名化された(genericized)VL又はVH配列を
いう。従って、VL又はVH鎖の「コンセンサス配列」において、いくつかのアミノ酸位置は
、その位置で可能性のある複数のアミノ酸残基の一つにより占拠される。例えば、アルギ
ニン(R)又はセリン(S)が特定の位置に生じる場合は、コンセンサス配列内のその特定の位
置は、アルギニン又はセリン(R又はS)のいずれかであることができる。VH及びVL鎖のコン
センサス配列は、例えば、インビトロ親和性成熟により(例えば、縮重コーディングプラ
イマーを使用する特定のCDR内のアミノ酸位置毎の無作為化)、抗体CDR内のアミノ酸残基
の変異誘発の走査により(例えば、アラニン走査変異誘発)、又は当該技術分野において公
知のいずれか他の方法により、規定することができ、引き続き変異体の抗原への結合を評
価し、成熟したアミノ酸位置は抗原結合に影響を及ぼすかどうかが決定される。一部の態
様において、変異は、CDR領域に導入される。他の態様において、変異は、フレームワー
ク領域に導入される。一部の他の態様において、変異は、CDR領域及びフレームワーク領
域に導入される。
本発明は、HER3結合分子、例えば、HER3に特異的に結合する抗体及びそれらの抗原-結
合断片を提供する。HER3に関する完全長アミノ酸(aa)配列及びヌクレオチド(nt)配列は、
当該技術分野において公知である(例えば、ヒトHER3についてはUniProt寄託番号P2186、
又はマウスHER3についてはUniProt寄託番号O88458を参照されたい)。一部の態様において
、抗-HER3結合分子は、ヒト抗体である。いくつかの態様において、HER3結合分子は、抗
体又はそれらの抗原-結合断片である。一部の態様において、HER3結合分子、例えば抗体
又はそれらの抗原-結合断片は、Fab、Fab'、F(ab')2、Fd、一本鎖Fv若しくはscFv、ジス
ルフィド結合されたFv、V-NARドメイン、IgNar、イントラボディ、IgGΔCH2、ミニボディ
、F(ab')3、テトラボディ、トリアボディ、ダイアボディ、単-ドメイン抗体、DVD-Ig、Fc
ab、mAb2、(scFv)2、又はscFv-Fcを含む。一部の態様において、この抗体は、前掲の「定
義」のセクションで明らかにされたように、IgG1亜型であり、且つ三重変異体YTEを含む
。
ーン16(CL16)抗体と比べ修飾されている。この修飾は、CL16と比べ、CDR領域における及
び/又はFW領域における変異を含むことができる。いくつかの態様において、本発明の抗
-HER3抗体は、CL16の軽鎖のCDR1及び/又はCDR3への修飾を含み、これは以下を含むが、
これらに限定されるものではない:
重鎖のCDR2への修飾を含み、これはコンセンサス配列
に限定されるものではない。
アミノ酸配列を含んでなるVL領域を含む:
、VLフレームワーク領域2(配列番号:41)、VLフレームワーク領域3(配列番号:42)及びVLフ
レームワーク領域4(配列番号:43)のアミノ酸残基を表し、且つここで、X1は、アミノ酸残
基アルギニン(R)又はセリン(S)を表し、X2は、アミノ酸残基セリン(S)又はロイシン(L)を
表し、X3は、アミノ酸残基セリン(S)又はグルタミン酸(E)を表し、X4は、アミノ酸残基ロ
イシン(L)又はプロリン(P)を表し、X5は、アミノ酸残基アルギニン(R)、イソロイシン(I)
、プロリン(P)又はセリン(S)を表し、且つX6は、アミノ酸残基バリン(V)又はアルギニン(
R)を表す。)。
アミノ酸配列を含んでなるVH領域を含む:
レームワーク領域2(配列番号:37)、VHフレームワーク領域3(配列番号:38)及びVHフレーム
ワーク領域4(配列番号:39)のアミノ酸残基を表し、且つここでX7は、アミノ酸残基チロシ
ン(Y)、イソロイシン(I)又はバリン(V)を表す。)。
アミノ酸配列を含んでなるVL領域を含み:
、VLフレームワーク領域2(配列番号:41)、VLフレームワーク領域3(配列番号:42)及びVLフ
レームワーク領域4(配列番号:43)のアミノ酸残基を表し、且つここで、X1は、アミノ酸残
基アルギニン(R)又はセリン(S)を表し、X2は、アミノ酸残基セリン(S)又はロイシン(L)を
表し、X3は、アミノ酸残基セリン(S)又はグルタミン酸(E)を表し、X4は、アミノ酸残基ロ
イシン(L)又はプロリン(P)を表し、X5は、アミノ酸残基アルギニン(R)、イソロイシン(I)
、プロリン(P)又はセリン(S)を表し、且つX6は、アミノ酸残基バリン(V)又はアルギニン(
R)を表す。)、並びにここで:
該抗-HER3抗体又はそれらの抗原結合断片は更に、下記のコンセンサスアミノ酸配列を
含んでなるVH領域を含む:
レームワーク領域2(配列番号:37)、VHフレームワーク領域3(配列番号:38)及びVHフレーム
ワーク領域4(配列番号:39)のアミノ酸残基を表し、且つここで、X7は、アミノ酸残基チロ
シン(Y)、イソロイシン(I)又はバリン(V)を表す。)。
8、19及び20からなる群から選択される配列からなるVL-CDR1を含む。一部の態様において
、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、配列番号:18、19及び20からなる
群から選択される配列を含んでなるVL-CDR1を含む。一部の態様において、本発明の抗-HE
R3抗体又は抗原-結合断片は、配列番号:21からなるVL-CDR2を含む。一部の態様において
、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、配列番号:21を含んでなるVL-CDR2
を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、配列
番号:22、23、24、25、26、27、28、29、及び30からなる群から選択される配列からなるV
L-CDR3を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は
、配列番号:22、23、24、25、26、27、28、29、及び30からなる群から選択される配列を
含んでなるVL-CDR3を含む。
1からなるVH-CDR1を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-
結合断片は、配列番号:31を含んでなるVH-CDR1を含む。一部の態様において、本発明の抗
-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、配列番号:32、33及び34からなる群から選択さ
れる配列からなるVH-CDR2を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれら
の抗原-結合断片は、配列番号:32、33及び34からなる群から選択される配列を含んでなる
VH-CDR2を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片
は、配列番号:35からなるVH-CDR3を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又
はそれらの抗原-結合断片は、配列番号:35を含んでなるVH-CDR3を含む。
は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:18、19及び20からなる群から選択される配列から
なるVL-CDR1を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合
断片は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:18、19及び20からなる群から
選択される配列を含んでなるVL-CDR1を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体
又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:21から
なるVL-CDR2を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合
断片は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:21を含んでなるVL-CDR2を含む
。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又
は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:22、23、24、25、26、27、28、29、及び30からな
る群から選択される配列からなるVL-CDR3を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3
抗体又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:22
、23、24、25、26、27、28、29、及び30からなる群から選択される配列を含んでなるVL-C
DR3を含む。
は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:31からなるVH-CDR1を含む。一部の態様において
、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以
外は、配列番号:31を含んでなるVH-CDR1を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3
抗体又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:32
、33及び34からなる群から選択される配列からなるVH-CDR2を含む。一部の態様において
、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以
外は、配列番号:32、33及び34からなる群から選択される配列を含んでなるVH-CDR2を含む
。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又
は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:35からなるVH-CDR3を含む。一部の態様において
、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以
外は、配列番号:35を含んでなるVH-CDR3を含む。
8、19及び20からなる群から選択される配列からなるVL-CDR1;配列番号:21からなるVL-CD
R2;並びに、配列番号:22、23、24、25、26、27、28、29、及び30からなる群から選択さ
れる配列からなるVL-CDR3を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれら
の抗原-結合断片は、配列番号:18、19及び20からなる群から選択される配列を含んでなる
VL-CDR1;配列番号:21を含んでなるVL-CDR2;並びに、配列番号:22、23、24、25、26、27
、28、29、及び30からなる群から選択される配列を含んでなるVL-CDR3を含む。
1からなるVH-CDR1;配列番号:32、33及び34からなる群から選択される配列からなるVH-CD
R2;並びに、配列番号:35からなるVH-CDR3を含む。一部の態様において、本発明の抗-HER
3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、配列番号:31を含んでなるVH-CDR1;配列番号:32、3
3及び34からなる群から選択される配列を含んでなるVH-CDR2;配列番号:35を含んでなるV
H-CDR3を含む。
は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:18、19、及び20からなる群から選択される配列か
らなるVL-CDR1;1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:21からなるVL-CDR2;
並びに、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:22、23、24、25、26、27、28
、29、及び30からなる群から選択される配列からなるVL-CDR3を含む。一部の態様におい
て、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換
以外は、配列番号:18、19及び20からなる群から選択される配列を含んでなるVL-CDR1;1
、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:21を含んでなるVL-CDR2;並びに、1、2
、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:22、23、24、25、26、27、28、29、及び30
からなる群から選択される配列を含んでなるVL-CDR3を含む。
は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:31からなるVH-CDR1;1、2、3又は4つのアミノ酸
置換以外は、配列番号:32、33及び34からなる群から選択される配列からなるVH-CDR2;並
びに、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:35からなるVH-CDR3を含む。一部
の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、1、2、3又は4つの
アミノ酸置換以外は、配列番号:31を含んでなるVH-CDR1;1、2、3又は4つのアミノ酸置換
以外は、配列番号:32、33及び34からなる群から選択される配列を含んでなるVH-CDR2;並
びに、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:35を含んでなるVH-CDR3を含む。
び/又は軽鎖のCDR1、CDR2、及び/又はCDR3への修飾を含み、並びに重鎖及び/又は軽鎖
のFW1、FW2、FW3、及び/又はFW4への修飾を更に含む。一部の態様において、FW1は、配
列番号:40又は44を含み、FW2は、配列番号:41を含み、FW3は、配列番号:42を含み、FW4は
、配列番号:43を含み、FW5は、配列番号:36を含み、FW6は、配列番号:37を含み、FW7は、
配列番号:38を含み、並びにFW8は、配列番号:39を含む。
44を含み;FW2は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:41を含み;FW3は、1
、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:42を含み;FW4は、1、2、3又は4つのア
ミノ酸置換以外は、配列番号:43を含み;FW5は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、
配列番号:36を含み;FW6は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:37を含み
;FW7は、1、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:38を含み;並びに、FW8は、1
、2、3又は4つのアミノ酸置換以外は、配列番号:39を含む。
配列番号:18、21、22、31、32、及び35、配列番号:18、21、26、31、32及び35、配列番号
:18、21、27、31、32及び35、配列番号:20、21、22、31、32及び35、配列番号:19、21、2
2、31、32及び35、配列番号:18、21、25、31、32及び35、配列番号:18、21、28、31、32
及び35、配列番号:18、21、29、31、32及び35、配列番号:18、21、30、31、32及び35、配
列番号:18、21、23、31、32及び35、配列番号:19、21、23、31、32及び35、配列番号:20
、21、23、31、32及び35、配列番号:18、21、24、31、32及び35、又は配列番号:18、21、
25、31、32及び35と同一であるか、又は1つ以上のCDRにおいて、4、3、2若しくは1つのア
ミノ酸置換以外は同一である、VL-CDR1、VL-CRD2、VL-CDR3、VH-CDR1、VH-CDR2、及びVH-
CDR3アミノ酸配列を含んでなるVL及びVHを含む。
及び抗体VHを含み、ここで該VLは、配列番号:1、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:5、
配列番号:6、配列番号:7、配列番号:8、配列番号:9、配列番号:10、配列番号:11、配列番
号:14、配列番号:15、配列番号:16、及び配列番号:17からなる群から選択される参照アミ
ノ酸配列と、少なくとも約80%、約85%、約90%、約95%、約96%、約97%、約98%、約
99%、又は約100%同一であるアミノ酸配列を含む。
体VHを含み、ここで該VHは、配列番号:2、配列番号:12及び配列番号:13からなる群から選
択される参照アミノ酸配列と、少なくとも約80%、約85%、約90%、約95%、約96%、約
97%、約98%、約99%、又は約100%同一であるアミノ酸配列を含む。
配列番号:3、配列番号:4、配列番号:5、配列番号:6、配列番号:7、配列番号:8、配列番号
:9、配列番号:10、配列番号:11、配列番号:14、配列番号:15、配列番号:16、及び配列番
号:17からなる群から選択される参照アミノ酸配列と少なくとも約80%、約85%、約90%
、約95%、約96%、約97%、約98%、約99%、又は約100%同一である配列を含んでなるV
Lを含み、且つ配列番号:2、配列番号:12及び配列番号:13からなる群から選択される参照
アミノ酸配列と少なくとも約80%、約85%、約90%、約95%、約96%、約97%、約98%、
約99%、又は約100%同一である配列を含んでなるVHを更に含む。
を含む。抗体は、それらのVL鎖に従い本明細書を通じて指定される。本明細書に開示され
た特異的抗体の重鎖は、CL16オリジナル重鎖(配列番号:2)に対応している。従って「CL16
抗体」は、2つのオリジナルCL16軽鎖(配列番号:17)及び2つのCL16オリジナル重鎖(配列番
号:2)を含むIgG1であるのに対して、「2C2抗体」は、2つの2C2軽鎖(2C2 VL(配列番号:3)
及び2つのCL16オリジナル重鎖(配列番号:2)を含むIgG1である。
れらの断片を含む。一部の具体的態様において、重鎖定常領域は、IgG定常領域である。
このIgG定常領域は、カッパ定常領域及びラムダ定常領域からなる群から選択される軽鎖
定常領域を含むことができる。
リジナル重鎖(配列番号:2)及びオリジナルCL16軽鎖(配列番号:17)を含む、CL16抗体と実
質的に同じ又はそれよりも大きい親和性で、HER3に結合する。いくつかの態様において、
本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、2C2軽鎖(2C2 VL(配列番号:3))及びC
L16オリジナル重鎖(配列番号:2)を含む、2C2抗体と実質的に同じ又はそれよりも大きい親
和性で、HER3に結合する。
の抗原性断片へ、解離定数kd (koff/kon)が10−6M未満、又は10−7M未満、又は10−8M未
満、又は10−9M未満、又は10−10M未満、又は10−11M未満、又は10−12M未満、又は10−1
3M未満で、特異的に結合する。本発明の特定の態様において、抗-HER3抗体又はそれらの
抗原-結合断片は、HER3及びそれらの抗原性断片へ、解離定数2×10−10M〜6×10−10Mで
、特異的に結合する。
はそれらの抗原性断片へ、Koffが1×10−3 s−1未満、又は2×10−3 s−1未満で結合する
。別の態様において、抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、HER3及びそれらの抗原
性断片へ、Koffが10−3 s−1未満、5×10−3 s−1未満、10−4 s−1未満、5×10−4 s−1
未満、10−5 s−1未満、5×10−5 s−1未満、10−6 s−1未満、5×10−6 s−1未満、5×1
0−7 s−1未満、10−8 s−1未満、5×10−8 s−1未満、10−9 s−1未満、5×10−9 s−1
未満、又は10−10 s−1未満で結合する。特定の態様において、本発明の抗-HER3抗体又は
それらの抗原-結合断片は、HER3及び/又はそれらの抗原性断片へ、Koff が0.5×10−4 s
−1〜2.0×10−4 s−1で結合する。
はそれらの抗原性断片へ、結合速度定数又はkon速度が少なくとも105 M−1 s−1、少なく
とも5×105 M−1 s−1、少なくとも106 M−1 s−1、少なくとも5×106 M−1 s−1、少な
くとも107 M−1 s−1、少なくとも5×107 M−1 s−1、又は少なくとも108 M−1 s−1、又
は少なくとも109 M−1 s−1で結合する。別の態様において、本発明の抗-HER3抗体又はそ
れらの抗原-結合断片は、HER3及び/又はそれらの抗原性断片へ、結合速度定数又はkon速
度が1×105 M−1 s−1〜6×105 M−1 s−1で結合する。
めに、「混合及び対合」させることができる。いくつかの態様において、15D12.I及び15D
12.VのVH配列を、混合及び対合させる。加えて又は代わりに、5H6、8A3、4H6、6E.3、2B1
1、2D1、3A6、4C4、1A4、2C2、3E.1のVL配列を、混合及び対合させることができる。
Rnへの結合を改善し、且つ抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片の半減期を改善する変
異を含む。一部の態様において、そのような変異は、IgG1の定常ドメインへ導入された、
KabatのEUインデックスに従う番号付け(Kabatらの文献、(1991)、「免疫学的関心のある
タンパク質の配列」、米国立衛生研究所(NIH)、公衆衛生局(PHS)、ワシントンD.C.)で、
位置252でのメチオニン(M)のチロシン(Y)への変異、位置254でのセリン(S)のトレオニン(
T)への変異、及び位置256でのトレオニン(T)のグルタミン酸(E)への変異である。引用に
より本明細書中に組み込まれている、米国特許第7,658,921号を参照されたい。「YTE変異
体」と称されるこの種の変異体IgGは、同じ抗体の野生型と比べ、およそ4倍の増大された
半減期を発揮することが示されている(Dall'Acquaらの文献、J. Biol. Chem. 281: 23514
-24 (2006))。一部の態様において、IgG定常ドメインを含む抗-HER3抗体又はそれらの抗
原-結合断片は、KabatのEUインデックスに従う番号付けでアミノ酸残基の位置251-257、2
85-290、308-314、385-389、及び428-436に1つ以上のアミノ酸置換を含み、ここでそのよ
うな変異は、抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片の血清半減期を増大する。
ドメインの位置434に、トリプトファン(W)、メチオニン(M)、チロシン(Y)、及びセリン(S
)からなる群から選択されるアミノ酸による置換を更に含む。他の態様において、YTE変異
体は、KabatのEUインデックスに従う番号付けでIgG定常ドメインの位置434に、トリプト
ファン(W)、メチオニン(M)、チロシン(Y)、及びセリン(S)からなる群から選択されるアミ
ノ酸による置換、並びにKabatのEUインデックスに従う番号付けでIgG定常ドメインの位置
428に、トレオニン(T)、ロイシン(L)、フェニルアラニン(F)、及びセリン(S)からなる群
から選択されるアミノ酸による置換を更に含む。
常ドメインの位置434に、チロシン(Y)による置換、並びにKabatのEUインデックスに従う
番号付けでIgG定常ドメインの位置257に、ロイシン(L)による置換を更に含む。一部の態
様において、YTE変異体は、KabatのEUインデックスに従う番号付けでIgG定常ドメインの
位置434に、セリン(S)による置換、並びにKabatのEUインデックスに従う番号付けでIgG定
常ドメインの位置428に、ロイシン(L)による置換を更に含む。
2C2 VL;配列番号:3)、オリジナルのCL16重鎖可変領域(配列番号:2)、並びにKabatのEUイ
ンデックスに従う番号付けでIgG1定常ドメインの位置252でのメチオニン(M)のチロシン(Y
)への変異、位置254でのセリン(S)のトレオニン(T)への変異、及び位置256でのトレオニ
ン(T)のグルタミン酸(E)への変異を含むIgG1定常ドメインを含む。
らなる群から選択される少なくとも1つのIgG定常ドメインアミノ酸置換を含み:
(a)位置252のアミノ酸の、チロシン(Y)、フェニルアラニン(F)、トリプトファン(W)、
又はトレオニン(T)による置換、
(b)位置254のアミノ酸の、トレオニン(T)による置換、
(c)位置256のアミノ酸の、セリン(S)、アルギニン(R)、グルタミン(Q)、グルタミン酸(
E)、アスパラギン酸(D)、又はトレオニン(T)による置換、
(d)位置257のアミノ酸の、ロイシン(L)による置換、
(e)位置309のアミノ酸の、プロリン(P)による置換、
(f)位置311のアミノ酸の、セリン(S)による置換、
(g)位置428のアミノ酸の、トレオニン(T)、ロイシン(L)、フェニルアラニン(F)、又は
セリン(S)による置換、
(h)位置433のアミノ酸の、アルギニン(R)、セリン(S)、イソロイシン(I)、プロリン(P)
、又はグルタミン(Q)による置換、
(i)位置434のアミノ酸の、トリプトファン(W)、メチオニン(M)、セリン(S)、ヒスチジ
ン(H)、フェニルアラニン(F)、又はチロシンによる置換、並びに
(j)前記置換の2以上の組合せ:
ここでこれらの位置は、KabatのEUインデックスに従い番号付けられ、且つここで修飾
されたIgGは、野生型のIgG定常ドメインを有するIgGの血清半減期と比べ、増大された血
清半減期を有する。
%、95%、96%、97%、98%又は99%の類似性があり、且つ1、2、3、4、5又はそれ以上
の保存的置換を含むことができる。各々、配列番号:2、12若しくは13のVH領域及び/又は
配列番号:1、3、4、5、6、7、8、9、10、11、14、15、16、若しくは17のVL領域に対し高
い(すなわち、80%以上の)類似性を有するVH及びVL領域を有するHER3抗体は、配列番号:1
−17をコードしている核酸分子の変異誘発(例えば、位置指定変異誘発又はPCR-媒介性変
異誘発)、それに続く本文において説明された機能アッセイを使用するコードされ変更さ
れた抗体の維持された機能に関する試験により得ることができる。
免疫吸着アッセイ(ELISA)、又はラジオイムノアッセイ(RIA)、又は動態分析(例えば、BIA
CORE(商標)分析)などの、当該技術分野において周知の任意の好適な方法を用い、実験に
より決定することができる。直接結合アッセイに加え、競合的結合アッセイのフォーマッ
トを、容易に利用することができる。(例えば、Berzofskyらの文献、「抗体-抗原相互作
用(Antibody-Antigen Interactions)」、Fundamental Immunology、Paul, W. E.編集、Ra
ven Press社:ニューヨーク、N.Y. (1984);Kubyの文献、「免疫学(Immunology)」、W. H
. Freeman and Company:ニューヨーク、N.Y. (1992);及び、本文記載の方法を参照され
たい)。特定の抗体-抗原相互作用の測定された親和性は、異なる条件(例えば、塩濃度、p
H、温度)下で測定した場合に、変動することができる。従って、親和性及び他の抗原-結
合パラメータ(例えば、KD又はKd、Kon、Koff)の測定値は、抗体及び抗原の標準化された
溶液、及び当該技術分野において公知の標準化された緩衝液並びに本文に記載の緩衝液な
どにより作製される。
結合されているかによって変動し得ることは、当該技術分野において公知である。これに
関して、親和性は、標的化する抗体(例えば、2C2モノクローナル抗体)が、チップ上に固
定化されているフォーマット(「IgGダウン」フォーマットと称される)を用いて、又は標
的タンパク質(例えば、HER3)が、チップ上に固定化されているフォーマット(例えば「HER
3ダウン」フォーマットと称される)を用いて、測定することができる。
合分子)
別の態様において、本発明は、本文に記載の様々な抗-HER3抗体が結合するのと同じエ
ピトープへ結合するHER3-結合分子を含む。本文において使用される用語「エピトープ」
とは、本発明の抗体へ結合することが可能であるタンパク質決定基をいう。エピトープは
通常、アミノ酸又は糖鎖などの分子の化学的に活性のある表面基からなり、且つ特異的三
次元構造特徴に加え、特異的帯電特徴を通常有する。立体構造エピトープと直線状(non-c
onformational)エピトープは、後者ではなく前者に対する結合が、変性溶媒の存在下で失
われることで、識別される。そのような抗体は、標準のHER3結合アッセイにおいて、CL16
抗体、2C2抗体、又は2C2-YTE変異体などの抗体と交差-競合する(例えば、統計学的に有意
な様式で、結合を競合的に阻害する)それらの能力を基に同定することができる。従って
一つの態様において、本発明は、抗-HER3抗体及びそれらの抗原-結合断片、例えばCL16抗
体又は2C2抗体などの別の本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片とのHER3の結
合について競合するヒトモノクローナル抗体を提供する。被験抗体の例えばCL16抗体又は
2C2抗体などの結合を阻害する能力は、被験抗体は、HER3への結合に関してその抗体と競
合することができること;そのような抗体は、非限定的理論に従い、それが競合する抗-H
ER3抗体又はそれらの抗原-結合断片と、HER3上の同じ又は関連のある(例えば、構造的に
類似の又は空間的に近位の)エピトープに結合することができることを明らかにしている
。一態様において、HER3上の同じエピトープに結合する抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結
合断片、例えば、CL16抗体又は2C2抗体は、ヒトモノクローナル抗体である。
一部の態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片
は、HER3リン酸化を抑制することができる。他の態様において、HER3-結合分子、例えば
抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、AKTリン酸化を抑制することができる。更に
他の態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、H
ER2-HER3二量体形成を抑制することができる。一部の態様において、HER3-結合分子、例
えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、細胞成長を抑制することができる。一部
の態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、ADC
C作用を欠いている。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれ
らの抗原-結合断片は、リガンド-非依存性の作用機序を介して、HER3リン酸化、AKTリン
酸化、及び/又は腫瘍コロニー形成を抑制することができる。
は、ELISAにより測定されるHRG-駆動された乳癌MCF-7細胞におけるHER3リン酸化を、約30
ng/mLより低い、約25ng/mLより低い、約20ng/mLより低い、約15ng/mLより低い、又は約10
ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例
えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、ELISAにより測定されるHRG-駆動された
乳癌MCF-7細胞におけるHER3リン酸化を、約20ng/mLより低いIC50で、抑制することができ
る。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断
片は、ELISAにより測定されるHRG-駆動された乳癌MCF-7細胞におけるHER3リン酸化を、約
15ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。別の具体的態様において、HER3-結合分
子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、ELISAにより測定されるHRG-駆動
された乳癌MCF-7細胞におけるHER3リン酸化を、約10ng/mLより低いIC50で、抑制すること
ができる。
は、MDA-MB-175乳癌細胞における細胞成長を、約0.90μg/mLより低い、約0.80μg/mLより
低い、約0.70μg/mLより低い、約0.60μg/mLより低い、約0.50μg/mLより低い、約0.40μ
g/mLより低い、約0.30μg/mLより低い、又は約0.20μg/mLより低いIC50で、抑制すること
ができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-
結合断片は、MDA-MB-175乳癌細胞における細胞成長を、約0.50μg/mLより低いIC50で、抑
制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれ
らの抗原-結合断片は、MDA-MB-175乳癌細胞における細胞成長を、約0.40μg/mLより低いI
C50で、抑制することができる。別の具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER
3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、MDA-MB-175乳癌細胞における細胞成長を、約0.30μ
g/mLより低いIC50で、抑制することができる。別の具体的態様において、HER3-結合分子
、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、MDA-MB-175乳癌細胞における細胞成
長を、約0.20μg/mLより低いIC50で、抑制することができる。
は、HMCBメラノーマ細胞における細胞成長を、約0.20μg/mLより低い、約0.15μg/mLより
低い、約0.10μg/mLより低い、約0.05μg/mLより低い、約0.04μg/mLより低い、又は約0.
03μg/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子
、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、HMCBメラノーマ細胞における細胞成
長を、約0.10μg/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3
-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、HMCBメラノーマ細胞にお
ける細胞成長を、約0.05μg/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様にお
いて、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、HMCBメラノー
マ細胞における細胞成長を、約0.04μg/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体
的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、HMC
Bメラノーマ細胞における細胞成長を、約0.03μg/mLより低いIC50で、抑制することがで
きる。
は、EGFR-駆動されたHCC827肺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約20ng/mLより低い、約15
ng/mLより低い、約10ng/mLより低い、約8ng/mLより低い、約6ng/mLより低い、約4ng/mLよ
り低い、又は約2ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HE
R3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、EGFR-駆動されたHCC827
肺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約10ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。
具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は
、EGFR-駆動されたHCC827肺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約8ng/mLより低いIC50で、
抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそ
れらの抗原-結合断片は、EGFR-駆動されたHCC827肺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約6n
g/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例
えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、EGFR-駆動されたHCC827肺癌細胞におけ
るHER3リン酸化を、約4ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様におい
て、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、EGFR-駆動された
HCC827肺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約2ng/mLより低いIC50で、抑制することができ
る。
は、TKIに対し抵抗性であるEGFR-駆動されたHCC827肺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約
30ng/mLより低い、約25ng/mLより低い、約20ng/mLより低い、約15ng/mLより低い、約10ng
/mLより低い、又は約5ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様におい
て、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、TKIに対し抵抗性
であるEGFR-駆動されたHCC827肺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約20ng/mLより低いIC50
で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又
はそれらの抗原-結合断片は、TKIに対し抵抗性であるEGFR-駆動されたHCC827肺癌細胞に
おけるHER3リン酸化を、約15ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様
において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、TKIに対し
抵抗性であるEGFR-駆動されたHCC827肺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約10ng/mLより低
いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3
抗体又はそれらの抗原-結合断片は、TKIに対し抵抗性であるEGFR-駆動されたHCC827肺癌
細胞におけるHER3リン酸化を、約5ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。
合断片は、TKI抵抗性癌の治療に使用することができる。
は、cMET-駆動されたMKN45ヒト胃腺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約15ng/mLより低い
、約10ng/mLより低い、約9ng/mLより低い、約8ng/mLより低い、約7ng/mLより低い、約6ng
/mLより低い、約5ng/mLより低い、又は約4ng/mLより低いIC50で、抑制することができる
。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片
は、cMET-駆動されたMKN45ヒト胃腺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約10ng/mLより低いI
C50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗
体又はそれらの抗原-結合断片は、cMET-駆動されたMKN45ヒト胃腺癌細胞におけるHER3リ
ン酸化を、約8ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3
-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、cMET-駆動されたMKN45ヒ
ト胃腺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約6ng/mLより低いIC50で、抑制することができる
。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片
は、cMET-駆動されたMKN45ヒト胃腺癌細胞におけるHER3リン酸化を、約4ng/mLより低いIC
50で、抑制することができる。
結合断片は、cMET-駆動されたMKN45細胞におけるpAKTを、約15ng/mLより低い、約10ng/mL
より低い、約9ng/mLより低い、約8ng/mLより低い、約7ng/mLより低い、6ng/mLより低い、
約5ng/mLより低い、約4ng/mLより低い、約3ng/mLより低いIC50で、抑制することができる
。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片
は、cMET-駆動されたMKN45細胞におけるpAKTを、約8ng/mLより低いIC50で、抑制すること
ができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-
結合断片は、cMET-駆動されたMKN45細胞におけるpAKTを、約6ng/mLより低いIC50で、抑制
することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれら
の抗原-結合断片は、cMET-駆動されたMKN45細胞におけるpAKTを、約4ng/mLより低いIC50
で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又
はそれらの抗原-結合断片は、cMET-駆動されたMKN45細胞におけるpAKTを、約3ng/mLより
低いIC50で、抑制することができる。
結合断片は、FGFR2-駆動されたKato IIIヒト胃の印環細胞癌におけるpHERを、約9ng/mLよ
り低い、約8ng/mLより低い、約7ng/mLより低い、約6ng/mLより低い、約5ng/mLより低い、
約4ng/mLより低い、約3ng/mLより低い、約2ng/mLより低い、又は約1ng/mLより低いIC50で
、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又は
それらの抗原-結合断片は、FGFR2-駆動されたKato IIIヒト胃の印環細胞癌におけるpHER
を、約5ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合
分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、FGFR2-駆動されたKato IIIヒト
胃の印環細胞癌におけるpHERを、約4ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体
的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、FGF
R2-駆動されたKato IIIヒト胃の印環細胞癌におけるpHERを、約3ng/mLより低いIC50で、
抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそ
れらの抗原-結合断片は、FGFR2-駆動されたKato IIIヒト胃の印環細胞癌におけるpHERを
、約2ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分
子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、FGFR2-駆動されたKato IIIヒト胃
の印環細胞癌におけるpHERを、約1ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。
は、FGFR-2駆動されたKato III細胞におけるpAKTを、約6ng/mLより低い、約5ng/mLより低
い、約4ng/mLより低い、約3ng/mLより低い、約2ng/mLより低い、又は約1ng/mLより低いIC
50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体
又はそれらの抗原-結合断片は、FGFR-2駆動されたKato III細胞におけるpAKTを、約4ng/m
Lより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば
抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、FGFR-2駆動されたKato III細胞におけるpAKT
を、約3ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-結合
分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、FGFR-2駆動されたKato III細胞
におけるpAKTを、約2ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において
、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、FGFR-2駆動されたK
ato III細胞におけるpAKTを、約1ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。
結合断片は、リガンド非依存性BT-474乳癌細胞におけるpHERを、約10ng/mLより低い、約9
ng/mLより低い、約8ng/mLより低い、約7ng/mLより低い、約6ng/mLより低い、約5ng/mLよ
り低い、約4ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-
結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、リガンド非依存性BT-474乳
癌細胞におけるpHERを、約8ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様に
おいて、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、リガンド非
依存性BT-474乳癌細胞におけるpHERを、約6ng/mLより低いIC50で、抑制することができる
。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片
は、リガンド非依存性BT-474乳癌細胞におけるpHERを、約4ng/mLより低いIC50で、抑制す
ることができる。
結合断片は、リガンド非依存性BT-474乳癌細胞におけるpAKTを、約10ng/mLより低い、約9
ng/mLより低い、約8ng/mLより低い、約7ng/mLより低い、約6ng/mLより低い、約5ng/mLよ
り低い、約4ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様において、HER3-
結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、リガンド非依存性BT-474乳
癌細胞におけるpAKTを、約8ng/mLより低いIC50で、抑制することができる。具体的態様に
おいて、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、リガンド非
依存性BT-474乳癌細胞におけるpAKTを、約6ng/mLより低いIC50で、抑制することができる
。具体的態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片
は、リガンド非依存性BT-474乳癌細胞におけるpAKTを、約4ng/mLより低いIC50で、抑制す
ることができる。一部の態様において、HER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの
抗原-結合断片は、リガンド非依存性乳癌モデルであるBT-474細胞における、pHER3、pAKT
、及び腫瘍コロニー形成を抑制することができる。
結合断片は、HRG誘導したVEGF分泌を抑制することができる。具体的態様において、HER3-
結合分子、例えば本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、リガンド非依存性
BT-474乳癌細胞及び/又はHRG-駆動された乳癌MCF-7細胞において、HRG誘導したVEGF分泌
を抑制することができる。
結合断片は、細胞周期停止を引き起こすことができる。具体的態様において、HER3-結合
分子、例えば本発明の抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片は、SKBR3細胞又はBT474細
胞を含むが、これらに限定されるものではない、乳癌細胞における、細胞周期停止を引き
起こすことができる。
モノクローナル抗-HER3抗体は、Kohler及びMilsteinの文献、Nature, 256: 495 (1975)
に記載された方法などの、ハイブリドーマ法を用いて調製することができる。このハイブ
リドーマ法を用い、マウス、ハムスター、又は他の好適な宿主動物を、先に説明されたよ
うに免疫化し、免疫化する抗原に特異的に結合する抗体のリンパ球による産生を誘発する
。リンパ球はまた、インビトロにおいても免疫化することができる。免疫化後、リンパ球
は、単離され、且つ例えばポリエチレングリコールを用い、好適な骨髄腫細胞株と融合さ
れ、ハイブリドーマ細胞を形成し、これらは次に融合されないリンパ球と骨髄腫細胞から
選別することができる。免疫沈降、免疫ブロット法、又はインビトロ結合アッセイ(例え
ばラジオイムノアッセイ(RIA);酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA))により決定されるよ
うに、選択された抗原に対し特異的に向けられたモノクローナル抗体を産生するハイブリ
ドーマは、次に、標準方法(Godingの文献、「モノクローナル抗体:原理と実践(Monoclon
al Antibodies : Principles and Practice)」、Academic Press社、1986年)を使用する
インビトロ培養において、又は動物内の腹水腫瘍としてインビボにおいてのいずれかで増
殖することができる。このモノクローナル抗体は次に、先のポリクローナル抗体について
説明されたように、培養培地又は腹水液から精製することができる。
うな、組換えDNA法を用いて作製することができる。モノクローナル抗体をコードしてい
るポリヌクレオチドは、該抗体の重鎖及び軽鎖をコードしている遺伝子を特異的に増幅す
るオリゴヌクレオチドプライマーを使用するRT-PCRなどにより、成熟B-細胞又はハイブリ
ドーマ細胞から単離され、且つそれらの配列は、通常の手順を用いて決定される。その後
重鎖及び軽鎖をコードしている単離されたポリヌクレオチドは、好適な発現ベクターへク
ローニングされ、これは大腸菌細胞、シミアンCOS細胞、チャイニーズハムスター卵巣(CH
O)細胞、又は免疫グロブリンタンパク質を本来産生しない骨髄腫細胞などの宿主細胞へト
ランスフェクトされる際に、これらの宿主細胞により、モノクローナル抗体が産生される
。同じく、所望の種の組換え抗-HER3モノクローナル抗体又はそれらの抗原-結合断片は、
説明されたような所望の種のCDRを発現しているファージディスプレイライブラリーから
単離することができる(McCaffertyらの文献、Nature, 348: 552-554, 1990;Clarksonら
の文献、Nature, 352: 624-628, 1991;及び、Marksらの文献、J. Mol. Biol., 222: 581
-597, 1991)。
替抗体を産生する組換えDNA技術を用い、多くの異なる方法で修飾することができる。一
部の態様において、例えばマウスモノクローナル抗体の軽鎖及び重鎖の定常ドメインは、
(1)キメラ抗体を作出するために、例えばヒト抗体のそれらの領域の、又は(2)融合抗体を
作出するために、非免疫グロブリンポリペプチドの、代わりとなることができる。一部の
態様において、これらの定常領域は、切断されるか、又は除去され、モノクローナル抗体
の所望の抗体断片を作出する。この可変領域の位置指定又は高密度変異誘発は、モノクロ
ーナル抗体の特異性、親和性などを最適化するために使用することができる。
れらの抗原-結合断片である。ヒト抗体は、当該技術分野において公知の様々な技術を用
い、直接調製することができる。インビトロにおいて免疫化されるか、又は標的抗原に対
し向けられた抗体を産生する免疫化された個体から単離された、不死化されたヒトBリン
パ球を作出することができる(例えば、Coleらの文献、「モノクローナル抗体及び癌療法(
Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy)」、Alan R. Liss, 77頁、(1985);Boemer
らの文献、J. Immunol., 147(1): 86-95 1991;及び、米国特許第5,750,373号を参照され
たい)。
択されることができ、ここでこのファージライブラリーは、例えば、Vaughanらの文献、N
at. Biotech., 14: 309-314, 1996、Sheetsらの文献、Proc. Natl. Acad. Sci., 95: 615
7-6162, 1998、Hoogenboom及びWinterの文献、J. Mol. Biol., 227: 381, 1991、並びにM
arksらの文献、J. Mol. Biol., 222: 581, 1991に記載されたように、ヒト抗体を発現す
る。抗体ファージライブラリーの作製及び使用に関する技術はまた、米国特許第5,969,10
8号、第6,172,197号、第5,885,793号、第6,521,404号;第6,544,731号;第6,555,313号;
第6,582,915号;第6,593,081号;第6,300,064号;第6,653,068号;第6,706,484号;及び
、第7,264,963号;並びに、Rotheらの文献、2007, J. Mol. Bio., doi:10.1016/ j.jmb.2
007.12.018に記載されている(各々はそれらの全体が引用により本明細書中に組み込まれ
ている)。
arksらの文献、Bio/Technology, 10: 779-783, 1992)は、当該技術分野において公知であ
り、且つ高親和性ヒト抗体又はそれらの抗原-結合断片を作製するために利用することが
できる。
。非ヒト抗体又はヒト抗体を操作する、ヒト化する又は表面再処理する(resurfacing)方
法も、使用することができ、且つ当該技術分野において周知である。ヒト化されたか、表
面再処理されたか又は同様に操作された抗体は、例えば、非限定的に、マウス、ラット、
ウサギ、非ヒト霊長類又は他の哺乳動物などの、非ヒトである給源由来のアミノ酸残基を
1つ以上有することができる。これらの非ヒトアミノ酸残基は、典型的には公知のヒト配
列の「インポート(import)」可変ドメイン、定常ドメイン又は他のドメインからもたらさ
れる、「インポート」残基と称されることが多い残基により置き換えられる。そのような
インポートされた配列を使用し、免疫原性を低下するか、又は当該技術分野において公知
のように、結合、親和性、結合速度、解離速度、結合力、特異性、半減期、若しくは任意
の他の好適な特徴を低下するか、増強するか若しくは修飾することができる。概してCDR
残基は、HER3結合への影響に直接に及びほとんど実質的に関与される。従って、非ヒト又
はヒトCDR配列の一部又は全てを維持する一方で、可変領域及び定常領域の非ヒト配列を
、ヒトの又は他のアミノ酸により置き換えることができる。
、任意にヒト化されるか、表面再処理されるか、操作されるか、又はヒト抗体操作される
こともできる。この目標を実現するために、ヒト化(若しくはヒト)されるか又は操作され
た抗-HER3抗体及び表面再処理された抗体は、親配列、操作された配列、及びヒト化配列
の三次元モデルを使用する、親の配列並びに様々な概念的ヒト化及び操作された生成物の
分析プロセスにより、任意に調製することができる。三次元免疫グロブリンモデルが通常
、利用可能であり、且つ当業者には良く知られている。選択された候補免疫グロブリン配
列の可能性のある三次元高次構造を例示し且つ表示するコンピュータプログラムが、利用
可能である。これらの表示の検証は、候補免疫グロブリン配列の機能における残基のもっ
ともらしい役割の分析、すなわち候補免疫グロブリンのHER3などのその抗原に結合する能
力に影響を及ぼす残基の分析を可能にする。この様式において、フレームワーク(FW)残基
は、コンセンサス配列及びインポート配列から選択され且つ組合せられ、その結果標的抗
原に関する増大した親和性などの、所望の抗体特徴が達成される。
限定的に、以下に記載されたものなど、公知の方法のいずれかを用いて実行することがで
きる:Jonesらの文献、Nature, 321: 522 (1986);Riechmannらの文献、Nature, 332: 32
3 (1988);Verhoeyenらの文献、Science, 239: 1534 (1988))、Simsらの文献、J. Immuno
l. 151: 2296 (1993);Chothia及びLeskの文献、J. Mol. Biol. 196: 901 (1987)、Carte
rらの文献、Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89: 4285 (1992);Prestaらの文献、J. Imm
unol. 151: 2623 (1993)、米国特許第5,639,641号、第5,723,323号;第5,976,862号;第5
,824,514号;第5,817,483号;第5,814,476号;第5,763,192号;第5,723,323号;第5,766,
886号;第5,714,352号;第6,204,023号;第6,180,370号;第5,693,762号;第5,530,101号
;第5,585,089号;第5,225,539号;第4,816,567号、第7,557,189号;第7,538,195号;及
び、第7,342,110号;国際出願番号PCT/US98/16280;PCT/US96/18978;PCT/US91/09630;P
CT/US91/05939;PCT/US94/01234;PCT/GB89/01334;PCT/GB91/01134;PCT/GB92/01755;
国際特許出願公開番号WO90/14443;WO90/14424;WO90/14430;及び、欧州特許公開番号EP
229246;これらの各々は、それらに引用された参照を含み、全体が引用により本明細書
中に組み込まれている。
ン産生の非存在下でヒト抗体の完全レパトアを作製することが可能である、ヒト免疫グロ
ブリン遺伝子座を含むトランスジェニックマウスにおいて作製することができる。このア
プローチは、米国特許第5,545,807号;第5,545,806号;第5,569,825号;第5,625,126号;
第5,633,425号;及び、第5,661,016号に説明されている。
々な技術が、公知である。従来これらの断片は、無傷の抗体のタンパク質分解性消化によ
り誘導される(例えば、Morimotoらの文献、Journal of Biochemical and Biophysical Me
thods, 24: 107-117, 1993;Brennanらの文献、Science, 229: 81, 1985)。いくつかの態
様において、抗-HER3抗体断片は、組換えにより作製される。Fab、Fv、及びscFv抗体断片
は全て、大腸菌又は他の宿主細胞において発現及び分泌され、その結果大量のこれらの断
片の生成が可能である。そのような抗-HER3抗体断片はまた、先に考察したように抗体フ
ァージライブラリーから単離することができる。抗-HER3抗体断片はまた、米国特許第5,6
41,870号に説明されたような、線状抗体であることができる。抗体断片の作製に関する他
の技術は、当業者には明らかであろう。
(例えば米国特許第4,946,778号を参照されたい)。加えて、Fab発現ライブラリーを構築す
る方法(例えばHuseらの文献、Science, 246: 1275-1281 (1989))を、HER3、又はそれらの
誘導体、断片、アナログ若しくはホモログに関する所望の特異性を伴うモノクローナルFa
b断片の迅速且つ効果的な同定が可能であるように、適応させることができる。非限定的
に、(a)抗体分子のペプシン消化により生成されたF(ab')2断片;(b)F(ab')2断片のジスル
フィド橋の還元により作出された, Fab断片;(c)抗体分子のパパイン及び還元剤による処
理により作出されたFab断片、並びに(d)Fv断片:を含む、抗体断片を、当該技術分野の技
術により作製することができる。
結合断片を修飾することは、更に望ましいことがあり得る。これは、例えば、抗体又は抗
体断片中の好適な領域の変異による抗体又は抗体断片へのサルベージ受容体結合エピトー
プの取込みによるか、又はペプチドタグへのエピトープの取込みとその後末端又は中央部
のいずれかで該抗体又は抗体断片への融合によるか(例えば、DNA又はペプチド合成により
)、又はYTE変異により、達成することができる。抗体又はそれらの抗原-結合断片の血清
半減期を増大する他の方法、例えば、PEGなどの異種分子へのコンジュゲーションが、当
該技術分野において公知である。
る。ヘテロコンジュゲート抗体は、2つの共有結合された抗体で構成される。そのような
抗体は、例えば、免疫細胞を望ましくない細胞へ標的化することが提唱されている(例え
ば、米国特許第4,676,980号を参照されたい)。ヘテロコンジュゲート抗-HER3抗体及びそ
れらの抗原-結合断片は、架橋剤が関与する方法を含む、合成タンパク質化学において公
知の方法を用い、インビトロにおいて調製することができることが、企図されている。例
えば、免疫毒素は、ジスルフィド交換反応を用いるか、又はチオエーテル結合の形成によ
り、構築することができる。この目的に適した試薬の例は、イミノチオラート及びメチル
-4-メルカプトブチルイミデートを含む。
断片は、他の治療薬と組合せるか、又は他の治療薬若しくは毒素にコンジュゲートされ、
免疫コンジュゲート及び/又は融合タンパク質を形成することができる。そのような治療
薬及び毒素の例としては、セツキシマブ(エルビタックス(登録商標))、パニツムマブ(ベ
クチビックス(登録商標))、ラパチニブ(タイカーブ(登録商標)/タイバーブ(登録商標))
、及びパクリタキセル(タキソール(登録商標)、アブラキサン(登録商標))並びに誘導体(
例えば、ドセタキセル)が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
は、上皮細胞成長因子受容体(EGFR)を標的化する抗体又は抗体断片にコンジュゲートする
ことができる。他の態様において、本発明のHER3-結合分子は、チロシンキナーゼ阻害薬
にコンジュゲートすることができる。一部の具体的態様において、本発明のHER3-結合分
子は、EGFR及び/又はHER2/neuに会合されたチロシンキナーゼ活性の阻害剤にコンジュゲ
ートすることができる。一部の態様において、本発明のHER3-結合分子は、有糸分裂阻害
薬にコンジュゲートすることができる。一部の具体的態様において、本発明のHER3-結合
分子は、紡錘体微小管集成体を安定化する物質にコンジュゲートすることができる。
はポリペプチドのHER3との会合を提供する任意の型の可変領域を含むことができることは
理解されなければならない。これに関して、該可変領域は、体液性応答を開始し(mount)
且つ所望の腫瘍関連抗原に対する免疫グロブリンを産生するように誘導することができる
任意の型の哺乳動物からなるか、又は動物から誘導されることができる。従って修飾され
た抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片の可変領域は、例えば、ヒト、マウス、非ヒト
霊長類(例えば、カニクイザル、マカクザルなど)又はオオカミ起源のものであることがで
きる。一部の態様において、修飾された抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片の可変領
域と定常領域の両方が、ヒトである。他の態様において、適合性のある抗体の可変領域(
通常、非ヒト給源から誘導される)は、その結合特性を改善するか又は該分子の免疫原性
を低下するために、操作されるか又は特別にあつらえる(tailor)ことができる。これに関
して、本発明において有用な可変領域は、ヒト化されるか、又はそうでなければインポー
トされたアミノ酸配列の包含を介して変更されることができる。
方の可変ドメインは、1つ以上のCDRの少なくとも部分的置き換えにより、並びに必要なら
ば部分的フレームワーク領域置き換え及び配列変化により、変更される。これらのCDRは
、それよりフレームワーク領域が誘導された抗体と同じクラスの抗体から又はサブクラス
の抗体さえからも誘導することができるが、これらのCDRは、異なるクラスの抗体から、
及びいくつかの態様においては異なる種の抗体から誘導されることが想起される。ひとつ
の可変ドメインの抗原結合能を別のものに移すために、そのCDRの全てを、ドナー可変領
域由来の完全なCDRにより置き換えることは、不要である。むしろ、その抗原結合部位の
活性を維持するために必要であるそれらの残基を移すことのみが必要である。米国特許第
5,585,089号、第5,693,761号及び第5,693,762号に明記された説明を考慮し、低下した免
疫原性を持つ機能的抗体を得ることは、慣習的実験を実行するか又は試行錯誤で試験する
かのいずれかにより、当業者の能力の範囲内であろう。
らの抗原-結合断片は、未変性の又は変更されない定常領域を含むほぼ同じ免疫原性の抗
体と比較した場合に、増大された腫瘍局在化又は減少された血清半減期などの所望の生化
学的特徴を提供するために、少なくとも定常領域ドメインの1つ以上の画分が欠失されて
いるか、又はそうでなければ変更されている抗体(例えば、完全長抗体又はそれらの免疫
反応性断片)を含むことを理解するであろう。一部の態様において、修飾された抗体の定
常領域は、ヒト定常領域を含むであろう。本発明と適合性のある定常領域への修飾は、1
つ以上のドメイン内の1個以上のアミノ酸の付加、欠失又は置換を含む。すなわち、本文
において明らかにされた修飾された抗体は、3つの重鎖定常ドメイン(CH1、CH2又はCH3)の
1つ以上及び/又は軽鎖定常ドメイン(CL)に変更又は修飾を含むことができる。一部の態
様において、1つ以上のドメインが部分的に又は全体的に欠失されている修飾された定常
領域が、企図されている。一部の態様において、修飾された抗体は、CH2ドメイン全体が
取り除かれているドメイン欠失された構築体又は変種(ΔCH2構築体)を含むであろう。一
部の態様において、省略された定常領域ドメインは、典型的には存在しない定常領域によ
り付与される分子の可動性の一部を提供する、短いアミノ酸スペーサー(例えば10残基)に
より置き換えられるであろう。
、当該技術分野においてわかっている。例えば、抗体への補体C1成分の結合は、補体系を
活性化する。補体の活性化はまた、細胞病原体のオプソニン化及び溶解に重要である。補
体の活性化はまた、炎症反応も刺激し、且つまた自己免疫過敏症に関与し得る。更に、抗
体は、細胞上のFc受容体(FcR)と結合する、抗体Fc領域上のFc受容体部位により、Fc領域
を介して細胞へ結合する。IgG(ガンマ受容体)、IgE(イータ受容体)、IgA(アルファ受容体
)及びIgM(ミュー受容体)を含む、抗体の異なるクラスに特異的である数多くのFc受容体が
存在する。抗体の細胞表面上のFc受容体への結合は、抗体-被覆された粒子の貪食(engulf
ment)及び破壊、免疫複合体のクリアランス、キラー細胞による抗体-被覆された標的細胞
の溶解(抗体依存性細胞性細胞傷害、又はADCCと称される)、炎症メディエーターの放出、
胎盤移行及び免疫グロブリン産生の制御を含む、数多くの重要且つ多様な生物学的反応を
誘発する。
ェクター機能を提供し、これは次に、投与された抗体又はそれらの抗原-結合断片の生物
学的プロファイルに影響を及ぼす。例えば、定常領域ドメインの欠失又は失活(点変異又
は他の手段を介して)は、循環修飾された抗体のFc受容体結合を減少し、これにより腫瘍
局在化を増大することができる。他の場合において、本発明と一致している定常領域修飾
は、補体結合を穏やかにし、その結果血清半減期及びコンジュゲートされた細胞毒の非特
異的会合を減少することができる。更に他の定常領域の修飾は、増大した抗原特異性又は
抗体可動性のために増強された局在化を可能にするジスルフィド結合又はオリゴ糖部分を
排除するために使用することができる。同様に、本発明に従う定常領域への修飾は、当業
者の視野に良く収まる周知の生化学技術又は分子工学技術を用い、容易に行うことができ
る。
つ以上のエフェクター機能を有さない。例えば一部の態様において、抗体又はそれらの抗
原-結合断片は、抗体依存性細胞性細胞傷害(ADCC)活性及び/又は補体依存性細胞傷害(CD
C)活性を有さない。いくつかの態様において、抗-HER3抗体又はそれらの抗原結合断片は
、Fc受容体及び/又は補体因子に結合しない。いくつかの態様において、抗体又はそれら
の抗原-結合断片は、エフェクター機能を有さない。
ぞれの修飾された抗体又はそれらの断片のヒンジ領域へCH3ドメインを直接融合するよう
に、操作することができることは注目されるであろう。他の構築体において、ヒンジ領域
と修飾されたCH2及び/又はCH3ドメインの間に、ペプチドスペーサーを提供することが望
ましいことがある。例えば、適合性のある構築体は、CH2ドメインが欠失され、且つ残存
するCH3ドメイン(修飾又は非修飾)が、5〜20個のアミノ酸スペーサーによりヒンジ領域に
結合している場合に、発現されることができる。そのようなスペーサーは、例えば、定常
ドメインの調節要素が、自在且つアクセス可能であり続けること、又はヒンジ領域が可動
性であり続けることを確実にするために、追加することができる。しかし、アミノ酸スペ
ーサーは、場合によっては、免疫原性であることが判明し、且つ該構築体に対する望まし
くない免疫応答を誘発することは留意しなければならない。従っていくつかの態様におい
て、修飾された抗体の望ましい生化学的品質を維持するために、構築体に追加された任意
のスペーサーは、相対的に非免疫原性であるか、又は全く省略されさえするであろう。
、数個の又はたった1個のアミノ酸の部分的欠失又は置換により提供され得ることは理解
されるであろう。例えば、CH2ドメインの選択された領域内の1個のアミノ酸の変異は、Fc
結合を実質的に低下し、これにより腫瘍局在化を増大するのに十分であることができる。
同様に、調節されるべきエフェクター機能(例えば補体C1Q結合)を制御する1以上の定常領
域ドメインの一部を単純に欠失することが望ましいことがある。そのような定常領域の部
分的欠失は、抗体又はそれらの抗原-結合断片の選択された特徴(例えば血清半減期)を改
善することができる一方で、無傷の対象の定常領域ドメインに関連した他の望ましい機能
を取り除く。更に先にほのめかしたように、開示された抗-HER3抗体及びそれらの抗原-結
合断片の定常領域は、得られる構築体のプロファイルを増強する1個以上のアミノ酸の変
異又は置換を通じて修飾することができる。これに関して、保存された結合部位(例えばF
c結合)により提供された活性を破壊する一方で、その修飾された抗体又はそれらの抗原-
結合断片の立体配置及び免疫原性プロファイルを実質的に維持することが可能である。い
くつかの態様は、エフェクター機能の減少若しくは増加などの望ましい特徴を増強するか
、又は更なる細胞毒又は糖鎖(carbohydrate)の結合を提供するための、1個以上のアミノ
酸の定常領域への付加を含むことができる。そのような態様において、選択された定常領
域ドメインから誘導された特異的配列を挿入又は複製することは望ましいことがある。
はそれらの抗原-結合断片と実質的に相同である変種及び同等物を包含している。これら
は、例えば、保存的置換変異、すなわち、1個以上のアミノ酸の類似のアミノ酸による置
換を含むことができる。例えば、保存的置換とは、あるアミノ酸の、同じ一般的クラス内
の別のアミノ酸による置換、例えば、1個の酸性アミノ酸の別の酸性アミノ酸による、1個
の塩基性アミノ酸の別の塩基性アミノ酸による、又は1個の中性アミノ酸の別の中性アミ
ノ酸による置換をいう。保存的アミノ酸置換により意図されるものは、当該技術分野にお
いて周知である。
加の化学部分を含むように、修飾することができる。それらの誘導体化された部分は、該
タンパク質の溶解度、生物学的半減期又は吸収を改善することができる。これらの部分は
また、該タンパク質の望ましくない副作用などを減少若しくは排除することができる。そ
れらの部分に関する概要は、「レミントン薬科学(Remington's Pharmaceutical Sciences
)」、第20版、Mack Publishing社、イーストン、PA (2000年)に見ることができる。
いくつかの態様において、本発明は、HER3に特異的に結合するポリペプチド又はそれら
の抗原-結合断片をコードしている核酸配列を含むポリヌクレオチドを包含している。例
えば、本発明は、抗-HER3抗体をコードしているか又はそのような抗体の抗原-結合断片を
コードしている核酸配列を含むポリヌクレオチドを提供する。本発明のポリヌクレオチド
は、RNA形又はDNA形であることができる。DNAは、cDNA、ゲノムDNA、及び合成DNAを含み
;且つ、二本鎖若しくは一本鎖であることができ、並びに一本鎖である場合は、コード鎖
又は非コード(アンチセンス)鎖であることができる。
おいて、本ポリヌクレオチドは、実質的に純粋である。いくつかの態様において、本ポリ
ヌクレオチドは、例えば、ポリペプチドの発現及び宿主細胞からの分泌を補助するポリヌ
クレオチド(例えば細胞からのポリペプチドの輸送を制御するため分泌配列として機能す
るリーダー配列)に対し、同じリーディングフレーム内に融合された成熟ポリペプチドに
ついてのコード配列を含む。リーダー配列を有するポリペプチドは、プレタンパク質であ
り、且つそのポリペプチドの成熟型を形成するために、宿主細胞により切断されたリーダ
ー配列を有することができる。本ポリヌクレオチドはまた、その成熟タンパク質に追加の
5'アミノ酸残基を加えたものであるHER3-結合プロタンパク質をコードすることができる
。
ド配列、例として、例えばコードされたポリペプチドの精製を可能にするマーカー配列に
対し同じリーディングフレームで融合された抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片を含
む。例えば、このマーカー配列は、細菌宿主の場合マーカーに融合された成熟ポリペプチ
ドの精製のために提供するpQE-9ベクターにより供給されるヘキサ-ヒスチジンタグである
ことができるか、又は哺乳動物宿主(例えば、COS-7細胞)が使用される場合、マーカー配
列は、インフルエンザヘマグルチニンタンパク質から誘導されたヘマグルチニン(HA)タグ
であることができる。
体をコードしている説明されたポリヌクレオチドの変種に関する。
できる。一部の態様において、本ポリヌクレオチド変種は、サイレント置換、付加、又は
欠失を生じるが、コードされたポリペプチドの特性又は活性は変更しないような、改変を
含む。一部の態様において、ヌクレオチド変種は、遺伝暗号の縮重によるサイレント置換
により作製される。ポリヌクレオチド変種は、例えば、特定の宿主のためのコドン発現を
最適化するため(ヒトmRNA内のコドンを、大腸菌などの細菌宿主により好ましいコドンに
変更する)など、様々な理由で作製され得る。本文において説明されたポリヌクレオチド
を含むベクター及び細胞も、提供される。
をコードしているDNA配列は、オリゴヌクレオチド合成装置を使用する、化学合成により
構築することができる。そのようなオリゴヌクレオチドは、所望のポリペプチドのアミノ
酸配列を基にデザインし、且つ関心対象の組換えポリペプチドが生成される宿主細胞にお
いて好ましいそれらのコドンを選択することができる。標準方法は、関心対象の単離され
たポリペプチドをコードしている単離されたポリヌクレオチド配列の合成に適用すること
ができる。例えば、完全アミノ酸配列を使用し、逆翻訳された遺伝子を構築することがで
きる。更に、特定の単離されたポリペプチドをコードしているヌクレオチド配列を含むDN
Aオリゴマーを合成することができる。例えば、所望のポリペプチドの一部をコードして
いるいくつかの小型オリゴヌクレオチドを合成し、その後連結することができる。個別の
オリゴヌクレオチドは典型的には、相補的集成体のための5'又は3'オーバーハングを含む
。
単離されたポリペプチドをコードしているポリヌクレオチド配列は、発現ベクターへ挿入
され、且つ望ましい宿主におけるタンパク質の発現に適した発現制御配列に機能的に連結
される。適切な集成体は、ヌクレオチド配列決定、制限地図作製、及び好適な宿主におけ
る生物学的活性のあるポリペプチドの発現により確認することができる。当該技術分野に
おいて周知であるように、宿主においてトランスフェクトされた遺伝子の高い発現レベル
を得るために、この遺伝子は、選択された発現宿主において機能性である転写及び翻訳の
発現制御配列に機能的に連結されなければならない。
Aを増幅及び発現するために、組換え発現ベクターが使用される。組換え発現ベクターは
、哺乳動物、微生物、ウイルス又は昆虫の遺伝子から誘導された好適な転写又は翻訳の調
節エレメントに機能的に連結された、抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片のポリペプ
チド鎖をコードしている合成の又はcDNA-誘導されたDNA断片を有する、複製可能なDNA構
築体である。転写ユニットは一般に、以下に詳細に説明するように、(1)遺伝子発現にお
ける調節の役割を有する1つ又は複数の遺伝的エレメント、例えば、転写プロモーター又
はエンハンサー、(2)mRNAへ転写され、且つタンパク質に翻訳される、構造配列又はコー
ド配列、並びに(3)好適な転写及び翻訳の開始配列及び終結配列:の集成体を含む。その
ような調節エレメントは、転写を制御するためのオペレーター配列を含むことができる。
宿主において複製する能力は、通常複製起点によりもたらされ、且つ形質転換体の認識を
促進する選択遺伝子を追加的に組み込むことができる。DNA領域は、それらが互いに機能
的に関連する場合、機能的に連結される。例えば、シグナルペプチドのDNA(分泌リーダー
)は、それがポリペプチドの分泌に参加する前駆体として発現される場合、ポリペプチド
に関するDNAへ機能的に連結され;プロモーターは、それが該配列の転写を制御する場合
には、コード配列に機能的に連結され;又は、リボソーム結合部位は、それが翻訳を可能
にするように配置される場合には、コード配列へ機能的に連結される。酵母発現系におけ
る使用が意図された構造的エレメントは、宿主細胞による翻訳されたタンパク質の細胞外
分泌を可能にするリーダー配列を含む。あるいは、組換えタンパク質がリーダー配列又は
輸送配列を伴わずに発現される場合、これは、N-末端メチオニン残基を含むことができる
。この残基は任意に、引き続き発現された組換えタンパク質から切断され、最終生成物を
提供することができる。
多様な発現宿主/ベクターの組合せを、利用することができる。真核生物宿主のための有
用な発現ベクターは、例えば、SV40、ウシパピローマウイルス、アデノウイルス及びサイ
トメガロウイルス由来の発現制御配列を含むベクターを含む。細菌宿主のための有用な発
現ベクターは、公知の細菌プラスミド、例えばpCR 1、pBR322、pMB9及びそれらの誘導体
を含む大腸菌由来のプラスミド、より広い宿主範囲のプラスミド、例えばM13及び繊維状
一本鎖DNAファージなどを含む。
胞は、好適なプロモーターの制御下にある、原核細胞、酵母細胞、昆虫細胞又はより高等
は真核細胞を含む。原核細胞は、例えば、大腸菌又は桿菌などのグラム陰性菌又はグラム
陽性菌を含む。より高等な真核細胞は、以下に説明するような、哺乳動物起源の樹立され
た細胞株を含む。無細胞翻訳システムも、利用することができる。細菌、真菌、酵母、及
び哺乳動物の細胞宿主と共に使用するための好適なクローニングベクター及び発現ベクタ
ーは、Pouwelsらの文献、「クローニングベクター:実験マニュアル(Cloning Vectors: A
Laboratory Manual)」、Elsevier社、N.Y., 1985年に記載されており、その関連のある
開示は参照により本明細書に組み入れられる。抗体製造を含む、タンパク質製造方法に関
する追加情報は、例えば、米国特許公報第2008/0187954号、米国特許第6,413,746号及び
第6,660,501号、並びに国際公開公報WO 04009823に認めることができ、これらは各々それ
らの全体が引用により本明細書中に組み込まれている。
HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片を発現するために、好都合に利用することができる
。哺乳動物細胞における組換えタンパク質は一般に正確に折り畳まれ、適宜修飾され且つ
完全に機能性であるので、そのようなタンパク質の発現を行うことができる。好適な哺乳
動物宿主細胞株の例は、HEK-293及びHEK-293T、Gluzmanの文献(Cell, 23: 175, 1981)に
記載されたサル腎細胞のCOS-7株、並びに例えば、L細胞、C127、3T3、チャイニーズハム
スター卵巣(CHO)、NSO、HeLa細胞株及びBHK細胞株を含む他の細胞株が挙げられる。哺乳
動物の発現ベクターは、複製起点、発現されるべき遺伝子に連結された好適なプロモータ
ー及びエンハンサーなどの非転写エレメント、並びに他の5'又は3'フランキング非転写配
列、並びに必要なリボソーム結合部位、ポリアデニル化部位、スプライシングドナー部位
及びアクセプター部位、及び転写終結配列などの5'又は3'非翻訳配列を含むことができる
。昆虫細胞において異種タンパク質を生成するためのバキュロウイルスシステムは、Luck
ow及びSummersの文献、BioTechnology, 6: 47 (1988)により検証されている。
抗原-結合断片は、任意の好適な方法に従い精製することができる。そのような標準の方
法は、クロマトグラフィー(例えば、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロ
マトグラフィー及びサイズカラムクロマトグラフィー)、遠心分離、溶解度差、又はタン
パク質精製に関する任意の他の標準技術によるものを含む。ヘキサヒスチジン、マルトー
ス結合ドメイン、インフルエンザコートタンパク質配列及びグルタチオン-S-トランスフ
ェラーゼなどのアフィニティタグは、好適なアフィニティカラム上の通過により、容易な
精製を可能にするように、タンパク質に結合させることができる。単離されたタンパク質
はまた、タンパク質分解、核磁気共鳴及びX線結晶解析などの技術を用い、物理的に特徴
付けることができる。
タンパク質濃縮フィルター、例えばAmicon社又はMillipore Pellicon社の限外濾過ユニッ
トを使用し、濃縮することができる。濃縮工程の次に、この濃縮物を、好適な精製マトリ
クスに適用することができる。あるいは、例えば、ペンダントジエチルアミノエチル(DEA
E)基を有するマトリクス又は基板などの、陰イオン交換樹脂を使用することができる。こ
れらのマトリクスは、アクリルアミド、アガロース、デキストラン、セルロース、又はタ
ンパク質精製において通常使用される他の型であることができる。あるいは、陽イオン交
換工程を使用することができる。好適な陽イオン交換体は、スルホプロピル基又はカルボ
キシメチル基を含む、様々な不溶性のマトリクスを含む。最後に、疎水性RP-HPLC媒体、
例えばペンダントメチル基若しくは他の脂肪族基を有するシリカゲルを使用する、1つ以
上の逆相高速液体クロマトグラフィー(RP-HPLC)工程を使用し、HER3-結合分子を更に精製
することができる。また前述の精製工程の一部又は全ては、様々な組合せで、異種組換え
タンパク質を提供するためにも使用することができる。
らの抗原-結合断片は、例えば、細胞ペレットからの最初の抽出、それに続く濃縮、塩析
、水性イオン交換又はサイズ排除クロマトグラフィー工程の1つ以上により、単離される
ことができる。高速液体クロマトグラフィー(HPLC)は、最終精製工程に使用することがで
きる。組換えタンパク質の発現に使用される微生物細胞は、凍結-解凍サイクリング、音
波処理、機械的破壊、又は細胞溶解剤の使用を含む、任意の簡便な方法により破壊するこ
とができる。
えば、各々はその全体が引用により本明細書中に組み込まれている、米国特許公報第2008
/0312425号、第2008/0177048号、及び第2009/0187005号に説明されたものを含む。
パク質標的へ高親和性で結合する非-抗体ポリペプチドを同定し且つ生成する様々な方法
は、当該技術分野において公知である。例えば、Skerraの文献、Curr. Opin. Biotechnol
., 18: 295-304 (2007)、Hosseらの文献、Protein Science, 15: 14-27 (2006)、Gillら
の文献、Curr. Opin. Biotechnol., 17: 653-658 (2006)、Nygrenの文献、FEBS J., 275:
2668-76 (2008)、及びSkerraの文献、FEBS J., 275: 2677-83 (2008)を参照し、それら
の各々はその全体が引用により本明細書中に組み込まれている。いくつかの態様において
、ファージディスプレイ技術を使用し、HER3-結合ポリペプチドを同定/生成することが
できる。いくつかの態様において、該ポリペプチドは、プロテインA、リポカリン、フィ
ブロネクチンドメイン、アンキリンコンセンサス反復ドメイン、及びチオレドキシンから
なる群から選択される型のタンパク質スキャフォールドを含む。
本発明の方法は、HER3発現又はHER3-発現細胞に関連した疾患を有する患者を治療する
ための、抗-HER3結合分子、例えばそれらの抗原-結合断片、変種、及び誘導体を含む抗体
の使用に関する。「HER3-発現細胞」は、HER3を発現している細胞を意味する。細胞にお
けるHER3発現を検出する方法は、当該技術分野において周知であり、且つ非限定的に、PC
R技術、免疫組織化学、フローサイトメトリー、ウェスタンブロット、ELISAなどが挙げら
れる。
に言及するが、本文に記載の方法はまた、抗-HER3抗体にも、並びに例えばHER3に特異的
に結合し且つHER3活性を中和することが可能であるような本発明の抗-HER3抗体の所望の
特性を維持しているこれらの抗-HER3抗体の抗原-結合断片、変種、及び誘導体にも適用可
能である。一部の態様において、HER3-結合分子は、ヒトADCCを媒介しないヒト抗体又は
ヒト化抗体であるか、又はADCCを媒介しない公知の抗-HER3抗体から選択されるか、又はA
DCCを媒介しないよう操作される抗-HER3抗体である。一部の態様において、HER3-結合分
子は、クローン16モノクローナル抗体である。他の態様において、HER3-結合分子は、ク
ローン16 YTE変異体抗体である。一部の態様において、HER3-結合分子は、P2B11モノクロ
ーナル抗体である。一部の態様において、HER3-結合分子は、1A4モノクローナル抗体であ
る。一部の態様において、HER3-結合分子は、2C2モノクローナル抗体である。一部の態様
において、HER3-結合分子は、2F10モノクローナル抗体である。一部の態様において、HER
3-結合分子は、3E1モノクローナル抗体である。一部の態様において、HER3-結合分子は、
血清半減期を延長するように操作されたP2B11モノクローナル抗体である。一部の態様に
おいて、HER3-結合分子は、血清半減期を延長するように操作された1A4モノクローナル抗
体である。一部の態様において、HER3-結合分子は、血清半減期を延長するように操作さ
れた2C2モノクローナル抗体である。一部の態様において、HER3-結合分子は、血清半減期
を延長するように操作された2F10モノクローナル抗体である。一部の態様において、HER3
-結合分子は、血清半減期を延長するように操作された3E1モノクローナル抗体である。他
の態様において、HER3-結合分子は、P2B11 YTE変異体抗体である。他の態様において、HE
R3-結合分子は、1A4 YTE変異体抗体である。他の態様において、HER3-結合分子は、2C2-Y
TE変異体抗体である。他の態様において、HER3-結合分子は、2F10 YTE変異体抗体である
。他の態様において、HER3-結合分子は、3E1 YTE変異体抗体である。
合断片、変種、若しくは誘導体の対象又は患者への適用又は投与、あるいは抗-HER3結合
分子の対象又は患者から単離された組織又は細胞株への適用又は投与を含み、ここで該対
象又は患者は、疾患、疾患の症状、又は疾患への素因を有する。別の態様において、治療
はまた、本発明の抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原結合断片、変種、若し
くは誘導体を含有する医薬組成物の、疾患、疾患の症状、又は疾患への素因を有する対象
又は患者への適用又は投与、あるいは抗-HER3結合分子を含有する医薬組成物の、対象又
は患者から単離された組織又は細胞株への適用又は投与を含むことが意図される。
導体は、様々な癌の治療に有用である。一態様において、本発明は、医薬品としての使用
のための、特に癌の治療又は予防における使用のための、抗-HER結合分子、例えば抗体又
はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは誘導体に関する。癌の例としては、結腸癌、
肺癌、胃癌、頭頸部の扁平細胞癌、メラノーマ、膵臓癌、前立腺癌、及び乳癌が挙げられ
るが、これらに限定されるものではない。
定されたような抗体又はそれらの抗原結合断片、変種、若しくは誘導体は、癌に関する正
の治療反応を促進するために使用される。癌治療に関する用語「正の治療反応」とは、こ
れらの抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは誘導体
の活性に関連した疾患の改善、並びに/又は該疾患に関連した症状の改善をいう。従って
、例えば疾患の改善は、完全な反応として特徴付けることができる。「完全な反応」によ
って、先行する試験結果の正常化により臨床上検出可能な疾患の存在しないことが意図さ
れる。あるいは、該疾患の改善は、部分的反応として分類することができる。「正の治療
反応」は、本発明の抗-HER3結合分子の投与の結果生じる、癌の進行及び/若しくは期間
の低下若しくは阻害、癌の重症度の軽減若しくは改善、及び/又はそれらの1以上の症状
の改善を包含している。具体的態様において、そのような用語は、本発明の抗-HER3結合
分子の投与後の1、2又は3以上の結果をいう:(1)癌細胞集団の安定化、減少又は排除;(2
)癌成長の安定化又は減少;(3)癌形成の障害;(4)原発性、局所性及び/又は転移性癌の
根絶、除去、又は制御;(5)死亡率の減少;(6)無疾患の、無再発の、無進行の、及び/又
は全般的な生存、期間、又は割合の増加;(7)反応率、反応の永続性、又は反応するか若
しくは寛解にある患者数の増加;(8)入院率の減少;(9)入院期間の短縮;(10)癌のサイズ
が維持されるか又は増加しないか、若しくは10%未満、好ましくは5%未満、好ましくは4
%未満、好ましくは2%未満の増加であること;並びに、(12)寛解にある患者数の増加。
T)走査、フローサイトメトリー又は蛍光活性化セルソーター(FACS)分析、組織検査、肉眼
的病理検査、及び非限定的にELISA、RIA、クロマトグラフィーなどによる検出可能な変化
を含む血液化学などのスクリーニング技術を用いて評価することができる。これらの正の
治療反応に加え、抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片、変種、若し
くは誘導体による療法を受けている対象は、該疾患に関連した症状の改善の有益な作用を
経験することができる。
体は、例えば、結腸癌、肺癌、胃癌、頭頸部の扁平細胞癌、及び乳癌などの癌の治療のた
めに、有用であることがわかっているか、又は使用されてきたか若しくは現在使用されて
いる、任意の薬剤又は薬剤の組合せを含む、公知の癌療法のいずれかと組合せて使用する
ことができる。医薬組合せ製剤又は投薬計画のこの第二の薬剤又は薬剤の組合せは、好ま
しくは本発明の抗体又はポリペプチドに対し相補的活性を有し、その結果これらは互いに
有害な作用を及ぼさない。
法は、単独で、又は手術若しくは放射線治療などの他の治療と組合せて使用することがで
きる。いくつかのクラスの薬物を、関与した臓器の性質に応じて、癌治療において使用す
ることができる。例えば、乳癌は、エストロゲンにより通常刺激され、且つこの性ホルモ
ンを失活する薬物により治療することができる。同様に、前立腺癌は、男性性ホルモンで
あるアンドロゲンを失活する薬物により治療することができる。本発明のある種の方法に
おいて使用するための抗癌剤は、とりわけ、抗体(例えば、IGF-1Rに結合する抗体、EGFR
に結合する抗体、HER2に結合する抗体、HER3に結合する抗体、又はcMETに結合する抗体)
、IGF1Rを標的化する小型分子、EGFRを標的化する小型分子、HER2を標的化する小型分子
、代謝拮抗薬、アルキル化剤、トポイソメラーゼ阻害薬、微小管標的化薬、キナーゼ阻害
薬、タンパク質合成阻害薬、免疫療法薬、ホルモン療法、糖質コルチコイド、アロマター
ゼ阻害薬、mTOR阻害薬、化学療法薬、プロテインキナーゼB阻害薬、ホスファチジルイノ
シトール3-キナーゼ(PI3K)阻害薬、サイクリン依存性キナーゼ(CDK)阻害薬、RLr9、CD289
、酵素阻害薬、抗-TRAIL、MEK阻害薬などを含む。
は、例えば、セツキシマブ(エルビタックス(登録商標)、Imclone社)、パニツムマブ(ベク
チビックス(登録商標)、Amgen社)、マツズマブ/EMD72000(Merck Serono社)、MM-151オリ
ゴクローナル(Merrimack社)、ニモツズマブ(TheraCIM、InnGene Kalbiotechy社)、GA201/
RG7160(Roche社)、Sym004(Symphogen社)、MEHD-7945A(EGFR/HER3二重特異性、Genentech
社)などの、上皮細胞成長因子受容体(EGFR)を標的化する抗体又は抗体断片と組合せて、
投与することができる。別の具体的態様において、本発明のHER3-結合分子、例えば抗体
又はそれらの抗原-結合断片は、例えば、ペルツズマブ(rhuMAb、2C4/オムニターグ(登録
商標)、Genentech社)、トラスツズマブ(ハーセプチン(登録商標)、Genentech/Roche社)、
MM-111(HER2/HER3二特異性抗体、Merrimack社、例えばWO 2009/126920)などの、HER2を標
的化する抗体又は抗体断片と組合せて投与することができる。更に別の具体的態様におい
て、本発明のHER3-結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片は、例えば、MEHD-7
945A/RG7597 (EGFR/HER3二重特異性、Genentech社、例えばWO 2010108127)、MM-121(Merr
imack社、例えばWO 2008/100624)、MM-111(HER2/HER3二特異性抗体、Merrimack社、例え
ばWO 2009/126920)、AV-203(Aveo社、例えばWO 2011/136911)、AMG888(Amgen社、WO 2007
/077028)、HER3-8(ImmunogGen社、例えばWO 2012/019024)などの、同じくHER3を標的化す
る抗体又は抗体断片と組合せて投与することができる。更に特異的な態様において、本発
明のHER3-結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片は、HER4を標的化する抗体又
は抗体断片と組合せて投与することができる。具体的態様において、本発明のHER3-結合
分子は、EGFR、又はHER2を標的化する抗体(例えばセツキシマブ又はトラスツズマブ)と組
合せて投与することができる。更なる具体的な態様において、本発明のHER3-結合分子は
、HER2を標的化する抗体薬物コンジュゲート(例えば、トラスツズマブエムタンシン、Gen
entech/Roche社)と組合せて投与することができる。本発明のHER3-結合分子は、抗体の共
-受容体への結合により誘導された共-受容体のインターナリゼーション及び分解を増強し
、その結果EGFR、HER2及び/又はHER4を標的化する抗体及び/又は抗体薬物コンジュゲー
トの有効性を増強することが企図されている。
与することができる。一部の他の具体的態様において、本発明のHER3-結合分子は、EGFR
及び/又はHER2/neuに関連したチロシンキナーゼ活性の阻害薬、例えばラパチニブと組合
せて投与することができる。具体的態様において、本発明のHER3-結合分子は、上皮細胞
成長因子受容体(例えば、EGFR、HER2、HER4)の小型分子阻害薬、例えばゲフィチニブ(イ
レッサ(登録商標)、Astrazeneca社);カネルチニブ/CI-1033(Pfizer社);ラパチニブ(タ
イカーブ(登録商標)、GlaxoSmithKline社)、エルロチニブ(タルセバ(登録商標)、OSI Pha
rma社)、アファチニブ(Tovok(登録商標)/Tomtovok(登録商標)、Boehringer Ingelheim社)
、ネラチニブ(HKI-272、Pfizer社)などと組合せて投与することができる。
ことができる。一部の具体的態様において、本発明のHER3-結合分子は、例えば、パクリ
タキセル又はドセタキセルなどの、紡錘体微小管集成体を安定化する薬剤と組合せて投与
することができる。
キナーゼ(MAPK)キナーゼ、MAPKKとしても公知)阻害薬、例えば、セルメチニブ(AZD6244、
ARRY-142866、AstraZeneca社)、WX-554(Wilex社)、トラメチニブ(GlaxoSmithKline社)、
レファメチニブ(Ardea Biosciences社)、E-6201(Eisai社)、MEK-162(Novartis社)などと
組合せて投与することができる。特定の態様において、MEK阻害薬と本発明のHER3-結合分
子の組合せは、いずれかの薬剤の単独よりもより効果がある。具体的態様において、本発
明のHER3-結合分子は、セルメチニブと組合せて投与することができる。
の方法は、個別の製剤又は単独の医薬製剤を使用する共投与、並びにいずれかの順番の連
続投与を包含している。一部の態様において、本文において説明された抗-HER3抗体は、
他の薬物と組合せて投与することができ、ここで該抗体又はそれらの抗原-結合断片、変
種、若しくは誘導体と治療薬は、いずれかの順番で逐次的に、又は同時に(すなわち、同
じ時に又は同じ時間枠内で)投与することができる。
使用される場合に達成される作用は、それらの化合物が個別に使用された結果生じる作用
の合計よりもより大きいことを立証する。活性成分が:(1)同時-製剤され、且つ組合せ単
位剤形において同時に投与されるか又は送達されるか;(2)個別の製剤として交互に又は
平行して送達されるか;あるいは、(3)いくつかの他の投薬計画による場合:に、相乗作
用を達成することができる。交互療法(alternation therapy)で送達される場合、それら
の化合物が、逐次的に、例えば個別の注射器で異なる注射により投与されるか又は送達さ
れる場合に、相乗作用を達成することができる。概して、交互療法時には、各活性成分の
有効量が、逐次的に、すなわち連続して投与されるのに対し、併用療法においては、2種
以上の活性成分の有効量は、一緒に投与される。
合断片は、上皮細胞成長因子受容体(EGFR)阻害薬と、相乗的組合せで投与することができ
る。一部の態様において、EGFR阻害薬は、抗体である。具体的態様において、EGFR阻害薬
である抗体は、エルビタックス(登録商標)(セツキシマブ)又はパニツムマブ(ベクチビッ
クス(登録商標))である。具体的態様において、本発明のHER3-結合分子、例えば抗体又は
それらの抗原-結合断片は、EGFR及び/又はHER2/neuに関連したチロシンキナーゼ活性の
阻害薬、例えばラパチニブとの、相乗的組合せで投与することができる。一部の態様にお
いて、本発明のHER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれらの抗原結合断片は、HER2阻
害薬との、相乗的組合せで投与することができる。一部の態様において、HER2阻害薬は、
抗体である。具体的態様において、HER2阻害薬である抗体は、ペルツズマブ(rhuMAb 2C4/
オムニターグ(登録商標)、Genentech社)、トラスツズマブ(ハーセプチン(登録商標)、Gen
entech/Roche社)又はトラスツズマブエムタンシン(Genentech/Roche社)である。具体的態
様において、本発明のHER3-結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片は、HER2/n
euに関連したチロシンキナーゼ活性の阻害薬、例えばラパチニブとの、相乗的組合せで投
与することができる。一部の態様において、本発明のHER3-結合分子は、有糸分裂阻害薬
との、相乗的組合せで投与することができる。一部の具体的態様において、有糸分裂阻害
薬は、紡錘体微小管集成体を安定化する。一部の具体的態様において、有糸分裂阻害薬は
、パクリタキセル又はドセタキセルである。一部の具体的実施態様において、2C2抗体は
、成長因子受容体(EGFR)阻害薬との、相乗的組合せで投与することができる。一部の具体
的実施態様において、EGFR阻害薬は、抗体である。具体的実施態様において、2C2抗体と
相乗的に投与されるEGFR阻害薬である抗体は、エルビタックス(登録商標)(セツキシマブ)
である。具体的実施態様において、2C2抗体は、EGFR及び/又はHER2/neuに関連したチロ
シンキナーゼ活性の阻害薬、例えばラパチニブとの、相乗的組合せで投与することができ
る。一部の実施態様において、2C2抗体は、有糸分裂阻害薬との相乗的組合せで投与する
ことができる。一部の具体的実施態様において、2C2抗体と相乗的に投与される有糸分裂
阻害薬は、紡錘体微小管集成体を安定化する。一部の具体的実施態様において、2C2抗体
と相乗的に投与される有糸分裂阻害薬は、パクリタキセルである。
トKRAS遺伝子のコドン12に位置している。実施例のセクションで明らかにされたように、
本文において明らかにされた抗-HER3抗体は、単独の薬剤(単剤療法)として又は別の治療
薬と組合せてのいずれかで使用された場合に、KRAS変異を含む腫瘍細胞の成長を阻害する
ことが可能である。
としての、組織内のタンパク質レベルの診断的モニタリングのための、抗-HER3結合分子
、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは誘導体の使用である。例えば
、検出は、該抗体の検出可能な物質へのカップリングにより、促進することができる。検
出可能な物質の例は、様々な酵素、補欠分子族、蛍光物質、化学発光物質、生物発光物質
、及び放射性物質を含む。好適な酵素の例は、ホースラディッシュペルオキシダーゼ、ア
ルカリホスファターゼ、β-ガラクトシダーゼ、又はアセチルコリンエステラーゼを含み
;好適な補欠分子族の例は、ストレプトアビジン/ビオチン及びアビジン/ビオチンを含
み;好適な蛍光物質の例は、ウンベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセインイソチ
オシアネート、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、ダンシルクロ
リド又はフィコエリトリンを含み;化学発光物質の例は、ルミノールを含み;生物発光物
質の例は、ルシフェラーゼ、ルシフェリン、及びエクオリンを含み;並びに、好適な放射
性物質の例は、125I、131I、35S、又は3Hを含む。
本発明の抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは誘
導体を調製し且つそれらを必要とする対象へ投与する方法は、当業者に周知であるか、又
は当業者により容易に決定される。抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合
断片、変種、若しくは誘導体の投与経路は、例えば、経口、非経口、吸入又は外用である
ことができる。本文において使用される用語非経口は、例えば、静脈内、動脈内、腹腔内
、筋肉内、皮下、経直腸、又は経膣投与を含む。しかし本文の内容と適合する他の方法に
おいて、本発明の抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片、変種、若し
くは誘導体は、有害な細胞集団の部位へ直接送達され、これにより罹患組織の治療薬への
曝露を増加することができる。
抗原-結合断片、変種、若しくは誘導体は、ある種の癌型などの、HER3-発現している細胞
媒介性疾患のインビボ治療のために、医薬有効量で投与することができる。
衝物質、及び塩を含む、医薬として許容し得る担体を含有することができる。保存剤及び
他の添加剤も、存在することができる。担体は、溶媒又は分散媒であることができる。本
文において明らかにされた治療的方法において使用するのに適した製剤は、「レミントン
の薬科学(Remington's Pharmaceutical Sciences)」(Mack Publishing社)、第16版(1980
年)に説明されている。一部の態様において、本発明のHER3-結合分子は、冷蔵庫(2〜8℃)
で安定した組成物内で製剤される。特定の態様において、冷蔵庫で安定した組成物は、pH
6.0で、25mMヒスチジン/ヒスチジン塩酸塩、205mMショ糖、0.02%ポリソルベート80を含
有する。別の特定の態様において、本発明のHER3-結合分子は、冷蔵庫で安定した組成物
中に25〜100mg/mlで製剤される。
他の活性薬剤との組合せた、抗-HER3抗体、又はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは
誘導体)を必要量好適な溶媒中に混入し、引き続き濾過滅菌することにより、調製するこ
とができる。更に、この調製品は、包装し、キットの形状で販売することができる。その
ような製品は、関連する組成物が、疾患又は障害に罹患したか又はその素因のある対象の
治療に有用であることを表示するラベル又は添付文書を有することができる。
持量であることができる。これらの組成物は、特定の固定された間隔又は変動する間隔で
、例えば1日1回で、又は「必要に応じて」を基本に、投与することができる。
ることができる。投薬計画はまた、最適な望ましい反応(例えば、治療反応又は予防反応)
を提供するように、調節することができる。
及び乳癌を含むある種の癌型などの、HER3-発現している細胞媒介性疾患の治療のための
、本発明の組成物の治療的有効量は、投与手段、標的部位、患者の生理的状態、患者がヒ
トか動物であるかどうか、投与される他の薬物治療、及び治療が予防的又は治療的のいず
れであるかを含む、多くの異なる因子に応じて変動する。通常、患者はヒトであるが、ト
ランスジェニック哺乳動物を含む非ヒト哺乳動物も治療することができる。治療用量は、
安全性及び有効性を最適化するために、当業者に公知の慣習的方法を用いて、用量設定す
ることができる。
誘導体の少なくとも1種の量は、本発明の開示をもたらす過度の実験を伴わずに、当業者
により、容易に決定される。抗-HER3結合分子、例えば抗体、それらの抗原-結合断片、変
種又は誘導体の少なくとも1種の投与の様式及びそれぞれの量に影響を及ぼす要因は、疾
患の重症度、病歴、並びに年齢、身長、体重、健康、及び個人が受ける療法の物理的条件
を含むが、これらに限定されるものではない。同様に、投与されるべき抗-HER3結合分子
、例えば抗体又はそれらの断片、変種、若しくは誘導体の量は、投与様式、並びに対象が
この薬剤の単回投与量又は反復投与量を受けるかどうかによって決まるであろう。
癌、前立腺癌、及び乳癌を含む、癌型の治療のための医薬品の製造における、抗-HER3結
合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは誘導体の使用も提供す
る。
合分子、例えば本発明の抗体、又はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは誘導体の使
用も提供する。いくつかの態様において、この医薬品は、少なくとも1種の他の療法によ
り予備治療された対象において使用される。「予備治療された」又は「予備治療」とは、
対象が、抗-HER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは誘導
体を含有する医薬品を受け取る前に、1種以上の他の療法を受け取っている(例えば、少な
くとも1種の他の抗-癌療法で治療されている)ことを意図している。対象が、1種又は複数
の先行する療法による予備治療に対し反応者であったことは必須ではない。従って、抗-H
ER3結合分子、例えば抗体又はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは誘導体を含有する
医薬品を受け取る対象は、先行する療法による予備治療に対し、又は予備治療が複数の療
法を含む場合は1種以上の先行する療法に対し反応したか、又は反応に失敗していてよい
。
変種、若しくは誘導体と、少なくとも1種の他の療法との共投与も提供する。抗-HER3抗体
と少なくとも1種の他の療法は、単独の組成物内で一緒に共投与されることができるか、
又は個別の組成物中同じ時点若しくは重複する時点で一緒に共投与することができる。
合分子、例えば本発明の抗体、又はそれらの抗原-結合断片、変種、若しくは誘導体の使
用も提供し、ここで該抗-HER3結合分子は、対象が少なくとも1種の他の療法により治療さ
れる前に投与される。
本発明は更に、個体由来の組織又は他の細胞又は体液中のHER3タンパク質又は転写産物
の発現レベルを測定すること、及び測定された発現レベルを正常な組織又は体液中の標準
HER3発現レベルと比較し、これにより標準と比較した発現レベルの増加が、障害の指標で
あることが関与している、例えば、結腸癌、肺癌、胃癌、頭頸部の扁平細胞癌、メラノー
マ、膵臓癌、前立腺癌、及び乳癌を含む、ある種の癌型などの、HER3-発現している細胞
媒介性疾患の診断時に有用な診断方法を提供する。
に公知の古典的免疫組織学的方法を使用し、生物学的試料中のHER3タンパク質レベルをア
ッセイすることができる(例えば、Jalkanenらの文献、J. Cell. Biol. 101: 976-985 (19
85);Jalkanenらの文献、J. Cell Biol. 105: 3087-3096 (1987)参照)。HER3タンパク質
発現を検出するのに有用な他の抗体-ベースの方法は、酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)
、免疫沈降、又はウェスタンブロットなどの、イムノアッセイを含む。好適なアッセイは
、本文の別所により詳細に説明されている。
ク質レベルの決定又は概算による)又は相対的(例えば、第二の生物学的試料中の疾患に関
連したポリペプチドレベルとの比較による)のいずれかの、第一の生物学的試料中のHER3
ポリペプチドのレベルの定性的又は定量的測定又は概算が意図されている。第一の生物学
的試料中のHER3ポリペプチド発現レベルを、測定又は概算し、且つ標準HER3ポリペプチド
レベルと比較することができ、この標準は、該障害を有さない個体から得られた第二の生
物学的試料から入手されるか、又は該障害を有さない個体の集団からのレベルを平均化す
ることにより決定される。当該技術分野において理解されるように、一旦「標準」HER3ポ
リペプチドレベルがわかったら、これは、比較のための標準として繰り返し使用すること
ができる。
を測定すること、及び測定された活性レベルを正常な組織又は体液中の標準HER3活性レベ
ルと比較し、これにより標準と比較した活性レベルの増加が、障害の指標であることが関
与している、例えば、結腸癌、肺癌、胃癌、頭頸部の扁平細胞癌、メラノーマ、膵臓癌、
前立腺癌、及び乳癌を含む、ある種の癌型などの、HER3-発現している細胞媒介性疾患の
診断時に有用な診断方法を提供する。
細胞又は体液中のHER3タンパク質の活性レベルを測定すること、及び測定された活性レベ
ルを正常な組織又は体液中の標準HER3活性レベルと比較するか、及び/又は測定された活
性レベルを治療前の個体から得られた組織又は体液中の標準HER3活性レベルと比較し、こ
れにより標準と比較した活性レベルの減少が、HER3活性の阻害の指標であることが関与し
ている、例えば、結腸癌、肺癌、胃癌、頭頸部の扁平細胞癌、メラノーマ、膵臓癌、前立
腺癌、及び乳癌を含む、ある種の癌型などの、HER3-発現している細胞媒介性疾患の治療
時に有用な診断方法を提供する。
ルの決定又は概算による)又は相対的(例えば、第二の生物学的試料中の活性レベルとの比
較による)のいずれかの、第一の生物学的試料中のHER3タンパク質の活性の定性的又は定
量的測定又は概算が意図されている。第一の生物学的試料中のHER3タンパク質活性レベル
を、測定又は概算し、且つ標準HER3タンパク質活性と比較することができ、この標準は、
該障害を有さない個体から得られた第二の生物学的試料から入手されるか、又は該障害を
有さない個体の集団から若しくは治療前の個体からのレベルを平均化することにより決定
される。当該技術分野において理解されるように、一旦「標準」HER3タンパク質活性レベ
ルがわかったら、これは、比較のための標準として繰り返し使用することができる。いく
つかの態様において、生物学的試料中のHER3の活性レベルは、生物学的試料中のリン酸化
されたHER3を検出することにより、測定又は概算又は比較される。具体的態様において、
生物学的試料中のHER3の活性レベルは、皮膚生検標本(biopsy)中のリン酸化されたHER3を
検出することにより、測定又は概算又は比較され、ここで該皮膚は生検の前又は後にHRG
により刺激される。
は他の細胞給源から得られた任意の生物学的試料を意図している。哺乳動物から組織生検
標本及び体液を得る方法は、当該技術分野において周知である。
それらの抗原-結合断片、変種及び誘導体)の生体活性は、エクスビボアッセイを用い、検
出することができる。特定の態様において、このエクスビボアッセイは、皮膚生検標本中
のリン酸化されたHER3のレベルを検出することを含み、ここで該皮膚は生検の前又は後に
HRGにより刺激される。具体的態様において、対合された皮膚生検標本は、HER3阻害剤を
投与された対象から入手される。具体的態様において、HRGが、皮膚の第一の領域の下に
注射され、且つ対照緩衝液が、HER3阻害剤が投与された対象の皮膚の第二領域の下に注射
され、ここで望ましい時間(例えば10〜60分間)経過後、生検標本が皮膚の第一及び第二の
領域から採取される。代替の態様において、第一の皮膚生検標本は、HRGにより処理され
、且つ第二の皮膚生検標本は、対照緩衝液により処理され、ここで第一及び第二の生検標
本は、HER3阻害剤を投与された対象から採取された皮膚生検標本と対合されている。別の
具体的態様において、リン酸化されたHER3のレベルが、皮膚生検標本において検出される
。いくつかの態様において、第一生検標本(HRG処理された)と第二生検標本(対照緩衝液処
理された)の間のリン酸化されたHER3レベルの差異が決定される。いくつかの態様におい
て、皮膚生検標本は、ホモジナイズされ、且つリン酸化されたHER3のレベルが、ELISAに
より決定される。更に他の態様において、HER3阻害剤が投与された対象由来の皮膚生検標
本中のリン酸化されたHER3のレベルは、HER3阻害剤が投与されていない対照対象由来の皮
膚生検標本中のリン酸化されたHER3のレベルと比較され、ここでHER3阻害剤を投与された
対象の皮膚生検標本中のリン酸化されたHER3のレベルの低下は、HER3阻害剤の生体活性を
測るものである。代替の態様において、HER3阻害剤が投与された対象由来の皮膚生検標本
中のリン酸化されたHER3のレベルは、HER3阻害剤の投与前に採取された同じ対象由来の皮
膚生検標本中のリン酸化されたHER3のレベルと比較され、ここでHER3阻害剤を投与後の対
象の皮膚生検標本中のリン酸化されたHER3のレベルの低下は、HER3阻害剤の生体活性を測
るものである。本方法の他の具体的態様は、実施例のセクション5.15に詳述されている。
本発明は、本文において説明したHER3-結合分子、例えば本発明の抗-HER3抗体又はそれ
らの抗原結合断片を備え、且つ本文において説明した方法を実行するために使用すること
ができる、キットを提供する。いくつかの態様において、キットは、1個以上の容器内に
少なくとも1種の精製された抗-HER3抗体又はそれらの抗原-結合断片を備える。一部の態
様において、キットは、アッセイを実行するための全ての制御、指示、並びに結果の解析
及び提示に必要なソフトウェアを含む、検出アッセイを実行するのに必要及び/又は十分
な成分の全てを含んでいる。当業者は、開示されたHER3-結合分子、例えば本発明の抗-HE
R3抗体又はそれらの抗原結合断片は、当該技術分野において周知の確立されたキットフォ
ーマットの一つに容易に取り込むことができることを、容易に認めるであろう。
抗-HER3結合分子、例えば本発明の抗体又はそれらの抗原-結合断片、本発明の分子の変
種、又はそれらの誘導体は、当該技術分野において公知のいずれかの方法により、免疫特
異的結合についてアッセイすることができる。使用することができるイムノアッセイは、
いくつか名前を挙げると、ウェスタンブロット、ラジオイムノアッセイ、ELISA(酵素結合
免疫吸着アッセイ)、「サンドイッチ」イムノアッセイ、免疫沈降アッセイ、沈降素反応
、ゲル拡散沈降素反応、免疫拡散アッセイ、凝集アッセイ、補体結合アッセイ、免疫放射
線検定法、蛍光イムノアッセイ、プロテインAイムノアッセイなどの技術を使用する、競
合的及び非競合的アッセイシステムを含むが、これらに限定されるものではない。そのよ
うなアッセイは、慣習的であり且つ当該技術分野において周知である(例えば、Ausubelら
編集の文献、(1994)「分子生物学の最新プロトコール(Current Protocols in Molecular
Biology)」(John Wiley & Sons社、NY)、第1巻を参照し、これはその全体が引用により本
明細書中に組み込まれている)。
、若しくはそれらの誘導体は、HER3受容体又は保存された変種又はそれらのペプチド断片
のインサイチュ検出のために、免疫蛍光測定、免疫電子顕微鏡、又は非免疫学的アッセイ
においてのように、組織学的に利用することができる。インサイチュ検出は、患者からの
組織標本を摘出し、且つそれに標識されたHER3-結合分子、例えば抗-HER3抗体又はそれら
の抗原-結合断片、変種、又はそれらの誘導体を適用することにより、好ましくは生物学
的試料上に標識されたHER3-結合分子(例えば、及び抗体又は断片)を重ねることにより適
用し、達成することができる。そのような手順の使用により、HER3、又は保存された変種
若しくはペプチド断片の存在のみではなく、試験された組織中のその分布も決定すること
が可能である。本発明を使用し、当業者は、多種多様な組織学的方法(染色手順など)のい
ずれかを、そのようなインサイチュ検出を達成するために改変することができることを容
易に理解するであろう。
、若しくはそれらの誘導体の結合活性は、周知の方法に従い決定することができる。当業
者は、慣習的実験を使用することにより各々の決定に関する機能的且つ最適のアッセイ条
件を決定することができるであろう。
しくはそれらの改変された/変異された誘導体の結合の特徴を決定するのに適した方法及
び試薬は、当該技術分野において公知であり、並びに/又は商業的に入手可能である。そ
のような動態解析のためにデザインされた機器及びソフトウェアは、商業的に入手可能で
ある(例えば、BIAcore社、BIAevaluation software社、GE Healthcare社;KinExa Softwa
re社、Sapidyne Instruments社)。
物学、細胞培養、分子生物学、トランスジェニック生物学、微生物学、組換えDNA、及び
免疫学の常用の技術を利用するであろう。そのような技術は、文献に十分に説明されてい
る。例えば、Sambrookら編集の文献、(1989)、「分子クローニング実験マニュアル(Molec
ular Cloning A Laboratory Manual)」(第2版;Cold Spring Harbor Laboratory Press社
);Sambrookら編集の文献、(1992)、「分子クローニング:実験マニュアル」(Cold Sprin
gs Harbor Laboratory、NY);D. N. Glover編集の文献、(1985)、「DNAクローニング(DNA
Cloning)」第I及びII巻;Gait編集の文献、(1984)、「オリゴヌクレオチド合成(Olygonu
cleotide Synthesis)」;Mullisらの米国特許第4,683,195号;Hames及びHiggins編集の文
献、(1984)、「核酸ハイブリダイゼーション(Nucleic Acid Hybridization)」;Hames及
びHiggins編集の文献、(1984)、「転写及び翻訳(Transcription And Translation)」;Fr
eshneyの文献、(1987)、「動物細胞培養(Culture Of Animal Cells)」(Alan R. Liss社)
;「固定化された細胞及び酵素(Immobilized Cells And Enzymes)」(IRL Press社)(1986)
;Perbalの文献、(1984)、「分子クローニングの実践指針(A Practical Guide To Molecu
lar Cloning)」;学術論文「酵素学の方法(Methods In Enzymology)」、(Academic Press
社、N.Y.);Miller及びCalos編集の文献、(1987)、「哺乳動物細胞への遺伝子導入ベクタ
ー(Gene Transfer Vectors For Mammalian Cells)」、(Cold Spring Harbor Laboratory)
;Wuら編集の文献、「酵素学の方法(Methods In Enzymology)」、第154及び155巻;Mayer
及びWalker編集の文献、(1987)、「細胞及び分子生物学の免疫化学的方法(Immunochemica
l Methods In Cell And Molecular Biology)」、(Academic Press社、ロンドン);Weir及
びBlackwell編集の文献、(1986)、「実験免疫学ハンドブック(Handbook Of Experimental
Immunology)」、第I-IV巻;「マウス胚の操作(Manipulating the Mouse Embryo)」、Col
d Spring Harbor Laboratory Press社、コールドスプリングハーバー、NY、(1986);並び
に、Ausubelらの文献、(1989)、「分子生物学の最新プロトコール(Current Protocols in
Molecular Biology)」、(John Wiley and Sons社、ボルチモア、Md.)を参照されたい。
ering)」、(第2版;Oxford Univ. Press社)に明記されている。タンパク質操作の一般原
理は、Rickwoodら編集の文献、(1995)、「タンパク質操作・実践手法(Protein Engineeri
ng, A Practical Approach)」、(Oxford Univ. Press社IRL Press、オックスフォード、
英国)に明記されている。抗体と抗体-ハプテン結合の一般原理は、Nisonoffの文献、(198
4)、「分子免疫学(Molecular Immunology)」、(第2版;Sinauer Associates社、サンダー
ランド、Mass.);及び、Stewardの文献、(1984)、「抗体、それらの構造と機能(Antibody
, Their Structure and Function)」、(Chapman and Hall社、ニューヨーク、NY)に明記
されている。加えて、当該技術分野において公知であるが詳細に説明されていない免疫学
の標準方法は一般に、「免疫学最新プロトコール(Current Protocols in Immunology)」
、John Wiley & Sons社、ニューヨーク;Stitesら編集の文献、(1994)、「基礎及び臨床
免疫学(Basic and Clinical Immunology)」、(第8版;Appleton & Lange社、ニューアー
ク、Conn.)、並びにMishell及びShiigiの文献(編集)、(1980)、「細胞免疫学において選
択された方法(Selected Methods in Cellular Immunology)」、(W.H. Freeman社、NY)に
従う。
iley & Sons社、ニューヨーク;Kleinの文献、(1982)、「免疫学ジャーナル:自己-非自
己識別の科学(J., Immunology: The Science of Self-Nonself Discrimination)」、(Joh
n Wiley & Sons社、NY);Kennettら編集の文献、(1980)、「モノクローナル抗体、ハイブ
リドーマ:生物学的分析の新たな局面(Monoclonal Antibodies, Hybridoma: A New Dimen
sion in Biological Analyses)」、(Plenum Press社、NY);Campbellの文献、(1984)。「
モノクローナル抗体技術(Monoclonal Antibody Technology)」、「生化学及び分子生物学
の実験技術(Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology)」、Burde
nら編集の文献、(Elsevere社、アムステルダム);Goldsbyら編集の文献、(2000)、「Kuby
免疫学(Kuby Immunnology)」、(第4版;H. Freemand社);Roittらの文献、(2001)、「免
疫学(Immunology)」、(第6版;ロンドン:Mosby);Abbasらの文献、(2005)、「細胞及び
分子免疫学(Cellular and Molecular Immunology)」、(第5版;Elsevier Health Science
s Division社);Kontermann及びDubelの文献、(2001)、「抗体操作(Antibody Engineerin
g)」、(Springer Verlan社);Sambrook及びRussellの文献、(2001)、「分子クローニング
:実験マニュアル」、(Cold Spring Harbor Press社);Lewinの文献、(2003)、「遺伝子V
III(Genes VIII)」、(Prentice Hall社、2003);Harlow及びLaneの文献、(1988)、「抗体
:実験マニュアル」、(Cold Spring Harbor Press社);Dieffenbach及びDvekslerの文献
、(2003)、「PCRプライマー」、(Cold Spring Harbor Press社)を含む。
体が引用により本明細書中に組み込まれている。
本開示の態様は、本開示のある抗体の詳細な調製及び本開示の抗体の使用方法を説明し
ている以下の非限定的実施例を参照し、更に規定することができる。材料及び方法の両方
への多くの変更を、本開示の範囲から逸脱しない限りは、実践することができることは、
当業者には明らかであろう。
(1.1. 抗原及び細胞株)
組換えヒトHer1(ECD)/Fcキメラ、ヒトHER2(ECD)/Fcキメラ、ヒトHER3(ECD)/Fcキメラ及
びヒトHer4(ECD)/Fcは全て、R&D Systems社(ミネアポリス、MN)から購入し、且つリンカ
ーペプチドを介して、C-末端6Xヒスチジン-タグに融合した。組換えマウスHER3(ECD)/Fc
キメラは、ウマにおいて作製した。ヒトKPL-4乳癌細胞は、5%ウシ胎仔血清(FBS)を補充
したDMEMにおいて培養した。
非標識且つビオチン化されたHER3(ECD)/Fcを、DyaxのFab 310ヒトFabファージディスプ
レイライブラリー(Dyax社、ケンブリッジ、MA)からのHER3結合体(binder)選択の標的とし
て使用した。パニングの2つのアームを実行した:捕獲パニング及び溶液内パニング。捕
獲パニングに関して、投入ファージを最初に、固定された組換えタンパク質A/Gを介して
イムノチューブ上に捕獲されたポリクローナルヒトIgGと共にインキュベーションし、そ
の後固定された組換えタンパク質A/Gを介してイムノチューブ上に捕獲された標識されな
い標的により選択した。
クエンチされたビオチンを伴うストレプトアビジン-コーティングされた磁気ビーズと共
にインキュベーションさせ、その後ビオチン化された標的により選択し、引き続きストレ
プトアビジン-コーティングされた磁気ビーズと共にインキュベーションし、標的に結合
したファージを捕獲した。TPBS(1×PBS/0.1% Tween-20)による十分な洗浄により結合し
ていないファージを除去した後、結合したファージを、100mM TEA(トリエチルアミン)に
より溶出した。溶液内パニングから溶出されたファージ及びビーズ上に残存するファージ
を引き続き増幅させ、且つ更なる選択ラウンドに供した。各選択アームについて、3回の
選択ラウンドを実行した。
選択の第2及び第3ラウンドから濃縮されたファージを、ヒト及びマウスHER3結合に関し
てファージELISAによりスクリーニングした。96-ウェルハーフエリアプレートを、1×PBS
(pH7.4)中に希釈した異なる抗原の1ウェルにつき50μlの5μg/mlにより、4℃で一晩コー
ティングした。これらのコーティングされたプレートを、TPBS中3%(w/v)無脂肪ミルクに
より、室温で1時間ブロックし、TPBSにより2回洗浄した。次にプレートを、一晩のファー
ジ上清と一緒に、1時間インキュベーションした。TPBSで10回洗浄した後、プレートを、
ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)-コンジュゲートされた抗-M13抗体と一緒に1
時間インキュベーションし、10回洗浄した。プレートを、テトラメチルベンジジン(TMB)
ペルオキシダーゼ基質溶液により呈色させ、この反応を、0.18M H2SO4により停止させ、
プレートを、ELISAプレートリーダー上で450nmで読み取った。
された。これらの同定された結合体はいずれも、HER2又はHer4とは交差反応性を示さなか
った(データは示さず)。
陽性ファージクローン由来の免疫グロブリン可変軽鎖(VL)及び可変重鎖(VH)を、PCRに
より作製し、且つラムダ軽鎖定常領域及びCH1-ヒンジ-CH2-CH3 IgG1領域を含むヒトIgG1
発現ベクターへ挿入した。IgG1抗体を発現するために、ヒト胎児腎293-F細胞を、293fect
in(商標)試薬(Invitrogen社、カールスバッド、CA)を使用し、再編成されたIgG ベクター
により、一過性にトランスフェクトした。馴化培地を、トランスフェクション後10日目に
収穫し、プールし、且つ滅菌濾過した。IgG1を、プロテインAビーズを用いて精製した。
最後に溶出したIgG1を、PBSに対して透析し、且つIgG1濃度を、タンパク質定量アッセイ
により決定した。
編成した。
ヒト乳癌KPL-4細胞を、クローン16抗体(CL16)により標識した。これらの細胞のCL16と
一緒のインキュベーションは、HER3エンドサイトーシスの増加につながり、このことは、
該受容体が細胞表面でHER2と活性シグナル複合体を形成するのを防いだ。
間(インターナリゼーションされた)のいずれかの、成長条件下での該細胞のインキュベー
ションにより、インターナリゼーションを可能にした(図1)。次に全ての細胞を、3.7%パ
ラホルムアルデヒドで固定し、PBSで洗浄し、PBS中の0.5%Triton X-100により透過性亢
進し、1μg/ml Alexa Fluor(登録商標)488ヤギ抗-ヒトIgG(Invitrogen社)により染色し、
その後退色防止(antifade)マウント培地を添加し、且つ蛍光顕微鏡試験した。CL16抗体は
、KPL-4細胞においてインターナリゼーションすることが認められた。ゼロ時点で、KPL-4
細胞は、強い細胞表面染色を示し(図1、0時間、上側パネル)、成長条件下で2.5時間イン
キュベーションした後、この細胞表面染色は減少し、且つインターナリゼーションの指標
である細胞内の点状染色に置き換わった(図1、2.5時間、下側パネル)。
抗体クローン16の抗原結合断片(Fab)をコードしているDNAを、Dall’Acquaらにより先
に説明された改変されたM13-ベースのファージ発現ベクター(Dall’Acquaらの文献、2005
, Methods. 36: 43-60)にクローニングした。この改変されたベクターにおいて、ヒトラ
ムダ(λ)定常領域DNAを、ヒトカッパ(κ)軽鎖の代わりに操作した。Fab断片の発現は、La
cZプロモーターの制御下にあり、且つ該Fab断片の分泌は、Fab断片のVH鎖及びVL鎖のいず
れかのN-末端に融合されたファージP3シグナル配列により可能である。このクローニング
は、Kunkelの文献(Kunkel, T. A.、1985, Proc. Natl. Acad. Sci. USA; 82: 488-492)
、及びWuの文献(Wu, H.、2003, Methods Mol. Biol. 207: 197-212)に記載されたように
、ハイブリダイゼーション変異誘発により実行した。
幅した。ハイブリダイゼーション、それに続くDNA重合反応により、各々、該クローン16
可変軽鎖領域はヒトラムダ定常領域とインフレームで組み込まれ、且つ可変重鎖領域は、
ヒト重鎖定常領域1(CH1)とインフレームでクローニングされた。その後クローン16 Fab断
片を含むファージベクターを、Wu及びAnの文献に記載されたように、大腸菌CJ236株にお
いて成長させ、ウリジン(U)含有一本鎖DNA(ssDNA)を作製する(Wu, H.及びAn, LL.の文献
、2003, Methods Mol. Biol. 207: 213-33)。このウリジン含有ssDNAを鋳型として使用し
、HER3への結合親和性を改善するようにデザインされた変異を導入した。
配列解析は、クローン16(CL16)のVHフレームワークは、VH生殖系列遺伝子3-23と100%
の配列同一性を共有するのに対し、VLフレームワークは、その最も近い生殖系列遺伝子で
ある47*01と6つの位置で異なることを示している。生殖系列遺伝子47*01とは異なるアミ
ノ酸の各々及び全てを変更するための位置指定変異誘発を行った。具体的には、6つの点
変異を、下記のように軽鎖可変領域に導入し:Y2S、E3V、S18R、M21I、H38Q及びS50Y、こ
こで最初の文字は、オリジナルクローン16の1文字アミノ酸コードを表し、数字は、フレ
ームワークの残基番号(Kabatに従う)を表し、且つ2番目の文字は、生殖系列配列の1文字
アミノ酸コードを表す。各々、オリジナルVL CL16及び生殖系列化された(GL)VL CL16に相
当する、図2A及び図2Cの配列を参照されたい。得られた変種は、Fabとして表し、且つそ
れらの組換えHER3タンパク質への結合は、ELISAにより決定した。
合、親クローン16よりも結合を改善したことを示した。対照的に、同じフレームワーク内
のS49Y変異は、結合に対し負の影響を有した。他の点変異は、HER3結合に対し影響を示さ
なかった。6つ全ての非生殖系列アミノ酸が変異された完全に生殖系列化された変異体は
、S50Y点変異と同様の程度に低下された結合を示し、このことはアミノ酸S50が結合に参
加していることを指摘した。S50Y以外の全ての生殖系列点変異を伴うこのクローンの更な
る試験は、親クローン16と比べ、HER3への結合を保持するか及び/又は増強した。この部
分的に生殖系列化されたクローンであるクローン16(GL)(ここでは「GL-P6」とも称される
)を、更なる親和性最適化のための鋳型として使用した。
生殖系列化されたクローンGL-P6の6つ全ての相補性-決定領域(CDR)の各アミノ酸を、ハ
イブリダイゼーション変異誘発法(Kunkelの文献、1985)を使用し、他の20種のアミノ酸へ
個別に変異した。DNAプライマーの2つのセットの一方は8種のアミノ酸をコードしているN
SSコドンを含み、他方は12種の異なるアミノ酸をコードしているNWSコドンを含むが、こ
れらを使用し、各標的化されたCDR位置に変異を導入した。個別の縮重プライマーを、ハ
イブリダイゼーション変異誘発反応において使用した。簡単に述べると、各縮重プライマ
ーをリン酸化し、次にウリジニル化されたGL-16 Fab ssDNAと、10:1の比で使用した。こ
の混合物を、95℃に加熱し、次に1時間かけて55℃まで冷却した。その後、T4リガーゼ及
びT7 DNAポリメラーゼを添加し、この混合物を、37℃で1.5時間インキュベーションした
。VH及びVL CDRに関する合成産物を、各々、プールしたが;しかし、NSS及びNWSライブラ
リーは、個別に維持し、且つ独立してスクリーニングした。典型的には、プールしたライ
ブラリーDNAの1μLを、XL1-Blue細菌叢上のプラーク形成のため、又はFab断片の作製のた
めに、XL1-Blueへ電気穿孔した(Wu及びAnの文献、2003)。
一次スクリーニングは、別所記載のように、96-ウェルプレート(ディープウェル)にお
いて成長され且つ個別の組換えM13クローンにより感染された細菌の培養物上清を使用し
実行されるシングルポイントELISA(SPE)アッセイからなる(Wu及びAnの文献、2003)。簡単
に述べると、この捕獲ELISAは、96-ウェルMaxisorpイムノプレートの個々のウェルの、炭
酸緩衝液(pH8.5)中のヒツジ抗-ヒトFd抗体(Biodesign International社、ME)約50ngによ
る4℃で一晩のコーティングに関与している。翌日、このプレートを、PBS緩衝液中の3%B
SAにより、室温で1時間ブロックした。次にFab上清を、このプレートに添加し、室温で1
時間インキュベーションした。洗浄後、ビオチン化されたHER3タンパク質0.1μgを、この
ウェルに添加し、この混合物を、室温で1.5時間インキュベーションした。これに続けて
、ニュートラビジン-ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)コンジュゲート(Pierce
社、IL)と一緒に室温で約40分間インキュベーションした。HRP活性を、テトラ-メチル-ベ
ンジジン(TMB)基質で検出し、この反応を0.2M H2SO4によりクエンチした。プレートは、4
50nmで読み取った。
を採取し、且つ再成長させ(15mL)(Wu及びAnの文献、2003)、且つELISAにより(先に記載の
ように)2つ組みで再アッセイし、陽性の結果を確認した。GL-P6 Fabのシグナルよりも大
きいシグナルを繰り返し示したクローンを、配列決定した。次にCDR変化を有する各クロ
ーンのFabタンパク質濃度を、定量的Fab ELISAにより決定し、ここでは既知の濃度のFab
を参照として使用した。Fab濃度は、ELISAシグナルを、参照Fabにより発生したシグナル
と比較することにより決定した。変異体Fab及び親GL-P6 Fabの相対結合親和性を決定する
ために、この結合アッセイを、全ての陽性変種について、規準化されたFab濃度でもう一
度繰り返した。
ローン15D12と称される2つのVH変種は、親の生殖系列化クローンGL-P6に優るHER3結合の
およそ5倍の改善を発揮したことを示した。VL変異誘発作戦において、改善された結合を
発揮するCDR1中の、例えばクローン4H6(S24R点変異を含む)、クローン6E3(S27L点変異を
含む)、又はCDR3中の、例えばクローン5H6(S94G点変異を含む)、クローン8A3(S96aI点変
異を含む)、クローン4C4(S96aR点変異を含む)、クローン2B11(S96aP点変異を含む)及びク
ローン2D1(V97A変異を含む)のいずれかのいくつかの単一変異が、同定された。
はプロリン(P)のいずれかによる置換は、各々、3.5倍、8.6倍及び32倍の結合の改善を生
じた。
HER3への結合に関して有益であることが決定されたVH及びVLの点変異は、更に組合せて
、追加の結合相乗性を獲得した。これらのコンビナトリアル変異体は、Fabとして発現し
、且つHER3結合ELISAを用いてスクリーニングした。Fab断片のVH鎖内のY50I又はY50V点変
異のいずれか一方をVL変異と組合せると、恩恵はなかったが、HER3への結合を低下したの
に対し、いくつかのVL変異の組合せは更に結合を改善した。VL変異のこれらの組合せは、
クローン1A4(L96P、S97P及びV100A点変異を含む)、クローン2C2(S26L、L96P、S97P及びV1
00A点変異を含む)、クローン2F10(S97P及びV100A変異を含む)並びにクローン3E1(S23R、L
96P、S97P及びV100A点変異を含む)における組合せを含む。
改善された結合を発揮する単一変異体及び組合せ変異体変種を、更なる特徴決定のため
に、IgGフォーマットに変換した。各変種の可変領域を、HEK 293F細胞を使用する発現の
ためのIgG哺乳動物の発現ベクターへのクローニングを促進するために、制限部位をコー
ドしたプライマーを用いるPCRにより増幅した。分泌された可溶性ヒトIgG1タンパク質を
、馴化培地から、1mL HiTrapプロテインAカラム(GE Healthcare社、NJ)上で製造業者の指
示に従い、直接精製した。精製されたヒトIgG1試料(ドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリ
ルアミドゲル電気泳動により典型的には均質性>95%と判定)を、PBSに対して透析し、急
速冷凍し、且つ-70℃で貯蔵した。
合シグナルにより決定された改善された結合を示し、2C2は、親クローン16及び他の組合
せ変異体変種に優る最も有意な結合の改善を示した。これらのIgGのマウス及びカニクイ
ザルのHER3への結合も、ELISAにより試験した。これらの結果は、組合せ変異体のこれら
のパラロガスHER3種への改善された結合を示した。
ントを、各々、図2A及び図2Bに示した。表4は、各クローンの配列番号を提供している。
この組合せクローンの各々の軽鎖可変領域のアラインメントは、図2Cに提供している。
表4
抗-HER3 IgGのヒトHER3タンパク質の細胞外ドメインへの結合に関する動態速度(kon、k
off)及び平衡解離定数(KD)を、BIAcore(商標)表面プラズモン共鳴技術を用い、センサー
チップ表面上に捕獲されたIgGへのヒトHER3細胞外ドメイン(hu HER3(ECD))の結合を測定
することにより、決定した。次に個々の結合(kon)及び解離(koff)の速度定数を、得られ
た結合曲線から、販売業者を通じて入手可能なBIAevaluationソフトウェアを用いて、計
算した。データは、1:1結合モデルにフィットし、これは物質移行が制限した結合(mass
transport limited binding)を補正する項目を含み、これは検出されるべきであった。次
にこれらの速度定数から、IgGのヒトHER3細胞外ドメインタンパク質との相互作用に関す
る見かけの解離結合定数(KD)を、koff/konの商から計算した。
に関する結合及び解離速度定数は、各々、5.29×105 /Ms及び73.0×10-4 /sであり、これ
はみかけのKD 14nMを生じた。比較において、親和性-改善されたIgG変種のヒトHER3細胞
外ドメインへの結合に関する結合速度定数は、親IgGについて測定された定数に類似して
おり、3.41×105 〜4.32×105 /Msの範囲であった。同じくこれらの同じプロットを用い
、クローン16変種に関する対応する解離速度定数を決定し、これは1.60×10-4 〜6.21×1
0-4 /sの範囲であった。クローン16変種に関するみかけのKDを、先に記載のように計算し
、0.429nM(2C2クローン変種)〜1.44nM(P2B11クローン変種)の範囲であった。kon及びkoff
に関する個々の誤差は、小さく(≦計算されたパラメータの〜2%)、動態データへ全般的
にフィットしたことは、1:1相互作用モデルの使用が適切であることを示した。同じく評
価は、この結合が物質移行に制限されることを示さなかった。
組合せモノクローナルクローンの生物物理的特質をまとめている。
は、最も親和性-改善されたリードであり、KD 0.4nMを伴い、これは親クローン16モノク
ローナル抗体よりも32倍の改善を表している。このKDの改善は、ほとんど減少した解離速
度(off-rate)の結果であった。発現レベル及び生成収量も評価した。全てのモノクローナ
ル抗体クローンは、5日間の一過性トランスフェクション試験において、良く発現され、2
C2モノクローナル抗体は、この試験における最高レベルの発現を示した。全ての親和性最
適化されたリードは、異なる程度の親和性改善を示したが、1A4抗体は、比較的低い発現
効率のために脱落した。
表5:親CL16(クローン16)抗体と比較した様々な親和性-最適化されたリードの生物物理
特性のまとめ
。
イ及び長期クローン原性アッセイ)、並びにT-47D細胞(T-47分化された上皮細胞亜型)にお
けるHRG-誘導したpHER3の抑止(abrogation)を含む、リガンド-非依存性モデル(ヒト乳癌
細胞株BT-474、ATCC番号HTB-20(商標))に加え、リガンド-依存性モデル(ヒト乳癌細胞株T
-47D、ATCC番号HTB-133)(両細胞株はATCCから入手した)にわたるクローン16に優る様々な
親和性最適化されたリードの機能改善を評価するために、様々な細胞-ベースのアッセイ
を行った。
密度1,000個細胞/ウェルで播種した。一晩接着した後、細胞を、アイソタイプ対照IgG又
は指定されたHER3モノクローナル抗体で、濃度投与量曲線に従い処理した。適切な投与量
のモノクローナル抗体を伴う培地は、3週間にわたり、週1回新たにした。21日目の最後に
、細胞を、Cell-titer-Glo(CTG)アッセイのために処理し、様々なモノクローナル抗体に
よるコロニー形成の阻害を評価した(ベースラインとして対照IgGを使用する)。IC50値を
、Prizm解析から誘導した。
セクション2.2参照)。BT-474のpAKTアッセイは、本質的に図10に使用したように行った(
以下の実施例2のセクション2.6.1参照)。T-47DのHRG誘導性pHER3アッセイは、本質的に図
3に使用したように行い(以下の実施例2のセクション2.1参照)、及びT-47DのFACS結合及び
インターナリゼーションアッセイは、図16Aに使用したものと同じプロトコールを使用し
行った(以下の実施例3のセクション3.3.1参照)。
性改善されたリードは、これらのアッセイのほとんどに渡り一貫して2〜3倍増加した効力
を示した。親クローン16及び/又は代表的な最適化されたクローン、例えばクローン2C2
抗体(簡略に2C2と、又は2C2モノクローナル抗体と称される)は、以下に説明する数多くの
インビトロアッセイ及びインビボアッセイにおいて更に特徴決定した。
入した。具体的には、KabatのEUインデックスに従い番号付けたM252Y、S254T、T256Eであ
る。この半減期-最適化された分子は、2C2-YTEと称される。他の変異を、これら3つの代
わりに、又は組合せて、導入することができることは理解されるであろう(例えば、米国
特許第7,083,784号;国際公開公報WO2009058492;Dall’Acquaらの文献、J. Immunol. 16
9: 5171-80, 2002;Zalevskyらの文献、Nature Biotech. 28: 157-9, 2010を参照された
い)。2C2-YTEは、2C2と同程度、BT-474細胞増殖及びコロニー成長を阻害することが示さ
れた(データは示さず)。
チンHCL、205mMショ糖、0.02%ポリソルベート80のpH6.0中に製剤することにより得た。
表6:親CL16モノクローナル抗体と比較した親和性最適化されたリードの生物学的特性
のまとめ
(2.1. MCF-7細胞におけるHRG-誘導したHER3リン酸化(pHER3)アッセイ)
MCF-7(ATCC番号HTB-22(商標))は、HER3発現を伴うが、内因性HRG発現を伴わない、ヒト
乳癌細胞株である。MCF-7細胞を、96-ウェルプレート中に密度30,000個細胞/ウェルで播
種し、一晩接着させた。次にこれらの細胞を、24時間血清-飢餓とし、その後処理した。
血清-飢餓後、培地を除去し、被験抗体及び対照抗体を含有する無血清培地と置き換え、
該細胞を37℃で1時間インキュベーションした。この実験及び以下に提供した追加の実験
で使用した被験抗体は、クローン16、2C2、2C2-YTEなどの本文に提供した抗-HER3抗体;
並びに、当該技術分野において公知の抗-HER3抗体、特に各々、本文においてはAMG及びMM
と称される、U1-59(国際公開公報WO 2007077028)及びAb#6(特許公開WO 2008/100624)を含
んだ。それと同時に、ヘレグリン(HRGβ1、R&D Systems社、ミネアポリス、MN)ストック
を、無血清成長培地において4×(80ng/ml)で調製した。1時間のインキュベーション期間
の終了時に、HRGβ1を、ウェルにスパイクし(最終濃度20ng/ml)、且つ37℃で20分間イン
キュベーションした。処理の終了時に、培地を除去し、且つ細胞をPBSで洗浄した。細胞
を、プロテアーゼインヒビター及びホスファターゼインヒビター(Calbiochem社、ラホヤ
、CA)を含むTriton X溶解緩衝液(Boston Bioproducts社、アッシュランド、MA)80μl中に
溶解し、分析まで-20℃で貯蔵した。次にpHER3 ELISAを、製造業者のプロトコール(R&D S
ystems社、DYC1769)に従い、半量96-ウェルCorning(登録商標)Costar(登録商標)3690 ELI
SAプレート(Corning Life Science社、ローエル、MA)及び1ウェル当たり細胞溶解液50μl
を用いて実行した。
より刺激した。抗-HER3 2C2 mAbによる前処理は、pHER3 ELISAアッセイにおけるpHER3シ
グナルの投与量-依存性の抑制を引き起こした(図3、上側)。公表された抗-HER3モノクロ
ーナル抗体MM及びAMGも、このアッセイにおいて活性があったが、しかし2C2は、IC50測定
により決定されたようにおよそ5倍より強力であった(図3、下側)。同様の結果が、2C2-YT
Eについて認められた(データは示さず)。
MDA-MB-175(ATCC番号HTB-25(商標))は、成長及び生存に関してHRG-HER3シグナル伝達経
路に左右される、樹立されたHRG-発現する(γ-アイソフォーム)乳癌細胞株である。細胞
を、96-ウェル白色壁のプレート中に2,000個細胞/ウェルの密度で播種し、一晩接着させ
た。翌日、培地を除去し、被験抗体及び対照抗体を含有する新鮮な完全成長培地と100μl
/ウェルで置き換えた。次にプレートを、合計6日間インキュベーションした。相対細胞数
を計算するために、CellTiter-Glo(商標)(Promega社、マジソン、WI)を、製造業者のプロ
トコールに従い使用した。CellTiter-Glo(商標)添加後、プレートを、室温で10分間イン
キュベーションし、且つルミネセンスをマイクロプレートリーダーを用いて測定した。
示したように、3種の抗体全て、様々な程度の抗-増殖作用を達成し、2C2は、より高い効
力(IC50=0.14μg/ml)(図4、上側)、及びより高い成長抑制(72%)(図4、下側)を示した。
HMCB(ATCC番号CRL-9607(商標))は、HRG-誘導したHER2-HER3ヘテロ二量体化により駆動
された、樹立されたHRG-発現する(1β-アイソフォーム)メラノーマモデルである。HMCB細
胞を、96ウェルプレート(Costar(登録商標))内の、10%熱-失活したFBSを含有する完全培
地100μl中に、750個/ウェルの密度で播種した。翌日、抗体処理物を、完全培地中で調製
した。全ての抗-HER3モノクローナル抗体及び対照IgGの開始時の濃度は、10μg/mlであり
、且つ連続希釈物を、完全培地中に調製した。播種培地を除去し、且つ処理物を、100μl
/ウェルで3つ組みで添加した。
のCellTiter-Glo(商標)試薬を添加した。プレートを、プレート振盪機上で、室温で10分
間揺動させ、完全な細胞溶解を確実にした。ルミネセンスを、2104 EnVision(登録商標)
マルチラベルリーダー(PerkinElmer社、ウォルサム、MA)を用いて測定した。
された抗-HER3モノクローナル抗体AMG及びMMよりも8〜30倍より強力に、HMCBメラノーマ
細胞株の細胞成長を阻害した。
HER3リードの、HRG-オートクリンHMCBモデル(ATCC番号CRL-9607(商標))及びA549モデル
(ATCC番号CCL-185)におけるHER3シグナル伝達経路を抑制する能力を、評価した。HMCB細
胞は、24-ウェルプレート内、及び10%熱-失活させたFBSを含有する培地中に、105個/ウ
ェルで播種し、抗体処理前に、集密度80%以上に到達させた。播種培地を除去し、これら
の細胞を、抗体と一緒のインキュベーションに供した。抗-HER3モノクローナル抗体及び
対照IgGを、完全培地において調製した。全ての抗-HER3抗体について開始時の濃度は、10
μg/mlであり、且つ連続希釈を行った。対照IgGは、濃度10μg/mlでのみ使用した。播種
培地の除去後、処理を適用した。5%CO2中、37℃で6時間(HMCB細胞)又は72時間(A549細胞
)インキュベーションした後、細胞を、氷冷したPBSで1回洗浄し、次にLaemmli還元緩衝液
(Boston BioProducts社、アッシュランド、MA)の添加により、溶解した。
標)Novex(登録商標)ビス-トリスゲル(Invitrogen社、カールスバッド、CA)上に負荷し、
且つタンパク質を、PVDFメンブレン(Invitrogen社、カールスバッド、CA)に移した。メン
ブレンを、TBS(pH7.4)中の5%無脂肪ドライミルク及び0.1% Tween 20(Sigma社、セント
ルイス、MO)によりブロックし、HER3に対する抗体(sc-285抗体、Cell Signaling Technol
ogy社、ビバリー、MA)、pHER3に対する抗体(4791抗体、Cell Signaling Technology社、
ビバリー、MA)、AKTに対する抗体(9272抗体、Cell Signaling Technology社、ビバリー、
MA)、pAKTに対する抗体(4060抗体、Cell Signaling Technology社、ビバリー、MA)、ニュ
ーレグリン-1/HRG(NRG1/HRG)抗体(sc-348、サンタクルズ)及びGAPDH抗体(G8795抗体、Sig
ma社、セントルイス、MO)と一緒に、4℃で一晩インキュベーションした。
ダーゼ-コンジュゲートされたストレプトアビジン二次抗体(GE Healthcare社)中で1時間
インキュベーションした。洗浄後、タンパク質バンドを、SuperSignal(登録商標)Westフ
ェムト化学発光基質及びSuperSignal(登録商標)Westピコ化学発光基質(Pierce/Thermo Sc
ientific社、ロックフォード、IL)を用いることにより、X-線フィルムで検出した。
シグナル伝達経路を無効にした。2C2は、投与量-依存性の様式でpHER3及びその下流のエ
フェクター分子pAKTを効率的に抑制し、且つHMCB細胞においては、公表された抗-HER3モ
ノクローナル抗体AMG又はMMのいずれよりもより強力であった。2C2抗体はまた、A549細胞
において、pHER3及びその下流のエフェクター分子pAKTも抑制した。
(2.5.1. pHER3細胞アッセイ)
細胞(HCC827 NSCLC細胞、ゲフィチニブ-抵抗性HCC827 NSCLC細胞、MKN45胃癌細胞、Kat
o III胃癌細胞、又はBT-474 HER2-増幅された乳癌細胞)を、96-ウェルプレート内に、密
度30,000個細胞/ウェルで播種し、一晩接着させた。次に、細胞を、被験抗体又は対照抗
体により、指定された投与量-曲線で、37℃で4時間処理した。処理の終了時に、培地を除
去し、且つ細胞をPBSで洗浄した。細胞を、プロテアーゼインヒビター及びホスファター
ゼインヒビター(Calbiochem社、ラホヤ、CA)を含むTriton X溶解緩衝液(Boston BioProdu
cts社、アッシュランド、MA)80μl中に溶解し、分析時まで-20℃で貯蔵した。次にpHER3
ELISAを、製造業者のプロトコール(R&D Systems社、DYC1769、ミネアポリス、MN)に従い
、半量96-ウェルELISAプレート(Costar 3690)及び細胞溶解液50μl/ウェルを使用し、実
行した。
HCC827細胞(ATCC CRL-2868(商標))は、変異体EGFR-駆動された非小細胞肺癌(NSCLC)モ
デルであるが、これを、被験抗体又は対照抗体で、実施例のセクション2.5.1において先
に記載のように処理した(前記参照)。図8Aに示したように、2C2抗体は、pHER3シグナルを
部分的に阻害することができるのに対し、公表された抗-HER3モノクローナル抗体AMG及び
MMは、2C2よりも効果が低く、且つ強度は10分の1未満であった。
HCC827は、変異体-EGFRを収容し且つこれにより駆動されるが、このことは、HCC827を
、ゲフィチニブなどのEGFRチロシンキナーゼ阻害薬(TKI)に対し高度に感受性としている
。親HCC827細胞を、ゲフィチニブの一定の毒性量に曝露し、且つ抵抗性クローンを単離し
、これはTKI療法を回避する癌の公知の機序である増幅されたcMETを収容することが示さ
れた。TKI-抵抗性HCC827細胞を、実施例のセクション2.5.1において先に記載のように、
抗-HER3モノクローナル抗体により処理した(上記参照)。図8Bに示されたように、抗-HER3
モノクローナル抗体2C2は、ゲフィチニブに対し抵抗性となった変異体HCC827において、H
ER3活性を抑制した。親細胞株について認められた結果同様に、2C2は、TKI-抵抗性HCC827
細胞株において、AMG及びMM抗体よりもより高い効力を示した(約10倍より良い効力)。
cMETはHer-ファミリーのメンバーではないにもかかわらず、HER3と二量体を形成するこ
とが可能であることが示されている。cMET-増幅された胃癌モデル細胞株であるMKN45を使
用し、抗-HER3抗体は、cMET-駆動されたHER3活性化に拮抗することができるかどうかを評
価した。MKN45細胞を、実施例のセクション2.5.1において先に記載のように、抗-HER3 モ
ノクローナル抗体で処理した。図8Cに示されたように、3種の抗-HER3モノクローナル抗体
(2C2、AMG及びMM)は全て、MKN45細胞におけるpHER3を抑制することができたが、2C2は、A
MG及びMM抗体よりもより高い効力を示した(およそ5〜7倍より良い効力)。
EGFR、HER2及びcMETとのカップリングに加え、HER3は、FGFR2と二量体化し、その悪性
転換能を促進する。Kato III(ATCC番号HTB-103(商標))細胞株は、FGFR2-増幅された胃癌
モデルであるが、これを使用し、抗-HER3抗体は、FGFR2-駆動されたHER3活性化を抑制す
ることができるかどうかを評価した。Kato III細胞を、実施例のセクション2.5.1におい
て先に記載のように、抗-HER3モノクローナル抗体で処理した(上記参照)。このモデルに
おいて、3種の抗-HER3モノクローナル抗体(2C2、AMG、及びMM)は全て、pHER3抑制の類似
した最大の程度(〜60%)を達成したが、IC50として測定した場合、2C2は、AMG及びMM抗体
よりも、各々、15〜20倍より強力であった(図8D)。
HER2-HER3二量体は、癌における最も悪性転換する発癌実体のひとつであることが示さ
れている。従って本発明者らは、このリガンドを発現せず、且つリガンド-非依存性HER2-
HER3二量体化により駆動されると予想される良く樹立されたHER2-増幅された乳癌モデル
であるBT-474細胞株(ATCC番号HTB-20(商標))において、抗-HER3モノクローナル抗体を調
べた。実施例のセクション2.5.1に先に記載のように、BT-474細胞を、3種の抗-HER3モノ
クローナル抗体及び同じく2C2-YTEにより処理した。HCC827細胞、ゲフィチニブ-抵抗性HC
C827細胞、MKN45細胞、及びKato III細胞などの、試験した3種全ての抗-HER3モノクロー
ナル抗体が活性があったモデルとは異なり、2C2(親2C2及び2C2-YTE変異体の両方)は、試
験した抗-HER3モノクローナル抗体の中でpHER3を抑制する実質的活性を示す唯一のもので
あった(図8E)。これらの結果は、2C2(親2C2型及び2C2-YTE変異体の両方)は、リガンド-非
依存性モデルにおいて機能したことを指摘し、且つリガンド-依存性及びリガンド-非依存
性の両方の状況における2C2の二重機能性を明らかにした。
(2.6.1. pAKT細胞アッセイ)
細胞(MKN45胃癌細胞、Kato III胃癌細胞、又はBT-474 HER2-増幅された乳癌細胞)を、9
6-ウェルプレート内に、密度30,000個細胞/ウェルで播種し、且つ一晩接着させた。次に
細胞を、指定された投与量-曲線で、被験抗体又は対照抗体により、37℃で4時間処理した
。処理の終了時に、培地を除去し、細胞をPBSで洗浄した。細胞を、プロテアーゼインヒ
ビター及びホスファターゼインヒビター(Calbiochem社、ラホヤ、CA)を含む、Triton X溶
解緩衝液(Boston BioProducts社、アッシュランド、MA)80μl中に溶解し、分析時まで-20
℃で貯蔵した。AKT/pAKTを、Phospho (Ser473)/Total AKT全細胞溶解キット(カタログ番
号K15100D、Meso-Scale Discovery社、ゲティスバーグ、MD)に備えられた製造業者のプロ
トコールを基に分析し、pAKT含量を決定した。
2C2は、pHER3に加え、HER3下流のシグナル伝達経路を抑制することができるかどうかを
確認するために、本発明者らは加えて、増幅されたcMET-駆動された胃癌モデルMKN45にお
いて、AKTリン酸化を抑制するその能力を評価した。MKN45細胞を、実施例のセクション2.
6.1に先に記載のように、抗-HER3モノクローナル抗体で処理した。このモデルシステムに
おいて、2C2モノクローナル抗体は、AMG及びMM抗-HER3モノクローナル抗体よりもより高
い効力で(およそ5〜7倍より高い)、部分的pAKT阻害を達成した(図9A)。このことは、2C2
は、HER3活性を阻害するのみではなく、pAKTなどのHER3の下流のエフェクター分子も抑制
することを明らかにした。
この活性はHER3のエフェクターであるpAKTを抑制するより良い効力に翻訳されるかどう
かを調べるために、本発明者らは、実施例のセクション2.6.1に先に記載のように、この
細胞株、Meso-Scale Discoveryアッセイを用い、様々な抗-HER3モノクローナル抗体によ
るpAKT阻害を分析した。図9Bに示したように、pHER3データと一致して、2C2は、増幅され
たFGFR2-駆動された胃癌モデルであるKato III細胞において、pAKTを抑制した。再度2C2
は、pAKT阻害において、AMG及びMM抗体よりも、より高い効力(IC50により測定した場合)
及び最大反応を達成した。
HER2-HER3二量体は、癌における最も悪性転換する発癌実体のひとつであることが示さ
れている。従って本発明者らは、BT-474細胞株において、抗-HER3モノクローナル抗体の
活性を調べた。BT-474細胞は、前掲の実施例のセクション2.6.1に先に記載のように、抗-
HER3モノクローナル抗体で処理し、同じく2C2のYTE変異体型でも処理した。MKN45細胞及
びKatoIII細胞などの、試験した3種全ての抗-HER3モノクローナル抗体(2C2、AMG及びMM)
が活性があったモデルとは異なり、2C2(親2C2及び2C2-YTE変異体の両方)は、試験した抗-
HER3モノクローナル抗体の中でpAKTを抑制する実質的活性を示す唯一のものであった(図9
C)。これらの結果は、2C2(親2C2型及び2C2-YTE変異体の両方)は、リガンド-非依存性モデ
ルにおいて機能したことを指摘し、且つリガンド-依存性及びリガンド-非依存性の両方の
状況における2C2(親2C2型及び2C2-YTE変異体の両方)の二重機能性を明らかにした。
トラスツズマブに高度に反応性ではないHER2-増幅された乳癌細胞における2C2-YTEの活
性を特徴付けるために、本発明者らは、PI3K経路の固有の活性化に起因したトラスツズマ
ブに対するその抵抗性に寄与し得る、PIK3CAに活性化変異(E545K)を収容する乳癌モデル
である、MDA-MB-361(ATCC番号HTB-27)に焦点を当てた(Junttilaらの文献、2009, Cancer
Cell, 15:429-40)。本発明者らは、このモデルにおける2C2のHER3シグナル伝達及び細胞
増殖に対する作用を決定した。
に、密度150,000個細胞/ウェルで、10%熱-失活したウシ胎仔血清(FBS)(Invitrogen社)を
補充したRPMI(Invitrogen社)中に播種した。翌日、播種培地を除去し、細胞を、抗-HER3
抗体2C2又は対照抗体と伴に、完全培地における最終濃度30μg/mLでのインキュベーショ
ンに供した。5%CO2中、37℃で6時間インキュベーションした後、細胞を、氷冷したPBSで
1回洗浄し、次にLaemmli還元緩衝液(Boston BioProducts社、アッシュランド、MA)の添加
により、溶解した。短時間のインキュベーションの後、細胞溶解液を収集し、等量を、Bi
s NuPAGE(登録商標)Novex(登録商標)ビス-トリスゲル(Invitrogen社、カールスバッド、C
A)上に負荷し、且つタンパク質を、PVDFメンブレン(Invitrogen社、カールスバッド、CA)
に移した。メンブレンを、TBS(pH7.4)中の5%無脂肪ドライミルク及び0.1% Tween 20(Si
gma社、セントルイス、MO)によりブロックし、HER3に対する抗体(sc-285抗体、Cell Sign
aling Technology社、ビバリー、MA)及びpHER3に対する抗体(4791抗体、Cell Signaling
Technology社、ビバリー、MA)と、4℃で一晩インキュベーションした。メンブレンを、TB
S中の0.1% Tween 20で洗浄し、次にホースラディッシュペルオキシダーゼ-複合されたス
トレプトアビジン二次抗体(GE Healthcare社)中で1時間インキュベーションした。洗浄後
、タンパク質バンドを、SuperSignal(登録商標)Westフェムト化学発光基質及びSuperSign
al(登録商標)Westピコ化学発光基質(Pierce/Thermo Scientific社、ロックフォード、IL)
を用いることにより、X-線フィルムで検出した。
0μL中に、密度2,000個細胞で蒔き;平底のCostar白色ポリスチレン組織培養処理した96-
ウェルプレート(Corning社)を使用した。翌日、播種培地を除去し、抗体を完全培地に最
終容積100μL/ウェルで添加した。次にプレートを、5%CO2中、37℃で6日間又は14日間イ
ンキュベーションした。14日目のアッセイに関しては、新鮮な抗体を、7日目に適用した
。各時点の最後に、等量のCellTiter-GloR試薬(Promega社)を、各ウェルに添加した。プ
レートを、プレート振盪機において室温で10分間揺動し、完全な細胞溶解を確実にした。
ルミネセンスは、EnVision 2104マルチラベルリーダー(PerkinElmer社)を用いて測定した
。
このことは、2C2-YTEは、HER2-増幅を伴うトラスツズマブ-感受性癌において活性がある
のみではなく、PIK3CAに対する変異のためにトラスツズマブに対する感受性が低下してい
るHER2-増幅された癌においても活性があることを示唆している。
追加の新規HRG-依存性癌を同定するために、数倍の多発性の(times multiple)肺扁平上
皮癌(SCC)細胞株を、HER3シグナル伝達活性及びHRG発現についてスクリーニングした。HA
RA-B細胞株(JCRB番号JCRB1080.1)及びKNS-62細胞株(JCRB番号IFO50358)は、HER3、HRGに
加えpHER3を有意なレベルで発現した(データは示さず)。従って本発明者らは、HARA-B細
胞株及びKNS-62細胞株における、2C2の活性を調べた。これらの細胞を、前掲の実施例の
セクション2.4に本質的に先に記載のように、抗-HER3モノクローナル抗体により処理し、
2C2は、HARA-B細胞株(図11)及びKNS-62細胞株(データは示さず)において、pHER3レベルを
低下することができた。以下に示すように(実施例、セクション5.4)、2C2-YTEは、ヒト扁
平HARA-B NSCLC異種移植片モデルにおいて投与量-依存性の抗腫瘍効率を明らかにした。
従って、これらの判定基準(すなわち、HER3、HRGに加えpHER3の発現)は、例えば、本文に
記載の2C2、AMG、MM及び他の当該技術分野において公知のものを含む、抗-HER3抗体に対
し反応性の追加の癌型を同定するための有用なスクリーニングツールであることができる
(例えば、国際公開公報WO2011/136911、WO2012/019024、WO2010/022814参照)。
HER3リガンドヘレグリン(HRG)の存在下において、HER3は、EGFR又はHER2とヘテロ二量
体化し、これはHER3のリン酸化並びにAKTとしても公知のホスホイノシチド3キナーゼ(PI3
K)及びプロテインキナーゼB(PKB)を介した発癌シグナルの伝達へ繋がる。CRCモデルの収
集は、EGFR又はHER2のどの受容体チロシンキナーゼが、HER3介したシグナル伝達の主要な
駆動者であるかを決定するために、特徴付けられる。具体的には、6つの異なるCRC腫瘍細
胞株SW620(ATCC番号CCL-227)、SW480(ATCC番号CCL-228)、Colo205(ATCC番号CCL-222)、LO
VO(ATCC番号CCL-229)、HCT15(ATCC番号CCL-225)、及びCaco-2(ATCC番号HTB-37)を、HER2
又はEGFRのアンタゴニスト単独で、又はHER3アンタゴニスト2C2との組合せにより処理し
た。簡単に述べると、細胞を、密度1.5×105個細胞/ウェルで、24-ウェルプレートへ蒔い
た。翌日、2つの同一の細胞のセットを、10μg/mLの2C2抗-HER3抗体、R347対照IgG抗体、
抗-HER2抗体2C4(例えば、特許公報WO2001/00245)、抗-EGFR抗体セツキシマブ、又は5μM
のEGFRチロシンキナーゼ阻害薬ゲフィチニブにより処理した。5〜6時間37℃でインキュベ
ーションした後、HRGを、50ng/mLでの1つの細胞セットに、37℃で15分間添加した。次に
全ての細胞を、冷PBSで洗浄し、2×SDS(ドデシル硫酸ナトリウム)試料緩衝液(Invitrogen
社)60μLの添加により溶解した。溶解液を、1.5mLチューブに移し、且つ5分間煮沸し、引
き続き氷上で2分間急冷した。等量(20μL)のタンパク質試料を、NuPAGE Novexビス-トリ
スゲル(Invitrogen社)中に溶解し、その後フッ化ポリビニリデン(PVDF)メンブレン(Invit
rogen社)に移した。メンブレンを、0.1%Tween 20(Sigma社)を含有するトリス-緩衝食塩
水(KPL)中で洗浄し、且つHER3(Santa Cruz Biotechnology社)、pHER3-Tyr1289(Cell Sign
aling Technology社)、リン酸化AKT(プロテインキナーゼB(pAKT))(Cell Signaling Techn
ology社)、リン酸化ERK(マイトジェン-活性化プロテインキナーゼ/細胞外シグナル-調節
されたキナーゼ(pERK))(Cell Signaling Technology社)、及びグリセルアルデヒド3-リン
酸デヒドロゲナーゼ(GAPDH)(Sigma社)に対する抗体と一緒に4℃で一晩インキュベーショ
ンした。メンブレンを、0.1%Tween 20(Sigma社)を含有するトリス-緩衝食塩水(KPL)中で
洗浄し、次にホースラディッシュペルオキシダーゼ-コンジュゲートされた二次抗体(GE H
ealthCare社)の中で1時間インキュベーションした。洗浄後、タンパク質バンドを、Super
Signal West Pico化学発光基質(Pierce/Thermo Scientific社)を用いることにより、X-線
フィルム上で検出した。
胞において、HER3、pHER3及びpAKTのレベルを低下したのに対し、セツキシマブ及びゲフ
ィチニブ処理などのEGFRアンタゴニストは、これらのシグナル伝達分子に対し作用を有さ
なかった。これらのデータは、HER2は、試験した全ての癌モデルにおいてHRG-誘導したHE
R3シグナル伝達の主要な駆動者であることを明らかにしている。
(3.1. HER3へのリガンド-結合を部分的にブロックするクローン16)
抗-HER3モノクローナル抗体のリガンド-誘導したHER3活性をブロックする有効性は、リ
ガンド-結合を直接ブロックするそれらの能力に起因し得る。このシナリオを調べるため
に、本発明者らは、プレートを、ヘレグリン(HRG)によりコーティングし、且つこれに標
識された組換えHER3タンパク質を結合することにより、インビトロHRG-HER3結合アッセイ
を確立した。
マイクロプレートウェルを、ヘレグリン(HRGβ1、カタログ番号377-HB、R&D Systems社
、ミネアポリス、MN)10ng/mlにより、4℃で一晩コーティングした。翌日、プレートを、P
BST(PBS+0.05%Tween 20)により4回洗浄し、且つPBS+1μg/ml BSA中で室温で1時間ブロ
ックした。ブロック時に、被験抗体(クローン16、AMG、MM及び陽性対照抗-HER3リガンド
ブロッキングモノクローナル抗体)の連続希釈物を、PBSTB(PBS+0.05% Tween 20+0.1%
BSA)中の個別のプレート内に調製し、且つ組換えHER3(カタログ番号348-RB、R&D System
s社、ミネアポリス、MN)5μg/mlと室温で30分間一緒にした。次にELISAプレートを、PBST
で4×洗浄し、その後抗体-HER3混合物を添加した。プレートを、室温で1時間インキュベ
ーションし、引き続きPBSTで4回洗浄した。抗-His HRP(カタログ番号34460、Qiagen社、
バレンシア、CA)を、室温で1時間添加した。プレートを、PBSTにより4回洗浄し、引き続
きTMBにより検出した。プレートを、マイクロプレートリーダーを用い、450nmで読み取っ
た。代表的結果を、図13に示している。
いくつかのモノクローナル抗体(クローン16、AMG、MM及び陽性対照抗-HER3リガンドブ
ロッキングモノクローナル抗体)のHRGのHER3への結合を妨害する能力を試験した。陽性対
照HER3リガンド-ブロッキングモノクローナル抗体は、HER3のHRGへの結合を効果的かつ完
全に抑制した。対照的に、クローン16(2C2の親リード、上記実施例のセクション1.6「親
和性最適化」参照)は、この結合の破壊には部分的にのみ効果があった(最大阻害約30%)
。AMG及びMMモノクローナル抗体は、同様の弱い部分的ブロック作用を示した(図13)。こ
れらの知見は、クローン16は、恐らく直接リガンド-ブロッキングモノクローナル抗体と
して機能する可能性が低いことを示した。
そのキナーゼ-欠損の性質のために、HER3モノマーは、活性がなく、且つこれは活性が
あるためには他のRTKとヘテロ二量体を形成することが必要である。HER2:HER3二量体は
、リガンド-依存性及び非依存性の両方の状況において、最も発癌性のシグナル伝達種で
あることが示されている(Junttilaらの文献、Cancer Cell, 15:429-40, 2009)。2C2によ
るHER2-HER3二量体化の破壊は、HRG-誘導したHER3-HER2二量体形成を示すリガンド-依存
性乳癌モデルであるT-47D細胞において、及びリガンド-非依存性BT-474細胞において、HR
G-誘導したHER2-HER3二量体形成アッセイを用いて評価した。このアッセイは、HER3-HER2
免疫共沈降を基にした。
T-47D細胞(ATCCカタログ番号HTB-133(商標))は、6ウェルプレートに1×106個/ウェルで
、一晩蒔いた。翌朝、細胞を、2C2、CL16、AMG及びMMモノクローナル抗体により、完全血
清中濃度5μg/mlで、37℃で2時間処理した。対照は、抗体処理を含まないか、又は対照R3
47 IgG1による処理であった。この処理に、50ng/mlのHRGによる、37℃で10分間の処理が
続いた(HRGで処理しない対照を含む)。細胞を、冷PBSで3回洗浄し、その後、プロテアー
ゼインヒビター及びホスファターゼインヒビター(Sigma社、セントルイス、MO)を含有す
る、細胞溶解緩衝液500μlを添加した。細胞を、少なくとも30分間氷上で溶解した。溶解
液を、細胞スクレーパーにより収集した。抗-HER3 mAb(カタログ番号MAB3481、R&D Syste
ms社、ミネアポリス、MN)1μgにコンジュゲートされたプロテインAビーズ25μlを含有す
るプロテインAビーズ溶液50μlを、細胞溶解液500μlに添加し、且つ免疫沈降(IP)カラム
に移した。IPカラムを、4℃で一晩回転させた。引き続き、IPカラムを遠心沈殿させ、溶
解液を除去し、且つビーズを冷細胞溶解緩衝液で洗浄した。50mM DTTを含有する2×SDS試
料緩衝液50μlを、各IPカラムへ添加し、且つカラムを4分間煮沸した。各カラムのボトム
チップを取り外し、且つカラムを遠心沈殿させ、溶出液を収集した。溶出液20μlを、SDS
-PAGEを用いて分離した。HER2及びHER3の両方について、ウェスタンブロットを行った(抗
-HER2抗体により、カタログ番号OP15L、CalBiochem社、ラホヤ、CA;及び、抗-HER3抗体
により、カタログ番号SC-285、Santa Cruz Biotechnology社、サンタクルズ、CA)。
BT-474細胞(ATCCカタログ番号HTB-20(商標))を、6-ウェルプレート中に、10%熱-失活
したFBSを含む完全RPMI 1640細胞培養培地内で、密度1×106個細胞/ウェルで播種した。
翌日、播種培地を除去し、飽和投与量の被験抗体を含有する新鮮な完全RPMI 1640と置き
換えた。この実験において、CL16、2C2の前駆体のより低い親和性型、2C2、及びR347、対
照IgGを、濃度5μg/mLで試験した。細胞を、抗体と一緒に37℃で2時間インキュベーショ
ンした。次に、培地を除去し、細胞を冷PBSで1回洗浄した。1mLの冷PBS中のクロスリンカ
ー3,3’-ジチオビス[スルホスクシンイミジルプロピオネート](DTSSP)を、濃度2mMで添加
した。細胞を、氷上で少なくとも1時間インキュベーションした。次に細胞を、冷PBSで3
回洗浄した。プロテアーゼインヒビター及びホスファターゼインヒビターを含有する細胞
溶解緩衝液(500μL)を添加し、これらの細胞を少なくとも30分間氷上に配置し、溶解させ
、その後細胞スクレーパーにより収集した。HER2及びHER3は、細胞溶解液から免疫沈降さ
せた。細胞溶解液(500μL)を、SigmaPrep回転カラム(Sigma社)中でHER3 MAb(MAB3481、R&
D Systems社)1μgと予めコンジュゲートさせたプロテインAセファロースビーズ(50%スラ
リー;Invitrogen社)50μLと一緒にした。この混合物を、4℃で一晩の回転によりインキ
ュベーションした。翌日、ビーズを、遠心分離により細胞溶解液から分離した。カラム中
のビーズは、プロテアーゼインヒビター(Sigma社)及びホスファターゼインヒビター(EMD
Millipore社)を含有する冷細胞溶解緩衝液(Cell Signaling Technologies社)により4回洗
浄した。この洗浄手順の後、50mMジチオスレイトール(DTT;EMD Chemicals社)を含有する
2×SDS(ドデシル硫酸ナトリウム)試料緩衝液50μLを、回転カラムに添加した。次にこの
カラムを、4分間煮沸した。タンパク質を、遠心分離により溶離し、直ちに免疫ブロッテ
ィングに使用した(セクション2.4において行ったように)。
HRGにより処理又は未処理のT-47D細胞を、溶解した。HER3を、抗-HER3モノクローナル
抗体により沈降させ、次にペレット中のタンパク質を、SDS-PAGE上で分解させ、且つHER2
-HER3相互作用の徴候として、HER2の存在についてブロットした。該二量体は、リガンド-
刺激後にのみ生じたので、このモデルは、リガンド-誘導性であった。2C2による予備処理
は、二量体形成を効率的に防止し、このことはリガンド-誘導したHER2-HER3二量体形成を
妨げるその能力を明らかにしている。MM、AMG、及び親クローン16を含む他の抗-HER3モノ
クローナル抗体も、有効であることが認められた(図14A)。クロス-リンカーDTSSPを使用
し、タンパク質複合体を生化学的に安定化する場合、構成的HER2:HER3ヘテロ二量体は、
BT-474細胞において、HRG非存在下で捕獲され、このことは、リガンド-非依存性ヘテロ二
量体形成を示唆している。細胞の2C2又はCL16による予備処理は、このヘテロ二量体形成
を効果的に破壊した(図14B)。
標的インターナリゼーション及び分解は、それによりモノクローナル抗体が、それらの
標的機能を阻害する、2つの一般的機序である。第一に、本発明者らは、BT-474乳癌細胞
において、2C2-媒介されたHER3インターナリゼーションを評価した。次に、本発明者らは
、この急速な2C2-誘導したHER3インターナリゼーションに、標的分解が続くかどうかを確
定した。
HER3インターナリゼーションは、蛍光活性化細胞選別(FACS)アッセイを用いて決定した
。BT-474細胞を、アキュターゼ酵素により剥離し、これらの細胞を1%BSAを含有するPBS(
FACS緩衝液)中に、細胞密度10×106個細胞/mlになるよう、懸濁させた。細胞50μlを、U-
字底96ウェルプレートの各細胞に添加した。抗-HER3 モノクローナル抗体50μlに加え同
位体対照(20μg/ml)を、各ウェルに添加し、最終濃度10μg/mlを達成した。このプレート
を、37℃で0.5時間、2時間及び4.5時間、各々インキュベーションした。細胞を、冷FACS
緩衝液で2回洗浄した(細胞は、1,500rpmで2分間の遠心分離によりペレット化させた)。細
胞を、マウス抗-ヒトHER3モノクローナル抗体(カタログ番号MAB3481、R&D Systems社、ミ
ネアポリス、MN)1μg/ml又は10μg/mlを含有する冷FACS緩衝液により再懸濁させた。
衝液により、2回洗浄した。引き続き細胞を、Alexa Fluor(登録商標)488-標識した二次抗
体(Invitrogen社)を含有する冷FACS緩衝液(1:200v/v)により再懸濁させ、氷上で30〜45分
間インキュベーションした。次に細胞を、冷FACS緩衝液で2回洗浄し、冷FACS緩衝液の100
μlにより再懸濁させた。この時点で、FACSを行った。蛍光強度の絶対幾何平均(GMFI)を
、二次抗体のみを含有する対照由来のGMFIを減算することにより、得た。相対HER3表面ク
リアランスを、IgG対照モノクローナル抗体を使用し得られた結果と比較することにより
計算した。代表的結果を、図15Aに示している。
Lovo、HCT15及びSW620結腸直腸モデル癌細胞(ATCC番号、各々、CCL-229、CCL-225及びC
CL-227)を、24ウェルプレート内に、1.5×105個/ウェルで蒔いた。一晩接着した後、これ
らの細胞を、2C2及び対照モノクローナル抗体により3〜4時間処理した。細胞を、冷PBSに
より1回洗浄し、2×SDS試料緩衝液50〜60μlにより直接溶解し、且つ100℃で10分間煮沸
した。試料20μlを、SDS-PAGEゲルに負荷し、電気泳動により分離し、且つHER3に対する
抗体(Santa Cruz Biotech社)によりウェスタンブロットし、総HER3タンパク質レベルを定
量した。GAPDHに対する抗体(Sigma社)も、一般的タンパク質負荷対照としてGAPDHレベル
の定量に使用した。
図15Aに示したように、2C2の両方の投与量は、非常に類似した影響を有した。30分間の
処理は、表面HER3集団の39%喪失(61%残存)を引き起こしたのに対し、2時間処理は、62
%喪失(38%残存)を引き起こし、このことは2C2による迅速な標的インターナリゼーショ
ンを示唆している。加えて、3種の異なる結腸直腸癌モデルを2C2とインキュベーションし
た場合、SW620細胞において完全なHER3分解が認められたのに対し、他の2種の細胞株にお
いてはほぼ完全な分解が認められ(図15B)、このことは2C2は、強力な標的分解能が可能で
あることを明らかにしている。
DC))
ADCCは、それを介してモノクローナル抗体が、インビボにおいてその抗腫瘍効力を付与
することができる一つの認められた様式である。クローン16のADCC活性を評価するために
、本発明者らは、2種のHER2-増幅された乳癌モデルBT-474及びSkBR3において、インビト
ロPBMC-が可能にしたADCCアッセイを使用した。ハーセプチン/トラスツズマブは、これ
らの癌型においてADCC作用を付与することが示されているので、これを、陽性対照として
使用した。両方のモデルにおいて、本発明者らは、ハーセプチンから有意な腫瘍-殺傷作
用を認めたが、試験した残りのモノクローナル抗体であるクローン16、AMG及びMMは、非
常に不活性であり、このことは、これらは測定可能なADCC作用を欠いていることを指摘し
ている(データは示さず)。2C2-YTEを、補体給源として、ヒト血清を用いるCDCアッセイに
おいて試験した。加えて、抗-HER2抗体トラスツズマブ及び抗-CD20抗体リツキシマブを、
対照として含んだ。2C2-YTEを含むいずれの抗体も、いずれの濃度でも検出可能なCDC活性
を示さなかった(データは示さず)。SkBR3細胞は、CD20を発現しない。陽性対照として、
リツキシマブは、CD20を発現する Daudi細胞に対する類似のCDCアッセイにおいて、かな
りの細胞殺傷活性を明らかにした(データは示さず)。
(3.5.1. SkBR3乳癌細胞における細胞周期停止アッセイ)
BioSante細胞(ATCC番号HTB-30)を、6-ウェルプレート中に、密度150,000個細胞/ウェル
で播種し、且つ一晩接着させた。翌日、培地を除去し、被験抗体及び対照抗体を含有する
新鮮な成長培地と置き換えた。次に細胞を、37℃で48時間インキュベーションした。この
処理の最後に、細胞をトリプシン処理し、15mlコニカルチューブにプールし、且つ1500rp
mで5分間遠心分離した。次に細胞をPBSで1回洗浄し、氷冷した70%エタノール中で-20℃
で一晩固定した。
0.1%Triton X-100、0.2mg/ml DNAse-フリーRNAse A、及び20μg/mlヨウ化プロピジウム)
中に再懸濁させた。細胞を、暗所において室温で30分間染色し、LSRIIフローサイトメー
ターシステム(BD Biosciences社)を用いて分析した。ヨウ化プロピジウムを、テキサスレ
ッドチャネルを用いて検出し;データを、Dean/Jett/Foxモデルを使用するFlowJoフロー
サイトメトリー分析パッケージ(Tree Star社、OR)を用いて分析した。
FACS-ベースの細胞周期分析は、BT-474に類似したHER2-増幅された乳癌細胞株であるSk
BR3細胞において、ハーセプチン及びクローン16(2C2の親リード)の両方は、G1期で細胞周
期停止を引き起こした(図16に示されたようなS/G2集団の減少による、G1-集団の増加)こ
とを示した。
HRGは、様々な癌モデルにおいて、主要なプロ-血管新生(pro-angiogenic)サイトカイン
であるVEGFの分泌を駆動することが示されている。従って本発明者らは、2つの乳癌モデ
ルMCF-7及びBT-474において、HRG-誘導したVEGF分泌を抑制する2C2の阻害作用を評価した
。
MCF-7細胞及びBT-474細胞を、24-ウェルプレート中に、密度100,000個細胞/ウェルで播
種し、且つ2日間静止(rest)させた。次に培地を除去し、2%FBS並びに対照抗体及び被験
抗体を含有する新鮮な成長培地500μlと置き換えた。引き続き24時間インキュベーション
し、細胞培養培地を収集し、VEGF ELISAキット(R&D Systems社、DY293B)を用い、VEGFレ
ベルを決定した。各ウェル中の相対細胞数を、新鮮培地を細胞へCell Titer Glo(Promega
社、比1:1)と一緒に添加し、及びプレートを室温で10分間インキュベーションすること
により決定した。ルミネセンスを、プレートリーダーを用いて読み取り、且つこれらの値
をデータの正規化に使用した。
HRG処理は、BT-474(図17A)及びMCF-7(図17B)の両方の乳癌モデル細胞株において、VEGF
分泌を、6.5倍〜8倍の範囲での劇的な増加を誘導した。CL16(クローン16)、及びMMモノク
ローナル抗体は、この増加のほとんどを抑制することができ、このことは、これらの抗-H
ER3モノクローナル抗体は、追加の血管調節作用を付与することができることを示唆して
いる。
(4.1. ヒトHER3と同様の親和性でカニクイザル及びマウスHER3に結合する2C2)
関連のある毒性試験種の選択を可能にするために、2C2のヒト、カニクイザル(cyno)及
びマウスのHER3に対する親和性を比較するために、Biacoreアッセイを、本質的に先に記
載のように行った(表7の上側部分)。より高い解像度のBIAcore機器、代替のFc捕獲試薬及
びバックグラウンド結合の補正のために精緻化された注入プロトコールを用い、2C2-YTE
について、追加のBiacoreアッセイを行った。簡単に述べると、機器の製造業者により概
説されたような標準アミンプロトコールを用い、プロテインA捕獲試薬を、同じCM5センサ
ーチップ上に連続して接続された2つの隣接するフローセル上に固定した。これらのプロ
テインA表面の一つを、本実験の参照表面として使用し、同時に他方のものは、IgG捕獲及
び引き続きのHER3(ECD)結合を記録するために使用する活性表面として働いた。参照フロ
ーセル表面及び活性フローセル表面上の最終のプロテインA密度は、各々、1986 RU及び19
79 RUとして記録した。構成に従い、本方法は、2C2-YTE IgGは、最初に活性プロテインA
表面上にのみ捕獲され、引き続き活性及び参照の両フローセル表面上にHER3タンパク質溶
液が注入されるように設定した。そのような実行において、この戦略は、HER3被検体のプ
ロテインA捕獲表面への任意の非特異的結合に関する結合曲線を補正した。IgG捕獲工程に
関して、2C2-YTE IgGは、HBS-EP+機器緩衝液(0.01M HEPES、pH7.4、0.15M NaCl、3mM ED
TA、及び0.05% P20)中に10nMで調製し、次に、活性プロテインAフローセル表面上に流量
10μL/分で30秒かけて注入した。次にヒト、カニクイザル、及びマウスのHER3タンパク質
を、最初に機器緩衝液中に500nMストック溶液で調製し、次に各々の2倍の連続希釈シリー
ズを作製し、最終濃度0.39nMを提供した。次にHER3タンパク質を、活性及び参照の両セル
のプロテインA表面の上に120秒かけて、流量75μL/分で注入した。解離データを、15分間
収集し、引き続き注入の間に10mM Gly緩衝液(pH1.7)による60秒パルス2回を施し、フロー
セルをプロテインA捕獲表面へ戻すよう再生した。数回の緩衝液注入をまた、一連の注入
を通じて割り込ませた。選択緩衝液注入を、引き続き参照セルデータと共に使用し、注入
アーチファクツ及び/又は非特異的結合相互作用に関して、生データセットを補正したが
、これは「二重参照(double-referencing)」と通常称される技術である(Myszkaの文献、1
999)。次に完全に補正した結合データを、検出されるべき、物質移行が制限した結合を補
正する項を含んだ、1:1結合モデルに全域的にフィットさせた(BIAevaluation 4.1ソフト
ウェア)。この解析は、動態速度(kon、koff)定数を決定し、これらから次にみかけのKDを
、koff/konとして計算した(表7下側)。これら2つの実験セット間のKon値及びKoff値の変
動は、恐らく先に詳述されたような2つのプロトコールの間の差異によるものであり、且
つ概してこれらの動態パラメータを測定するために受け容れられる2倍誤差範囲内であっ
た。表7に示されたように、2C2、及び2C2-YTEのカニクイザルHER3への親和性は、ヒトHER
3に対する親和性と事実上同じであった。マウスHER3に関する親和性は、ヒトHER3に関す
る親和性の3倍以内であった。
表7:2C2のヒト、カニクイザル、及びマウスHER3への親和性を示すBiacore結合アッセ
イ
Ad293細胞(Stratagene社、No. 240085)を、リポフェクタミン2000試薬(Invitrogen社)
と共に供されたプロトコールに従い、完全長cynoHER3-発現ベクターにより一過性にトラ
ンスフェクトした。細胞を、37℃で48時間インキュベーションさせ、その後処理した。抗
体を、完全成長培地内に、10μg/mlで1時間添加し、引き続きHRGβ1(R&D Systems社)20ng
/mlにより37℃で10分間刺激した。処理の最後に、培地を除去し、細胞を、PBSにより1回
洗浄した。細胞を、2×Novexトリス-グリシン試料緩衝液(Invitrogen社)により溶解し、
且つpHER3及び総HER3のレベルを、免疫ブロット法により決定した(各々、Cell Signaling
社、抗体#4791、及びSanta Cruz社、抗体#285)。バンドのデンシトメトリーは、ImageJソ
フトウェア(NIH、imagej.nih.gov/ij/)を用いて遂行した。
カニクイザルHER3の2C2による結合及び交差調節(cross-modulation)を完全に確立する
ために、ウェスタンブロットにより明らかにされるように、完全長カニクイザルHER3を異
所性に発現している安定したAd293細胞株を樹立した(図18A)。HRGで処理した場合、カニ
クイザルHER3は、pHER3シグナルの誘導により証明されるような強固な活性化を受けた(図
18B)。細胞を2C2により同時処理した場合、しかしR347対照抗体では処理されなかった場
合、pHER3誘導は、完全に抑止され、このことは、2C2は、細胞表面上のカニクイザルHER3
に結合することができるのみではなく、その活性化を効果的にアブレートすることができ
ることを明らかにしている(図18B)。2C2がカニクイザルHER3に対しヒトHER3に対するのと
同じ親和性を発揮したことを示す上記Biacore親和性測定データとの組合せて、これらの
結果は、2C2治験に関する関連のある毒性試験種としてカニクイザルを実証した。
(4.4. 皮下ヒトFADU頭頸部異種移植片モデル試験)
(4.4.1. 方法)
ヒトFADU頭頸部細胞(ATCC番号HTB-43)を、5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグルコー
ス、L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウム及び10%ウシ胎仔血清を含有するRPMI 1640培
地中で、37℃で維持した。異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部へ、
マウス1匹あたり5×106個細胞(50%マトリゲル中に懸濁させた)の皮下注入により樹立し
た。腫瘍を、200mm3まで成長させ、その後有効性試験のために無作為化した。2C2、2C2-Y
TE、セツキシマブ、対照IgG1又は2C2のセツキシマブモノクローナル抗体との組合せを、
腹腔内投与した。投与量依存性試験のために、2C2を体重1kg当たり3、5、7、及び10mg(mg
/kg)、対照を10mg/kg投与した。組合せ試験のために、2C2を3mg/kg、セツキシマブを30mg
/kg、及び対照抗体を6mg/kg投与した。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測
定を行い、下記式を用い腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類(staging)時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化
、及びdC=病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
最終時点で2C2により処理した。心穿刺を行い、血液をMicrotainer血清分離チューブ(SST
)に収集した。血液の入ったチューブを、10秒間穏やかに攪拌し、且つ室温で20分間維持
し、血清を凝血させた。試料を1000×gで10分間遠心分離し、血清試料を、新たなチュー
ブに慎重に移し、-80℃で貯蔵した。
ォーマットを使用した。標準、品質対照、及びマウス血清試料を、96-ウェルマイクロタ
イタープレート上に固定されたヤギ抗-ヒトIgG抗体と一緒にインキュベーションした。イ
ンキュベーション後、未結合の材料を、洗浄工程により除去し、且つ2C2を、ホースラデ
ィッシュ-ペルオキシダーゼコンジュゲートを伴うヤギ抗-ヒトIgGを用い検出した。酸性
停止液を添加し、450nmの吸光度を測定することにより、基質の酵素的代謝回転の程度を
決定した。測定した吸光度は、マウス血清中に存在する2C2の濃度に正比例した。このア
ッセイに関する2C2標準曲線を使用し、血清試料の濃度を内挿した。
雌のヌードマウスにおいて皮下に成長したヒトFADU頭頸部異種移植片モデルを利用し、
2C2は、投与量-依存性の抗腫瘍効率を明らかにした。99%腫瘍成長阻害(dTGI)での最大有
効性は、本試験の期間に、週2回投与された7mg/kgで認められた(図19A)。
せ投与は、FADU異種移植片モデルにおいて明確な相乗的抗腫瘍効率を示した(図19B)。こ
の作用は、長期間持続し、且つこれらの腫瘍は、40日目の再成長相の終了時にのみ成長の
開始に戻った。この組合せ治療は、10例中7例に部分的退縮を、及び10例中2例の完全退縮
をもたらした。
されることは良く確立されている。従って宿主HER3は、それが腫瘍組織を得る前の、2C2
モノクローナル抗体の吸収に対するシンクとして利用することができる。腫瘍-保有する
雌のヌードマウスを使用し、2C2の5mg/kgを、これらのマウスへ1回又は3回のいずれかで
投与し、2C2の曝露レベルを経時的に追跡した。2C2は、2C2の5mg/kgの最終投与後1日目だ
け検出可能であり、且つ最終治療後3日目には検出不能であった(図36)。他方で、5mg/kg
と同じスケジュールを使用する2C2の30mg/kg投与は、2C2がマウス血清中で測定されるは
るかにより長いウインドウに繋がった。これらの知見は、腫瘍-保有するマウスへの、5mg
/kg又は30mg/kgの単回投与量及び反復投与量の投与後の、2C2に関する非線形薬物動態を
明らかにしている。このデータは、マウスHER3は、マウスへ投与された2C2への結合のシ
ンクとして作用することができること、及び単回投与量としての30mg/kgは、このシンク
を飽和させるのに十分であることを示した。
る、2C2の高い負荷投与量、それに続く低い維持投与量の投与により、機能的に確認され
た。2C2の10mg/kgの負荷投与量及び3mg/kg維持投与量の抗腫瘍効率が、FADU腫瘍モデルに
おいて明らかにされた。2C2単回投与量としての10mg/kgは、一過性の抗腫瘍効率のみを有
した。週2回の3mg/kgで与えられた2C2は、軽度であるが連続する有効性を有した。2C2の
負荷投与量10mg/kgと維持投与量3mg/kgの組合せは、いずれかの単独治療スケジュールと
比べ、腫瘍増殖の阻止においてより効果的であった(図21)。
いて試験した。2C2は、ヒトFADU異種移植片腫瘍を保有するマウスへ、48時間以内に30mg/
kgを2回投与し、且つ抽出物をその後24時間分析した。簡単に述べると、無胸腺ヌードマ
ウスに、FADU頭頸部癌細胞を皮下移植した。動物に、2C2の30mg/kgを48時間以内に2回投
与した。pHER3、pAKT及び総HER3の分析(各々、図22の上側、中央、及び下側パネル)のた
めの抽出物を、24時間後に調製した。R347を、対照IgG1抗体として使用した。1つの治療
群につき動物6匹であった。データは、平均±標準偏差として表した。ここで、2C2は、対
照IgG1-処理したマウス由来の腫瘍と比較して、HER3及びAKTの両方のリン酸化を、各々、
59.5%及び51.7%阻害した(図22、上側及び中央パネル)。2C2による総HER3の調節は、認
められなかった(図22、下側パネル)。
(4.5.1. 方法)
ヒトDetroit562頭頸部細胞(ATCC番号CCL-138)を、5%CO2インキュベーター内、4.5g/L
グルコース、L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウム及び10%ウシ胎仔血清を含有するRPMI
1640培地中で、37℃で維持した。異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹
部へ、マウス1匹あたり5×106個細胞の皮下注入により樹立した。腫瘍を、200mm3まで成
長させ、その後有効性試験のために無作為化した。2C2、2C2-YTE、セツキシマブ、対照Ig
G1又は2C2のセツキシマブモノクローナル抗体との組合せを、腹腔内投与した。投与量依
存性試験のために、2C2を体重1kg当たり1、3、10、及び30mg(mg/kg)投与した。組合せ試
験のために、2C2を3mg/kg、セツキシマブを30mg/kg、及び対照抗体を10mg/kg投与した。
マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定を行い、下記式を用い腫瘍容積を計算
した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
最終時点で2C2により処理した。心穿刺を行い、血液をSST Microtainerチューブに収集し
た。血液の入ったチューブを、10秒間穏やかに攪拌し、且つ室温で20分間維持し、血清を
凝血させた。試料を1000×gで10分間遠心分離し、血清試料を、新たなチューブに慎重に
移し、-80℃で貯蔵した。
ォーマットを使用した。標準、品質対照、及びマウス血清試料を、96-ウェルマイクロタ
イタープレート上に固定されたヤギ抗-ヒトIgG抗体と一緒にインキュベーションした。イ
ンキュベーション後、未結合の材料を、洗浄工程により除去し、且つ2C2を、ホースラデ
ィッシュ-ペルオキシダーゼコンジュゲートを伴うヤギ抗-ヒトIgGを用い検出した。酸性
停止液を添加し、450nmの吸光度を測定することにより、基質の酵素的代謝回転の程度を
決定した。測定した吸光度は、マウス血清中に存在する2C2の濃度に正比例した。このア
ッセイに関する2C2標準曲線を使用し、血清試料の濃度を内挿した。
2C2は、雌のヌードマウスにおいて皮下に成長したヒトDetroit562頭頸部異種移植片モ
デルにおいて、抗腫瘍効率を明らかにした。2C2の週2回投与された10mg/kgは、72%dTGI
で最大有効性であった(図23A)。Detroit562モデルは、PIK3CA変異を含む。
れは週2回投与される10mg/kgで、腫瘍成長阻害を引き起こした。2C2の3mg/kgのセツキシ
マブ10mg/kgとの組合せは、セツキシマブの抗腫瘍効率を増大し(added)、10例中9例にお
いて、部分退縮を生じたのに対し、セツキシマブ単独は10例中5例で部分退縮を生じた(図
23B)。
(4.6.1. 方法)
ヒトCAL27頭頸部細胞(ATCC番号CRL-2095)を、5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグル
コース、L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウム及び10%ウシ胎仔血清を含有するRPMI 164
0培地中で、37℃で維持した。異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部へ
、マウス1匹あたり5×106個細胞の皮下注入により樹立した。腫瘍を、200mm3まで成長さ
せ、その後有効性試験のために無作為化した。2C2-YTE、セツキシマブ、又は対照IgG1を
、腹腔内投与した。投与量依存性試験のために、2C2-YTEを体重1kg当たり3、10、及び30m
g(mg/kg)投与した。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定を行い、下記式を
用い腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
2C2-YTEの投与量-依存性活性は、2C2-YTEを用い、第三の頭頸部腫瘍モデルCAL27におい
て確認された。2C2-YTEの週2回投与される3、10又は30mg/kgは、対照IgG1-処理動物と比
べ、各々、TGIの26.4%、55.2%、又は68.8%を示した(図24)。
、週2回投与される30mg/kgで、腫瘍成長阻害を引き起こし、TGI 75.0%であった(図24)。
(4.7.1. 方法)
ヒトA549 NSCLC細胞(ATCC番号CCL-185)は、KRAS遺伝子のコドン12に変異を含むが、こ
れを5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグルコース、L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウ
ム及び10%ウシ胎仔血清を含有するハムF12K培地中で、37℃で維持した。異種移植片を、
4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部へ、マウス1匹あたり5×106個細胞(50%マトリ
ゲル中に懸濁させた)の皮下注入により樹立した。腫瘍を、200mm3まで成長させ、その後
有効性試験のために無作為化した。2C2、2C2-YTE、セツキシマブ、対照IgG1又は2C2のセ
ツキシマブモノクローナル抗体との組合せを、腹腔内投与した。投与量依存性試験のため
に、2C2を体重1kg当たり3、10、及び30mg(mg/kg)で、並びに2C2-YTEを10mg/kgで投与した
。組合せ試験のために、2C2及びセツキシマブを各々10mg/kgで投与した。マウスにおける
腫瘍成長に関して、キャリパー測定を行い、下記式を用い腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
2C2は、雌のヌードマウスにおいて皮下に成長したヒトA549 NSCLC異種移植片モデルに
おいて、投与量-依存性の抗腫瘍効率を明らかにした。91% dTGIの最大有効性は、33日目
まで週2回投与された2C2の30mg/kgで達成された(図25A)。10mg/kgで与えられた2C2及び2C
2-YTEは、このA549腫瘍モデルにおいて類似した抗腫瘍効率を示した。一旦治療を停止し
たならば、この腫瘍は、対照-治療マウスにおける腫瘍と同じ速度で成長を始めた。A549
異種移植片モデルは、KRAS変異及びLKB-1欠失を含む。
し、セツキシマブ10mg/kgの2C2 10mg/kgへの追加は、治療相時に、2C2単独と比較して、
相加的抗腫瘍効率を生じた。加えて、この組合せ治療群は、治療の中断後に、この腫瘍の
より遅い再成長を示した(図25B)。
(4.8.1. 方法)
ヒト扁平HARA-B NSCLC細胞は、野生型RAS遺伝子、HRG及びpHER3を発現するが、これを5
%CO2インキュベーター内、4.5g/L Dグルコース、2.383g/L HEPES緩衝液、L-グルタミン
、1.5g/L重炭酸ナトリウム(Sodium Bicarbinate)、110mg/Lピルビン酸ナトリウム及び10
%ウシ胎仔血清を含有するRPMI 1640培地中で、37℃で維持した。異種移植片(50%マトリ
ゲル中に懸濁させた)を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部へ、マウス1匹あたり5
×106個細胞の皮下注入により樹立した。腫瘍を、227mm3まで成長させ、その後有効性試
験のために無作為化した。2C2-YTEを、体重1kg当たり3、10及び30mg(mg/kg)、対照を30mg
/kgで、腹腔内投与した。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定を行い、下
記式を用い腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
2C2-YTEは、雌のヌードマウスにおいて皮下に成長したヒト扁平HARA-B NSCLC異種移植
片モデルにおいて、投与量-依存性の抗腫瘍効率を明らかにした。64.6% dTGIの最大有効
性は、29日目まで週2回投与された2C2-YTEの30mg/kgで達成された(図26)。10mg/kgで与え
られた2C2-YTEは、30mg/kgと類似した抗腫瘍効率を示したが;しかし、3mg/kgの2C2-YTE
は、このHARA-B腫瘍モデルにおいて有効ではなかった。HARA-B異種移植片モデルは、野生
型RAS対立遺伝子を含む。
(4.9.1. 方法)
ヒトHT-29結腸直腸癌細胞(ATCC番号HTB-38)は、5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグ
ルコース、L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウム及び10%ウシ胎仔血清を含有するRPMI 1
640培地中で、37℃で維持した。異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部
へ、マウス1匹あたり5×106個細胞の皮下注入により樹立した。腫瘍を、200mm3まで成長
させ、その後有効性試験のために無作為化した。2C2、2C2-YTE及び対照IgG1モノクローナ
ル抗体を、腹腔内投与した。2C2は、体重1kg当たり2、10及び30mg(mg/kg)で投与したのに
対し、2C2-YTEは、30mg/kgであった。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定
を行い、下記式を用い腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
2C2は、雌のヌードマウスにおいて皮下注入したヒトHT-29結腸直腸異種移植片モデルを
利用し、投与量-依存性の抗腫瘍効率を示した。週2回投与される2C2の30mg/kgは、治療相
時に、56% dTGIの最大有効性であった(図27)。2C2-YTEは、2C2と同じ有効性を、両方共3
0mg/kgの投与で示した。一旦治療が停止されると、腫瘍は、対照腫瘍と同じ速度で成長し
た。HT-29異種移植片モデルは、BRAF変異を含む。セツキシマブ10mg/kgの単独は、このモ
デルにおいて測定可能な抗-腫瘍活性を有さなかった。セツキシマブ10mg/kgと組合せた2C
2 30mg/kgの活性は、治療相の終了時に、2C2 30mg/kg単独の活性と区別不可能であった(
データは示さず)。このことは、このEGFR-発現しているCRC腫瘍モデルは、2C2に良く反応
するが、これは2C2-YTEのセツキシマブへの添加により更に阻害されることはないことを
指摘している。
(4.10.1. 方法)
ヒトHCT-116結腸直腸癌細胞は、5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグルコース、L-グ
ルタミン、ピルビン酸ナトリウム及び10%ウシ胎仔血清を含有するRPMI 1640培地中で、3
7℃で維持した。異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部へ、マウス1匹
あたり5×106個細胞の皮下注入により樹立した。腫瘍を、200mm3まで成長させ、その後有
効性試験のために無作為化した。2C2、2C2-YTE、セツキシマブ及び対照IgG1モノクローナ
ル抗体を、腹腔内投与した。2C2は、体重1kg当たり3、10及び30mg(mg/kg)で投与したのに
対し、2C2-YTEは、30mg/kgであった。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定
を行い、下記式を用い腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
週2回投与されるいくつかの異なる濃度の2C2、及び10mg/kgの2C2-YTEは、雌のヌードマ
ウスへの皮下注入によりヒトHCT-116 結腸直腸異種移植片モデルにおいて軽度の抗腫瘍効
率を示した(図28)。最大有効性は、2C2の10mg/kgについて43% dTGIが記録された。抗-EG
FRモノクローナル抗体セツキシマブは、10mg/kgで有効性がなかった。HCT-116異種移植片
モデルは、KRAS変異を含む。
(4.11.1. 方法)
ヒトLOVO結腸直腸癌細胞(ATCC番号CCL-229)は、5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグ
ルコース、L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウム及び10%ウシ胎仔血清を含有するハムF1
2K培地中で、37℃で維持した。異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部
へ、マウス1匹あたり5×106個細胞の皮下注入により樹立した。腫瘍を、200mm3まで成長
させ、その後有効性試験のために無作為化した。2C2、2C2-YTE、セツキシマブ及び対照Ig
G1モノクローナル抗体を、腹腔内投与した。2C2は、体重1kg当たり10又は30mg(mg/kg)で
投与し、2C2-YTE及びセツキシマブは、10mg/kgで、並びに対照は30mg/kgで投与した。マ
ウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定を行い、下記式を用い腫瘍容積を計算し
た:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
週2回投与される30mg/kgの2C2は、雌のヌードマウスにおいて皮下に成長したヒトLOVO
結腸直腸異種移植片モデルにおいて48% dTGIの抗腫瘍効率を達成した(図29)。2C2、2C2-
YTE及びセツキシマブの全て10mg/kgは、同等の有効性を有した。LOVO異種移植片モデルは
、KRAS変異を含む。
(4.12.1. 方法)
ヒトDU145前立腺癌細胞(ATCC番号HTB-81)は、5%CO2インキュベーター内、アール塩、L
-グルタミン、及び10%ウシ胎仔血清を含有するMEM培地中で、37℃で維持した。異種移植
片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部へ、マウス1匹あたり5×106個細胞(50%
マトリゲル中に懸濁された)の皮下注入により樹立した。腫瘍を、200mm3まで成長させ、
その後有効性試験のために無作為化した。2C2、MM及びAMGモノクローナル抗体を、体重1k
g当たり30mgで腹腔内投与した。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定を行
い、下記式を用い腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
週2回2C2の30mg/kgが投与される雄のヌードマウスにおいて皮下に成長したヒトDU145前
立腺癌異種移植片モデルを使用し、この腫瘍モデルにおいて77% dTGIの抗腫瘍効率が明
らかになった(図30)。DU145異種移植片モデルは、LKB-1欠失を含む。30mg/kgで使用した
抗-HER3モノクローナル抗体AMG及びMMは、抗腫瘍効率を明らかにしたが、これらは、同じ
投与量30mg/kgの2C2よりも効果が低かった。
(4.13.1. 方法)
ヒトBT-474乳癌細胞を、5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグルコース、L-グルタミン
、ピルビン酸ナトリウム、及び10%ウシ胎仔血清を含有するRPMI 1640培地中で、37℃で
維持した。同所性異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部上の乳腺脂肪
帯へ、マウス1匹あたり1×107個細胞(50%マトリゲル中に懸濁された)の注入により樹立
した。エストロゲンペレット(0.36mg)を、細胞注入前1〜2日に、左側腹部の皮膚下側に配
置した。腫瘍を、200mm3まで成長させ、その後有効性試験のために無作為化した。2C2、2
C2-YTE、及び/又は当該技術分野において公知の抗-HER2抗体であるMM、AMG及びトラスツ
ズマブ(商品名ハーセプチン(登録商標);例えば、米国特許第5,821,337号)を、体重1kg当
たり30mg腹腔内投与した。ラパチニブを、体重1kg当たり100mgで経口経管栄養により投与
した。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定を行い、下記式を用い腫瘍容積
を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
HER2-駆動されたヒト乳癌モデルBT-474を使用し、週2回注入される30mg/kgの2C2投与を
、雌ヌードマウスの乳腺脂肪帯へ同所性注入し、BT-474異種移植片における55% dTGIに
つながった(図31A)。BT-474は、HercepTestにより3+と特徴付けられる、非常に高いレベ
ルでHER2を発現する。両方共30mg/kgで投与されたAMG及びMMは、このHER2-駆動されたモ
デルにおいて抗腫瘍効率を示さなかった。
駆動されるので、ラパチニブを、このモデルにおいて試験し、且つBT-474腫瘍モデルにお
いて腫瘍の静止(stasis)を引き起こすことがわかった。2C2の30mg/kgとラパチニブ100mg/
kgの組合せ療法は、追加の治療の非存在下で最も明白に腫瘍の再成長を遅延したラパチニ
ブ単独の、より改善された抗腫瘍効率を生じた(図31B)。2C2-YTEの抗-腫瘍活性は、2C2の
それに類似していた。抗-HER2抗体トラスツズマブも、このモデルで試験し、且つこのHER
2-駆動された異種移植片モデルにおいて、111.6% dTGIで非常に活性があることを示した
。トラスツズマブ30mg/kgの活性には、2C2の30mg/kgの追加により更なる増強はほとんど
存在せず、これは118.5% dTGIであった(図31C)。
節する能力を、BT-474異種移植片腫瘍抽出物において試験した。簡単に述べると、雌の無
胸腺ヌードマウスに、高HER2-発現しているBT-474乳癌細胞を同所性に移植した。動物に
、クローン16の30mg/kgを48時間以内に2回投与した。pHER3、pAKT、及び総HER3(tHER3)の
分析のために、抽出物を、24時間後に調製した。結果は、PBS-治療した対照動物について
規準化した。1つの治療群に動物3匹が存在した。図32に示したように、クローン16は、HE
R3及びAKTの両方のリン酸化を、PBS-治療したマウスの腫瘍と比べ、各々、50%及び46.1
%まで阻害し、クローン16による総HER3の調節は、認められなかった。
(4.14.1. 方法)
ヒトMCF-7乳癌細胞を、5%CO2インキュベーター内、グルタマックス、2.4/L炭酸水素ナ
トリウム、Hepes及び5%ウシ胎仔血清を含有するOptimem培地中で、37℃で維持した。同
所性異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部上の乳腺脂肪帯へ、マウス1
匹あたり5×106個細胞(50%マトリゲル中に懸濁された)の注入により樹立した。エストロ
ゲンペレット(0.36mg)を、細胞注入前1〜2日に、左側腹部の皮膚下側に配置した。腫瘍を
、200mm3まで成長させ、その後有効性試験のために無作為化した。2C2、2C2-YTE及びトラ
スツズマブモノクローナル抗体を、腹腔内投与した。2C2は、体重1kg当たり10又は30mg投
与し、2c2-YTE及びトラスツズマブは10mg/kg投与した。パクリタキセルは、体重1kg当た
り10mg静脈内投与した。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定を行い、下記
式を用い腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
2C2の10mg/kg又は30mg/kgのいずれかは、雌ヌードマウスの乳腺脂肪帯へ同所性注入さ
れたヒトMCF-7乳癌異種移植片モデルにおいて、34% dTGIで、軽度の抗腫瘍効率を示した
。2C2-YTEの10mg/kgは、同じ濃度の2C2と類似の有効性を有した(図33A)。トラスツズマブ
は、このHER2発現モデルにおいて有効性を示さず、このことは、HER2は腫瘍成長を駆動す
るのに十分ではないことを指摘している。MCF-7腫瘍は、HercepTestにより測定し、低レ
ベルのHER2(1+)を発現した。
において、明らかな抗腫瘍効率を示した。このパクリタキセル治療への、2C2 10mg/kgの
追加は、治療相の終了時に、パクリタキセル単独の抗腫瘍効率を増大した(図33B)。この
治療を停止した後、腫瘍は、パクリタキセル治療した腫瘍と同じ速度で再成長した。
(4.15.1. 方法)
ヒトMDA-MB-361乳癌細胞を、5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグルコース、L-グルタ
ミン、ピルビン酸ナトリウム、及び10%ウシ胎仔血清を含有するRPMI 1640培地中で、37
℃で維持した。同所性異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部上の乳腺
脂肪帯へ、マウス1匹あたり5×106個細胞(50%マトリゲル中に懸濁された)の注入により
樹立した。エストロゲンペレット(0.36mg)を、細胞注入前1〜2日に、左側腹部の皮膚下側
に配置した。腫瘍を、230mm3まで成長させ、その後有効性試験のために無作為化した。2C
2-YTEであり、並びに/又は当該技術分野において公知の抗-HER2抗体、特にトラスツズマ
ブ(商品名ハーセプチン(登録商標);例えば、米国特許第5,821,337号)及びRhuMAb 2C4(例
えば、国際公開公報WO2001/00245)は、本文において各々、トラスツズマブ及び2C4と称さ
れる。トラスツズマブ及び2C4モノクローナル抗体を、体重1kg当たり30mg(2C2-YTE)、又
は体重1kg当たり10mg(トラスツズマブ及び2C4)、腹腔内投与した。ラパチニブを、体重1k
g当たり100mgで経口経管栄養により投与した。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリ
パー測定を行い、下記式を用い腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
雌ヌードマウスの乳腺脂肪帯へ同所性注入されたHER2-駆動されたヒト乳癌モデルMDA-M
B-361(Hercepttest +2)を使用し、5種の投与量について週2回30mg/kg注入される2C2-YTE
の投与は、MDA-MB-361異種移植片の70.1% dTGIへつながった(図34A-C)。MDA-MB-361細胞
は、HercepTestにより特徴付けられた2+の中等レベル及びFISH分析(蛍光インサイチュハ
イブリダイゼーション分析)による陽性スコアでHER2を発現した。トラスツズマブ及びrhu
MAb 2C4の両方の10mg/kg投与、及びラパチニブ100mg/kgの1日2回投与は、MDA-MB-361腫瘍
モデルにおける抗腫瘍効率を示した。
2C4又はラパチニブなどのHER2を標的化する薬物と組合せた。2C2-YTE 30mg/kgのトラスツ
ズマブ10mg/kgとの組合せ治療は、トラスツズマブ単独と比べ、相加的抗腫瘍効率を生じ
た。追加作用は、追加治療の存在しない場合の腫瘍の再成長の遅延においても明らかに認
めることができる(図34A)。2C2-YTEのトラスツズマブとの組合せは、このモデルにおける
rhuMAb 2C4(図34B)又はラパチニブ(図34C)のいずれかと2C2-YTEの組合せと比べ、よりす
ぐれていた。
ジェニックマウス)
(4.16.1. 方法)
ヒトFcRn受容体を発現しているトランスジェニック雌SCIDマウスに、クローン16-GL、2
C2、又は2C2-YTEの単回投与量60mg/kgを静脈内経路を介して与えた。これらのマウスから
、投薬後いくつかの時点で、心穿刺により血清を採取し、且つ血液をSST microtainerチ
ューブに収集した。これらのチューブを、10秒間穏やかに攪拌し、室温で20分間維持し、
血清を凝結させた。試料を、1000×gで10分間遠心分離し、血清試料を新たなチューブへ
慎重に移し、-80℃で貯蔵した。マウス血清中の2C2の定量的決定のために、間接的酵素結
合免疫吸着アッセイ(ELISA)フォーマットを使用した。標準、品質対照、及びマウス血清
試料を、96-ウェルマイクロタイタープレート上に固定されたヤギ抗-ヒトIgG抗体と一緒
にインキュベーションした。インキュベーション後、未結合の材料を、洗浄工程により除
去し、且つ2C2を、ホースラディッシュ-ペルオキシダーゼコンジュゲートを伴うヤギ抗-
ヒトIgGを用い検出した。酸性停止液を添加し、450nmの吸光度を測定することにより、基
質の酵素的代謝回転の程度を決定した。測定した吸光度は、マウス血清中に存在する2C2
又は2C2-YTEの濃度に正比例した。このアッセイに関する2C2又は2C2-YTE標準曲線を使用
し、血清試料の濃度を内挿した。
(4.16.2. 結果)
りより高い曝露レベルを示した(図35)。これらのマウスへの抗体の単回投与の14日後、2C
2-YTEの血清曝露レベルは100μg/mlを上回ったのに対し、2C2及びクローン16-GLの両方は
、1μg/mlを下回った。この知見は、YTEは、その親抗体2C2と比べ、2C2-YTEの半減期を延
長することを明らかにしている。
害剤)
KRAS変異(V-Ki-ras2 Kirstenラット肉腫ウイルス癌遺伝子)及びBRAF変異(v-rafマウス
肉腫ウイルス癌遺伝子B1)は、発癌性Ras/Raf/Mek/Erk経路を通るEGFRシグナル伝達の構成
的活性化につながる。Kras変異は、多くの固形癌、特に結腸直腸(CRC、30〜40%)及び肺
癌(LC、20〜25%)において最も頻発する変異事象である。Braf変異も、CRC(〜15%)にお
いて、比較的高い頻度で生じる。ERK経路を構成的に活性化するそれらの能力のために、
変異体Kras及びBrafは、RTK療法に対し、特にセツキシマブ及びパニツムマブなどのEGFR
mAbに対し、腫瘍抵抗性をもたらすことが示されている。CRC及びLCモデルにおけるHER3経
路上のマイトジェン-活性化プロテインキナーゼ(MEK)を阻害する作用を、MEK阻害剤セル
メチニブ(AstraZeneca社、例えば、WO03/077914及びWO2007/076245を参照)を、単独で又
は2C2(若しくは2C2-YTE)と組合せて用いて試験した。mut-Krasを保有するもの(例えば、A
549、LOVO)又はmut-Brafを保有するもの(例えば、HT-29、Colo205)又は野生型RASを保有
するもの(例えば、HARA-B、KNS-62)を含む、数多くのCRC及びLCモデルを試験した。
細胞培養試験:細胞を、24-ウェルプレート内、10%熱-失活したFBSを含有する培地中
に、105個/ウェルで播種し、且つ処置前に、集密度80%以上に到達させた。2C2(10μg/mL
)又は対照抗体、MEK阻害剤セルメチニブ(1又は10μM)又は2C2(10μg/mL)とセルメチニブ(
10μM)の組合せを、完全培地内に調製した。播種培地を除去した後、処置を適用した。5
%CO2中で37℃で24時間インキュベーションした後、細胞を、氷冷したPBSで1回洗浄し、
次に2×ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)試料緩衝液(Invitrogen社)60μLを添加することに
より、溶解した。試料を、5分間加熱し、次に氷上で2分間急冷した。試料を、本質的に先
に記載のようなウェスタンブロットにより分析した(実施例のセクション2.4参照)。
-185)を、5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグルコース、L-グルタミン、ピルビン酸ナ
トリウム、及び10%ウシ胎仔血清を含有するハムF12K培地中で、37℃で維持した。異種移
植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部へ、マウス1匹あたり5×106個細胞(50
%マトリゲル中に懸濁された)の皮下注入により樹立した。ヒトHT-29結腸直腸癌細胞(ATC
C番号HTB-38)を、5%CO2インキュベーター内、4.5g/Lグルコース、L-グルタミン、ピルビ
ン酸ナトリウム、及び10%ウシ胎仔血清を含有するRPMI 1640培地中で、37℃で維持した
。異種移植片を、4〜6週齢の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部へ、マウス1匹あたり5×106個
細胞の皮下注入により樹立した。ヒトLOVO結腸直腸癌細胞(ATCC番号CCL-229)を、5%CO2
インキュベーター内、4.5g/Lグルコース、L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウム、及び10
%ウシ胎仔血清を含有するハムF12K培地中で、37℃で維持した。異種移植片を、4〜6週齢
の無胸腺nu/nuマウスの右側腹部へ、マウス1匹あたり5×106個細胞の皮下注入により樹立
した。3種の腫瘍モデル全てについて、腫瘍を、200mm3まで成長させ、その後有効性試験
のために無作為化した。2C2-YTE又は対照IgG1は、腹腔内投与した。セルメチニブは、経
口投与した。組合せ試験において、2C2-YTEとセルメチニブは、各々、30mg/kg又は75mg/k
gで投与した。マウスにおける腫瘍成長に関して、キャリパー測定を行い、下記式を用い
腫瘍容積を計算した:
腫瘍容積=π÷6(長さ×幅×幅)
。抗腫瘍作用は、%デルタ腫瘍成長阻害(TGI)として表し、これは下記のように計算した
:
%ΔTGI=1−(dT÷dC)×100
(式中、dT=病期分類時の値と比較した、治療群における平均腫瘍容積の変化、及びdC=
病期分類時の値と比較した、対照群における平均腫瘍容積の変化)。
CO2窒息により人道的に安楽死させ、且つ腫瘍を摘出し、Lysing Matrix Aチューブに移し
た。プロテアーゼインヒビターカクテル及びホスファターゼインヒビターカクテルのセッ
トI及びIIを含有するRIPA溶解緩衝液(500μL)を添加し、次に試料を、Fast Prep装置を用
いてホモジナイズした。試料を、氷上で30分間急冷し、追加のホモジナイゼーションサイ
クルを行い、その後14,000rpm、10分間、4℃での遠心分離により清澄化した。清澄化され
た溶解液を、新たな1.5mLチューブに移し、タンパク質含量を測定した。その後溶解液を
、分析まで、-80℃で貯蔵した。試料を、本質的に先に記載のようなウェスタンブロット
により分析した(実施例のセクション2.4参照)。
図36に示したように、総及びpHER3の両方のタンパク質レベルは、変異体BRAFを発現す
る培養物中で成長されたHT-29結腸直腸癌細胞、及び変異体KRASを発現するLOVO細胞にお
いて、MEK阻害剤セルメチニブによる処置後、増加した(図36、各々、左側及び中央のブロ
ット)。HER3の増加は、セルメチニブ処置後、mut-BRAFを発現するColo205細胞、並びに変
異体KRASを発現するDLD-1細胞及びHCT細胞においても認められた(図36、右側ブロット、
及びデータは示さず)。これらの増加は、セルメチニブ投与量1μM及び10μMの両方で生じ
た。セルメチニブの活性は、1μM及び10μMの両方の投与量での全ての細胞株中のpERKの
減少により確認された。MEKの阻害は、ERKリン酸化の阻害を生じる。抗-HER3抗体である2
C2は、HT-29細胞及びLOVO細胞において、総及びpHER3の両方を阻害した。2C2はまた、Col
o205細胞及びDLD-1細胞において、HER3を低下した。加えて、2C2のセルメチニブによる同
時処置は、HT-29細胞、LOVO細胞及びDLD-1細胞において、セルメチニブによる、総HER3及
びpHER3の誘導をブロックした(図36、及びデータは示さず)。未処置細胞又はセルメチニ
ブ処置細胞のいずれかにおいて、検出可能なHER3又はpHER3は、変異体KRASを発現するSW4
80結腸直腸癌細胞においては、認められなかった。
、A549 NSCLC異種移植片において、セルメチニブ単独と比べ、相加的抗腫瘍効率を生じた
。相加的作用はまた、追加治療の非存在下での腫瘍の再成長の遅延においても認めること
ができる(上側パネル)。2C2-YTEの30mg/kgのセルメチニブ75mg/kgとの組合せで4日間治療
したマウスからの腫瘍溶解液のウェスタンブロット分析は、ホスホ-HER3及びホスホ-ERK
は、完全に阻害されたことを示した。両方のマーカーは、2C2-YTE及びセルメチニブの作
用に関する薬力学の測定値(read-out)として役立つ。同様の知見が、CRC異種移植片モデ
ルHT-29(図37B、下側及び上側パネル)及びLoVo(図37C、上側及び下側パネル)でも得られ
た。加えて、ホスホ-AKTは、2C2-YTEの30mg/kgのセルメチニブ75mg/kgとの組合せで治療
したHT-29腫瘍溶解液において、単独治療に比べ減少することが認められた(図37B、下側
パネル)。75mg/kgでのセルメチニブ単独による治療は、2C2-YTEとセルメチニブの組合せ
で治療した腫瘍において防止された、LoVo腫瘍抽出物におけるホスホ-HER3の増加に繋が
った(図37C、下側パネル)。同様の結果が、HARA-Bにおいて認められた(データは示さず)
。
、MEK阻害剤に反応して増加することが認められ、このことは、HER3経路は、MEK阻害剤に
対する抵抗において役割を果たし得ることを指摘している。多くの同所性CRC及びLC異種
移植片モデル試験において、2C2-YTEとセルメチニブの組合せは、いずれかの薬剤単独の
抗腫瘍効率を増大することが認められた。これらのデータは、抗-腫瘍活性を増強し且つ
抵抗性を防止するための、2C2のセルメチニブのようなMEK阻害剤との組合せの使用を裏付
けている。
(4.18.1. 方法)
20匹の雄のカニクイザル(Macaca fascicularis)を、4つの群(1群に動物5匹)に割り当て
、媒体対照又は2C2-YTEの10、30又は120mg/kgの合計5回投与量を投与した。動物には、投
与量容積5mL/kgの5分間のIV注入により、週1回投与した。1群につき3匹の動物は、32日目
に剖検し(投薬相の29日目の最終投与量投与後3日目)、及び1群につき2匹の動物は、回復
相の43日目に剖検した(投薬相の29日目の最終投与量投与後45日目)。毒性評価は、死亡率
、臨床知見、体重、投与部位刺激スコア、臨床及び解剖病理学的評価を含む多くの要因を
基にした。
検出システムによる、抗-HER3サンドイッチフォーマットを用い、可溶性HER3(sHER3)レベ
ルについて分析した。Meso Scale Discovery(MSD)露出(bare)96-ウェルプレート(MSD社、
カタログ番号L15XA-6/L11XA-6)を、2C2-YTEの0.5ug/mlにより一晩、2〜8℃でコーティン
グし、引き続きMSDブロッカーA(MSD社、カタログ番号R93BA-1)によりブロックした。参照
標準及び品質対照(QC)、及びカニクイザル血漿の未希釈被験試料を、ブロックしたプレー
トへ、室温で1時間添加した。ビオチン化された抗-hErbB3/HER3抗体(R&D Systems社、カ
タログ番号BAM348)、引き続きSulfo-TAG(MSD社、カタログ番号R32AD-1)の添加は、電気化
学的に刺激した際に、光放出を生じた。このECLシグナルを捕獲し、MSD Sector Imager 2
400において記録した。発生した光の量は、カニクイザル血漿試料中のsHER3の量に直接相
関した。生データ(ECLカウント数)を、SOFTmax(登録商標)PROへ転送した。組換えヒトHER
3標準の標準曲線を、5-パラメータフィットプログラムを用いてフィットさせた。カニク
イザル血漿HER3濃度を、SOFTmax PROの統計関数を用い、この標準曲線を基に計算した。
mm円形を、動物の皮膚上に描き、且つ0.1mg/mLのPBS又はHRGの〜100μLを、各円形の中央
に皮内注入した。およそ20分間後に、各注入部位から皮膚試料を収集し、急速凍結した。
あるいは、各々から対合のある生検試料を収集し(先行する皮内注入なし)、100μg/mL HR
Gを含む又は含まない培養培地内で、およそ30分間室温でインキュベーションし、引き続
き氷冷PBSで2回洗浄した。次に洗浄した試料を、急速凍結した。その後組織を、Fast Pre
p装置(MP Biomedicals社)を用い、RIPA溶解緩衝液及びプロテアーゼインヒビターカクテ
ル(Sigma-Aldrich社)並びにホスファターゼインヒビターカクテルのセットI及びII(EMD-M
illipore社)を含むLysing Matrix Aチューブ(MP Biomedicals社)内でホモジナイズした。
次に試料を、凍結−解凍サイクル及び追加のホモジナイゼーションサイクルに供し、その
後14,000rpm、5分間、4℃での遠心分離により清澄化させた。清澄化された溶解液を、新
たな1.5mLチューブに移し、タンパク質含量を測定した。総HER3及びpHER3のレベルは、サ
ンドイッチELISAアッセイを用いて決定した。
少なくとも1ヶ月間カニクイザルへIV注入により週1回投与された場合(合計5回投与量)
の2C2-YTEの毒性及び活性を評価するため、並びに6週間の回復期間の後の可逆性、持続性
又は何らかの作用の遅れた出現を評価するために、6週間の回復相を伴う、2C2-YTEの非-G
LP、1ヶ月、反復投与量毒性試験をカニクイザルにおいて実行した。雄のカニクイザルに
おいて、5週間にわたる2C2-YTEの最大120mg/kg/投与量の週1回のIV投与(5分間の注入)の
後に(合計5回投与量)、有害作用は認められなかった。
ビボ及びエクスビボ評価により確認された。循環可溶性HER3の完全な抑制が、静脈内2C2-
YTEを受け取った全ての動物において認められた。皮膚生検のHRGによるエクスビボ刺激は
、pHER3:tHER3比の増加を生じ、このことはカニクイザルの皮膚に存在するHER3は、HER3
の優先的リガンドであるHRGにより活性化され得ることを明らかにしている。HRG-誘導し
たpHER3の完全な抑制は、投薬相の終了時に全ての2C2-YTE処理群で達成された(データは
示さず)。従って、2C2-YTEは、カニクイザル皮膚生検試料中においてインビボ及びエクス
ビボHRG-誘導したHER3リン酸化を、ブロックした。
本文において言及した全ての刊行物及び特許は、個別の刊行物又は特許が各々具体的且
つ個別に引用により本明細書中に組み込まれているように、それらの全体が引用により本
明細書中に組み込まれている。加えて、2011年11月23日に出願された米国特許仮出願第61
/563,092号;2012年6月7日に出願された第61/656,670号;及び、2012年11月5日に出願さ
れた第61/722,558号は、あらゆる目的に関してそれらの全体が引用により組み込まれてい
る。
本件出願は、以下の構成の発明を提供する。
(構成1)
HER3の細胞外ドメイン内のエピトープへ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原-結合断片であって、ここで該結合分子が、CL16又は2C2の重鎖可変領域(VH)及び軽鎖可変領域(VL)を含む抗体又はそれらの抗原-結合断片と同じHER3エピトープへ特異的に結合する、単離された結合分子又はそれらの抗原-結合断片。
(構成2)
HER3へ特異的に結合し、且つCL16又は2C2のVH及びVLを含む抗体又はそれらの抗原-結合断片によるHER3結合を競合的に阻害する、単離された結合分子又はそれらの抗原-結合断片。
(構成3)
前記CL16のVH及びVLが、各々、配列番号:2及び1を含み、且つ2C2のVH及びVLが、各々、配列番号:2及び3を含む、構成1又は2記載の結合分子又はそれらの断片。
(構成4)
抗体又はそれらの抗原-結合断片を含む、構成1〜3のいずれか1記載の結合分子又はそれらの断片。
(構成5)
前記結合分子が、親和性成熟されている、構成1〜4のいずれか1記載の結合分子又はそれらの断片。
(構成6)
抗体VLを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VLが、下記アミノ酸配列を含む:
(a)X 1 は、アミノ酸残基アルギニン(R)又はセリン(S)を表し、
(b)X 2 は、アミノ酸残基セリン(S)又はロイシン(L)を表し、
(c)X 3 は、アミノ酸残基セリン(S)又はグリシン(G)を表し、
(d)X 4 は、アミノ酸残基ロイシン(L)又はプロリン(P)を表し、
(e)X 5 は、アミノ酸残基アルギニン(R)、イソロイシン(I)、プロリン(P)又はセリン(S)を表し、並びに
(f)X 6 は、アミノ酸残基バリン(V)又はアラニン(A)を表す。)、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成7)
FW 1 が配列番号:40又は44を含み、FW 2 が配列番号:41を含み、FW 3 が配列番号:42を含み、及びFW 4 が配列番号:43を含む、構成6記載の結合分子又はそれらの断片。
(構成8)
抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VHが、下記アミノ酸配列を含む:
(構成9)
FW 5 が配列番号:36を含み、FW 6 が配列番号:37を含み、FW 7 が配列番号:38を含み、及びFW 8 が配列番号:39を含む、構成8記載の結合分子又はそれらの断片。
(構成10)
抗体VL及び抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VLが、下記アミノ酸配列を含み:
(a)X 1 は、アミノ酸残基アルギニン(R)又はセリン(S)を表し、
(b)X 2 は、アミノ酸残基セリン(S)又はロイシン(L)を表し、
(c)X 3 は、アミノ酸残基セリン(S)又はグリシン(G)を表し、
(d)X 4 は、アミノ酸残基ロイシン(L)又はプロリン(P)を表し、
(e)X 5 は、アミノ酸残基アルギニン(R)、イソロイシン(I)、プロリン(P)又はセリン(S)を表し、及び
(f)X 6 は、アミノ酸残基バリン(V)又はアラニン(A)を表す。)、
並びに、該VHが、下記アミノ酸配列を含む:
(構成11)
前記FW 1 が配列番号:40又は44を含み、FW 2 が配列番号:41を含み、FW 3 が配列番号:42を含み、FW 4 が配列番号:43を含み、FW 5 が配列番号:36を含み、FW 6 が配列番号:37を含み、FW 7 が配列番号:38を含み、及びFW 8 が配列番号:39を含む、構成10記載の結合分子又はそれらの断片。
(構成12)
抗体又はそれらの抗原-結合断片を含む、構成6〜11のいずれか1記載の結合分子又はそれらの断片。
(構成13)
抗体VLを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VLが、配列番号:18、配列番号:19、又は配列番号:20と同一であるか、又は4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一であるVL相補性決定領域-1(VL-CDR1)アミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成14)
抗体VLを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VLが、配列番号:21と同一であるか、又は4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一であるVL相補性決定領域-2(VL-CDR2)アミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成15)
抗体VLを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VLが、配列番号:22、配列番号:23、配列番号:24、配列番号:25、配列番号:26、配列番号:27、配列番号:28、配列番号:29、又は配列番号:30と同一であるか、又は4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一である相補性決定領域-3(VL-CDR3)アミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成16)
抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VHが、配列番号:31と同一であるか、又は4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一である相補性決定領域-1(VH-CDR1)アミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成17)
抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VHが、配列番号:32、配列番号:33、又は配列番号:34と同一であるか、又は4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一である相補性決定領域-2(VH-CDR2)アミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成18)
抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VHが、配列番号:35と同一であるか、又は4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一である相補性決定領域-3(VH-CDR3)アミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成19)
抗体VLを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VLが、各々、配列番号:18、21及び22、配列番号:18、21、及び26、配列番号:18、21、及び27、配列番号:20、21、及び22、配列番号:19、21、及び22、配列番号:18、21、及び25、配列番号:18、21、及び28、配列番号:18、21、及び29、配列番号:18、21、及び30、配列番号:18、21、及び23、配列番号:19、21、及び23、配列番号:20、21、及び23、配列番号:18、21、及び24、又は配列番号:18、21、及び25と同一であるか、又は1つ以上のVL-CDRにおいて、4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一であるVL-CDR1、VL-CDR2、及びVL-CDR3アミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成20)
抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VHが、各々、配列番号:31、32及び35、配列番号:31、33、及び35、又は配列番号:31、34、及び35と同一であるか、又は1つ以上のVH-CDRにおいて、4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一であるVH-CDR1、VH-CDR2、及びVH-CDR3アミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成21)
前記結合分子又はそれらの断片が、抗体又はそれらの抗原-結合断片を含む、構成13〜20のいずれか1記載の結合分子。
(構成22)
各々、配列番号:18、21、22、31、32、及び35、配列番号:18、21、26、31、32及び35、配列番号:18、21、27、31、32及び35、配列番号:20、21、22、31、32及び35、配列番号:19、21、22、31、32及び35、配列番号:18、21、25、31、32及び35、配列番号:18、21、28、31、32及び35、配列番号:18、21、29、31、32及び35、配列番号:18、21、30、31、32及び35、配列番号:18、21、23、31、32及び35、配列番号:19、21、23、31、32及び35、配列番号:20、21、23、31、32及び35、配列番号:18、21、24、31、32及び35、又は配列番号:18、21、25、31、32及び35と同一であるか、又は1つ以上のCDRにおいて、4、3、2若しくは1つのアミノ酸置換以外は同一であるVL-CDR1、VL-CRD2、VL-CDR3、VH-CDR1、VH-CDR2、及びVH-CDR3アミノ酸配列を含んでなる、VL及びVHを含むHER3へ特異的に結合する、単離された抗体又はそれらの抗原-結合断片。
(構成23)
抗体VL及び抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VLが、配列番号:1、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:5、配列番号:6、配列番号:7、配列番号:8、配列番号:9、配列番号:10、配列番号:11、配列番号:14、配列番号:15、配列番号:16、及び配列番号:17からなる群から選択される参照アミノ酸配列と少なくとも約90%〜約100%同一であるアミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成24)
抗体VL及び抗体VHを含むHER3へ特異的に結合する単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該VHが、配列番号:2、配列番号:12及び配列番号:13からなる群から選択される参照アミノ酸配列と少なくとも約90%〜約100%同一であるアミノ酸配列を含んでなる、前記単離された結合分子又はそれらの抗原結合断片。
(構成25)
抗体又はそれらの抗原-結合断片を含む、構成23又は24記載の結合分子又はそれらの断片。
(構成26)
HER3へ特異的に結合する単離された抗体又はそれらの抗原結合断片であって、ここで該抗体又は抗原結合断片が、配列番号:1、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:5、配列番号:6、配列番号:7、配列番号:8、配列番号:9、配列番号:10、配列番号:11、配列番号:14、配列番号:15、配列番号:16、及び配列番号:17からなる群から選択される参照アミノ酸配列と少なくとも約90%〜約100%同一である配列を含んでなるVLを含み、且つ該抗体又は抗原結合断片が、配列番号:2、配列番号:12及び配列番号:13からなる群から選択される参照アミノ酸配列と少なくとも約90%〜約100%同一である配列を含んでなるVHを含む、前記単離された抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成27)
表4に提供されたVLコンセンサス配列を含んでなるVL、及び表4に提供されたVHコンセンサス配列を含んでなるVHを含む、単離された抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成28)
配列番号:3を含むVL及び配列番号:2を含むVHを含む、単離された抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成29)
重鎖定常領域又はそれらの断片を含む、構成4、12、21、22、又は25〜28のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原-結合断片。
(構成30)
前記重鎖定常領域又はそれらの断片が、IgG定常領域である、構成29記載の抗体又はそれらの抗原-結合断片。
(構成31)
前記IgG定常領域が、IgG1定常領域、IgG2定常領域、IgG3定常領域及びIgG4定常領域から選択される、構成30記載の抗体又はそれらの抗原-結合断片。
(構成32)
前記IgG定常領域が、IgG1定常領域である、構成30記載の抗体又はそれらの抗原-結合断片。
(構成33)
ヒトカッパ定常領域及びヒトラムダ定常領域からなる群から選択される軽鎖定常領域を含む、構成4、12、21、22、又は25〜32のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原-結合断片。
(構成34)
前記IgG定常ドメインが、野生型IgG定常ドメインに対する1つ以上のアミノ酸置換を含み、ここで修飾されたIgGが、野生型IgG定常ドメインを有するIgGの半減期と比べ増大した半減期を有する、構成30〜32のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成35)
前記IgG定常ドメインが、位置251-257、285-290、308-314、385-389、及び428-436のアミノ酸残基の1つ以上のアミノ酸置換を含み、ここで番号付けはKabatに定めるEUインデックスに従う、構成31記載の単離された抗体又は抗原結合断片。
(構成36)
少なくとも1つのIgG定常ドメインアミノ酸置換が:
(a)位置252のアミノ酸の、チロシン(Y)、フェニルアラニン(F)、トリプトファン(W)、又はトレオニン(T)による置換、
(b)位置254のアミノ酸の、トレオニン(T)による置換、
(c)位置256のアミノ酸の、セリン(S)、アルギニン(R)、グルタミン(Q)、グルタミン酸(E)、アスパラギン酸(D)、又はトレオニン(T)による置換、
(d)位置257のアミノ酸の、ロイシン(L)による置換、
(e)位置309のアミノ酸の、プロリン(P)による置換、
(f)位置311のアミノ酸の、セリン(S)による置換、
(g)位置428のアミノ酸の、トレオニン(T)、ロイシン(L)、フェニルアラニン(F)、又はセリン(S)による置換、
(h)位置433のアミノ酸の、アルギニン(R)、セリン(S)、イソロイシン(I)、プロリン(P)、又はグルタミン(Q)による置換、
(i)位置434のアミノ酸の、トリプトファン(W)、メチオニン(M)、セリン(S)、ヒスチジン(H)、フェニルアラニン(F)、又はチロシンによる置換、並びに
(j)前記置換の2つ以上の組合せ:からなる群から選択され、ここで番号付けはKabatに定めるEUインデックスに従う、構成35記載の単離された抗体又は抗原結合断片。
(構成37)
前記ヒトIgG定常ドメインが、位置252、254、及び256に、野生型ヒトIgG定常ドメインに対するアミノ酸置換を含み、ここで:
(a)位置252のアミノ酸は、チロシン(Y)により置換され、
(b)位置254のアミノ酸は、トレオニン(T)により置換され、並びに
(c)位置256のアミノ酸は、グルタミン酸(E)により置換され、ここで番号付けはKabatに定めるEUインデックスに従う、構成36記載の単離された抗体又は抗原結合断片。
(構成38)
前記位置434のアミノ酸が、トリプトファン(W)、メチオニン(M)、チロシン(Y)、及びセリン(S)からなる群から選択されるアミノ酸により置換され、ここで番号付けはKabatに定めるEUインデックスに従う、構成37記載の単離された抗体又は抗原結合断片。
(構成39)
前記位置428のアミノ酸が、トレオニン(T)、ロイシン(L)、フェニルアラニン(F)、及びセリン(S)からなる群から選択されるアミノ酸により置換され、ここで番号付けはKabatに定めるEUインデックスに従う、構成38記載の単離された抗体又は抗原結合断片。
(構成40)
前記位置257のアミノ酸が、ロイシン(L)により置換され、且つKabat位置434のアミノ酸が、チロシン(Y)により置換され、ここで番号付けはKabatに定めるEUインデックスに従う、構成38記載の単離された抗体又は抗原結合断片。
(構成41)
前記Kabat位置428のアミノ酸が、ロイシン(L)により置換され、且つKabat位置434のアミノ酸が、セリン(S)により置換される、構成39記載の単離された抗体又は抗原結合断片。
(構成42)
配列番号:3の抗体VL、配列番号:2の抗体VH、及び配列番号:46のIgG1定常領域を含む、HER3の細胞外ドメイン内のエピトープへ特異的に結合する、単離された結合分子又はそれらの抗原-結合断片。
(構成43)
配列番号:3の抗体VL、配列番号:2の抗体VH、及び配列番号:46のIgG1定常領域からなる、HER3の細胞外ドメイン内のエピトープに特異的に結合する、単離された結合分子又はそれらの抗原-結合断片。
(構成44)
前記ヒトIgG定常領域が、位置252、254、及び256に、野生型ヒトIgG定常ドメインに対するアミノ酸置換を含み、ここで番号付けはKabatに定めるEUインデックスに従い、且つここで:
(a)位置252のアミノ酸は、チロシン(Y)により置換され、
(b)位置254のアミノ酸は、トレオニン(T)により置換され、並びに
(c)位置256のアミノ酸は、グルタミン酸(E)により置換される、構成29又は30記載の単離された抗体又は抗原結合断片。
(構成45)
前記抗体が、完全ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、組換え抗体、多重特異性抗体、又はそれらの抗原-結合断片である、構成4、12、21、22、又は25〜44のいずれか1記載の抗体又は抗原-結合断片。
(構成46)
Fv、Fab、F(ab')2、Fab'、dsFv、scFv、及びsc(Fv)2である、構成4、12、21、22、又は25〜45のいずれか1記載の抗原-結合断片。
(構成47)
少なくとも1種の異種物質にコンジュゲートされている、構成4、12、21、22、又は25〜46のいずれか1記載の抗体又はそれらの断片。
(構成48)
構成4、12、21、22、又は25〜47のいずれか1記載の抗体又はそれらの断片、及び担体を含有する、組成物。
(構成49)
構成4、12、21、22、又は25〜48のいずれか1記載の抗体をコードしている配列を含む核酸。
(構成50)
構成49記載の核酸を含有する、組成物。
(構成51)
構成49記載の核酸を含む、ベクター。
(構成52)
構成49記載の核酸配列、構成50記載の組成物、又は構成51記載のベクターを含む、宿主細胞。
(構成53)
(a)構成46記載の細胞を培養すること;及び、(b)抗体又はそれらの抗原-結合断片を単離すること:を含む、構成4、12、21、22、又は25〜46のいずれか1記載の抗体又は抗原-結合断片の製造方法。
(構成54)
更に抗癌剤を含有する、構成48記載の組成物。
(構成55)
標識されている、構成4、12、21、22、又は25〜47のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片を含有する診断薬。
(構成56)
構成4、12、21、22、若しくは25〜47のいずれか1記載の抗体、又は構成48若しくは54のいずれか1記載の組成物を備える、キット。
(構成57)
抗体依存性細胞性細胞傷害(ADCC)を誘導しない、構成4、12、21、22、又は25〜47のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成58)
BT-474細胞、SkBR3細胞、又はそれらの組合せにおいて、抗体依存性細胞性細胞傷害(ADCC)を誘導しない、構成57記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成59)
HER3のアンタゴニストである、構成4、12、21、22、25〜47、57又は52のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成60)
BT-474細胞、SkBR3細胞、MDA-MB-175細胞、MDA-MB-361細胞、A549細胞、HARA-B細胞、HMCB細胞、HCC827細胞、MCF-7細胞、MKN45細胞、Kato III細胞、ゲフィチニブ-抵抗性HCC827細胞、又は列挙された細胞の2種以上の組合せからなる群から選択される細胞における、HER3のアンタゴニストである、構成59記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成61)
前記HER3が、ヒトHER3である、構成59又は60のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成62)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、細胞増殖を減少することができる、構成4、12、21、22、25〜47又は57〜61のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成63)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、BT-474細胞、MDA-MB-175細胞、MDA-MB-361細胞、HMCB細胞、又は列挙された細胞の2種以上の組合せにおける細胞増殖を減少することができる、構成62記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成64)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、HER3-媒介性シグナル伝達を減少することができる、構成4、12、21、22、25〜47又は57〜63のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成65)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、BT-474細胞、SkBR3細胞、MDA-MB-175細胞、MDA-MB-361細胞、A549細胞、HARA-B細胞、HMCB細胞、HCC827細胞、MCF-7細胞、MKN45細胞、Kato III細胞、ゲフィチニブ-抵抗性HCC827細胞、又は列挙された細胞の2種以上の組合せからなる群から選択される細胞におけるHER3-媒介性シグナル伝達を減少することができる、構成64記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成66)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、リガンド-依存性HER3リン酸化を減少することができる、構成4、12、21、22、25〜47又は57〜65のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成67)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、MCF-7細胞、HMCB細胞、HCC827細胞、MKN45細胞、Kato III細胞、又は列挙された細胞の2種以上の組合せにおけるリガンド-依存性HER3リン酸化を減少することができる、構成66記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成68)
前記リガンド-依存性HER3リン酸化が、HRG-駆動された、EGFR-駆動された、cMET-駆動された、又はFGFR2-駆動されたか、又はそれらの組合せである、構成66又は67のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成69)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、Aktプロテインキナーゼのリガンド-依存性リン酸化を減少することができる、構成4、12、21、22、25〜47又は57〜68のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成70)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、A549細胞、HMCB細胞、MKN45細胞、Kato III細胞、又は列挙された細胞の2種以上の組合せにおけるAktプロテインキナーゼのリガンド-依存性リン酸化を減少することができる、構成69記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成71)
前記リガンド-依存性Aktリン酸化が、cMET-駆動された、FGFR2-駆動されたか、又は両方である、構成69又は70のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成72)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、リガンド-非依存性AKT又はHER3リン酸化を減少することができる、構成4、12、21、22、25〜47又は57〜71のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成73)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、BT-474細胞における、リガンド-非依存性AKTリン酸化、HER3リン酸化、又は両方を減少することができる、構成72記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成74)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、EGFRを標的化するチロシンキナーゼ阻害薬(TKI)に対し抵抗性のある細胞におけるHER3リン酸化を減少することができる、構成4、12、21、22、25〜47又は57〜73のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成75)
前記抗体又は抗原結合断片のHER3への結合が、ゲフィチニブ-抵抗性HCC827細胞におけるEGFRを標的化するチロシンキナーゼ阻害薬(TKI)に対し抵抗性のある細胞におけるHER3リン酸化を減少することができる、構成74記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成76)
前記抗体又は抗原結合断片が、ヒトHER3、カニクイザルHER3、及びマウスHER3に結合することができる、構成4、12、21、22、25〜47又は57〜75のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片。
(構成77)
前記細胞を、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片と接触させることを含む、HER3を発現している細胞の成長を阻害する方法。
(構成78)
構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片の治療有効量を対象へ投与することを含む、対象における癌の治療方法。
(構成79)
前記癌が、結腸癌、肺癌、胃癌、乳癌、及び頭頸部癌からなる群から選択される、構成78記載の方法。
(構成80)
前記癌が、KRAS変異を含む細胞を含んでなる、構成79記載の方法。
(構成81)
前記KRAS変異が、ヒトKRAS遺伝子のコドン12の変異を含む、構成80記載の方法。
(構成82)
前記対象がヒトである、構成78〜81のいずれか1記載の方法。
(構成83)
構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76記載の抗体又はそれらの抗原結合断片である第一の薬剤の治療有効量を、第一の薬剤以外の抗癌剤である第二の薬剤の治療有効量と組合せて、対象へ投与することを含む、対象における癌の治療方法。
(構成84)
前記第一の薬剤及び第二の薬剤の組合せが、相乗的に作用する、構成83記載の方法。
(構成85)
前記第二の薬剤が、EGFR阻害剤、HER2阻害剤、HER3阻害剤又はMEK阻害剤である、構成83又は84のいずれか1記載の方法。
(構成86)
前記第二の薬剤が、抗体又はそれらの抗原結合断片を含有する、構成83〜85のいずれか1記載の方法。
(構成87)
前記第二の薬剤が、上皮細胞成長因子受容体(EGFR)へ特異的に結合する、構成86記載の方法。
(構成88)
前記第二の薬剤が、セツキシマブ、パニツムマブ、マツズマブ又はニモツズマブである、構成83〜87のいずれか1記載の方法。
(構成89)
前記第二の薬剤が、HER2に特異的に結合する、構成86記載の方法。
(構成90)
前記第二の薬剤が、トラスツズマブ、トラスツズマブエムタンシン、ペルツズマブ、MM-111又はペルツズマブである、構成83〜87及び89のいずれか1記載の方法。
(構成91)
ゲフィチニブ、カネルチニブ、ラパチニブ、エルロチニブ、アファチニブ、ネラチニブ、セルメチニブ、WX-554、セルメチニブ、トラメチニブ、レファメチニブ、E-6201及びMEK-162からなる群から選択される、構成85記載の方法。
(構成92)
構成4、12、21、22、25〜47又は57〜75のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片の治療有効量と、細胞を接触させることを含む、チロシンキナーゼ阻害薬に抵抗性である細胞の成長を阻害する方法。
(構成93)
構成4、12、21、22、25〜47又は57〜75のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片の治療有効量を対象へ投与することを含む、対象におけるチロシンキナーゼ阻害薬への抵抗性を治療する方法。
(構成94)
前記チロシンキナーゼ阻害薬が、EGFR又はHER2を標的化する、構成92又は93のいずれか1記載の方法。
(構成95)
構成4、12、21、22、25〜47又は57〜75のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片の治療有効量と、細胞を接触させることを含む、トレオニンキナーゼ阻害剤に抵抗性である細胞の成長を阻害する方法。
(構成96)
構成4、12、21、22、25〜47又は57〜75のいずれか1記載の抗体又は抗原結合断片の治療有効量を対象へ投与することを含む、対象におけるトレオニン阻害剤への抵抗性を治療する方法。
(構成97)
前記トレオニンキナーゼ阻害剤が、MEKを標的化する、構成95又は96記載の方法。
(構成98)
前記抗体又はそれらの抗原結合断片がBiacore(商標)チップに結合されているBiacore(商標)表面プラズモン共鳴アッセイにより測定された、約0.45nM(±0.05nM)又はそれよりも優れた解離定数(K D )により特徴づけられる親和性で、HER3ポリペプチド又はそれらの断片へ、特異的に結合することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成99)
HER3ポリペプチド又はそれらの断片がBiacore(商標)チップに結合されているBiacore(商標)表面プラズモン共鳴アッセイにより測定された、約0.1nM又はそれよりも優れた解離定数(K D )により特徴づけられる親和性で、HER3ポリペプチド又はそれらの断片へ、特異的に結合することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成100)
抗体若しくはそれらの抗原結合断片がBiacore(商標)チップに結合されているBiacore(商標)表面プラズモン共鳴アッセイにより測定された、K on 1×10 5 M −1 s −1 〜6×10 5 M −1 s −1 及び/又はK off 0.5×10 −4 s −1 〜2.0×10 −4 s −1 により特徴づけられる親和性で、HER3ポリペプチド又はそれらの断片へ、特異的に結合することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成101)
ELISAにより測定された、約30ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、HRG-駆動されたMCF-7細胞におけるHER3リン酸化を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成102)
ELISAにより測定された、約10ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、HRG-駆動されたMCF-7細胞におけるHER3リン酸化を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成103)
約0.90μg/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、MDAMB-175細胞における細胞成長を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成104)
約0.15μg/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、MDAMB-175細胞における細胞成長を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成105)
約0.2μg/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、HMCB細胞における細胞成長を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成106)
約0.03μg/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、HMCB細胞における細胞成長を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成107)
約20ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、HCC827細胞におけるHER3リン酸化を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成108)
約2ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、HCC827細胞におけるHER3リン酸化を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成109)
約25ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、チロシンキナーゼ阻害薬に対し抵抗性のHCC827細胞におけるHER3リン酸化を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成110)
約5ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、チロシンキナーゼ阻害薬に対し抵抗性のHCC827細胞におけるHER3リン酸化を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成111)
約10ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、MKN45細胞におけるHER3リン酸化を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成112)
約5ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、MKN45細胞におけるHER3リン酸化を特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成113)
約10ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、MKN45細胞におけるpAKTを特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成114)
約5ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、MKN45細胞におけるpAKTを特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成115)
約8ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、Kato III細胞におけるpHERを特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成116)
約1ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、Kato III細胞におけるpHERを特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成117)
約5ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、Kato III細胞におけるpAKTを特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成118)
約1ng/mL又はそれよりも優れたIC 50 で、Kato III細胞におけるpAKTを特異的に抑制することができる、構成4、12、21、22、25〜47、又は57〜76のいずれか1記載の抗体又はそれらの抗原結合断片。
(構成119)
対象由来の皮膚生検標本中のリン酸化されたHER3のレベルを検出することを含む、HER3の活性レベルを検出するエクスビボ方法であって、ここで該皮膚が生検の前又は後にHRGにより処理される、方法。
Claims (19)
- 抗体可変軽鎖領域(VL)及び抗体可変重鎖領域(VH)を含む、HER3へ特異的に結合する抗体又はHER3へ特異的に結合するその抗原結合断片であって、
(a)該VLが、それぞれ、配列番号:19、配列番号:21、及び配列番号:23を含む、VL相補性決定領域(CDR):VL-CDR1、VL-CDR2、及びVL-CDR3を含み、かつ
(b)該VHが、それぞれ、配列番号:31、配列番号:32、及び配列番号:35を含む、VH CDR:VH-CDR1、VH-CDR2、及びVH-CDR3を含み、かつ
該VLが、配列番号:3のアミノ酸配列と少なくとも90%同一であるアミノ酸配列を含み、かつ該VHが、配列番号:2のアミノ酸配列と少なくとも90%同一であるアミノ酸配列を含む、前記抗体又はその抗原結合断片(ただし、該抗体又は抗原結合断片は、配列番号:3のアミノ酸配列と100%同一であるアミノ酸配列を含むVL、及び、配列番号:2のアミノ酸配列と100%同一であるアミノ酸配列を含むVHの両方を含むことはできない、ということを条件とする)。 - 前記VLが、配列番号:3のアミノ酸配列と少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含み、かつ前記VHが、配列番号:2のアミノ酸配列と少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含む、請求項1記載の抗体又は抗原結合断片。
- 重鎖定常領域を含む、請求項1又は2記載の抗体又はその抗原結合断片。
- 前記重鎖定常領域が、ヒトIgG1定常領域、ヒトIgG2定常領域、ヒトIgG3定常領域、及びヒトIgG4定常領域から選択されるIgG定常領域である、請求項3記載の抗体又はその抗原結合断片。
- ヒトカッパ定常領域及びヒトラムダ定常領域からなる群から選択される軽鎖定常領域を含む、請求項4記載の抗体又はその抗原結合断片。
- IgG定常領域を含み、少なくとも1つのIgG定常ドメインアミノ酸置換が:
(a)位置252のアミノ酸の、チロシン(Y)、フェニルアラニン(F)、トリプトファン(W)、又はトレオニン(T)による置換、
(b)位置254のアミノ酸の、トレオニン(T)による置換、
(c)位置256のアミノ酸の、セリン(S)、アルギニン(R)、グルタミン(Q)、グルタミン酸(E)、アスパラギン酸(D)、又はトレオニン(T)による置換、
(d)位置257のアミノ酸の、ロイシン(L)による置換、
(e)位置309のアミノ酸の、プロリン(P)による置換、
(f)位置311のアミノ酸の、セリン(S)による置換、
(g)位置428のアミノ酸の、トレオニン(T)、ロイシン(L)、フェニルアラニン(F)、又はセリン(S)による置換、
(h)位置433のアミノ酸の、アルギニン(R)、セリン(S)、イソロイシン(I)、プロリン(P)、又はグルタミン(Q)による置換、
(i)位置434のアミノ酸の、トリプトファン(W)、メチオニン(M)、セリン(S)、ヒスチジン(H)、フェニルアラニン(F)、又はチロシンによる置換、並びに
(j)前記置換の2つ以上の組合せ:からなる群から選択され、ここで番号付けはKabatのEUインデックスに従う、請求項4又は5記載の抗体又はその抗原結合断片。 - 前記抗体が、完全ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、組換え抗体、多重特異性抗体、又はそれらの抗原結合断片であり、該抗原結合断片が、Fv、Fab、F(ab')2、Fab'、dsFv、scFv、又はsc(Fv)2である、請求項1〜6のいずれか1項記載の抗体又はその抗原結合断片。
- (i)ヒトラムダ軽鎖定常領域、及び、(ii)ヒトIgG1重鎖定常領域を含み、前記ヒトIgG1定常領域が、位置252、254、及び256に野生型ヒトIgG1定常ドメインに対するアミノ酸置換を含み、該番号付けはKabatのEUインデックスに従い、
(a)位置252のアミノ酸(メチオニン)は、チロシン(Y)で置換され、
(b)位置254のアミノ酸(セリン)は、トレオニン(T)で置換され、かつ
(c)位置256のアミノ酸(トレオニン)は、グルタミン酸(E)で置換される、
請求項6記載の抗体又はその抗原結合断片。 - 請求項1〜8のいずれか一項記載の抗体又はその抗原結合断片を含有する、組成物。
- 請求項1〜8のいずれか一項記載の抗体又はその抗原結合断片をコードしている配列を含む核酸。
- 請求項10記載の核酸を含む、ベクター。
- 請求項10記載の核酸又は請求項11記載のベクターを含む、宿主細胞。
- (a)請求項12記載の細胞を培養すること;及び(b)抗体又はその抗原結合断片を単離すること:を含む、請求項1〜8のいずれか一項記載の抗体又は抗原結合断片の製造方法。
- 請求項1〜8のいずれか一項記載の抗体、又は請求項9記載の組成物を備える、キット。
- HER3を発現する細胞の増殖の阻害において使用するための、請求項1〜8のいずれか1項記載の抗体又は抗原結合断片。
- 前記HER3を発現する細胞が、ヒト頭頸部腫瘍細胞、ヒト非小細胞肺癌細胞、ヒト結腸直腸腫瘍細胞、ヒト前立腺腫瘍細胞、又は、ヒト乳癌細胞である、請求項15記載の抗体又は抗原結合断片。
- 請求項1〜8のいずれか一項記載の抗体又はその抗原結合断片の治療有効量を対象へ投与することを含む、対象における癌の治療において使用するための、請求項1〜8のいずれか1項記載の抗体又は抗原結合断片。
- 前記癌が、結腸癌、肺癌、胃癌、乳癌、頭頸部癌、及びメラノーマからなる群から選択され、任意に、該癌が、KRAS変異を含む細胞を含む、請求項17記載の使用のための請求項1〜8のいずれか1項記載の抗体又は抗原結合断片。
- 請求項1〜8のいずれか1項記載の抗体又はその抗原結合断片である第一の薬剤の治療有効量を、第一の薬剤以外の抗癌剤である第二の薬剤の治療有効量と組合せて、対象へ投与することを含む癌の治療において使用するための請求項1〜8のいずれか1項記載の抗体又は抗原結合断片。
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