JP6271505B2 - 変異体ライセニンポア - Google Patents

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Description

本発明は、ライセニン（lysenin）の変異形態に関する。本発明は、ライセニンの変異形態を用いる分析物特性決定にも関する。
ナノポアセンシングは、個別の結合または分析物分子と受容体との間の相互作用事象の観察による感知のための手法である。ナノポアセンサーは、大きさナノメートルの単一ポアを絶縁膜中に置き、分析物分子の存在下でポアを通る電圧駆動イオン輸送を測定することによって作製され得る。分析物の同一性は、その特徴的な電流サイン、特に電流遮断の持続時間および程度ならびに電流レベルの変動を通じて明らかにされる。
迅速で安価な核酸（例えばＤＮＡまたはＲＮＡ）配列決定技術が、幅広い応用にわたって現在必要である。既存の技術は、主にそれらが、大量の核酸を生成するための増幅技術に依存し、シグナル検出のために多量の専門的な蛍光化学物質を必要とするために、遅く高価である。ナノポアセンシングは、必要なヌクレオチドおよび試薬の量を減らすことによって迅速で安価な核酸配列決定を提供する可能性を有する。
ナノポアセンシングを用いて核酸を配列決定する２つの本質的な構成要素は、（１）ポアを通る核酸移動の制御および（２）核酸ポリマーがポアを通って移動するときのヌクレオチドの識別である。これまではヌクレオチド識別を達成するために核酸はヘモリジン変異体を通っていた。これは、配列依存であることが示されている電流サインを提供した。ヘモリジンポアが用いられる場合に多数のヌクレオチドが、観察される電流に寄与し、観察された電流とポリヌクレオチドチャレンジとの間に直接的関係を作ることも示されている。
ヘモリジンポアの変異を通じてヌクレオチド識別のための電流範囲が改善された一方で、ヌクレオチド間の電流差異をさらに改善できれば配列決定システムはさらに高い性能を有することになる。付加的に、核酸がポアを通って移動するときに、いくつかの電流状態は高い変動を示すことが観察された。いくつかの変異体ヘモリジンポアが他よりもさらに高い変動を示すことも示されている。これらの状態の変動が配列特異的情報を含有する場合がある一方で、システムを簡素化するために低い変動を有するポアを産生することは望ましい。観察される電流に寄与するヌクレオチドの数を低減することも望ましい。
ライセニン（ｅｆＬ１としても公知）は、ミミズ、エイセニア・フェティダ（Eisenia fetida）の体腔液から精製されたポア形成毒素である。それは、ライセニン誘導溶血を阻害するスフィンゴミエリンに特異的に結合する（Yamaji et al.、J. Biol. Chem. 1998; 273(9): 5300-6）。ライセニンの結晶構造はDe Colbis et al.、Structure、2012; 20: 1498-1507に開示されている。
本発明者らは、モノマーとポリヌクレオチドとの相互作用を変更するために修飾され得るライセニンモノマー内の領域を驚くべきことに同定した。この領域は、配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６に対応する。本発明は、ポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力を改善するために１つまたは複数の修飾が同定された領域に作られている変異体モノマーに関する。本発明者らは、新規変異体モノマーを含むポアがポリヌクレオチドと相互作用する増強された能力を有し、それにより配列などのポリヌクレオチドの特性を推定するための特性の改善を示すことも驚くべきことに実証した。変異体ポアは、ヌクレオチド識別の改善を驚くべきことに示す。具体的には変異体ポアは、異なるヌクレオチド間の識別を容易にする電流範囲の増大、および信号対雑音比を増加させる状態変動の低減を驚くべきことに示す。付加的に、ポリヌクレオチドがポアを通って移動するときに電流に寄与するヌクレオチドの数は減少する。これは、ポリヌクレオチドがポアを通って移動するときに観察される電流とポリヌクレオチドとの間の直接的関係を同定することを容易にする。
したがって本発明は、配列番号２に示す配列の変種を含む変異体ライセニンモノマーであって、前記モノマーがポアを形成でき、前記変種が、配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６の領域内にポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力を変更する１つまたは複数の修飾を含む、変異体ライセニンモノマーを提供する。
本発明は、
− ライセニン由来の２つ以上の共有結合的に付着されたモノマーを含む構築物であって、少なくとも１つのモノマーが本発明の変異体ライセニンモノマーである、構築物；
− 本発明の変異体ライセニンモノマーまたは本発明の遺伝子的に融合された構築物をコードしているポリヌクレオチド；
− 十分な数の本発明の変異体ライセニンモノマーを含むライセニン由来のホモオリゴマーポア；
− 少なくとも１つの本発明の変異体ライセニンモノマーを含むライセニン由来のヘテロオリゴマーポア；
− 少なくとも１つの本発明の構築物を含むポア；
− （ａ）標的ポリヌクレオチドを本発明のポアに接触させて、前記標的ポリヌクレオチドが前記ポアを通って移動するようにするステップ、および（ｂ）分析物が前記ポアに対して移動するときに１つまたは複数の測定を行うステップであって、前記測定が標的分析物の１つまたは複数の特性を示し、それにより標的分析物を特性決定するステップを含む、標的分析物を特性決定する方法；
− 本発明のポアとポリヌクレオチド結合タンパク質との複合体を形成するステップおよびそれにより標的ポリヌクレオチドを特性決定するためのセンサーを形成するステップを含む、標的ポリヌクレオチドを特性決定するためのセンサーを形成する方法；
− 本発明のポアとポリヌクレオチド結合タンパク質との複合体を含む標的ポリヌクレオチドを特性決定するためのセンサー；
− 標的分析物を特性決定するための本発明のポアの使用；
− （ａ）本発明のポアおよび（ｂ）ポリヌクレオチド結合タンパク質を含む、標的ポリヌクレオチドを特性決定するためのキット；
− （ａ）本発明の複数のポアおよび（ｂ）複数のポリヌクレオチド結合タンパク質を含む、試料中の標的ポリヌクレオチドを特性決定するための装置；
− 配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６の領域内に、ポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力を変更し、ポアを形成するモノマーの能力に影響を与えない１つまたは複数の修飾を作るステップを含む、配列番号２に示す配列を含むライセニンモノマーのポリヌクレオチドを特性決定するための能力を改善する方法；
− 少なくとも１つの本発明の変異体ライセニンモノマーをライセニン由来の１つまたは複数のモノマーに共有結合的に付着させるステップを含む、本発明の構築物を産生する方法；ならびに
− 少なくとも１つの本発明の変異体モノマーまたは少なくとも１つの本発明の構築物を、十分な数の本発明のモノマー、本発明の構築物またはライセニン由来のモノマーとポアを形成するようにオリゴマー形成させるステップを含む、本発明のポア形成方法
も提供する。
ライセニンナノポア（Ｂと標示）を通るＤＮＡの移動を制御するためのヘリカーゼ（Ａと標示）の使用の模式的例を示す図である。１）コレステロール（cholesterol）タグ（Ｄと標示）を含有するアニールされたプライマーを有するｓｓＤＮＡ基質が二重層（Ｃと標示）のｃｉｓ側（Ｘと標示）に添加される。コレステロール（cholesterol）タグが二重層に結合し、二重層表面に基質を濃縮する。２）ｃｉｓコンパートメントに添加されたヘリカーゼはＤＮＡに結合する。二価金属イオンおよびＮＴＰ基質の存在下でヘリカーゼは、ＤＮＡ（灰色矢印）に沿って移動する。３）印加された電圧下でＤＮＡ基質は、ＤＮＡ上のリーダーセクションを介してナノポアによって捕捉される。ＤＮＡは、ＤＮＡに結合したヘリカーゼがポアの先端に接触し、さらなる未制御なＤＮＡ移行を防ぐまで印加された電位の力の下でポアを通じて引かれる。このプロセスの際にｄｓＤＮＡセクション（プライマーなど）は除去される。ＤＮＡに沿った３’から５方向’へのヘリカーゼの移動は、挿入されたＤＮＡを印加される場と反対にポアの外側に引く（ＤＮＡ移動の方向は黒矢印で示されている）。４）ヘリカーゼは、ＤＮＡをナノポアの外側に引き、ｃｉｓコンパートメントへ戻す。ナノポアを通るＤＮＡの最後のセクションは５’−リーダーである。５）ヘリカーゼがＤＮＡをナノポアの外側へ移動させると、それはｃｉｓコンパートメントに戻って外れる。代替的にＤＮＡが３’末端で捕捉される場合、次いでＤＮＡはｃｉｓからｔｒａｎｓへ（Ｙと標示）３’−５’ヘリカーゼの制御下でポアを通って移動し、最終的に二重層のｔｒａｎｓ側に存在する。 実施例１、２、３、４、５および６において用いられたＤＮＡ基質設計を示す図である。ＤＮＡ基質は、５０Ｔ ５’−リーダー（鎖Ａの破線領域により示される）を有するＰｈｉＸ（配列番号１３、Ａと標示）由来のｓｓＤＮＡの４００塩基セクションからなる。５０Ｔリーダー直後にこの鎖にアニールされるのは、二重層の表面上のＤＮＡを増やすための３’コレステロール（cholesterol）タグ（Ｃと標示）を含有するプライマー（Ｂと標示）であり、捕捉効率を改善する。 ＤＰｈＰＣ二重層に挿入された野生型ライセニンポアの電流トレース（ＡおよびＢについて、ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（分））を示す図である。Ａ）は、ＤＮＡおよびヘリカーゼの非存在下において安定オープンポア電流およそ＋２８０ｐＡが＋１２０ｍＶ（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、野生型ライセニン（配列番号２））で観察されたことを示し、Ｂ）は、ＤＮＡ、ヘリカーゼおよびＡＴＰ（０．３ｎＭ ４００塩基長ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ、（１００ｎＭ、配列番号１５）、１ｍＭ ＡＴＰ）の添加において明確なＤＮＡ捕捉がなく、ナノポアを通るヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動がなかったことを示す。 Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）が制御された様式でライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋ、変異Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋを有する配列番号２）を通ってＤＮＡを移動でき、ＤＮＡがナノポアを通って移動するときに電流における段階的変化を産生したことを示す図である。Ａ）は、約４００ｐＡ（１８０ｍＶ、６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム、０．３ｎＭ ４００塩基長ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、１００ｎＭ Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）、１ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、ライセニン−Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋ（変異Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋを有する配列番号２））のオープンポアレベルから約２００ｐＡへの低い電流遮断として観察されたＤＮＡ捕捉およびＨｅｌ３０８Ｍｂｕ制御４００塩基長ＤＮＡ移動の電流トレース例（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（分））を示す。星印は、ヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動を示す。印加された電位下で、ヘリカーゼ結合を有するＤＮＡはライセニンナノポアによって捕捉される。これは、オープンポアレベル（約４００ｐＡ）からＤＮＡレベル（約２２０ｐＡ）への電流における遮断を生じる。Ｂ）は、上のトレースにおけるヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動の拡大図（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（分））を示す。ＤＮＡレベルは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。 Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）がライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎ、変異Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎを有する配列番号２）を通ってＤＮＡを制御された様式で移動でき、ＤＮＡがナノポアを通って移動するときに電流における段階的変化を産生したことを示す図である。Ａ）は、典型的Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ制御４００塩基長ＤＮＡ移動（１２０ｍＶ、６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム、０．３ｎＭ ４００塩基長ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、１００ｎＭ Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）、１ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、ライセニン−Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎ（変異Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎを有する配列番号２））の電流トレース例（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（分））を示す。印加された電位下でＤＮＡはライセニンナノポアに捕捉される。このライセニン変異体は、ＷＴライセニンと対比して高いレベルのＤＮＡ捕捉を示す。ポア中に捕捉されたＤＮＡは、オープンポアレベル（約２８０ｐＡ）からＤＮＡレベル（約１１０ｐＡ）への電流における遮断を生じる。ヘリカーゼ結合を有するＤＮＡは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。ヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動は星印によって示される。Ｂ）上のトレースにおける典型的ヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（分））の１つの拡大図。ＤＮＡレベルは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。 Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）がライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａを有する配列番号２）を通ってＤＮＡを制御された様式で移動でき、ＤＮＡがナノポアを通って移動するときに電流における段階的変化を産生したことを示す図である。Ａ）は、典型的Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ制御ＤＮＡ移動（１８０ｍＶ、６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム、０．６ｎＭ ４００塩基長ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、１００ｎＭ Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）、１ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａを有する配列番号２））の電流トレース例（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（分））を示す。印加された電位下でＤＮＡはライセニンナノポアに捕捉される。このライセニン変異体は、ＷＴライセニンと対比して高いレベルのＤＮＡ捕捉を示す。ポア中に捕捉されたＤＮＡは、オープンポアレベル（約３９０ｐＡ）からＤＮＡレベル（約２００ｐＡ）への電流における遮断を生じる。ヘリカーゼ結合を有するＤＮＡは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。ヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動は星印によって示される。Ｂ）上のトレースにおける典型的ヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動の１つの拡大図（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（分））。ＤＮＡレベルは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。 Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）がライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ７６Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ、変異Ｅ７６Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａを有する配列番号２）を通ってＤＮＡを制御された様式で移動でき、ＤＮＡがナノポアを通って移動するときに電流における段階的変化を産生したことを示す図である。Ａ）は、典型的Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ制御ＤＮＡ移動（＋１８０ｍＶ、６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、ｐＨ８．０、１ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．６ｎＭ ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、１００ｎＭ Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）、ライセニン−Ｅ７６Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ、変異Ｅ７６Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａを有する配列番号２））の電流トレース例（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））を示す。Ｂ）は、上のトレースにおけるヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））の拡大図を示す。ＤＮＡレベルは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。 Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）がライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ５０Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ５０Ｓを有する配列番号２）を通ってＤＮＡを制御された様式で移動でき、ＤＮＡがナノポアを通って移動するときに電流における段階的変化を産生したことを示す図である。Ａ）は、典型的Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ制御ＤＮＡ移動（＋１２０ｍＶ、６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、ｐＨ８．０、１ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．３ｎＭ ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、１００ｎＭ Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）、ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ５０Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ５０Ｓを有する配列番号２））の電流トレース例（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））を示す。Ｂ）は、上のトレースにおけるヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））の拡大図を示す。ＤＮＡレベルは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。 Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）がライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ７１Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ７１Ｓを有する配列番号２）を通ってＤＮＡを制御された様式で移動でき、ＤＮＡがナノポアを通って移動するときに電流における段階的変化を産生したことを示す図である。Ａ）は、典型的Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ制御ＤＮＡ移動（＋１８０ｍＶ、６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、ｐＨ８．０．１ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．３ｎＭ ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、１００ｎＭ Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）、ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ７１Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ７１Ｓを有する配列番号２）の電流トレース例（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（分））を示す。Ｂ）は、上のトレースにおけるヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））の拡大図を示す。ＤＮＡレベルは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。 Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）がライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ１２８Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ１２８Ｓを有する配列番号２）を通ってＤＮＡを制御された様式で移動でき、ＤＮＡがナノポアを通って移動するときに電流における段階的変化を産生したことを示す図である。Ａ）は、典型的Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ制御ＤＮＡ移動（＋１８０ｍＶ、６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、ｐＨ８．０、１ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．６ｎＭ ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、１００ｎＭ Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）、ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ１２８Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｅ１２８Ｓを有する配列番号２）の電流トレース例（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））を示す。Ｂ）は、上のトレースにおけるヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））の拡大図を示す。ＤＮＡレベルは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。 Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）がライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｄ６８Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｄ６８Ｓを有する配列番号２）を通ってＤＮＡを制御された様式で移動でき、ＤＮＡがナノポアを通って移動するときに電流における段階的変化を産生したことを示す図である。Ａ）は、典型的Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ制御ＤＮＡ移動（＋１２０ｍＶ、６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、ｐＨ８．０、１ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．３ｎＭ ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、１００ｎＭ Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）、ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｄ６８Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｄ６８Ｓを有する配列番号２）の電流トレース例（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（分））を示す。Ｂ）は、上のトレースにおけるヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））の拡大図を示す。ＤＮＡレベルは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。 Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）がライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｄ１２１Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｄ１２１Ｓを有する配列番号２）を通ってＤＮＡを制御された様式で移動でき、ＤＮＡがナノポアを通って移動するときに電流における段階的変化を産生したことを示す図である。Ａ）は、典型的Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ制御ＤＮＡ移動（＋１２０ｍＶ、６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、ｐＨ８．０、１ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．６ｎＭ ＤＮＡ（配列番号１３および１４）、１００ｎＭ Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）、ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｄ１２１Ｓ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ／Ｄ１２１Ｓを有する配列番号２）の電流トレース例（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））を示す。Ｂ）は、上のトレースにおけるヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動（ｙ−軸＝電流（ｐＡ）、ｘ−軸＝時間（秒））の拡大図を示す。ＤＮＡレベルは、酵素がＤＮＡをポアを通して移動させるときに電流において段階的変化を示す。
本開示の生成物および方法のさまざまな応用が当技術分野における具体的な必要性に適合され得ることは理解される。本明細書で用いられる用語は本発明の詳細な実施形態を記載する目的のためのみであり、限定されることを意図しないことも理解される。
付加的に、本明細書および添付の特許請求の範囲で用いられる場合、単数形「ａ」、「ａｎ」および「ｔｈｅ」は、内容が他を明確に記す場合を除いて複数の参照物を含む。したがって例えば、「１つの変異体モノマー」を参照することは「複数の変異体モノマー」を含み、「１つの置換」を参照することは２つ以上のそのような置換を含み、「１つのポア」を参照することは２つ以上のそのようなポアを含み、「１本のポリヌクレオチド」を参照することは２本以上のそのようなポリヌクレオチドを含むなど。
本明細書に引用する全ての刊行物、特許および特許出願は（上記または下記に関わらず）それら全体が参照により本明細書に組み込まれる。
変異体ライセニンモノマー
本発明は、変異体ライセニンモノマーを提供する。変異体ライセニンモノマーは、本発明のポアを形成するために用いられ得る。変異体ライセニンモノマーは、その配列が野生型ライセニンモノマーのもの（すなわち配列番号２）から変化しており、本発明の他のモノマーまたライセニンからもしくはライセニンに由来する他のモノマーの存在下で、ポアを形成する能力を保持しているモノマーである。ポアを形成する変異体モノマーの能力を確認するための方法は、当技術分野において周知であり、下により詳細に考察される。例えば、ポアを形成する変異体モノマーの能力は、実施例１に記載のとおり決定され得る。
変異体モノマーは、ポリヌクレオチドと相互作用する変更された能力を有する。したがって１つまたは複数の変異体モノマーを含むポアは改善されたヌクレオチド読み取り特性を有し、例えば（１）ポリヌクレオチド捕捉の改善、および（２）ポリヌクレオチド認識または識別の改善を示す。具体的には変異体モノマーから構築されたポアは、野生型よりも容易にヌクレオチドおよびポリヌクレオチドを捕捉する。付加的に変異体モノマーから構築されたポアは、異なるヌクレオチド間の識別を容易にする電流範囲の増大、および信号対雑音比を増加させる状態変動の低減を示す。付加的に、ポリヌクレオチドが変異体から構築されたポアを通って移動するときに電流に寄与するヌクレオチドの数を減少させる。これは、ポリヌクレオチドがポアを通って移動するときに観察される電流とポリヌクレオチドとの間の直接的関係を同定することを容易にする。変異体の改善されたヌクレオチド読み取り特性は、５個の主な機序、すなわち：
・ 立体（アミノ酸残基の大きさの増大または減少）；
・ 電荷（例えば、−ｖｅ電荷の導入もしくは除去および／または＋ｖｅ電荷の導入もしくは除去）；
・ 水素結合（例えば、塩基対に水素結合できるアミノ酸の導入）；
・ ｐｉスタック（例えば、非局在化電子ｐｉシステムを通じて相互作用するアミノ酸の導入）；および／または
・ ポアの構造の変更（例えば、バレルまたはチャネルの大きさを増大させるアミノ酸の導入）
における変化を介して達成される。
これらの５個の機序の任意の１つまたは複数は、本発明の変異体モノマーから形成されるポアの特性の改善に関与する場合がある。例えば、本発明の変異体モノマーを含むポアは、立体の変更、水素結合の変更および構造の変更の結果として改善されたヌクレオチド読み取り特性を示すことができる。
本発明の変異体モノマーは、配列番号２に示す配列の変種を含む。配列番号２は、ライセニンモノマーの野生型配列である。配列番号２の変種は、配列番号２のものから変更され、ポアを形成するその能力を保持しているアミノ酸配列を有するポリペプチドである。
本発明者らは、モノマーを含むポアでのナノポアセンシングを用いてポリヌクレオチドが特性決定される場合など、モノマーとポリヌクレオチドとの間の相互作用を変更するために修飾され得るライセニンモノマー内の領域を驚くべきことに同定した。領域は、配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６である。この領域の少なくとも一部は、典型的にはライセニンの膜スパンニング領域に寄与する。この領域少なくとも一部は、典型的にはライセニンのバレルまたはチャネルに寄与する。この領域の少なくとも一部は、典型的には、ライセニンの内壁または裏層に寄与する。
ライセニンの膜貫通領域は、配列番号２の位置４４から６７として同定されている（De Colbis et al.、Structure、2012; 20: 1498-1507）。
本発明により変種は、配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６の領域内に、モノマーまたは好ましくは領域がポリヌクレオチドと相互作用する能力を変更する、１つまたは複数の修飾を含む。モノマーとポリヌクレオチドとの間の相互作用は、増大または減少し得る。モノマーとポリヌクレオチドとの間の相互作用の増大は、例えば変異体モノマーを含むポアによるポリヌクレオチドの捕捉を促進する。領域とポリヌクレオチドとの間の相互作用の減少は、例えば、ポリヌクレオチドの認識または識別を改善する。ポリヌクレオチドの認識または識別は、変異体モノマーを含むポアの状態の変動を減少させる（信号対雑音比を増大させる）ことによって、および／またはポリヌクレオチドが変異体モノマーを含むポアを通って移動するときの電流に寄与するポリヌクレオチド中のヌクレオチドの数を減少させることによって改善される場合がある。
したがって本発明は、配列番号２に示す配列の変種を含む変異体ライセニンモノマーであって、前記モノマーがポアを形成でき、前記変種が、配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６にポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力を変更する１つまたは複数の修飾を含む、変異体ライセニンモノマーを提供する。
ポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力は、当技術分野において周知である方法を用いて決定され得る。モノマーは、ポリヌクレオチドと任意の方法において（例えば、疎水性相互作用、水素結合、ファンデルワールス力、ｐｉ（π）−カチオン相互作用または静電力などの非共有結合相互作用によって）相互作用できる。例えば、ポリヌクレオチドに結合する領域の能力は、従来の結合アッセイを用いて測定され得る。好適なアッセイは、これだけに限らないが、蛍光に基づく結合アッセイ、核磁気共鳴（ＮＭＲ）、等温滴定熱量測定（ＩＴＣ）または電子スピン共鳴（ＥＳＲ）分光法を含む。代替的に、１つまたは複数の変異体モノマーを含むポアのポリヌクレオチドと相互作用する能力は、上または下に考察される任意の方法を用いて決定され得る。好ましいアッセイは、実施例に記載されている。
１つまたは複数の修飾は、配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６の領域内である。１つまたは複数の修飾は、好ましくは次の領域：およそ位置４０からおよそ位置１２５、およそ位置５０からおよそ位置１２０、およそ位置６０からおよそ位置１１０およびおよそ位置７０からおよそ位置１００のいずれか１つの中である。１つまたは複数の修飾がポリヌクレオチド捕捉を改善するために作られる場合、それらは次の領域：およそ位置４４からおよそ位置１０３、およそ位置６８からおよそ位置１０３、およそ位置８４からおよそ位置１０３、およそ位置４４からおよそ位置９７、およそ位置６８からおよそ位置９７またはおよそ位置８４からおよそ位置９７のいずれか１つの中により好ましくは作られる。１つまたは複数の修飾がポリヌクレオチド認識または識別を改善するために作られる場合、それらは次の領域：およそ位置４４からおよそ位置１０９、およそ位置４４からおよそ位置９７またはおよそ位置４８からおよそ位置８８のいずれか１つの中により好ましくは作られる。領域は、配列番号２の好ましくはおよそ位置４４からおよそ位置６７である。
１つまたは複数の修飾がポリヌクレオチド認識または識別を意図する場合、それらは好ましくはポリヌクレオチド捕捉を改善するための１つまたは複数の修飾に加えて作られる。これは、変異体モノマーから形成されるポアがポリヌクレオチドを効率的に捕捉できるようにし、次いでその配列を推定するなど、下に考察のとおりポリヌクレオチドを特性決定する。
ポリヌクレオチドと相互作用するその能力を変更するタンパク質ナノポアの修飾は、具体的にはポリヌクレオチドを捕捉および／または認識するもしくは識別するそれらの能力を改善し、当技術分野において十分に立証されている。例えばそのような修飾はＷＯ２０１０／０３４０１８およびＷＯ２０１０／０５５３０７に開示されている。類似の修飾は、本発明によるライセニンモノマーに作られ得る。
１、２、５、１０、１５、２０、３０個以上の修飾などの任意の数の修飾が作られ得る。ポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力が変更される限り任意の修飾（複数可）が作られ得る。好適な修飾は、これだけに限らないが、アミノ酸置換、アミノ酸付加およびアミノ酸欠失を含む。１つまたは複数の修飾は、好ましくは１つまたは複数の置換である。これは下でより詳細に考察される。
１つまたは複数の修飾は、好ましくは（ａ）モノマーの立体効果を変更する、もしくは好ましくは領域の立体効果を変更する、（ｂ）モノマーの正味電荷を変更する、もしくは好ましくは領域の正味電荷を変更する、（ｃ）ポリヌクレオチドと水素結合するモノマーのもしくは好ましくは領域の能力を変更する、（ｄ）非局在化電子ｐｉシステムを通じて相互作用する化学基を導入するもしくは除去する、および／または（ｅ）モノマーの構造を変更する、または好ましくは領域の構造を変更する。１つまたは複数の修飾は、（ａ）および（ｂ）；（ａ）および（ｃ）；（ａ）および（ｄ）；（ａ）および（ｅ）；（ｂ）および（ｃ）；（ｂ）および（ｄ）；（ｂ）および（ｅ）；（ｃ）および（ｄ）；（ｃ）および（ｅ）；（ｄ）および（ｅ）、（ａ）、（ｂ）および（ｃ）；（ａ）、（ｂ）および（ｄ）；（ａ）、（ｂ）および（ｅ）；（ａ）、（ｃ）および（ｄ）；（ａ）、（ｃ）および（ｅ）；（ａ）、（ｄ）および（ｅ）；（ｂ）、（ｃ）および（ｄ）；（ｂ）、（ｃ）および（ｅ）；（ｂ）、（ｄ）および（ｅ）；（ｃ）、（ｄ）および（ｅ）；（ａ）、（ｂ）、（ｃ）およびｄ）；（ａ）、（ｂ）、（ｃ）および（ｅ）；（ａ）、（ｂ）、（ｄ）および（ｅ）；（ａ）、（ｃ）、（ｄ）および（ｅ）；（ｂ）、（ｃ）、（ｄ）および（ｅ）；ならびに（ａ）、（ｂ）、（ｃ）および（ｄ）などの（ａ）から（ｅ）の任意の組合せをより好ましくは生じる。
（ａ）についてモノマーの立体効果は、増加または減少し得る。立体効果を変更する任意の方法が本発明により用いられ得る。フェニルアラニン（Ｆ）、トリプトファン（Ｗ）、チロシン（Ｙ）またはヒスチジン（Ｈ）などのかさ高い残基の導入は、モノマーの立体効果を増加させる。１つまたは複数の修飾は、好ましくはＦ、Ｗ、ＹおよびＨの１つまたは複数の導入である。Ｆ、Ｗ、ＹおよびＨの任意の組合せが導入され得る。Ｆ、Ｗ、ＹおよびＨの１つまたは複数は付加によって導入され得る。Ｆ、Ｗ、ＹおよびＨの１つまたは複数は、好ましくは置換によって導入される。そのような残基の導入のために好適な位置は、下により詳細に考察される。
フェニルアラニン（Ｆ）、トリプトファン（Ｗ）、チロシン（Ｙ）またはヒスチジン（Ｈ）などのかさ高い残基の除去は、モノマーの立体効果を逆に減少させる。１つまたは複数の修飾は、好ましくはＦ、Ｗ、ＹおよびＨの１つまたは複数の除去である。Ｆ、Ｗ、ＹおよびＨの任意の組合せが除去され得る。Ｆ、Ｗ、ＹおよびＨの１つまたは複数が欠失によって除去され得る。Ｆ、Ｗ、ＹおよびＨの１つまたは複数は、セリン（Ｓ）、スレオニン（Ｔ）、アラニン（Ａ）およびバリン（Ｖ）などのより小さな側基を有する残基での置換によって好ましくは除去される。
（ｂ）について正味電荷は、任意の方法で変更され得る。正味の正電荷は、好ましくは増加または減少する。正味の正電荷は、任意の様式で増大され得る。正味の正電荷は、好ましくは、１つまたは複数の正に荷電したアミノ酸を（好ましくは置換によって）導入すること、および／または１つまたは複数の負電荷を（好ましくは置換によって）中和することによって増加する。
正味の正電荷は、好ましくは、１つまたは複数の正に荷電したアミノ酸を導入することによって増加する。１つまたは複数の正に荷電したアミノ酸は、付加によって導入され得る。１つまたは複数の正に荷電したアミノ酸は、好ましくは置換によって導入される。正に荷電したアミノ酸は、正味の正電荷を有するアミノ酸である。正に荷電したアミノ酸（複数可）は、天然に存在するものであってよい、または天然に存在しないものであってよい。正に荷電したアミノ酸は、合成または修飾され得る。例えば、正味の正電荷を有する修飾アミノ酸は、本発明における使用のために具体的に設計されてよい。アミノ酸への多数の異なる種類の修飾は当技術分野において周知である。
好ましい天然に存在する正に荷電したアミノ酸は、これだけに限らないが、ヒスチジン（Ｈ）、リジン（Ｋ）およびアルギニン（Ｒ）を含む。１つまたは複数の修飾は、好ましくはＨ、ＫおよびＲの１つまたは複数の導入である。Ｈ、ＫおよびＲの任意の数および組合せが導入され得る。Ｈ、ＫおよびＲの１つまたは複数は、付加によって導入され得る。Ｈ、ＫおよびＲの１つまたは複数は、好ましくは置換によって導入される。そのような残基の導入のために好適な位置は、下により詳細に考察される。
天然に存在するアミノ酸を付加するまたは置換するための方法は、当技術分野において周知である。例えばメチオニン（Ｍ）は、モノマーをコードしているポリヌクレオチドでの関連する位置のメチオニンに対するコドン（ＡＴＧ）をアルギニンに対するコドン（ＡＧＡ）で置き換えることによってアルギニン（Ｒ）で置換されうる。次いでポリヌクレオチドは、下に考察のとおり発現され得る。
天然に存在しないアミノ酸を付加するまたは置換するための方法も当技術分野において周知である。例えば天然に存在しないアミノ酸は、ポアを発現するために用いられるＩＶＴＴ系に合成アミノアシル−ｔＲＮＡを含ませることによって導入され得る。代替的に、特定のアミノ酸に対して栄養要求性である大腸菌（E. coli）においてそれらの特定のアミノ酸の合成（すなわち天然に存在しない）類似物の存在下でモノマーを発現することによってそれらは導入され得る。ポアが部分的ペプチド合成を用いて産生される場合、それらはネイキッドライゲーションによっても産生され得る。
任意のアミノ酸は、正に荷電したアミノ酸で置換され得る。１つまたは複数の無荷電アミノ酸、非極性アミノ酸および／または芳香族アミノ酸は、１つまたは複数の正に荷電したアミノ酸で置換され得る。無荷電アミノ酸は、正味電荷を有さない。好適な無荷電アミノ酸は、これだけに限らないが、システイン（Ｃ）、セリン（Ｓ）、スレオニン（Ｔ）、メチオニン（Ｍ）、アスパラギン（Ｎ）およびグルタミン（Ｑ）を含む。非極性アミノ酸は、非極性側鎖を有する。好適な非極性アミノ酸は、これだけに限らないが、グリシン（Ｇ）、アラニン（Ａ）、プロリン（Ｐ）、イソロイシン（Ｉ）、ロイシン（Ｌ）およびバリン（Ｖ）を含む。芳香族アミノ酸は、芳香族側鎖を有する。好適な芳香族アミノ酸は、これだけに限らないが、ヒスチジン（Ｈ）、フェニルアラニン（Ｆ）、トリプトファン（Ｗ）およびチロシン（Ｙ）を含む。好ましくは１つまたは複数の負に荷電したアミノ酸は、１つまたは複数の正に荷電したアミノ酸で置換される。好適な負に荷電したアミノ酸は、これだけに限らないが、アスパラギン酸（Ｄ）およびグルタミン酸（Ｅ）を含む。
好ましい導入は、これだけに限らないが、ＥをＫで置換、ＭをＲで、ＭをＨで置換、ＭをＫで置換、ＤをＲで置換、ＤをＨで置換、ＤをＫで置換、ＥをＲで置換、ＥをＨで置換、ＮをＲで置換、ＴをＲで置換およびＧをＲで置換する置換を含む。最も好ましくはＥはＫで置換される。
任意の数の正に荷電したアミノ酸が導入または置換され得る。例えば、１、２、５、１０、１５、２０、２５、３０個以上の正に荷電したアミノ酸は導入または置換され得る。
正味の正電荷は、より好ましくは、１つまたは複数の負電荷を中和することによって増加される。１つまたは複数の負電荷は、１つまたは複数の負に荷電したアミノ酸の１つまたは複数の無荷電アミノ酸、非極性アミノ酸および／または芳香族アミノ酸での置換によって置き換えることによって中和され得る。負電荷の除去は正味の正電荷を増加させる。無荷電アミノ酸、非極性アミノ酸および／または芳香族アミノ酸は、天然に存在するまたは天然に存在しないものであってよい。それらは、合成または修飾されてよい。好適な無荷電アミノ酸、非極性アミノ酸および芳香族アミノ酸は、上に考察されている。好ましい置換は、これだけに限らないが、ＥをＱで置換、ＥをＳで置換、ＥをＡで置換、ＤをＱで置換、ＥをＮで置換、ＤをＮで置換、ＤをＧで置換およびＤをＳで置換する置換を含む。
任意の数および組合せの無荷電アミノ酸、非極性アミノ酸および／または芳香族アミノ酸は置換され得る。例えば、１、２、５、１０、１５、２０、２５または３０個以上の無荷電アミノ酸、非極性アミノ酸および／または芳香族アミノ酸は置換され得る。負に荷電したアミノ酸は（１）無荷電アミノ酸；（２）非極性アミノ酸；（３）芳香族アミノ酸；（４）無荷電アミノ酸および非極性アミノ酸；（５）無荷電アミノ酸および芳香族アミノ酸；ならびに（５）非極性アミノ酸および芳香族アミノ酸；または（６）無荷電アミノ酸、非極性アミノ酸および芳香族アミノ酸で置換され得る。
１つまたは複数の負電荷は、１つまたは複数の正に荷電したアミノ酸を１つまたは複数の負に荷電したアミノ酸の近くに（アミノ酸１、２、３もしくは４個以内など）または隣接して導入することによって中和され得る。正におよび負に荷電したアミノ酸の例は、上に考察されている。正に荷電したアミノ酸は、上に考察した任意の様式で、例えば置換によって導入され得る。
正味の正電荷は、好ましくは１つもしくは複数の負に荷電したアミノ酸を導入することによって、および／または１つもしくは複数の正電荷を中和することによって減少する。これが行われる方法は、正味の正電荷を増加させることを参照して上の考察から明らかである。正味の正電荷を増加させることを参照して上に考察した全ての実施形態は、電荷が反対に変更されることを除いて正味の正電荷を減少させることに等しく適用される。具体的には、１つまたは複数の正電荷は、好ましくは１つもしくは複数の正に荷電したアミノ酸を１つもしくは複数の無荷電アミノ酸、非極性アミノ酸および／または芳香族アミノ酸で置換することによって、または１つもしくは複数の負に荷電したアミノ酸を１つもしくは複数の負に荷電したアミノ酸の近くに（アミノ酸１、２、３もしくは４個以内など）または隣接して導入することによって中和される。
正味の負電荷は、好ましくは増加または減少する。正味の正電荷を増加または減少させることを参照して上に考察した全ての実施形態は、正味の負電荷を減少または増加させることにそれぞれ等しく適用される。
（ｃ）について、モノマーの水素結合する能力は、任意の様式で変更され得る。セリン（Ｓ）、スレオニン（Ｔ）、アスパラギン（Ｎ）、グルタミン（Ｑ）、チロシン（Ｙ）またはヒスチジン（Ｈ）の導入は、モノマーの水素結合する能力を増大させる。１つまたは複数の修飾は、好ましくはＳ、Ｔ、Ｎ、Ｑ、ＹおよびＨの１つまたは複数の導入である。Ｓ、Ｔ、Ｎ、Ｑ、ＹおよびＨの任意の組合せは、導入され得る。Ｓ、Ｔ、Ｎ、Ｑ、ＹおよびＨの１つまたは複数は、付加によって導入され得る。Ｓ、Ｔ、Ｎ、Ｑ、ＹおよびＨの１つまたは複数は、好ましくは置換によって導入される。そのような残基の導入のために好適な位置は、下により詳細に考察される。
セリン（Ｓ）、スレオニン（Ｔ）、アスパラギン（Ｎ）、グルタミン（Ｑ）、チロシン（Ｙ）またはヒスチジン（Ｈ）の除去は、モノマーの水素結合する能力を減少させる。１つまたは複数の修飾は、好ましくはＳ、Ｔ、Ｎ、Ｑ、ＹおよびＨの１つまたは複数の除去である。Ｓ、Ｔ、Ｎ、Ｑ、ＹおよびＨの任意の組合せは、除去され得る。Ｓ、Ｔ、Ｎ、Ｑ、ＹおよびＨの１つまたは複数は、欠失によって除去され得る。Ｓ、Ｔ、Ｎ、Ｑ、ＹおよびＨの１つまたは複数は、アラニン（Ａ）、バリン（Ｖ）、イソロイシン（Ｉ）およびロイシン（Ｌ）などの、あまり水素結合しない他のアミノ酸での置換によって好ましくは除去される。
（ｄ）について、フェニルアラニン（Ｆ）、トリプトファン（Ｗ）、チロシン（Ｙ）またはヒスチジン（Ｈ）などの芳香族残基の導入も、モノマー中のｐｉスタッキングを増加させる。フェニルアラニン（Ｆ）、トリプトファン（Ｗ）、チロシン（Ｙ）またはヒスチジン（Ｈ）などの芳香族残基の除去も、モノマー中のｐｉスタッキングを増加させる。そのようなアミノ酸は、（ａ）を参照して上に考察したとおり導入または除去され得る。
（ｅ）について、モノマーの構造を変更する本発明により作られた１つまたは複数の修飾。例えば１つまたは複数のループ領域は、除去、短縮または伸長され得る。これは典型的にはポリヌクレオチドのポアへの進入またはポアからの退出を促進する。１つまたは複数のループ領域は、ポアのｃｉｓ側、ポアのｔｒａｎｓ側またはポアの両側であってよい。代替的にポアのアミノ末端および／またはカルボキシ末端の１つまたは複数の領域は、伸長または欠失され得る。これは典型的にはポアの大きさおよび／または電荷を変更する。
特定のアミノ酸の導入が１つより多い機序を介してポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力を増強することは、上の考察から明らかである。例えば、ＥのＨでの置換は（ｂ）により正味の正電荷を（負電荷を中和することによって）増加させるだけでなく、（ｃ）によりモノマーの水素結合する能力も増加させる。
変種は、配列番号２の次の位置：Ｍ４４、Ｎ４６、Ｎ４８、Ｅ５０、Ｒ５２、Ｈ５８、Ｄ６８、Ｆ７０、Ｅ７１、Ｓ７４、Ｅ７６、Ｓ７８、Ｙ７９、Ｓ８０、Ｈ８１、Ｓ８２、Ｅ８４、Ｅ８５、Ｓ８６、Ｑ８７、Ｓ８９、Ｍ９０、Ｅ９２、Ｅ９４、Ｅ９７、Ｅ１０２、Ｈ１０３、Ｔ１０４、Ｔ１０６、Ｒ１１５、Ｑ１１７、Ｎ１１９、Ｄ１２１およびＤ１２６の１つまたは複数に置換を好ましくは含む。変種は、これらの位置の１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３または３４個に置換を好ましくは含む。変種は、配列番号２の次の位置：Ｄ６８、Ｅ７１、Ｓ７４、Ｅ７６、Ｓ７８、Ｓ８０、Ｓ８２、Ｅ８４、Ｅ８５、Ｓ８６、Ｑ８７、Ｓ８９、Ｅ９２、Ｅ１０２、Ｔ１０４、Ｔ１０６、Ｒ１１５、Ｑ１１７、Ｎ１１９およびＤ１２１の１つまたは複数に好ましくは置換を含む。変種は、好ましくはこれらの位置の１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９または２０個に置換を含む。変種に置換されるアミノ酸は、天然に存在するまたは天然に存在しないその誘導体であってよい。変種に置換されるアミノ酸は、Ｄ−アミノ酸であってよい。上に列挙された各位置は、アスパラギン（Ｎ）、セリン（Ｓ）、グルタミン（Ｑ）、アルギニン（Ｒ）、グリシン（Ｇ）、チロシン（Ｙ）、アスパラギン酸（Ｄ）、ロイシン（Ｌ）、リジン（Ｋ）またはアラニン（Ａ）で置換されてよい。
変種は、配列番号２の次の変異：
（ａ）位置４４にセリン（Ｓ）；
（ｂ）位置４６にセリン（Ｓ）；
（ｃ）位置４８にセリン（Ｓ）；
（ｄ）位置５２にセリン（Ｓ）；
（ｅ）位置５８にセリン（Ｓ）；
（ｆ）位置６８にセリン（Ｓ）；
（ｇ）位置７０にセリン（Ｓ）；
（ｈ）位置７１にセリン（Ｓ）；
（ｉ）位置７６にセリン（Ｓ）；
（ｊ）位置７９にセリン（Ｓ）；
（ｋ）位置８１にセリン（Ｓ）；
（ｌ）位置８４にセリン（Ｓ）、アスパラギン酸（Ｄ）またはグルタミン（Ｑ）；
（ｍ）位置８５にセリン（Ｓ）またはリジン（Ｋ）；
（ｎ）位置８７にセリン（Ｓ）；
（ｏ）位置９０にセリン（Ｓ）；
（ｐ）位置９２にアスパラギン（Ｎ）またはグルタミン（Ｑ）；
（ｑ）位置９４にセリン（Ｓ）またはアスパラギン（Ｎ）；
（ｒ）位置９７にセリン（Ｓ）またはアスパラギン（Ｎ）；
（ｓ）位置１０２にセリン（Ｓ）；
（ｔ）位置１０３にセリン（Ｓ）；
（ｕ）位置１２１にアスパラギン（Ｎ）またはセリン（Ｓ）；
（ｖ）位置５０にセリン（Ｓ）；
（ｗ）位置９４にアスパラギン（Ｎ）またはセリン（Ｓ）；
（ｘ）位置９７にアスパラギン（Ｎ）またはセリン（Ｓ）；
（ｙ）位置１２１にセリン（Ｓ）またはアスパラギン（Ｎ）；
（ｚ）位置１２６にアスパラギン（Ｎ）またはグルタミン（Ｑ）またはグリシン（Ｇ）；および
（ａａ）位置１２８にセリン（Ｓ）またはアスパラギン（Ｎ）
の少なくとも１つを好ましくは含む。
変種は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６または２７個の変異などの変異（ａ）から（ａａ）の任意の数を含み得る。変異の好ましい組合せは下に考察される。変種に導入されるアミノ酸は、天然に存在するまたは天然に存在しないその誘導体であってよい。変種に導入されるアミノ酸は、Ｄ−アミノ酸であってよい。
変種は、配列番号２の次の変異：
（ａ）位置６８にセリン（Ｓ）；
（ｂ）位置７１にセリン（Ｓ）；
（ｃ）位置７６にセリン（Ｓ）；
（ｄ）位置８４にアスパラギン酸（Ｄ）またはグルタミン（Ｑ）；
（ｅ）位置８５にリジン（Ｋ）；
（ｆ）位置９２にアスパラギン（Ｎ）またはグルタミン（Ｑ）；
（ｇ）位置１０２にセリン（Ｓ）；
（ｈ）位置１２１にアスパラギン（Ｎ）またはセリン（Ｓ）；
（ｉ）位置５０にセリン（Ｓ）；
（ｊ）位置９４にアスパラギン（Ｎ）またはセリン（Ｓ）；
（ｋ）位置９７にアスパラギン（Ｎ）またはセリン（Ｓ）；および
（ｌ）位置１２６にアスパラギン（Ｎ）またはグルタミン（Ｑ）またはグリシン（Ｇ）
の少なくとも１つを好ましくは含む。
変種は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１または１２個の変異などの変異（ａ）から（ｌ）の任意の数を含み得る。好ましい変異の組合せは下に考察される。変種に導入されるアミノ酸は、天然に存在するまたは天然に存在しないその誘導体であってよい。変種に導入されるアミノ酸はＤ−アミノ酸であってよい。
変種は、ポリヌクレオチド捕捉を改善する、および／またはポリヌクレオチド認識もしくは識別を改善する上に考察した領域内の修飾との組合せで、配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６の領域の外側に１つまたは複数の追加的修飾を含み得る。好適な修飾は、これだけに限らないが、Ｄ３５、Ｅ１２８、Ｅ１３５、Ｅ１３４およびＥ１６７の１つまたは複数での置換を含む。具体的には、位置１２８、１３５、１３４および１６７の１つまたは複数のＥを置換することによる負電荷の除去は、ポリヌクレオチド捕捉を改善する。これらの位置の１つまたは複数のＥは、上に考察した任意の方法で置換され得る。好ましくはＥ１２８、Ｅ１３５、Ｅ１３４およびＥ１６７の全ては上に考察したとおり、置換される。Ｅは、好ましくはＡで置換される。換言すると変種は、Ｅ１２８Ａ、Ｅ１３５Ａ、Ｅ１３４ＡおよびＥ１６７Ａの１つもしくは複数または全てを好ましくは含む。別の好ましい置換はＤ３５Ｑである。
好ましい実施形態では変種は、配列番号２中に次の置換を含む：
ｉ．Ｅ８４ＤおよびＥ８５Ｋの両方などの１つまたは複数；
ｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｉｉｉ．Ｅ９２Ｎ、Ｅ９４Ｎ、Ｅ９７Ｎ、Ｄ１２１ＮおよびＤ１２６Ｎの２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｉｖ．Ｅ９２Ｎ、Ｅ９４Ｎ、Ｅ９７Ｎ、Ｄ１２１Ｎ、Ｄ１２６ＮおよびＥ１２８Ｎの２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｖ．Ｅ７６Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｖｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ５０Ｓの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｖｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ７１Ｓの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｖｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ９４Ｓの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｉｘ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１０２Ｓの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｘ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１２８Ｓの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｘｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１３５Ｓの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｘｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ６８Ｓの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｘｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ１２１Ｓの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｘｉｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ１３４Ｓの２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｘｖ．Ｅ８４Ｄ、Ｅ８５ＫおよびＥ９２Ｑの２または３個などの１つもしくは複数；
ｘｖｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１３５Ｓの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｖｉｉ．Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９４Ｓ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｖｉｉｉ．Ｅ７６Ｓ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｉｘ．Ｅ７１Ｓ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｘ．Ｄ６８Ｓ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｘｉ．Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３または４個などの１つもしくは複数；
ｘｘｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｈ１０３ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｍ９０Ｓ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｉｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｑ８７Ｓ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｓ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｘｖｉ．Ｅ８４Ｓ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｘｖｉｉ．Ｈ８１Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｖｉｉｉ．Ｙ７９Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｉｘ．Ｆ７０Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｘ．Ｈ５８Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｘｉ．Ｒ５２Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｘｉｉ．Ｎ４８Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｘｉｉｉ．Ｎ４６Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｘｉｖ．Ｍ４４Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｘｘｘｖ．Ｅ９２ＱおよびＥ９７Ｓの両方などの１つもしくは複数；
ｘｘｘｖｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２ＱおよびＥ９７Ｓの１、２、３または４個などの１つもしくは複数；
ｘｘｘｖｉｉ．Ｅ８４ＱおよびＥ８５Ｋの両方などの１つもしくは複数；
ｘｘｘｖｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５ＫおよびＤ１２６Ｇの１、２または３個などの１つもしくは複数；
ｘｘｘｉｘ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１、２、３または４個などの１つもしくは複数；
ｘｌ．Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２または３個などの１つもしくは複数；
ｘｌｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｌｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＥ１６７Ａの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｌｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｌｉｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｌｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｌｖｉ．Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；
ｘｌｖｉｉ．Ｅ８４Ｄ、Ｅ８５ＫおよびＥ９２Ｑの１、２または３個などの１つもしくは複数；
ｘｌｖｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ１２１Ｓの１、２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｘｌｉｘ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ６８Ｓの１、２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｌ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１３５Ｓの１、２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｌｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１２８Ｓの１、２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｌｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１０２Ｓの１、２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｌｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ９４Ｓの１、２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｌｉｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ７１Ｓの１、２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｌｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ５０Ｓの１、２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｌｖｉ．Ｅ７６Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１、２、３、４、５、６または７個などの１つもしくは複数；
ｌｖｉｉ．Ｅ９２Ｎ、Ｅ９４Ｎ、Ｅ９７Ｎ、Ｄ１２１Ｎ、Ｄ１２６ＮおよびＥ１２８Ｎの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数；
ｌｖｉｉｉ．Ｅ９２Ｎ、Ｅ９４Ｎ、Ｅ９７Ｎ、Ｄ１２１ＮおよびＤ１２６Ｎの１、２、３、４または５個などの１つもしくは複数；または
ｌｉｘ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１、２、３、４、５または６個などの１つもしくは複数。
上記において最初の文字は、置き換えられる配列番号２中のアミノ酸を指し、数字は配列番号２中の位置であり、２番目の文字は１文字目が置換されるアミノ酸を指す。それによりＥ８４Ｄは、位置８４のグルタミン酸（Ｅ）のアスパラギン酸（Ｄ）での置換を指す。
変種は、１、２、３、４、５、６または７個などのｉからｌｉｘのいずれか１つにおける置換の任意の数を含み得る。変種は、上のｉからｌｉｘのいずれか１つにおいて示される全ての置換を好ましくは含む。
好ましい実施形態では変種は、上のｉからｘｖのいずれか１つにおける置換を含む。変種は、１、２、３、４、５、６または７個などのｉからｘｖのいずれか１つにおける置換の任意の数を含み得る。変種は、上のｉからｘｖのいずれか１つに示す置換の全てを好ましくは含む。
１つまたは複数の修飾がポリヌクレオチドを認識または識別するモノマーの能力を改善する意図である場合、それらは好ましくは、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａなどのポリヌクレオチド捕捉を改善する上に考察した修飾に加えて作られ得る。
同定された領域に作られた１つまたは複数の修飾は、ライセニンの相同体またはパラログにおける対応する位置（複数可）に存在するアミノ酸での領域中の１つまたは複数のアミノ酸の置換に関する場合がある。ライセニンの相同体の４例は、配列番号１６から１９に示されている。そのような置換の有利点は、相同体モノマーもポアを形成することから、それらがポアを形成する変異体モノマーを生じやすいことである。
上に考察の特異的変異に加えて変種は、他の変異も含み得る。これらの変異は、ポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力を増強する必要はない。変異は、例えば、発現および／または精製を促進する場合がある。配列番号２のアミノ酸配列の全長にわたって変種は、アミノ酸同一性に基づいてその配列に好ましくは少なくとも５０％相同である。より好ましくは変種は、配列全体にわたって配列番号２のアミノ酸配列にアミノ酸同一性に基づいて少なくとも５５％、少なくとも６０％、少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％およびより好ましくは少なくとも９５％、９７％または９９％相同である。少なくとも８０％、例えば少なくとも８５％、９０％または９５％のアミノ酸同一性が１００以上（例えば１２５、１５０、１７５、もしくは２００またはそれ以上）のストレッチの連続アミノ酸にわたってある場合がある（「高い相同性」）。
相同性を決定するために当技術分野における標準的方法が用いられ得る。例えばＵＷＧＣＧパッケージは、相同性を算出するために用いられ得るＢＥＳＴＦＩＴプログラム（例えばその初期設定で用いられる）を提供する（Devereuxら、(1984) Nucleic Acids Research 12、387-395頁）。ＰＩＬＥＵＰおよびＢＬＡＳＴアルゴリズムは、相同性を算出するためまたは配列を列挙するために（等価残基または対応する配列を同定するステップなど（典型的にはその初期設定で））用いられ得る、例えばAltschul S.F.(1993)J Mol Evol 36:290-300；Altschul,S.Fら、(1990) J Mol Biol 215:403-10に記載のとおり。
ＢＬＡＳＴ分析を実施するためのソフトウエアは、ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／）を通じて公開で入手可能である。このアルゴリズムは、データベース配列中の同じ長さのワードで配列比較された場合にいくつかの正の値の閾値スコアＴにマッチするまたは満たすクエリー配列中の長さＷの短いワードを同定することによって高スコアリング配列対（high scoring sequence pair）（ＨＳＰｓ）を最初に同定することに関与する。Ｔは、近傍ワードスコア閾値（neighbourhood word score threshold）と称される（Altschul et al、上記）。これらの初期近傍ワードヒットは、それらを含有しているＨＳＰ’ｓを見出すための探索を開始するためのシードとして作用する。ワードヒットは、累積配列比較スコアが増加できる限り各配列に沿って両方向に伸長される。各方向でのワードヒットについての伸長は：累積配列比較スコアがその最大到達値から量Ｘ下がる；累積スコアが１つまたは複数の負のスコアリング残基配列比較の蓄積のためにゼロもしくはそれ以下になる；またはいずれかの配列の末端に達する場合に停止する。ＢＬＡＳＴアルゴリズムパラメーターＷ、ＴおよびＸは、配列比較の感度および速度を決定する。ＢＬＡＳＴプログラムは、１１のワード長（Ｗ）、ＢＬＯＳＵＭ６２スコアリングマトリクス（Henikoff and Henikoff (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 10915-10919を参照されたい）５０の配列比較（Ｂ）、１０の期待値（Ｅ）、Ｍ＝５、Ｎ＝４、および両鎖の比較を初期設定として使用する。
ＢＬＡＳＴアルゴリズムは、２つの配列間の類似性の統計解析を実施する。例えばKarlin and Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 5873-5787を参照されたい。ＢＬＡＳＴアルゴリズムによって提供される類似性の１つの測定は、最小合計確率（smallest sum probability）（Ｐ（Ｎ））であり、２つのアミノ酸配列間で偶然にマッチが生じる確率の指標を提供する。例えば配列は、第１の配列と第２の配列との比較において最小合計確率が約１未満、好ましくは約０．１未満、より好ましくは約０．０１未満および最も好ましくは約０．００１未満の場合に、別の配列と類似であると考えられる。
アミノ酸置換は、上に考察したものに加えて配列番号２のアミノ酸配列に作出され得る（例えば１、２、３、４、５、１０、２０または３０置換まで）。保存的置換は、アミノ酸を同様の化学構造、同様の化学的特性または同様の側鎖容積を有する他のアミノ酸で置き換える。導入されるアミノ酸は、それらが置き換えるアミノ酸と同様の極性、親水性、疎水性、塩基性度、酸性度、中性度または電荷を有してよい。代替的に保存的置換は、既存の芳香族または脂肪族アミノ酸の代わりに芳香族または脂肪族である別のアミノ酸を導入する場合がある。保存的アミノ酸変更は、当技術分野において周知であり、下の表１に定義のとおり２０種の主なアミノ酸の特性に従って選択され得る。アミノ酸が同様の極性を有する場合、これは表２におけるアミノ酸側鎖についてのハイドロパシースケールを参照することによっても決定され得る。
変種は、ライセニンの相同体およびパラログにおける対応する位置（複数可）においてアミノ酸がそれらで置き換えられている、上に記載の領域の外側に１つまたは複数の置換を含み得る。ライセニンの相同体の４例は、配列番号１６から１９に示されている。
配列番号２のアミノ酸配列の１つまたは複数のアミノ酸残基は、上に記載の変種から追加的に欠失され得る。１、２、３、４、５、１０、２０または３０残基までまたはそれ以上が欠失され得る。
変種は、配列番号２の断片を含み得る。そのような断片は、ポア形成活性を保持する。これは、上に記載のとおりアッセイされ得る。断片は、長さ少なくとも５０、１００、１５０、２００または２５０アミノ酸であってよい。そのような断片は、本発明のポアを産生するために用いられ得る。配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６由来の領域が本発明による１つまたは複数の欠失によって修飾され得ることから、断片は領域全体を含有する必要はない。したがって未修飾領域の長さより短い断片は、本発明によって想定される。断片は、配列番号２のポア形成ドメインを好ましくは含む。断片は、本発明により修飾される配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６由来の領域をより好ましくは含む。
１つまたは複数のアミノ酸は、上に記載のポリペプチドに代替的または追加的に付加され得る。伸長は、配列番号２のアミノ酸配列またはそのポリペプチド変種もしくは断片のアミノ末端またはカルボキシ末端に与えられ得る。伸長は極めて短い（例えば長さ１から１０アミノ酸）場合がある。代替的に伸長はより長くても（例えば５０または１００アミノ酸まで）よい。担体タンパク質は、本発明によるアミノ酸配列に融合され得る。他の融合タンパク質は、下により詳細に考察される。
上に考察したとおり変種は、配列番号２から変更され、ポアを形成する能力を保持しているアミノ酸配列を有するポリペプチドである。変種は、典型的にはポア形成に関与する配列番号２の領域、すなわちおよそ位置４４からおよそ位置１２６を含有し、この領域は上に考察したとおり本発明により修飾されている。それは、上に考察したとおりこの領域の断片を含有する。本発明の修飾に加えて配列番号２の変種は、置換、付加または欠失などの１つまたは複数の追加的修飾を含み得る。これらの修飾は、配列番号２のおよそ位置１からおよそ位置４３およびおよそ位置１２７からおよそ位置２９７に対応する変種中のストレッチ（すなわち本発明により修飾される領域の外側）に好ましくは位置付けられる。
変異体モノマーは、それらの同定または精製を支援するために、例えばヒスチジン残基（ｈｉｓｔタグ）、アスパラギン酸残基（ａｓｐタグ）、ストレプトアビジンタグもしくはフラッグタグの付加によって、または（細胞からのそれらの分泌を促進するためのシグナル配列の付加によってポリペプチドが天然でそのような配列を含有しない場合に）修飾され得る。遺伝子タグを導入するための別法は、ポア上の天然のまたは操作された位置にタグを化学的に反応させることである。この例は、ポアの外側に操作されたシステインにゲルシフト試薬を反応させることである。これは、ヘモリジンヘテロ−オリゴマーを分離するステップのための方法として実証されている(Chem Biol.1997 Jul;4(7):497-505)。
変異体モノマーは、明示標識（revealing label）で標識され得る。明示標識は、ポアが検出されるようにする任意の好適な標識であってよい。好適な標識は、これだけに限らないが蛍光分子、放射性同位元素（例えば１２５Ｉ、３５Ｓ）、酵素、抗体、抗原、ポリヌクレオチド、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ペプチドおよびリガンド（ビオチンなど）を含む。
変異体モノマーは、Ｄ−アミノ酸を用いても生成され得る。例えば変異体モノマーは、Ｌ−アミノ酸とＤ−アミノ酸との混合物を含み得る。これは、そのようなタンパク質またはペプチドを生成するための当技術分野における従来法である。
変異体モノマーは、ポリヌクレオチドとの相互作用を促進するために１つまたは複数の特異的修飾を含有する。変異体モノマーは、他の非特異的な修飾をそれらがポア形成を干渉しない限り含有できる。多数の非特異的側鎖修飾が当技術分野において公知であり、変異体モノマーの側鎖に作出され得る。そのような修飾は、例えばアルデヒドとの反応に続くＮａＢＨ４での還元によるアミノ酸の還元的アルキル化、メチルアセトイミデート（methylacetimidate）でのアミジン化または無水酢酸でのアシル化を含む。
変異体モノマーは、当技術分野において公知の標準的方法を用いて生成され得る。単量体は、合成的にまたは組換え手段によって作出され得る。例えばポアはｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳および転写（ＩＶＴＴ）によって合成され得る。ポアモノマーを生成するための好適な方法は、国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ０９／００１６９０号（ＷＯ２０１０／００４２７３として公開）、第ＰＣＴ／ＧＢ０９／００１６７９号（ＷＯ２０１０／００４２６５として公開）または第ＰＣＴ／ＧＢ１０／０００１３３号（ＷＯ２０１０／０８６６０３として公開）に考察されている。ポアを膜に挿入するための方法は下に考察されている。
変異体モノマーをコードするポリヌクレオチド配列は、当技術分野における標準的方法を用いて得られ、複製され得る。そのような配列は、下により詳細に考察される。変異体モノマーをコードするポリヌクレオチド配列は、当技術分野における標準的技術を用いて細菌宿主細胞において発現され得る。変異体モノマーは、組換え発現ベクターからのポリペプチドの原位置での発現によって細胞において生成され得る。場合により発現ベクターは、ポリペプチドの発現を制御するために誘導性プロモーターを保持する。
変異体モノマーは、下に記載のように大規模に生成されることができ、ポア生成生物または組換え発現からの任意のタンパク質液体クロマトグラフィー系による精製が続く。典型的なタンパク質液体クロマトグラフィー系は、ＦＰＬＣ、ＡＫＴＡ ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｂｉｏ−Ｃａｄ ｓｙｓｔｅｍ、Ｂｉｏ−Ｒａｄ ＢｉｏＬｏｇｉｃ ｓｙｓｔｅｍおよびＧｉｌｓｏｎ ＨＰＬＣ ｓｙｓｔｅｍを含む。次いで変異体モノマーは、天然に存在するまたは人工の膜に本発明における使用のために挿入され得る。ポアを膜に挿入するための方法は下に考察されている。
いくつかの実施形態では変異体モノマーは、化学的に修飾されている。変異体モノマーは、任意の方法および任意の部位で化学的に修飾されている。変異体モノマーは、好ましくは、１つまたは複数のシステインへの分子の付着（システイン連結）、１つまたは複数のリジンへの分子の付着、１つまたは複数の非天然アミノ酸への分子の付着、エピトープの酵素修飾または末端の修飾によって化学的に修飾されている。そのような修飾を行うための好適な方法は、当技術分野において周知である。好適な非天然アミノ酸は、これだけに限らないが、４−アジド−Ｌ−フェニルアラニン（Ｆａｚ）およびLiu C. C. and Schultz P. G.、Annu. Rev. Biochem.、2010、79、413-444の図１において１〜７１と番号付けられたアミノ酸のいずれか１つを含む。変異体モノマーは、任意の分子の付着によって化学的に修飾されていてもよい。例えば変異体モノマーは、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ＤＮＡなどの核酸、色素、フルオロフォアまたはクロモフォアの付着によって化学的に修飾されていてもよい。
いくつかの実施形態では変異体モノマーは、モノマーを含むポアと標的分析物、標的ヌクレオチドまたは標的ポリヌクレオチドと間の相互作用を促進する分子アダプターで化学的に修飾されている。アダプターの存在は、ポアとヌクレオチドまたはポリヌクレオチドとのホストゲスト化学を改善し、それにより変異体モノマーから形成されたポアの配列決定能力を改善する。ホストゲスト化学の原理は、当技術分野において周知である。アダプターは、ポアの物理的または化学的特性に効果を有し、ヌクレオチドまたはポリヌクレオチドとのその相互作用を改善する。アダプターは、ポアのバレルまたはチャネルの電荷を変更できる、またはヌクレオチドもしくはポリヌクレオチドに特異的に相互作用するもしくは結合し、それによりポアとのその相互作用を促進する。
分子アダプターは、好ましくは環状分子（例えばシクロデキストリン）、ハイブリダイゼーションできる分子種、ＤＮＡ結合剤もしくはインターキレーター（interchelator）、ペプチドもしくはペプチド類似物、合成ポリマー、芳香族平面分子、正に荷電した小分子または水素結合できる小分子である。
アダプターは、環状であってよい。環状アダプターは、ポアと同じ対称性を好ましくは有する。
アダプターは、典型的には分析物、ヌクレオチドまたはポリヌクレオチドとホストゲスト化学を介して相互作用する。アダプターは、典型的にはヌクレオチドまたはポリヌクレオチドと相互作用できる。アダプターは、ヌクレオチドまたはポリヌクレオチドと相互作用できる１つまたは複数の化学基を含む。１つまたは複数の化学基は、好ましくはヌクレオチドまたはポリヌクレオチドと、疎水性相互作用、水素結合、ファンデルワールス力、π−カチオン相互作用および／または静電力などの非共有結合的相互作用によって相互作用する。ヌクレオチドまたはポリヌクレオチドと相互作用できる１つまたは複数の化学基は、好ましくは正に荷電している。ヌクレオチドまたはポリヌクレオチドと相互作用できる１つまたは複数の化学基は、より好ましくはアミノ基を含む。アミノ基は、一級、二級または三級炭素原子に付着され得る。アダプターは、より好ましくはアミノ基６、７、８または９個の環などのアミノ基の環を含む。アダプターは、最も好ましくはアミノ基６または９個の環を含む。プロトン化アミノ基の環は、ヌクレオチドまたはポリヌクレオチド中の負に荷電したリン酸基と相互作用できる。
ポア中のアダプターの正確な位置付けは、アダプターと変異体モノマーを含むポアとの間のホストゲスト化学によって促進され得る。アダプターは、ポア中の１つまたは複数のアミノ酸と相互作用できる１つまたは複数の化学基を好ましくは含む。アダプターは、より好ましくはポア中の１つまたは複数のアミノ酸と疎水性相互作用、水素結合、ファンデルワールス力、π−カチオン相互作用および／または静電力などの非共有結合的相互作用を介して相互作用できる１つまたは複数の化学基を含む。ポア中の１つまたは複数のアミノ酸と相互作用できる化学基は、典型的にはヒドロキシルまたはアミンである。ヒドロキシル基は、一級、二級または三級炭素原子に付着され得る。ヒドロキシル基は、ポア中の無荷電アミノ酸と水素結合を形成できる。ポアとヌクレオチドまたはポリヌクレオチドとの間の相互作用を促進する任意のアダプターは、用いられ得る。
好適なアダプターは、これだけに限らないが、シクロデキストリン、環状ペプチドおよびククルビツリル（cucurbiturils）を含む。アダプターは、好ましくはシクロデキストリンまたはその誘導体である。シクロデキストリンまたはその誘導体は、Eliseev、A. V.、and Schneider、H-J. (1994) J. Am. Chem. Soc. 116、6081-6088に開示のもののいずれかであってよい。アダプターは、より好ましくはヘプタキス−６−アミノ−β−シクロデキストリン（ａｍ７−βＣＤ）、６−モノデオキシ−６−モノアミノ−β−シクロデキストリン（ａｍ１−βＣＤ）またはヘプタキス−（６−デオキシ−６−グアニジノ）−シクロデキストリン（ｇｕ７−βＣＤ）である。ｇｕ７−βＣＤ中のグアニジノ基は、ａｍ７−βＣＤ中の一級アミンよりもさらに高いｐＫａを有し、それによりさらに正に荷電している。このｇｕ７−βＣＤアダプターは、ポア中のヌクレオチドの残存時間を増加させるために、測定される残基電流の正確さを増大させるためにおよび高温度での塩基検出速度または低いデータ取得速度を増大させるために用いられ得る。
サクシニミジル３−（２−ピリジルジチオ）プロピオン酸（ＳＰＤＰ）架橋剤が下により詳細に考察されるとおり用いられる場合、アダプターは、好ましくはヘプタキス（６−デオキシ−６−アミノ）−６−Ｎ−モノ（２−ピリジル）ジチオプロパノイル−β−シクロデキストリン（ａｍ６ａｍＰＤＰ１−βＣＤ）である。
より好適なアダプターは、糖単位８個を含む（したがって８倍の対称性を有する）γ−シクロデキストリンを含む。γ−シクロデキストリンは、リンカー分子を含み得るまたは、上で考察されたβ−シクロデキストリン例において用いられた全てもしくはさらなる修飾された糖単位を含むように修飾され得る。
分子アダプターは、好ましくは変異体モノマーに共有結合的に付着されている。アダプターは、当技術分野において公知の任意の方法を用いてポアに共有結合的に付着され得る。アダプターは、典型的には化学的連結を介して付着される。分子アダプターが、システイン連結を介して付着される場合、１つまたは複数のシステインは好ましくは置換によって変異体に導入されている。本発明の変異体モノマーは、当然のことながら位置２７２および２８３の１つまたは両方にシステイン残基を含み得る。変異体モノマーは、これらのシステインの１つまたは両方への分子アダプターの付着によって化学的に修飾されていてもよい。代替的に変異体モノマーは、他の位置に導入された１つまたは複数のシステインまたは、ＦＡｚなどの非天然アミノ酸への分子の付着によって化学的に修飾されていてもよい。
システイン残基の反応性は、隣接残基の修飾によって増強され得る。例えば近接アルギニン、ヒスチジンまたはリシン残基の塩基性基は、システインチオール基のｐＫａをより反応性のＳ−基のものに変化させる。システイン残基の反応性は、ｄＴＮＢなどのチオール保護基によって保護され得る。これらは、リンカーが付着する前に変異体モノマーの１つまたは複数のシステイン残基と反応できる。分子は、変異体モノマーに直接付着され得る。分子は、好ましくは化学的架橋剤またはペプチドリンカーなどのリンカーを用いて変異体モノマーに付着される。
好適な化学的架橋剤は、当技術分野において周知である。好ましい架橋剤は、２，５−ジオキソピロリジン−１−イル３−（ピリジン−２−イルジスルファニル）プロパノエート、２，５−ジオキソピロリジン−１−イル４−（ピリジン−２−イルジスルファニル）ブタノエートおよび２，５−ジオキソピロリジン−１−イル８−（ピリジン−２−イルジスルファニル）オクタノエートを含む。最も好ましい架橋剤は、サクシニミジル３−（２−ピリジルジチオ）プロピオン酸（ＳＰＤＰ）である。典型的には分子は、分子／架橋剤複合体が変異体モノマーに共有結合的に付着される前に二官能性架橋剤に共有結合的に付着されるが、二官能性架橋剤／モノマー複合体が分子に付着する前に二官能性架橋剤がモノマーに共有結合的に付着することも可能である。
リンカーは、好ましくはジチオスレイトール（ＤＴＴ）に抵抗性である。好適なリンカーは、これだけに限らないが、ヨードアセトアミドに基づくおよびマレイミドに基づくリンカーを含む。
他の実施形態ではモノマーは、ポリヌクレオチド結合タンパク質に付着され得る。これは、本発明の方法において用いられ得るモジュラー配列決定系を形成する。ポリヌクレオチド結合タンパク質は、下に考察される。
ポリヌクレオチド結合タンパク質は、変異体モノマーに共有結合的に付着され得る。タンパク質は、当技術分野において公知の任意の方法を用いてポアに共有結合的に付着され得る。モノマーおよびタンパク質は、化学的に融合または遺伝子的に融合され得る。モノマーおよびタンパク質は、構築物全体が単一のポリヌクレオチド配列から発現される場合は、遺伝子的に融合される。ポアのポリヌクレオチド結合タンパク質への遺伝子的融合は、国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ０９／００１６７９号（ＷＯ２０１０／００４２６５として公開）において考察されている。
ポリヌクレオチド結合タンパク質がシステイン連結を介して付着結合される場合、１つまたは複数のシステインは、好ましくは置換によって変異体に導入されている。そのような置換は、相同体のなかで低い保存を有し、変異または挿入が許容され得ることを示唆するループ領域内に典型的には作られる。したがってそれらは、ポリヌクレオチド結合タンパク質を付着するために好適である。そのような置換は、典型的には配列番号２の残基１から４３および１２７から２９７に作られる。システイン残基の反応性は、上に記載の修飾によって増強され得る。
ポリヌクレオチド結合タンパク質は、変異体モノマーに直接または１つまたは複数のリンカーを介して付着され得る。ポリヌクレオチド結合タンパク質は、国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ１０／０００１３２号（ＷＯ２０１０／０８６６０２として公開）に記載のハイブリダイゼーションリンカーを用いて変異体モノマーに付着され得る。代替的に、ペプチドリンカーが用いられ得る。ペプチドリンカーは、アミノ酸配列である。ペプチドリンカーの長さ、可動性および親水性は、典型的にはモノマーおよび分子の機能を妨害しないように設計される。好ましい可動性ペプチドリンカーは、４、６、８、１０または１６個のセリンおよび／またはグリシンアミノ酸などの２から２０個のストレッチである。より好ましい可動性リンカーは、（ＳＧ）１、（ＳＧ）２、（ＳＧ）３、（ＳＧ）４、（ＳＧ）５および（ＳＧ）８を含み、式中Ｓはセリン、Ｇはグリシンである。好ましい硬いリンカーは、プロリンアミノ酸４、６、８、１６または２４個などの２から３０個のストレッチである。より好ましい硬いリンカーは、（Ｐ）１２を含み、式中Ｐはプロリンである。
変異体モノマーは、分子アダプターおよびポリヌクレオチド結合タンパク質で化学的に修飾されていてもよい。
変異体ライセニンモノマー作製
本発明は、配列番号２に示す配列を含むライセニンモノマーのポリヌクレオチドを特性決定するための能力を改善する方法も提供する。方法は、配列番号２のおよそ位置４４からおよそ位置１２６の領域内に、ポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力を変更し、ポアを形成するモノマーの能力に影響を与えない１つまたは複数の修飾を作るステップを含む。変異体ライセニンモノマーを参照して上におよびポリヌクレオチドの特性決定することを参照して下に考察するいずれの実施形態も本発明の方法に等しく適用される。
構築物
本発明は、ライセニン由来の２つ以上の共有結合的に付着されたモノマーを含む構築物であって、モノマーの少なくとも１つが本発明の変異体ライセニンモノマーである構築物も提供する。本発明の構築物は、ポアを形成するその能力を保持している。本発明の１つまたは複数の構築物は、標的分析物を特性決定するポアを形成するために用いられ得る。本発明の１つまたは複数の構築物は、標的ポリヌクレオチドを配列決定するなどの標的ポリヌクレオチドを特性決定するためのポアを形成するために用いられ得る。構築物は、２、３、４、５、６、７、８、９または１０個以上のモノマーを含んでよい。２つ以上のモノマーは、同じであっても異なっていてもよい。
少なくとも構築物中のモノマーは、本発明の変異体モノマーである。構築物中の他のモノマーは、本発明の変異体モノマーでなくてもよい。例えば少なくとも１つのモノマーは、配列番号２に示す配列を含んでよい。構築物中の少なくとも１つのモノマーは、配列番号２のパラログまたは相同体であってよい。好適な相同体は、配列番号１６から１９に示されている。
代替的に少なくとも１つのモノマーは、アミノ酸同一性に基づいてその配列全体にわたって配列番号２に少なくとも５０％相同性であるが、本発明の変異体モノマーに必要であるいずれの特異的変異も含まない配列番号２の変種を含み得る。より好ましくは変種は、配列全体にわたって配列番号２のアミノ酸配列にアミノ酸同一性に基づいて少なくとも５５％、少なくとも６０％、少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、およびより好ましくは少なくとも９５％、９７％または９９％相同性であってよい。変種は、上に考察の断片または任意の他の変種であってよい。本発明の構築物は、その配列全体にわたってアミノ酸同一性に基づいて少なくとも５０％相同性である、または配列番号１６、１７、１８または１９について上に述べた相同性の少なくとも任意の他のレベルの相同性である配列番号１６、１７、１８または１９の変種も含む。
構築物中の全てのモノマーは、本発明の変異体モノマーであってよい。変異体モノマーは、同じであっても異なっていてもよい。さらに好ましい実施形態では、構築物はモノマー２個を含み、モノマーの少なくとも１つは本発明の変異体モノマーである。
モノマーは、遺伝子的に融合され得る。構築物全体が単一のポリヌクレオチド配列から発現される場合、モノマーは、遺伝子的に融合される。モノマーのコード配列は、構築物をコードする単一のポリヌクレオチド配列を形成するために任意の方法で組み合わされ得る。遺伝子的融合は、国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ０９／００１６７９号（ＷＯ２０１０／００４２６５として公開）において考察されている。
モノマーは、任意の配置で遺伝子的に融合され得る。モノマーは、それらの末端アミノ酸を介して融合され得る。例えば１つのモノマーのアミノ末端は、別のモノマーのカルボキシ末端に融合され得る。
２つ以上のモノマーは、直接合わせて遺伝子的に融合され得る。モノマーは、好ましくはリンカーを用いて遺伝子的に融合される。リンカーは、モノマーの可動性を制限するように設計され得る。好ましいリンカーは、アミノ酸配列（すなわちペプチドリンカー）である。上に考察の任意のペプチドリンカーが用いられ得る。
別の好ましい実施形態ではモノマーは、化学的に融合される。モノマーは、例えば化学的架橋剤を介してそれらが化学的に付着される場合に化学的に融合されている。上に考察の任意の化学的架橋剤が用いられ得る。リンカーは、変異体モノマーに導入された１つまたは複数のシステイン残基または、Ｆａｚなどの非天然アミノ酸に付着され得る。代替的にリンカーは、構築物中のモノマーの内の１つの末端に付着され得る。モノマーは、配列番号２の残基１から４３および１２７から２９７の１つまたは複数を介して典型的には連結される。
構築物がさまざまなモノマーを含有する場合、モノマーのそれ自体への交差結合はリンカーの濃度をモノマーより大過剰に保つことによって防ぎ得る。代替的に「鍵と鍵穴」配置は、２つのリンカーが用いられる場合に用いられ得る。各リンカーの一方の末端だけがより長いリンカーを形成するために合わせて反応でき、リンカーの他方の末端はそれぞれ異なるモノマーと反応する。そのようなリンカーは国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ１０／０００１３２号（ＷＯ２０１０／０８６６０２として公開）に記載されている。
本発明は、本発明の構築物を産生する方法も提供する。方法は、少なくとも１つの本発明の変異体ライセニンモノマーをライセニン由来の１つまたは複数のモノマーに共有結合的に付着させることを含む。本発明の構築物を参照して上に考察したいずれの実施形態も構築物を産生する方法に等しく適用される。
ポリヌクレオチド
本発明は、本発明の変異体モノマーをコードするポリヌクレオチド配列も提供する。変異体モノマーは、上に考察した任意のものであってよい。ポリヌクレオチド配列は、配列全体にわたって配列番号１の配列にヌクレオチド同一性に基づいて少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または９５％相同性である配列を好ましくは含む。近接ヌクレオチドの３００個以上（例えば３７５、４５０、５２５または６００個以上）のストレッチにわたって少なくとも８０％、例えば少なくとも８５％、９０％または９５％ヌクレオチド同一性であってよい（「高い相同性」）。相同性は、上に記載のとおり算出され得る。ポリヌクレオチド配列は、遺伝子コードの縮重に基づいて配列番号１とは異なる配列を含む場合がある。
本発明は、任意の遺伝子的に融合された本発明の構築物をコードするポリヌクレオチド配列も提供する。ポリヌクレオチドは、配列番号１に示す２つ以上の配列または上に記載のその変種を好ましくは含む。
ポリヌクレオチド配列は、当技術分野における標準的方法を用いて誘導および複製され得る。野生型ライセニンをコードしている染色体ＤＮＡは、エイセニア・フェティダ（Eisenia fetida）などのポア産生生物から抽出され得る。ポアモノマーをコードしている遺伝子は、特異的プライマーを含むＰＣＲを用いて増幅され得る。増幅された配列は、次いで部位特異的変異導入を受ける。部位特異的変異導入の好適な方法は、当技術分野において公知であり、例えば組合せ連鎖反応（combine chain reaction）を含む。本発明の構築物をコードしているポリヌクレオチドは、Sambrook、J. and Russell、D. (2001). Molecular Cloning: A Laboratory Manual、3rd Edition. Cold Spring Harbor Laboratory Press、Cold Spring Harbor、NYに記載のものなどの周知の技術を用いて作られ得る。
得られたポリヌクレオチド配列は、次いでクローニングベクターなどの組換え複製可能ベクターに組み込まれ得る。ベクターは、適合性宿主細胞においてポリヌクレオチドを複製するために用いられ得る。したがってポリヌクレオチド配列は、ポリヌクレオチドを複製可能ベクターに導入すること、ベクターを適合性宿主細胞に導入すること、および宿主細胞をベクターの複製をもたらす条件下で増殖させることによって作られ得る。ベクターは、宿主細胞から回収され得る。ポリヌクレオチドのクローニングのために好適な宿主細胞は、当技術分野において公知であり、下により詳細に記載される。
ポリヌクレオチド配列は、好適な発現ベクターにクローニングされ得る。発現ベクターでは、ポリヌクレオチド配列は典型的には、宿主細胞によるコード配列の発現を提供できる制御配列に作動可能に連結される。そのような発現ベクターは、ポアサブユニットを発現するために用いられ得る。
用語「作動可能に連結した」は、記載される構成成分がそれらの意図する様式で機能できる関係にある近位を指す。コード配列に「作動可能に連結した」制御配列は、制御配列と適合性である条件下でコード配列の発現が達成されるように連結される。同じまたは異なるポリヌクレオチド配列の複数のコピーがベクターに導入され得る。
次いで発現ベクターは、好適な宿主細胞に導入され得る。それにより本発明の変異体モノマーまたは構築物は、ポリヌクレオチド配列を発現ベクターに挿入すること、ベクターを適合性細菌宿主細胞に導入すること、および宿主細胞をポリヌクレオチド配列の発現をもたらす条件下で増殖させることによって産生され得る。組換え的に発現されるモノマーまたは構築物は、宿主細胞膜においてポアに自己会合できる。代替的に、この様式で産生された組換えポアは、宿主細胞から除去されてよく、別の膜に挿入され得る。少なくとも２つの異なるサブユニットを含むポアを産生する場合、上に記載のとおり異なるサブユニットは異なる宿主細胞において別々に発現され、宿主細胞から除去され、ヒツジ赤血球膜またはスフィンゴミエリン含有リポソームなどの別の膜中のポアに会合され得る。
ベクターは、例えば、複製開始点、場合により前記ポリヌクレオチド配列の発現のためのプロモーターおよび場合によりプロモーターのレギュレーターと共に提供されるプラスミド、ウイルスまたはファージベクターであってよい。ベクターは、１つまたは複数の選択可能マーカー遺伝子（例えばテトラサイクリン耐性遺伝子）を含有できる。プロモーターおよび他の発現レギュレーションシグナルは、発現ベクターが設計される宿主細胞と適合性であるように選択され得る。Ｔ７、ｔｒｃ、ｌａｃ、ａｒａまたはλＬプロモーターが典型的には用いられる。
宿主細胞は、高レベルでポアサブユニットを典型的には発現する。ポリヌクレオチド配列で形質転換された宿主細胞は、細胞を形質転換するために用いられる発現ベクターに適合性であるように選ばれる。宿主細胞は、典型的には細菌性であり、好ましくは大腸菌（Escherichia coli）である。λＤＥ３溶原性（lysogen）を有する任意の細胞、例えばＣ４１（ＤＥ３）、ＢＬ２１（ＤＥ３）、ＪＭ１０９（ＤＥ３）、Ｂ８３４（ＤＥ３）、ＴＵＮＥＲ、ＯｒｉｇａｍｉおよびＯｒｉｇａｍｉ Ｂは、Ｔ７プロモーターを含むベクターを発現できる。上に列挙した条件に加えてProc Natl Acad Sci U S A. 2008 Dec 30;105(52):20647-52に引用された任意の方法もライセニンタンパク質を発現するために用いられ得る。
ポア
本発明は、種々のポアも提供する。本発明のポアは、分析物を特性決定するために理想的である。本発明のポアは、それらが異なるヌクレオチド間を高感度で識別できることから、配列決定などポリヌクレオチドを特性決定するために特に理想的である。ポアは、核酸を配列決定することおよび単一塩基変化を同定することを含んで、ＤＮＡおよびＲＮＡなどの核酸を特性決定するために用いられ得る。本発明のポアは、メチル化と未メチル化ヌクレオチドとの間でさえ識別できる。本発明のポアの塩基分解能は、驚くほど高い。ポアは、４種全てのＤＮＡヌクレオチドのほぼ完全な分離を示す。ポアは、ポア中の残存時間およびポアを通って流れる電流に基づいてデオキシシチジン一リン酸（ｄＣＭＰ）とメチル−ｄＣＭＰとを識別するためにさらに用いられ得る。
本発明のポアは、さまざまな条件下でも異なるヌクレオチド間を識別できる。具体的にはポアは、ポリヌクレオチドを特性決定（配列決定など）するために適している条件下でヌクレオチド間を識別する。本発明のポアが異なるヌクレオチド間を識別できる程度は、印加電位、塩濃度、緩衝液、温度ならびに、尿素、ベタインおよびＤＴＴなどの添加物の存在を変更することによって制御され得る。これは、ポアの機能が（特に配列決定のときに）微調整されることを可能にする。これは下でより詳細に考察される。本発明のポアは、ヌクレオチド塩基ごとにヌクレオチドについてよりも、１つまたは複数のモノマーとの相互作用からポリヌクレオチドポリマーを同定するためにも用いられ得る。
本発明のポアは、単離され得る、実質的に単離され得る、精製され得るまたは実質的に精製され得る。脂質または他のポアなどの任意の他の構成成分を完全に含まない場合、本発明のポアは、単離されているまたは精製されている。ポアは、その意図する使用を干渉しない担体または希釈剤と混合されている場合、実質的に単離されている。例えばポアは、脂質または他のポアなどの他の構成成分を１０％未満、５％未満、２％未満または１％未満含む形態で存在する場合、実質的に単離されているまたは実質的に精製されている。代替的に本発明のポアは、脂質二重層中に存在する場合がある。
本発明のポアは、個別にまたは単一ポアとして存在できる。代替的に本発明のポアは、均一なもしくは不均一な集団または２つ以上の複数のポアで存在できる。
ホモオリゴマーポア
本発明は、同一の本発明の変異体モノマーを含むライセニン由来のホモオリゴマーポアも提供する。モノマーは、それらのアミノ酸配列に関して同一である。本発明のホモオリゴマーポアは、配列決定など、ポリヌクレオチドを特性決定するために理想的である。本発明のホモオリゴマーポアは、上に考察のいずれの有利点も有し得る。本発明の特異的ホモオリゴマーポアの有利点は、実施例において示されている。
ホモオリゴマーポアは、任意の数の変異体モノマーを含有できる。ポアは、典型的には２つ以上の変異体モノマーを含む。１つまたは複数の変異体モノマーは、上に考察したとおり好ましくは化学的に修飾されている。換言すると化学的に修飾された１つまたは複数のモノマー（他は化学的に修飾されていない）は、各モノマーのアミノ酸配列が同一である限り、ポアがホモオリゴマーであることを妨げない。
ライセニンポアを作るための方法は、実施例およびYamaji et al.、J. Biol. Chem. 1998; 273(9): 5300-6に記載されている。
ヘテロオリゴマーポア
本発明は、少なくとも１つの本発明の変異体モノマーを含むライセニン由来ヘテロオリゴマーポアであって、少なくとも１つのモノマーは他と異なっているヘテロオリゴマーポアも提供する。モノマーは、そのアミノ酸配列に関して他と異なっている。本発明のヘテロオリゴマーポアは、配列決定などポリヌクレオチドを特性決定するために理想的である。ヘテロオリゴマーポアは、当技術分野において公知の方法を用いて作られ得る（例えばProtein Sci. 2002 Jul;11(7):1813-24）。
ヘテロオリゴマーポアは、ポアを形成するために十分なモノマーを含有する。モノマーは任意の種類であってよい。ポアは、典型的には２つ以上のモノマーを含む。
ポアは、配列番号２に示す配列を含む少なくとも１つのモノマー、そのパラログ、その相同体または本発明の変異体モノマーに必要である変異を有さないその変種を含み得る。好適な変種は、配列番号２、１６、１７、１８および１９ならびにその変種を含んで、本発明の構築物を参照して上に考察されたもののいずれかである。本実施形態では残りのモノマーは、好ましくは本発明の変異体モノマーである。
好ましい実施形態ではポアは（ａ）本発明の１つの変異体モノマーおよび（ｂ）前記ポアを形成するための十分な数の同一モノマーを含み、（ａ）における前記変異体モノマーは（ｂ）における同一モノマーとは異なる。（ｂ）における同一モノマーは、配列番号２に示す配列、そのパラログ、その相同体または本発明の変異体モノマーに必要である変異を有さないその変種を好ましくは含む。
本発明のヘテロオリゴマーポアは、本発明の変異体ライセニンモノマーを好ましくは１つだけ含む。
別の好ましい実施形態では、ヘテロオリゴマーポア中の全てのモノマーは、本発明の変異体モノマーであり、それらの内の少なくとも１つは他と異なる。
上に考察した全ての実施形態では、上に考察したとおり１つまたは複数の変異体モノマーは好ましくは化学的に修飾されている。１つのモノマーへの化学修飾の存在は、ポアをヘテロオリゴマー化させない。少なくとも１つのモノマーのアミノ酸配列は、他のモノマーの配列（複数可）とは異なっていなければならない。ポアを作るための方法は、下により詳細に考察される。
構築物含有ポア
本発明は、少なくとも１つの本発明の構築物を含むポアも提供する。本発明の構築物は、ライセニン由来の２つ以上の共有結合的に付着されたモノマーを含み、少なくとも１つのモノマーは、本発明の変異体ライセニンモノマーである。換言すると構築物は、１つより多いモノマーを含有しなければならない。ポア中の少なくとも２つのモノマーは、本発明の構築物の形態にある。モノマーは任意の種類でよい。
ポアは典型的には（ａ）２つのモノマーを含む１つの構築物および（ｂ）ポアを形成するために十分な数のモノマー、を含有する。構築物は、上に考察されたもののいずれであってもよい。モノマーは、本発明の変異体モノマーを含んで、上に考察されたもののいずれであってもよい。
別の典型的ポアは、２つ、３つまたは４つの本発明の構築物などの１つより多い本発明の構築物を含む。そのようなポアは、ポアを形成するために十分な数のモノマーをさらに含む。モノマーは、上に考察されたもののいずれであってもよい。本発明のさらなるポアは、２つのモノマーを含む構築物だけを含む。本発明による特異的ポアは、それぞれが２つのモノマーを含むいくつかの構築物を含む。構築物は、各構築物から１つだけのモノマーがポアに寄与するような構造を有するポアにオリゴマー形成できる。典型的には構築物の他のモノマー（すなわちポアを形成しないもの）は、ポアの外側にある。
変異は、上に記載のとおり構築物に導入され得る。変異は、変更であってよい、すなわち変異は２つのモノマー構築物内の各モノマーについて異なっており、構築物はホモオリゴマーとして会合し、修飾の変更をもたらす。換言すると、ＭｕｔＡおよびＭｕｔＢを含むモノマーは、Ａ−Ｂ：Ａ−Ｂ：Ａ−Ｂ：Ａ−Ｂポアを形成するように融合および会合する。代替的に変異は、隣接していてよい（すなわち同一の変異が構築物中の２つモノマーに導入され、次いでこれは異なる変異体モノマーとオリゴマー形成される）。換言すると、ＭｕｔＡを含むモノマーは融合され、Ａ−Ａ：Ｂ：Ｂ：Ｂ：Ｂ：Ｂ：Ｂを形成するためのＭｕｔＢ−含有モノマーとのオリゴマー形成が続く。
ポアを含有する構築物中の本発明の１つまたは複数のモノマーは、上に考察したとおり化学的に修飾されていてもよい。
本発明のポアの産生
本発明は、本発明のポアを産生する方法も提供する。方法は、少なくとも１つの本発明の変異体モノマーまたは少なくとも１つの本発明の構築物が十分な数の本発明の変異体ライセニンモノマー、本発明の構築物またはライセニン由来モノマーとポアを形成するようにオリゴマー形成できるようにするステップを含む。方法が本発明のホモオリゴマーポアを作るステップに関する場合、方法において用いられる全てのモノマーは同一のアミノ酸配列を有する本発明の変異体ライセニンモノマーである。方法が本発明のヘテロオリゴマーポアを作るステップに関する場合、少なくとも１つのモノマーは他と異なっている。本発明のポアを参照して上に考察されたいずれの実施形態もポアを産生する方法に等しく適用される。
本発明のポアを作る好ましい方法は、実施例１に開示されている。
分析物を特性決定する方法
本発明は、標的分析物を特性決定する方法を提供する。方法は、標的分析物を本発明のポアに接触させて、標的分析物がポアを通って移動するようにするステップを含む。次いで、分析物がポアに関して移動するときに、標的分析物の１つまたは複数の特性を当技術分野において公知の標準的方法を用いて測定する。標的分析物の１つまたは複数の特性は、分析物がポアを通って移動するときに好ましくは測定される。ステップ（ａ）および（ｂ）は、好ましくはポアに電位が印加されて実行される。下により詳細に考察されるとおり、印加された電位は、ポアとポリヌクレオチド結合タンパク質との複合体の形成を典型的には生じる。印加された電位は、電圧電位であってよい。代替的に印加された電位は、化学電位であってよい。この一例は、両親媒性層全体に塩勾配を用いている。塩勾配は、Holdenら、J Am Chem Soc. 2007 Jul 11;129(27):8650-5に開示されている。
本発明の方法は、標的分析物を特性決定するためである。方法は、少なくとも１つの分析物を特性決定するためである。方法は、２つ以上の分析物を特性決定することに関する場合がある。方法は、２、５、１０、１５、２０、３０、４０、５０、１００個以上の分析物などの任意の数の分析物を特性決定することを含み得る。
標的分析物は、好ましくは金属イオン、無機塩、ポリマー、アミノ酸、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、ヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、色素、漂白剤、医薬品、診断薬、レクリエーショナルドラッグ、爆発物または環境汚染物質である。方法は、２つ以上のタンパク質、２つ以上のヌクレオチドまたは２つ以上の医薬品などの同じ種類の２つ以上の分析物を特性決定することに関する場合がある。代替的に方法は、１つまたは複数のタンパク質、１つまたは複数のヌクレオチドおよび１つまたは複数の医薬品などの２つ以上の異なる種類の分析物を特性決定することに関する場合がある。
標的分析物は、細胞から分泌される場合がある。代替的に標的分析物は、本発明が実行される前に分析物が細胞から抽出されなければならないような細胞内に存在する分析物であってよい。
分析物は、好ましくはアミノ酸、ペプチド、ポリペプチドおよび／またはタンパク質である。アミノ酸、ペプチド、ポリペプチドまたはタンパク質は天然に存在するまたは天然に存在しないものでよい。ポリペプチドまたはタンパク質は、その中に合成または修飾アミノ酸を含んでもよい。アミノ酸への多数の異なる種類の修飾が当技術分野において公知である。好適なアミノ酸およびその修飾は上記である。本発明の目的のために、標的分析物が当技術分野において利用可能な任意の方法によって修飾され得ることは理解される。
タンパク質は、酵素、抗体、ホルモン、増殖因子または、サイトカインなどの増殖調節タンパク質であってよい。サイトカインは、インターロイキン（好ましくはＩＦＮ−１、ＩＬ−１、ＩＬ−２、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−１０、ＩＬ−１２およびＩＬ−１３）、インターフェロン（好ましくはＩＬ−γ）およびＴＮＦ−αなどの他のサイトカインから選択され得る。タンパク質は、細菌性タンパク質、真菌性タンパク質、ウイルスタンパク質または寄生生物由来タンパク質であってよい。
標的分析物は、好ましくはヌクレオチド、オリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドである。ヌクレオチドは、典型的には、核酸塩基、糖および少なくとも１つのリン酸基を含有する。核酸塩基は典型的には複素環である。核酸塩基は、これだけに限らないがプリンおよびピリミジンならびにより具体的にはアデニン、グアニン、チミン、ウラシルおよびシトシンを含む。糖は典型的には五炭糖である。ヌクレオチド糖は、これだけに限らないがリボースおよびデオキシリボースを含む。ヌクレオチドは、典型的にはリボヌクレオチドまたはデオキシリボヌクレオチドである。ヌクレオチドは典型的には一リン酸、二リン酸または三リン酸を含有する。リン酸は、ヌクレオチドの５’または３’側に付着できる。
ヌクレオチドは、これだけに限らないが、アデノシン一リン酸（ＡＭＰ）、アデノシン二リン酸（ＡＤＰ）、アデノシン三リン酸（ＡＴＰ）、グアノシン一リン酸（ＧＭＰ）、グアノシン二リン酸（ＧＤＰ）、グアノシン三リン酸（ＧＴＰ）、チミジン一リン酸（ＴＭＰ）、チミジン二リン酸（ＴＤＰ）、チミジン三リン酸（ＴＴＰ）、ウリジン一リン酸（ＵＭＰ）、ウリジン二リン酸（ＵＤＰ）、ウリジン三リン酸（ＵＴＰ）、シチジン一リン酸（ＣＭＰ）、シチジン二リン酸（ＣＤＰ）、シチジン三リン酸（ＣＴＰ）、５−メチルシチジン一リン酸、５−メチルシチジン二リン酸、５−メチルシチジン三リン酸、５−ヒドロキシメチルシチジン一リン酸、５−ヒドロキシメチルシチジン二リン酸、５−ヒドロキシメチルシチジン三リン酸、環状アデノシン一リン酸（ｃＡＭＰ）、環状グアノシン一リン酸（ｃＧＭＰ）、デオキシアデノシン一リン酸（ｄＡＭＰ）、デオキシアデノシン二リン酸（ｄＡＤＰ）、デオキシアデノシン三リン酸（ｄＡＴＰ）、デオキシグアノシン一リン酸（ｄＧＭＰ）、デオキシグアノシン二リン酸（ｄＧＤＰ）、デオキシグアノシン三リン酸（ｄＧＴＰ）、デオキシチミジン一リン酸（ｄＴＭＰ）、デオキシチミジン二リン酸（ｄＴＤＰ）、デオキシチミジン三リン酸（ｄＴＴＰ）、デオキシウリジン一リン酸（ｄＵＭＰ）、デオキシウリジン二リン酸（ｄＵＤＰ）、デオキシウリジン三リン酸（ｄＵＴＰ）、デオキシシチジン一リン酸（ｄＣＭＰ）、デオキシシチジン二リン酸（ｄＣＤＰ）およびデオキシチジン三リン酸（ｄＣＴＰ）、５−メチル−２’−デオキシシチジン一リン酸、５−メチル−２’−デオキシシチジン二リン酸、５−メチル−２’−デオキシチジン三リン酸、５−ヒドロキシメチル−２’−デオキシシチジン一リン酸、５−ヒドロキシメチル−２’−デオキシシチジン二リン酸および５−ヒドロキシメチル−２’−デオキシチジン三リン酸を含む。ヌクレオチドは、好ましくはＡＭＰ、ＴＭＰ、ＧＭＰ、ＵＭＰ、ｄＡＭＰ、ｄＴＭＰ、ｄＧＭＰまたはｄＣＭＰから選択される。ヌクレオチドは塩基を持たない場合がある（すなわち核酸塩基を欠失している）。ヌクレオチドは、追加的修飾を含有する場合がある。具体的には、好適な修飾ヌクレオチドは、これだけに限らないが、２’アミノピリミジン（２’−アミノシチジンおよび２’−アミノウリジンなど）、２’−ヒドロキシルプリン、２’−フルオロピリミジン（２’−フルオロシチジンおよび２’フルオロウリジンなど）、ヒドロキシルピリミジン（５’−α−Ｐ−ボラノウリジンなど）、２’−Ｏ−メチルヌクレオチド（２’−Ｏ−メチルアデノシン、２’−Ｏ−メチルグアノシン、２’−Ｏ−メチルシチジンおよび２’−Ｏ−メチルウリジンなど）、４’−チオピリミジン（４’−チオウリジンおよび４’−チオシチジンなど）ならびに核酸塩基の修飾を有するヌクレオチド（５−ペンチニル−２’−デオキシウリジン、５−（３−アミノプロピル）−ウリジンおよび１，６−ジアミノヘキシル−Ｎ−５−カルバモイルメチルウリジンなど）を含む。
オリゴヌクレオチドは、４０個以下、３０個以下、２０個以下、１０個以下または５個以下のヌクレオチドなどの５０個以下のヌクレオチドを典型的には有する短いヌクレオチドポリマーである。オリゴヌクレオチドは、塩基を持たないおよび修飾ヌクレオチドを含む上に考察した任意のヌクレオチドを含んでよい。本発明の方法は、好ましくは標的ポリヌクレオチドを特性決定するためである。核酸などのポリヌクレオチドは、２つ以上のヌクレオチドを含む巨大分子である。ポリヌクレオチドまたは核酸は、任意のヌクレオチドの任意の組合せを含んでよい。ヌクレオチドは、天然に存在するまたは人工物であってよい。標的ポリヌクレオチド中の１つまたは複数のヌクレオチドは、酸化またはメチル化されてよい。標的ポリヌクレオチド中の１つまたは複数のヌクレオチドは、損傷を受けていてよい。例えばポリヌクレオチドは、ピリミジン二量体を含んでよい。そのような二量体は、典型的には紫外線による損傷と関連しており、皮膚メラノーマの主原因である。標的ポリヌクレオチド中の１つまたは複数のヌクレオチドは、例えば標識またはタグで修飾され得る。好適な標識は、上に記載されている。標的ポリヌクレオチドは、１つまたは複数のスペーサーを含んでよい。
ヌクレオチドは上に定義されている。ポリヌクレオチド中に存在するヌクレオチドは、これだけに限らないが、アデノシン一リン酸（ＡＭＰ）、グアノシン一リン酸（ＧＭＰ）、チミジン一リン酸（ＴＭＰ）、ウリジン一リン酸（ＵＭＰ）、シチジン一リン酸（ＣＭＰ）、環状アデノシン一リン酸（ｃＡＭＰ）、環状グアノシン一リン酸（ｃＧＭＰ）、デオキシアデノシン一リン酸（ｄＡＭＰ）、デオキシグアノシン一リン酸（ｄＧＭＰ）、デオキシチミジン一リン酸（ｄＴＭＰ）、デオキシウリジン一リン酸（ｄＵＭＰ）およびデオキシシチジン一リン酸（ｄＣＭＰ）を典型的には含む。ヌクレオチドは、好ましくはＡＭＰ、ＴＭＰ、ＧＭＰ、ＣＭＰ、ＵＭＰ、ｄＡＭＰ、ｄＴＭＰ、ｄＧＭＰ、ｄＣＭＰおよびｄＵＭＰから選択される。
ヌクレオチドは塩基を持たない場合がある（すなわち核酸塩基を欠失している）。
ポリヌクレオチド中のヌクレオチドは、任意の様式で相互に付着していてよい。ヌクレオチドは、核酸中のそれらの糖およびリン酸基で典型的には付着される。ヌクレオチドは、ピリミジン二量体においてと同様にそれらの核酸塩基を介して繋がってよい。
ポリヌクレオチドは、１本鎖または２本鎖であってよい。ポリヌクレオチドの少なくとも一部は、好ましくは２本鎖である。１本鎖ポリヌクレオチドは、それらにハイブリダイズした１つまたは複数のプライマーを有してよく、それにより２本鎖ポリヌクレオチドの１つまたは複数の短い領域を含む。プライマーは、標的ポリヌクレオチドと同じ種類のポリヌクレオチドまたは異なる種類のポリヌクレオチドであってよい。
ポリヌクレオチドは、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）またはリボ核酸（ＲＮＡ）などの核酸であってよい。標的ポリヌクレオチドは、ＤＮＡの１本鎖にハイブリダイズしたＲＮＡの１本鎖を含む場合がある。ポリヌクレオチドは、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、グリセロール核酸（ＧＮＡ）、トレオース核酸（ＴＮＡ）、ロックド核酸（ＬＮＡ）またはヌクレオチド側鎖を有する他の合成ポリマーなどの当技術分野において公知の任意の合成核酸であってよい。
標的ポリヌクレオチドの全体または部分だけは、本方法を用いて特性付けられ得る。標的ポリヌクレオチドは、任意の長さであってよい。例えばポリヌクレオチドは、長さ少なくとも１０、少なくとも５０、少なくとも１００、少なくとも１５０、少なくとも２００、少なくとも２５０、少なくとも３００、少なくとも４００または少なくとも５００ヌクレオチド対であってよい。ポリヌクレオチドは、１０００ヌクレオチド対以上、長さ５０００ヌクレオチド対以上または長さ１０００００ヌクレオチド対以上であってよい。
標的分析物、例えば標的ポリヌクレオチドは、任意の好適な試料中に存在する。本発明は、標的分析物、例えば標的ポリヌクレオチドを含有することが公知であるまたは含有すると考えられる試料について典型的には実行される。代替的に本発明は、１つまたは複数の標的分析物、例えば標的ポリヌクレオチドの同一性を確認するために試料中でのその存在が公知であるまたは期待される試料について実行され得る。
試料は生物学的試料であってよい。本発明は、任意の生物または微生物から得られたまたは抽出された試料についてｉｎ ｖｉｔｒｏで実行されてよい。生物または微生物は典型的には始生代のもの、原核性または真核性であり、典型的には五界：植物界、動物界、菌界、モネラ界および原生生物界に属する。本発明は、任意のウイルスから得られたまたは抽出された試料についてｉｎ ｖｉｔｒｏで実行されてよい。試料は、好ましくは液体試料である。試料は典型的には、患者の体液を含む。試料は尿、リンパ液、唾液、粘液または羊水であってよいが、好ましくは血液、血漿または血清である。典型的には試料は、ヒト由来であるが、代替的に、ウマ、ウシ、ヒツジまたはブタなどの商業的に飼育される動物由来などの別の哺乳動物由来であってもよく、代替的にネコまたはイヌなどの愛玩動物であってもよい。代替的に植物由来の試料は、穀類、マメ、果実または野菜などの商品作物（例えばコムギ、オオムギ、カラスムギ、セイヨウアブラナ、トウモロコシ、ダイズ、イネ、バナナ、リンゴ、トマト、ジャガイモ、ブドウ、タバコ、マメ、レンズマメ、サトウキビ、ココア、ワタ）から典型的には得られる。
試料は、非生物学的試料であってよい。非生物学的試料は、好ましくは液体試料である。非生物学的試料の例は、手術用液（surgical fluids）、水（飲料水、海水または河川水など）および検査室検査のための試薬を含む。
試料は、典型的にはアッセイされる前に例えば遠心分離によってまたは、不要の分子または細胞（赤血球細胞など）をろ過して除く膜を通すことによって処理される。試料は採取されてから直ちに測定されてよい。試料は、典型的にはアッセイの前に好ましくは−７０℃より低くで、保存されてもよい。
ポアは、典型的には膜に存在する。任意の膜が本発明により用いられ得る。好適な膜は、当技術分野において周知である。膜は、好ましくはスフィンゴミエリンを含む。膜は、好ましくは両親媒性層である。両親媒性層は、少なくとも１つの親水性部分および少なくとも１つの親油性または疎水性部分の両方を有するリン脂質などの両親媒性分子から形成された層である。両親媒性分子は、合成的または天然に存在してよい。天然に存在しない両親媒性物質および単層を形成する両親媒性物質は当技術分野において公知であり、例えばブロックコポリマー（Gonzalez-Perez et al.、Langmuir、2009、25、10447-10450）を含む。ブロックコポリマーは、２つ以上のモノマーサブユニットが単一のポリマー鎖を作製するように合わせて重合されているポリマー性材料である。ブロックコポリマーは、各モノマーサブユニットによって寄与されている特質を典型的には有する。しかしブロックコポリマーは、個別のサブユニットから形成されたポリマーが有さない固有の特質を有する場合がある。ブロックコポリマーは、水性媒体中でモノマーサブユニットの１つが疎水性（すなわち親油性）であり、他のサブユニット（複数可）が親水性であるように操作され得る。この場合ブロックコポリマーは、両親媒性特質を有することができ、生物学的膜を模倣する構造を形成できる。ブロックコポリマーは、ジブロック（２つのモノマーサブユニットからなる）であってよいが、両親媒性として挙動するより複雑な配置を形成するように２つより多いモノマーサブユニットから構築される場合もある。コポリマーは、トリブロック、テトラブロックまたはペンタブロックコポリマーであってもよい。
両親媒性層は、単層または二重層であってよい。両親媒性層は、典型的には平面脂質二重層または支持された二重層である。
両親媒性層は、典型的には脂質二重層である。脂質二重層は細胞膜のモデルであり、さまざまな実験研究のための優れたプラットフォームとして役立つ。例えば、脂質二重層は、単一チャネル記録による膜タンパク質のｉｎ ｖｉｔｒｏ調査のために用いられ得る。代替的に脂質二重層は、さまざまな物質の存在を検出するためのバイオセンサーとして用いられ得る。脂質二重層は、任意の脂質二重層であってよい。好適な脂質二重層は、これだけに限らないが平面状脂質二重層、支持された二重層またはリポソームを含む。脂質二重層は好ましくは平面状脂質二重層である。好適な脂質二重層は、国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ０８／０００５６３号（ＷＯ２００８／１０２１２１として公開）、国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ０８／００４１２７号（ＷＯ２００９／０７７７３４として公開）および国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ２００６／００１０５７号（ＷＯ２００６／１００４８４として公開）に開示されている。
脂質二重層を形成するための方法は、当技術分野において公知である。好適な方法は実施例に開示する。脂質二重層は、脂質単層が水溶液／空気界面にその界面に垂直である開口部のいずれかの端を通って運ばれる、モンタルおよびミューラーの方法（Proc.Natl.Acad.Sci.USA.、1972;69:3561-3566）によって一般的には形成される。
モンタルおよびミューラーの方法は、タンパク質ポア挿入のために好適である良質な脂質二重層を形成する対費用効果が高くて比較的簡単な方法であることから一般的である。二重層形成の他の一般的方法は、チップディッピング、ペインティング二重層およびリポソーム二重層のパッチクランピングを含む。
好ましい実施形態では、脂質二重層は国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ０８／００４１２７号（ＷＯ２００９／０７７７３４として公開）に記載のとおり形成される。別の好ましい実施形態では、膜は、ソリッドステート層である。ソリッドステート層は生物由来ではない。換言すると、ソリッドステート層は、生物または細胞などの生物学的環境由来でなく、またはそれから単離されず、生物学的に入手可能な構造の合成的に製造されたバージョンでもない。ソリッドステート層は、これだけに限らないがミクロ電子材料、Ｓｉ３Ｎ４、Ａ１２Ｏ３およびＳｉＯなどの絶縁材料、ポリアミドなどの有機および無機ポリマー、Ｔｅｆｌｏｎ（登録商標）などのプラスチックまたは２要素添加硬化シリコンゴム（two-component addition-cure silicone rubber）などのエラストマーならびにガラスを含む有機材料ならびに無機材料の両方から形成され得る。ソリッドステート層は、グラフェン（graphene）などの一原子層からまたは数原子厚だけである層から形成され得る。好適なグラフェン（graphene）層は、国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００８／０１０６３７号（ＷＯ２００９／０３５６４７として公開）に開示されている。
方法は、（ｉ）ポアを含む両親媒性層、（ｉｉ）ポアを含む単離された天然に存在する脂質二重層、または（ｉｉｉ）挿入されたポアを有する細胞を用いて典型的には実行される。方法は、人工両親媒性層、例えば人口脂質二重層を用いて典型的には実行される。層は、ポアに加えて他の膜貫通タンパク質および／または膜内タンパク質ならびに他の分子を含んでもよい。好適な装置および条件は、下に考察される。本発明の方法は、典型的にはｉｎ ｖｉｔｒｏで実行される。分析物、例えば標的ポリヌクレオチドは、膜にカップリングされ得る。これは、任意の公知の方法を用いてされ得る。膜が脂質二重層などの両親媒性層である場合は（下に詳細に考察されるとおり）、分析物、例えば標的ポリヌクレオチドは、膜に存在するポリペプチドまたは膜に存在する疎水性アンカーを介して膜に好ましくはカップリングされる。疎水性アンカーは、好ましくは脂質、脂肪酸、ステロール、カーボンナノチューブまたはアミノ酸である。
分析物、例えば標的ポリヌクレオチドは膜に直接カップリングされ得る。分析物、例えば標的ポリヌクレオチドは好ましくは膜にリンカーを介してカップリングされる。好ましいリンカーは、これだけに限らないがポリヌクレオチド、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）およびポリペプチドなどのポリマーを含む。ポリヌクレオチドが膜に直接カップリングされる場合、膜とポア内部との間の距離のためにポリヌクレオチドの末端まで特性決定が継続できないことから、いくらかのデータが失われる。リンカーが用いられる場合、ポリヌクレオチドは完了まで処理され得る。リンカーが用いられる場合、リンカーはポリヌクレオチドの任意の位置に付着され得る。リンカーは、テールポリマーでポリヌクレオチドに好ましくは付着される。
カップリングは、安定または一過的であってよい。ある種の応用に関してカップリングの一過的な性質は好ましい。安定カップリング分子がポリヌクレオチドの５’末端または３’末端のいずれかに直接付着された場合、二重層とポア内部との間の距離のためにポリヌクレオチドの末端まで特性決定が継続できないことから、いくらかのデータが失われる。カップリングが一過的である場合、カップリングされた端は無作為に二重層から遊離し、ポリヌクレオチドは完了まで処理され得る。安定なまたは一過的連結を膜と形成する化学基は、下により詳細に考察される。分析物、例えば標的ポリヌクレオチドは、コレステロール（cholesterol）または脂肪酸アシル鎖を用いて両親媒性層、例えば脂質二重層に一過的にカップリングされ得る。ヘキサデカン酸などの長さ６から３０までの炭素原子を有する任意の脂肪酸アシル鎖は用いられ得る。
好ましい実施形態では、分析物、例えば標的ポリヌクレオチドは、両親媒性層にカップリングされる。合成脂質二重層への分析物、例えば標的ポリヌクレオチドのカップリングは、種々の異なるテザーリング戦略で既に実行されている。これらを下の表３に要約する。
ポリヌクレオチドは、合成反応において修飾ホスホラミダイトを用いて官能基化されることができ、チオール、コレステロール（cholesterol）、脂質およびビオチン基などの反応基の付加に容易に適合される。これらのさまざまな付着化学物質は、ポリヌクレオチドに一連の付着選択肢をもたらす。さまざまな各修飾基は、わずかに異なる方法でポリヌクレオチドを繋ぎ止め、カップリングは常に永久的ではなく、二重層へのさまざまな残存時間をポリヌクレオチドにもたらす。一過的カップリングの有利点は、上に考察される。
ポリヌクレオチドのカップリングは、反応基がポリヌクレオチドに付加され得る限り多数の他の手段によっても達成され得る。ＤＮＡのいずれかの端への反応基の付加は既に報告されている。チオール基はポリヌクレオチドキナーゼおよびＡＴＰγＳを用いてｓｓＤＮＡの５’に付加され得る(Grant,G.P.およびP.Z.Qin (2007) "A facile method for attaching nitroxide spin labels at the 5' terminus of nucleic acids." Nucleic Acids Res 35(10):e77)。ビオチン、チオールおよびフルオロフォア（fluorophore）などの化学基のより多様な選択は、修飾オリゴヌクレオチドをｓｓＤＮＡの３’に組み込むためにターミナルトランスフェラーゼを用いて付加され得る(Kumar,A.,P.Tchenら、(1988)."Nonradioactive labeling of synthetic oligonucleotide probes with terminal deoxynucleotidyl transferase." Anal Biochem 169(2):376-82)。
代替的に反応基は、二重層に既にカップリングされたものに相補的なＤＮＡの短片の付加のために考慮される場合があり、付着はハイブリダイゼーションを介して達成され得る。ｓｓＤＮＡの短片のライゲーションは、Ｔ４ＲＮＡリガーゼＩを用いて報告されている(Troutt,A.B.,M.G.McHeyzer-Williamsら、(1992)."Ligation-anchored PCR: a simple amplification technique with single-sided specificity." Proc Natl Acad Sci U S A 89(20):9823-5)。代替的にｓｓＤＮＡまたはｄｓＤＮＡのいずれかは、天然ｄｓＤＮＡにライゲーションされることができ、次いで２本鎖は熱的または化学的変性によって分離された。天然ｄｓＤＮＡについて、ｓｓＤＮＡの１片を二重鎖の１つもしくは両方の端に、またはｄｓＤＮＡを１つまたは両方の端へのいずれかで付加できる。次いで、二重鎖が融解される際に、ｓｓＤＮＡが５’末端、３’末端もしくは両端でのライゲーションもしくは修飾のために用いられ、ｄｓＤＮＡがライゲーションのために用いられた場合、各一重鎖は５’または３’修飾のいずれかを有する。ポリヌクレオチドが合成鎖である場合、カップリング化学はポリペプチドの化学合成の際に組み込まれ得る。例えばポリヌクレオチドは、反応基が付着されたプライマーを用いて合成され得る。
ゲノムＤＮＡのセクションの増幅のための一般的技術は、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を用いている。本明細書では、２個の合成オリゴヌクレオチドプライマーを用いてＤＮＡの同じセクションの多数の複製物が作製される場合があり、各複製物について二重鎖中の各鎖の５’は合成ポリヌクレオチドである。コレステロール（cholesterol）、チオール（thiol）、ビオチン（biotin）または脂質などの反応基を有するアンチセンスプライマーを用いるステップによって、増幅された標的ＤＮＡの各複製物は、カップリングのための反応基を含有する。
本発明の方法において用いられるポアは、本発明のポア（すなわち少なくとも１つの本発明の変異体モノマーまたは少なくとも１つの本発明の構築物を含むポア）である。ポアは、上に考察した任意の方法で化学的に修飾されていてもよい。ポアは、上に考察したとおり標的分析物と相互作用できる共有結合アダプターで好ましくは修飾されている。
方法は、好ましくは標的ポリヌクレオチドを特性決定するためであり、ステップ（ａ）は標的ポリヌクレオチドをポアおよびポリヌクレオチド結合タンパク質に接触させるステップを含み、タンパク質はポアを通る標的ポリヌクレオチドの移動を制御する。ポリヌクレオチド結合タンパク質は、ポリヌクレオチドに結合でき、ポアを通るその移動を制御できる任意のタンパク質であってよい。タンパク質がポリヌクレオチドに結合するかどうかを決定することは当技術分野において簡単である。タンパク質は、典型的にはポリヌクレオチドの少なくとも１つの特質と相互作用し、修飾する。タンパク質は、個別のヌクレオチドまたはジ−もしくはトリヌクレオチドなどのヌクレオチドの短い鎖を形成するように切断することによってポリヌクレオチドを修飾できる。成分は、それを特異的位置に方向付けるまたは移動させること、すなわちその移動を制御することによって、ポリヌクレオチドを修飾できる。
ポリヌクレオチド結合タンパク質は、好ましくはポリヌクレオチド処理酵素（handling enzyme）である。ポリヌクレオチド処理酵素は、ポリヌクレオチドの少なくとも１つの特質と相互作用および修飾できるポリペプチドである。酵素は、個別のヌクレオチドまたはジ−もしくはトリヌクレオチドなどのヌクレオチドの短い鎖を形成するように切断することによってポリヌクレオチドを修飾できる。酵素は、それを特異的位置に方向付けるまたは移動させることによって、ポリヌクレオチドを修飾できる。ポリヌクレオチド処理酵素は、それが標的配列に結合でき、ポアを通るその移動を制御できる限り酵素活性を示す必要はない。例えば酵素は、その酵素活性を除去するために修飾される場合があり、または酵素としての作用を妨げる条件下で用いられ得る。そのような状態は、下により詳細に考察される。
ポリヌクレオチド処理酵素は、好ましくは核酸分解酵素由来である。酵素の構築物において用いられるポリヌクレオチド処理酵素は、より好ましくは酵素分類（ＥＣ）群３．１．１１、３．１．１３、３．１．１４、３．１．１５、３．１．１６、３．１．２１、３．１．２２、３．１．２５、３．１．２６、３．１．２７、３．１．３０および３．１．３１のいずれかのメンバー由来である。酵素は、国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ１０／０００１３３号（ＷＯ２０１０／０８６６０３として公開）において開示されているもののいずれかであってよい。
好ましい酵素は、ポリメラーゼ、エキソヌクレアーゼ、ヘリカーゼおよび、ジャイレースなどのトポイソメラーゼである。好適な酵素は、これだけに限らないが、大腸菌（E. coli）由来エキソヌクレアーゼＩ（配列番号６）、大腸菌（E. coli）由来エキソヌクレアーゼＩＩＩ酵素（配列番号８）、Ｔ．サーモフィラス（T. thermophilus）由来ＲｅｃＪ（配列番号１０）およびバクテリオファージラムダエキソヌクレアーゼ（配列番号１２）ならびにその変種を含む。配列番号１０に示す配列またはその変種を含む３個のサブユニットは、三量体エキソヌクレアーゼを形成するように相互作用する。酵素は、Ｐｈｉ２９ ＤＮＡポリメラーゼ（配列番号４）またはその変種であってよい。酵素は、ヘリカーゼであってよく、またはヘリカーゼ由来であってよい。典型的ヘリカーゼは、Ｈｅｌ３０８、ＲｅｃＤまたはＸＰＤ、例えばＨｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）またはその変種である。
配列番号４、６、８、１０、１２または１５の変種は、配列番号４、６、８、１０、１２または１５から変化したアミノ酸配列を有し、ポリヌクレオチド結合能力を保持している酵素である。変種は、ポリヌクレオチドの結合を促進するならびに／または高塩濃度および／もしくは室温でのその活性を促進する修飾を含んでよい。
配列番号４、６、８、１０、１２、または１５のアミノ酸配列の全長にわたって変種は、アミノ酸同一性に基づいてその配列に好ましくは少なくとも５０％相同である。より好ましくは変種ポリペプチドは、配列全体にわたって配列番号４、６、８、１０、１２、または１５のアミノ酸配列にアミノ酸同一性に基づいて少なくとも５５％、少なくとも６０％、少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％およびより好ましくは少なくとも９５％、９７％または９９％相同である。少なくとも８０％、例えば少なくとも８５％、９０％または９５％のアミノ酸同一性が２００以上（例えば２３０、２５０、２７０もしくは２８０またはそれ以上）のストレッチの連続アミノ酸にわたってある場合がある（「高い相同性」）。相同性は、上に記載のとおり決定される。変種は、配列番号２を参照して上で考察した方法のいずれかで野生型配列とは異なっている可能性がある。酵素は、考察したとおりポアに共有結合的に付着されていてよい。
ナノポアを用いてポリヌクレオチドを配列決定するために２つの主な戦略、すなわち鎖配列決定法およびエキソヌクレアーゼ配列決定がある。本発明の方法は、鎖配列決定法またはエキソヌクレアーゼ配列決定いずれかに関する可能性がある。
鎖配列決定法ではＤＮＡは、印加された電位に沿うまたは反対のいずれかでナノポアを通って移行される。２本鎖ＤＮＡ上で進行性にまたは加工性に作用するエキソヌクレアーゼは、ポアのｃｉｓ側で印加された電位下で残りの１本鎖を通して供給するためにまたは逆電位下でｔｒａｎｓ側で用いられ得る。同様に２本鎖ＤＮＡを巻き戻すヘリカーゼも類似の様式で用いられ得る。ポリメラーゼも用いられ得る。印加された電位と反対の鎖移行を必要とする配列決定応用についての可能性もあるが、ＤＮＡは、逆電位下または電位なしで最初に酵素によって「捕獲」されなければならない。次いで、結合に続いて電位は切り替えられ、鎖はｃｉｓからｔｒａｎｓへポアを通り抜け、電流により伸長されたコンホメーションに保持される。１本鎖ＤＮＡエキソヌクレアーゼまたは１本鎖ＤＮＡ依存性ポリメラーゼは、直近に移行された１本鎖を制御された段階的様式で、ｔｒａｎｓからｃｉｓへ、印加された電位と反対にポアを通って引き戻す分子モーターとして作用できる。
一実施形態では標的ポリヌクレオチドを特性決定する方法は、標的配列をポアおよびヘリカーゼ酵素と接触させるステップを含む。任意のヘリカーゼが方法において用いられ得る。ヘリカーゼは、ポアに関して２つのモードで働く場合がある。第一に方法は、好ましくは印加された電圧から生じる場でポアを通る標的配列の移動を制御するようにヘリカーゼを用いて実行される。このモードでは、ＤＮＡの５’末端が最初にポア中に捕捉され、酵素は標的配列が二重層のｔｒａｎｓ側に最終的に移行されるまで場に沿ってポアを通るようにポアへのＤＮＡの移動を制御する。代替的に方法は、ヘリカーゼ酵素が印加された電圧から生じる場とは反対にポアを通る標的配列の移動を制御するように好ましくは実行される。このモードではＤＮＡの３’末端が最初にポアに捕捉され、酵素は、標的配列が二重層のｃｉｓ側に最終的に戻して排出されるまで印加された場とは反対にポアから引き出されるように、ポアを通るＤＮＡの移動を制御する。
エキソヌクレアーゼ配列決定では、エキソヌクレアーゼは標的ポリヌクレオチドの１つの末端から個別のヌクレオチドを放出し、個別のヌクレオチドは下に考察されるとおり同定される。別の実施形態では標的ポリヌクレオチドを特性決定する方法は、標的配列をポアおよびエキソヌクレアーゼ酵素を接触とさせるステップを含む。上に考察の任意のエキソヌクレアーゼ酵素は、方法において用いられ得る。酵素は、上に考察したとおりポアに共有結合的に付着され得る。
エキソヌクレアーゼは、典型的にはポリヌクレオチドの一方の端に付き、配列を末端から１ヌクレオチドずつ消化する酵素である。エキソヌクレアーゼは、５’から３’方向または３’から５’方向でポリヌクレオチドを消化できる。エキソヌクレアーゼが結合するポリヌクレオチドの末端は、用いられる酵素の選択および／または当技術分野において公知の方法を用いて典型的には決定される。ポリヌクレオチドのいずれかの末端のヒドロキシル基またはキャップ構造は、ポリヌクレオチドの具体的な末端へのエキソヌクレアーゼの結合を妨げるまたは促進するために典型的には用いられ得る。
方法は、ヌクレオチドが上に考察したとおりヌクレオチドの特性決定または割合の同定を可能にする速度でポリヌクレオチドの末端から消化されるようにポリヌクレオチドをエキソヌクレアーゼに接触させるステップを含む。これを行うための方法は、当技術分野において周知である。例えばＥｄｍａｎ分解は、単一アミノ酸をポリペプチドの末端から連続的に消化するために用いられ、それらは高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）を用いて同定され得る。類似の方法は、本発明において用いられ得る。
エキソヌクレアーゼが機能する速度は典型的には野生型エキソヌクレアーゼの最適速度より遅い。本発明の方法におけるエキソヌクレアーゼ活性の好適な速度は、１秒あたり０．５から１０００ヌクレオチド、１秒あたり０．６から５００ヌクレオチド、１秒あたり０．７から２００ヌクレオチド、１秒あたり０．８から１００ヌクレオチド、１秒あたり０．９から５０ヌクレオチドまたは１秒あたり１から２０もしくは１０ヌクレオチドの消化を含む。速度は、好ましくは１秒あたり１、１０、１００、５００または１０００ヌクレオチドである。エキソヌクレアーゼ活性の好適な速度は、種々の方法で達成され得る。例えば、活性の最適速度が低減した変種エキソヌクレアーゼは、本発明により用いられ得る。
本発明の方法は、標的分析物、例えば標的ポリヌクレオチドの１つまたは複数の特性を測定するステップを含む。方法は、標的分析物、例えば標的ポリヌクレオチドの２つ、３つ、４つまたは５つ以上の特性を測定するステップを含み得る。標的ポリヌクレオチドに関して、１つまたは複数の特性は、好ましくは（ｉ）標的ポリヌクレオチドの長さ、（ｉｉ）標的ポリヌクレオチドの同一性、（ｉｉｉ）標的ポリヌクレオチドの配列、（ｉｖ）標的ポリヌクレオチドの二次構造および（ｖ）標的ポリヌクレオチドが修飾されているか否か、から選択される。（ｉ）から（ｖ）の任意の組合せは本発明により測定され得る。
（ｉ）に関して、ポリヌクレオチドの長さは、標的ポリヌクレオチドとポアとの間の相互作用の数を用いて測定できる。
（ｉｉ）に関して、ポリヌクレオチドの同一性は、多数の方法において測定され得る。ポリヌクレオチドの同一性は、標的ポリヌクレオチドの配列の測定を伴ってまたは標的ポリヌクレオチドの配列の測定を伴わずに測定され得る。前者は、簡単であり、ポリヌクレオチドは配列決定され、それにより同定される。後者は、いくつかの方法で行われ得る。例えばポリヌクレオチド中の具体的なモチーフの存在は（ポリヌクレオチドの残りの配列を測定するステップを伴わずに）測定され得る。代替的に、方法における具体的な電気的および／または光学的シグナルの測定は、標的ポリヌクレオチドを具体的な供給源由来であるとして同定できる。
（ｉｉｉ）に関して、ポリヌクレオチドの配列は、以前記載されたとおり決定され得る。好適な配列決定方法、詳細には電気的測定を用いるものは、Stoddart Dら、Proc Natl Acad Sci、12;106(19):7702-7、Lieberman KRら、J Am Chem Soc.2010;132(50):17961-72および国際出願第ＷＯ２０００／２８３１２号に記載されている。
（ｉｖ）に関して、二次構造は、種々の方法において測定され得る。例えば方法が電気的測定を含む場合、二次構造は残存時間における変化またはポアを通って流れる電流における変化を用いて測定され得る。これは、１本鎖と２本鎖のポリヌクレオチドの領域を区別できるようにする。
（ｖ）に関して、任意の修飾の存在または非存在は、測定され得る。方法は、好ましくは標的ポリヌクレオチドが、メチル化によって、酸化によって、損傷によって、１つまたは複数のタンパク質でまたは１つまたは複数の標識、タグもしくはスペーサーで修飾されているかどうかを決定するステップを含む。具体的な修飾は、下に記載の方法を用いて測定され得るポアとの特異的な相互作用を生じる。例えばメチルシトシンは、各ヌクレオチドとのその相互作用の際にポアを通って流れる電流に基づいてシトシンから区別され得る。
本発明は、標的ポリヌクレオチドの配列を推定する方法も提供する。本発明は、標的ポリヌクレオチドを配列決定する方法をさらに提供する。
種々の異なる種類の測定が作出されてよい。これは、非限定的に:電気的測定および光学的測定を含む。可能性のある電気的測定は、電流測定：インピーダンス測定、トンネル測定（Ivanov APら、Nano Lett.2011 Jan 12;11(1):279-85）およびＦＥＴ測定（国際出願第ＷＯ２００５／１２４８８８号）を含む。光学的測定は、電気的測定(Soni GVら、Rev Sci Instrum. 2010 Jan;81(1):014301)と組み合わされ得る。測定は、ポアを通って流れるイオン電流の測定などの膜貫通電流測定であってよい。
電気的測定は、Stoddart Dら、Proc Natl Acad Sci、12;106(19):7702-7、Lieberman KRら、J Am Chem Soc.2010;132(50):17961-72および国際出願第ＷＯ−２０００／２８３１２号に記載の標準的単一チャネル記録機器を用いて作出され得る。代替的に電気的測定は、例えば国際出願第ＷＯ−２００９／０７７７３４号および国際出願第ＷＯ−２０１１／０６７５５９号に記載のマルチチャネル系を用いても作出され得る。
好ましい実施形態では、方法は、
（ａ）標的ポリヌクレオチドを本発明のポアおよびポリヌクレオチド結合タンパク質に接触させて、標的ポリヌクレオチドがポアを通って移動し、結合タンパク質がポアを通る標的ポリヌクレオチドの移動を制御するようにするステップ、ならびに
（ｂ）ポリヌクレオチドがポアに対して移動するときにポアを通る電流を測定するステップであって、電流が１つまたは複数の標的ポリヌクレオチドの特性を示し、それにより標的ポリヌクレオチドを特性決定するステップ
を含む。
方法は、ポアが膜に挿入されている膜／ポア系を調べるのに好適である任意の装置を用いて実行され得る。方法は、膜貫通ポアセンシングに好適である任意の装置を用いて実行され得る。例えば装置は、水性溶液および、チャンバーを２つのセクションに分離する障壁を含むチャンバーを含む。障壁はポアを含有する膜が形成される開口部を有する。
方法は、国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ０８／０００５６２号（ＷＯ２００８／１０２１２０）に記載の装置を用いて実行され得る。
方法は、分析物、例えば標的ポリヌクレオチドがポアに対して移動するときに、ポアを通過する電流を測定するステップを含み得る。したがって装置は、電位を印加でき、膜およびポアを通る電気シグナルを測定できる電気回路も含む。方法は、パッチクランプまたは電圧クランプを用いても実行され得る。方法は、電圧クランプの使用を好ましくは含む。
本発明の方法は、分析物、例えば標的ポリヌクレオチドがポアに対して移動するときに、ポアを通過する電流の測定を含み得る。膜貫通タンパク質ポアを通るイオン電流を測定するための好適な条件は、当技術分野において公知であり、実施例で開示される。方法は、膜およびポア全体に印加される電圧と共に典型的には実行される。用いられる電圧は典型的には、＋２Ｖから−２Ｖまで、典型的には−４００ｍＶから＋４００ｍＶまでである。好ましくは用いられる電圧は、−４００ｍＶ、−３００ｍＶ、−２００ｍＶ、−１５０ｍＶ、−１００ｍＶ、−５０ｍＶ、−２０ｍＶおよび０ｍＶから選択される下限値および＋１０ｍＶ、＋２０ｍＶ、＋５０ｍＶ、＋１００ｍＶ、＋１５０ｍＶ、＋２００ｍＶ、＋３００ｍＶおよび＋４００ｍＶから独立に選択される上限値を含む範囲内である。用いられる電圧は、より好ましくは１００ｍＶから２４０ｍＶまでの範囲内、最も好ましくは１２０ｍＶから２２０ｍＶまでの範囲内である。印加される電位を増加させることによってポアによるさまざまなヌクレオチド間の識別を向上させることは可能である。
方法は、金属塩（例えばアルカリ金属塩）、ハロゲン化塩（例えばアルカリ金属塩化物塩などの塩化物塩）などの任意の電荷担体の存在下で典型的には実行される。電荷担体は、イオン液体または有機塩、例えばテトラメチル塩化アンモニウム、トリメチルフェニル塩化アンモニウム、フェニルトリメチル塩化アンモニウムもしくは１−エチル−３メチルイミダゾリウムクロリド（1-ethyl-3-methyl imidazolium chloride）を含み得る。上に考察した例示的装置では、塩はチャンバー中の水性溶液中に存在する。塩化カリウム（ＫＣｌ）、塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）または塩化セシウム（ＣｓＣｌ）が典型的には用いられる。ＫＣｌが好ましい。塩濃度は飽和であってよい。塩濃度は、３Ｍ以下があり得、典型的には０．１から２．５Ｍまで、０．３から１．９Ｍまで、０．５から１．８Ｍまで、０．７から１．７Ｍまで、０．９から１．６Ｍまでまたは１Ｍから１．４Ｍまでである。塩濃度は、好ましくは１５０ｍＭから１Ｍまでである。方法は、少なくとも０．４Ｍ、少なくとも０．５Ｍ、少なくとも０．６Ｍ、少なくとも０．８Ｍ、少なくとも１．０Ｍ、少なくとも１．５Ｍ、少なくとも２．０Ｍ、少なくとも２．５Ｍまたは少なくとも３．０Ｍなどの少なくとも０．３Ｍの塩濃度を用いて好ましくは実行される。高塩濃度は、高い信号対雑音比を提供し、通常の電流変動のバックグラウンドに対してヌクレオチドの存在を示す電流が同定されることを可能にする。
方法は、緩衝剤の存在下で典型的には実行される。上に考察した例示的装置では、緩衝剤はチャンバー中の水性溶液に存在する。任意の緩衝剤が本発明の方法において用いられ得る。典型的には、緩衝剤はＨＥＰＥＳである。別の好適な緩衝剤はＴｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝剤である。方法は、４．０から１２．０まで、４．５から１０．０まで、５．０から９．０まで、５．５から８．８まで、６．０から８．７までまたは７．０から８．８までまたは７．５から８．５までのｐＨで典型的には実行される。用いられるｐＨは好ましくは約７．５である。
方法は、０ｏＣから１００ｏＣまで、１５ｏＣから９５ｏＣまで、１６ｏＣから９０ｏＣまで、１７ｏＣから８５ｏＣまで、１８ｏＣから８０ｏＣまで、１９ｏＣから７０ｏＣまでまたは２０ｏＣから６０ｏＣまでで実行され得る。方法は典型的には室温で実行される。方法は、約３７℃などの酵素機能を支持する温度で場合により実行される。
方法は、遊離ヌクレオチドまたは遊離ヌクレオチド類似物および、ヘリカーゼもしくはエキソヌクレアーゼなどのポリヌクレオチド結合タンパク質の作用を促進する酵素補因子の存在下で典型的には実行される。遊離ヌクレオチドは、上に考察した個々のヌクレオチドの任意の１つまたは複数であってよい。遊離ヌクレオチドは、これだけに限らないがアデノシン一リン酸（ＡＭＰ）、アデノシン二リン酸（ＡＤＰ）、アデノシン三リン酸（ＡＴＰ）、グアノシン一リン酸（ＧＭＰ）、グアノシン二リン酸（ＧＤＰ）、グアノシン三リン酸（ＧＴＰ）、チミジン一リン酸（ＴＭＰ）、チミジン二リン酸（ＴＤＰ）、チミジン三リン酸（ＴＴＰ）、ウリジン一リン酸（ＵＭＰ）、ウリジン二リン酸（ＵＤＰ）、ウリジン三リン酸（ＵＴＰ）、シチジン一リン酸（ＣＭＰ）、シチジン二リン酸（ＣＤＰ）、シチジン三リン酸（ＣＴＰ）、環状アデノシン一リン酸（ｃＡＭＰ）、環状グアノシン一リン酸（ｃＧＭＰ）、デオキシアデノシン一リン酸（ｄＡＭＰ）、デオキシアデノシン二リン酸（ｄＡＤＰ）、デオキシアデノシン三リン酸（ｄＡＴＰ）、デオキシグアノシン一リン酸（ｄＧＭＰ）、デオキシグアノシン二リン酸（ｄＧＤＰ）、デオキシグアノシン三リン酸（ｄＧＴＰ）、デオキシチミジン一リン酸（ｄＴＭＰ）、デオキシチミジン二リン酸（ｄＴＤＰ）、デオキシチミジン三リン酸（ｄＴＴＰ）、デオキシウリジン一リン酸（ｄＵＭＰ）、デオキシウリジン二リン酸（ｄＵＤＰ）、デオキシウリジン三リン酸（ｄＵＴＰ）、デオキシシチジン一リン酸（ｄＣＭＰ）、デオキシシチジン二リン酸（ｄＣＤＰ）およびデオキシチジン三リン酸（ｄＣＴＰ）を含む。遊離ヌクレオチドは、好ましくはＡＭＰ、ＴＭＰ、ＧＭＰ、ＣＭＰ、ＵＭＰ、ｄＡＭＰ、ｄＴＭＰ、ｄＧＭＰまたはｄＣＭＰから選択される。遊離ヌクレオチドは、好ましくはアデノシン三リン酸（ＡＴＰ）である。酵素補因子は、ヘリカーゼを機能させる因子である。酵素補因子は、好ましくは二価金属カチオンである。二価金属カチオンは好ましくはＭｇ２＋、Ｍｎ２＋、Ｃａ２＋またはＣｏ２＋である。酵素補因子は、最も好ましくはＭｇ２＋である。
標的ポリヌクレオチドはポアおよびポリヌクレオチド結合タンパク質と任意の順序で接触され得る。標的ポリヌクレオチドがタンパク質およびポアと接触される場合、標的ポリヌクレオチドは最初にタンパク質と複合体を形成することは好ましい。ポアに電圧が印加される場合、標的ポリヌクレオチド／タンパク質複合体は次いでポアと複合体を形成し、ポアを通るポリヌクレオチドの移動を制御する。
個別のヌクレオチドを同定する方法
本発明は、個別のヌクレオチドを特性決定する方法も提供する。換言すると標的分析物は、個別のヌクレオチドである。方法は、ヌクレオチドがポアと相互作用し、相互作用のときにポアを通る電流を測定し、それによりヌクレオチドを特性決定するように、ヌクレオチドを本発明のポアに接触させるステップを含む。したがって本発明は、個別のヌクレオチドのナノポアセンシングを含む。本発明は、相互作用のときにポアを通る電流を測定するステップおよびそれによりヌクレオチドの同一性を決定するステップを含む個別のヌクレオチドを同定する方法も提供する。上に考察した任意の本発明のポアは用いられ得る。ポアは、上に考察したとおり、分子アダプターで好ましくは化学的に修飾されている。
ヌクレオチドは、電流がヌクレオチドに特異的な様式でポアを通る場合（すなわち、ヌクレオチドに関連する特徴的な電流がポアを通ることが検出される場合）に存在する。ヌクレオチドは、電流がヌクレオチドに特異的な様式でポアを通らない場合には存在しない。
本発明は、ポアを通る電流にそれらが有するさまざまな効果に基づいて、類似の構造のヌクレオチドを識別するために用いられ得る。個別のヌクレオチドは、それらがポアと相互作用する場合にその電流振幅から単一分子レベルで識別され得る。本発明は、具体的なヌクレオチドが試料に存在するかどうかを決定するためにも用いられ得る。本発明は、試料中の具体的なヌクレオチドの濃度を測定するためにも用いられ得る。
ポアは、典型的には膜中に存在する。方法は、上に記載の任意の好適な膜／ポア系を用いて実行され得る。
個別のヌクレオチドは、単一ヌクレオチドである。個別のヌクレオチドは、別のヌクレオチドまたはポリヌクレオチドにヌクレオチド結合によって結合していないものである。ヌクレオチド結合は、別のヌクレオチドの糖基に結合されるヌクレオチドのリン酸基の１つに関与する。典型的には個別のヌクレオチドは、少なくとも５、少なくとも１０、少なくとも２０、少なくとも５０、少なくとも１００、少なくとも２００、少なくとも５００、少なくとも１０００または少なくとも５０００ヌクレオチドの別のポリヌクレオチドにヌクレオチド結合によって結合されていないものである。例えば個別のヌクレオチドは、ＤＮＡまたはＲＮＡ鎖などの標的ポリヌクレオチド配列から消化される。本発明の方法は、任意のヌクレオチドを同定するためにも用いられ得る。ヌクレオチドは、上に考察したいずれであってもよい。
ヌクレオチドは、リボ核酸（ＲＮＡ）またはデオキシリボ核酸などの核酸配列の消化に由来してもよい。核酸配列は、当技術分野において公知の任意の方法を用いて消化され得る。好適な方法はこれだけに限らないが、酵素または触媒を用いるものを含む。核酸の触媒消化はDeck et al.、Inorg. Chem.、2002; 41: 669-677に開示されている。
単一のポリヌクレオチド由来の個別のヌクレオチドは、ポリヌクレオチドの全体または部分を配列決定するために連続的様式でポアに接触され得る。ポリヌクレオチドを配列決定することは、上により詳細に考察されている。
ヌクレオチドは、膜のいずれの側でもポアに接触されうる。ヌクレオチドは、膜のいずれの側でもポアに導入され得る。ヌクレオチドは、ヌクレオチドが膜の他方の側にポアを通すことができる膜の片側に接触され得る。例えばヌクレオチドは、その本来の環境がイオンまたはヌクレオチドなどの小分子のポアのバレルまたはチャネルへの進入を可能にし、ヌクレオチドはポアを通過できるようにするポアの一端に接触される。その場合ヌクレオチドは、ポアのバレルまたはチャネルを通って膜を横切るときにポアおよび／またはアダプターと相互作用する。代替的にヌクレオチドは、ヌクレオチドがアダプターを介してまたはと共にポアと相互作用できる膜の片側に接触でき、ポアから解離でき、膜の同じ側に残ることができる。本発明は、アダプターの位置が固定されているポアを提供する。結果としてヌクレオチドは、好ましくはアダプターがヌクレオチドと相互作用できるようにするポアの末端に接触する。
ヌクレオチドは、ポアと任意の様式および任意の部位で相互作用できる。上に考察したとおりヌクレオチドは、好ましくはアダプターを介してまたはと共にポアに可逆的に結合する。最も好ましくはヌクレオチドは、それがポアを通って膜を横切るときにアダプターを介してまたはと共にポアに可逆的に結合する。ヌクレオチドは、それがポアを通って膜を横切るときにアダプターを介してまたはと共にポアのバレルまたはチャネルにも可逆的に結合できる。
ヌクレオチドとポアとの相互作用の際に、ヌクレオチドはそのヌクレオチドに特異的な様式でポアを通る電流に影響を与える。例えば具体的なヌクレオチドは、具体的な平均時間から具体的な程度にポアを通る電流を低減させる。換言するとポアを通る電流は、具体的なヌクレオチドに特徴的である。対照実験は、具体的なヌクレオチドがポアを通る電流に有する効果を決定するために実行され得る。次いで本発明の方法を検査試料に実行することの結果は、試料中の具体的なヌクレオチドを同定するためにまたは具体的なヌクレオチドが試料中に存在するかどうかを決定するために、そのような対照実験からのものと比較され得る。ポアを通る電流の頻度は、具体的なヌクレオチドの指標となる様式で影響を受け、試料中のヌクレオチドの濃度を決定するために用いられ得る。試料中の異なるヌクレオチドの割合も算出され得る。例えばｄＣＭＰのメチル−ｄＣＭＰに対する割合は算出され得る。
方法は、上に考察した任意の装置、試料または条件の使用も含み得る。
センサーを形成する方法
本発明は、標的ポリヌクレオチドを特性決定するためのセンサーの形成方法も提供する。方法は、本発明のポアとポリヌクレオチド結合タンパク質、例えばヘリカーゼまたはエキソヌクレアーゼとの複合体を形成するステップを含む。複合体は、ポアとタンパク質とを標的ポリヌクレオチドの存在下で接触させ、次いで、ポアに電位を印加するステップによって形成され得る。印加される電位は、上に記載のとおり化学電位または電圧電位であってよい。代替的に複合体は、ポアをヘリカーゼに共有結合的に付着するステップによっても形成され得る。共有結合付着のための方法は、当技術分野において公知であり、例えば国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ０９／００１６７９号（ＷＯ２０１０／００４２６５として公開）および第ＰＣＴ／ＧＢ１０／０００１３３号（ＷＯ２０１０／０８６６０３として公開）において開示されている。複合体は、標的ポリヌクレオチドを特性決定するためのセンサーである。方法は、本発明のポアとヘリカーゼとの複合体を形成するステップを好ましくは含む。上に考察した任意の実施形態は、この方法に等しく適用される。
本発明は、標的ポリヌクレオチドを特性決定するためのセンサーも提供する。センサーは、本発明のポアとポリヌクレオチド結合タンパク質との複合体を含む。上に考察したいずれの実施形態も本発明のセンサーに等しく適用される。
キット
本発明は、標的ポリヌクレオチドを特性決定、例えば配列決定するためのキットも提供する。キットは、（ａ）本発明のポアおよび（ｂ）ポリヌクレオチド結合タンパク質、例えばヘリカーゼまたはエキソヌクレアーゼを含む。上に考察された任意の実施形態は、キットに等しく適用可能である。
本発明のキットは、上に述べた任意の実施形態が実行されるようにする１つまたは複数の他の試薬または器具を追加的に含んでよい。そのような試薬または器具は、次の：好適な緩衝剤（複数可）（水性溶液）、対象から試料を得るための手段（容器もしくは、針を含む器具など）、ポリヌクレオチド配列を増幅および／もしくは発現するための手段、上に定義の膜または電圧もしくはパッチクランプ装置、の１つまたは複数を含む。試薬は、液体試料が試薬を再懸濁するように乾燥状態でキット中に存在する場合がある。キットは、キットが本発明の方法において用いられ得るようにする説明書、またはいずれの患者に方法が用いられ得るかに関する詳細も場合により含む場合がある。キットは、場合によりヌクレオチドを含み得る。
装置
本発明は、試料中の標的ポリヌクレオチドを特性決定、例えば配列決定するための装置も提供する。装置は、（ａ）複数の本発明のポアおよび（ｂ）複数のポリヌクレオチド結合タンパク質、例えばヘリカーゼまたはエキソヌクレアーゼを含む。を含んでよい。装置は、アレイまたはチップなどの分析物分析のための任意の従来装置であってよい。
装置は、
複数のポアを支持でき、ポアおよびタンパク質を用いてポリヌクレオチド特性決定または配列決定を実施するために作動可能であるセンサーデバイス；
特性決定または配列決定を実施するための材料を保持するための少なくとも１つのリザーバー；
少なくとも１つのリザーバーからセンサーデバイスに材料を制御可能に供給するように構成された流体系；および
各試料を受けるための複数の容器を好ましくは含み、
流体系は、容器からセンサーデバイスに試料を選択的に供給するように構成されている。装置は、国際出願、第ＰＣＴ／ＧＢ１０／０００７８９号（ＷＯ２０１０／１２２２９３として公開）、国際出願第ＰＣＴ／ＧＢ１０／００２２０６号（未公開）または国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ９９／２５６７９号（ＷＯ００／２８３１２として公開）において記載の任意のものであってよい。
次の実施例は本発明を例示する。
実施例
ポア産生
ＤＮＡ合成
ライセニンについてのポリペプチドをＧｅｎＳｃｒｉｐｔ ＵＳＡ Ｉｎｃ．で合成し、ＮｄｅＩおよびＨｉｎｄＩＩＩ制限部位を用いてｐＴ７ベクターにクローニングした。Ｍｅｔ（ＡＴＧ）についてのコドンを発現目的のためにＤＮＡの最初に位置付け、２つの停止コドン（ＴＡＡ ＴＧＡ）は翻訳を終結させるためにＤＮＡの末端に位置付けた。
タンパク質発現およびオリゴマー形成
タンパク質を環状ＤＮＡのための大腸菌（E. coli）Ｔ７−Ｓ３０抽出系を用いてカップルしたｉｎ ｖｉｔｒｏ転写および翻訳（ＩＶＴＴ）によって生成した。タンパク質は、モノマー単位の発現におけるオリゴマー形成を促進するために脂質小胞を含有するスフィンゴミエリン（ＳＭ）の存在下で発現させた。ＳＭ小胞を調製するために、クロロホルム中ＳＭ（Ａｖａｎｔｉ Ｐｏｌａｒ脂質、カタログ番号８６００６２Ｃ）の２５ｍｇ／ｍＬ保存溶液０．５ｍＬをクロロホルムを蒸発させるために３７℃に置いた。クロロホルムが蒸発した時点で、ＴＥ緩衝液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ８．０）５ｍＬを脂質を可溶化するためにバイアルに加えた。次いで混合物を約１分間ボルテックスし、窒素で急速冷凍した。次いで脂質混合物を３７℃で融解し、ボルテックスし、再度急速冷凍した。これを５〜６回繰り返した。脂質小胞の存在下でＩＶＴＴタンパク質１００ｕＬを生成するために、調製ＳＭ脂質小胞２５μＬを２０，０００ｇ、１０分間遠心することによって沈殿させた。上清を除去した時点で、ＩＶＴＴキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｅｘｐｒｅｓｓｗａｙ Ｍａｘｉ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｍｏｄｕｌｅ、カタログ番号４５−４００１）の構成要素、メチオニンＬ−［３５Ｓ］（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ、製品番号ＮＥＧ００９Ａ００５ＭＣ、特異的活性：＞１０００Ｃｉ（３７．０ＴＢｑ）／ミリモル）およびＤＮＡ鋳型を沈殿に製造者の説明書に従って加えた。簡潔には、大腸菌（E.coli）ｓｌｙＤ−抽出物２０ｕＬ、アミノ酸を含まない２．５Ｘ ＩＶＰＳ反応緩衝液２０ｕＬ、５０ｍＭアミノ酸（メチオニン欠如）１．２５ｕＬ、７５ｍＭメチオニン０．５ｕＬ、メチオニンＬ−［３５Ｓ］０．５ｕＬ、Ｔ７酵素混合物１．０ｕＬ、４００ｎｇ／ｕＬ（１ｕｇ）のＤＮＡ鋳型２．５ｕＬおよびＲＮａｓｅ不含有水４．２５ｕＬを膜沈殿に加え、３７℃、３０分間インキュベートした。２Ｘ ＩＶＰＳフィード（ＩＶＰＳ ｆｅｅｄ）緩衝液２５ｕＬ、５０ｍＭアミノ酸（メチオニン欠如）１．２５ｕＬ、７５ｍＭメチオニン０．５ｕＬ、メチオニンＬ−［３５Ｓ］０．５ｕＬおよびＲＮａｓｅ不含有水２２．７５ｕＬを含有するフィード緩衝液５０ｕＬを次いで混合物に加え、３７℃で追加的に９０分間インキュベートした。次いで試料を２０，０００ｇ、１０分間遠心し、上清を除去した。３Ｘ ＳＤＳを含有するＬａｅｍｍｌｉ ｌｏａｄｉｎｇ緩衝液（１Ｘ）１００ｕＬを上清に加えた。次いで試料を７．５％ゲルでのＳＤＳ−ＰＡＧＥ電気泳動に供した。
タンパク質精製
ゲルを５０℃、３時間、紙（Ｗｈａｔｍａｎ ３ＭＭ Ｃｈｒ）上、真空下で乾燥させ、Ｘ−線フィルムに一晩（約１８時間）曝露した。オートラジオグラフを鋳型として用いて、タンパク質オリゴマーバンドを乾燥したゲルから切り出した。１５０ｕＬ ＴＥ緩衝液中で再水和後、紙を除去した。次いでゲルを使い捨て乳棒を用いて粉砕し、スラリーを２５，０００ｇ、１０分間での遠心分離によってＣｏｓｔａｒ ｓｐｉｎ−Ｘ遠心チューブフィルター（０．２２μｍ孔ＣＡ膜、製品番号８１６０）を通してろ過した。次いでタンパク質溶液（ろ液）を採取し、平面脂質二重層実験で用いた。
上の実施例１に記載のものと類似の手順を用いて、次のライセニン変異体を作り、精製した：−ライセニン−（Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１３５Ｓ）（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１３５Ｓを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９４Ｓ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９４Ｓ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ７６Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ７６Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ７１Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ７１Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｄ６８Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｄ６８Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｈ１０３Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｈ１０３Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｍ９０Ｓ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｍ９０Ｓ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｑ／Ｑ８７Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ８４Ｑ／Ｑ８７Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｓ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｓ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ８４Ｓ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｈ８１Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｈ８１Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン（Ｙ７９Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｙ７９Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｆ７０Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｆ７０Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｈ５８Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｈ５８Ｓ／Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ）（変異Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ）（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ）（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）（変異Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ）（変異Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ８４Ｑ）（変異Ｅ８４Ｑを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｄ１２６Ｎ）（変異Ｄ１２６Ｎを有する配列番号２）、ライセニン−（Ｅ９２Ｑ）（変異Ｅ９２Ｑを有する配列番号２）。
本実施例は、野生型ライセニン（配列番号２）ナノポアの１，２−ジフィタノイル−グリセロ−３−ホスホコリン脂質（ＤＰｈＰＣ）二重層へのポア挿入を観察できたことを例示する。検査した実験条件下ではＤＮＡ捕捉事象またはいかなるヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動も観察できなかった。本実施例全般に使用される一般的な方法および基質を図１に示し、図の解説に記載する。
材料および方法
ＰｈｉＸ１７４の約４００ｂｐ断片を増幅するためにプライマーを設計した。これらのプライマーの各５’末端は、５０ヌクレオチド非相補性領域（ホモポリマーストレッチまたは１０ヌクレオチドホモポリマーセクションの反復単位のいずれか）を含んでいた。付加的に順方向プライマーの５’末端を、２’−Ｏ−メチル−ウラシル（ｍＵ）ヌクレオチド４個を含むように「キャップ」し、逆方向プライマーの５’末端を化学的にリン酸化した。その結果、これらのプライマー修飾は、ラムダエキソヌクレアーゼを用いる主にアンチセンス鎖だけの制御された消化を可能にする。ｍＵキャッピングがセンス鎖をヌクレアーゼ消化から保護する一方で、アンチセンス鎖の５'のＰＯ４はそれを促進する。したがって、ラムダエキソヌクレアーゼとのインキュベーション後に、二重鎖のセンス鎖だけがインタクトで、１本鎖ＤＮＡ（ｓｓＤＮＡ）として残る。次いで、作製されたｓｓＤＮＡを既に記載のとおりＰＡＧＥ精製した。
本明細書に記載の全ての実験において用いたＤＮＡ基質設計を図２に示す。ＤＮＡ基質は、５０Ｔ ５’−リーダーを有するＰｈｉＸ由来のｓｓＤＮＡの４００塩基セクションからなる。５０Ｔリーダー直後のこの鎖にアニールするのは、二重層の表面上のＤＮＡを濃縮し、捕捉効率を改善する３’コレステロール（cholesterol）タグを含有するプライマーである。
１，２−ジフィタノイル−グリセロ−３−ホスホコリン脂質（ＤＰｈＰＣ、Ａｖａｎｔｉ Ｐｏｌａｒ Ｌｉｐｉｄｓ）二重層に挿入された単一の野生型ライセニン（配列番号２）から電気計測値を得た。二重層は、モンタル−ミューラー技術によって開口部直径約１００μｍ、厚さ２０μｍのＰＴＦＥフィルム（Ｄｅｌｒｉｎ ｃｈａｍｂｅｒｓ注文生産）で形成され、２個の１ｍＬ緩衝溶液に分けた。全ての実験は、上記の緩衝溶液中で実行した。単一チャネル電流を１４４０Ａデジタイザーを備えたＡｘｏｐａｔｃｈ ２００Ｂ ａｍｐｌｉｆｉｅｒｓ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ）で測定した。白金電極を緩衝溶液に繋ぎ、ｃｉｓコンパートメント（ナノポアおよび酵素／ＤＮＡの両方が添加されている）をＡｘｏｐａｔｃｈ ｈｅａｄｓｔａｇｅのアースに繋ぎ、ｔｒａｎｓコンパートメントをｈｅａｄｓｔａｇｅの探査電極に繋ぐ。
緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）中での二重層中の単一野生型ライセニン（配列番号２）ポアを達成後、対照を＋１２０ｍＶで５分間実行した。ＤＮＡポリヌクレオチド（配列番号１３および１４）ならびにＨｅｌ３０８ Ｍｂｕ（配列番号１５）を緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）５０μＬに加え、５分間予備インキュベートした（ＤＮＡ＝６ｎＭ、酵素（Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ）＝２μＭ）。予備インキュベーション混合物を電気生理学チャンバーのｃｉｓコンパートメント中の緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）９５０μＬに、ライセニンナノポア中のヘリカーゼ−ＤＮＡ複合体の捕捉開始を試みるために加えた（最終濃度、ＤＮＡ＝０．３ｎＭ、酵素（Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕ）＝１００ｎＭ（配列番号１５）を生じる）。別の対照を＋１２０ｍＶ、５分間で実行した。ヘリカーゼＡＴＰａｓｅ活性を必要に応じてｃｉｓコンパートメントへのＮＴＰ（１ｍＭ ＡＴＰ）の添加によって開始させた。実験を＋１２０ｍＶの一定電位で実行した。
結果および考察
ＷＴライセニン（配列番号２）ナノポアのＤＰｈＰＣ二重層への挿入を観察できた（図３）。およそ２８０ｐＡの安定オープンポア電流を観察した。しかしヘリカーゼ−ＤＮＡ基質混合物のｃｉｓコンパートメントへの添加では、ＤＮＡ捕捉事象またはヘリカーゼ制御ＤＮＡ移動は観察されなかった。
本実施例は、未処理ＤＮＡ鎖の変異体ライセニンナノポア（Ｌｙｓ−Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋ、変異Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋを有する配列番号２）を通る移動を制御するためのＨｅｌ３０８ヘリカーゼ（Ｈｅｌ３０８ＭＢｕ、配列番号１５）の使用を例示する。本実施例全体において使用した一般的方法および基質は図１に示されており、図の説明に記載されている。
電気計測を実施例２に記載のとおり取得した。緩衝条件（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ））下で二重層中の単一ライセニン−Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋ（変異Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋを有する配列番号２）ポアが達成された後に、ＭｇＣｌ２（１０ｍＭ）をｃｉｓコンパートメントに加え、対照を＋１２０ｍＶ、５分間実行した。ＤＮＡポリヌクレオチド（配列番号１３および１４）ならびにＨｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）を緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭ フェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）５０μＬに加え、５分間、予備インキュベートした（ＤＮＡ＝６ｎＭ、酵素＝２μＭ）。この予備インキュベーション混合物を電気生理学チャンバーのｃｉｓコンパートメント中の緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）９５０μＬに、ライセニンナノポア中のヘリカーゼ−ＤＮＡ複合体の捕捉を開始するために加えた（最終濃度、ＤＮＡ＝０．３ｎＭ、酵素＝１００ｎＭ（配列番号１５）を生じる）。別の対照を＋１２０ｍＶ、１０分間実行した。ヘリカーゼＡＴＰａｓｅ活性をＮＴＰ（１ｍＭ ＡＴＰ）のｃｉｓコンパートメントへの添加によって必要に応じて開始した。実験は＋１２０または＋１８０ｍＶのいずれかの一定電位で実行した。
結果および考察
図１に示すとおりヘリカーゼ−ＤＮＡ基質のライセニン−Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋ（変異Ｅ８４Ｄ／Ｅ８５Ｋを有する配列番号２）への添加は、図４に示す特徴的な電流遮断を生じる（印加電位＋１８０ｍＶ）。ヘリカーゼ結合を有さないＤＮＡは、ナノポアと一過的に相互作用し、電流の短期間（＜＜１秒間）の遮断を生じる。ヘリカーゼ結合および活性を有するＤＮＡ（すなわち、ＡＴＰａｓｅ作用の下でＤＮＡ鎖に沿って移動する）は、図４に示すとおり電流の段階的変化を伴う長期間の特徴的な遮断レベルを生じる。ナノポア中のさまざまなＤＮＡモチーフは、特有の電流遮断レベルを生じる。
所与の基質について本発明者らは、ＤＮＡ配列を反映する電流遷移の特徴的なパターンを観察する（図４に例）。事象範囲は、およそ２５ｐＡ（＋１８０ｍＶの印加電位において）であると観察された。
本実施例は、未処理ＤＮＡ鎖の変異体ライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎ、変異Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎを有する配列番号２）を通る移動を制御するためのＨｅｌ３０８ヘリカーゼ（Ｈｅｌ３０８ ＭＢｕ、配列番号１５）の使用を例示する。本実施例全体において使用した一般的方法および基質は図１に示されており、図の説明に記載されている。
電気計測を実施例２に記載のとおり取得した。緩衝条件（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ））下で二重層中の単一ライセニン−Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎ（変異Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎを有する配列番号２）ナノポアが達成された後に、ＭｇＣｌ２（１０ｍＭ）をｃｉｓコンパートメントに加え、対照を＋１２０ｍＶ、５分間実行した。ＤＮＡポリヌクレオチド（配列番号１３および１４）ならびにＨｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）を緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭ フェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）５０μＬに加え、５分間予備インキュベートした（ＤＮＡ＝６ｎＭ、酵素＝２μＭ）。この予備インキュベーション混合物を電気生理学チャンバーのｃｉｓコンパートメント中の緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）９５０μＬにライセニンナノポア中のヘリカーゼ−ＤＮＡ複合体の捕捉を開始するために加えた（最終濃度、ＤＮＡ＝０．３ｎＭ、酵素＝１００ｎＭを生じる）。別の対照を＋１２０ｍＶ、１０分間実行した。ヘリカーゼＡＴＰａｓｅ活性は、ＮＴＰ（１ｍＭ ＡＴＰ）のｃｉｓコンパートメントへの添加によって必要に応じて開始した。実験は＋１２０ｍＶの一定電位で実行した。
結果および考察
図１に示すヘリカーゼ−ＤＮＡ基質のライセニン−Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎ（変異Ｅ９２Ｎ／Ｅ９４Ｎ／Ｅ９７Ｎ／Ｄ１２１Ｎ／Ｄ１２６Ｎを有する配列番号２）への添加は、図５に示す特性的電流遮断を生じる。ヘリカーゼ結合を含まないＤＮＡは、ナノポアと一過的に相互作用し、電流に短い遮断（＜＜１秒間）を生じる。ヘリカーゼ結合を有し、活性な（すなわち、ＡＴＰａｓｅ作用の下でＤＮＡ鎖に沿って移動する）ＤＮＡは、図５に示す電流における段階的変化を含む長い特性的な遮断レベルを生じる。ナノポア中のさまざまなＤＮＡモチーフは、独特の電流遮断レベルを生じさせる。所与の基質に関して本発明者らは、ＤＮＡ配列を反映する電流移行の特性的パターンを観察する（図５の例）。事象範囲は、およそ６０ｐＡであると観察された。
本実施例は、未処理ＤＮＡ鎖の変異体ライセニンナノポア（ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ、変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａを有する配列番号２）を通る移動を制御するためのＨｅｌ３０８ヘリカーゼ（Ｈｅｌ３０８ＭＢｕ、配列番号１５）の使用を例示する。本実施例全体において使用した一般的方法および基質は図１に示されており、図の説明に記載されている。
電気計測を実施例２に記載のとおり取得した。緩衝条件（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ））下で二重層中の単一ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａを有する配列番号２）ポアが達成された後に、ＭｇＣｌ２（１０ｍＭ）をｃｉｓコンパートメントに加え、対照を＋１２０ｍＶ、５分間実行した。６個の変異の内、最初の５個（Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ）を領域４４から１２６内に本発明により作った。最後（Ｅ１６７Ａ）は、上に考察したとおり領域外の追加的変異である。ＤＮＡポリヌクレオチド（配列番号１３および１４）ならびにＨｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）を緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）５０μＬに加え、５分間予備インキュベートした（ＤＮＡ＝１２ｎＭ、酵素＝２μＭ）。この予備インキュベーション混合物を電気生理学チャンバーのｃｉｓコンパートメント中の緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）９５０μＬに、ライセニンナノポア中のヘリカーゼ−ＤＮＡ複合体の捕捉を開始するために加えた（最終濃度、ＤＮＡ＝０．６ｎＭ、酵素＝１００ｎＭを生じる）。別の対照を＋１２０ｍＶ、１０分間実行した。ヘリカーゼＡＴＰａｓｅ活性は、ＮＴＰ（１ｍＭ ＡＴＰ）のｃｉｓコンパートメントへの添加によって必要に応じて開始した。実験は＋１２０または＋１８０ｍＶのいずれかの一定電位で実行した。
結果および考察
図１に示すとおりヘリカーゼ−ＤＮＡ基質のライセニンナノポア ライセニン−Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａ（変異Ｅ８４Ｑ／Ｅ８５Ｋ／Ｅ９２Ｑ／Ｅ９７Ｓ／Ｄ１２６Ｇ／Ｅ１６７Ａを有する配列番号２）への添加は、図６に示す特徴的な電流遮断を生じる（＋１８０ｍＶの印加電位）。ヘリカーゼ結合を有さないＤＮＡは、ナノポアと一過的に相互作用し、電流の短期間（＜＜１秒間）の遮断を生じる。ヘリカーゼ結合および活性を有するＤＮＡ（すなわち、ＡＴＰａｓｅ作用の下でＤＮＡ鎖に沿って移動する）は、図６に示すとおり電流の段階的変化を伴う長期間の特徴的な遮断レベルを生じる。ナノポア中のさまざまなＤＮＡモチーフは、特有の電流遮断レベルを生じる。所与の基質について本発明者らは、ＤＮＡ配列を反映する電流遷移の特徴的なパターンを観察する（図６に例）。事象範囲は、およそ３０ｐＡ（＋１８０ｍＶの印加電位において）であると観察された。
本実施例は、多数の異なる変異体ライセニンナノポアを通る未処理ＤＮＡ鎖の移動を制御するためのＨｅｌ３０８ヘリカーゼ（Ｈｅｌ３０８ＭＢｕ、配列番号１５）の使用を例示する（検査した変異体ポアの表について表４を参照されたい）。本実施例において使用した一般的方法および基質は図１に示されており、図の説明に記載されている。
電気計測を実施例２に記載のとおり取得した。緩衝条件（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ））下で二重層中の単一ライセニン変異体ポア（下の検査したナノポアの表を参照されたい）が達成された後に、ＭｇＣｌ２（１０ｍＭ）をｃｉｓコンパートメントに加え、対照を＋１２０ｍＶ、５分間実行した。ＤＮＡポリヌクレオチド（配列番号１３および１４）ならびにＨｅｌ３０８Ｍｂｕ（配列番号１５）を緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭ フェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、ｐＨ８．０、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）５０μＬに加え、５分間、予備インキュベートした（ＤＮＡ＝１２、６または３ｎＭ、酵素＝２μＭ）。この予備インキュベーション混合物を電気生理学チャンバーのｃｉｓコンパートメント中の緩衝液（６２５ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ Ｈｅｐｅｓ ｐＨ８．０、７５ｍＭフェロシアン化カリウム（ＩＩ）、２５ｍＭフェリシアン化カリウム（ＩＩＩ）、ｐＨ８．０、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２）９５０μＬに、ライセニンナノポア中のヘリカーゼ−ＤＮＡ複合体の捕捉を開始するために加えた（最終濃度、ＤＮＡ＝０．６、０．３または０．１５ｎＭ、酵素＝１００ｎＭを生じる）。別の対照を＋１２０ｍＶ、１０分間実行した。ヘリカーゼＡＴＰａｓｅ活性は、ＮＴＰ（１ｍＭ ＡＴＰ）のｃｉｓコンパートメントへの添加によって必要に応じて開始した。実験は＋１２０ｍＶまたは＋１８０ｍＶのいずれかの一定電位で実行した。
結果および考察
図１に示すとおりヘリカーゼ−ＤＮＡ基質（配列番号１３および１４）の単一ライセニンナノポア（下の表４におけるポアの表を参照されたい）への添加は、図７〜１２に示す特徴的な電流遮断を生じる（印加電位＋１２０または＋１８０ｍＶ）。ヘリカーゼ結合を有さないＤＮＡは、ナノポアと一過的に相互作用し、電流の短期間（＜＜１秒間）の遮断を生じる。ヘリカーゼ結合および活性を有するＤＮＡ（すなわち、ＡＴＰａｓｅ作用の下でＤＮＡ鎖に沿って移動する）は、検査した種々のライセニン変異体についての図７〜１２に示すとおり電流の段階的変化を伴う長期間の特徴的な遮断レベルを生じる。ナノポア中のさまざまなＤＮＡモチーフは、特有の電流遮断レベルを生じる。
本実施例は、大腸菌（E. coli）発現を利用する変異体ライセニンナノポアの合成方法を記載する。
材料および方法
大腸菌（E.coli）Ｒｏｓｅｔｔａ２（ＤＥ３）ｐＬｙｓＳ細胞を構築物Ｓｔｒｅｐ−ＴｒｘＥｃｏ−ＴＥＶ−ライセニンを含有するプラスミドで形質転換し、発現を０．２ｍＭ ＩＰＴＧの添加で誘導し、１８℃に一晩おいた。細胞を４００ｒｐｍ、３０分間で沈殿させた。細胞沈殿物を５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、３００ｍＭ ＮａＣｌ ０．１μｌ／ｍｌベンゾナーゼ（benzonase）１０μｌ／ｍｌ Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ ｓｅｔ Ｖプロテアーゼ阻害剤中の１Ｘ Ｂｕｇｂｕｓｔｅｒに再懸濁し、４℃、４時間放置した。可溶化物を２００００ｒｐｍ、３０分間遠心し、０．２μｍフィルターを通した。
ろ過した可溶化物をＳｔｒｅｐＴｒａｐカラムにロードし、１００ｍＭ Ｔｒｉｓ、３００ｍＭ ＮａＣｌ、１０ｍＭデスチオビオチン、ｐＨ８．０中に溶出させた。Ｓｔｒｅｐ−ＴｒｘＥｃｏ−ＴＥＶタグをＳｔｒｅｐタグＴＥＶプロテアーゼ（１：２０ｗ／ｗ）での４℃、一晩のインキュベーションによって除去した。いずれの未切断タンパク質、切断されたタグおよびＴＥＶプロテアーゼもｓｔｅｐビーズとのインキュベーションによって除去した。ビーズを遠心分離によって除去し、スフィンゴミエリン（１ｍｇ／ｍｌ）を上清に添加し、３７℃に一晩置いた。
配列番号１は、ライセニンモノマーをコードしているポリヌクレオチド配列を示す。
配列番号２は、ライセニンモノマーのアミノ酸配列を示す。
配列番号３は、Ｐｈｉ２９ ＤＮＡポリメラーゼをコードするポリヌクレオチド配列を示す。
配列番号４は、Ｐｈｉ２９ ＤＮＡポリメラーゼのアミノ酸配列を示す。
配列番号５は、大腸菌（E. coli）由来ｓｂｃＢ遺伝子由来のコドン最適化ポリヌクレオチド配列を示す。それは、大腸菌（E. coli）由来エキソヌクレアーゼＩ酵素（ＥｃｏＥｘｏ Ｉ）をコードする。
配列番号６は、大腸菌（E. coli）由来エキソヌクレアーゼＩ酵素（ＥｃｏＥｘｏ Ｉ）のアミノ酸配列を示す。
配列番号７は、大腸菌（E. coli）由来ｘｔｈＡ遺伝子由来のコドン最適化ポリヌクレオチド配列を示す。それは、大腸菌（E. coli）由来エキソヌクレアーゼＩＩＩ酵素をコードする。
配列番号８は、大腸菌（E. coli）由来エキソヌクレアーゼＩＩＩ酵素のアミノ酸配列を示す。この酵素は、２本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）の１本鎖の３’−５’方向での５’ヌクレオシド一リン酸の分配性消化（distributive digestion）を実施する。鎖での酵素開始は、およそ４ヌクレオチドの５’オーバーハングを必要とする。
配列番号９は、Ｔ．サーモフィラス（T. thermophilus）由来ｒｅｃＪ遺伝子由来コドン最適化ポリヌクレオチド配列を示す。それは、Ｔ．サーモフィラス（T. thermophilus）由来のＲｅｃＪ酵素（ＴｔｈＲｅｃＪ−ｃｄ）をコードする。
配列番号１０は、Ｔ．サーモフィラス（T. thermophilus）由来ＲｅｃＪ酵素（ＴｔｈＲｅｃＪ−ｃｄ）のアミノ酸配列を示す。この酵素は、ｓｓＤＮＡから５’−３’方向で５’ヌクレオシド一リン酸の加工性消化（processive digestion）を実施する。鎖での酵素開始は、少なくとも４ヌクレオチドを必要とする。
配列番号１１は、バクテリオファージラムダｅｘｏ（ｒｅｄＸ）遺伝子由来コドン最適化ポリヌクレオチド配列を示す。それは、バクテリオファージラムダエキソヌクレアーゼをコードする。
配列番号１２は、バクテリオファージラムダエキソヌクレアーゼのアミノ酸配列を示す。配列は、三量体に会合する３個の同一のサブユニットの内の１つである。酵素は、ｄｓＤＮの１本鎖からヌクレオチドの高度な加工性消化を５’−３’方向で実施する（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｅｂ．ｃｏｍ／ｎｅｂｅｃｏｍｍ／ｐｒｏｄｕｃｔｓ／ｐｒｏｄｕｃｔＭ０２６２．ａｓｐ）。鎖での酵素開始は、５’リン酸を有するおよそ４ヌクレオチドの５’オーバーハングを選択的に必要とする。
配列番号１３および１４は、実施例１、２、３、４、５および６において用いられるｓｓＤＮＡのポリヌクレオチド配列を示す。配列番号１４は３’−コレステロールタグ（cholesterol tag）を有する。
配列番号１５は、Ｈｅｌ３０８Ｍｂｕのアミノ酸配列を示す。
配列番号１６は、ライセニン関連タンパク質（ＬＲＰ）１のアミノ酸配列を示す。
配列番号１７は、ライセニン関連タンパク質（ＬＲＰ）１のアミノ酸配列を示す。
配列番号１８は、ライセニン関連タンパク質（ＬＲＰ）１のアミノ酸配列を示す。
配列番号１９は、パラスポリン−２の活性化バージョンのアミノ酸配列を示す。全長タンパク質は、そのアミノおよびカルボキシ末端で切断され、ポアを形成できる活性化バージョンを形成する。

Claims (15)

  1. 配列番号２に示す配列の変種を含む変異体ライセニン（lysenin）モノマーであって、前記モノマーがポアを形成でき、前記変種が、配列番号２のアミノ酸配列と配列全長にわたって少なくとも９０％の同一性を有し、前記変種が、ポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力を変更する配列番号２のＥ８４及びＥ９２の位置での置換を含む、変異体ライセニンモノマー。
  2. 前記変種が、ポリヌクレオチドと相互作用するモノマーの能力を変更する配列番号２のＥ８５、Ｅ９７及びＤ１２６の位置での置換を含む、請求項１に記載の変異体ライセニンモノマー。
  3. 前記置換が、（ａ）前記モノマーの立体効果を変更する、（ｂ）前記モノマーの正味電荷を変更する、（ｃ）前記ポリヌクレオチドと水素結合する前記モノマーの能力を変更する、（ｄ）非局在化電子ｐｉシステムを通じて相互作用する化学的基を導入するもしくは除去する、および／または（ｅ）モノマーの構造を変更する、請求項１に記載の変異体ライセニンモノマー。
  4. （ｉ）前記置換が、正味の正電荷を増加または減少させ、（ｉｉ）前記置換が、Ｅ８４又はＥ９２に正に荷電したアミノ酸を導入することによりまたはＥ８４及びＥ９２で負電荷を中和することによって前記正味の正電荷を増加させ、または（ｉｉｉ）前記置換が、前記負に荷電したアミノ酸を１つもしくは複数の無荷電アミノ酸、非極性アミノ酸および／もしくは芳香族アミノ酸で置換することによって、Ｅ８４及びＥ９２で負電荷を中和する、請求項３に記載の変異体ライセニンモノマー。
  5. Ｅ８４およびＥ９２の位置で置換されたアミノ酸が、アスパラギン（Ｎ）、セリン（Ｓ）、グルタミン（Ｑ）、アルギニン（Ｒ）、グリシン（Ｇ）、チロシン（Ｙ）、ロイシン（Ｌ）、リジン（Ｋ）またはアラニン（Ａ）から選択される、請求項１に記載の変異体ライセニンモノマー。
  6. 前記変種が次の置換：
    ｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１つもしくは複数；
    ｉｉ．Ｅ７６Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１つもしくは複数；
    ｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ５０Ｓの１つもしくは複数；
    ｉｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ７１Ｓの１つもしくは複数；
    ｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ９４Ｓの１つもしくは複数；
    ｖｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１０２Ｓの１つもしくは複数；
    ｖｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１２８Ｓの１つもしくは複数；
    ｖｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１３５Ｓの１つもしくは複数；
    ｉｘ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ６８Ｓの１つもしくは複数；
    ｘ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ１２１Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ１３４Ｓの１つもしくは複数；または
    ｘｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１３５Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｈ１０３ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｉｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｍ９０Ｓ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｑ８７Ｓ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｖｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｓ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｖｉｉ．Ｅ８４Ｓ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｖｉｉｉ．Ｈ８１Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｉｘ．Ｙ７９Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｘ．Ｆ７０Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｘｉ．Ｈ５８Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｘｉｉ．Ｒ５２Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｘｉｉｉ．Ｎ４８Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｘｉｖ．Ｎ４６Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｘｖ．Ｍ４４Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｘｖｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２ＱおよびＥ９７Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｘｖｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＤ１２６Ｇの１つもしくは複数；
    ｘｘｖｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７ＳおよびＥ１６７Ａの１つもしくは複数；
    ｘｘｉｘ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１つもしくは複数；
    ｘｘｘ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１つもしくは複数；
    ｘｘｘｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ１２１Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｘｘｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＤ６８Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｘｘｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１３５Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｘｘｉｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１２８Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｘｘｖ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ１０２Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｘｘｖｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ９４Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｘｘｖｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ７１Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｘｘｖｉｉｉ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６Ｇ、Ｅ１６７ＡおよびＥ５０Ｓの１つもしくは複数；
    ｘｘｘｉｘ．Ｅ７６Ｓ、Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１つもしくは複数；または
    ｘｌ．Ｅ８４Ｑ、Ｅ８５Ｋ、Ｅ９２Ｑ、Ｅ９７Ｓ、Ｄ１２６ＧおよびＥ１６７Ａの１つもしくは複数
    を含む、請求項１に記載の変異体ライセニンモノマー。
  7. 前記変種がｉからｘｌのいずれか１つの全ての置換を含む、請求項６に記載の変異体ライセニンモノマー。
  8. ライセニン由来の２つ以上の共有結合的に付着されたモノマーを含む構築物であって、モノマーの少なくとも１つが請求項１から７のいずれか一項に記載の変異体ライセニンモノマーである、構築物。
  9. （ｉ）前記２つ以上のモノマーが同じであるまたは異なっている、および／または
    （ｉｉ）少なくとも１つのモノマーが配列番号２に示す配列を含み、および／または
    （ｉｉｉ）前記構築物が２つのモノマーを含み、および／または
    （ｉｖ）前記モノマーが遺伝子的に融合されており、および／または
    （ｖ）前記モノマーがリンカーを介して付着している、
    請求項８に記載の構築物。
  10. 請求項１から７のいずれか一項に記載の変異体ライセニンモノマーまたは請求項８に記載の構築物をコードしているポリヌクレオチド。
  11. 請求項１から７のいずれか一項に記載の十分な数の変異体ライセニンモノマーを含むライセニン由来のホモオリゴマーポア。
  12. 請求項１から７のいずれか一項に記載の少なくとも１つの変異体ライセニンモノマーを含むライセニン由来のヘテロオリゴマーポア。
  13. （ａ）標的分析物を請求項１１または１２に記載のポアに接触させて、前記標的分析物が前記ポアを通って移動するようにするステップ、および
    （ｂ）前記分析物が前記ポアに対して移動するときに１つまたは複数の測定を行うステップであって、前記測定が標的分析物の１つまたは複数の特性を示し、それにより標的分析物を特性決定するステップ
    を含む、標的分析物を特性決定する方法。
  14. 標的分析物を特性決定するための請求項１１または１２に記載のポアの使用。
  15. （ａ）請求項１１または１２に記載のポアおよび（ｂ）ポリヌクレオチド結合タンパク質を含む、標的ポリヌクレオチドを特性決定するためのキット。
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