JP5551211B2 - 発光検知ワークステーション - Google Patents
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Description
最近は、イムノアッセイプロトコルにおける分析物を定量的に分析するために発光検知を利用する方法が導入されて来ている。このような発光イムノアッセイ(LIA)は、免疫特異的抗体又は混成核酸配列とこれに似た特定のリガンドの反応特異性を、光の検知によって得られる高い感度と組み合わせることの可能性を提案している。伝統的には、放射性の試薬がこのような目的のために使用されて来ており、LIA試薬の特異性及び感度は、概して、伝統的な放射性標識を採用しているものに似ている。しかしながら、LIAは、放射性試薬に対してLIA試薬の無毒性及びより長い保存性を有するため、多くの用途にとっての好ましい分析方法である。
本発明の照度計の作動は合成された連続的な動作であり、照度計の全ての構成要素は協働して正確で正しく且つ信頼性のあるデータを提供するけれども、本発明は、三つの別個の一体化された系、すなわち、光学系、機械系及び処理系を参照することによってより容易に理解することができる。以下の全体としての動作の例を説明しながら、各々の動作を以下に説明する。
図2を参照すると、光学系80が更に詳細に示されている。プレート10内に配置されたプレートウエル20内の分析物からの発光による光線100は、最初に、暗視野コリメータ110内を通過する。コリメータ110は、CCDカメラ70による最終的な撮像のために平行及びほぼ平行な光線のみがサンプルウエル20を出て行くのを許容する。コリメーション作用は、サンプルウエル20からの迷光の防止及び発光サンプル間のクロストークの排除の助けとなる。コリメータ110は、サンプルからの迷光の制限を高めるために、サンプルトレイ10に対して密封係合されるか又はごく近接せしめられている。各ウエル10は、コリメータ110内の対応するグリッド開口と厳密に整合されている。コリメータ110から出た発光光線は、フレネル視野レンズ120を通過し、このフレネル視野レンズは光をフィルタ130に向けて集光させる。本発明の好ましい実施形態においては、コリメータ110とフレネル視野レンズ120とは、ユーザーが交換することができるカセット内に包装されている。このような装置の交換は、種々の分析物の光学特性及びプレート内のウエルの分布を変えることに必然的に伴う。
本発明の照度計の機械系は、CCDカメラ70によって読み取ることができるように、コリメータ110と整合されたマイクロプレートの自動化され且つ高い処理量の正確な供給を達成するように設計されている。この目的のために、図3に示されているように、本発明の照度計のシャトル200は、プレート10が、好ましくはロボットアームのようなロボット装置によってシャトルに装荷され、シャトル200が次いでサンプルチャンバ55に向かって運ばれる装荷位置202から、読み取り位置203まで並進する。シャトル200は、一般的なステッピングモーター(図示せず)によって並進せしめられる。シャトル200がサンプルチャンバ55に向かって進むと、シャトル200は注入装置30の下で停止し得る。注入装置30は、図4の下方により詳細に図示されている。依然として図3を参照すると、注入装置30は、リザーバ204から抜き取った流体試薬を給送する。注射器ポンプ205が、リザーバ204から流体試薬を抜き取り、同流体試薬を注入チューブ40へと圧送する。二方向弁206は、注射ポンプ205によってリザーバ204から抜き取られ且つ注射器ポンプ205によって圧送された流体の供給チューブ40への流通を制御している。実際の動作においては、使用されている注入ポートと同じ数の注入チューブ40が存在し、たくさんの注射器ポンプ205も使用される。図4の下方に図示されているように、注入装置30は、16個以下の注入ポート302を有している。注入装置が使用されているときに照度計と共に使用されるプレートには、典型的には、一つの列内に16個以下のウエルが準備される。シャトル200がプレート10を注入装置30の下まで進むと、シャトル200は、ウエルの第1の列208が注入装置30の下方に直接整合するように停止する。正確な量の分析物がウエルの第1の組に供給され、シャトル200は、ウエルの第2の列内へ試薬を注入するために、一つの列を前方へ割り送りする。この過程は、全てのウエルが充填されるまで繰り返される。その後に、シャトル200は、ヒンジ止めされたドア212を通ってサンプルチャンバ55内へと前方に進む。別のやり方では、ドア212は、ギロチンドア又は同様のタイプの閉鎖機構であっても良い。プレート10のウエルは、次いでサンプルチャンバ55内で読み取られる。読み取りが完了すると、シャトル200は装荷位置202へと戻る。
上記したように、本発明の照度計のワークステーションの機械系及び光学系は、フレネルレンズ/コリメータの使用を十分に利用してCCDカメラによる単一の像視検及びそれに続く分析を可能にするHTS環境における正しく定量的な発光の値を提供するように設計されている。コリメータ、レンズ及びカメラは、互いに結合して、従来技術における試みにおいて経験されるクロストークを減少させる。得られた信号は、更に、図7に図示されているように、演算処理装置50又はその他の方法に装荷されたソフトウエアによって更に処理して、得られた値を更に精緻なものにする。
1.温かいウエルと垂直及び水平隣接ウエルの強度を引き出す。
2.温かいウエルの各々に対して、水平及び垂直の隣接ウエルの強度の平均値を別個に計算する。
3.実際の隣接する強度と水平及び垂直方向の各々についての平均値との差を計算する。
4.パーセンテージの強度値に変換するために、この差を温かいウエルの強度によって正規化する。
5.最も悪い場合の差の絶対値を見つけ、それを全体的な不整合として表示する。
6.温かいウエルの右側(水平方向)に隣接する4つのウエルの平均をとることによって、X方向(水平方向)の平均の不整合を計算する。
7.温かいウエルの頂部(垂直方向)に隣接する4つのウエルの平均をとることによって、Y方向(垂直方向)の平均の不整合を計算する。
8.温かいウエルの頂部における左側の温かいウエルの垂直方向に隣接のウエルの平均をとることによって回転方向の不整合を計算し、それを右側の温かいウエルの垂直方向に隣接のウエルの平均値から差し引き、それによって、隣接ウエルの値のあらゆる傾きを指示する。
ステップDにおいては、画素の飽和が起こってカーソル前方及びカーソル後方の画像の平均値が使用されなければならない場合に、画像データに、カーソル前方の像によって表されるパーセンテージ(例えば、3%)の逆数が掛けられる。
ステップFにおいては、データ全体が処理され且つ二次元データアレイからの三次元像の再生がなされるのと同じやり方で最終的な画像を作成することによって、クロストーク補正がなされる。
[真の光源分布]×[系のIRF]=[装置出力]
[真の光源分布]={1/[装置のIRF]}×[装置出力]
続いて、上記の処理によって得られた計算されたウエルの強度は、校正されて、公知のレポータ酵素の濃度のような重要な絶対パラメータにされる。この校正は、関連技術の当業者によく知られている種々の校正曲線のいずれかを作る正規化方法によって行われる。
LetA=(青Rないし青Fに対する装置の出力)/(青Rないし全発光Fに対する装置の出力)
LetB=(緑Rないし青Fに対する装置の出力)/(緑Rないし全発光Fに対する装置の出力)
LetC=(青Rないし緑Fに対する装置の出力)/(青Rないし全発光Fに対する装置の出力)
LetD=(緑Rないし緑Fに対する装置の出力)/(緑Rないし全発光Fに対する装置の出力)。
(青Fの装置の出力)=A×(青Rの真の強度)+B×(緑Rの強度)及び
(緑Fの装置の出力)=C×(青Rの真の強度)+D×(緑Rの強度)
これらの2つの連立方程式は、次いで、演算処理装置50の制御下で、処理ソフトウエアによって青及び緑の試薬の真の強度に対して解かれる。
本発明は、作動範囲及びNorthStar(登録商標)照度計の自由度を例示しているHTS形式で実施されたアッセイの例を参照することによって、更に理解することができる。
例1−精製されたcAMPの測定
cAMP標準規格品が逐次希釈され且つアルカリ性フォスファターゼ結合cAMP及び抗−cAMPを備えた96ウエルアッセイに添加した。これらのプレートを、cAMP−Screen(登録商標)プロトコルによって処理し、CSPD/Sapphire−II(登録商標)を添加して30分経過した後に、NorthStar(登録商標)上で1分間撮像した。精製されたcAMPの0.06pMの感知は、NorthStar(登録商標)のワークステーション上でcAMP−Screen(登録商標)によってなされる。結果を図8に示す。
C2細胞を発現するアドレナリンβ2レセプタを、96−ウエルプレート(10,000細胞/ウエル)内にプレートし、イソプロテレノールによって10分間刺激した。cAMP製品を、cAMP−Screenアッセイを使用している細胞溶解液内で定量した。アッセイプレートをCSPD/Sapphire−II(登録商標)を添加して30分経過した後に、NorthStar(登録商標)上で1分間撮像した。刺激されたアドレナリンレセプタからのNorthStar(登録商標)上で、次第に増えるcAMPのレベルを検知した。結果を図9に示す。
pCRE−Lucをトランスフェクトされた細胞を、96−、384−及び1,536−ウエルプレート内に接種し、フォルスコリン(forskolin)によって20時間培養し、Luc−Screen(登録商標)システムによってアッセイした。PCRE−Lucは、cAMP応答要素(CRE)の制御による発光酵素レポーター遺伝子を含んでいる。フォルスコリンは、アデニレートシクラーゼの不可逆性の活性化による細胞内のcAMP製品を含んでいる。全てのプレートの形式が、比較可能なフォルスコリン誘導cAMPレベルを示している。結果を図10に示す。
pCRE−Lucでトランスフェクトされた細胞を96−ウエルプレート内で接種した。4つのランダムなウエルを、1mMのフォルスコリンによって17時間誘導し、Luc−Screen(登録商標)システムによってアッセイした。結果を図11に示す。
NIH/3T3細胞を、pCRE−Luc及びpβgal−Controlによって一緒にトランスフェクトし且つ96−ウエルマイクロプレート(2×104細胞/ウエル)内に接種した。細胞は、17時間フォルスコリンによって培養した。細胞にModified Dual−Light(登録商標)Buffer Aを添加し且つ10分間培養した。Modified Dual−Light(登録商標)Buffer Bを注入し且つルシフェラーゼで触媒作用を施した発光を迅速に測定した。30分後に、AcceleratorIIを添加し、次いで、β−ガラクシトダーゼで触媒作用を施した発光を、NorthStar(登録商標)HTSワークステーション上で定量した。定量結果を図12に示す。
ルシフェラーゼ活性化の折り畳み誘導(fold induction)を、β−ガラクトシダーゼ活性化に対する正規化に続いて計算した。Dual−light(登録商標)アッセイは、正規化のための制御レポータの使用を可能にし又は遺伝子発現によって特異性でない作用を監視することが可能になる。これを図13に示す。
CHO−Aeq−5HT2Bに、コエレンテラジン(coelenterazine)h+/−0.5μM BAPTA−AMを4時間装荷した。アンタゴニスト メチセルギドを、30分間、装荷された細胞に添加した。1μMアゴニストa−Me−5HTを注入し、発光された光を、NorthStar(登録商標)システム上で20秒間積分した。メチセルギド(0.6μM)に対してレポートされたIC50は、BAPTA−AMの存在下で変化しない。得られたデータを図14に示す。
CHO−Aeq−OX2−A2細胞に、コエレンテラジン(coelenterazine)h+/−0.6μM BAPTA−AMを4時間装荷した。ペプチド アンタゴニスト オレクシン Bをウエル内に注入し、発光された光を、NorthStar(登録商標)システム上で20秒間積分した。NorthStar(登録商標)システム上でこのアッセイを使用したとき、オレキシンB(0.75nM)に対してレポートされたEC50は、BAPTA−AMの存在下で変化しない。これは図15に示す。
Claims (1)
- 複数の発光サンプルを分析するための照度計であって、
CCD(電荷結合素子)と、
各々のウエルが前記複数の発光サンプルのうちの単一のサンプルを含むためのものである複数のウエルと、
前記発光サンプルを加熱するためのヒーターと、
前記複数のウエルの対応するウエルと整合された複数の光軸方向に細長い穴からなるグリッド開口を備えており、前記複数のウエルと前記CCDとの間に配置されており、前記ウエルからの平行な光線及びほぼ平行な光線のみが前記CCDによって撮像されるようにする、コリメータと、
該コリメータに隣接せしめられて配置されているフレネル視野レンズであって、前記コリメータが該フレネル視野レンズと前記複数のウエルとの間に配置されている、前記フレネル視野レンズと、を含む照度計。
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