JP5424354B2 - 無機系繊維構造体及びその製造方法 - Google Patents
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Description
このような静電紡糸法は、紡糸原液を紡糸空間へ供給するとともに、供給した紡糸原液に対して電界を作用させて延伸し、対向電極上に集積させることによって紡糸する方法である。このように、電界の作用により延伸し、紡糸された繊維は対向電極上に、直接電界の力で集積するため、ペーパー状の不織布になる。しかしながら、断熱材の用途、濾過用途などに使用する場合には、嵩高な不織布であるのが好ましい。
この嵩高な不織布は、繊維同士が接着していないか、あるいは、極めて弱く接着した低密度で綿状の不織布であるため、保形性や強度を必要としない用途には適用できたが、液体濾過など、保形性や強度を必要とする用途においては、不織布形態を保つことができず、実用に適さない場合があった。
(1)無機系繊維を抄造して無機系繊維不織布を製造する方法
(2)無機系繊維不織布にバインダーをスプレーし、乾燥する方法
(3)無機系繊維不織布をバインダー浴に浸漬した後、2本ロールプレス機(圧をかける装置)に通して余剰バインダーを除き、その後乾燥する方法
しかしながら、これら培養担体は3次元培養に必要な細胞の足場となる表面積が不充分であるため、細胞の高密度培養が困難であったり、生体内環境に類似した細胞の組織形成能を保有していない場合が多い。
このような従来の培養担体の問題点を解決し、3次元培養できる培養担体として、「エレクトロスピニング法により作製したナノファイバーを含むスキャフォールド」が提案されている(特許文献3)。具体的な実施例においては、シリカ、PVAからなるナノファイバーを使用している。
しかしながら、このようなナノファイバーを含むスキャホールドであっても、細胞増殖能が低く、高密度培養を行うことが困難であり、また、細胞機能も発現しにくいものであった。更には、繊維密度や厚みの制御が困難であり、また細胞塊が不均一に形成されることから、培養状態を観察することが困難であった。
しかしながら、このようなナノファイバーを含むスキャフォールドは細胞機能の低いものであった。
(1)平均繊維径3μm以下の無機系ナノファイバーからなる無機系繊維構造体であり、内部を含む全体が無機系接着剤で接着した、空隙率が90%以上の無機系繊維構造体;
(2)引張破断強度が0.2MPa以上である、(1)の無機系繊維構造体;
(3)繊維単位重量あたりの水酸基量が50μmol/g以上である、(1)又は(2)の無機系繊維構造体;
(4)静電紡糸法により紡糸された無機系繊維に対して、前記無機系繊維とは反対極性のイオンを照射し、集積させる工程を含んで製造された無機系繊維集合体を、内部を含む全体において、無機系接着剤で接着した、(1)〜(3)の無機系繊維構造体;
(5)無機系繊維間に被膜を形成していない、(1)〜(4)の無機系繊維構造体;
(6)(1)〜(5)の無機系繊維構造体に金属イオン含有化合物を付与した、機能性を有する無機系繊維構造体;
(7)培養担体として用いる、(1)〜(6)の無機系繊維構造体;
(8)(i)無機成分を主体とする化合物を含む紡糸用無機系ゾル溶液から、静電紡糸法により無機系繊維を紡糸する工程、
(ii)前記無機系繊維とは反対極性のイオンを照射し、集積させ、無機系繊維集合体を形成する工程、
(iii)前記無機系繊維集合体の内部を含む全体に、無機成分を主体とする化合物を含む接着用無機系ゾル溶液を付与し、余剰の接着用無機系ゾル溶液を通気により除去し、内部を含む全体において、無機系接着剤で接着した無機系繊維構造体を形成する工程、
を含む、無機系繊維構造体の製造方法;
(9)(ii)無機系繊維集合体を形成する工程において、無機系繊維集合体を形成した後に熱処理する、(8)の無機系繊維構造体の製造方法;
(10)熱処理温度が500℃以下である、(9)の無機系繊維構造体の製造方法;
(11)(iii)無機系繊維構造体を形成する工程において、余剰の接着用無機系ゾル溶液を通気により除去した後に熱処理する、(8)〜(10)の無機系繊維構造体の製造方法;
(12)熱処理温度が500℃以下である、(11)の無機系繊維構造体の製造方法;
(13)前記紡糸用無機系ゾル溶液及び/又は接着用無機系ゾル溶液が金属イオン含有化合物を含有する、(8)〜(12)の無機系繊維構造体の製造方法;
(14)(iii)無機系繊維構造体を形成する工程を実施した後に、金属イオン含有化合物含有溶液を前記無機系繊維構造体に付与する、(8)〜(13)の無機系繊維構造体の製造方法
に関する。
前記(3)の本発明の別の好適態様によれば、繊維単位重量あたりの水酸基量が50μmol/g以上であるため、アパタイト等を繊維表面に析出させることができ、無機系繊維構造体に機能を付与することができる。
また、無機系繊維とは反対極性のイオンを照射し、集積し、無機系繊維集合体を形成している、つまり、中和紡糸法に由来する90%以上の高い空隙率(嵩高)の結果、繊維密度が低いため、無機系繊維構造体内部を有効に利用することができる。例えば、培養基材として使用した場合、繊維密度が低いため、細胞が培養担体内部まで広がりやすいという効果を奏する。また、無機系繊維とは反対極性のイオンを照射し、集積し、無機系繊維集合体を形成しているため、嵩高となり、観察可能なまでの繊維密度と厚みの制御が可能である。また、繊維とは反対極性のイオンを照射し、集積するため90%以上の高い空隙率となる。
更に、無機系繊維集合体であるため、無機系接着剤を付与する際に厚さが潰れない。その結果、繊維密度と厚みの制御が可能である。そのため、培養基材として使用した場合、培養状態を観察しやすい。
更に、無機系接着剤で接着されているため、溶液中など様々な使用条件下で形態を維持でき、そのため無機系繊維構造体内部を有効に利用できる。培養基材とした場合、3次元に培養でき、細胞が組織環境に近い状態で培養されるため、細胞機能を発現しやすい。
更に、無機系繊維構造体は内部を含む全体において、無機系接着剤で接着されているため、90%以上の空隙率を保持することが可能である。例えば、培養担体として使用した場合、細胞に必要不可欠な栄養素や酸素などの供給効率を向上させることができ、かつ、細胞培養に必要な足場が多いため、高密度培養できる。
前記(7)の本発明の更に別の好適態様によれば、本発明の無機系繊維構造体を培養担体として使用した場合、平均繊維径が3μm以下と細いため、表面積が広い。その結果、細胞と、細胞との足場となる繊維との接着効率が向上し、更に、細胞に必要不可欠な栄養素や酸素などの供給効率が向上するため、細胞増殖能に優れ、高密度培養できる。
また、無機系接着剤で接着されているため、培養液中においても形態を維持できる。その結果、無機系繊維構造体の嵩高な構造を維持できるため、3次元に培養でき、細胞が組織環境に近い状態で培養されるため、細胞機能を発現しやすい。
前記(10)の本発明の別の好適態様によれば、熱処理温度が500℃以下であるため、無機系繊維構造体の親水性を高めることができる。また、培養基材として使用する場合には、細胞をスフェロイド形態で培養しやすい。
前記(12)の本発明の更に別の好適態様によれば、熱処理温度が500℃以下であるため、無機系繊維構造体の親水性を高めることができる。また、培養基材として使用する場合には、細胞をスフェロイド形態で培養しやすい。
前記(14)の本発明の更に別の好適態様によれば、金属イオン含有化合物含有溶液を無機系繊維構造体に付与しているため、金属イオン含有化合物を含有する、細胞機能が高い、抗菌性に優れるなど、機能性に優れる無機系繊維構造体を製造できる。
本発明の製造方法は、
(1)無機成分を主体とする化合物を含む紡糸用無機系ゾル溶液から、静電紡糸法により無機系繊維を紡糸する工程(紡糸工程)、
(2)前記無機系繊維とは反対極性のイオンを照射し、集積させ、無機系繊維集合体を形成する工程(集積工程)、
(3)前記無機系繊維集合体の内部を含む全体に、無機成分を主体とする化合物を含む接着用無機系ゾル溶液を付与し、余剰の接着用無機系ゾル溶液を通気により除去し、内部を含む全体において、無機系接着剤で接着した無機系繊維構造体を形成する工程(接着工程)
を含み、所望により、
(4)金属イオン含有化合物含有溶液を前記無機系繊維構造体に付与し、無機系繊維構造体に機能性を付与する工程(金属イオン含有化合物含有溶液付与工程)
を更に含むことができる。
本発明の製造方法では、前記金属イオン含有化合物含有溶液付与工程(4)に代えて、あるいは、前記工程(4)に加えて、紡糸工程(1)で使用する紡糸用無機系ゾル溶液、及び/又は、接着工程(3)で使用する接着用無機系ゾル溶液に金属イオン含有化合物を添加することができる。
図1において、静電紡糸装置1は、繊維の原料となる、無機成分を主体とする化合物を含む紡糸用無機系ゾル溶液を吐出する紡糸ノズル2と、この紡糸ノズル2の先端下方に配置された繊維回収装置である繊維回収容器3内に配置された捕集部材(例えばネット、コンベアなど)4とを備えている。さらに、紡糸ノズル2に対向して配置され、吐出されて形成する繊維とは反対極性のイオンを発生するイオン発生手段であると共に、電気的に繊維を吸引できる対向電極5を備えている。紡糸ノズル2には、紡糸用無機系ゾル溶液を供給するゾル溶液供給機6が接続されており、紡糸ノズル2及び対向電極5にはそれぞれ第1高電圧電源7及び第2高電圧電源8が接続されている。また、繊維回収容器3には、繊維を繊維回収容器3に吸引する吸引機9が設けられている。
触媒として塩基を使用すると、曳糸性のゾル溶液を得ることが困難になるため、塩基を使用しないのが好ましい。
反応温度は使用溶媒の沸点以下であれば良いが、低い方が適度に反応速度が遅く、曳糸性のゾル溶液を形成しやすい。あまり低すぎても反応が進行しにくいため、10℃以上であるのが好ましい。
図5において、静電紡糸装置1Aは、実施形態1におけるイオンを発生できると共に、繊維を吸引できる対向電極5に替えて、電離放射線を照射できる電離放射線源10と、繊維を吸引できるネット状の対向電極5(第3高電圧電源11に接続されている)を用いた以外は、静電紡糸装置1と同様な構成であり、重複する説明は省略する。
図6において、静電紡糸装置1Bは、第1紡糸ノズル2aと第2紡糸ノズル2bとが、互いに対向して配置されている。第1紡糸ノズル2aには、紡糸用無機系ゾル溶液を供給する第1ゾル溶液供給機6a及び高電圧を印加する第1高電圧電源7が接続され、第2紡糸ノズル2bには、紡糸用無機系ゾル溶液を供給する第2ゾル溶液供給機6b及び第1高電圧電源7とは反対極性の高電圧を印加する第2高電圧電源8がそれぞれ接続されている。その他は、静電紡糸装置1と同様な構成であり、重複する説明は省略する。
なお、熱処理はオーブン、焼結炉等を用いて実施することができ、その温度は無機系繊維集合体を構成する無機成分によって適宜設定する。
無機系繊維間に被膜を形成することなく、また、空隙率を下げないように、無機系接着剤で接着する際には、無加重で焼成を実施することが好ましい。
金属イオン含有化合物を構成する金属としては、例えば、カルシウム、ナトリウム、鉄、マグネシウム、カリウム、銅、ヨウ素、セレン、クロム、亜鉛、又はモリブデンなどを挙げることができる。これらの金属は、細胞機能誘導因子又は抗菌作用を奏する。
金属イオン含有化合物は、例えば、金属塩であることができる。金属塩としては、例えば、塩化物、硫酸塩、リン酸塩、炭酸塩、リン酸水素塩、炭酸水素塩、硝酸塩、水酸化物などを挙げることができる。特に、カルシウムイオン含有塩、マグネシウムイオン含有塩、アパタイト(りん灰石)を付与した機能性を有する無機系繊維構造体は、細胞機能を高めた細胞培養を行うことができる。
また、接着用無機系ゾル溶液を付与した後、接着工程(3)において、同様の温度範囲で接着用熱処理(乾燥及び/又は焼成)し、繊維単位重量あたりの水酸基量を50μmol/g以上(より好ましくは100μmol/g以上)とすることが好ましい。
無機系ゲル状繊維とは、溶媒を含む状態の繊維であり、例えば、無機系繊維の原料がテトラエトキシシラン(TEOS)、エタノール、水、塩酸からなる場合は、最も沸点の高い物質が水であるため、100℃未満の温度で熱処理をした、又は熱処理をしていない繊維である。
「平均繊維径」は50点における繊維径の算術平均値をいい、「繊維径」は無機系繊維構造体を撮影した5000倍の電子顕微鏡写真をもとに測定した繊維の太さをいう。
P=[1−Wf/(V×SG)]×100
ここで、Pは空隙率(%)、Wfは繊維重量(g)、Vは体積(cm3)、SGは繊維の比重(g/cm3)をそれぞれ表す。
例えば、不織布のように厚さが均一な場合は、次の式から算出することができる。
P={1−Wn/(t×SG)}×100
ここで、Pは空隙率(%)、Wnは目付(g/m2)、tは厚さ(μm)、SGは繊維の比重(g/cm3)をそれぞれ表す。
なお、目付は、最も面積の広い面の面積と重量を測定し、1m2当たりの重量に換算した値であり、厚さは、最も面積の広い面における荷重が100g/cm2となるように設定したマイクロメーター法で測定した値である。
製品名:小型引張試験機
型式:TSM−01−cre サーチ株式会社製
試験サイズ:5mm幅×40mm長
チャック間間隔:20mm
引張速度:20mm/min.
初荷重:50mg/1d
なお、水酸基量は中和滴定法を用いて定量した値である。つまり、無機系繊維構造体を20vol%の塩化ナトリウム水溶液50mL中に分散させた後、0.1N水酸化ナトリウム水溶液を中和点まで滴下し、中和に必要な水酸化ナトリウム滴下量から、無機繊維構造体の水酸基量を決定する(参考文献参照)。
(参考文献)
George W S.,Determination of Specific Sufface Area of Colloidal Silica by Titration with Sodium Hydroxide,Anal.Cheam.;28,1981-1983,(1956)
金属イオン含有化合物を構成する金属としては、例えば、カルシウム、ナトリウム、鉄、マグネシウム、カリウム、銅、ヨウ素、セレン、クロム、亜鉛、又はモリブデンなどを挙げることができる。これらの金属は、細胞機能誘導因子又は抗菌作用を奏する。
金属イオン含有化合物は、例えば、金属塩であることができる。金属塩としては、例えば、塩化物、硫酸塩、リン酸塩、炭酸塩、リン酸水素塩、炭酸水素塩、硝酸塩、水酸化物などを挙げることができる。特に、カルシウムイオン含有塩、マグネシウムイオン含有塩、アパタイト(りん灰石)を付与した機能性を有する無機系繊維構造体は、細胞機能を高めた細胞培養を行うことができる。
(1)シリカ繊維不織布の作製
本実施例では、表1に記載の16種類のシリカ繊維不織布(実施例1〜実施例9、比較例1〜比較例7)を作製し、その評価を行った。
金属化合物としてのテトラエトキシシラン、溶媒としてのエタノール、加水分解のための水、及び触媒として1規定の塩酸を、1:5:2:0.003のモル比で混合し、温度78℃で10時間の還流操作を行い、次いで、溶媒をロータリーエバポレーターにより除去して濃縮した後、温度60℃に加熱して、粘度が2ポイズのゾル溶液を形成した。得られたゾル溶液を紡糸液(紡糸用無機系ゾル溶液)として用い、中和紡糸法(比較例6及び7を除く)又は静電紡糸法である平板紡糸法(比較例6及び7)によりゲル状シリカ繊維ウエブを作製した。
紡糸ノズル:内径0.4mmの金属製注射針(先端カット)
紡糸ノズルと対向電極との距離:200mm
対向電極及びイオン発生電極(両電極を兼ねる):ステンレス板(誘起電極)上に厚さ1mmのアルミナ膜(誘電体基板)を溶射し、その上に直径30μmのタングステンワイヤ(放電電極)を10mmの等間隔で張った沿面放電素子(タングステンワイヤ面を紡糸ノズルと対向させると共に接地し、ステンレス板とタングステンワイヤ間に交流高電圧電源により50Hzの交流高電圧を印加)
第1高電圧電源:−16kV
第2高電圧電源:±5kV(交流沿面のピーク電圧:5kV、50Hz)
気流:水平方向25cm/sec、鉛直方向15cm/sec
紡糸室内の雰囲気:温度25℃、湿度40%RH以下
連続紡糸時間:30分以上
次に、前記工程で得られたゲル状シリカ繊維ウエブを、実施例7及び比較例1を除いて、表1の工程(3)欄に記載の熱処理温度(120℃、300℃、500℃、又は800℃)で集積後熱処理することにより、シリカ繊維ウエブ(目付:10g/m2)を作製した。
繊維間接着のために用いる接着用無機系ゾル溶液として、金属化合物としてテトラエトキシシラン、溶媒としてエタノール、加水分解のための水、及び触媒として硝酸を、1:7.2:7:0.0039のモル比で混合し、温度25℃、攪拌条件300rpmで15時間反応させた。反応後、酸化ケイ素の固形分濃度が0.25%となるようにエタノールで希釈し、シリカゾル希薄溶液(接着用無機系ゾル溶液)とした。
前記工程で得られたシリカ繊維ウエブの内、実施例1〜実施例9、及び比較例7について、前記シリカゾル希薄溶液に浸漬した後、吸引により余剰のシリカゾル希薄溶液を除去すること[表1の工程(4)欄に記載の方法A]により、シリカゾル希薄溶液含有シリカ繊維ウエブを作製した。
実施例1〜実施例9、及び比較例7について、無機系接着剤(シリカゾル希薄溶液)に含まれる溶媒の乾燥除去のために、シリカゾル希薄溶液含有シリカ繊維ウエブを110℃の雰囲気中に30分保持した(接着用第一熱処理工程)。一方、比較例1〜6については、接着用第一熱処理工程を実施しなかった。
続いて、実施例2、実施例3、実施例5、実施例6、比較例4、比較例5、比較例7について、前記工程で得られたシリカゾル希薄溶液含有シリカ繊維ウエブを、表1の工程(5)欄に記載の熱処理温度(200℃又は500℃)で接着用熱処理すること(接着用第二熱処理工程)により、シリカ繊維不織布を作製した。
一方、実施例1、実施例4、実施例7〜9、比較例1〜3、比較例6については、接着用第二熱処理工程を実施しなかった。
前記(1)で作製した16種類のシリカ繊維不織布(実施例1〜実施例9、比較例1〜7)について、10cm×10cmのサイズに切断し、各種測定を実施した結果を表1に示す。なお、いずれのシリカ繊維不織布においても、それを構成するナノファイバーの平均繊維径は0.8μmであった。
なお、不織布の厚みは、加重100g/cm2となるように設定したマイクロメーター法で測定した値、見掛密度は目付(1m2の大きさに換算した重量)を厚みで除した値をそれぞれ意味する。
また、切断荷重測定の条件を以下に示す。
製品名:小型引張試験機
型式:TSM−01−cre サーチ株式会社製
試験サイズ:5mm×40mm
チャック間隔:20mm
引張速度:20mm/min
初荷重:50mg/1d
空隙率は、下記式:
[空隙率(%)]=[1−(目付/厚み/比重)]×100
(目付の単位=g/m2、厚みの単位=μm、シリカの比重=2g/cm3)
により算出した。
比較例8
前記比較例1で得られたゲル状シリカ繊維ウエブを、以下の評価試験で使用する比較用の培養担体(以下、培養担体aと称する)とした。培養担体を構成するナノファイバーの平均繊維径は0.8μmであった。
前記比較例3で得られたシリカ繊維ウエブを、以下の評価試験で使用する比較用の培養担体(以下、培養担体bと称する)とした。培養担体を構成するナノファイバーの平均繊維径は0.8μmであった。
金属化合物としてテトラエトキシシラン、溶媒としてエタノール、加水分解のための水、及び触媒として硝酸を、1:7.2:7:0.0039のモル比で混合し、温度25℃、攪拌条件300rpmで15時間反応させた後、酸化ケイ素の固形分濃度が0.5%となるようエタノールで希釈し、シリカゾル希薄溶液(接着用無機系ゾル溶液)とした。
前記比較例3で得たシリカ繊維ウエブを前記シリカゾル希薄溶液中に浸漬した後、吸引により余剰のゾル溶液を除去し、シリカゾル希薄溶液含有シリカ繊維ウエブを調製した。
シリカゾル希薄溶液に含まれる溶媒の乾燥除去のために、シリカゾル希薄溶液含有シリカ繊維ウエブを110℃の雰囲気中に30分保持した(接着用第一熱処理工程)。
次いで、このシリカゾル希薄溶液含有シリカ繊維ウエブを温度500℃で接着用第二熱処理し、シリカ繊維不織布(空隙率:93%、引張破断強度:0.572MPa、水酸基量:35μmol/g)を製造した。このシリカ繊維不織布を培養担体(培養担体A)とした。培養担体を構成するナノファイバーの平均繊維径は0.8μmであった。
PVA(重合度1000、完全ケン化型)を15wt%の濃度に調整したものを、紡糸液として使用した。
紡糸装置としては、特開2005−194675号公報の図1に記載の装置を使用した。先に調製した紡糸液を、内径が0.4mmのステンレス製ノズルに、ポンプにより0.5g/時間で供給し、ノズルから紡糸液を紡糸空間(温度26℃、相対湿度50%)へ吐出するとともに、ノズルに電圧(24kV)を印加し、捕集体であるステンレス製無孔ロール(ノズルとの距離:10cm)をアースして、紡糸液に電界を作用させることによって細径化し、PVA繊維を形成し、回転する無孔ロール上に集積させ、PVA繊維ウエブを形成した。
このPVA繊維ウエブに150℃、30分間の集積後熱処理を行なうことにより、不溶化処理を実施した。得られたPVA−静電紡糸不織布(空隙率:83%)を培養担体(培養担体c)とした。培養担体を構成するナノファイバーの平均繊維径は0.2μmであった。
(1)チャイニーズハムスター卵巣細胞由来CHO−K1を用いた評価
CHO−K1細胞(ATCC:CCL-61、参考文献:Puch TT,et al., Genetics of somatic mammalian cells III. Long-term cultivation of euploid cells from human and animal subjects., J.Exp.Med.108:945-956,4958.PudMed:13598821)の培養は、DMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium)に、10%FBS、及び抗生物質(60μg/mLペニシリン及び100μg/mLストレプトマイシン)を添加した培地を使用し、37℃、5%CO2条件下にて実施した。
培養環境としては、24ウェルプレートの各ウェル内に、評価用の培養担体(1cm×1cm)を載置し、CHO−K1細胞(5×105cells/mL)1mLを播種し、1日毎に培地交換を行った。
(担体上の細胞数/播種細胞数)×100
により算出した細胞接着率で評価した。
細胞接着能について培養担体Aと培養担体a〜cを比較すると、図9に示すように、培養担体Aは細胞と担体との接着率が一番高く、繊維上に細胞が良好に接着していた。前記の培養担体cの細胞形態は、担体と細胞の接着に関わる相互作用が弱いことが原因の一つである。
図10に示すように、2週間の培養において、本発明の培養担体Aは、培養担体a〜cよりも細胞増殖能が著しく向上していた。培養担体a〜bは、培養開始から数日経過すると、培養液中にて繊維が解れ、担体の膨張が見られたため、観察しにくく、また、操作性の悪いものであった。また、培養担体cは、構造が緻密すぎて、観察しにくく、また、操作性の悪いものであった。
本発明の細胞培養担体における繊維密度および厚みの制御がこれらの細胞増殖能の向上をもたらしていた。
HepG2細胞(ATCC:HB-0865、参考文献:Knowles BB, et al., Human hepatocellular carcinoma cell lines secrete the major plasma proteins and hepatitis B surface antigen., Science 209:497-499,1980.PubMed:6248960)の培養は、Williams’s Medium E(購入会社名:シグマ社)に、10%ウシ胎児血清(FBS)、抗生物質(60μg/mLペニシリン及び100μg/mLストレプトマイシン)、及び1mmol/L NH4Clを添加した培地を使用し、37℃、5%CO2条件下にて実施した。
培養環境としては、24ウェルプレートの各ウェル内に、評価用の培養担体(1cm×1cm)を載置し、HepG2細胞(5×105cells/mL)1mLを播種し、1日毎に培地交換を行った。
アンモニア除去能を比較すると、図12に示すように、2週間の培養期間中、培養担体a〜cは細胞の高機能化が見られず、逆にアンモニアを分泌する方向にあった。しかし、本発明の培養担体は、細胞機能が向上し、肝細胞本来の機能の一つである解毒能(アンモニア除去能)が向上していた。
HepG2細胞は、単層培養(ディッシュ上での2次元培養)では、アンモニアを分泌するが、3次元にして立体的に培養すると、アンモニアを吸収・代謝する機能が生まれてくるという特徴を持つ。よって、比較用の細胞培養担体では細胞の3次元化による効果は見られないが、本発明の培養担体Aは3次元的に培養され、より生体内での肝細胞の状態に近い状態で培養されている。
培養担体Aで培養したHepG2細胞のアルブミン濃度変化をみても、図13に示すように、培養期間中にアルブミン濃度が上昇しているため、培養担体Aで培養したHepG2細胞は正常に増殖している。
上記(1)及び(2)の結果に基づく総合評価を表2に示す。
表2における細胞増殖能については、比較例10(PVA)を基準として評価した。細胞接着性については、概ね、約30%以下を「×」、約30%〜50%を「△」、約50%以上を「○」とした。
金属化合物としてテトラエトキシシラン、溶媒としてエタノール、加水分解のための水、及び触媒として1規定の塩酸を、1:5:2:0.003のモル比で混合し、温度78℃で10時間の還流操作を行い、次いで、溶媒をロータリーエバポレーターにより除去して濃縮した後、温度60℃に加熱して、粘度が2ポイズのゾル溶液を形成した。得られたゾル溶液を紡糸液(紡糸用無機系ゾル溶液)として用い、中和紡糸法により、つまり、静電紡糸法により紡糸するとともに、反対極性のイオンを照射して集積させ、ゲル状繊維ウエブ(無機系繊維集合体)を形成した。
紡糸ノズル:内径0.4mmの金属製注射針(先端カット)
紡糸ノズルと対向電極との距離:200mm
対向電極及びイオン発生電極(両電極を兼ねる):ステンレス板(誘起電極)上に厚さ1mmのアルミナ膜(誘電体基板)を溶射し、その上に直径30μmのタングステンワイヤ(放電電極)を10mmの等間隔で張った沿面放電素子(タングステンワイヤ面を紡糸ノズルと対向させると共に接地し、ステンレス板とタングステンワイヤ間に交流高電圧電源により50Hzの交流高電圧を印加)
第1高電圧電源:−16kV
第2高電圧電源:±5kV(交流沿面のピーク電圧:5kV、50Hz)
気流:水平方向25cm/sec、鉛直方向15cm/sec
紡糸室内の雰囲気:温度25℃、湿度40%RH以下
連続紡糸時間:30分以上
この接着用無機系ゾル溶液(固形分濃度:0.25%)中に、前記試料1〜3をそれぞれ浸漬した後、吸引により余剰のシリカゾル希薄溶液を除去し、110℃の雰囲気中に30分保持することにより、シリカゾル希薄溶液の溶媒を除去し、それぞれ接着試料1、接着試料2、接着試料3を形成した(接着用第一熱処理)。
以下の実施例11〜15について、培養担体としての各種機能評価を実施した。なお、いずれの繊維構造体においても、それを構成するナノファイバーの平均繊維径は0.8μmであった。
(実施例11) カルシウム含有繊維構造体1
(実施例12) マグネシウム含有繊維構造体2
(実施例13) アパタイト含有繊維構造体3
(実施例14) 焼成接着試料1
(実施例15) 接着試料2
培養14日目の各繊維構造体のALP活性を比較すると、実施例11〜13の繊維構造体は実施例14又は15よりもALP活性が高く、最も高い値を示した実施例12と最も低い値の実施例15とでは、1.5倍のALP活性の差があり、骨への分化誘導が起こりやすい細胞となっている。
そのため、本発明の好適態様である、機能性を有する繊維構造体は細胞機能を高めた細胞培養を行いたい場合に有効である。
(1)無機系繊維構造体の作製と水酸基量測定
前記比較例1で得られたゲル状シリカ繊維ウエブ(未焼成)を、1℃/min.の速度で温度120℃、200℃、250℃、300℃、500℃及び800℃まで昇温し、3時間保持して、それぞれの温度で熱処理した時の、繊維単位重量あたりの水酸基量を測定した。なお、いずれのシリカ繊維不織布、あるいは、焼成前のゲル状シリカ繊維ウエブにおいても、それを構成するナノファイバーの平均繊維径は0.8μmであった。
結果を図17に示す。なお、図17においては、無機系繊維構造体を細胞培養担体に用いる場合を考慮して、無機系繊維構造体を120℃で熱処理した後に、エタノール殺菌後又はオートクレーブ殺菌後の繊維単位重量あたりの水酸基量も掲載している。
また、エタノール殺菌後又はオートクレーブ殺菌後における繊維単位重量あたりの水酸基量は殺菌前と変わらないこともわかった。
前記比較例1で得られたゲル状シリカ繊維ウエブ(未焼成)を、1℃/min.の速度で温度100℃、300℃、又は500℃まで昇温し、その温度で3時間保持することにより、培養担体を調製した。
これらの各培養担体(更に対照として、焼成前のゲル状シリカ繊維ウエブ)を用いて、先述した培養条件に従って、ヒト肝癌由来細胞株HepG2の細胞培養を14日間実施した。
14日間培養した後に撮影したSEM写真を、図18(参考例1:未焼成)、図19(参考例2:100℃で焼成)、図20(参考例3:300℃で焼成)、図21(参考例4:500℃で焼成)に示す。
以上、本発明を特定の態様に沿って説明したが、当業者に自明の変形や改良は本発明の範囲に含まれる。
Claims (13)
- 静電紡糸法により紡糸された、平均繊維径3μm以下の無機系ナノファイバーからなる無機系繊維構造体であり、内部を含む全体が無機系接着剤で接着した、空隙率が90%以上の、培養担体として用いる無機系繊維構造体。
- 引張破断強度が0.2MPa以上である、請求項1に記載の無機系繊維構造体。
- 繊維単位重量あたりの水酸基量が50μmol/g以上である、請求項1又は2に記載の無機系繊維構造体。
- 静電紡糸法により紡糸された無機系繊維に対して、前記無機系繊維とは反対極性のイオンを照射し、集積させる工程を含んで製造された無機系繊維集合体を、内部を含む全体において、無機系接着剤で接着した、請求項1〜3のいずれか一項に記載の無機系繊維構造体。
- 無機系繊維間に被膜を形成していない、請求項1〜4のいずれか一項に記載の無機系繊維構造体。
- 請求項1〜5のいずれか一項に記載の無機系繊維構造体に金属イオン含有化合物を付与した、機能性を有する無機系繊維構造体。
- (i)無機成分を主体とする化合物を含む紡糸用無機系ゾル溶液から、静電紡糸法により無機系繊維を紡糸する工程、
(ii)前記無機系繊維とは反対極性のイオンを照射し、集積させ、無機系繊維集合体を形成する工程、
(iii)前記無機系繊維集合体の内部を含む全体に、無機成分を主体とする化合物を含む接着用無機系ゾル溶液を付与し、余剰の接着用無機系ゾル溶液を通気により除去し、内部を含む全体において、無機系接着剤で接着した無機系繊維構造体を形成する工程、
を含む、培養担体として用いる無機系繊維構造体の製造方法。 - (ii)無機系繊維集合体を形成する工程において、無機系繊維集合体を形成した後に熱処理する、請求項7に記載の無機系繊維構造体の製造方法。
- 熱処理温度が500℃以下である、請求項8に記載の無機系繊維構造体の製造方法。
- (iii)無機系繊維構造体を形成する工程において、余剰の接着用無機系ゾル溶液を通気により除去した後に熱処理する、請求項7〜9のいずれか一項に記載の無機系繊維構造体の製造方法。
- 熱処理温度が500℃以下である、請求項10に記載の無機系繊維構造体の製造方法。
- 前記紡糸用無機系ゾル溶液及び/又は接着用無機系ゾル溶液が金属イオン含有化合物を含有する、請求項7〜11のいずれか一項に記載の無機系繊維構造体の製造方法。
- (iii)無機系繊維構造体を形成する工程を実施した後に、金属イオン含有化合物含有溶液を前記無機系繊維構造体に付与する、請求項7〜12のいずれか一項に記載の無機系繊維構造体の製造方法。
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