JP5329381B2 - 腐食安定的クロマトグラフィーリガンド - Google Patents
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Description
本願は、2008年12月24日に出願された米国仮特許出願61/203,664号(これらの内容全体が、本明細書中に組み込まれる。)の優先権の利益を主張する。
本発明は、改善された腐食安定性を有するクロマトグラフィーリガンド(例えば、ブドウ球菌プロテインAなどの免疫グロブリン結合タンパク質を基礎とするリガンド)及びこのようなリガンドを含むクロマトグラフィーマトリックスに関する。
本明細書において使用される「SpA」又は「スタフィロコッカス・オーレウス(Staphylococcus aureus)のプロテインA」という用語は、細菌スタフィロコッカス・オーレウスから単離される42kDaのマルチドメインタンパク質を表す。SpAは、そのカルボキシ末端細胞壁結合領域(Xドメインと称される。)を介して、細菌の細胞壁へ結合されている。SpAは、アミノ末端領域に、E、D、A、B及びCと称される5つの免疫グロブリン結合ドメインを含む(Sjodhal,Eur J Biochem.Sep;78(2):471−90(1977);Uhlen et al.,J Biol Chem.Feb10;259(3):1695−702(1984))。これらのドメインの各々は、約58アミノ酸残基を含有し、65から90%のアミノ酸配列同一性を有する。SpAのZドメインは、SpAのBドメインの加工された類縁体であり、29位のグリシン残基の代わりにアラニンを含む(Nilsson et al.,Protein Engineering,Vol.,No.2,107−113(1987))。SpAのE、D、A、B及びCドメインの各々は、異なるIg結合部位を有する。1つの部位はFcγ(IgのIgGクラスの定常領域)に対するものであり、他の部位はある種のIg分子のFab部分(抗原認識に必要とされるIgの部分)に対するものである。ドメインの各々がFab結合部位を含有することが報告されている。SpAの非Ig結合部分はC末端に位置しており、X領域又はXドメインと称される。
本発明に包含されるSpAを基礎とするクロマトグラフィーリガンドは、本分野において公知のあらゆる適切な方法を用いて作製することができる。
本明細書中に記載されているように、適切なSpAリガンド分子の作製及び精製に続いて、分子のアルカリ安定性は、本分野において標準的な技術及び本明細書中に記載されている技術を用いてアッセイすることができる。例えば、本発明のSpA分子のアルカリ安定性は、例えば下記の実験の部に記載されているように、約0.5Mの濃度でのNaOHでの定型的処理を用いてアッセイすることが可能である。
幾つかの実施形態において、例えば、免疫グロブリンなどの生物分子の分離に適したクロマトグラフィーマトリックスを作製するために、本発明によって包含されるアルカリ安定的SpAリガンドは、支持体、例えば、固体支持体又は可溶性支持体に付着される。
支持体(例えば、本分野において周知のもの及び本明細書に記載されているものを含む固体支持体)へリガンドを付着させるために、あらゆる適切な技術を使用し得る。例えば、幾つかの実施形態において、例えば、リガンド中に存在するアミノ及び/又はカルボキシ基を用いた慣用の結合技術を介して、リガンドを支持体に付着させ得る。例えば、ビスエポキシド、エピクロロヒドリン、CNBr、N−ヒドロキシスクシンイミド(NHS)などが周知のカップリング試薬である。幾つかの実施形態において、支持体とリガンドの間にスペーサーが導入され、スペーサーはリガンドの利用可能性を向上させ、支持体へのリガンドの化学的結合を促進する。あるいは、リガンドは、物理的吸着又は二重特異的吸着などの非共有結合によって支持体に付着させ得る。
支持体への付着後におけるリガンドの増加したアルカリ安定性は、本分野において周知の技術及び本明細書中に記載されている技術によってアッセイすることができる。例えば、幾つかの実施形態において、本明細書中に記載されているような、樹脂に付着されたSpAドメイン(例えば、クロマトグラフィー樹脂に付着されたSpAのB及びZドメイン)の多量体のアルカリ安定性は、樹脂を0.5MNaOHで処理することによって確認することができる。増加した安定性とは、野生型SpA分子によって達成可能なものより、より長期間、初期のIgG結合能が保持されることを意味することを理解すべきである。例えば、本発明の場合には、0.5NNaOHでの15分の処理を各々含む100サイクル後に、SpAリガンド(例えば、複数のB又はZドメインを含むもの)の保持された能力のパーセントは、野生型SpAのものより少なくとも1.5倍超、2.0倍超、2.5倍超又は3倍超である。一実施形態において、経時的なIgG結合能の保持によってアッセイされる結合されたリガンドのアルカリ安定性は、以下のように測定される。当初のIgG濃度の50%のUV280nmになるように搭載されたIgGの容量を取得することによって、Qd50%と表される結合能が測定される。まず、カラム中に充填された当初の未使用樹脂のQd50%を測定する。次いで、0.8mL/分で、0.5NNaOHの15分の曝露の約10サイクルへ樹脂が曝露する。Qd50%を再度測定する。0.5NNaOHの合計約100サイクルに樹脂が曝露されるまで、この過程を反復する。最後に一回、Qd50%を測定し、異なるリガンドから作製された樹脂から得られた結果を野生型SpAと比較する。
幾つかの実施形態において、本発明は、本明細書中に記載されているアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンドを用いて、標的分子を混合物から精製する方法を提供する。標的分子は、本明細書中に提供されるアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンドによって認識されるあらゆる分子であり得、リガンドは固体支持体へ連結される。標的分子の例には、免疫グロブリンが含まれる。免疫グロブリンは、ポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体又はこれらの機能的断片であり得る。機能的断片には、固体支持体に結合されたタンパク質リガンドへ特異的に結合する能力を同時に保持しながら、その抗原へ特異的になお結合する可変領域を含む免疫グロブリンのあらゆる断片が含まれる。
典型的な実験では、プロテインAの「Bドメイン」をコードする合成遺伝子をDNA2.0(Menlo Park,CA)から入手する。遺伝子の5’末端は、開始メチオニンに対するコドンを含み、遺伝子の3’末端に6つのヒスチジンコドンを含む。DNA2.0由来のベクターpJ56;8620中に遺伝子を与える。親ベクターpJ56は、アンピシリン、カナマイシン、クロラムフェニコール及びゲンタマイシンに対する耐性を付与する。発現ベクター中へ遺伝子をその後クローニングするための適切な制限酵素部位を、遺伝子の5’及び3’末端の両方に導入する。ベクターのプラスミド地図が、図5に示されている。
実施例1に記載されている、アフィニティー精製された野生型及び変異体のSpAヒスチジンタグ付加された構築物を、1Nの最終濃度になるように、MilliQ水又はNaOHで希釈し、室温で6時間温置する。各試料50μLをPBS中に中和し、緩衝液交換するために、Biorad Micro Biospin6ゲルろ過カラムを使用する。PierceMicroBCAアッセイを用いて、全タンパク質の定量を達成し、ELISAプレート上へ搭載するために、10μg/mLになるように、試料をPBS中に希釈する。処理されたPrAの約200μL(2μg)を、37℃で2から24時間、ELISAプレートのウェルへ吸着させる。室温で約2時間、PBS中のPierce Superbock Blocking Buffer(Superblock−PBS)中でプレートのブロッキングを行う。Superblock−PBS(10μg)中に、0.05mg/mLになるように希釈されたSigmaのヒトγグロブリン約200μLをプレートの各ウェルへ添加し、室温で約1時間、結合を進行させる。約0.05%Tween20を含有するPBS(PBS−T)で3回洗浄した後、ヒトIgGに対して産生されたニワトリIgY−HRP連結物の1:10,000希釈物200μLとともに、室温で約1時間、プレートを温置する。PBS−Tでの最後の3回の洗浄後、室温で30分間、Pierce1−Step Slow TMB ELISA100μLを用いてプレートを展開する。1NHCl100μLの添加により、反応を停止させ、450nmで読み取られた吸光度として、一次IgG結合を定量する。全ての試料は3つ組みでアッセイされ、データは、腐食性処理前と処理後における一次IgG結合の変化として分析する。
様々なSpA変形物の作製並びに本分野において公知の及び実施例2に記載されている1つ又はそれ以上のアッセイを用いた、腐食安定的であるSpA変形物の同定に続いて、SpA変形物を支持体(例えば、固体支持体)へ付着させる。典型的な実験では、以前に記載された方法(Porath and Fornstedt,J.Chromatography,51:479(1979))に従い、エピクロロヒドリンを用いて、アガロースビーズ(Sepharose4B)(GE Healthcare,PiscatawayNJ)を架橋する。以下の方法に従って、正に帯電した会合性の基(例えば、陽イオン)とアガロースビーズを反応させる。75重量%グリシジルトリメチルアンモニウムクロリド(GTMAC)40g、Milli−Q(R)水10mL(MilliporeCorp.,Billerica,MA)及び50重量%水酸化ナトリウム1.67gに、ビーズ50mLを添加する。室温で一晩、回転式振盪機上で反応を激しく(>100rpm)振盪させる。次いで、ビーズをろ過し、Milli−Q(R)水(MilliporeCorp.,Billerica,MA)の100mL容量で3回洗浄する。
典型的な実験において、支持体への付着後、IgG結合能力に関して、本発明の様々なSpA構築物をアッセイする。1つの典型的な実験において、市販のポリクローナルIgGを使用して樹脂/媒体動的能力を検査するための標準的な方法が使用される。要約すれば、本発明のSpAリガンドが結合された樹脂を、PBS、pH7.4中のOmnifitカラム(6.6mm×70mm)中に充填し、流速を300cm/時間に設定する。10カラム容積(CV)に対するPBSで、充填されたカラムを平衡化する。UV280nmが最初のIgG濃度の50%超に達するまで、ポリクローナルIgG(Sigma−Aldrich、PBS中の2mg/mL、pH7.4)をカラム上に搭載する。平衡化緩衝液での洗浄後、0.1Mクエン酸、p3.0でIgGを溶出する。各実行後、6M塩酸グアニジニンを用いて、媒体を消毒する。UV280nmが最初のIgG濃度の50%に達した時点で搭載されたIgGの量に基づいて、Qd50%を計算する。
Claims (17)
- ブドウ球菌プロテインA(SpA)の3つ若しくはそれ以上のBドメイン若しくは3つ若しくはそれ以上のZドメインを含むアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンドであって、
3つ若しくはそれ以上のBドメイン又は3つ若しくはそれ以上のZドメインが樹脂上の2以上の部位において、多点付着を介して、クロマトグラフィー樹脂に付着されており;
Bドメインは、配列番号10のアミノ酸配列を含み、Zドメインは、配列番号12のアミノ酸配列を含み;
0.5MNaOH中での5時間の温置後に、その結合能の少なくとも95%を保持する、前記アルカリ安定的クロマトグラフィーリガンド。 - リガンドがSpAの4つ若しくはそれ以上のBドメイン又は4つ若しくはそれ以上のZドメインを含む、請求項1に記載のアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンド。
- リガンドがSpAの5つ若しくはそれ以上のBドメイン又は5つ若しくはそれ以上のZドメインを含む、請求項1に記載のアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンド。
- リガンドがSpAの6つ若しくはそれ以上のBドメイン又は6つ若しくはそれ以上のZドメインを含む、請求項1に記載のアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンド。
- リガンドがSpAの7つ若しくはそれ以上のBドメイン又は7つ若しくはそれ以上のZドメインを含む、請求項1に記載のアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンド。
- 0.5MNaOH中での10時間の温置後に、その結合能の少なくとも95%を保持する、請求項1〜5のいずれか1項に記載の前記リガンド。
- 0.5MNaOH中での15時間の温置後に、その結合能の少なくとも95%を保持する、請求項1〜5のいずれか1項に記載の前記リガンド。
- 0.5MNaOH中での20時間の温置後に、その結合能の少なくとも95%を保持する、請求項1〜5のいずれか1項に記載の前記リガンド。
- 0.5MNaOH中での少なくとも5時間の温置後に、リガンドが、wtSpAと比べて、少なくとも1.5倍のIgGを結合することができる、請求項1から5の何れか一項に記載のリガンド。
- 0.5MNaOH中での少なくとも5時間の温置後に、リガンドが、wtSpAと比べて、少なくとも2倍のIgGを結合することができる、請求項1から5の何れか一項に記載のリガンド。
- 0.5MNaOH中での少なくとも5時間の温置後に、リガンドが、wtSpAと比べて、少なくとも3倍のIgGを結合することができる、請求項1から5の何れか一項に記載のリガンド。
- 0.5MNaOH中での少なくとも5時間の温置後に、リガンドが、wtSpAと比べて、3倍以上のIgGを結合することができる、請求項1から5の何れか一項に記載のリガンド。
- 固体支持体が、制御化多孔性ガラス、シリカ、ポリビニルアルコール、酸化ジルコニウム、アガロース、セルロース、チタニア、ポリメタクリラート、ポリアクリラート、ポリアクリルアミド、ポリスチレンおよびこれらの組み合わせより成る群から選択される、請求項1から5の何れか一項に記載のアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンド。
- ブドウ球菌プロテインA(SpA)の3つのBドメイン(B3)、4つのBドメイン(B4)、5つのBドメイン(B5)、6つのBドメイン(B6)または7つのBドメイン(B7)を含むアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンドであって、
前記ドメインは、多点付着を介して、固体支持体に付着されており、
4つのBドメインを含むリガンドは、3つのBドメインを含むリガンドより、アルカリ安定的であり、
5つのBドメインを含むリガンドは、4つのBドメインを含むリガンドより、アルカリ安定的であり、
6つのBドメインを含むリガンドは、5つのBドメインを含むリガンドより、アルカリ安定的であり、
7つのBドメインを含むリガンドは、6つのBドメインを含むリガンドより、アルカリ安定的であり、0.5MNaOHにおいて少なくとも5時間の温置後、リガンドの腐食安定性は、B3<B4<B5<B6<B7の順序である、前記アルカリ安定的クロマトグラフィーリガンド。 - ブドウ球菌プロテインA(SpA)の3つのZドメイン(Z3)、4つのZドメイン(Z4)、5つのZドメイン(Z5)、6つのZドメイン(Z6)または7つのZドメイン(Z7)を含むアルカリ安定的クロマトグラフィーリガンドであって、
前記ドメインは、多点付着を介して、固体支持体に付着されており、
4つのZドメインを含むリガンドは、3つのZドメインを含むリガンドより、アルカリ安定的であり、
5つのZドメインを含むリガンドは、4つのZドメインを含むリガンドより、アルカリ安定的であり、
6つのZドメインを含むリガンドは、5つのZドメインを含むリガンドより、アルカリ安定的であり、
7つのZドメインを含むリガンドは、6つのZドメインを含むリガンドより、アルカリ安定的であり、
0.5MNaOHにおいて少なくとも5時間の温置後、リガンドの腐食安定性は、Z3<Z4<Z5<Z6<Z7の順序である、前記アルカリ安定的クロマトグラフィーリガンド。 - 請求項1〜15の何れか一項に記載のリガンドを含むクロマトグラフィーマトリックス。
- (a)1つ又はそれ以上の免疫グロブリンを含む試料を準備する工程;
(b)1つ又はそれ以上の免疫グロブリンが、請求項16に記載のマトリックスへ結合するような条件下で、マトリックスと前記試料を接触させる工程;及び
(c)適切な条件下で溶出することによって、1つ又はそれ以上の結合された免疫グロブリンを回収する工程;
を含む、1つ又はそれ以上の免疫グロブリンを試料からアフィニティー精製する方法。
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