JP4927536B2 - ヒアルロン酸−メトトレキサート結合体 - Google Patents

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Description

本発明はヒアルロン酸−メトトレキサート結合体、及びその医薬用途に関する。
変形性関節症（以下、ＯＡとも称す）は加齢を基盤として発症する、いわゆる退行性疾患の一種である。高齢化社会の現在、患者数は増加の一途を辿っているが、未だ十分な診断法、治療法は確立されていない。ＯＡで最初に起こる病態変化は、加齢によるメカニカルストレスが引き金となった関節軟骨の変性と磨耗であると考えられている。この変化は極めてゆるやかな速度で進行し徐々に痛みへと進展する。
現在のＯＡ薬物治療では、全身療法として、１）解熱鎮痛薬（アセトアミノフェン）、２）非ステロイド性抗炎症薬(以下、ＮＳＡＩＤｓとも称す)、局所療法（関節内注入）として、３）ヒアルロン酸（以下、ＨＡとも称す）製剤、および４）ステロイド製剤が使用されている。従来、ＮＳＡＩＤｓをはじめとする全身的な薬物療法を行っても関節局所の疼痛や腫脹が軽快しない場合、抗炎症作用が最も優れているステロイド製剤の関節内注入が行われてきた。しかし、ステロイド製剤は、関節注入症候群（ステロイド関節症）や全身性の副作用など安全性の面で問題がある。そのため、ステロイド製剤に代わる安全な関節内注入剤として、ＨＡ製剤の有用性が高まりつつある。
ＨＡは、Ｎ−アセチルグルコサミンとグルクロン酸との繰り返し単位より構成される生体内多糖である。ＨＡは、関節液を構成する主成分として関節液の粘弾性、荷重吸収作用および潤滑作用の保持に働いており、また軟骨マトリックスにおいては、軟骨プロテオグリカンと結合してアグリカンと呼ばれる重合体を形成し、水分保持能と粘弾性の維持に中心的な役割を担っている。
分子量約６０万ダルトン以上のＨＡおよびその架橋物を膝関節内に注入するとＯＡの疼痛が除去されることから、ＨＡ製剤はＯＡの治療法の一つとして広く用いられている。また、正常関節液中のＨＡの分子量に近い高分子量タイプのＨＡ製剤（商品名 スベニール（登録商標）、製造販売 中外製薬株式会社）は、日本において関節リウマチ（以下、ＲＡとも称す）に伴う膝の疼痛除去にも適用が認められている。なお、ＨＡの分子量は薬効の強さと相関があり、高分子量タイプのＨＡの方が、低分子量タイプのＨＡよりも持続性に優れ、より強い薬効を示すと言われている。
一般に、ＨＡ製剤は、ＯＡ（または関節リュウマチ（以下、ＲＡとも称す））の病態で損なわれた関節液の粘性と弾性を正常に戻すことにより疼痛を除去していると考えられている。しかし、外部から加えたＨＡ製剤は関節液中から数日以内には消失してしまうにもかかわらず、効果は長期間持続するため、上記の関節液の粘弾性改善とは異なる機序で疼痛除去に働いている可能性も示唆されている。そのような機序の１つとして、後述のＯＡ滑膜炎に対する抑制効果が挙げられる。
さて、ＯＡの痛みや炎症の発症メカニズムについては、未だ不明な点が多いが、最近では軟骨の変性によって二次的に引き起こされる滑膜炎との関連性が注目されている。ＯＡ滑膜炎は関節水症や熱感など疼痛、炎症症状の主たる原因となるのみならず、タンパク分解酵素、サイトカインやラジカルの産生を介して関節破壊をも促進するため、ＯＡの病態を進展させる主要な増悪因子と考えられている。また、ＯＡ滑膜炎は、ＲＡで見られるような著しい増殖性変化はないものの、滑膜細胞の増殖、血管新生と充血、滑膜下の浮腫および線維化など、ＲＡ滑膜炎に共通した面も多く認められている。このように、ＯＡの疼痛や炎症をより効率よく除去し、病態の進展を防ぐという見地から、ＯＡ滑膜炎の制御は重要である。
滑膜に対するＨＡの作用は未だ十分には解明されていないが、アイソトープを使った実験から、ＨＡは関節腔よりも滑膜に集積し、より長期に存在することが知られている。また、滑膜組織を構成する滑膜細胞の表層には、ＨＡを認識するレセプター〔ＣＤ４４やＲＨＡＭＭ（ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｆｏｒ ＨＡ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｍｏｔｉｌｉｔｙ）〕が存在し、滑膜細胞は表層のＣＤ４４を介して、分子量２００万以上のＨＡをも細胞内に取り込む機構が備わっていることも報告されている。これらの知見から、ＨＡの疼痛除去作用の少なくとも一部は、滑膜への作用を介して発現している可能性が示唆されているが、しかしながらＨＡ製剤は、ＯＡ滑膜炎で引き起こされる炎症症状そのものを抑制するまでの作用はなく、炎症症状の強いＯＡやＲＡに対する効果は決して十分ではない。
一方、滑膜炎を制御する薬物としては、ＲＡの治療で用いられる修飾性抗リウマチ薬（以下、ＤＭＡＲＤとも称す）と呼ばれる薬物群が良く知られている。その中でも特にメトトレキサート（以下、ＭＴＸとも称す）は、効力が優れていること、作用発現までの時間が比較的短いこと、などの長所を有する薬剤である。しかし、ＭＴＸは全身投与でのみ使用を認められている（現在、日本において、ＲＡ治療薬として医薬品の承認を受けているものはカプセル剤のみである。海外では、錠剤と注射剤が承認を受けている。）ため、治療目的部位である関節以外の部位で、その作用メカニズムに起因する重篤な副作用（肝障害、造血障害、肺障害、消化管障害など）を起こすことが知られている。その結果、使用に当たっては十分な副作用のモニタリングと副作用発症時の対策が不可欠である。こうした副作用の懸念の大きさから、ＭＴＸをはじめとする滑膜炎抑制薬は、ＲＡに比べ症状の軽いＯＡなどの他の関節疾患への適応は認められていない。言い換えれば、ＭＴＸの全身性の副作用を軽減する手段、もしくは薬効発現に必要な部位でのみＭＴＸの作用を発現できる手段を見出せれば、より安全なＲＡ治療法を提供するのみならず、広範囲の関節疾患にＭＴＸを用いることが可能となる。
ＭＴＸの副作用を軽減し、望ましい薬効のみを引き出す手段として、これまでにもＭＴＸの作用を関節内や滑膜にのみ限局させるための方法がいくつか試みられている。例えば、ＭＴＸを単独で局所投与（関節内投与）する方法が報告されているが、関節内からＭＴＸが速やかに消失してしまうため十分な薬効を発揮できない。また、リポゾーム化したＭＴＸを用いることによって、マクロファージによる貪食能を利用して関節内貯留性を向上させる方法も報告されているが、未だに臨床での有用性は確かめられていない。このように、関節疾患治療薬としてのＭＴＸの副作用を軽減し、期待される薬効のみを引き出すためには、なお技術的な改良が必要である。
上述のように、滑膜はＨＡが集積しやすい組織である。また、滑膜細胞はＣＤ４４などのＨＡレセプターを介してＨＡを細胞内に取り込む機構を備えている。そのため、ＨＡは薬物を滑膜に集積させるためのキャリアになりうる可能性が考えられる。これまでに、薬物の生体内キャリアとして、ＨＡを利用する技術はいくつか報告されている。しかし、ＭＴＸを代表例とする関節疾患治療薬、特に滑膜炎制御に適した薬物のドラッグデリバリーシステム（以下、ＤＤＳとも称す）創出に関する技術への応用例はほとんど知られていない。
これまでの報告例としては、例えば、ＨＡを含む多糖体にペプチド鎖を介して薬物を結合した多糖体−薬物結合体が知られている（特許文献１：特開平５−３９３０６号、特許文献２：国際公開ＷＯ９４／１９３７６号など）。これらはいずれも癌組織移行性をうたった抗癌剤のＤＤＳ技術に関するものである。
特開平５−３９３０６号では、抗癌剤としての目的でＭＴＸが用いられている。しかし、癌組織への移行性と長期体内残留性の無さとを特徴としていることから、抗癌作用を高めるためにＭＴＸの結合率は高く（実施例では６．４〜１９％）、かつ、ＨＡの分子量は低い（実施例では１０万ダルトン）。また、ＨＡのヒドロキシ基にイソウレア結合によりペプチド鎖が結合しているので、水溶液中での安定性は低い。
一方、ＨＡと薬物とを結合させた結合体（コンジュゲート）を関節疾患治療薬に利用した報告例もある。例えば、国際公開ＷＯ９９／５９６０３号（特許文献３）では、ブチレンアミン基（−Ｃ4Ｈ8ＮＨ−）およびオクチレンアミン基（−Ｃ8Ｈ16ＮＨ−）などのスペーサーを介して結合したＨＡと薬物の結合体が開示されている。当該特許文献において、当該結合体は、細胞外での薬効を想定して、薬物が結合したままの状態で薬効を発現するものとして記載されている。実際、当該結合体ではスペーサーを介しての薬物とＨＡとの結合が比較的強固なため、ＭＴＸのように結合体から遊離しなければ薬効を発揮できない薬物への適応は困難である。
それに加え、当該特許文献はマトリックスメタロプロテイナーゼ阻害剤（以下、ＭＭＰＩとも称す）を薬物として用いた結合体に向けられており、開示されている実施例もＭＭＰＩの結合体に関するもののみである。薬物としてＭＴＸを用いた結合体は何ら具体的に開示されておらず、その医薬としての有用性について何らの記載も含まれていない。
国際公開ＷＯ０２／４４２１８号（特許文献４）では、１３−アミノ−４，７，１０−トリオキサトリデカニル基に更に特殊な基（ノルボルネン）を結合させたスペーサーを用い、ノルボルネンとＨＡのヒドロキシ基とのカルバメート結合の形成により生成したＨＡ−薬物結合体が開示されている。しかし、当該結合体も特許文献２と同様に細胞外での薬効を想定したものと考えられ、薬物が結合したままの状態で薬効を発現する。従って、結合体から遊離しなければ薬効を発揮できない薬物、例えばＭＴＸへの適応は困難である。さらに、特許文献３は、ＭＭＰＩを薬物として用いた結合体に向けられており、薬物としてＭＴＸを用いた結合体については何ら示唆されていない。
以上述べた通り、上記の文献にはＭＴＸを用いたＨＡ−ＭＴＸ結合体について何ら記載されておらず、ＨＡ−ＭＴＸ結合体を関節疾患治療薬として使用することに関し何ら記載も示唆もされていない。
また、先行技術として知られているＨＡ−薬物結合体の合成方法では、合成過程でＨＡの分子量が大きく低下してしまい、ＨＡの薬効が損なわれてしまうことを本発明者らは確認している。従来のＨＡ−薬物結合体の合成方法では一般的な有機合成反応条件や後処理条件が用いられているが、高分子量のＨＡと薬物との結合体を調製するには、更なる改良が必要である。
このように、医薬品として用いるＨＡ−薬物結合体、特に関節疾患治療に適した高分子量のＨＡ−薬物結合体、それを用いた製剤、および当該結合体の合成方法はこれまで知られていなかった。
特開平５−３９３０６号 国際公開ＷＯ９４／１９３７６号パンフレット 国際公開ＷＯ９９／５９６０３号パンフレット 国際公開ＷＯ０２／４４２１８号パンフレット
発明が解決しようとする課題は、関節疾患治療薬として有用な、ヒアルロン酸−メトトレキサート結合体を提供することである。
本発明者らは、ヒアルロン酸のカルボキシル基に、ペプチド鎖を含有するリンカーを介してメトトレキサートが結合した、ヒアルロン酸−メトトレキサート結合体が、関節疾患治療薬として卓効を有することを見出し、本発明を完成した。
すなわち本発明の一つの側面により、ヒアルロン酸のカルボキシル基に、１〜８個のアミノ酸からなるペプチド鎖を含有するリンカーを介してメトトレキサートが結合した、ヒアルロン酸−メトトレキサート結合体が提供される。本発明の１つの実施態様において、当該リンカーは、１〜８個のアミノ酸からなるペプチド鎖、および１〜５個の酸素原子が挿入されていてもよくおよび／またはカルボキシル基またはＣ1-6アルコキシカルボニル基で置換されていてもよいＣ2-20アルキレンジアミン鎖を含むものである。
本発明の別の側面により、リンカーに結合したメトトレキサートが、式（Ｉ）、（ＩＩ）、（ＩＩＩ）または（ＩＶ）：
［式中、Ｒ1およびＲ2はそれぞれ独立に、ヒドロキシ基、アミノ基、Ｃ1-6アルコキシ基、Ｃ1-6アルキルアミノ基、またはジ−Ｃ1-6アルキルアミノ基であり；
Ｌ0は、リンカーの結合位置である。］
で表される、上記のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体もまた提供される。
また、本発明の別の側面により、ペプチド鎖を含有するリンカーおよび当該リンカーに結合したメトトレキサートが、式（Ｉ’）または（ＩＩ’）：
［式中、Ｒ1およびＲ2はそれぞれ独立に、ヒドロキシ基、アミノ基、Ｃ1-6アルコキシ基、Ｃ1-6アルキルアミノ基、またはジ−Ｃ1-6アルキルアミノ基であり；
Ｌは、式（Ｘ）
（式中、Ｑ1は結合する−ＮＨ−と一緒になって１〜８個のアミノ酸からなるペプチド鎖を形成し、当該ペプチド鎖に含まれるアミノ酸の各残基は、独立に、Ｃ1-6アルキル基、Ｃ1-6アルキルカルボニル基、Ｃ1-6アルコキシカルボニル基、ホルミル基、Ｃ1-6アルキルスルホニル基、およびＣ6-10アリールスルホニル基からなる群から選択される、１個以上の基により置換または保護されていてもよく、当該ペプチド鎖に含まれる各アミド結合は、独立に１個以上のＣ1-6アルキル基および／またはＣ1-6アルキルカルボニル基で窒素原子上を置換されていてもよく、当該残基に含まれる各カルボキシル基は、独立に１または２個のＣ1-6アルキル基で置換されていてもよいアミド基に変換されていてもよく；
Ｒ11およびＲ12はそれぞれ独立に水素原子またはＣ1-6アルキル基であり；
Ｑ2は１〜５個の酸素原子が挿入されていてもよくおよび／またはカルボキシル基またはＣ1-6アルコキシカルボニル基で置換されていてもよいＣ2-20アルキレンであり；および
［ＨＡ］はヒアルロン酸との結合位置を表し、当該リンカーは当該ヒアルロン酸に含まれるカルボキシル基とアミド結合を形成する。）で表されるリンカーである。］
で表される、上記のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体が提供される。
さらに本発明のその他の側面によれば、上記ヒアルロン酸−メトトレキサート結合体を有効成分として含有する医薬組成物、および関節疾患治療薬もまた提供される。
さらに本発明の別の側面によれば、上記のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体の製造に利用することができる、式（Ｖａ）または（Ｖｂ）：
［式中、Ｒ1およびＲ2はそれぞれ独立に、ヒドロキシ基、アミノ基、Ｃ1-6アルコキシ基、Ｃ1-6アルキルアミノ基、またはジ−Ｃ1-6アルキルアミノ基であり；
Ｌ1は、式（Ｘ’）
（式中、Ｑ1は結合する−ＮＨ−と一緒になって１〜８個のアミノ酸からなるペプチド鎖を形成し、当該ペプチド鎖に含まれるアミノ酸の各残基は、独立に、Ｃ1-6アルキル基、Ｃ1-6アルキルカルボニル基、Ｃ1-6アルコキシカルボニル基、ホルミル基、Ｃ1-6アルキルスルホニル基、およびＣ6-10アリールスルホニル基からなる群から選択される、１個以上の基により置換または保護されていてもよく、当該ペプチド鎖に含まれる各アミド結合は、独立に１個以上のＣ1-6アルキル基および／またはＣ1-6アルキルカルボニル基で窒素原子上を置換されていてもよく、当該残基に含まれる各カルボキシル基は、独立に１または２個のＣ1-6アルキルで置換されていてもよいアミド基に変換されていてもよく；
Ｒ11およびＲ12はそれぞれ独立に水素原子またはＣ1-6アルキルであり；
Ｑ2は１〜５個の酸素原子が挿入されていてもよくおよび／またはカルボキシル基またはＣ1-6アルコキシカルボニル基で置換されていてもよいＣ2-20アルキレンである。）である。］
の化合物が提供される。
さらに本発明の別の側面によれば、上記の式（Ｖａ）または（Ｖｂ）の化合物をヒアルロン酸と反応させ、当該ヒアルロン酸のカルボキシル基をＮ−置換アミド基に変換する工程を含む、上記のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体の製造方法もまた提供される。
以下本発明の詳細について説明する。
本発明のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体（ＨＡ−ＭＴＸ結合体）は新規化合物である。本発明では、ヒアルロン酸（ＨＡ）とメトトレキサート（ＭＴＸ）とを結合させる手段として、ＨＡのカルボキシル基に、ペプチド鎖を含有するリンカーを介してＭＴＸが結合した構造を採用したことにより、ＨＡの疼痛除去作用を保持し、かつ、ＭＴＸの滑膜炎軽減作用を併せ持つ。即ち、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、滑膜に集積した後、滑膜細胞内に取り込まれ、細胞内でＭＴＸの薬効を発現すると考えられる。
従って、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体をＯＡもしくはＲＡ患者の膝関節内に投与した場合、従来のＨＡ製剤同様、ＨＡの特性に基づく疼痛除去作用を発現する一方で、滑膜組織に蓄積しながら、徐々に滑膜細胞内に取り込まれ、ＭＴＸを解離することにより、滑膜炎抑制作用を持続的に発現する。これにより、経口投与に比べＭＴＸの投与量を大幅に低減することが可能であり、経口投与で問題となる全身性の副作用の懸念を払拭できる。また、投与部位において、ＨＡ製剤とＭＴＸの両者は、作用機序の異なる薬理効果を発現し得るので、両者相俟った相乗的な薬効が期待できる。
即ち、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体により、関節注入剤としてのＨＡの側面を持ちながら、ＭＴＸの滑膜炎抑制作用を投与関節内でのみ安全に発現させることができる、従来にない優れた関節疾患治療薬が提供される。
本発明のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体（ＨＡ−ＭＴＸ結合体）は、ヒアルロン酸のカルボキシル基に、ペプチド鎖を含有するリンカーを介してメトトレキサートが結合したものである。
本発明において「ヒアルロン酸（ＨＡ）」とは、特に限定はされないが、例えば平均分子量５万〜１０００万ダルトンを有する、グルクロン酸とＮ−アセチルグルコサミンとから成る二糖の重合体である。ヒアルロン酸の塩には、特に限定はされないが、例えばナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、アルミニウム塩、亜鉛塩、鉄塩、アンモニウム塩、テトラブチルアンモニウム塩などが含まれる。ヒアルロン酸及びその塩、並びにそれらの混合物の具体例には、例えば、商品名 スベニール（登録商標：製造販売 中外製薬株式会社）；商品名 アルツ（登録商標：製造 生化学工業株式会社、販売 科研製薬株式会社）；商品名 オペガン（登録商標：製造 生化学工業株式会社、販売 参天製薬株式会社）などが含まれる。本発明において「ヒアルロン酸誘導体」とは、ＨＡから誘導されるＨＡ骨格を有する物質を意味する。ヒアルロン酸誘導体としては、特に限定はされないが、例えば、ＨＡ中の一つ以上のカルボキシル基がエステル化されている物質（例えば、ベンジルエステル化ＨＡ（商品名 Ｈｙａｆｆ（登録商標）、Ｆｉｄｉａ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ））、ＨＡをホルムアルデヒドで架橋しさらに高分子化した物質（例えば、商品名 Ｓｙｎｖｉｓｃ（登録商標）、Ｂｉｏｍａｔｒｉｘ））、ＨＡ中の一つ以上のヒドロキシ基がアセチル化されているアセチル化ＨＡ、などを包含する。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、ＨＡの疼痛除去作用を損なってはならないため、ＨＡ−ＭＴＸ結合体として、臨床での疼痛除去作用が確認されているＨＡと同等の分子量サイズと粘弾性を保持したものであることが好ましい。また、分子量が大きくなると粘弾性が上がりハンドリングが困難になること、および生体内におけるキャリアとしてのＨＡの効果を考慮すると、具体的には、ＨＡ−ＭＴＸ結合体としての分子量が６０万〜６００万ダルトンであることが好ましく、ＨＡ−ＭＴＸ結合体としての分子量が８０万〜６００万ダルトンであることがより好ましく、ＨＡ−ＭＴＸ結合体としての分子量が１００万〜５００万ダルトンであることが特に好ましい。
ここで、上記した原料ＨＡの分子量、ＨＡ−ＭＴＸ結合体の分子量は、極限粘度から粘度平均分子量を算出する方法で測定したものである。極限粘度（［η］）から粘度平均分子量（Ｍｗ）への換算は、以下の式を用いて算出することができる。
Ｍｗ＝（［η］／０．０００３６）1.282
本発明のペプチド鎖を含有するリンカーにおけるペプチド鎖は、アミノ酸により構成される。当該アミノ酸には、グリシン、アラニン、セリン、プロリン、バリン、トレオニン、システイン、ロイシン、イソロイシン、アスパラギン、アスパラギン酸、リジン、グルタミン、グルタミン酸、メチオニン、ヒスチジン、フェニルアラニン、アルギニン、チロシン、トリプトファンなどの天然α−アミノ酸の他に、アルキル側鎖を持つα−アミノ酸（例えば、ノルバリン、ノルロイシン、ｔ−ロイシンなど）、シクロアルキル基で置換されたアラニンやグリシン（例えば、シクロペンチルアラニン、シクロヘキシルアラニン、シクロヘキシルグリシンなど）、またはアリール基で置換されたアラニンやグリシン（例えば、ピリジルアラニン、チエニルアラニン、ナフチルアラニン、置換フェニルアラニン、フェニルグリシンなど）などの非天然α−アミノ酸、β−アラニンなどのβ−アミノ酸、γ−アミノ酪酸などのγ−アミノ酸、およびタウリンなどのアミノスルホン酸などが含まれる。本発明のリンカーペプチドにおけるアミノ酸には、その残基が適切に置換または保護されたものも含まれる。例えば、当該残基上の官能基は、保護基を用いて保護され得る。この目的のために使用する保護基は当該技術分野で周知であり、その一部の例は、本明細書の他の段落に記載される。各置換基および保護基、特に保護基の導入方法は、当該技術分野において周知のものを用いればよい。
当該リンカーはアミノ酸のみにより構成されていてもよく、またはペプチド鎖の中または末端にアミノ酸以外の化合物に由来する部分を含んでいてもよい。例えば、アルキレンジアミン、オキサアルキレンジアミンのようなジアミノ化合物やコハク酸のようなジカルボン酸化合物がペプチド鎖の中または末端に結合したものなども当該リンカーに含まれる。ペプチド鎖の中または末端にアミノ酸以外の化合物を含む場合で、当該リンカーがＭＴＸのカルボキシル基とヒアルロン酸のカルボキシル基に結合する場合には、アルキレンジアミン、オキサアルキレンジアミンのようなジアミノ化合物がペプチド鎖の末端に存在することが好ましく、エチレンジアミン、４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンがペプチド鎖の末端に存在することが特に好ましい。また、ペプチド鎖を構成するアミノ酸は特に限定されないが、プロテアーゼに対する親和性の観点から、α−アミノ酸が好ましく、ペプチド鎖を含有するリンカーのＭＴＸに結合する末端はα−アミノ酸であることが好ましい。
当該ペプチド鎖を構成するアミノ酸の数は、特に限定はされないが、典型的には１〜８であり、好ましくは１〜６であり、特に好ましくは１〜４である。当該ペプチド鎖を構成するアミノ酸の各残基は、独立に１個以上の基により適切に置換または保護され得る。そのような基には、Ｃ1-6アルキル基、Ｃ1-6アルキルカルボニル基、Ｃ1-6アルコキシカルボニル基（例えば、メトキシカルボニル基、エトキシカルボニル基、（ｎ−またはｉ−）プロピルオキシカルボニル基、および（ｎ−、ｓ−、またはｔ−）ブトキシカルボニル基）、ホルミル基、Ｃ1-6アルキルスルホニル基（例えば、メタンスルホニル基、エタンスルホニル基、および（ｎ−またはｉ−）プロパンスルホニル基）、Ｃ6-10アリールスルホニル基（例えば、ベンゼンスルホニル基、（ｏ−、ｍ−またはｐ−）トルエンスルホニル基、および（１−または２−）ナフタレンスルホニル基）が含まれるが、これらに限定されない。置換または保護により、例えば当該残基に含まれるカルボキシル基はＣ1-6アルコキシカルボニル基に、ヒドロキシ基はＣ1-6アルコキシ基またはＣ1-6アルキルカルボニルオキシ基に、アミノ基はＣ1-6アルキルアミノ基、ジＣ1-6アルキルアミノ基、Ｃ1-6アルキルカルボニルアミノ基またはＮ−Ｃ1-6アルキル−Ｃ1-6アルキルカルボニルアミノ基にそれぞれ変換されていてもよい。また、当該残基に含まれるカルボキシル基は、１または２個のＣ1-6アルキル基で置換されていてもよいアミド基に変換されていてもよい。当該残基中にインドール環やイミダゾール環のような含窒素複素環が含まれる場合は、その環上の窒素原子は、各々独立して、Ｃ1-6アルキル基またはＣ1-6アルキルカルボニル基で保護されていてもよい。当該残基中にグアニジノ基が存在する場合には、そこに含まれている窒素原子も、Ｃ1-6アルキル基またはＣ1-6アルキルカルボニル基で保護され得る。窒素原子に対する他の保護基としては、限定されないが、上記したアルコキシカルボニル基、ホルミル基、Ｃ1-6アルキルスルホニル基、Ｃ6-10アリールスルホニル基のような通常用いられるものを選択することもできる。チオール基が当該残基に含まれる場合は、Ｃ1-6アルキル基またはＣ1-6アルキルカルボニル基で保護され得る。また、当該ペプチド鎖に含まれるアミド結合も、Ｃ1-6アルキル基および／またはＣ1-6アルキルカルボニル基で置換されていてもよく、例えば−ＣＯＮ（Ｃ1-6アルキル）−に変換されていてもよい。
ペプチド鎖を構成するアミノ酸配列は特に限定されないが、例えば、以下のようなものが挙げられる。尚、ターゲットとなる生体内プロテアーゼが存在し、その基質認識アミノ酸配列が既知の場合、その認識部位および／または切断部位を含むアミノ酸配列を用いてもよい。
アミノ酸１個からなるペプチド鎖：Ａｌａ、Ａｒｇ、Ａｓｎ、Ａｓｐ、Ｃｙｓ、Ｇｌｎ、Ｇｌｕ、Ｇｌｙ、Ｈｉｓ、Ｉｌｅ、Ｌｅｕ、Ｌｙｓ、Ｍｅｔ、Ｐｈｅ、Ｐｒｏ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｒｐ、Ｔｙｒ、Ｖａｌ、など。好ましくは、Ｐｈｅ、Ｔｙｒ、Ｉｌｅ、Ｇｌｕ。
アミノ酸２個からなるペプチド鎖：ＰｈｅＰｈｅ、ＰｈｅＧｌｙ、ＰｈｅＬｅｕ、ＴｙｒＰｈｅ、ＴｒｐＰｈｅ、ＰｈｅＴｒｐ、ＰｈｅＴｙｒ、ＧｌｙＰｈｅ、ＧｌｙＧｌｙ、など。好ましくは、ＰｈｅＰｈｅ、ＰｈｅＧｌｙ。
アミノ酸３個からなるペプチド鎖：ＰｈｅＧｌｙＧｌｙ、ＰｈｅＬｅｕＧｌｙ、ＰｈｅＰｈｅＧｌｙ、ＡｓｎＰｈｅＰｈｅ、ＧｌｙＰｈｅＰｈｅ、ＬｅｕＰｈｅＰｈｅ、ＬｅｕＡｌａＬｅｕ、ＡｌａＶａｌＡｌａ、ＧｌｙＡｌａＰｈｅ、ＧｌｙＰｈｅＡｌａ、ＧｌｙＩｌｅＡｌａ、ＧｌｙＩｌｅＰｈｅ、ＧｌｙＬｅｕＡｌａ、ＧｌｙＶａｌＡｌａ、ＧｌｙＶａｌＰｈｅ、ＧｌｙＧｌｙＧｌｙ、など。好ましくは、ＡｓｎＰｈｅＰｈｅ。
アミノ酸４個からなるペプチド鎖：ＧｌｙＰｈｅＬｅｕＧｌｙ、ＧｌｙＰｈｅＰｈｅＬｅｕ、ＧｌｙＰｈｅＰｈｅＡｌａ、ＧｌｙＰｈｅＴｙｒＡｌａ、ＧｌｙＰｈｅＧｌｙＰｈｅ、ＧｌｙＰｈｅＧｌｙＧｌｙ、ＧｌｙＧｌｙＰｈｅＧｌｙ、ＧｌｙＧｌｙＰｈｅＴｙｒ、ＧｌｙＧｌｙＧｌｙＧｌｙ、ＬｅｕＡｌａＬｅｕＡｌａ、ＡｌａＬｅｕＡｌａＬｅｕ、ＡｌａＧｌｙＶａｌＰｈｅ、ＧｌｕＡｓｎＰｈｅＰｈｅ、など。好ましくは、ＧｌｙＰｈｅＬｅｕＧｌｙ。
本発明におけるリンカーは、例えば上記式（Ｘ）で示される構造を有していてもよく、その場合Ｑ1は結合する−ＮＨ−と一緒になって上述したような１〜８個のアミノ酸からなるペプチド鎖を形成する。また、Ｑ2は１〜５個の酸素原子が挿入されるか、もしくはカルボキシル基またはＣ1-6アルコキシカルボニル基で置換されていてもよいＣ2-20アルキレンである。Ｑ2の具体例としては、エタン−１，２−ジイル基、プロパン−１，３−ジイル基、ブタン−１，４−ジイル基、ペンタン−１，５−ジイル基、ヘキサン−１，６−ジイル基、ヘプタン−１，７−ジイル基、オクタン−１，８−ジイル基、ノナン−１，９−ジイル基、デカン−１，１０−ジイル基、２−メチルプロパン−１，３−ジイル基、２−メチルブタン−１，４−ジイル基、３−メチルブタン−１，４−ジイル基、３−メチルペンタン−１，５−ジイル基、３−エチルペンタン−１，５−ジイル基、２−メチルヘキサン−１，６−ジイル基、３−メチルヘキサン−１，６−ジイル基、４−メチルヘプタン−１，７−ジイル基、３−オキサペンタン−１，５−ジイル基、３−オキサヘキサン−１，６−ジイル基、４−オキサヘキサン−１，６−ジイル基、３−オキサヘプタン−１，７−ジイル基、４−オキサヘプタン−１，７−ジイル基、４−オキサオクタン−１，８−ジイル基、３，６−ジオキサオクタン−１，８−ジイル基、３，６−ジオキサノナン−１，９−ジイル基、３，６−ジオキサ−４−メチルノナン−１，９−ジイル基、４，７−ジオキサデカン−１，１０−ジイル基、４，９−ジオキサドデカン−１，１２−ジイル基、４，７，１０−トリオキサトリデカン−１，１３−ジイル基などが挙げられ、好ましくは、エタン−１，２−ジイル基、ペンタン−１，５−ジイル基、３−オキサペンタン−１，５−ジイル基、３，６−ジオキサオクタン−１，８−ジイル基、４，７−ジオキサデカン−１，１０−ジイル基、４，９−ジオキサドデカン−１，１２−ジイル基、４，７，１０−トリオキサトリデカン−１，１３−ジイル基などが挙げられる。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、ＨＡのカルボキシル基に、ペプチド鎖を含有するリンカーを介してＭＴＸが結合するものであればどのような結合様式をとっていてもよい。即ち、ペプチド鎖を含有するリンカーは、
１）ＭＴＸのα位のカルボキシル基；
２）ＭＴＸのγ位のカルボキシル基；および
３）ＭＴＸのアミノ基と結合しうるものであり、さらにこれらの結合様式が複数混在（例えば、ＭＴＸのα位のカルボキシル基で結合した結合体と、ＭＴＸのγ位のカルボキシル基で結合した結合体が混在）していてもよい。しかしながら、プロテアーゼに対する親和性と合成上の観点から、ペプチド鎖を含有するリンカーはＭＴＸのα位のカルボキシル基及び／またはγ位のカルボキシル基と結合していることが好ましく、当該リンカーはＭＴＸのα位のカルボキシル基と結合していることがより好ましい。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体において、ペプチド鎖を含有するリンカーおよびその結合様式のうち特に好ましいものは、ペプチド鎖を含有するリンカーがα−アミノ酸からなるペプチド鎖の末端にジアミノ化合物が存在するものであり、そのペプチド鎖のＮ末端がＭＴＸのα位のカルボキシル基に酸アミド結合によって結合し、そのペプチド鎖のＣ末端がジアミノ化合物を介してＨＡのカルボキシル基と酸アミド結合によって結合しているものである。
本発明のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体におけるメトトレキサート（ＭＴＸ）部分は、リンカーによる修飾以外に、公知の方法によりプロドラッグ化されていてもよい。
本明細書においてＣ1-6アルキル基は、炭素数１〜６の直鎖または分枝鎖状のアルキル基を意味し、例えば、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、ｉ−プロピル基、ｎ−ブチル基、ｓ−ブチル基、ｉ−ブチル基、ｔ−ブチル基、ｎ−ペンチル基、３−メチルブチル基、２−メチルブチル基、１−メチルブチル基、１−エチルプロピル基、及びｎ−ヘキシル基等を含む。
本明細書においてＣ1-6アルキルカルボニルは、炭素数１〜６の直鎖または分枝鎖状のアルキルカルボニル基を意味し、例えば、アセチル基、プロピオニル基、２−メチルプロピオニル基、２，２−ジメチルプロピオニル基などの既に定義したアルキル基をアルキル部分として有するものが含まれる。
本明細書においてＣ1-6アルコキシは、炭素数１〜６の直鎖または分枝鎖状のアルコキシ基を意味し、例えばメトキシ基、エトキシ基、ｎ−プロポキシ基などの既に定義したアルキル基をアルキル部分として有するものが含まれる。
本明細書においてＣ1-6アルキルアミノは、炭素数１〜６の直鎖または分枝鎖状のアルキルアミノ基を意味し、例えばメチルアミノ基、エチルアミノ基、ｎ−プロピルアミノ基などの既に定義したアルキル基をアルキル部分として有するものが含まれる。
本明細書においてジＣ1-6アルキルアミノは、炭素数１〜６の直鎖または分枝鎖状のジアルキルアミノ基を意味し、例えばジメチルアミノ基、エチルメチルアミノ基、ジエチルアミノ基、エチルｎ−プロピルアミノ基などの、同一または異なってもよい既に定義したアルキル基をアルキル部分として有するものが含まれる。
本明細書においてジＣ2-20アルキレンは、炭素数２〜２０の直鎖または分枝鎖状のアルキレン基を意味し、例えばエチレン基、プロピレン基、ブチレン基、オクチレン基、デカレン基などが含まれる。
本明細書においてＣ1-6アルコキシカルボニル基は、炭素数１〜６の直鎖または分枝鎖状のアルコキシカルボニル基を意味し、例えばメトキシカルボニル基、エトキシカルボニル基、ｎ−プロポキシカルボニル基などの既に定義したアルキル基をアルキル部分として有するものが含まれる。
本明細書においてＣ1-6アルキルスルホニル基は、炭素数１〜６の直鎖または分枝鎖状のアルキルスルホニル基を意味し、例えばメタンスルホニル基、エタンスルホニル基、ｎ−プロパンスルホニル基などの既に定義したアルキル基をアルキル部分として有するものが含まれる。
本明細書におけるアシル化には、Ｃ1-6アルキルカルボニル化；およびベンゾイル化などが含まれ、当該ベンゾイル基はＣ1-6アルキル、ハロゲン原子、Ｃ1-6アルコキシなどで置換されていてもよい。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体におけるＭＴＸの結合率は、薬効を発揮し副作用の懸念が無い範囲であることが好ましい。本明細書におけるＭＴＸの結合率は、以下の式：
により算出される。ＭＴＸの結合率は、特に限定はされないが、薬効発現の観点から０．５％以上が好ましく、１．０％以上がより好ましい。一方で、ＭＴＸの作用を投与部分に限局させ、ＭＴＸの有する全身性の副作用を低減するためには、結合率は１０％より小さいことが好ましい。また、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、分子量が大きく、かつ、ＭＴＸの結合率が高いと不溶化を起こし合成上の不都合が生じることを考慮すると、ＭＴＸの結合率は０．５％以上かつ４．５％より小さいことが好ましく、１．０％以上かつ４．５％より小さいことが特に好ましい。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、塩として存在することもできるが、その用途を考慮すれば薬学上許容可能な塩であることが好ましい。例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、アルミニウム塩、亜鉛塩、鉄塩、アンモニウム塩、テトラブチルアンモニウム塩などが挙げられる。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体の合成にあたっては、ＨＡ、ペプチド鎖を含有するリンカー、ＭＴＸを適当な順番で結合させることによって得ることができる。例えば、ＨＡ−ペプチド鎖を含有するリンカーを構築した後にＭＴＸを導入するルートや、ＭＴＸ−ペプチド鎖を含有するリンカーを構築した後ＨＡに導入するルートが挙げられる。この各結合反応は、通常の酸アミド結合反応に用いられる溶媒と縮合剤と必要に応じて反応促進性の添加剤を用いて、−２０℃〜４０℃の温度で、数分〜数日間反応させることで行える。溶媒としては、例えば、水、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセタミド、ジメチルスルホキシド、テトラヒドロフラン、ジオキサン、メタノール、エタノール、ジクロロメタン、クロロホルムなど、および、それらの混液が挙げられる。縮合剤としては、例えば、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド、ジシクロヘキシルカルボジイミド、ジイソプロピルカルボジイミドなどのカルボジイミド化合物や、ベンゾトリアゾール−１−イル−オキシ−トリス（ジメチルアミノ）ホスフォニウムヘキサフルオロホスフェート、Ｏ−（７−アザベンゾトリアゾール−１−イル−）−１，１，３，３−テトラメチルウロニウムヘキサフルオロホスフェート、１−エトキシカルボニル−２−エトキシ−１，２−ジヒドロキノリンなどが挙げられる。反応促進性の添加剤としては、例えば、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド、Ｎ−ヒドロキシ−５−ノルボルネン−２，３−カルボキシミド、１−ヒドロキシベンゾトリアゾール、１−ヒドロキシ−７−アザベンゾトリアゾール、３，４−ジヒドロ−３−ヒドロキシ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアゾール、などの活性エステル剤や、トリエチルアミン、Ｎ−メチルモルホリン、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン、トリス［２−（２−メトキシエトキシ）エチル］アミンなどのｐＨ調整剤が挙げられる。反応の際、アミノ酸側鎖等の官能基、例えばヒドロキシ基、カルボキシル基、アミノ基等は、必要に応じて通常の有機合成において汎用される保護基を用いることができる。
ここで、ＨＡ分子量の低下を防ぐために、コンジュゲート化反応の制御のしやすさの観点からＭＴＸ−ペプチド鎖を含有するリンカーを構築した後ＨＡに導入するルートが好ましい。溶媒は水、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、テトラヒドロフラン、エタノール、および、それらの混液が好ましく、水とテトラヒドロフランの混液が最も好ましく、その混合比率は１：１が最も好ましい。縮合剤は水溶性のものが好ましく、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミドが最も好ましく、その添加量はＨＡ中のカルボキシル基に対して０．１当量が最も好ましい。反応促進性添加剤は、活性エステル剤としては３，４−ジヒドロ−３−ヒドロキシ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアゾールが最も好ましく、その添加量はＨＡ中のカルボキシル基に対して０．１当量が最も好ましい。ｐＨ調整剤としてはトリス［２−（２−メトキシエトキシ）エチル］アミンが最も好ましく、反応時ｐＨが６〜７であることが最も好ましい。また、反応温度は、−１０℃〜３０℃が好ましく、０℃〜１５℃が最も好ましい。反応時間は、１時間〜４８時間が好ましく、１２時間〜２４時間が最も好ましい。
本発明において「関節疾患」とは、具体的には、関節軟骨欠損、変形性関節症（明らかな原因のない１次性と原因疾患が認められる２次性を含む）、肩関節周囲炎、関節リウマチ、反応性関節炎、ウイルス性関節炎、化膿性関節炎、結核性関節炎、神経性関節症などの疾患を指し、さらに、これら疾患における関節痛（例えば、関節リウマチにおける膝関節痛など）をも包含する。また、「関節疾患治療薬」とは、前記関節疾患の治療に用いられる薬剤だけでなく、予防に用いられる薬剤、病態の進展抑制（悪化の防止や現状維持）等のために用いられる薬剤をも包含する。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、その有効量に、適宜、製薬上許容しうる担体、賦型剤、崩壊剤、滑沢剤、結合剤、香料、着色剤等を加えて医薬組成物として用いることができる。本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体を有効成分とする医薬組成物は、関節疾患治療薬として用いられることが好ましく、その中でも関節局所投与製剤として用いられることが特に好ましい。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体を関節疾患治療薬として製剤化するに際しては、特に限定されないが、例えば、生理食塩水やリン酸生理食塩水等に所望の濃度に溶解させ、注射用製剤として製剤化することができる。この際、必要に応じて、酸又は塩基を加えることにより、溶液を所望のｐＨに調整してもよい。また、ナトリウム塩、カリウム塩等の１価の金属塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、マンガン塩等の２価の金属塩等の無機塩等を加えることにより、溶液を所望の塩濃度に調整してもよい。更に、所望に応じて、安定化剤等が加えられていてもよい。このようにして調製された、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体を溶解させた溶液を、ディスポーザブル注射筒等の注射器に予め充填させた形で流通させてもよい。本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体を有効成分とする関節疾患治療薬として投与するに際しては、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体が０．０１％〜１０％ｗ/ｖの溶液濃度、好ましくは０．１％〜２．０％ｗ/ｖの溶液濃度、特に好ましくは０．５％〜１．５％ｗ/ｖの溶液濃度のものを、１回あたり１〜３ｍＬを患者に投与すればよい。但し、この投与量は、医師の指示、対象となる患者、又は疾患の種類やその重篤度、或いはＨＡ−ＭＴＸ結合体の分子量等により、それぞれ最適な投与量に適宜増減してもよい。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、以下の実施例において説明するとおり、膝関節に病態が発症する関節炎モデルに関節内投与すると、ＨＡには見られない滑膜炎の軽減作用を発現する。さらに本願発明者らは、この滑膜炎症の軽減作用は、低分子量（分子量３０万ダルトン）のＨＡ−ＭＴＸ結合体と比して、６０万ダルトン以上、特に分子量８０万ダルトン以上のＨＡ−ＭＴＸ結合体に極めて高い効果が確認されることを見出した。
図１は、各被検物質および対照（分子量１９０万のヒアルロン酸および分子量８０万のヒアルロン酸）の、粘弾性を測定した結果を示す。 図２は、各被検物質投与群および対照群（ＨＡおよびｖｅｈｉｃｌｅ）における、ｍＢＳＡを膝関節内に投与直後からの膝関節腫脹の経時的推移を示す。 図３は、図２の各被検物質投与群および対照群のグラフについてのＡＵＣを示す。 図４は、実施例１投与群および対照群（ＨＡおよびＳａｌｉｎｅ）における、コラーゲン関節炎を誘導した直後からの膝関節幅の経時的推移を示す。左図は投与部位の右膝関節の経時的推移を示し、右図は非投与部位の左膝関節の経時的推移を示す。グラフは平均±標準誤差で示す。 図５は、実施例１投与群および対照群（ＨＡおよびＳａｌｉｎｅ）における、コラゲナーゼＯＡモデルの関節炎を、誘導直後から２０日後までの膝関節腫脹の経時的推移として示す。グラフは平均±標準誤差で示す。 図６は、実施例２−２投与群および生理食塩水群における、コラゲナーゼＯＡモデルの下腿骨内顆部の軟骨変性の程度を示す。グラフは平均±標準誤差で示す。
本発明を以下の実施例によってさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
〔実施例１−１〕
２−［Ｎ−［Ｎ−［Ｎ−［４−［［（２，４−ジアミノ−６−プテリジニル）メチル］メチルアミノ］ベンゾイル］−α−（Ｏ５−メチルグルタミル）］フェニルアラニル］フェニルアラニルアミノ］エチルアミン：ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ2Ｈ4−ＮＨ2（化合物１）の製造
（ａ）Ｃｂｚ−Ｐｈｅ−ＮＨ−Ｃ2Ｈ4−ＮＨ−Ｂｏｃ（化合物１ａ）の製造
Ｎ−カルボベンゾキシ-Ｌ-フェニルアラニン（Ｃｂｚ−Ｐｈｅ：７．１６ｇ、２５．４ｍｍｏｌ）とＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−エチレンジアミン塩酸塩（５．００ｇ、２５．４ｍｍｏｌ）と１−ヒドロキシベンゾトリアゾール水和物（ＨＯＢＴ：４．２８ｇ、２８．０ｍｍｏｌ）とＮ−メチルモルホリン（ＮＭＭ：３．０７ｍＬ、２８．０ｍｍｏｌ）をジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）１００ｍＬに溶解し、氷冷撹拌下１−エチル−３−(３−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ：５．３６ｇ、２８．０ｍｍｏｌ）を加え、室温で１日間撹拌した。反応液に１０％クエン酸水溶液を加え、析出した固体をクロロホルムと少量のメタノールに溶かし、飽和重曹水、飽和食塩水で洗浄後、硫酸ナトリウムで乾燥した。減圧濃縮して得られた残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 クロロホルム：メタノール＝９５：５）で精製し、白色固体の標題化合物９．６９ｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．３７（９Ｈ、ｓ）、２．６９−３．１９（６Ｈ、ｍ）、４．１２−４．２２（１Ｈ、ｍ）、４．９３（２Ｈ、ｄｄ、Ｊ＝１２．９Ｈｚ、Ｊ＝１５．１Ｈｚ）、６．７５（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．２２−７．３３（１０Ｈ、ｍ）、７．４８（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、８．０５（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）
ＬＣ／ＭＳ：４４１．９（Ｍ＋Ｈ+）４６４．１（Ｍ＋Ｎａ+）
（ｂ）Ｃｂｚ−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ2Ｈ4−ＮＨ−Ｂｏｃ（化合物１ｂ）の製造
化合物１ａ（９．６９ｇ、２１．９ｍｍｏｌ）をメタノール２００ｍＬに溶解し、１０％パラジウム炭素５００ｍｇを加え、水素雰囲気下室温で１日撹拌した。反応混合物より触媒をろ別後、減圧濃縮した。この残渣とＣｂｚ−Ｐｈｅ（６．９２ｇ、２３．１ｍｍｏｌ）とＨＯＢＴ（３．７１ｇ、２４．２ｍｍｏｌ）とＮＭＭ（２．６６ｍＬ、２４．２ｍｍｏｌ）をジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）５０ｍＬに溶解し、氷冷撹拌下ＥＤＣ（４．６４ｇ、２４．２ｍｍｏｌ）を加え、室温で１日間撹拌した。反応液に水を加え、１０％クエン酸水溶液、飽和重曹水、水で洗浄し乾燥した。得られた残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 クロロホルム：メタノール＝９０：１０）で精製し、白色固体の標題化合物１２．８ｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．３７（９Ｈ、ｓ）、２．６２−３．１８（８Ｈ、ｍ）、４．１８−４．２９（１Ｈ、ｍ）、４．４０−４．５１（１Ｈ、ｍ）、４．９３（２Ｈ、ｓ）、６．７２（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．１０−７．３２（１５Ｈ、ｍ）、７．４６（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．９７（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．１１（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．９Ｈｚ）
ＬＣ／ＭＳ：５８８．８（Ｍ＋Ｈ+）６１１．１（Ｍ＋Ｎａ+）
（ｃ）Ｃｂｚ−Ｇｌｕ（ＯＭｅ）ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ2Ｈ4−ＮＨ−Ｂｏｃ（化合物１ｃ）の製造
化合物１ｂ（１１．１ｇ、１８．９ｍｇ）をメタノール８００ｍＬとＤＭＦ５０ｍＬとＴＨＦ５００ｍＬに溶解し、１０％パラジウム炭素１．００ｇを加え、水素雰囲気下室温で１日撹拌した。反応混合物より触媒をろ別後、減圧濃縮した。この残渣とＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−γ−メチルエステル（Ｃｂｚ−Ｇｌｕ（ＯＭｅ）：５．５８ｇ、１８．９ｍｍｏｌ）とＨＯＢＴ（３．１８ｇ、２０．８ｍｍｏｌ）とＮＭＭ（２．２９ｍＬ、２０．８ｍｍｏｌ）をＤＭＦ１００ｍＬに溶解し、氷冷撹拌下ＥＤＣ（３．９９ｇ、２０．８ｍｍｏｌ）を加え、室温で２日間撹拌した。氷冷撹拌下反応液に１０％クエン酸を加え生じた沈殿を、５％重曹水、水で洗浄後、シリカゲルカラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 ジクロロメタン：メタノール＝１０：１）で精製し、メタノールを加え沈殿を生じさせ白色粉末の標題化合物１１．１ｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．３６（９Ｈ、ｓ）、１．６４−１．８０（２Ｈ、ｍ）、２．１７−２．２３（２Ｈ、ｍ）、２．７６−３．１２（８Ｈ、ｍ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、３．９３−４．０３（１Ｈ、ｍ）、４．４０−４．５８（２Ｈ、ｍ）、５．００（２Ｈ、ｓ）、６．６８（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．１８−７．４４（１６Ｈ、ｍ）、７．８４−７．９０（２Ｈ、ｍ）、８．１９（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．７Ｈｚ）
ＬＣ／ＭＳ：７３２．４（Ｍ＋Ｈ+）、７５４．４（Ｍ＋Ｎａ+）
（ｄ）ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ2Ｈ4−ＮＨ−Ｂｏｃ（化合物１ｄ）の製造
化合物１ｃ（３４８ｍｇ、０．４７６ｍｍｏｌ）をメタノール１０ｍＬとテトラヒドロフラン１０ｍＬに懸濁し、１０％パラジウム炭素３３ｍｇを加え、水素雰囲気下室温で１．５時間撹拌した。反応混合物より触媒をろ別後、減圧濃縮した。この残渣と４−［Ｎ−（２，４−ジアミノ−６−プテリジニルメチル）−Ｎ−メチルアミノ］安息香酸：１９７ｍｇ、０．５４７ｍｍｏｌ）とＨＯＢＴ（７６ｍｇ、０．４９９ｍｍｏｌ）をＮ−メチルピロリドン（ＮＭＰ）４ｍＬに溶解し、氷冷撹拌下Ｎ−メチルモルホリン（ＮＭＭ、５５μＬ、０．４９９ｍｍｏｌ）とＥＤＣ（１０５ｍｇ、０．５４７ｍｍｏｌ）を加え、室温で４日間撹拌した。反応液に５％重曹水を加え生じた沈殿をシリカゲルカラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 ジクロロメタン：メタノール＝１０：１）、続いて、アミンシリカゲル（ＮＨ−ＤＭ１０２０、１００−２００ｍｅｓｈ、富士シリシア化学株式会社製）カラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 ジクロロメタン：メタノール＝１０：１）で精製し、黄色粉末の標題化合物３６２ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．３５（９Ｈ、ｓ）、１．７８−１．９４（２Ｈ、ｍ）、２．２３（２Ｈ、ｍ）、２．６９−３．１０（８Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２７−４．５２（３Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６３（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．７０（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．９Ｈｚ）、７．０６−７．２５（１０Ｈ、ｍ）、７．４６（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６６−７．８８（５Ｈ、ｍ）、８．０６−８．１７（２Ｈ、ｍ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：９０５．５（Ｍ＋Ｈ+）
（ｅ）ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ2Ｈ4−ＮＨ2（化合物１）の製造
化合物１ｄ（３６０ｍｇ、０．３９８ｍｍｏｌ）に、氷冷下、トリフルオロ酢酸５ｍＬを加え１時間撹拌した。反応液を減圧濃縮後、残渣をアミンシリカゲルカラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 ジクロロメタン：メタノール＝１００：１０、２回）で精製し、黄色粉末の標題化合物２７５ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．８０−１．９６（２Ｈ、ｍ）、２．２０−２．２８（２Ｈ、ｍ）、２．４５（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．６Ｈｚ）、２．７０−３．１０（６Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２６−４．５２（３Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．０６−７．２１（１０Ｈ、ｍ）、７．４６（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６５−７．７３（３Ｈ、ｍ）、７．８５（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．１Ｈｚ）、８．０８−８．１６（２Ｈ、ｍ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８０５．３（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２〕
４，７，１０−トリオキサ−１３−［Ｎ−［Ｎ−［Ｎ−［４−［［（２，４−ジアミノ−６−プテリジニル）メチル］メチルアミノ］ベンゾイル］−α−（Ｏ５−メチルグルタミル）］フェニルアラニル］フェニルアラニルアミノ］トリデカニルアミン：ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２）の製造
（ａ）Ｃｂｚ−Ｐｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ−Ｂｏｃ（化合物２ａ）の製造
Ｎ−カルボベンゾキシ-Ｌ-フェニルアラニン（Ｃｂｚ−Ｐｈｅ：８５２ｍｇ、２．８５ｍｍｏｌ）とＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミン（７６０ｍｇ、２．３７ｍｍｏｌ）と１−ヒドロキシベンゾトリアゾール水和物（ＨＯＢＴ：３６３ｍｇ、２．３７ｍｍｏｌ）をジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）６ｍＬに溶解し、氷冷撹拌下１−エチル−３−(３−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ：５４６ｍｇ、２．８５ｍｍｏｌ）を加え、室温で２日間撹拌した。反応液に酢酸エチルを加え、１０％クエン酸水溶液、５％重曹水、飽和食塩水で洗浄後、硫酸ナトリウムで乾燥した。減圧濃縮して得られた残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 ジクロロメタン：メタノール＝１００：３）で精製し、油状の標題化合物１．３５ｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）：δ１．４３（９Ｈ、ｓ）、１．５６−１．７４（４Ｈ、ｍ）、３．０６（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝６．８Ｈｚ）、３．１７−３．５８（１６Ｈ、ｍ）、４．３０−４．３９（１Ｈ、ｍ）、４．９８（１Ｈ、ｂｒ）、５．０８（２Ｈ、ｓ）、５．５０（１Ｈ、ｂｒ）、６．４０（１Ｈ、ｂｒ）、７．１６−７．３２（１０Ｈ、ｍ）
ＬＣ／ＭＳ：６２４．３（Ｍ＋Ｎａ+）
（ｂ）Ｃｂｚ−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ−Ｂｏｃ（化合物２ｂ）の製造
化合物２ａ（１．３５ｇ、２．２４ｍｍｏｌ）をメタノール１２ｍＬに溶解し、１０％パラジウム炭素２００ｍｇを加え、水素雰囲気下室温で４時間撹拌した。反応混合物より触媒をろ別後、減圧濃縮した。この残渣とＣｂｚ−Ｐｈｅ（１．０７ｇ、３．５７ｍｍｏｌ）とＨＯＢＴ（５１４ｍｇ、３．３６ｍｍｏｌ）をＤＭＦ１０ｍＬに溶解し、氷冷撹拌下ＥＤＣ（６８８ｍｇ、３．５９ｍｍｏｌ）を加え、室温で２日間撹拌した。反応液に酢酸エチルを加え、１０％クエン酸水溶液、５％重曹水、飽和食塩水で洗浄後、硫酸ナトリウムで乾燥した。減圧濃縮して得られた残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 ジクロロメタン：メタノール＝１００：３）で精製した。ｎ−ヘキサンを加えると白色沈殿物を生じ、ろ取して標題化合物１．５６ｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ3）：δ１．４３（９Ｈ、ｓ）、１．６０−１．７８（４Ｈ、ｍ）、２．９６−３．６０（２０Ｈ、ｍ）、４．４２−４．５９（２Ｈ、ｍ）、４．９６−５．０７（３Ｈ、ｍ）、５．４１（１Ｈ、ｂｒ．ｄ）、６．３９（１Ｈ、ｂｒ）、６．７３（１Ｈ、ｂｒ．ｄ）、７．０８−７．３１（１５Ｈ、ｍ）
ＬＣ／ＭＳ：７７１．３（Ｍ＋Ｎａ+）
（ｃ）Ｃｂｚ−Ｇｌｕ（ＯＭｅ）ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ−Ｂｏｃ（化合物２ｃ）の製造
化合物２ｂ（５００ｍｇ、０．６６８ｍｍｏｌ）をメタノール１０ｍＬに溶解し、１０％パラジウム炭素１５０ｍｇを加え、水素雰囲気下室温で１日撹拌した。反応混合物より触媒をろ別後、減圧濃縮した。この残渣とＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−γ−メチルエステル（Ｃｂｚ−Ｇｌｕ（ＯＭｅ）：２１７ｍｇ、０．７３４ｍｍｏｌ）とＨＯＢＴ（１０２ｍｇ、０．６６８ｍｍｏｌ）をＤＭＦ５ｍＬに溶解し、氷冷撹拌下ＥＤＣ（１４１ｍｇ、０．７３４ｍｍｏｌ）を加え、室温で１６時間撹拌した。反応液に酢酸エチルを加え、１０％クエン酸水溶液、５％重曹水、飽和食塩水で洗浄後、硫酸ナトリウムで乾燥した。減圧濃縮して得られた残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 ジクロロメタン：メタノール＝１００：５）で精製した。ｎ−ヘキサンを加えると白色沈殿物を生じ、ろ取して標題化合物５２９ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．３６（９Ｈ、ｓ）、１．５０−１．８５（６Ｈ、ｍ）、２．２０（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．９Ｈｚ）、２．７０−３．１０（８Ｈ、ｍ）、３．２５−３．４８（１２Ｈ、ｍ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、３．９３−４．０２（１Ｈ、ｍ）、４．２０−４．６０（２Ｈ、ｍ）、５．００（２Ｈ、ｓ）、６．７７（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．１０−７．４５（１６Ｈ、ｍ）、７．８２（１Ｈ、ｂｒ．ｔ、Ｊ＝６．１Ｈｚ）、７．９１（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．９Ｈｚ）、８．２２（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．９Ｈｚ）
ＬＣ／ＭＳ：９１４．３（Ｍ＋Ｎａ+）
（ｄ）ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ−Ｂｏｃ（化合物２ｄ）の製造
化合物２ｃ（５１４ｍｇ、０．５７６ｍｍｏｌ）をメタノール３０ｍＬに懸濁し、１０％パラジウム炭素１００ｍｇを加え、水素雰囲気下室温で１．５時間撹拌した。反応混合物より触媒をろ別後、減圧濃縮した。この残渣と４−［Ｎ−（２，４−ジアミノ−６−プテリジニルメチル）−Ｎ−メチルアミノ］安息香酸：２８１ｍｇ、０．８６４ｍｍｏｌ）とＨＯＢＴ（１３２ｍｇ、０．８６４ｍｍｏｌ）をＤＭＦ５ｍＬに溶解し、氷冷撹拌下ＥＤＣ（１６６ｍｇ、０．８６４ｍｍｏｌ）を加え、室温で２日間撹拌した。反応液に５％重曹水を加え生じた沈殿をアミンシリカゲル（ＮＨ−ＤＭ１０２０、１００−２００ｍｅｓｈ、富士シリシア化学株式会社製）カラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 １回目、ジクロロメタン：メタノール＝１００：７、２回目、クロロホルム：メタノール＝１００：４）で精製し、黄色粉末の標題化合物４１５ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．３６（９Ｈ、ｓ）、１．４８−１．６１（４Ｈ、ｍ）、１．８１−１．９２（２Ｈ、ｍ）、２．２４（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．９Ｈｚ）、２．７０−３．１０（８Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．４７（１２Ｈ、ｍ）、３．５４（３Ｈ、ｓ）、４．２５−４．５０（３Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．７６−６．８３（３Ｈ、ｍ）、７．０６−７．２４（１０Ｈ、ｍ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６７−７．８０（４Ｈ、ｍ）、７．８６（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．１Ｈｚ）、８．０９（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．４Ｈｚ）、８．１５（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．１Ｈｚ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：１０８７．５（Ｍ＋Ｎａ+）
（ｅ）ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２）の製造
化合物２ｄ（４１３ｍｇ、０．３８８ｍｍｏｌ）に、氷冷下、トリフルオロ酢酸３ｍＬを加え４０分間撹拌した。反応液を減圧濃縮後、残渣をアミンシリカゲルカラムクロマトグラフィ（溶出溶媒 ジクロロメタン：メタノール＝１００：７、２回）で精製し、黄色粉末の標題化合物３４４ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．４９−１．９５（４Ｈ、ｍ）、１．８１−１．９２（２Ｈ、ｍ）、２．２４（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．９Ｈｚ）、２．７０−３．１０（８Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．４７（１２Ｈ、ｍ）、３．５４（３Ｈ、ｓ）、４．２５−４．５０（３Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．７６−６．８３（３Ｈ、ｍ）、７．０６−７．２４（１０Ｈ、ｍ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．８３（１Ｈ、ｂｒ．ｔ、Ｊ＝５．８Ｈｚ）
、８．０１（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．９Ｈｚ）、８．０９（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．１Ｈｚ）、８．１５（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．８Ｈｚ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：９６５．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ2−ＮＨ2（化合物３）の製造
実施例１−２と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，９−ジオキサ−１，１２−ドデカンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物２２１ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．４７−１．６０（８Ｈ、ｍ）、１．８０−１．９５（２Ｈ、ｍ）、２．２０−２．２９（２Ｈ、ｍ）、２．６０（２Ｈ、ｔ）、２．７０−３．１０（６Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．５０（８Ｈ、ｍ）、３．５４（３Ｈ、ｓ）、４．２５−４．４９（３Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６０（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、７．０６−７．２０（１０Ｈ、ｍ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７０（２Ｈ、ｄ）、７．７３（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．８３（１Ｈ、ｄ）、８．１０（１Ｈ、ｄ）、８．１１（１Ｈ、ｄ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：９４９．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−４〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ8Ｈ16Ｏ2−ＮＨ2（化合物４）の製造
実施例１−２と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７−ジオキサ−１，１０−デカンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物４０７ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５０−１．５７（４Ｈ、ｍ）、１．８５−１．９１（２Ｈ、ｍ）、２．２１−２．２８（２Ｈ、ｍ）、２．６０（２Ｈ、ｔ）、２．７０−３．１３（６Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．４５（８Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２７−４．４９（３Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６０（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．８Ｈｚ）、７．０７−７．２１（１０Ｈ、ｍ）、７．４３（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６９（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．８Ｈｚ）、７．７５（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．８５（１Ｈ、ｄ）、８．０８（１Ｈ、ｄ）、８．１３（１Ｈ、ｄ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：９２１．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−５〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ6Ｈ12Ｏ2−ＮＨ2（化合物５）の製造
実施例１−２と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−３，６−ジオキサ−１，８−オクタンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物１４８ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．８１−１．９１（２Ｈ、ｍ）、２．２０−２．２５（２Ｈ、ｍ）、２．６１−２．６４（２Ｈ、ｔ）、２．７０−２．９７（６Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２７−３．４７（８Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２７−４．４７（３Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６２（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．０６−７．２５（１０Ｈ、ｍ）、７．４６（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６７（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．８５（１Ｈ、ｄ）、７．９２（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．０７（１Ｈ、ｄ）、８．１５（１Ｈ、ｄ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８９３．６（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−６〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ4Ｈ8Ｏ−ＮＨ2（化合物６）の製造
実施例１−２と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−３−オキサ−１，５−ペンタンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物５２ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．８４−１．９２（２Ｈ、ｍ）、２．２０−２．２７（２Ｈ、ｍ）、２．６０−２．６４（２Ｈ、ｔ）、２．７１−２．９９（６Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．４５（４Ｈ、ｍ）、３．５４（３Ｈ、ｓ）、４．２７−４．５０（３Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、７．０５−７．２１（１０Ｈ、ｍ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７０（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．８４（１Ｈ、ｄ）、７．９１（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．０７（１Ｈ、ｄ）、８．１５（１Ｈ、ｄ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８４９．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−７〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ5Ｈ10−ＮＨ2（化合物７）の製造
実施例１−１と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−１，２−エチレンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−１，５−ペンタンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物１４８ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．１６−１．５６（６Ｈ、ｍ）、１．８１−１．９７（２Ｈ、ｍ）、２．２１−２．２９（２Ｈ、ｍ）、２．６９−３．０６（６Ｈ、ｍ）、３．２３（３Ｈ、ｓ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２５−４．５０（３Ｈ、ｍ）、４．８０（２Ｈ、ｓ）、６．６５（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．０８−７．２４（１０Ｈ、ｍ）、７．５０（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６０−７．８９（５Ｈ、ｍ）、８．１０−８．１６（２Ｈ、ｍ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８４７．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−８〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−Ｌｙｓ−ＯＭｅ（化合物８）の製造
実施例１−２と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ε−ｔ−ブトキシカルボニル−Ｌ−リジンメチルエステルを用いて、黄色粉末の標題化合物１７８ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．２５−１．３４（４Ｈ、ｍ）、１．５６−１．６９（２Ｈ、ｍ）、１．7５−１．９０（２Ｈ、ｍ）、２．１８−２．
２５（２Ｈ、ｂｒ．ｔ）、２．５０−２．６０（２Ｈ、ｍ）、２．６５−３．０７（４Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．５４（３Ｈ、ｓ）、３．６０（３Ｈ、ｓ）、４．１５−４．６０（４Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６３（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．００−７．２５（１０Ｈ、ｍ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６２（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６９（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．８０（１Ｈ、ｄ）、８．０５（１Ｈ、ｄ）、８．１６（１Ｈ、ｄ）、８．３０（１Ｈ、ｄ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：９０５．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−９〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物９）の製造
実施例１−２（ａ）の工程のＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシグリシンを用いた以外は、実施例１−２と同様の方法で、黄色粉末の標題化合物５２８ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５１−１．６４（４Ｈ、ｍ）、１．８４−１．９４（２Ｈ、ｍ）、２．２１−２．３０（２Ｈ、ｍ）、２．５５（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．３Ｈｚ）、２．７８−２．９２（１Ｈ、ｍ）、３．０３−３．７６（１７Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２６−４．５２（２Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６３（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．１１−７．２４（５Ｈ、ｍ）、７．４７（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６２−７．７２（４Ｈ、ｍ）、８．０４−８．１６（２Ｈ、ｍ）、８．２８（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８７５．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１０〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ2−ＮＨ2（化合物１０）の製造
実施例１−９と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，９−ジオキサ−１，１２−ドデカンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物３００ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．４７−１．５０（４Ｈ、ｍ）、１．５４−１．６０（４Ｈ、ｍ）、１．８２−１．９５（２Ｈ、ｍ）、２．２５−２．２８（２Ｈ、ｍ）、２．５８（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．６Ｈｚ）、２．８２−２．８７（１Ｈ、ｍ）、３．０２−３．０７（３Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．４１（８Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、３．５５−３．６３（２Ｈ、ｍ）、４．２８−４．４７（２Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６０（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．８Ｈｚ）、７．０９−７．１８（５Ｈ、ｍ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．５９（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．６６（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７０（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．８Ｈｚ）、８．０２（１Ｈ、ｄ）、８．０８（１Ｈ、ｄ）、８．２６（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８５９．３（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１１〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨ−Ｃ8Ｈ16Ｏ2−ＮＨ2（化合物１１）の製造
実施例１−９と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７−ジオキサ−１，１０−デカンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物３００ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５３−１．６２（４Ｈ、ｍ）、１．８２−１．９２（２Ｈ、ｍ）、２．２０−２．２７（２Ｈ、ｍ）、２．５０−２．６０（２Ｈ、ｔ）、２．８１−２．８６（１Ｈ、ｍ）、２．９７−３．０８（３Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．４７（８Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、３．５５−３．７３（２Ｈ、ｍ）、４．２４−４．４７（２Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６０（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ）、７．１２−７．２１（５Ｈ、ｍ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６０（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．６３（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６９（２Ｈ、ｄ）、８．０３（１Ｈ、ｄ）、８．１０（１Ｈ、ｄ）、８．２８（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８３１．３（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１２〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨ−Ｃ6Ｈ12Ｏ2−ＮＨ2（化合物１２）の製造
実施例１−９と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−３，６−ジオキサ−１，８−オクタンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物１８１ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．８３−１．９２（２Ｈ、ｍ）、２．２１−２．２７（２Ｈ、ｍ）、２．６０−２．６５（２Ｈ、ｔ）、２．７５−３．１０（２Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２３−３．４６（１０Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、３．５５−３．７５（２Ｈ、ｍ）、４．２５−４．５２（２Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．１０−７．２０（５Ｈ、ｍ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６３−７．７２（４Ｈ、ｍ）、８．００（１Ｈ、ｄ）、８．１０（１Ｈ、ｄ）、８．２７（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８０３．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１３〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨ−Ｃ4Ｈ8Ｏ−ＮＨ2（化合物１３）。
実施例１−９と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−３−オキサ−１，５−ペンタンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物３１８ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．８２−１．９５（２Ｈ、ｍ）、２．２２−２．２７（２Ｈ、ｍ）、２．５９−２．６４（２Ｈ、ｔ）、２．７３−３．１５（２Ｈ、ｍ）、３．２３（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．３８（６Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、３．４６−３．７７（２Ｈ、ｍ）、４．２３−４．５１（２Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６２（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．１０−７．１７（５Ｈ、ｍ）、７．４７（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６３−７．７５（４Ｈ、ｍ）、８．０２（１Ｈ、ｄ）、８．１１（１Ｈ、ｄ）、８．２７（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：７５９．３（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１４〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｒｏ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物１４）の製造
実施例１−２（ａ）の工程でＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−プロリンを用いた以外は、実施例１−２と同様の方法で、黄色粉末の標題化合物３８２ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１，４９−２．０３（１０Ｈ、ｍ）、２．１９−２．３０（２Ｈ、ｍ）、２．５５（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．６Ｈｚ）、２．６２−３．６９（２１Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２８−４．３８（１Ｈ、ｍ）、４．６３−４．７５（１Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６０（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．１４−７．２９（５Ｈ、ｍ）、７．４７（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６６−７．７２（４Ｈ、ｍ）、７．９４−８．１０（２Ｈ、ｍ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：９１５．３（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１５〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅβＡｌａ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物１５）の製造
実施例１−２（ａ）の工程でＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−β−アラニンを用いた以外は、実施例１−２と同様の方法で、黄色粉末の標題化合物１８０ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５２−１．６２（４Ｈ、ｍ）、１．７８−１．９５（２Ｈ、ｍ）、２．１６−２．２２（４Ｈ、ｍ）、２．５６（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．３Ｈｚ）、２．７１−３．４８（２１Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．１０（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、４．２１−４．３０（１Ｈ、ｍ）、４．３８−４．４９（１Ｈ、ｍ）、４．８０（２Ｈ、ｓ）、６．５９（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８３（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．１０−７．２１（５Ｈ、ｍ）、７．４３（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６５−７．７４（３Ｈ、ｍ）、７．８３−７．８９（２Ｈ、ｍ）、７．９６（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．０８（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝６．８Ｈｚ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８８９．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１６〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅβＡｌａ−ＮＨ−Ｃ2Ｈ4−ＮＨ2（化合物１６）の製造
実施例１−１（ａ）の工程でＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−β−アラニンを用いた以外は、実施例１−１と同様の方法で、黄色粉末の標題化合物１９４ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．８０−１．９４（２Ｈ、ｍ）、２．１８−２．２６（４Ｈ、ｍ）、２．５４（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．１Ｈｚ）、２．７４−３．０８（６Ｈ、ｍ）、３．２３（３Ｈ、ｓ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２４−４．４８（２Ｈ、ｍ）、４．８０（２Ｈ、ｓ）、６．５９（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８３（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、７．１３（５Ｈ、ｓ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６５−７．８６（５Ｈ、ｍ）、７．９６（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．０９（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝６．８Ｈｚ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：７２９．３（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１７〕
ＭＴＸ−α−Ｐｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物１７）の製造
実施例１−２（ｂ）の工程を省略した以外は実施例１−２と同様の方法で、黄色粉末の標題化合物４９６ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．４９−１．５９（４Ｈ、ｍ）、１．８２−１．８９（２Ｈ、ｍ）、２．１９−２．２７（２Ｈ、ｍ）、２．５５（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．２Ｈｚ）、２．７３−３．１０（４Ｈ、ｍ）、３．２３（３Ｈ、ｓ）、３．１７−３．４８（１２Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２１−４．２８（１Ｈ、ｍ）、４．３８−４．４５（１Ｈ、ｍ）、４．８０（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ），６．８３（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝９．３Ｈｚ）、７．１１−７．２０（５Ｈ、ｍ）、７．４６（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６６（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７３（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝９．０Ｈｚ）、７．８３（１Ｈ、ｔ）、７．９２（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、８．１２（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．５Ｈｚ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８１８．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１８〕
ＭＴＸ−α−Ｉｌｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物１８）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−イソロイシンを用いて、黄色粉末の標題化合物５６２ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ０．７６−０．８０（６Ｈ、ｍ）、０．９９−１．１０（１Ｈ、ｍ）、１．３６−１．４５（１Ｈ、ｍ）、１．４９−１．７３（５Ｈ、ｍ）、１．８８−２．０７（２Ｈ、ｍ）、２．３３−２．３８（２Ｈ、ｍ）、２．５５（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．６Ｈｚ）、２．９８−３．４８（１４Ｈ、ｍ）、３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、４．０５−４．１３（１Ｈ、ｍ）、４．４０−４．４８（１Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６０（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、７．４６（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６６−７．７２（３Ｈ、ｍ）、７．９８（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．１２（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．６Ｈｚ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：７８４．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−１９〕
ＭＴＸ−α−Ｉｌｅ−ＮＨ−Ｃ2Ｈ4−ＮＨ2（化合物１９）
実施例１−１８と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−１，２−エチレンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物３２０ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ０．７６−０．８０（６Ｈ、ｍ）、０．９６−１．０８（１Ｈ、ｍ）、１．３４−１．４８（１Ｈ、ｍ）、１．６２−１．７０（１Ｈ、ｍ）、１．８５−２．０３（２Ｈ、ｍ）、２．３６（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．８Ｈｚ）、２．９５−３．０８（２Ｈ、ｍ）、３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、４．０６−４．１２（１Ｈ、ｍ）、４．３８−４．４５（１Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８３（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝９．０Ｈｚ）、７．４３（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６４−７．７２（４Ｈ、ｍ）、７．９２（１Ｈ、ｔ、Ｊ＝５．７Ｈｚ）、８．１２（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．５Ｈｚ）、８．５７（１Ｈ、ｓ）。
ＬＣ／ＭＳ：６２４．２（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２０〕
ＭＴＸ−α−Ｇｌｕ（ＯＭｅ）−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２０）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−γ−メチルエステルを用いて、黄色粉末の標題化合物６００ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５０−２．０３（８Ｈ、ｍ）、２．２４−２．３１（２Ｈ、ｔ）、２．３４−２．４０（２Ｈ、ｔ）、２．４９−２．５７（２Ｈ、ｔ）、２．９７−３．５２（１４Ｈ、ｍ）、３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．５３（３Ｈ、ｓ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．１５−４．３６（２Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．４６（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６７（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．８４（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．９５（１Ｈ、ｄ）、８．１４（１Ｈ、ｄ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８１４．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２１〕
ＭＴＸ−α−Ｇｌｕ（ＯＭｅ）−ＮＨ−Ｃ2Ｈ4−ＮＨ2（化合物２１）の製造
実施例１−２０と同様の方法で、Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル−４，７，１０−トリオキサ−１，１３−トリデカンジアミンの代わりにＮ−ｔ−ブトキシカルボニル−１，２−エチレンジアミンを用いて、黄色粉末の標題化合物２８３ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．７１−２．０９（４Ｈ、ｍ）、２．２８（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．６Ｈｚ）、２．３９（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．６Ｈｚ）、２．５３（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．１Ｈｚ）、２．９９−３．０５（２Ｈ、ｍ）、３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．５４（３Ｈ、ｓ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、４．１４−４．３６（２Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．４３（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６５−７．７９（４Ｈ、ｍ）、７．９５（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．８Ｈｚ）、８．１４（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝６．９Ｈｚ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：６５４．１（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２２〕
ＭＴＸ−α−Ｔｙｒ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２２）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−チロシンを用いて、黄色粉末の標題化合物１３３ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５１−１．６２（４Ｈ、ｍ）、１．８５−１．９５（２Ｈ、ｍ）、２．２３−２．３１（２Ｈ、ｍ）、２．５１−２．５８（２Ｈ、ｔ）、２．６３−２．９１（２Ｈ、ｍ）、２．９５−３．１６（２Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２７−３．５４（１２Ｈ、ｍ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、４．２２−４．３５（２Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．５７（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．１Ｈｚ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、６．９２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．１Ｈｚ）、７．４７（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６７−７．８８（５Ｈ、ｍ）、８．１３（１Ｈ、ｄ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８３４．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２３〕
ＭＴＸ−α−Ｔｒｐ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２３）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−トリプトファンを用いて、黄色粉末の標題化合物１７１ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５０−１．６１（４Ｈ、ｍ）、１．８４−１．９７（２H、ｍ）、２．２３−２．３２（２Ｈ、ｍ）、２．５０−２．５６（２Ｈ、ｔ）、２．９２−３．１５（４Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２９−３．４５（１２Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２９−４．４９（２Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６４（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８０（２Ｈ、ｄ）、６．９２（１H、ｔ）、７．０４（１H、ｔ）、７．１０（１H、ｓ）、７．２６（１Ｈ、ｄ）、７．４４（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．５１（１Ｈ、ｄ）、７．６５（１H、ｂｒ．ｓ）、７．６９（２Ｈ、ｄ）、７．８２（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．９３（１Ｈ、ｄ）、８．１０（１Ｈ、ｄ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）、１０．８０（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８５７．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２４〕
ＭＴＸ−α−Ｓｅｒ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２４）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−セリンを用いて、黄色粉末の標題化合物４１６ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５０−１．６３（４Ｈ、ｍ）、１．９０−２．０８（４Ｈ、ｍ）、２．３９（２H、ｔ、Ｊ＝７．８Ｈｚ）、２．５５（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．６Ｈｚ）、３．０５−３．４８（１６Ｈ、ｍ）３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、４．１３−４．２０（１Ｈ、ｍ）、４．３３−４．４１（１Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝９．０Ｈｚ）、７．４４（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６６−７．８０（５Ｈ、ｍ）、８．１９（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝６．９Ｈｚ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：７５８．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２５〕
ＭＴＸ−α−Ｌｅｕ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２５）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−ロイシンを用いて、黄色粉末の標題化合物２８３ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ０．８０−０．８７（６Ｈ、ｄ）、１．４３−１．６４（７Ｈ、ｍ）、１．９０−２．０６（２H、ｍ）、２．３４−２．３０（２Ｈ、ｔ）、２．５３−２．５８（２Ｈ、ｔ）、３．０４−３．０８（２Ｈ、ｍ）、３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．３３−３．４７（１２Ｈ、ｍ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、４．１９−４．３７（２Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６２（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６４−７．８５（５Ｈ、ｍ）、８．１０（１Ｈ、ｄ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：７８４．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２６〕
ＭＴＸ−α−Ｖａｌ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２６）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−バリンを用いて、黄色粉末の標題化合物５９０ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ０．７９（６Ｈ、ｄ、Ｊ＝６．８Ｈｚ）、１．５２−１．５９（４Ｈ、ｍ）、１．８５−２．０４（３Ｈ、ｍ）、２．３３−２．３５（２Ｈ、ｔ）、２．５６−２．５８（２Ｈ、ｔ）、２．９３−３．５５（１４Ｈ、ｍ）、３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、４．０３−４．０８（１Ｈ、ｍ）、４．４２−４．４７（１Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６２（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．４５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６１−７．７２（４Ｈ、ｍ）、７．９８（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．１３（１Ｈ、ｄ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：７７０．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２７〕
ＭＴＸ−α−Ｈｉｓ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２７）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−ヒスチジンを用いて、黄色粉末の標題化合物８１ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．４９−１．５８（４Ｈ、ｍ）、１．９０−２．０４（２Ｈ、ｍ）、２．３９（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．６Ｈｚ）、２．５５（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．９Ｈｚ）、２．８３（２Ｈ、ｍ）、３．０２（２Ｈ、ｍ）、３．１６−３．４７（１２Ｈ、ｍ）、３．２３（３Ｈ、ｓ）、３．５７（３Ｈ、ｓ）、４．２２（１Ｈ、ｍ）、４．３２（１Ｈ、ｍ）、４．８０（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．７２（１Ｈ、ｓ）、６．８４（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、７．１０−７．７０（５Ｈ、ｍ）、７．７７（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、８．３６（１Ｈ、ｂｒ）、８．５７（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８０８．３（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２８〕
ＭＴＸ−α−Ｐｒｏ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２８）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−プロリンを用いて、黄色粉末の標題化合物６８３ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５８（４Ｈ、ｄｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、Ｊ＝１２．８Ｈｚ）、１．６９−２．１０（６Ｈ、ｍ）、２．４４（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．７Ｈｚ）、２．６０（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．８Ｈｚ）、２．９１−３．７５（１９Ｈ、ｍ）、３．５７（３Ｈ、ｓ）、４．１８−４．２５（１Ｈ、ｍ）、４．６１−４．７２（１Ｈ、ｍ）、４．７７（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８０（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．４４（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６９−７．８０（４Ｈ、ｍ）、８．１５（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．１Ｈｚ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：７６８．３（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−２９〕
ＭＴＸ−α−βＡｌａ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物２９）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−β−アラニンを用いて、黄色粉末の標題化合物２３０ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．４９−１．６２（４Ｈ、ｍ）、１．７９−２．０２（２Ｈ、ｍ）、２．２１（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．９Ｈｚ）、２．３２（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝７．３Ｈｚ）、２．５６（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．６Ｈｚ）、３．００−３．６１（１９Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２９−４．３８（１Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．４３（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６１−７．９１（３Ｈ、ｍ）、７．７２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、８．０２（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．８Ｈｚ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：７４２．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３０〕
ＭＴＸ−γ−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物３０）の製造
実施例１−２と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−γ−メチルエステルの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−α−メチルエステルを用いて、黄色粉末の標題化合物３１２ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．４９−１．６０（４Ｈ、ｍ）、１．７６−１．９８（２Ｈ、ｍ）、２．０９−２．２０（２Ｈ、ｍ）、２．５６（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．６Ｈｚ）、２．６２−３．１６（６Ｈ、ｍ）、３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．２７−３．４８（１２Ｈ、ｍ）、３．５９（３Ｈ、ｓ）、４．２７−４．５３（３Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．１６−７．２３（１０Ｈ、ｍ）、７．４８（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６８−７．７４（３Ｈ、ｍ）、７．８３（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、８．０１（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．９Ｈｚ）、８．１０（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．８Ｈｚ）、８．３６（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝６．８Ｈｚ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：９６５．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３１〕
ＭＴＸ−γ−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ6Ｈ12Ｏ2−ＮＨ2（化合物３１）の製造
実施例１−５と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−γ−メチルエステルの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−α−メチルエステルを用いて、黄色粉末の標題化合物８０ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．７５−１．９７（２Ｈ、ｍ）、２．０８−２．１７（２Ｈ、ｍ）、２．５９−２．６２（２Ｈ、ｔ）、２．５８−３．０５（６Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．１５−３．５２（８Ｈ、ｍ）、３．５９（３Ｈ、ｓ）、４．２３−４．５２（３Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６３（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．１１−７．２１（１０Ｈ、ｍ）、７．４４（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６５（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７０（２Ｈ、ｄ）、７．９４−８．１２（３Ｈ、ｍ）、８．３５（１Ｈ、ｄ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８９３．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３２〕
ＭＴＸ−γ−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ4Ｈ8Ｏ−ＮＨ2（化合物３２）の製造
実施例１−６と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−γ−メチルエステルの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−α−メチルエステルを用いて、黄色粉末の標題化合物４９ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．７３−１．９７（２Ｈ、ｍ）、２．０８−２．１８（２Ｈ、ｍ）、２．６０−２．６５（２Ｈ、ｔ）、２．５９−３．０２（６Ｈ、ｍ）、３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．１３−３．４４（４Ｈ、ｍ）、３．５９（３Ｈ、ｓ）、４．２５−４．５３（３Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６３（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．０９−７．２５（１０Ｈ、ｍ）、７．４３（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６６（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、７．９５−８．１０（３Ｈ、ｍ）、８．３６（１Ｈ、ｄ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８４９．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３３〕
ＭＴＸ−γ−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物３３）の製造
実施例１−９と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−γ−メチルエステルの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−α−メチルエステルを用いて、黄色粉末の標題化合物６９３ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５０−１．６８（４Ｈ、ｍ）、１．８０−２．０２（２Ｈ、ｍ）、２．１２−２．２７（２Ｈ、ｍ）、２．５５（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．４Ｈｚ）、２．７１−２．７９（１Ｈ、ｍ）、２．９６−３．１４（３Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．３８−３．７４（１２Ｈ、ｍ）、３．５９（３Ｈ、ｓ）、４．２８−４．４８（２Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６２（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、７．１４−７．２８（５Ｈ、ｍ）、７．４７（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６３−７．７３（４Ｈ、ｍ）、８．１９（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝７．６Ｈｚ）、８．２９−８．３６（２Ｈ、ｍ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８７５．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３４〕
ＭＴＸ−γ−Ｐｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物３４）の製造
実施例１−１７と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−γ−メチルエステルの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−α−メチルエステルを用いて、黄色粉末の標題化合物４８０ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（３００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．４９−１．５８（４Ｈ、ｍ）、１．７９−２．００（２Ｈ、ｍ）、２．１０−２．２７（２Ｈ、ｍ）、２．５５（２Ｈ、ｔ、Ｊ＝６．９Ｈｚ）、２．６９−２．９３（２Ｈ、ｍ）、２．９６−３．１２（２Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２６−３．４８（１２Ｈ、ｍ）、３．５９（３Ｈ、ｓ）、４．２５−４．３３（１Ｈ、ｍ）、４．３８−４．４６（１Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６２（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．１０−７．２４（５Ｈ、ｍ）、７．４４（１Ｈ、ｂｒ）、７．７０（１Ｈ、ｂｒ）、７．７２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．７Ｈｚ）、７．９５（１Ｈ、ｔ）、８．１０（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．１Ｈｚ）、８．３５（１Ｈ、ｄ、Ｊ＝６．９Ｈｚ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８１８．４（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３５〕
ＭＴＸ−γ−Ｇｌｕ（ＯＭｅ）−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物３５）の製造
実施例１−２０と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−γ−メチルエステルの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｌ−グルタミン酸−α−メチルエステルを用いて、黄色粉末の標題化合物４３８ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５２−２．０６（８Ｈ、ｍ）、２．２２−２．３０（４Ｈ、ｍ）、２．５３−２．５８（２Ｈ、ｔ）、３．０３−３．１５（２Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．５４（１２Ｈ、ｍ）、３．５６（３Ｈ、ｓ）、３．６１（３Ｈ、ｓ）、４．１３−４．４０（２Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６３（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．４４（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６７（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、７．９０（１Ｈ、ｂｒ．ｔ）、７．９９（１Ｈ、ｄ）、８．３７（１Ｈ、ｄ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：８１４．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３６〕
ＭＴＸ−α−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｄ−Ｐｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物３６）の製造
実施例１−２と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｄ−フェニルアラニンを用いて、黄色粉末の標題化合物３１３ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．４０−１．５９（４Ｈ、ｍ）、１．７４−１．８３（２Ｈ、ｍ）、２．０４−２．１１（２Ｈ、ｍ）、２．５６−２．５８（２Ｈ、ｔ）、２．５９−３．１２（６Ｈ、ｍ）、３．２１（３Ｈ、ｓ）、３．１７−３．５１（１２Ｈ、ｍ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２４−４．４４（３Ｈ、ｍ）、４．７８（２Ｈ、ｓ）、６．６２（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．１０−７．２６（１０Ｈ、ｍ）、７．４５（２Ｈ、ｍ）、７．６４（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．７２（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．４Ｈｚ）、８．１８（２Ｈ、ｍ）、８．４３（１Ｈ、ｄ）、８．５５（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：９６５．６（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３７〕
ＭＴＸ−γ−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｄ−Ｐｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物３７）の製造
実施例１−３０と同様の方法で、Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−フェニルアラニンの代わりにＮ−カルボベンゾキシ−Ｄ−フェニルアラニンを用いて、黄色粉末の標題化合物８５ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５１−１．６１（４Ｈ、ｍ）、１．７４−２．０２（２Ｈ、ｍ）、２．１１−２．１６（２Ｈ、ｍ）、２．５４−２．５９（２Ｈ、ｔ）、２．６２−３．１２（６Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．２５−３．５３（１２Ｈ、ｍ）、３．６０（３Ｈ、ｓ）、４．３１−４．４６（３Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６１（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．０８−７．２６（１０Ｈ、ｍ）、７．４４（１Ｈ、ｂｒ．ｓ）、７．６６−７．７７（４Ｈ、ｍ）、８．０６（２Ｈ、ｍ）、８．３６（１Ｈ、ｄ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：９６５．６（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３８〕
ＭＴＸ−α−ＡｓｎＰｈｅＰｈｅ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物３８）の製造
通常のペプチド合成法に従ってペプチド鎖を伸張し、実施例１−２と同様の方法で、黄色粉末の標題化合物１４５ｍｇを得た。
1Ｈ−ＮＭＲ（２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ１．５２−１．５９（４Ｈ、ｍ）、１．８７−２．０２（２Ｈ、ｍ）、２．３２−３．４８（２４Ｈ、ｍ）、３．２２（３Ｈ、ｓ）、３．５５（３Ｈ、ｓ）、４．２４−４．５６（４Ｈ、ｍ）、４．７９（２Ｈ、ｓ）、６．６０（２Ｈ、ｂｒ．ｓ）、６．８１（２Ｈ、ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ）、７．０４−７．７５（１７Ｈ、ｍ）、８．０７−８．２６（４Ｈ、ｍ）、８．５６（１Ｈ、ｓ）
ＬＣ／ＭＳ：１０７９．５（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例１−３９〕
ＭＴＸ−α／γ−ＧｌｙＰｈｅＬｅｕＧｌｙ−ＮＨ−Ｃ10Ｈ20Ｏ3−ＮＨ2（化合物３９）の製造
通常のペプチド合成法に従ってペプチド鎖を伸張し、実施例１−２と同様の方法で、黄色粉末の化合物７２３ｍｇを得た。ＬＣ／ＭＳ解析により、精製過程で異性化を生じα／γの混合物（α：γ＝３：１）となっていること（化合物３９）を確認した。
ＬＣ／ＭＳ：１０４５．７（Ｍ＋Ｈ+）
〔実施例２−１〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）にテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（１０ｍｌ）を加えた懸濁液に、３−ヒドロキシ−３，４−ジヒドロ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアジン（ＨＯＯＢｔ）（０．１２５ｍｍｏｌ）及び実施例１−１で得られた化合物１（０．０３１ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（２０ｍｌ）に溶解した液を添加した後、トリス［２−（２−メトキシエトキシ）エチル］アミン（０．０９４ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて攪拌した。攪拌を開始してから３０分後に１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて２０時間攪拌した。この反応液に、０．０９Ｎの水酸化ナトリウム水溶液（２２０ｍｌ）を添加し、５℃にて３．５時間攪拌した。この溶液に１Ｎの塩酸（２０ｍｌ）を添加することにより中和し、さらに塩化ナトリウム（９ｇ）を超純水（４５ｍｌ）に溶解した液を添加したのち、エタノール（６００ｍｌ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物を遠心分離により分離した。析出物を超純水（４０ｍｌ）に溶解し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。ヒアルロン酸を標準物質とするゲルろ過法により求めた分子量は約１９５万であった。また、得られた結合体のＭＴＸの結合率は、紫外吸収（２５９ｎｍ）を測定することにより算出したところ、２．１％であった。
この水溶液に、塩化ナトリウム（６ｇ）を超純水（１６０ｍＬ）に溶解した液を添加したのち、エタノール（４００ｍＬ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物を遠心分離により分離した。析出物を超純水（５００ｍＬ）に溶解し、塩化ナトリウム（１５ｇ）を添加したのち、０．４５μｍのフィルター（ステリベックスＨＶ：ミリポア）でろ過し、以後無菌的にろ液にエタノール（１０００ｍＬ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物をろ取し真空乾燥した。この析出物をリン酸緩衝液（２ｍＭリン酸ナトリウム、１５４ｍＭ塩化ナトリウム、ｐＨ７．２）（４０ｍＬ）に溶解し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。ヒアルロン酸を標準物質とするゲルろ過法により求めた分子量は約１８６万であった。また、得られた結合体のＭＴＸの結合率は、紫外吸収（２５９ｎｍ）を測定することにより算出したところ、２．１％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．８３（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．１３（ｍ）、２．４９（ｍ）、２．６８（ｍ）、２．９５（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８２（ｂｒ．ｓ）、４．１６（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５４（ｂｒ．ｄ）、４．８８（ｄ）、４．９９（ｄ）、６．６３（ｄ）、６．８７−７．１１（ｍ）、７．７３（ｄ）、８．６９（ｓ）
〔実施例２−２〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１で得られた化合物１（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２２８万、ＭＴＸの結合率は１．９％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２１８万、ＭＴＸの結合率は１．９％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．８４（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．１３（ｍ）、２．４９（ｔ）、２．６８（ｍ）、２．９５（ｍ）、３．３６（ｂｒ．ｄ）、３．５１（ｂｒ．ｄ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１６（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｄ）、４．５５（ｂｒ．ｄ）、４．８８（ｄ）、４．９８（ｄ）、６．６３（ｄ）、６．８７−７．１３（ｍ）、７．７４（ｄ）、８．７０（ｓ）
〔実施例２−２’〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１で得られた化合物１（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２１９万、ＭＴＸの結合率は２．２％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２０６万、ＭＴＸの結合率は２．３％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．８３（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．１４（ｍ）、２．５２（ｍ）、２．７０（ｍ）、２．９６（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１６（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、４．８７（ｄ）、４．９７（ｄ）、６．６６（ｄ）、６．８８−７．０９（ｍ）、７．７２（ｄ）、８．６９（ｓ）
〔実施例２−３〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）にテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（１０ｍｌ）を加えた懸濁液に、３−ヒドロキシ−３，４−ジヒドロ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアジン（ＨＯＯＢｔ）（０．１２５ｍｍｏｌ）及び実施例１−１で得られた化合物１（０．００８ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（２０ｍｌ）に溶解した液を添加した後、トリス［２−（２−メトキシエトキシ）エチル］アミン（０．１１８ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて攪拌した。攪拌を開始してから３０分後に１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて２０時間攪拌した。この反応液に、０．０９Ｎの水酸化ナトリウム水溶液（２２０ｍｌ）を添加し、５℃にて３．５時間攪拌した。この溶液に１Ｎの塩酸（２０ｍｌ）を添加することにより中和し、さらに塩化ナトリウム（９ｇ）を超純水（４５ｍｌ）に溶解した液を添加したのち、エタノール（６００ｍｌ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物を遠心分離により分離した。析出物を超純水（４０ｍｌ）に溶解し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。ヒアルロン酸を標準物質とするゲルろ過法により求めた分子量は約２３２万であった。また、得られた結合体のＭＴＸの結合率は、紫外吸収（２５９ｎｍ）を測定することにより算出したところ、０．６％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２１７万、ＭＴＸの結合率は０．５％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．５２（ｍ）、２．６９（ｍ）、２．９５（ｍ）、３．３４（ｂｒ．ｄ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１６（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、６．６６（ｄ）、６．８７−７．１０（ｍ）、７．７２（ｄ）、８．６９（ｓ）
〔実施例２−４〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）にテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（１０ｍｌ）を加えた懸濁液に、３−ヒドロキシ−３，４−ジヒドロ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアジン（ＨＯＯＢｔ）（０．１２５ｍｍｏｌ）及び実施例１−１で得られた化合物１（０．０１５ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（２０ｍｌ）に溶解した液を添加した後、トリス［２−（２−メトキシエトキシ）エチル］アミン（０．１１０ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて攪拌した。攪拌を開始してから３０分後に１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて２０時間攪拌した。この反応液に、０．０９Ｎの水酸化ナトリウム水溶液（２２０ｍｌ）を添加し、５℃にて３．５時間攪拌した。この溶液に１Ｎの塩酸（２０ｍｌ）を添加することにより中和し、さらに塩化ナトリウム（９ｇ）を超純水（４５ｍｌ）に溶解した液を添加したのち、エタノール（６００ｍｌ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物を遠心分離により分離した。析出物を超純水（４０ｍｌ）に溶解し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。ヒアルロン酸を標準物質とするゲルろ過法により求めた分子量は約２３２万であった。また、得られた結合体のＭＴＸの結合率は、紫外吸収（２５９ｎｍ）を測定することにより算出したところ、１．１％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２２３万、ＭＴＸの結合率は１．１％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．８４（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．１３（ｍ）、２．５２（ｍ）、２．７０（ｍ）、２．９６（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１６（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、６．６６（ｄ）、６．８８−７．０９（ｍ）、７．７２（ｄ）、８．６９（ｓ）
〔実施例２−５〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）にテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（１０ｍｌ）を加えた懸濁液に、３−ヒドロキシ−３，４−ジヒドロ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアジン（ＨＯＯＢｔ）（０．１２５ｍｍｏｌ）及び実施例１−１で得られた化合物１（０．０２０ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（２０ｍｌ）に溶解した液を添加した後、トリス［２−（２−メトキシエトキシ）エチル］アミン（０．１０５ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて攪拌した。攪拌を開始してから３０分後に１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて２０時間攪拌した。この反応液に、０．０９Ｎの水酸化ナトリウム水溶液（２２０ｍｌ）を添加し、５℃にて３．５時間攪拌した。この溶液に１Ｎの塩酸（２０ｍｌ）を添加することにより中和し、さらに塩化ナトリウム（９ｇ）を超純水（４５ｍｌ）に溶解した液を添加したのち、エタノール（６００ｍｌ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物を遠心分離により分離した。析出物を超純水（４０ｍｌ）に溶解し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。ヒアルロン酸を標準物質とするゲルろ過法により求めた分子量は約２２７万であった。また、得られた結合体のＭＴＸの結合率は、紫外吸収（２５９ｎｍ）を測定することにより算出したところ、１．４％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２０９万、ＭＴＸの結合率は１．３％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．８４（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．１３（ｍ）、２．４９（ｔ）、２．６８（ｍ）、２．９５（ｍ）、３．３６（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１６（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｄ）、４．８８（ｄ）、４．９８（ｄ）、６．６３（ｄ）、６．８7−７．１３（ｍ）、７．７４（ｄ）、８．７０（ｓ）
〔実施例２−６〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）にテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（１０ｍｌ）を加えた懸濁液に、３−ヒドロキシ−３，４−ジヒドロ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアジン（ＨＯＯＢｔ）（０．１２５ｍｍｏｌ）及び実施例１−１で得られた化合物１（０．０６３ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（２０ｍｌ）に溶解した液を添加した後、トリス［２−（２−メトキシエトキシ）エチル］アミン（０．０６３ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて攪拌した。攪拌を開始してから３０分後に１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて２０時間攪拌した。この反応液に、０．０９Ｎの水酸化ナトリウム水溶液（２２０ｍｌ）を添加し、５℃にて３．５時間攪拌した。この溶液に１Ｎの塩酸（２０ｍｌ）を添加することにより中和し、さらに塩化ナトリウム（９ｇ）を超純水（４５ｍｌ）に溶解した液を添加したのち、エタノール（６００ｍｌ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物を遠心分離により分離した。析出物を超純水（４０ｍｌ）に溶解し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。ヒアルロン酸を標準物質とするゲルろ過法により求めた分子量は約２０５万であった。また、得られた結合体のＭＴＸの結合率は、紫外吸収（２５９ｎｍ）を測定することにより算出したところ、３．９％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９１万、ＭＴＸの結合率は３．８％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．８４（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．１５（ｍ）、２．５３（ｔ）、２．７０（ｍ）、２．９６（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１６（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、４．８９（ｓ）、４．９６（ｄ）、６．６６（ｄ）、６．８７−７．１０（ｍ）、７．７２（ｄ）、８．６８（ｓ）
〔実施例２−７〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）にテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（１０ｍｌ）を加えた懸濁液に、３−ヒドロキシ−３，４−ジヒドロ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアジン（ＨＯＯＢｔ）（０．１２５ｍｍｏｌ）及び実施例１−１で得られた化合物１（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（２０ｍｌ）に溶解した液を添加した後、超純水とＴＨＦの等量混合液（１０ｍｌ）を添加し、５℃にて攪拌した。攪拌を開始してから３０分後に１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて２０時間攪拌した。この反応液に、０．０９Ｎの水酸化ナトリウム水溶液（２２０ｍｌ）を添加し、５℃にて３．５時間攪拌した。この溶液に１Ｎの塩酸（２０ｍｌ）を添加することにより中和し、さらに塩化ナトリウム（９ｇ）を超純水（４５ｍｌ）に溶解した液を添加したのち、エタノール（６００ｍｌ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物を遠心分離により分離した。析出物を超純水（４０ｍｌ）に溶解し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。ヒアルロン酸を標準物質とするゲルろ過法により求めた分子量は約１９７万であった。また、得られた結合体のＭＴＸの結合率は、紫外吸収（２５９ｎｍ）を測定することにより算出したところ、４．５％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７４万、ＭＴＸの結合率は４．４％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．８３（ｍ）、１．９３（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．１４（ｍ）、２．５３（ｔ）、２．６９（ｍ）、２．９５（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１６（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｄ）、４．８７（ｄ）、４．９５（ｄ）、６．６７（ｄ）、６．８７−７．１０（ｍ）、７．７１（ｄ）、８．６８（ｓ）
〔実施例２−８〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２で得られた化合物２（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２１１万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９８万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
〔実施例２−９〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ2ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３で得られた化合物３（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８３万、ＭＴＸの結合率は１．８％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１５５万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
〔実施例２−１０〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ8Ｈ16Ｏ2ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−４で得られた化合物４（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８９万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１６２万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
〔実施例２−１１〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ6Ｈ12Ｏ2ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−５で得られた化合物５（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９２万、ＭＴＸの結合率は１．９％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１６２万、ＭＴＸの結合率は２．０％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．７７−１．８５（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．１６−２．２４（ｍ）、２．５１（ｍ）、２．６６（ｍ）、２．９２（ｍ）、３．００（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７２（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．２０（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、６．６８（ｄ）、６．９５−７．１８（ｍ）、７．７６（ｄ）、８．７２（ｓ）
〔実施例２−１２〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ4Ｈ8ＯＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−６で得られた化合物６（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７２万、ＭＴＸの結合率は２．０％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１４９万、ＭＴＸの結合率は１．９％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．７７−１．８４（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．２０−２．２８（ｍ）、２．４９（ｍ）、２．６４（ｍ）、２．９３（ｍ）、３．００（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５２（ｂｒ．ｓ）、３．５８（ｂｒ．ｓ）、３．７３（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．２０（ｔ）、４．４７（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、４．９２（ｄ）、５．０６（ｄ）、６．６４（ｄ）、６．９４−７．１９（ｍ）、７．７７（ｄ）、８．７３（ｓ）
〔実施例２−１３〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ5Ｈ10ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−７で得られた化合物７（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２１４万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９６万、ＭＴＸの結合率は１．２％であった。
〔実施例２−１４〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−Ｌｙｓ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−８で得られた化合物８（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８９万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７２万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
〔実施例２−１５〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約８０万）と実施例１−２で得られた化合物２（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約８３万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約８０万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
〔実施例２−１６〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約８０万）にテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（１０ｍｌ）を加えた懸濁液に、３−ヒドロキシ−３，４−ジヒドロ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアジン（ＨＯＯＢｔ）（０．１２５ｍｍｏｌ）及び実施例１−２で得られた化合物２（０．００９ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（２０ｍｌ）に溶解した液を添加した後、トリス［２−（２−メトキシエトキシ）エチル］アミン（０．１１６ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて攪拌した。攪拌を開始してから３０分後に１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて２０時間攪拌した。この反応液に、０．０９Ｎの水酸化ナトリウム水溶液（２２０ｍｌ）を添加し、５℃にて３．５時間攪拌した。この溶液に１Ｎの塩酸（２０ｍｌ）を添加することにより中和し、さらに塩化ナトリウム（９ｇ）を超純水（４５ｍｌ）に溶解した液を添加したのち、エタノール（６００ｍｌ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物を遠心分離により分離した。析出物を大塚生理食塩水（４０ｍＬ）に溶解し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。ヒアルロン酸を標準物質とするゲルろ過法により求めた分子量は約８３万であった。また、得られた結合体のＭＴＸの結合率は、紫外吸収（２５９ｎｍ）を測定することにより算出したところ、０．５％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約８１万、ＭＴＸの結合率は０．５％であった。
〔実施例２−１７〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約８０万）にテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（１０ｍｌ）を加えた懸濁液に、３−ヒドロキシ−３，４−ジヒドロ−４−オキソ−１，２，３−ベンゾトリアジン（ＨＯＯＢｔ）（０．１２５ｍｍｏｌ）及び実施例１−２で得られた化合物２（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水とＴＨＦの等量混合液（２０ｍｌ）に溶解した液を添加した後、超純水とＴＨＦの等量混合液（１０ｍｌ）を添加し、５℃にて攪拌した。攪拌を開始してから３０分後に１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）（０．１２５ｍｍｏｌ）を超純水（１０ｍｌ）に溶解した液を添加し、５℃にて２０時間攪拌した。この反応液に、０．０９Ｎの水酸化ナトリウム水溶液（２２０ｍｌ）を添加し、５℃にて３．５時間攪拌した。この溶液に１Ｎの塩酸（２０ｍｌ）を添加することにより中和し、さらに塩化ナトリウム（９ｇ）を超純水（４５ｍｌ）に溶解した液を添加したのち、エタノール（６００ｍｌ）を滴下してエタノール析出を行い、析出物を遠心分離により分離した。析出物を超純水（４０ｍｌ）に溶解し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。ヒアルロン酸を標準物質とするゲルろ過法により求めた分子量は約７７万であった。また、得られた結合体のＭＴＸの結合率は、紫外吸収（２５９ｎｍ）を測定することにより算出したところ、３．４％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約７６万、ＭＴＸの結合率は３．４％であった。
〔実施例２−１８〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−９で得られた化合物９（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９９万、ＭＴＸの結合率は１．５％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８６万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．５９（ｍ）、１．７８（ｍ）、１．９０−１．９５（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．１３−２．２３（ｍ）、２．９９−３．１４（ｍ）、３．２８（ｓ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．２６（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、４．９２（ｓ）、６．９３（ｄ）、７．１３−７．２０（ｍ）、７．６６（ｄ）、８．６９（ｓ）
〔実施例２−１９〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ2ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１０で得られた化合物１０（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１４４万、ＭＴＸの結合率は１．８％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．４９（ｍ）、１．６０（ｍ）、１．７６（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．０９−２．１５（ｍ）、２．２０−２．２８（ｍ）、２．９９−３．０９（ｍ）、３．１０−３．１７（ｍ）、３．３３（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．３０（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｄ）、４．９７（ｓ）、６．９１（ｄ）、７．１３（ｍ）、７．１７−７．２１（ｍ）、７．６７（ｄ）、８．７３（ｓ）
〔実施例２−２０〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨＣ8Ｈ16Ｏ2ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１１で得られた化合物１１（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７３万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１５０万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．６４（ｍ）、１．７８（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．０９−２．１７（ｍ）、２．２４（ｍ）、３．０１（ｍ）、３．０８（ｍ）、３．１６（ｍ）、３．３４（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．３１（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、４．９７（ｓ）、６．９１（ｄ）、７．１１（ｍ）、７．１４−７．２１（ｍ）、７．６７（ｄ）、８．７２（ｓ）
〔実施例２−２１〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨＣ6Ｈ12Ｏ2ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１２で得られた化合物１２（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１５０万、ＭＴＸの結合率は２．３％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１３９万、ＭＴＸの結合率は２．３％であった。
〔実施例２−２２〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨＣ4Ｈ8ＯＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１３で得られた化合物１３（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１５６万、ＭＴＸの結合率は２．０％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１４０万、ＭＴＸの結合率は２．２％であった。
〔実施例２−２３〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｒｏ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１４で得られた化合物１４（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１６６万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１５２万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
〔実施例２−２４〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅβＡｌａ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１５で得られた化合物１５（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１５２万、ＭＴＸの結合率は１．５％であった。
〔実施例２−２５〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅβＡｌａ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１６で得られた化合物１６（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２０９万、ＭＴＸの結合率は２．３％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９８万、ＭＴＸの結合率は２．３％であった。
〔実施例２−２６〕
ＭＴＸ−α−Ｐｈｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１７で得られた化合物１７（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２１３万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７９万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．６３（ｍ）、１．７９（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．２０（ｍ）、２．２８（ｍ）、３．０８（ｍ）、３．１０−３．２０（ｍ）、３．３１（ｓ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５２（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．７２（ｂｒ．ｓ）、３．８４（ｂｒ．ｓ）、４．２８（ｔ）、４．４７（ｂｒ．ｓ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、４．９７（ｓ）、６．９４（ｄ）、７．０６（ｔ）、７．１３（ｄ）、７．６７（ｄ）、８．７３（ｓ）
〔実施例２−２７〕
ＭＴＸ−α−Ｉｌｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１８で得られた化合物１８（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９２万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１６２万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ０．８４（ｔ）、０．８９（ｄ）、１．１８（ｍ）、１．４７（ｍ）、１．７８（ｍ）、１．８３−１．９０（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．３６（ｍ）、３．２４（ｓ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．６３（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．０９（ｄ）、４．４５（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、４．９３（ｓ）、６．９２（ｄ）、７．７２（ｄ）、８．６８（ｓ）
〔実施例２−２８〕
ＭＴＸ−α−Ｉｌｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−１９で得られた化合物１９（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２３１万、ＭＴＸの結合率は２．１％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２０２万、ＭＴＸの結合率は２．１％であった。
〔実施例２−２９〕
ＭＴＸ−α−Ｇｌｕ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２０で得られた化合物２０（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２０１万、ＭＴＸの結合率は１．５％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８３万、ＭＴＸの結合率は１．５％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．５７（ｍ）、１．７７（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．２５（ｍ）、２．３７（ｔ）、３．２４（ｓ）、３．２５（ｓ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１３（ｍ）、４．２２（ｍ）、４．３６（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、４．９１（ｓ）、６．９４（ｄ）、７．７６（ｄ）、８．６６（ｓ）、８．６８（ｓ）
注：下線部分はマイナーシグナルであり、これによりα体とγ体の混合物と推定した。
〔実施例２−３０〕
ＭＴＸ−α−Ｇｌｕ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２１で得られた化合物２１（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２２６万、ＭＴＸの結合率は２．１％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２０６万、ＭＴＸの結合率は２．１％であった。
〔実施例２−３１〕
ＭＴＸ−α−Ｔｙｒ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２２で得られた化合物２２（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９０万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７６万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．６３（ｍ）、１．７７（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．２３−２．３５（ｍ）、２．９５（ｍ）、３．０３−３．２１（ｍ）、３．３４（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５８（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．２８（ｍ）、４．４７（ｂｒ．ｄ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、４．９２（ｓ）、６．５８（ｄ）、６．９４（ｄ）、７．６６（ｄ）、８．６８（ｓ）
〔実施例２−３２〕
ＭＴＸ−α−Ｔｒｐ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２３で得られた化合物２３（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８７万、ＭＴＸの結合率は１．９％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１３９万、ＭＴＸの結合率は１．９％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．５３（ｍ）、１．７４（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．０９−２．１５（ｍ）、２．４６（ｍ）、２．８５（ｍ）、３．０５（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５２（ｂｒ．ｓ）、３．５８（ｂｒ．ｓ）、３．７４（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．２７（ｍ）、４．４８（ｂｒ．ｄ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、６．８３（ｄ）、６．９９（ｓ）、７．０５（ｓ）、７．１５（ｄ）、７．４３（ｄ）、７．４９（ｓ）、８．７４（ｓ）
〔実施例２−３３〕
ＭＴＸ−α−Ｓｅｒ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２４で得られた化合物２４（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８６万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１６５万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．６１（ｍ）、１．７６（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．３８（ｔ）、２．５１（ｍ）、３．２４（ｓ）、３．２５（ｓ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５０（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．５８（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．２８（ｍ）、４．３９（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、４．９１（ｓ）、６．９３（ｄ）、７．７０（ｄ）、７．７６（ｄ）、８．６６（ｓ）、８．６８（ｓ）
注：下線部分はマイナーシグナルであり、これによりα体とγ体の混合物と推定した。
〔実施例２−３４〕
ＭＴＸ−α−Ｌｅｕ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２５で得られた化合物２５（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８９万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１４７万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ０．８４（ｄ）、０．８９（ｄ）、１．５２−１．６８（ｍ）、１．７２−１．８３（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．４５（ｔ）、３．３４（ｂｒ．ｓ）、３．５０（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７２（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．２８（ｍ）、４．４５（ｂｒ．ｄ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、４．９５（ｓ）、６．９１（ｄ）、７．７２（ｄ）、８．６９（ｓ）
〔実施例２−３５〕
ＭＴＸ−α−Ｖａｌ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２６で得られた化合物２６（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８７万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１５６万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ０．９３（ｍ）、１．７８（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．１１−２．１９（ｍ）、２．４７（ｍ）、３．２４（ｓ）、３．３４（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．６３（ｂｒ．ｓ）、３．７２（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．０２（ｄ）、４．４７（ｂｒ．ｄ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、４．９５（ｓ）、６．９１（ｄ）、７．７２（ｄ）、８．６９（ｓ）
〔実施例２−３６〕
ＭＴＸ−α−Ｈｉｓ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２７で得られた化合物２７（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９１万、ＭＴＸの結合率は１．２％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１６２万、ＭＴＸの結合率は１．２％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．７０（ｍ）、１．７９（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．２３−２．３６（ｍ）、３．１３−３．２２（ｍ）、３．２６（ｓ）、３．３４（ｂｒ．ｓ）、３．５０（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．６１（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．３３（ｔ）、４．４６（ｂｒ．ｄ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、４．９６（ｓ）、６．９２（ｄ）、７．３０（ｓ）、７．７３（ｄ）、８．５７（ｓ）、８．７０（ｓ）
〔実施例２−３７〕
ＭＴＸ−α−Ｐｒｏ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２８で得られた化合物２８（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１６７万、ＭＴＸの結合率は１．５％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１５２万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
〔実施例２−３８〕
ＭＴＸ−α−βＡｌａ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−２９で得られた化合物２９（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９１万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１４３万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．６０（ｍ）、１．６７（ｍ）、１．７９（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．４２（ｍ）、２．４７（ｍ）、３．０９（ｔ）、３．１４（ｔ）、３．３４（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７３（ｂｒ．ｓ）、３．８２（ｂｒ．ｓ）、４．４７（ｂｒ．ｓ）、４．５４（ｂｒ．ｄ）、４．９６（ｓ）、６．９２（ｄ）、７．７３（ｄ）、８．７０（ｓ）
〔実施例２−３９〕
ＭＴＸ−γ−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３０で得られた化合物３０（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２０９万、ＭＴＸの結合率は１．５％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８８万、ＭＴＸの結合率は１．５％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．５２（ｍ）、１．８１（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．１６−２．２９（ｍ）、２．６０（ｍ）、２．７６（ｍ）、２．９９（ｍ）、３．０７（ｍ）、３．１８−３．２６（ｍ）、３．３２（ｓ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５２（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．６６（ｂｒ．ｓ）、３．７３（ｂｒ．ｓ）、３．８４（ｂｒ．ｓ）、４．１５（ｔ）、４．２７（ｔ）、４．３６（ｍ）、４．４７（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｄ）、６．８６（ｄ）、６．９２−６．９９（ｍ）、７．０２−７．１６（ｍ）、７．７９（ｄ）、８．７１（ｓ）
〔実施例２−４０〕
ＭＴＸ−γ−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ6Ｈ12Ｏ2ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３１で得られた化合物３１（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８９万、ＭＴＸの結合率は２．０％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７６万、ＭＴＸの結合率は２．０％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．１５−２．２４（ｍ）、２．６０（ｍ）、２．７４−２．８３（ｍ）、３．１２−３．１９（ｍ）、３．２０−３．２３（ｍ）、３．２９（ｓ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．２１（ｔ）、４．２６（ｔ）、４．３２（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｄ）、６．８４（ｓ）、６．９３（ｄ）、７．００−７．１３（ｍ）、７．７６（ｄ）、８．６４（ｓ）
〔実施例２−４１〕
ＭＴＸ−γ−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ4Ｈ8ＯＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３２で得られた化合物３２（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９６万、ＭＴＸの結合率は２．１％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８０万、ＭＴＸの結合率は２．１％であった。
〔実施例２−４２〕
ＭＴＸ−γ−ＰｈｅＧｌｙ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３３で得られた化合物３３（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１９０万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７２万、ＭＴＸの結合率は１．５％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．６９（ｍ）、１．７９（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．１９−２．２６（ｍ）、２．２９（ｍ）、２．６６（ｍ）、２．８２（ｍ）、３．１３（ｍ）、３．２０（ｍ）、３．２９（ｓ）、３．３４（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）４．１６（ｔ）、４．３３（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、４．９４（ｄ）、６．８２（ｓ）、６．９９−７．０８（ｍ）、７．７５（ｄ）、８．６８（ｓ）
〔実施例２−４３〕
ＭＴＸ−γ−Ｐｈｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３４で得られた化合物３４（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８７万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１６５万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．４４（ｍ）、１．８０（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．３１（ｍ）、２．５３（ｍ）、２．６８（ｍ）、２．８８（ｍ）、３．０１（ｍ）、３．１３（ｍ）、３．１８（ｍ）、３．３１（ｓ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５８（ｂｒ．ｓ）、３．６３（ｂｒ．ｓ）、３．７２（ｂｒ．ｓ）、３．８４（ｂｒ．ｓ）、４．０２（ｔ）、４．３７（ｍ）、４．４７（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、４．８６（ｄ）、４．９８（ｄ）、６．７６（ｄ）、７．０２−７．０９（ｍ）、７．７８（ｄ）、８．７２（ｓ）
〔実施例２−４４〕
ＭＴＸ−γ−Ｇｌｕ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３５で得られた化合物３５（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７９万、ＭＴＸの結合率は１．６％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１４９万、ＭＴＸの結合率は１．７％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．６１−１．７１（ｍ）、１．７３−１．８８（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．２３（ｍ）、２．３２（ｔ）、２．３８−２．５５（ｍ）、３．０７（ｍ）、３．３４（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５６（ｂｒ．ｓ）、３．７３（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）４．１５（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、４．９５（ｓ）、６．９１（ｄ）、７．７０（ｄ）、８．７１（ｓ）
〔実施例２−４５〕
ＭＴＸ−α−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｄ−Ｐｈｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３６で得られた化合物３６（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１４８万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１３５万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
〔実施例２−４６〕
ＭＴＸ−γ−Ｄ−Ｐｈｅ−Ｄ−Ｐｈｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３７で得られた化合物３７（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１６０万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１４１万、ＭＴＸの結合率は１．３％であった。
〔実施例２−４７〕
ＭＴＸ−α−ＡｓｎＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３８で得られた化合物３８（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２１０万、ＭＴＸの結合率は１．３％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１７８万、ＭＴＸの結合率は１．２％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．６０（ｍ）、１．８０（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．３４（ｍ）、２．５４（ｍ）、２．６０−３．０５（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．５２（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．６４（ｂｒ．ｓ）、３．７２（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．２８（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５５（ｂｒ．ｓ）、６．６１（ｄ）、６．７７（ｔ）、６．８２−７．３６（ｍ）、７．７６（ｄ）、７．８０（ｄ）、８．６１（ｓ）、８．６４（ｓ）
注：下線部分はマイナーシグナルであり、これによりα体とγ体の混合物と推定した。
〔実施例２−４８〕
ＭＴＸ−α／γ−ＧｌｙＰｈｅＬｅｕＧｌｙ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約２３０万）と実施例１−３９で得られた化合物３９（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約２０６万、ＭＴＸの結合率は１．４％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約１８５万、ＭＴＸの結合率は１．３％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ０．７２（ｄ）、０．７７（ｄ）、０．８１（ｄ）、１．３２（ｍ）、１．５０（ｍ）、１．６７−１．８２（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．２３（ｍ）、２．３３（ｍ）、２．７５−３．０３（ｍ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５８（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１６−４．２８（ｍ）、４．４６（ｂｒ．ｓ）、４．５４（ｂｒ．ｓ）、６．８５（ｄ）、６．９２−７．０６（ｍ）、７．７５（ｄ）、７．７８（ｄ）、８．６３（ｓ）、８．６５（ｓ）
注：下線部分はマイナーシグナルであり、これによりα体とγ体の混合物と推定した。
〔実施例２−４９〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ10Ｈ20Ｏ3ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約３２万）と実施例１−２で得られた化合物２（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約３３万、ＭＴＸの結合率は１．１％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．６７（ｍ）、１．７９（ｍ）、１．８４−１．９４（ｍ）、２．０２（ｂｒ．ｓ）、２．１２−２．２０（ｍ）、２．５９（ｍ）、２．７７（ｍ）、２．９１（ｍ）、２．９９（ｍ）、３．１２−３．２５（ｍ）、３．３５（ｂｒ．ｓ）、３．４９（ｂｒ．ｓ）、３．５１（ｂｒ．ｓ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７１（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）４．１８（ｔ）、４．４５（ｂｒ．ｄ）、４．５５（ｂｒ．ｄ）、４．８８（ｄ）、４．９６（ｄ）、６．７６（ｄ）、６．９５−７．１０（ｍ）、７．７２（ｄ）、８．６８（ｓ）
〔実施例２−５０〕
ＭＴＸ−α−ＰｈｅＰｈｅ−ＮＨＣ2Ｈ4ＮＨ−ＨＡの製造
実施例２−１と同様の方法で、ヒアルロン酸ナトリウム塩（５００ｍｇ，分子量：約３４万）と実施例１−１で得られた化合物１（０．０３１ｍｍｏｌ）を反応させ、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約３４万、ＭＴＸの結合率は２．０％であった。
この水溶液を実施例２−１と同様の方法で精製し、標題のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液を得た。実施例２−１と同様の方法で求めた分子量は約３４万、ＭＴＸの結合率は１．９％であった。
1Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｄ2Ｏ）：δ１．８３（ｍ）、２．０１（ｂｒ．ｓ）、２．１２（ｍ）、２．５２（ｔ）、２．６９（ｍ）、２．９５（ｍ）、３．３４（ｂｒ．ｄ）、３．４９（ｂｒ．ｄ）、３．５７（ｂｒ．ｓ）、３．７０（ｂｒ．ｓ）、３．８３（ｂｒ．ｓ）、４．１６（ｔ）、４．４５（ｂｒ．ｄ）、４．５４（ｂｒ．ｄ）、４．８７（ｄ）、４．９６（ｄ）、６．６６（ｄ）、６．８８−７．０９（ｍ）、７．７２（ｄ）、８．６８（ｓ）
上記実施例２−１〜２−５０で得られた本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体を以下の表にまとめた。
［実験例１］
粘弾性の測定
ヒアルロン酸（分子量１９０万、８０万）と実施例２−１、２−８、２−１８、２−２７および２−２９の結合体の無菌水溶液の粘弾性を、ＣＳＬ５００型ストレス制御式レオメーター（Ｃａｒｒｉ−Ｍｅｄ社製）で、直径４ｃｍのコーンを用い、３７℃で測定した。図１のように、各結合体は分子量８０万と１９０万のヒアルロン酸の中間の粘弾性を示した。
［実験例２］
滑膜細胞増殖抑制作用
ヒト滑膜細胞（ＨＦＬＳ）を用いて、ＴＮＦ−α刺激による細胞増殖亢進に対する本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体の影響を検討した。関節リウマチ（ＲＡ）の主病巣は、滑膜組織であり、その特徴の一つとして、滑膜細胞が異常増殖して肉芽組織（パンヌス）を形成し、関節の軟骨・骨を破壊することが知られている。また、変形性関節症（ＯＡ）でも二次性の滑膜炎が見られる。ＯＡにおいては、ＲＡで見られるような滑膜細胞の著しい増殖変化はないものの、滑膜炎は膝ＯＡの特徴である関節水症や疼痛、熱感といった炎症症状の原因となる（宮坂信之ら編集、「骨・関節疾患」２００３年、朝倉書店）。従って、炎症性サイトカインであるＴＮＦ−αで亢進した滑膜細胞の増殖を阻害する化合物は、ＲＡおよびＯＡの病態進行を抑制し、その治療薬となる。
被験物質として実施例２のＨＡ−ＭＴＸ結合体の無菌水溶液（表２）を使用した。ＨＦＬＳ（ＣＡ４０４０５、Ｌｏｔ Ｎｏ．：１４１３，１４９３）はＣＥＬＬ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ ＩＮＳ．より購入して使用した。
ＨＦＬＳは９６穴プレート（Ｆａｌｃｏｎ）に５０００ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種して５％ＦＢＳ、1x Antibiotic-Antimycotic（ＧＩＢＣＯ）含有Iscove’s modified Dulbecco’s medium （ＩＭＤＭ）培地にて３時間培養した。細胞付着後、ＴＮＦ−α（最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ）、各濃度のＨＡ−ＭＴＸ結合体を添加して５日間培養した。培養終了２日前に、３７ｋＢｑ／ｗｅｌｌの［3Ｈ］−デオキシウリジン（ＭＯＲＡＶＥＫ）を加え、細胞内への［3Ｈ］−デオキシウリジン取り込み量(放射活性)をシンチレーションカウンターで測定した。細胞の回収は０．０５％トリプシン−０．２％ＥＤＴＡで細胞を剥がして行った。
各実験で測定した各被験物質の放射活性は、被験物質を添加せず培養した群の放射活性をcontrolとして、相対値(% of control)を算出した。ＨＡ−ＭＴＸ結合体のＭＴＸ濃度は、ヒアルロン酸１ｍｇ／ｍＬあたりフリーのカルボキシル基が２．４９ｘ１０-3ｍｏｌ／Ｌ（１ｇ／４０１／Ｌ：４０１はＮ−アセチルグルコサミン＋グルクロン酸の分子量）であることから、この値にＭＴＸの結合率を乗して算出した。（ＭＴＸ結合率１％のＨＡ−ＭＴＸ結合体１ｍｇ／ｍＬ場合、ＭＴＸ濃度は２．４９ｘ１０-5ｍｏｌ／Ｌとした。）得られた値を使用して4 parameter logistic 法（解析ソフトGraphPad Prism 3.02）により細胞増殖阻害活性（ＩＣ50値）を算出した。
ＨＦＬＳにおけるＨＡ−ＭＴＸ結合体のＩＣ50値を表２に示す。
表２の結果より、検討したＨＡ−ＭＴＸ結合体はいずれもＴＮＦ−α刺激によるＨＦＬＳの細胞増殖亢進を抑制する作用を有することが確認された。
［実験例３］
ｍＢＳＡ誘導単関節炎モデルに対する膝関節腫脹抑制効果
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体のｉｎ ｖｉｖｏでの滑膜炎抑制作用を、ラットmethylated bovine serum albumin （ｍＢＳＡ）誘導単関節炎モデルの膝関節腫脹の抑制効果にて評価した。本実験例で用いられたｍＢＳＡ誘導関節炎モデルは、抗原誘発関節炎モデルとして汎用されるものであり、滑膜炎を誘発することが知られている（Sven E. Andersson, et al, The Journal of Rheumatology(1998) 25: 9, 1772-7）ことから、本モデルで認められるｉｎ ｖｉｖｏにおける膝関節腫張の抑制効果は、滑膜炎症抑制作用であると考えることができる。滑膜炎をｉｎ ｖｉｖｏで抑制する本発明化合物は、滑膜炎を伴う関節疾患（ＲＡやＯＡなど）の治療薬として有用である。
動物はＬＥＷ／Ｃｒｊ系ラット（日本チャールズ・リバー、６週齢、雄）を使用した。関節炎を誘導する２１日および１４日前に、２ｍｇ／ｍＬのｍＢＳＡ（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）水溶液と等量のFreund’s complete adjuvant（Ｄｉｆｃｏ）で作製した乳濁液０．５ｍＬをラットのわき腹に皮下投与した。関節炎は２ｍｇ／ｍＬのｍＢＳＡ水溶液５０μＬを右膝関節内投与して誘導した。左膝関節は無処置で各個体のコントロールとした。被験物質（無菌水溶液）および対照薬であるヒアルロン酸は関節炎誘導７日および１日前と７日後に、５０μＬを右膝関節内投与した。
膝関節腫脹の測定は両膝関節の幅をノギスで測定して、左右差（右膝直径−左膝直径）を膝関節腫脹とした。関節炎誘導直前より２週間後まで週２回の頻度で膝関節幅を測定して、その経時的推移からＡＵＣ（Area Under the Curve の略。曲線下面積ともいう。ここでは、関節腫張の経時的曲線下の面積を示す。）を算出した。測定時ごとにＡＵＣの平均値および標準偏差を算出し、被検物質投与群とＨＡ投与群間で対応のないｔ検定を行い、危険率５％未満の場合に有意差ありと判断した。統計解析はSAS version 6.12（ＳＡＳインスティチュートジャパン）を使用した。また、各被験物質のＡＵＣはＨＡ投与群をcontrolとして、各被験物質の相対値(% of control)を算出した。
本発明の各ＨＡ−ＭＴＸ結合体の効果を上記の方法で検討した結果を表３に示す。
表３に示される結果より、今回検討したＨＡ−ＭＴＸ結合体はいずれも、ＨＡ投与群に比べ、関節炎モデルの膝関節腫脹を有意に抑制することが明らかとなった。また、ＨＡに結合するＭＴＸの結合率の影響に注目すると、ＭＴＸの結合率が０．５から４．４％（実施例１〜７）で、関節炎モデルの膝関節腫脹をＨＡ投与群に比べて有意に抑制することが示唆された。
［実験例４］
実験例３の方法に従い、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体の有用性を検証する目的で、１）実施例２−２で調製したＨＡ−ＭＴＸ結合体（無菌水溶液）の投与群、２）そのＨＡ−ＭＴＸ結合体が含有するＭＴＸと同量のＭＴＸを含む溶液の投与群、および３）その結合体が含有するのと同量のＭＴＸおよびヒアルロン酸（ＨＡ）の混合物（ＨＡ＋ＭＴＸ）の投与群の間で関節腫脹抑制作用を比較した。本試験の膝関節腫脹の経時的推移を図２に、及びそのＡＵＣを図３に示す。図２および図３に示される結果より、ＭＴＸ単体およびＭＴＸとＨＡの混合物に比べ、ＨＡ−ＭＴＸ結合体は、関節炎モデルの関節腫脹に対する著しく強い抑制作用を有することが確認された。従って、ＭＴＸとＨＡとの結合は、ＭＴＸの関節腫脹抑制作用を著しく向上させることが明らかとなった。
以上のことより、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、ＨＡには認められないｉｎ ｖｉｔｒｏでのＴＮＦ−α刺激によるヒト滑膜細胞の増殖抑制作用、ｉｎ ｖｉｖｏでの関節炎を発症するモデルの滑膜炎を軽減する作用を有することが明らかとなった。また、関節炎モデルにおいては、ＭＴＸ単独およびＨＡとＭＴＸの混合物では十分な滑膜炎の軽減作用が認められないのに対し、ＨＡ−ＭＴＸ結合体は強力な滑膜炎の軽減作用を発揮することが明らかとなった。
［実験例５］
コラーゲン関節炎モデルに対する影響
ＨＡ−ＭＴＸ結合体のｉｎ ｖｉｖｏにおける滑膜炎抑制作用を、関節リウマチ（ＲＡ）のモデルとして汎用されるラットコラーゲン関節炎モデル（金ら、「関節外科」（１９９８）、Ｖｏｌ．１７、Ｎｏ．２，１１１−２１）にて評価した。本モデルで炎症を抑制する本発明化合物は、ＲＡに代表される自己抗原誘発免疫疾患の治療に有用である。
動物はＤＡ／Ｓｌｃラット（日本エスエルシー（株）、１１週齢、メス）を使用した。ウシ II 型コラーゲン（コラーゲン技術研修会）を０．０１ｍｏｌ／Ｌ酢酸水溶液に１．５ｍｇ／ｍＬとなるように溶解して、これに等量のFreund's incomplete adjuvant（Ｄｉｆｃｏ）を加えて乳濁液を作製した。この乳濁液をラットの背部皮内４ヵ所に１ヵ所当たり約０．１ｍＬで合計０．４ｍＬ投与し、関節炎を誘発した。被験物質(無菌水溶液)および対照薬であるヒアルロン酸（ＨＡ）と生理食塩水（Ｓａｌｉｎｅ）は、感作当日より、５日に１回の割合で、５０μＬを右膝関節内にのみ投与を行った。左膝関節は無処置とした。また、病態モデルの対照として、関節炎を誘導しない動物（Normal）の右膝関節内に生理食塩水を投与した。
膝関節腫脹の変化は両膝の関節幅をノギスで測定して正常群の関節幅と比較することで観察した。関節炎誘導直前より２３日後まで、週２回程度の割合で観察した。膝関節幅の測定値については、測定時ごとに平均値および標準誤差を算出し、被験物質群とＨＡ投与群間で対応のないt検定を行い、危険率５％未満の場合に有意差ありと判断した。統計解析はSAS version 8.02（ＳＡＳインスティチュートジャパン）を使用した。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体の効果を上記の方法で検討した結果を図４に示す。
図４に示される結果より、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体はＨＡ投与群に比べ、コラーゲン関節炎の誘導により腫脹した関節幅を有意に抑制し、その関節幅の経時的推移は、正常群とほぼ同等レベルであった。また、この効果は、ＨＡ−ＭＴＸ結合体を投与した部位（右膝）においてのみ観察され、非投与部位（左膝）においては認められなかった。このように、本化合物が、投与部位に限局して、作用を発現できることが明らかとなった。
［実験例６］
コラゲナーゼ誘導関節炎（ＯＡ）モデルに対する関節腫脹抑制効果
ＨＡ−ＭＴＸ結合体のｉｎ ｖｉｖｏにおける滑膜炎抑制作用を、コラゲナーゼ誘導ＯＡモデルラットにて評価した。コラゲナーゼ誘導ＯＡモデルは、関節内にコラゲナーゼを注入することにより、軟骨組織のコラーゲンを直接消化して、関節内で炎症を誘発するモデルである。このモデルは関節軟骨変性や滑膜炎などのヒトＯＡ病態と類似した病理組織学的変化を示し、ＯＡ治療薬の評価に有用である（Takanori K, et al., Osteoarthritis and Cartilage (1998)6, 177-86）。したがって、本モデルの炎症を抑制し、かつ軟骨変性を抑制する本発明化合物はＯＡ治療薬として有用である。
動物はＳＤ／Ｃｒｊ系ラット（日本チャールズ・リバー、６週齢、雄）を使用した。１．５％ Collagenase （ＳＩＧＭＡ）溶液５０μＬを右膝関節腔内に投与して関節炎を誘導した。左膝関節は、各個体のコントロールとするために無処置にした。被験物質は関節炎誘導の７および１日前より、週１回の割合で５０μＬを右膝関節内に投与した。
膝関節腫脹の測定は、両膝関節の幅をノギスで測定して、その左右差（右膝直径−左膝直径）を求めて膝関節腫脹とした。関節炎誘導直前より２０日後まで、週２回程度の頻度で膝関節幅を測定して、その経時的推移を示すグラフのＡＵＣを算出した。測定時ごとにＡＵＣの平均値および標準誤差を算出し、被検物質投与群とＨＡ投与群間で対応のないｔ検定を行い、危険率５％未満の場合に有意差ありと判断した。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体の効果を上記の方法で検討した結果を図５と表４に示す。図５にＨＡ−ＭＴＸ結合体の典型的な関節腫脹の経時変化を示し、表４に検討した被験物質の結果を示した。
これらの結果より、今回検討したＨＡ−ＭＴＸ結合体はいずれもＨＡ投与群に比べ、コラゲナーゼ誘導関節炎モデルの関節腫脹を有意に抑制することが明らかとなった。
［実験例７］
コラゲナーゼ誘導関節炎(ＯＡ)モデルに対する関節軟骨破壊抑制効果
実験例６の冒頭に記載したように、コラゲナーゼ誘導ＯＡモデルはＯＡ治療薬の評価に有用であることが知られており、本モデルの炎症を抑制し、かつ軟骨変性を抑制する化合物はＯＡ治療薬として有用である。
動物はＳＤ／Ｃｒｊ系ラット（日本チャールズ・リバー、６週齢、雄）を使用した。１．５％ Collagenase （ＳＩＧＭＡ）溶液５０μＬを右膝関節腔内に投与して関節炎を誘導した。左膝関節は、各個体のコントロールとするため無処置にした。被験物質と対照の生理食塩水は、関節炎誘導の７および１日前より、週１回の割合で５０μＬを右膝へ関節内投与した。
膝関節軟骨の破壊の程度を評価するために、関節炎誘導後２８日目に右膝関節を採取して、下腿骨内顆部の関節軟骨の変性像を走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）にて撮影した。撮影後、盲検化を行い、各個体のＳＥＭ像から関節軟骨変性の程度に順位付けを行った。データを固定した後、盲検化を開錠して、各群の順位平均を算出した。生理食塩水投与群と被験物質投与群との間で、Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定を行い、危険率５％未満を有意とした。統計解析はSAS version 8.02（ＳＡＳインスティチュートジャパン）を使用した。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体の効果を上記の方法で検討した結果を図６に示す。
図６に示される結果より、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、生理食塩水投与群に比べ、コラゲナーゼ誘導ＯＡモデルの軟骨変性を有意に抑制した。この結果より、ＨＡ−ＭＴＸ結合体が関節炎モデルの関節腫脹のみならず、関節軟骨の破壊をも抑制できることが明らかとなった。したがって、本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体は、関節軟骨変性あるいは関節軟骨欠損を伴う関節疾患の治療に有用であり得る。
本発明のＨＡ−ＭＴＸ結合体により、関節注入剤としてのＨＡの側面を持ちながら、ＭＴＸの滑膜炎抑制作用を投与関節内でのみ安全に発現させることができる、従来にない効果を有する、優れた関節疾患治療薬が提供される。

Claims (8)

  1. ヒアルロン酸、ヒアルロン酸誘導体またはそれらの塩のカルボキシル基に、１〜８個のアミノ酸からなるペプチド鎖を含有するリンカーを介してメトトレキサートが結合した、ヒアルロン酸−メトトレキサート結合体であって、当該ペプチド鎖を含有するリンカーおよび当該リンカーに結合したメトトレキサートが、式（Ｉ’）または（ＩＩ’）：
    ［式中、Ｒ １ およびＲ ２ はそれぞれ独立に、ヒドロキシ基、アミノ基、Ｃ １−６ アルコキシ基、Ｃ １−６ アルキルアミノ基、またはジ−Ｃ １−６ アルキルアミノ基であり；
    Ｌは、式（Ｘ）
    （式中、Ｑ １ は結合する−ＮＨ−と一緒になって１〜８個のアミノ酸からなるペプチド鎖を形成し、当該ペプチド鎖に含まれるアミノ酸の各残基は、独立に、Ｃ １−６ アルキル基、Ｃ １−６ アルキルカルボニル基、Ｃ １−６ アルコキシカルボニル基、ホルミル基、Ｃ １−６ アルキルスルホニル基、およびＣ ６−１０ アリールスルホニル基からなる群から選択される、１個以上の基により置換または保護されていてもよく、当該ペプチド鎖に含まれる各アミド結合は、独立に１個以上のＣ １−６ アルキル基および／またはＣ １−６ アルキルカルボニル基で窒素原子上を置換されていてもよく、当該残基に含まれる各カルボキシル基は、独立に１または２個のＣ １−６ アルキル基で置換されていてもよいアミド基に変換されていてもよく；
    Ｒ １１ およびＲ １２ はそれぞれ独立に水素原子またはＣ １−６ アルキル基であり；
    Ｑ ２ はＣ ２−２０ アルキレンであり、当該アルキレンは１〜５個の酸素原子が挿入されていてもよく；および
    ［ＨＡ］はヒアルロン酸、ヒアルロン酸誘導体またはそれらの塩との結合位置を表し、当該リンカーは当該ヒアルロン酸、ヒアルロン酸誘導体またはそれらの塩に含まれるカルボキシル基とアミド結合を形成する。）で表されるリンカーである。］
    で表される、ヒアルロン酸−メトトレキサート結合体。
  2. ヒアルロン酸の総カルボキシル基に対するメトトレキサートの結合率が０．５％〜４．５％である、請求項１に記載のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体。
  3. ヒアルロン酸の分子量が６０万ダルトン以上である請求項１又は２に記載のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体。
  4. 請求項１〜３のいずれか１項に記載のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体を有効成分として含有する医薬組成物。
  5. 請求項１〜３のいずれか１項に記載のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体を有効成分として含有する関節疾患治療薬。
  6. 関節局所投与製剤である請求項５記載の関節疾患治療薬。
  7. 式（Ｖａ）または（Ｖｂ）：
    ［式中、Ｒ１およびＲ２はそれぞれ独立に、ヒドロキシ基、アミノ基、Ｃ１−６アルコキシ基、Ｃ１−６アルキルアミノ基、またはジ−Ｃ１−６アルキルアミノ基であり；
    Ｌ１は、式（Ｘ’）
    （式中、Ｑ１は結合する−ＮＨ−と一緒になって１〜８個のアミノ酸からなるペプチド鎖を形成し、当該ペプチド鎖に含まれるアミノ酸の各残基は、独立に、Ｃ１−６アルキル基、Ｃ１−６アルキルカルボニル基、Ｃ１−６アルコキシカルボニル基、ホルミル基、Ｃ１−６アルキルスルホニル基、およびＣ６−１０アリールスルホニル基からなる群から選択される、１個以上の基により置換または保護されていてもよく、当該ペプチド鎖に含まれる各アミド結合は、独立に１個以上のＣ１−６アルキル基および／またはＣ１−６アルキルカルボニル基で窒素原子上を置換されていてもよく、当該残基に含まれる各カルボキシル基は、独立に１または２個のＣ１−６アルキルで置換されていてもよいアミド基に変換されていてもよく；
    Ｒ１１およびＲ１２はそれぞれ独立に水素原子またはＣ１−６アルキルであり；
    Ｑ２はＣ２−２０アルキレンであり、当該アルキレンは１〜５個の酸素原子が挿入されていてもよい。）である。］
    の化合物。
  8. 以下の式（Ｖａ）または（Ｖｂ）：
    ［式中、Ｒ １ およびＲ ２ はそれぞれ独立に、ヒドロキシ基、アミノ基、Ｃ １−６ アルコキシ基、Ｃ １−６ アルキルアミノ基、またはジ−Ｃ １−６ アルキルアミノ基であり；
    Ｌ １ は、式（Ｘ’）
    （式中、Ｑ １ は結合する−ＮＨ−と一緒になって１〜８個のアミノ酸からなるペプチド鎖を形成し、当該ペプチド鎖に含まれるアミノ酸の各残基は、独立に、Ｃ １−６ アルキル基、Ｃ １−６ アルキルカルボニル基、Ｃ １−６ アルコキシカルボニル基、ホルミル基、Ｃ １−６ アルキルスルホニル基、およびＣ ６−１０ アリールスルホニル基からなる群から選択される、１個以上の基により置換または保護されていてもよく、当該ペプチド鎖に含まれる各アミド結合は、独立に１個以上のＣ １−６ アルキル基および／またはＣ １−６ アルキルカルボニル基で窒素原子上を置換されていてもよく、当該残基に含まれる各カルボキシル基は、独立に１または２個のＣ １−６ アルキルで置換されていてもよいアミド基に変換されていてもよく；
    Ｒ １１ およびＲ １２ はそれぞれ独立に水素原子またはＣ １−６ アルキルであり；
    Ｑ ２ はＣ ２−２０ アルキレンであり、当該アルキレンは１〜５個の酸素原子が挿入されていてもよい。）である。］の化合物をヒアルロン酸、ヒアルロン酸誘導体またはそれらの塩と反応させ、当該ヒアルロン酸、ヒアルロン酸誘導体またはそれらの塩のカルボキシル基をＮ−置換アミド基に変換する工程を含む、請求項１〜３のいずれか１項に記載のヒアルロン酸−メトトレキサート結合体の製造方法。
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