JP3828570B2 - パピローマウイルスワクチン - Google Patents
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Description
本発明は、パピローマウイルス、特に、かかるウイルスによって引き起こされる感染の治療において有効である得る抗原およびワクチンに関する。
発明の背景
パピローマウイルス感染は、ヒトにおいてのみならず、ヒツジ、テヌ、ウシ、コヨーテ、オオカミ、オポッサム、シカ、カモシカ、ビーバー、カメ、クマ、トカゲ類、サル、チンパンジー、ジラフ、アフリカ産大カモシカ、ゾウ、クジラ、ネコ、ブタ、ネズミ(gerbil)、オオシカ、ヤク、イルカ、オウム、ヤギ、サイ、ラクダ、レミング、シァモア、スカンク、フクログマ、アナグマ、キツネザル、カリブー、アルマジロ、イモリおよびヘビのごとき動物においても知られている(例えば、ジェイ・ピイ・サンドバーグ(J P Sundberg)による「動物におけるパピローマウイルス感染(Papilloma Virus Infections in Animals)」の「パピローマウイルスおよびヒトの病気(Papilloma viruses and Human Disease)」に記載、ケイ・シルヤネン、エル・ギスマンおよびエル・ジイ・コス(K Syrjanen, L Gissman and L G Koss)編、シュブリンゲル・フェアラーク(Springer Verlag)1987参照))。
また、パピローマウイルスは、DNA配列の相同性に応じてタイプ1〜56に分けられるヒト・パピローマウイルス(HPV)のごときいくつかの異なる群に包含されることも知られている(例えば、エイチ・フィスター(H Pfister)によって編集され、シイアールシイ・プレス・インコーポレイテッド(CRC Press Inc)によって発行された「パピローマウイルスおよびヒト癌(Papilloma viruses and Human Cancer)」)。HPVの臨床病理学的グループ分けおよびそれが最も頻繁に関連し得る障害の悪性の可能性は以下のとおり分けられる。
第1群には、良性足底イボを引き起こすタイプ1および4、良性尋常性ユウゼイを引き起こすタイプ2、26、28および29、良性偏平イボを引き起こすタイプ3、10および27ならびにブッチャーズ(butcher's)ユウゼイを引き起こすタイプ7がリストされ得る。感染のこの第1の群は、正常なまたは免疫適格個体で起こる。
免疫無防備個体に関する第2群には、高度に悪性の斑状病変(macular lesion)を引き起こすタイプ5および8、良性または稀には悪性である斑状ももしくは偏平病変を引き起こすタイプ9、12、14、15、17、19−25、36および46−50がリストされ得る。さもなければ、これらの斑状病変は、イボ状表皮異形成(EV)として知られている。
特に性器に感染する第3群には、稀に悪性であるコンジロームを引き起こすタイプ6、11、34および39、41−44、および51−55、良性病巣上皮肥厚を引き起こすタイプ13および32、上皮形成異常およびその他丘疹症を含めたかなりの程度の病変を引き起こすタイプ16および18、中程度の悪性可能性を有するコンジロームを引き起こすタイプ30、31、33、35、45および56がリストされ得る。該コンジロームは、ほとんど、肛門性器管、特に頸部に出現する。タイプ16および18は、頸部、膣、外陰部および管部のin situおよび侵入性癌腫の大多数と関連する。また、コンジロームはアエロダイジェスティブ(aerodigestive)管で起こり得る。
特に、HPV16は、尿生殖器管の前悪性および悪性疾患に関連し、特に、頸部の癌腫に関連する(ドゥルスト(Durst)ら、PNAS 80、3812−3815、1983;ギスマン(Gissman)ら、ジャーナル・オブ・インベスティガティブ・デルマトロジー(J. Invest. Dermatol.)83 365−285、1984)。現在HPV16の中和における液性応答の役割についての情報はない。
HPV16感染を持つ患者の血清中のHPV融合蛋白(ジェニソン(Jenison)ら、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)65 1208−1218、1990;
インターナショナル・ジャーナル・オブ・キャンサー(Int. J. Cancer)48 682−688、1991)および合成HPV16L1ペプチド(ディルナー(Dillner)ら、インターナショナル・ジャーナル・オブ・キャンサー(Int. J. Cancer)45 529−535、1990)に対する抗体の検出により、これらの技術によって同定されたHPV 16 L1−特異的抗体を有する患者はほとんどいなかったにも拘わらず、HPVのキャプシド蛋白内にBエピトープがあることが確認される。in vitroにてのHPV16増殖についての系はなく、ヒト性器病巣はHPV16ビリオンをほとんど産生せず;従って、免疫学的研究用にHPV16粒子は入手できなかった。
また、動物パピローマウイルスは、ウシ・パピローマウイルス(BPV)および、特に、DNA配列の相同性によっても区別されるタイプBPV1、BPV2、BPV3、BPV4、BPV5およびBPV6を包含し得る。一般に、他の動物パピローマウイルスは、シカ、ウマ、ウサギ、イヌ、囓歯類および鳥類に感染する。パピローマウイルスは、8つまでの初期遺伝子および2つの後期遺伝子をコードする小さなDNAウイルスである。(レビューについては、ランカスターおよびジェンソン(Lancaster and Jenson)、1987、キャンサー・メタスタシス・レビューズ(Cancer Metast. Rev.)6653−6664頁;およびフィスター(Pfister)1987、アドバーンシズ・イン・キャンサー・リサーチズ(Adv. Cancer Res.)48、113−147参照)。後期遺伝子の組織は前期遺伝子よりも単純である。後期遺伝子L1およびL2は、ほとんどの場合、相互にわずかに重複する。推定L2蛋白、特にC−末端の10の塩基性アミノ酸の配列は、異なるパピローマウイルス間で高度に保存されている。中央部における広いドメインは、小さいクラスターの類似性のみを明らかにする。しかしながら、L1ORFは、すべての公知ケースにおいて、変化なく保存されているようどある。(シルヤネン(Syrjanen)ら、前掲、参照)。アミノ酸配列の相同性は、HPV1a、HPV6b、BPV1およびCRPV(コトンテールウサギ(cotton tail rabbit)・パピローマウイルス)の間で比較して、50%に達する。
パピローマウイルス感染に関する免疫療法に関しては、イボおよび上皮病変の従前の治療方法は、苦痛および外傷となり得る外科手術の使用を含むものであり、傷を残し、再感染が起こりかねない危険をしばしば伴うものであった。また、化学品での治療も使用されてきた。通常の治療剤はサリチル酸であり、これはチンキおよびプラスター中の10%ないし40%の範囲の強さの主成分である。また、3%ないし20%の強さのホルマリンも提案されている。寒冷療法は皮膚のイボの治療に使用されてきた。治療剤としてのグルテルアルデヒドもまた使用されてきた。ポドフィリン(podophyllin)もまた種々の成功度をもって皮膚のイボおよび肛門性器コンジロームに使用されてきた。肛門性器コンジロームに使用されてきた外科手術のタイプは、外科的切除、冷凍外科およびレーザー外科を含むものであった。また、インターフェロンの使用も提案されてきた(例えば、シルヤネン(Syrjanen)ら、前掲、参照)。
ウシ・パピローマウイルス(BPV)のL1蛋白に対する抗体は、ウイルス中和活性(ピラチンスキー(Pilacinski)ら、1986)を有し、HPV11ビリオンは特異的抗血清(クリステンセンおよびクレイダー(Christensen and Kreider)、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)64 3151−3156、1990)によるin vitroモデルで不活化できる。また、HPV1−誘発皮膚イボの自然発生的退行は、イボ蛋白に対する液性免疫応答の増大に関連するといういくらかの証拠もある(キルヒナー(Kirchner)、プログ・メド・バイロル(Prog. Med. Virol.)33 1−41、1986)。
また、ワクチンも提案されており、通常の成功を収めている。自原性腫瘍ホモジネートを含有するワクチンを使用することが提案されている[アブカリアン(Abcarian)ら、ジャーナル・オブ・サージカル・リサーチ(J. Surg. Res.)22:231−236(1977)、ディジージス・オブ・コロン・アンド・レクタム(Dis Colon Rectum)25:648−51(1982)、ディジージズ・オブ・コロン・アンド・レクタム(Dis Colon Rectum)19:237−244(1976)]。しかしながら、最近、ウイルスDNAの可能な腫瘍性効果のため、もはや自原性ワクチンで患者を治療すべきでないということが提唱されている(ブンネイ(Bunney)、1986、ブリティッシュ・メディカル・ジャーナル(Br. Med. J.)293、1045−1047)。
遺伝子工学により作成されるワクチンの生産に関しては、この事項は、フィスター[(Pfister)(1990)、前掲]で考察されており、異なるパピローマウイルスタイプの体液過剰のため、効果的なワクチンを得るのが困難なようである。しかしながら、フィスター(Pfister)は、いわゆる初期蛋白(すなわち、E1、E2、E3、E4、E5、E6、E7またはE8)に注意が向けられるべきと指摘している。なぜならば、これらの蛋白は、上方表皮層で発現される構造蛋白とは対照的に、イボ感染の増殖する基底細胞で合成されるようである。従って、フィスター(Pfister)(1990)によると、ウイルスキャプシド蛋白はワクチンにおける使用では限られているようである。真核細胞におけるパピローマウイルス初期蛋白についてのin vitroテスト系での組換えワクシニアウイルスの使用もまたフィスター(Pfister)(1990)で考察されている。これは、パピローマウイルス蛋白を発現する遺伝的に修飾したワクシニアウイルス、あるいはin vitroにてワクシニア組換体で感染させたまたは他の発現ベクターでトランスフェクトしたパラホルムアルデヒド固定自己由来細胞の表面で発現する遺伝的に修飾したワクシニアウイルスからなる生ワクチンの形態をとり得る。フィスター(Pfister)(1990)で考察されたワクチン開発についてのもう1つの戦略は、グリコシドQuil Aの免疫刺激複合体を用いるものである。
成功した予防ワクチン接種についてのデータは、ウシ線維乳頭腫のウシ線維乳頭腫ホモゲナイズしたホモジネートについてのみ存在し、それは限定的な免疫性を提供することが示されている(オルソン(Olson)ら、ジャーナル・オブ・アメリカン・ベテリナリ・メディカル・アソーシエーション(J. Am. Vet. Med. Assoc.)135、499(1959)、キャンサー・リサーチ(Cancer Res.)22 463(1962))。遺伝子工学的に作成したL1融合蛋白(ピラチンスキー(Pilacinski)ら、UCLAシンポジウム、モレキュラー・アンド・セリュラー・バイオロジー・ニュー・シリーズ(Molecular and Cellular Biology New Series)Vol32、パピローマ・ヴィルシズ・モレキュラー・アンド・クリニカル・アスペクツ(Papilloma Viruses Molecular and Clinical Apects)、アラン・アール・リス(Alan R Liss)ニューヨーク、1985、257)を含むワクチンもウシで使用されてきたが、ヒトでは成功しなかった(バルトホールド(Barthold)ら、ジャーナル・オブ・アメリカン・ベテリナリ・メディカル・アソーシエーション(J. Am. Vet. Med. Assoc.)165、276、1974)。フィスター(Pfister)(1990)において、キャプシド蛋白ワクチンの使用によるHPV感染の可能な予防についての証拠は現在ないが、抗腫瘍細胞免疫性の誘導は可能なようであると述べられている。
L1およびL2遺伝子はパピローマウイルス感染の予防および治療用のワクチンならびに診断で用いる免疫原およびパピローマウイルスの検出の基礎であった(国際出願WO8605816およびWO8303623)。しかしながら、これらのワクチンの商業的用法は行われていないようである。
発明の概要
従って、本発明の目的は、診断剤ならびにパピローマウイルス感染で用いるワクチンの成分の形成で有用であり得るウイルス様粒子(LVP)を提供することにある。
従って、1の態様において本発明は、
(i)パピローマウイルスL1蛋白またはパピローマウイルスL1蛋白およびパピローマウイルスL2蛋白の組合せを各々コードする1種またはそれを超える組換えDNA分子を構築し;次いで
(ii)ウイルス様粒子(VLP)が、L1またはL1およびL2蛋白の組合せの発現の後に細胞内で生産されるように、該1種またはそれを超える組換えDNA分子で適当な宿主細胞をトランスフェクトする工程よりなるパピローマウイルス様粒子(VLP)の生産方法を含む。
もう1つの態様において本発明は、適当なアジュバントと組み合わせたパピローマウイルスVLPを含有するワクチンを含む。
工程(i)に関しては、いくらかのパピローマウイルスのVLPを形成するのにパピローマウイルスL1蛋白のみ要する。適当には、BVP1、HPV11およびHPV6bを含めたHPV6のVLPを形成するのに、L1蛋白のみが必要である。しかしながら、L1およびL2蛋白を共に含有するBVP1、HPV11またはHPV6bに関しては、VLPが形成され得る。HPV16のごとき他のパピローマウイルスのVLPの形成には、L1およびL2蛋白が共に必要である。さらに、L1およびL2遺伝子は同一のDNA組換え分子または異なるDNA組換え分子に包含させ得ることが理解されるであろう。
好ましくは、組換えDNA分子は、宿主細胞をトランスフェクトし得る組換えウイルスに含有される。この目的で使用できる適当なウイルスは、バクロウイルス、ワクシニア、シンドビスウイルス、SV40、センダイウイルス、アデノウイルス、レトロウイルスまたはポックスウイルスを包含する。適当な宿主細胞は、前記ウイルスに適合する宿主を包含し、これらはスポドプテラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda)のごとき昆虫細胞、CHO細胞、ニワトリ胚線維芽細胞、BHK細胞、ヒトSW13細胞、ショウジョウバエ、アエデス・アルボピクタス(Aedes albopictus)由来のカ細胞またはサル上皮細胞を包含する。また、他の真核細胞は酵母細胞または他の哺乳動物細胞を含み得ることは認識されるであろう。
それにより、L1蛋白およびL2蛋白が、後記にて考察する適当に設計したプライマーを用いてPCR増幅によって増幅されるパピローマウイルスゲノムの入手源から得られたDNA組換え分子が適当である。好ましくは、L1蛋白をコードする遺伝子を、適当なプロモーターを含有するプラスミドに挿入し、該L1蛋白およびプロモーターを含有するDNA断片を、組換えDNA分子を構成し得る一次プラスミドに組み込み、これを前記したごとく組換えウイルスベクターに挿入できる。
L2蛋白をコードする遺伝子もまた適当なプロモーターに連結でき、好ましくは、L2遺伝子およびプロモーターを組み込んだDNA断片を一次プラスミドに挿入して、二重組換えプラスミドまたは二次プラスミドが得られ、このプラスミドもまた前記したごとく組換えウイルスベクターに挿入して、二重組換えウイルスベクターが得られる。
しかしながら、また、本発明は、一次プラスミドおよび/または二次プラスミドが適当な宿主細胞を感染させて、適当な実験条件下でL1蛋白を含有するVLPまたはL1およびL2蛋白を含有するVLPが得られる具体例も含む。後者のVLPは、L2蛋白が天然感染において免疫優性であるので、パピローマウイルス特異的ワクチンについて理想的な免疫原である。
他の適当なDNA組換え分子はコスミドならびに組換えウイルスを包含する。適当な発現系はイー・コリおよびいずれかのプラスミドもしくはコスミド発現ベクターを含めた原核細胞発現系、あるいは組換えウイルスベクターと組み合わせた前記宿主細胞または酵母細胞および酵母プラスミドを含めた真核細胞系を包含する。
L1またはL1およびL2を共にコードする遺伝子を組み込んだプラスミドを用いる状況、およびかかるプラスミドがVLPの生産のために適当な宿主を感染させ得る状況では、かかるプラスミドはVLP構造蛋白の発現を促進するための適当なプロモーターも含有すべきであり、また関連するプロモーターと関係のあるポリメラーゼも利用し得る。しかしながら、この状況においては、VLPは特別の実験条件下で得られるにすぎない。
L1およびL2遺伝子は、哺乳動物またはウイルスのポリアデニレーションシグナルで、いずれの哺乳動物またはウイルスプロモーターもオフとし得る。好ましくは、L1およびL2遺伝子は、適当と考えられる初期プロモーターまたは後記プロモーターであり得るいずれのワクシニアウイルスプロモーターからも転写される。かかるプロモーターのリストは、ダビシオンおよびモス(Davision and Moss)(1989)、ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー(J. Mol. Biol.)210 749−769および(1989)、ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー(J. Mol. Biol.)210 771−784に記載されている。
行った実験において、L1遺伝子はワクシニア4bプロモーターの下流に位置させ、L2遺伝子は合成ワクシニア28k後期プロモーターの下流に位置させる。宿主細胞はサル上皮細胞である。
VLPはいずれかの適当な精製手段によってトランスフェクトした細胞から得ることができる。VLPはISCOM、ミョウバン、フロイントの不完全もしくは完全アジュバント、Quil Aおよびバンセロウ・エス[(Vanselow S.)(1987)、例えばベテリナリ・ブレチン(Vet. Bull.)57 881−896]に記載されている他のサポニンもしくは他のアジュバントと組み合わせることができる。
添付図面に例示されている本発明の種々の好ましい具体例を参照されたし。これらの好ましい具体例では、特別のパピローマウイルス、VLPおよびDNA組換え分子の特別の構築は例として挙げられていることに注意すべきである。
図面の簡単な記載
図1は、HPV16組換えワクシニアウイルスを構築するために用いるプラスミドの模式図である。
図2Aは、ワクシニアウイルスで感染したCV−1細胞における組換えHPV16 L1のサザーンブロット分析である。
図3は、組換えワクシニアウイルスで感染させたCV−1細胞のノーザンブロット分析である。
図4Aおよび4Bは、組換えワクシニアウイルスで感染させたCV−1からのHPVウイルス様粒子の電子顕微鏡写真である。
図5は、HPV16の空のキャプシドのCsCl平衡密度勾配沈降を示す。
図6は、精製したウイルス粒子におけるL1蛋白のグリコシル化を示す。
図7は、L1をコードするプラスミドpLC200ならびにL1およびL2をコードするpLC201の構築の流れ図である。
図8は、マウス血清のバクロウイルス組換えL1蛋白との反応性のウェスタンブロット分析である。
図9および10は、合成HPV16キャプシドで免疫したBLAB/c、C57B1/6およびCBAマウスからの血清、ならびにプールしたCFA免疫化対照血清についてのマッピング結果を示す。
図11および11Aは、HPV16 L1分子の重複する一連のペプチドとの、L1に特異的な2つのMAbの反応性を示す。
図11Bは、HPV16 L1の抗原性指標の予測を示す。
図12は、HPV16 L1のエピトープマップを示す。
図13Aは、免疫化で用いる合成HPV16 VLPを示す。
図13Bは、ウェスタンブロットによる、抗HPV16 L2抗血清との、精製したVLPの反応性を示す。
図13Cは、BPV1との関係における組換えワクシニアウイルスを構築するのに用いるプラスミドを示す。
図14Aおよび14Bは、野生型および組換えワクシニアウイルスで感染させたCV−1細胞におけるBPV1 L1およびL2発現の分析を示す。
図15Aおよび15Bは、組換えワクシニアウイルスで感染させた細胞から得られたBPV1キャプシドの電子顕微鏡写真を示す。
実施例1:HPV16由来のVLP
第2のATGからのHPV−16 L1遺伝子(nt5637)を、以下のプライマー:
を用い、(エル・ギスマン(L. Gissmann)によって提供された)pHPV16からのポリメラーゼ鎖反応によって増幅させた。
最初のメチオニンコドンおよび停止コドンは下線によって示し、BglII部位はサブクローニングを容易にするために含ませた。増幅させた1527bp断片をフェノールで抽出し、1%アガロースゲル電気泳動によって精製した。
BglIIでの消化の後、L1遺伝子を、強力なワクシニアウイルスプロモーター(4b)を含有するPK19プラスミド(ケント(Kent)、1988、Ph.D.論文、ケンブリッジ大学)のBamHI部位にサブクローンした。得られたプラスミドを配列決定し(サンガー(Sanger)ら、1977、プロシーディングズ・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンシズ(Proc. Natl. Acad. Sci.)USA 74、5463−5467)、MluIおよびSst1での消化によって、4bプロモーターに連結したHPV16 L1遺伝子を含有する断片を調製するのに使用した。この断片をT4 DNAポリメラーゼで平滑末端化し、ワクシニアウイルスのB24R遺伝子(コットワルおよびモス(Kotwal and Moss)、1989、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)63、600−606;スミス(Smith)ら、1989、ジャーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジー(J. Gen. Virol.)70、2333−2343)、イー・コリgpt遺伝子(ファルクナーおよびモス(Falkner and Moss)、1988、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)64、1849−1854;ボイルおよびクパール(Boyle and Coupar)、1988、ジーン(Gene)65、123−128)およびプラスミドpLC200を生産するための多重クローニング部位を含有する、ワクシニア中間体ベクターpLC1のBamHIにクローンした。
HPV16 L2遺伝子は、Acc1でpHPV16を部分消化して断片(4138nt−5668nt)を得、これをクレノウで満たし、合成BamH1リンカーに連結することによって調製した。このL2断片を、合成ワクシニア28K後期プロモーターを有するp480なるプラスミドに由来し、いくらか修飾した(デイビソンおよびモス(Davison and Moss)、ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー(J. Mol. Biol.)210、771−784)のBamHI部位にクローンした。プロモーターの配列は以下の通りである。
後期プロモーターのモチーフには下線を施した。28Kプロモーターに連結したL2遺伝子を含有する断片をSstI/SalIでの消化によって単離し、T4 DNAポリメラーゼによって平滑末端化し、次いで、pLC200のSstIおよびSalI部位にクローンしてpLC201を得た(図1)。
図1において、HPV16 L1、L2(中空の箱形)はワクシニア後期プロモーター(塗り潰した箱形)の制御下にある。イー・コリ(E. coli)gpt遺伝子(陰影を付けた箱形)は選択マーカーとして用いる。同種組換えのためのフランキング配列。転写の方向は矢印で示す。
次いで、pLC201プラスミドを用いて、従前に記載されているごとくに(マケット(Mackett)ら、1984、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)、49、857−864)組換えワクシニアウイルスを構築した。ミコフェノール酸、キサンチン、およびヒポキサンチンの存在下、プラークアッセイによって、組換えウイルスpLC201VVおよびpLC202VVを選択した(ファルクナーおよびモス(Falkner and Moss)、1988)。HPV16L1、HPV16L2を発現する組換えワクシニアウイルス(VV)を調製し、従前に記載されているごとくに用いた(ゾウ(Zhou)ら、1990、ジャーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジー(J. Gen. Virol.)、81、2185−2190)。
組換えプラスミドpLC201は、1992年3月27日に、米国、マジソン州20852、ロックビル(Rockville)、パークローン・ドライブ(Parklawn Drive)12301番地、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションに寄託し、受託番号75226が付与された。
組換えワクシニアウイルスpLC201VVは、1992年4月3日に、米国、マジソン州20852、ロックビル(Rockville)、パークローン・ドライブ(Parklawn Drive)12301番地、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションに寄託し、受託番号VR2371が付与された。
ウイルス様粒子の精製
組換えウイルスpLC201VVで感染させたCV−1細胞を、感染後32時間に、10mMトリス(pH9.0)中に収穫し、ダウンス(Dounce)のホモゲナイザーでホモジナイズした。ホモジナイズ物を2000gでの遠心によって清澄化して、細胞夾雑物を除去し、30%(wt/vol)ショ糖クッションに重ねた。SW38ローター中、110,000gにての90分間遠心によって形成されたペレットを10mMトリス、pH9.0に懸濁し、20−60%不連続ショ糖勾配に重ねた。100,000gでの18時間の遠心の後、0.25mlの10の同等の画分を収集した。試料を0.6mlエタノールと混合した。4℃における12000gでの20分間の遠心の後に得られたペレットをさらに分析のために収集した。ウイルス様粒子の密度を測定するため、平衡密度勾配沈降をCsCl(1.30g/ml)で行った。125,000×gでの20時間の遠心の後、0.25mlの11の画分を収集した。各画分の密度を測定し、各々を透過型電子顕微鏡によってウイルス様粒子につき調べた。
図2Aにおいて、細胞を、wt VV(レーン1)およびpLC201VV(レーン2)で、10pfu/細胞にて感染させ、感染48時間後に収穫した。L1蛋白はHPV16 L1特異的MAb Camvir 1で検出した。57kDa L1蛋白は矢印によって示す。すべての3つのレーンにおける、Camvir 1の該35kDa蛋白への結合は非特異的である。
図3において、HPV蛋白E1およびE4をコードする遺伝子ならびにHPV16 L1およびL2をコードする遺伝子を組み込んだpLC201VV(レーン2)、pLC202VV(レーン3)またはwt VV(レーン4)で感染させた細胞から抽出したRNAを1.2%ホルムアルデヒド−アガロースゲル上で解像した。RNAをナイロン膜に移し、32P−標識化L2プローブとハイブリダイズさせた。ホルムアルデヒド−処理したラムダDNA−HindIII切断マーカーを示す(レーン1)。
電子顕微鏡
組換えワクシニアウイルスで感染させたCV−1細胞を、0.1Mカコジル酸ナトリウム緩衝液中の3%(vol/vo/)グルタルアルデヒドで固定し、1%四酸化オスミウムで後固定し、グレード物のアルコールで脱水し、エポキシ樹脂に埋め込んだ。薄い切片を切り出し、酢酸ウラニルおよびクエン酸鉛で染色した。ショ糖勾配からの画分をEMグリッド上に乾燥し、1%(wt/vol)リンタングステン酸(pH7.0)で染色した。JEOL 1200Ex透過型電子顕微鏡を用い、画分を調べた。
図4Aでは、pLC201VVで32時間にて感染させたCV−1細胞を示す。CV−1核において、ほぼ40nm直径の粒子(矢印)が頻繁に見い出された。棒線は100nmに対応する。
図4Bでは、ショ糖勾配の画分5を示す。見た所、キャップソメアの規則的な配列からなるパピローマウイルス様粒子が観察された(矢印)。棒線は50nmに対応する。
HPV ORF産物の分析
HPV16 L1の発現は免疫沈降およびイムノブロットによって分析した。免疫沈降については、35Sで代謝的に標識した組換えVV感染CV−1細胞を、RIPA緩衝液0.1%SDS、1%トリトンX−100、1%デオキシコール酸ナトリウム、150mM NaCl、0.5μg/mlアプロチニン、10mMトリス−HCl、pH7.4中で溶解させた。L1特異的MAb Camvir 1(マクリーン(Mclean)ら、1990、ジャーナル・オブ・クリニカル・パソロジー(J. Clin. Pathol.))および125I抗−マウスIgG(アメルスハム(Amersham))を用いる、部分的に精製したウイルス様粒子のイムノブロット分析を、2−メルカプトエタノールを含有する2×SDSゲル負荷緩衝液に可溶化した試料を用いて、従前に記載されているごとくに行った。HPV16 L2遺伝子発現の分析は図13Bに示す。N−グリコシル化の分析については、部分的に精製したウイルス様粒子を100μlの緩衝液(0.25M酢酸ナトリウム、pH6.0、20mM EDTAおよび10mM 2−メルカプトエタノール)まで採り、イムノブロッティングに先立って、37℃で0.5uのEndoglycosidaseF(ベーリンガー・マンハイム(Boehringer Manheim))と18時間反応させた。
ミコフェノール酸を用いて、gptプラスミドpLC201につきワクシニアウイルス組換体を選択し、これをpLC201VVと命名した。pLC201VVで感染させた細胞中でのL1の合成は、イムノブロッティングおよび免疫沈降によって確認した。L1蛋白はほぼ57kDaのオートラジオグラフィーでのバンドとして示された。これらの組換えウイルスで感染させたCV−1細胞から抽出したRNAのノーザンブロットにより、これらのウイルスいずれで感染させた細胞におけるL2 mRNA転写の高レベルが確認された(図3)。合成ワクシニアウイルス後期プロモーターからのL2の転写により、異種ノーザンブロットのパターンが得られた。何故ならば、VV後期RNAは特異的転写終止シグナルを使用しないからである。
CV−1細胞をpLC201VVで感染させ、ウイルス様粒子について調べた。pLC201VVで感染させた細胞の薄い断面の電子顕微鏡写真は細胞核でほぼ40nmのウイルス様粒子を示したが、野生型ワクシニアのみで感染させた対照細胞は示さなかった。ほとんどの場合、これらの粒子は、核膜の近くで、鎖で連結されていた(図4a)。HPV16 L1のみ、またはL2のみを発現し、対応する蛋白(L1)またはmRNA(L2)を産生した組換えワクシニアウイルスで感染させた細胞は、ウイルス様粒子を含有していなかった。同時に2つの異なる組換えワクシニアウイルス(これは、各々、HPV16 L1およびHPV16 L2を発現した)で感染させた細胞は、いずれのHPVウイルス様粒子も作製しなかった;L1蛋白およびL2 mRNAはこれらの二重感染細胞のプールで同定できなかったが、個々の細胞内でのL1およびL2双方の同時合成は示されなかった。
図5において、pLC201VVで感染させたCV−1細胞から得られた5つのHPV16ウイルス様粒子をショ糖クッション上で遠心し、次いで、CsCl等密度沈降に付した。ウイルス様粒子(+)は画分8および9に見い出された。画分8からのネガティブ染色した粒子の透過型電子顕微鏡写真はインサート中に示される。各の勾配画分の密度(g/ml)が示される。
図6において、CV−1細胞を32時間でpLC201VVで感染させ、ウイルス様粒子をショ糖勾配で精製した。試料をエタノールで沈殿させ、一昼夜のエンドグリコシダーゼFでの処理の後における抗−HPV16 L1抗体Camvir 1、レーン1:精製したウイルス様粒子;レーン2および3;でのイムノブロッティングによって分析前にエンドグリコシダーゼFで処理した。L1ダブレットは(=)によって示し、脱グリコシル化L1は矢印によって示す。分子量マーカーは左側に示す。
電子顕微鏡によって観察されたウイルス様粒子がHPV16 L1蛋白を含有することを確認するために、pLC201VV感染細胞からの細胞抽出物を20%−60%ショ糖勾配中での部分的精製に付した。10の画分を収集し、L1蛋白について調べた。画分3ないし7から、L1は検出することができ、画分5では、最高レベルのL1が見い出された。各画分をウイルス様粒子についてEMによって調べ:これらは画分5で観察された。リンタングステン酸ナトリウムでネガティブ染色した典型的なパピローマウイルスは、72の規則的な密に詰められたキャップソメア(フィンチおよびクルーグ(Finch and Klug)、1965、ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー(J. Mol. Biol.)13、1−12;ロウソンおよびマーヒィ(Rowson and Mahy)、1967、バクテリオル・レブ(Bacteriol. Rev.)31、110−131)を有し、直径約50nmを有する。感染したCV−1細胞から精製したウイルス様粒子の直径は35nmと40nmとの間で変化した。しかしながら、これらのウイルス様粒子はパピローマウイルスと同様のEM外観を有し、キャップソメアの規則的配列が認められた(図4b)。従って、ショ糖勾配の画分5で同定されたウイルス様粒子は空であって、HPVキャップソメアの正しくない会合配列であると推定された。CsClにおいて、HPV16ウイルス様粒子は約1.31g/ml(図5)で沈降し、透過型電子顕微鏡下で典型的な空のパピローマウイルスキャップシドの外観を示した(図5、インサート)。
pLC201VV感染CV−1細胞から精製したウイルス様粒子のウェスタンブロットにおいてCamvir 1は蛋白タブレットと同定された(図6)。HPL16 L1は4つの可能なN−グリコシル化部位を含有する(アスパラギン157、242、367および421)。該タブレットがL1ポリペプチドのグリコシル化変異体を表すか否かをテストするために、部分的に精製したウイルス様粒子を、DSD−PAGEおよびイムノブロッティングに先立ち、エンドグリコシダーゼFでの処理に付した。この結果、約57kDaの予期される分子量にて、わずかに低い見掛け分子量の単一のバンドによって該タブレットが置き換えられた(図6、レーン2、3)。
1.29−1.30g/mlの浮遊密度を持つCsCl勾配の画分から収集したウイルス様粒子を、エライサ法アッセイにおいて抗原として用いた。VLPで免疫したマウスからのすべての抗血清は陽性であった(表2)。野生型ワクシニアで感染させたCV−1細胞の溶解物で調製した密度勾配の同様の画分で免疫したマウスからの対照血清はウイルス様粒子と非反応性であった。ウイルス様粒子をエライサ法プレートにコートするための2つの異なるプロトコル(ディルナー(Dillner)ら、1991、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)65、6862−6871)を用い、天然HPVウイルス様粒子との反応性を、破壊した粒子の部分的変性蛋白との反応性と区別する試みを行った。VLPに対して生起したマウス抗血清は天然(OD 1.00±0.20)および変性(OD 1.60±0.45)粒子と同等に反応性であった。はっきりとしたL1エピトープに特異的な6のモノクローナル抗体のパネルは、天然VLPと弱い反応性(OD 0.064)のただ1つ(Camvir 1)を包含し、天然粒子とよりも変性粒子(OD 0.107)とより反応性であることが判明し、これは、該反応性は天然VLP調製中の変性L1蛋白とのものであることを示唆する。
図8において、125I−標識抗−マウスIgGを第2抗体として使用した。57−kDa L1バンドは矢印によって示す。解説:VLPで免疫した個々のマウスからの血清:レーン1−5、BALB/c;レーン6−10、C57B1/6;レーン11−15、B10A;CFAで免疫した個々のマウスからの血清;レーン16、BALB/c;レーン17、C57B1/6;レーン18、B10A;抗−HPV 16L1MAb Camvir 1、レーン19。分子量は左側に示す。
HPV16のL1およびL2蛋白との抗−VLP抗血清の反応性は、バクロウイルス組換えHPV16 L1およびL2蛋白を用いるイムノブロットにより確認した。ウイルス様粒子で免疫したすべてのマウスからの血清、およびモノクローナル抗-HPV16 L1抗体の各々は、L1組換え−バクロウイルス−感染のエス・フルギペルダ(S. frugiperda)細胞溶解物で57−kDa蛋白を認識し(図8)、野生型バクロウイルスで感染させたエス・フルネギペルダ(S. frugiperda)細胞の溶解物では匹敵する反応性は何等観察されなかった。L1蛋白との反応性の強度はマウス間で変動したが、すべての血清はイムノブロットの長い暴露と反応性であった。同様の結果がL2組換え−バクロウイルス−感染細胞溶解物で得られ:マウス抗−VLP抗血清およびL2蛋白に対するウサギ抗血清は共に溶解物中の単一の蛋白と反応した。CFA単独で免疫したマウスからの血清は、L1またはL2組換え−バクロウイルス−感染エス・フルギペルダ(S. frugiperda)の溶解物からの蛋白と反応しなかった。
実施例2:HPV16 L1の線状抗原性領域の明確化
VLPを用いる蛋白
さらなる一連の実験において、合成VLPを用いたHPV16 L1キャプシド蛋白の線状抗原性領域を決定した。かかる実験において、3つのハプロタイプ(H−2d、H−2b、およびH−2d/b)のマウスを、HPV16のL1およびL2蛋白についてのワクシニアウイルス二重組換え体用いて生産した、合成HPV16ウイルス様粒子(VLP)で免疫した。得られた抗−VLP抗血清は、エライサ法アッセイによるとHPV16キャプシドを、イムノブロットではバクロウイルス組換えHPV16 L1およびL2蛋白を認識した。HPV16 L1アミノ酸配列に対応する重複ペプチドを用いて、L1蛋白の免疫反応性領域を明確化させた。大部分のL1ペプチドは、合成HPV16キャプシドで免疫したマウスからのIgGと反応性であった。コンピューターアルゴリズムにより、HPV16 L1には7つのBエピトープがあり、このうち5つはマウス抗血清と強力に反応するペプチド内に存在すると予測された。マウス抗−VLP抗血清は、組換えL1融合蛋白に対する他の物によって生起された抗−HPV16 L1モノクローナル抗体によって認識された2つのペプチドと反応しなかった。本発明者らは、ウイルス様粒子を用いて明確化させたHPV16の免疫反応性エピトープは、組換えHPV16 L1融合蛋白を用いて明確化させたものと有意に異なると結論したが、これは、かかる融合蛋白はHPV−感染患者におけるHPV16 L1特異的免疫応答を捜し出すための抗原とはなり得ないであろうことを意味する。
HPV16キャプシドの生産
ワクシニアウイルスプロモーター4b(天然)およびp480(合成)の制御下にあるHPV16 L1およびL2オープンリーディングフレーム(ORF)を含有するプラスミドpLC201を用いて、後記することを除き従前に記載されているごとくに、組換えワクシニアウイルス(rVV)pLC201VVを構築した。HPV16ウイルス様粒子は、従前に言及されているごとくにpLC201VV−感染CV−1細胞から調製したが、ワクシニアウイルスの集合および成熟を妨げるために、100μg/mlにてリファンピシンを含有する培地で細胞を培養した(モス(Moss)、「バイロロジー(Virology)」、685−703頁、ラベン(Raven)、ニューヨーク、1985;カラコスタス(Karacostas)ら、PNAS86、8964−8967、1989)。感染した細胞を収穫し、凍結し、10mM トリス−HCl(pH9.0)中のダウンス(Dounce)ホモゲナイズ化により解凍することによって溶解した。溶解物を2000gでの遠心によって清澄化し、次いで、PBS緩衝液中の20%ショ糖クッション上、100000gにて2時間回転させた。ペレットをCsClと混合して1.30g/mlの初期密度として、18°に、10000gで18時間遠心した。画分を収集し、エタノール沈殿させた蛋白でイムノブロットを行った。L1蛋白に陽性につきテストする画分をプールし、前記したごとき電子顕微鏡によってウイルス様粒子の存在が確認された。
抗血清の生産
5匹のマウスBALB/c(H−2d)、C57B1/6(H−2b)、およびB10A(H−2b/d)の群を、CsCl勾配精製したHPV16ウイルス様粒子で免疫した。皮下注射によって5μgのキャプシド蛋白で動物を接種した。最初の注射はフロイントの完全アジュバントと共に投与し、3週間間隔にて3つのさらなる注射は生理食塩水中にて投与した。第4の注射後14日目に、血清を収集し、−20°で貯蔵した。野生型ワクシニアウイルスで感染させたCV−1細胞から調製し、pLC201VV感染細胞についてと正確に同じに加工した物質を用いて同一のプロトコルに従ってマウスの対照群を免疫した。
ペプチド
5つの残基だけ重複し、HPV16 L1蛋白の推定されるアミノ酸配列にわたる一連の15量体(シードルフ(Seedorf)ら、1985、バイロロジー(Virology)145 181−185;パルトン(Parton)、1990、ヌクレイック・アシズ・リサーチ(Nucleic Acids Res.)18 363)を、標準的なプロトコルによるFmoc化学(フィールズおよびノーベル(Fields and Noble)、1990、インターナショナル・ジャーナル・オブ・ペプタイド・アンド・プロテイン・リサーチ(Int. J. Pept. Protein Res.)、35 161−214)を用い、デュポン社製のRaMPS多重ペプチド合成システムで合成し、次いで、グリタルアルデヒドでウシ血清アルブミン(BSA)に連結した。L1蛋白におけるアミノ酸(aa)の位置を調べるために、推定される第1の開始コドンをアミノ酸番号1とした(表1)。技術的な理由により、aa521−531に対応するC−末端ペプチドを使用しなかった。用いたすべてのペプチドは、HPLC分析で判断して、85%純度を超えるものであった。
組換えL1+L2蛋白
HPC16L1またはHPV16L2 ORFを発現する組換えバクロウイルスを用いて昆虫SF9細胞を感染させた。25°での3日間のインキュベーションの後、14000gにおける5分間の遠心によって細胞をペレット化した。該ペレットをRIPA緩衝液(20mM トリス−HCl、pH7.6;2mM EDTA;50mM NaCl;1%デオキシコレート;1%トリトンX−100;0.25%SDS;1%アプロチニン;1mM PMSF)に溶解した。
ウェスタンブロット
ウイルス様蛋白または組換えL1もしくはL2蛋白を、2%SDS/DTTを含有する2×負荷緩衝液と混合し、5分間沸騰させた。蛋白を10%ポリアクリルアミドゲルで分離し、ニトロセルロースフィルターにブロットした(トウビン(Twobin)ら、1979、バイロロジー(Virology)175 1−9)。フィルターを切片に切断し、PBS中の3%BSAにて、37°で1時間インキュベートした。ブロックした切片を種々のマウス抗血清(1:200)またはモノクローナル抗体に4°で一昼夜暴露した。反応性蛋白を、125I−連結抗−マウスIgG(0.2μCi/ml)(アメルスハム(Amersham))との反応の後にオートラジオグラフィーによって可視化した。
エライサアッセイ
従前に記載されているごとくに(クリステンセン(Christensen)ら、1990、PNAS 76 4350−4354、コウサート(Cowsert)ら、1987、JNC1 79 1053−1057)、酵素免疫法(エライサ)によって、ポリクローナル抗血清を合成HPV16キャプシドとの反応性についてテストした。「生の」合成HPV16キャプシドでのアッセイにつき、PBS(pH7.5)中の100ngの蛋白を、37°での1時間のインキュベーションによって各エライサプレートウェル(フロウ・ラブズ(Flow Labs))に付着させた。「変性した」粒子についてのアッセイでは、該粒子を炭酸塩緩衝液pH9.6に懸濁し、37°にて一昼夜プレートに吸着させた。すべての引き続いてのインキュベーションは室温で行った。該プレートをPBSで洗浄し、非付着部位をブロッキング緩衝液(PBS中の5%ミクル粉、pH7.5)中の1時間のインキュベーションによってブロックした。予め野生型VV−感染CV−1細胞抽出物で吸着させたマウス抗血清(1:200)を添加し、1時間インキュベートし、該プレートをPBSで洗浄させた。ブロッキング緩衝液中の1:1000希釈のホースラディッシュペルオキシダーゼ−連結抗−マウスIgG(シグマ(Sigma))を添加し、1時間インキュベートし、続いてPBSで10回洗浄した。ABTS(ベーリンガー(Boehringer))およびH2O2を含有する基質緩衝液(pH4.6)を添加し、15分後にOD 415で読み取った。
線状Bエピトープのマッピング
エライサ法によって、重複するHPV16 L1ペプチドの組に対して免疫化した動物からの抗血清をスクリーニングすることによってBエピトープを同定した。BSAにカップリングさせた合成ペプチドを10mM炭酸ナトリウム緩衝液(pH9.3)に稀釈し、4°で一昼夜エライサ法プレートに吸着させた。PBS中の3%BSAを用い、プレート上の残存する結合部位のブロッキングを37°で2時間行った。希釈したマウス抗血清(1:500)を室温にて2時間、被覆されたプレートとともにインキュベートした。該プレートを、ツイーン(Tween)20(0.1%)を含有するPBSで洗浄し、ペルオキシダーゼ−連結抗−マウスIgG(1:1000)(シグマ(Sigma))またはIgA(1:2000)(シグマ(Sigma))とともに2時間インキュベートした。プレートを洗浄し、415nmで吸光度値を記録する前に、基質緩衝液(pH4.6)中の0.5mg/mlABTSで15分間展開した。テスト血清でのOD415値が対照血清についての平均値を超えて3SDよりも大きければ、ペプチドは反応性と考えられ;これは、0.260のカットオフ値を与えた。対照血清で得られた平均OD415(0.55)の5倍のOD415は、主要な反応性エピトープを定義すると考えられた。
モノクローナル抗体および抗血清
HPV16L1融合蛋白に対して生起した5種のモノクローナル抗体(MAb)を用いた。MAb 5A4、1D6、3D1、および8C4(ケイソン(Cason)ら、1989、ジャーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジー(J. Gen. Virol.)70 12976−2987)は英国ロンドンのフィル・シェファード(Phil Shepherd)博士から提供され、MAb Cambir 1(マクリーン(McLean)ら、1990、ジャーナル・オブ・クリニカル・パソロジー(J. Clin. Pathol.)43 488−492)はシイ・マクリーン(C. McLean)博士(ケンブリッジ大学、病理学部)から入手した。HPV16 L2−Trp−E融合蛋白に対するウサギ抗血清はデニゼ・ガロウェイ(Denise Galloway)博士(ワシントン大学、シアトル)から提供された。
アミノ酸配列分析および抗原性指標の予測
抗原性指標(A1)(ジェイムスンおよびウェルフ(Jameson and Wolf)、1988、コンプ・アプル・バイオサイ(Comp. Appl. Biosci.)4 181−186)は、ペプチド配列が抗原性である確率の測定である。それは、二次構造のいくつかの重みを付けた測定を合計することによって計算される。予測されるHPV16 L1配列についての値は、PLOTSTRUCTUREソフトウェアを用いて計算される。
図9および10において、HPV16 L1の配列に対応する一連の重複ペプチドとのエライサ法における血清の反応性(OD415)が示される。HPV16L1配列(表1)に対応するペプチド数を示す。
図11および11Aにおいて、アミノ酸についてのナンバリングシステムは第1の推定開始コドンからのHPV16 L1に対応する。1.5を超えるAI値の領域が示される。
図12において、その中にBエピトープがマッピングシステムの範囲にあることが示されるHPV16 L1の領域を示す。VLP(粒子)で免疫したマウスからの血清での結果、および頸部癌を持つヒトからの血清中のIgAおよびIgG抗体(ヒトIgAおよびヒトIgG)(ディルナー(Dillner)ら、1990、インターナショナル・ジャーナル・オブ・キャンサー(Int. J. Cancer)45 529−535)での結果は、重複するペプチドを用いて得られた。ODが0.55を超えた場合、マウス抗VLP抗血清はペプチドと有意に反応性が保持された。L1融合蛋白で免疫したウサギ(ウサギ血清)(ミュラー(Muller)ら、1990、ジャーナル・オブ・ジョネラル・バイロロジー(J. Gen. Virol.)71 2709−2717)からの結果をプロットする:これらは、一連の部分長発現クローンを用いて決定し、その中にエピトープがある配列の全長を示す。また、アルゴリズムで予測されるBエピトープ(コンピューター)(ジェイムソンおよびウォルフ(Hameson and Wolf)、コンプ・アプル・バイオサイ(Comp. Appl. Biosci.)4 181−186、1988)および公表されている抗−HPV16 L1モノクローナル抗体(Monoclonals)(ケイソン(Cason)ら、ジャーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジー(J. Gen. Virol.)70 2973−2987;マクリーン(McLean)ら、ジャーナル・オブ・クリニカル・パソロジー(J. Clin. Pathol.)43 488−492、1990)によって認識されるエピトープを示す。スケールは、531aa L1蛋白に沿ったエピトープの位置を示し、N−末端メチオニン(残基1)からナンバー付けする。ペプチドを含有する各エピトープについては、N−末端メチオニンに対する正確な位置も示す。
5つのaaの重複で蛋白の全長をカバーする、HPV16 L1蛋白の一連の15量体合成ペプチドを用いて、種々の免疫血清によって認識されるL1中のエピトープを明確化させた。3つのテストした近交系マウス株からの16の抗血清の各々。BALB/c(H−2d)、C57B1/6(H−2b)、およびB10A(H−2b/d)は、L1蛋白の多重線状ペプチドを認識し、HPV16 L1からの実質的に同一のペプチドはすべてのテスト株によって認識された(図10)。5つの個々の血清は各株からテストした。血清でのODが平均値+陰性対照血清のODの3SDより大きいと、ペプチドを反応性とし;これは、0.260の反応性についてのカットオフを与えた。CFA単独で免疫したマウスからの血清は、すべてのL1ペプチドでの0.260未満のOD415反応性を有していた。いくらかの変動が、所与の株からの各抗−VLP血清の各ペプチドとの反応性の強度で観察されたが、各ペプチドはマウスの各株からの抗−VLP血清のすべてと反応性であるか(OD>0.260)、いずれとも反応性ではなかった。抗−VLP血清中のペプチド特異的抗体のイソタイプはIgGおよびIgA特異的抗−マウス免疫グロブリン抗体を用いて調べた。IgG応答は示す通りであり(図9および10)、有意なIgA反応性はいすべれのペプチドに対しても検出されなかった(OD<0.050)。ほとんどのペプチドは抗−VLP血清と反応性であるので、平均陰性値の5倍の任意OD値を用いてL1蛋白の主要反応性領域を明確化させ:主要免疫反応性L1ペプチドはL1蛋白の長さに沿って均等に分布し、7つは当該分子のアミノ末端の3番目で見られ、7つは中央の3番目で見られ、8つはカルボキシ末端の3番目で見られた。対照的に、HPV16 L1につき特異的なモノクローナル抗体は従前に記載されているごとく(ケイスン(Cason)ら、前掲、マクリーン(McLean)ら、1990、前掲)単一の主要線状エピトープを認識した。5つのうち4つの反応性抗−HPV16 L1モノクローナル抗体(5A4、1D6、3D1、8C4)はペプチド30(291−305)と反応性である一方、Camvir 1はペプチド24(231−245)を認識した(図11および11A)。ウイルス様粒子で免疫したマウスからの血清はこれらのいずれの粒子とも反応しなかった。
アルゴリスムを用いて、予測される蛋白二次構造に基づき、HPV16L1のBエピトープを同様に推定した。可能な抗原性領域は、鎖のフレキシビリティ、高接近性および高度な親水性に基づいて、抗原性指標(A1)(ジェイムソンおよびウォルフ(Jameson and Wolf)、1988、前掲)として計算した(図11)。A1値が1.5を超える領域は予測されるBエピトープとみなした。7つのかかる領域(アミノ酸79−84、105−108、120−122、134−135、267、269、298−299、363−367)が見い出され、これらの7つの領域のうち5つは、合成HPV16キャプシドで免疫したマウスからの抗血清で主要反応性が見られた22ペプチド内にあった。異なる入手源からの抗血清のBエピトープ特異性の合計を図12に示す。
実施例1−2をさらに考慮すると、パピローマウイルスは、一般に、感染したケラチノサイト中にビリオンを生ずることに注意すべきであり、これは、電子顕微鏡によって容易に同定でき(アルメイダ(Almeida)、1962、ジャーナル・オブ・インベスティガティブ・デルマトロジー(J. Invest. Dermatol.)38、337−345)、ある場合には精製でき、感染性であることが示される(ロウソンおよびマヒィ(Rowson and Mahy)、1967、バクテリアル・レオ(Bacterial. Reo.)31、110−131)。しかしながら、HPV16 L1およびL2後期遺伝子の転写は分化した生殖器上皮で起こり(クルム(Crum)ら、1988、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)62、84−90)、またL1転写はこれらの組織で免疫反応性L1蛋白を生じる(スタンレイ(Stanley)ら、1989、インターナショナル・ジャーナル・オブ・キャンサー(Int. J.Cancer)43、672−676)にも拘わらず、HPV16ビリオンはHPV16感染頸部上皮組織で見られない。本明細書では、本発明者らは、上皮細胞におけるHPV16 L1およびL2遺伝子の発現は、HPV16ビリオン様粒子の集合を可能とするのに必要である共にそれで十分であり、かくして、HPV16のL1およびL2蛋白はビリオン集合に関して欠陥があるのではないことを示した。組織におけるHPV16後期遺伝子の発現は上皮環境によって厳格に調節されているようである(タイキマン(Taichman)ら、1983、ジャーナル・オブ・インベスティガティブ・デルマトロジー(J. Invest., Dermatol.)1、137−140)。in vivoにてHPV16ビリオンを検出できないことは、L1およびL2の転写ならびにL1の翻訳にも拘わらず、頸部上皮細胞におけるL2産生への後転写ブロック、あるいはビリオン集合の阻害剤いずれかがあることを示唆する。頸部組織に由来する、細胞系W12を含有するHPV16において、細胞がマウスのミクロ環境でin vivoの末端分化を受けると、ウイルス様粒子が観察され(スターリング(Sterling)ら、1990、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)64、6305−6307)、これは、かかる細胞はビリオンの集合に対してブロックしないこと、およびL2の不十分な翻訳または他の知られていない理由で、頸部組織においてHPV16ビリオンを示すことができないのが説明されることを示唆する。
本発明者らのEM実験は、空のHPV16ビリオンは他のパピローマウイルスよりも小さい約40nmの平均サイズを有するが、ウサギ・パピローマウイルス(フィンチおよびクルーグ(Finch and Klug)、1965、ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー(J. Mol. Biol.)、13、1−12)、またはヒト・イボウイルス(ロウソンおよびマーヒィ(Rowson and Mahy)ら、1967、前掲)のごとき他のパピローマウイルスと比較して同様の表面構造を有することを示す。沈降は、約1.31g/mlの空のキャプシド密度、無傷HPV1aビリオンについての約1.36g/mlと比較して空のパピローマウイルスに予測される密度を示した(ドーバーおよびガリモア(Doorbar and Gallimore)、1987、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)、61、2793−2799)。
HPVからのL1蛋白は可能なグリコシル化部位を有し、また精製したBPV粒子は、その移動度がエンドグリコシダーゼ処理に感受性であるL1の少量の電気泳動形態を有する(ラルセン(Larsen)ら、1987、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)、61、3596−3601)。HVP 1aからのL2およびHPV11はダブレットであることが観察されており(ローズ(Rose)ら、1990、ジャーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジー(J. Gen. Virol.)、71、2725−2729;ドーバーおよびガリモア(Doorbar and Gallimore)、1987、前掲;ジン(Jin)ら、1989、ジャーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジー(J. Gen. Virol.)、90、1133−1140)、これはグリコシル化の差異のためとされている。本発明者らのデータは、HPV16キャップソメアにおけるL1蛋白もグリコシル化されており、2つの異なるグリコシル化状態が存在することを示す。
本明細書において、本発明者らは、合成ウイルス様粒子を用いて、真核細胞系で生産されたHPV16キャプシド蛋白の免疫原性を研究した。真核細胞で生産されたパピローマウイルスのキャプシド蛋白は抗原提示の重要な決定基となり得る翻訳後修飾を受けたので(ブロウネ(Browne)ら、1988、ジャーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジー(J. Gen. Virol.)69、1263−1273;ゾウ(Zhou)ら、1991、バイロロジー(Virology)、185、625−632)、真核細胞で生産されたキャプシド蛋白を用いた。天然HPV16粒子は臨床的病巣、あるいは細胞培養におけるウイルス増殖から入手できないゆえ、組換えワクシニア発現ベクターを選択した。本発明者らは、HPV16 VLPを用いて、マウスにおいてポリクローナル抗−VLP抗血清を生産し、これらの血清はエライサ法によると、HPV16キャプシドと強力に反応した。本発明者らは、イムノブロッティングにより、抗−VLP抗血清は変性L1(図2)およびL2中のエピトープを認識したことを証明した。さらに、抗−VLP血清は、L1の一連の51の15量体ペプチドにおいて22の主要反応性ペプチドを明確化した。これらのデータは、ウイルス粒子に対して生起した抗血清は、それに拘わらず、線状決定基をしばしば認識することを示す。一組のL1ペプチドとの液性反応性のプロフィールは2つのMHC不一致マウス株を横切ってほとんど同一であり、これは、ここでテストしたマウス株においてHPV16 L1蛋白に対する液性応答を決定するにおいてMHC制限が限定的でないL1中の充分なTエピトープがあることを示唆する。
本発明者のマウス抗−VLP抗血清で得られたBエピトープ特異性についてのデータは、頸部形成異常を持つ婦人からの「免疫」血清の同様の研究(ディルナー(Dillner)ら、1990、インターナショナル・ジャーナル・オブ・キャンサー(Int. J. Cancer)45 529−535)と比較することができる(図12)。いくつかのペプチドは免疫ヒト血清および抗−VLP抗血清双方によって認識されたが、マウス抗−VLP抗血清と反応するペプチドの大部分は免疫ヒト血清と反応性でなかった(図12)。L1−特異的モノクローナル抗体(ケイスン(Cason)ら、1989;マクリーン(McLean)ら、1990)によって認識されるL1の領域(221−235、291−305)のいずれも本発明者らのマウス抗−VLP抗血清によって認識されなかった。L1融合蛋白をこれらのMAbを生起させるのに用い、またヒト血清においてL1に対する抗体についてスクリーニングするのに用いたので、ヒト血清のL1融合蛋白との反応性の欠損(ジェニセン(Jenisen)ら、1990、
1990、インターナショナル・ジャーナル・オブ・キャンサー(Int. J. Cancer)48 682−688)は、天然L1蛋白によってヒト免疫系に提示されたL1のエピトープをL1融合蛋白が示さないことにより説明され得る。
ペプチドでのL1蛋白に対する抗体についてのスクリーニングは線状エピトープのみを検出できる。
マウス血清における反応性が線状および立体配置決定基双方に対して向けられているか否かを決定する試みにおいて、本発明者らは、2つの方法でテスト粒子につきエライサ法を行った:1つは、天然粒子を保持すると言われているもので、もう1つは変性蛋白を生産すると言われているものである(ディルナー(Dillner)ら、1991、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)、65、6682−6871)。本発明者らは、1または他の方法で処理した粒子と絶対的に反応性のいずれの血清またはモノクローナル抗体も見い出さなかったが、1つのMAB(Camvir 1)は、変性された「生の」粒子とより強力に反応した。変性粒子との大部分のMAbの反応性の欠損は、同一抗体はウェスタンブロットにて変性蛋白と反応するので、それらは部分的に変性されたにすぎないことを示唆する。逆に、天然粒子とのCamvir 1の反応性は、この抗体によって認識される線状エピトープは天然粒子調製中にいくらかの量で存在する変性L1蛋白を認識するとの証拠とはならず、本発明者らは、無傷VLPは本発明者らのエライサ法条件下で保持されるという証拠を有しない。
ほとんどの抗体は、いくつかの非近接ポリペプチド配列(アミト(Amit)ら、1986、サイエンス(Science)233、747−753)を含み得る立体配置依存性決定基(ベンジャミン(Benjamin)ら、1984、アヌ・レブ・イミュノル(Ann. Rev, Immunol.)2、67−101)を認識するので、HPV1抗血清について示されているように(ステーレおよびガリモア(Steele and Gallimore)、1990、バイロロジー(Virolgy)、174、388−398)、ビリオンに対し誘導された抗体は融合もしくは変性蛋白ならびに天然蛋白を認識しないようである。いくつかの皮膚イボ関連HPVのビリオンは、イボペアリング(paring)につき、血清学アッセイに十分な量で入手可能である(アルメイダおよびゴフェ(Almeida and Goffe)、1965、ランセット(Lancet)2、1205−1207;キーンツラー(Kienzler)ら、1983、ブリティッシュ・ジャーナル・オブ・デルマトロジー(Br. J. Dermatol.)108 665−672;フィスターおよびツル・ハウゼン(Pfister and Zur Hausen)、1978、インターナショナル・ジャーナル・オブ・キャンサー(Int. J. Cancer)21 161−165;ピルソネン(Pyrhsonen)ら、1980、ブリティッシュ・ジャーナル・オブ・デルマトロジー(Br. J. Dermatol)102 247−254;パスおよびマイツェル(Pass and Maizel)、1973、ジャューナル・オブ・インベスティガティブ・デルマトロジー(J. Invest. Dermatol.)60 307−311)。ヒト免疫血清における精製したビリオンに対する抗体の罹患率は、用いた検出系に応じて、20(ジェンナー(Genner)、1971、アクタ・デルム・ベネレエル(Acta. Serm. Venereol.)(Stockh)51 365−373)から88%(モリソン(Morison)、1975、ブリティッシュ・ジャーナル・オブ・デルマトロジー(Br. J. Dermatol)93 545−552)変動する。しかしながら、最近まで、性器HPVタイプのビリオンは血清学的研究には入手できなかった。ヌードマウス異種移植系(クレイダー(Kreider)ら、1987、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)61 590−593)は、ヒト抗体の検出用のHPV11粒子の生産を可能にした(ボネツ(Bonnez)ら、1991、ジャーナル・オブ・ジェネラル・バイロロジー(J. Gen. Virol.)72 1343−1347)。本発明者らは、本明細書に記載したHPV16 VLPは天然HPV16粒子に対する血清反応性と同様の研究が進展するのを可能し、HPV15L1融合蛋白に対するヒト血清中の反応性の欠損の観察(ジェニセン(Jenisen)ら、1991、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)65 1208−1218;
1991、前掲)は、HPV1での同様の観察(ステーレおよびガリモア(Steele and Gallomore)、1990、バイロロジー(Virol.)、174、388−398)に単純に類似すると予測する。
BPV構造蛋白に対する抗体はウイルス中和活性を有しており(ピラチンスキー(Pilacinsky)ら、1986、チバ・ファウンド・シンポ(Ciba Found. Symp.)、120、136−156)、また精製したHPV11ビリオンに対して生起した抗血清も胸腺欠損マウス異種移植系で感染性HPV11を中和できる(クリステンセンおよびクレイダー(Christensen and Kreider)、1990、ジャーナル・オブ・バイロロジー(J. Virol.)、64、3151−3156)。本発明者らの結果は、精製した合成HPV16キャプシドは免疫原性であり、この腫瘍ウイルスに特異的なウイルス中和抗体を生産し、および評価するのに使用できることを示す。エシェリキア・コリ(Esherichia coli)で発現されるBPV1 L1蛋白およびBPV粒子は共にイボの発生からウシを保護した(ピラチンスキー(Pilacinsky)ら、1986;ジャレット(Jarrett)ら、1990、ベテリナシ・レク(Wet. Rec.)126 449−452)。HPV16ウイルス様粒子に対する同様の免疫応答はHPV16−関連頸癌を予防する可能なワクチンのベースとなろう。
図13Aにおいて、pLC201VVでの注射後、CV1細胞溶解物を平衡勾配沈殿に付した。精製したウイルス様粒子を、リンタングステン酸でのネガティブ染色の後に透過型電子顕微鏡によって調べた[棒線=100nm]。
図13Bにおいて、レーン1、野生型ウイルスで感染させたCV−1細胞からの溶解物;レーン2、ウイルスpLC201VVを発現するL1およびL2からの溶解物;レーン3、精製したウイルス様粒子。L2蛋白をウサギ抗HPV16 L2抗体、続いて125I−蛋白Aでプローブした。分子量は左側に示し、L2バントは矢印を付した。
図13Aおよび13Bを参照し、HPV16 L1およびL2二重組換えVVは、精製したVLPおよびVV組換えL2蛋白に対して生起したウサギ抗血清を用いるウェスタンブロットによって示したごとくL2蛋白を含有する。
実施例3:BPV1 VLP
BPV1キャプシド蛋白についてのVV組換体を用い、in vitroで同様に生産されたウシ・パピローマウイルス(BPV)1ビリオンはBPV1 DNAをパッケージできることも確認した。E1ウイルス・オープンリーディングフレームの転写によって示すごとく、完全なビリオンは浸透可能なマウス線維芽細胞系を感染させることができ、感染は、BPV1のキャプシド蛋白に対する抗体とのビリオンのインキュベーションにょって阻害される。HPV16についての観察とは対照的に、ウイルス様粒子は、BPV1 L1キャプシド蛋白単独についてのVV組換体で感染させた細胞で集合するが、L2蛋白は感染性ビリオンを生産するのにBPV1 DNAをパッケージする必要がある。
HPV16粒子の総じての形態は天然に存在するHPV1およびBPV1粒子とはむしろ異なるにも拘わらず、前記にて言及したHPV16 VLPに関しては、これらの粒子は臨床的病巣から精製したHPV1およびBPV1粒子で観察されたものに典型的なキャツプソメアよりなるようである(ベイカー(Baker)ら、ジェイ・シイ・バイフィズ・ジェイ(J.C.Biophys.J.)、60、1445−1456−1991、スタクエット(Staquet)ら、ジャーナル・オブ・デルマトロジカ(J. Dermatologica)162 213−219、1981)。天然HPV16ビリオンは臨床的病巣から精製したものではなかったので、この形態学的差異がHPV16、あるいは当該ビリオンを生産するのに使用した組換えワクシニアウイルス(rVV)系の特性であるのか否かを確認するのが望ましいと考えられる。従って、一連のVV、すなわちHPV6、HPV11の、およびBPV1のL1およびL2キャプシド蛋白についての各二重組換体を作製した。これらの二重組換体の各々でのCV−1細胞の感染により、ウイルス様粒子が生産され、これらは標品HPV1およびBPV1ビリオンにHPV16粒子よりも似ている。天然BPV−1粒子は形態学的にかつ免疫学的によく特徴付けられており(チェン(Chen)ら、ベイカー(Baker)ら、1991、コウサート(Cowsert)ら、ジャーナル・オブ・ナショナル・キャンサー・インスティテュート(J. Natl. Cancer Inst.)、79、1053−1057)、BPV−1 DNAのエピソーム複製について許容される細胞系が入手可能であるので(ロー(Law)ら、1981、DNAS、78、2727−2731)、本発明者らはBPV−1粒子を研究するのを選択した。
図13Cにおいて、BPV1L1はp4b天然ワクシニア後期プロモーターから発現され、またL2はp480合成ワクシニア後期プロモーターから発現される。該イー・コリ(E. coli)gpt遺伝子を選択マーカーとして用いる。フランキング配列はワクシニアB24R遺伝子であり、これは、同種組換えについてのワクシニア配列を提供する。BPV1 L1およびL2遺伝子はプラスミドpml−1からPCRによってクローンした。BPV1ゲノムを線状化し、BPV1 L2 ORF中のBamHI部位にてこのプラスミドにクローンしたゆえ、BPV1ゲノムはBamHI消化によってpml−1からまず単離し、再環化し、環化したBPV−1 DNAをPCR鋳型として用いた。L1増幅について用いたオリゴヌクレオチドプライマーは:
であった。BamHI部位に下線を施し、第1のメチオニンおよび停止コドンは裸で表す。L2増幅についてのオリゴヌクレオチドプライマーは:
であった。Bgl II部位に下線を施し、第1メチオニンおよび停止コドンは裸で表す。増幅した1478bp L1断片をプラスミドPK19中のBamHI部位にクローンしてPK19BPVL1を得た。L1遺伝子およびワクシニア4bプロモーターを、MluIおよびSmaIでの消化によってこのプラスミドから単離し、プラスミドpSX3に移してpSXBPV1を得た。1409bp L2断片をBgl IIで消化し、プラスミドp480中のBamHIにクローンしてp480BPVL2を得た。合成ワクシニア後期プロモーターおよびBPV L2遺伝子をこのプラスミドからpSXBPVL1中のSmal部位にクローンして二重組換えプラスミドpSXBPVL1L2を得た。pSXBPVL1またはpSXBPVL1L2 DNAを、野生型(wt)VV WR株で感染させたCV−1の単層にトランスフェクトして、rVV pSXBPVL1VV(L1発現)およびpSXBPVL1L2VV(L1およびL2発現)を得た。組換えワクシニアウイルスをミコフェノール酸の存在下で3回精製した。精製に続き、組換体の大規模調製を行い、これらの実験を通じて使用した。
図14Aにおいて、ワクシニア感染細胞中の組換えBPV1 L1の免疫沈降分析を示す。CV−1細胞を10pfu/細胞にてwtワクシニアウイルス(レーン1);pSXBPVL1VV(レーン2);pSXBPVL1L2VV(レーン3)で感染させ、感染後48時間に収穫した。BPV1L1蛋白をBPV1特異的ウサギ抗血清で検出した。58kDaのL1蛋白を矢印で示す。
図14Bにおいて、BPV1 L2発現のノーザンブロット分析を示す。wt VV(レーン1);pSXBPVL1L2VV(レーン2)で感染したCV−1細胞から抽出したRNAをBPV1 L2遺伝子でプローブした。L2同種転写体の可変長はVVプロモーターから発現された転写体に典型的である。免疫沈降については、rVVで感染させた細胞をRIPA緩衝液(0.1SDS、1%トリトンX−100、1%デオキシコール酸ナトリウム、150mM NaCl、0.5μg/mlアプロチニン、10mM トリス、pH7.4)で溶解した。可溶性蛋白を、1:1000希釈にて、ウサギ抗BPV1抗体(ダコ(DAKO)、グロストラップ(Glostrup))で免疫沈降させた。沈殿した蛋白をプロテイン−Aセファロースで収集し、10%SDSポリアクリルアミドゲルで分離し、ニトロセルロースフィルターにブロットした。スキムミルクでブロッキングした後、フィルターを抗BPV1血清(1:1000)、続いて125I−蛋白A(0.1μCi/ml)に暴露し、オートラジオグラフィーによって可視化した。合計RNAを細胞から抽出し、前記したごとくにCsClを通しす遠心によって精製した。合計RNA(トラック当たり30μg)を1.2%ホルムアメデヒド−アガロースゲルで泳動させ、32P−標識BPV1 L1遺伝子でプローブした。
図15Aにおいて、pSXBPVL1L2VVを参照されたし。pSXBPVL1L2VVで感染させたCON/BPV細胞からのいくらかの粒子は電子密度コアを有する(インサート)。
図15Bにおいて、pSXBPVL1VVを参照されたし。(A)における汚染ワクシニアウイルスは「V」で示す。尺度用の棒線は50nmを示す。細胞を感染後2日に収穫し、PBSで洗浄し、凍結によって溶解し、3回解凍し、PBS中で超音波処理した。細胞夾雑物を低速遠心によって除去し、上澄みを20%(w/v)ショ糖クッションに重ね、100,000×gにて2時間遠心した。ペレットをPBSに再懸濁し、1%(w/v)リンタングステン酸(pH7.0)でネガティブ染色した後、JOEL 1200EX電子顕微鏡で分析した。
標品BPV1粒子におけるL1のL2蛋白に対する比はほぼ5:1(フィスター,エイチ(Phister,H.)およびフックス・イー(Fucks,E.)、パピローマウイルスおよびヒトの病気(Papillomaviruses and human disease)(シルヤネン,ケイ、ギスマン,エルおよびコス,エル・ジイ(Dyrjannen,K.,Gissman,L & Koss,L.G.)1−18巻(シュプリンゲル−フェアラーク(Springer-Verlag)、ベルリン、1987)であるので、本発明者らは、我々の二重組換えVVにつき、L1遺伝子についての強力な合成プロモーターおよびL2遺伝子電子についての弱い合成プロモーター(図13C)を用い、rVV感染CV−1細胞からのノーザンブロットで得られたL2 mRNAに対するL1 mRNAの比はほぼ10:1であった。このrVVで感染させたCV−1細胞はBPV1 L1蛋白(図14A)およびL2 mRNA(図14B)を発現し、明らかに標品形態(図15a)の多数の50nm二十面体ウイルス様粒子を感染細胞から精製できた。HPV16に関する本発明者らの仕事は、L1およびL2蛋白には前記したごときHPV16ウイルス様粒子の集合が必要であることを示し、これは、パピローマウイルス(カジガワ(Kajigawa)ら、1991、DNAS、4646−4650)、ブルータングウイルス(ロウドン(Loudon)ら、1991、DNAS、バイロロジー(Vorolgy)、182、793−801)、およびポリオーマウイルス(サルンケ(Salunke)ら、1986、セル(Cell)、46、895−904)については、主要キャプシド蛋白単独が組換え蛋白として発現されるならば、ウイルス様粒子が細胞中で集合するという観察と対照的である。従って、本発明者らは、BPV1 L1につきVV組換体を生産し(図13C)、CV−1細胞をこのVVで感染させた場合に、L1およびL2二重組換えVVで得られたのと同様の形態のウイルス様粒子が精製できることを観察した(図15b)。同様の空の二十面体ビリオンが、HPV6またはHPV11のL1蛋白についてのVV組換体でのCV−1細胞の感染の後に得られた。HPV16L1およびL2rVVで感染させた細胞における形態学的標品PVビリオンの欠如、および電子顕微鏡によってHPV16L1感染組織で見られたPVビリオンの欠如(シュナイダー(Schneider)、(1987)、パピローマウイルスおよびヒトの病気(Papillomaviruses and Human Disease)19−39巻、シュプリンゲル・フェアラーク(Springer Verlag)、ベルリン)は、他のPVとは対照的に、HPV16はウイルスキャプシド形成に関して欠如しているらしいことを示唆する。
VPV1 L1/L2 rVVで感染させた細胞からのウイルス粒子の大部分を図15aインサートに示す。
HPV11L1/L2およびHPV6bL1/L2二重発現組換えワクシニアウイルスについてのクローニング戦略を以下に記載する。
HPV11L1については:
である。
PCR産物をBglII/EcoRIによって消化し、4bプロモーターの制御下にあるRK19にクローンした。次いで、プロモーター/11L1配列を、クレノウによって平滑末端化したpSX3 BamHI部位にクローンした。得られたプラスミドはpSX11L1であった。
11L2については:
である。
Bam/H1/Sma1消化のPCR断片を合成28k後期プロモーター下のp480にクローンした。次いでプロモーター/11L2断片をpSX11L1に移した。11L1/L2二重組換え発現プラスミドをpSX11L1/L2と命名した。
HPV6BL1については:
である。
PCR産物をBamHI/SmaIで切断し、4bプロモーターの制御下にあるPK19にクローンした。次いで、プロモーター/6L1をpSX3にクローンしてpSX36L1を得た。
HPV6L2については:
HPV6L2をAccl/Xbalによって6bゲノムから単離した(4422−5903)。断片をクレノウによってブロットし、p480に挿入した。合成28kプロモーター+6bL2をpSX6L1にクローンして二重組換えプラスミドpSX36L1/L2を得た。
しかる後、プラスミドpSX11L1およびpSX11L1/L2を宿主細胞(例えば、CV1細胞またはC127細胞)に感染させてVV p SX11L1およびVV pSX11 L1/L2が得られ、それは、野生型ワクシニアウイルスで感染させた宿主細胞のトランスフェクションの後に、L1蛋白(VV pSX11L1由来)ならびにL1およびL2蛋白(VV pSX11L1/L2由来)を含有するVLPを形成した。同様に、宿主細胞のトランスフェクションの後にVV pSX6L1およびVV pSX6L1/L2は、HPV6b L1を含有するVLPならびにHPV6b L1およびHPV6b L2を含有するVLPを生産した。
また、本発明が、その範囲内に、パピローマウイルスキャプシド蛋白L1およびL2についてのウイルス二重組換体ならびにパピローマウイルスキャプシド蛋白L1を含有する組換えウイルスを包含することは認識されるであろう。
さらに、本発明が、その範囲内に、蛋白L1およびL2を含有するVLP粒子の検出工程を包含するエライサ法によるパピローマウイルス感染の診断法を包含することも認識されるであろう。
Claims (17)
- パピローマウイルスHPV−6、HPV−11またはBPV−1のウイルス様粒子(VLP)を調製する方法であって、
(a)細胞内で発現した場合にVLPを形成するパピローマウイルスL1蛋白である単一のパピローマウイルス蛋白をコードする組換えDNA分子でトランスフェクトした真核細胞を供し;次いで
(b)該真核細胞からVLPを得る
工程を含むことを特徴とする該方法。 - さらに、請求項1(b)の工程の後に、(c)該VLPを精製する工程を含むことを特徴とする請求項1記載の方法。
- 該真核細胞が、酵母細胞、昆虫細胞または哺乳動物細胞を含むことを特徴とする請求項1または2記載の方法。
- 該組換えDNA分子が、組換えウイルスを用いて該真核細胞にトランスフェクトされることを特徴とする請求項1ないし3のいずれか1記載の方法。
- 該組換えウイルスが、昆虫細胞を感染させるバクロウィルスから由来することを特徴とする請求項4記載の方法。
- 該昆虫細胞が、スポドプテラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda)から由来することを特徴とする請求項5記載の方法。
- 該組換えウイルスが、ワクシニアウイルスから由来することを特徴とする請求項4記載の方法。
- 該組換えDNA分子が、ワクシニア4bプロモーターの下流に位置するL1遺伝子を含むことを特徴とする請求項7記載の方法。
- 請求項1ないし8のいずれか1記載の方法により得ることができるウイルス様粒子(VLP)。
- パピローマウイルスHPV−6、HPV−11、BPV−1またはHPV−16のウイルス様粒子(VLP)を調製する方法であって、
(a)パピローマウイルスL1蛋白およびパピローマウイルスL2蛋白を共にコードし、細胞内で発現した場合にパピローマウイルスL1およびL2蛋白がVLPを形成する組換えDNA分子でトランスフェクトした真核細胞を供し;次いで
(b)該真核細胞からVLPを得る
工程を含むことを特徴とする該方法。 - 該真核細胞が、酵母細胞、昆虫細胞または哺乳動物細胞を含むことを特徴とする請求項10記載の方法。
- 該組換えDNA分子が、組換えウイルスを用いて該真核細胞にトランスフェクトされることを特徴とする請求項10または11記載の方法。
- 該組換えウイルスが、昆虫細胞を感染させるバクロウィルスから由来することを特徴とする請求項12記載の方法。
- 該昆虫細胞が、スポドプテラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda)から由来することを特徴とする請求項13記載の方法。
- 該組換えウイルスが、ワクシニアウイルスから由来することを特徴とする請求項12記載の方法。
- 該組換えDNA分子が、ワクシニア4bプロモーターの下流に位置するL1遺伝子を含むことを特徴とする請求項15記載の方法。
- 請求項10ないし16のいずれか1記載の方法により得ることができるウイルス様粒子(VLP)。
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