JP3370334B2 - 酸化リポタンパク質の測定法およびその用途 - Google Patents
酸化リポタンパク質の測定法およびその用途Info
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Description
インI(β2−GPI)の特異的な結合反応を利用した酸
化リポタンパク質の免疫測定法及びその用途に関するも
のである。
いてはリポタンパク質(非極性脂質である、トリグリセ
リドとコレステリルエステルの核をリン脂質とタンパク
質で被った複合体)の形で組織から組織へと運搬されて
いる。リポタンパク質は、その水和密度の違いにより、
カイロミクロン(0.950g/ml以下)、超低密度リポタン
パク質(VLDL,0.950g/ml〜1.006g/ml)、低密度リポタ
ンパク質(LDL,1.006g/ml〜1.063g/ml)、および高密度
リポタンパク質(HDL,1.063g/ml〜1.210g/ml)の4種類
に分類されている。なお、これらリポタンパク質を構成
するタンパク質は、“アポリポタンパク質”と称されて
いる。
脈硬化の発症および進行に深く関与している。すなわ
ち、冠状動脈硬化症や脳動脈硬化症などの動脈硬化性疾
患の危険因子の一つは、血中リポタンパク質濃度(特
に、LDL濃度)が上昇する高コレステロール血症である
が、これらの疾患において、LDLは動脈硬化の促進作用
を、HDLはLDLとは逆の抑制作用をそれぞれ担っているも
のと考えられている。
脈硬化の発症を促すことも示唆されている。すなわち、
動脈硬化発症の初期の段階において、血管内膜のマクロ
ファージは、コレステロールを多量に含有する酸化LDL
をレセプターを介して特異的に取り込み泡沫化すること
が解明されている(なお、酸化を受けていないLDLは、
マクロファージによっては取り込まれない)。このこと
は、酸化LDLに対する抗体を用いた免疫組織染色によ
り、動脈硬化病変部位に酸化LDLが広く分布しているこ
とからも裏付けられている。一方、HDLは、泡沫細胞か
らのコレステロールの流出を刺激する作用を有するが、
酸化HDLではこの作用が著しく低下することも解明され
ている。
は密接に関係することが示唆され、酸化リポタンパクを
特異的に測定することは、動脈硬化の発症メカニズムの
解析や動脈硬化性疾患の診断の一助になり得る可能性を
有している。
ポタンパク質を免疫して得られる抗体を用いたRIA法ま
たはEIA法が報告されている(たとえば、Biochimica et
Biophysica Acta,963,208−214(1988)、Proc.Natl.A
cad.Sci.USA,86,1372−1376(1989)、Clinica Chimica
Acta,218,97−103(1993)参照)。
形態を詳細に解析した結果、血中を循環しているβ2
−GPIは酸化を受けたリポタンパク質の酸化部位と結合
すること、抗リン脂質抗体症候群由来の抗カルジオリ
ピン抗体がβ2−GPIと酸化リポタンパク質の複合体に
反応することから、β2−GPIと酸化リポタンパク質の
複合体にはβ2−GPIとリン脂質の複合体のみに存在す
る抗原決定基と類似の構造の存在が示唆されること、な
どを見いだし、本発明を完成させた。
薬とB群から選ばれた抗体試薬の少なくとも二種類の試
薬を使用し、サンドイッチ法によりβ2−GPIと酸化リ
ポタンパク質の複合体(β2−GPI・酸化リポタンパク
質複合体)を測定する方法(本発明方法1)及びキット
(本発明キット1)に関するものである。
アポリポタンパク質抗体) 固相化抗β2−GPI抗体 B群;抗カルジオリピン抗体 抗リポタンパク質抗体(または抗アポリポタン
パク質抗体) 抗β2−GPI抗体 また、本発明は、下記のC群から選ばれた固相試薬と
抗体試薬として抗カルジオリピン抗体を使用し、競合法
によりβ2−GPI・酸化リポタンパク質複合体を測定す
る方法(本発明方法2)及びキット(本発明キット2)
に関するものである。
疾患の診断に利用することに関するものである。
たものである。
ジオリピン(aCL)抗体の反応性を示したものである。
の反応性を示したものである。
化LDLの測定結果を示したものである。
チELISA法による酸化LDLの測定結果を示したものであ
る。
体を利用したサンドイッチELISA法による酸化LDLの測定
結果を示したものである。
ンドイッチELISA法による酸化LDLの測定結果を示したも
のである。
したサンドイッチELISA法による酸化LDLの測定結果を示
したものである。
チELISA法による酸化HDLの測定結果を示したものであ
る。
れる酸化LDL量を測定した結果を示したものである。
通りである。
の血清タンパク質。本発明においては、哺乳類に属する
動物由来のものであればいずれのものでも使用でき、β
2−GPI中の糖鎖が一部もしくは全部欠如したものであ
ってもよい。
リポタンパク質との結合部位を認識しない抗体が好まし
い。
中に見い出されるような、リン脂質とβ2−GPIの複合
体に反応する抗体。
パク質のβ2−GPI結合部位を認識しない抗体が好まし
い。
る抗体。特に、酸化リポタンパク質のβ2−GPI結合部
位を認識しない抗体が好ましい。
ル基、カルボキシル基などの極性基が導入された担体に
β2−GPIを固相化したものを指称する。
ポタンパク質を含有するものであれば特に限定されず、
具体的には血液または血清、血漿などの血液分画物など
を使用することができる。また、サンプルの前処理とし
て、酸化リポタンパク質を含むサンプルにβ2−GPIを
添加反応させ、β2−GPI・酸化リポタンパク質複合体
を形成させておくことが肝要である。ただし、血清サン
プルのように、すでに十分量のβ2−GPIが存在し、サ
ンプル中の酸化リポタンパク質がβ2−GPI・酸化リポ
タンパク質複合体を形成している場合には、上記前処理
を省略することができる。なお、この前処理は、本発明
方法の反応時に同時に行ってもかまわない。
ばれた固相試薬とB群から選ばれた抗体試薬の少なくと
も二種類の試薬を使用し、サンドイッチ法によりβ2−
GPI・酸化リポタンパク質複合体を測定する方法に関す
るものである。
アポリポタンパク質抗体) 固相化抗β2−GPI抗体 B群;抗カルジオリピン抗体 抗リポタンパク質抗体(または抗アポリポタン
パク質抗体) 抗β2−GPI抗体 上記A群とB群の各試薬の組み合わせは、酸化リポタ
ンパク質を測定できる組み合わせであれば特に限定され
ない。たとえば、好適な試薬の組み合わせとしては下記
の組み合わせを例示することができる。
パク質抗体)及び/または抗β2−GPI抗体 (組み合わせ2) A群:固相化抗リポタンパク質抗体(または固相化抗
アポリポタンパク質抗体) B群:抗カルジオリピン抗体及び/または抗β2−GP
I抗体 (組み合わせ3) A群:固相化抗β2−GPI抗体 B群:抗カルジオリピン抗体及び/または抗リポタン
パク質抗体(または抗アポリポタンパク質抗体) (組み合わせ4) A群:固相化抗カルジオリピン抗体 B群:抗カルジオリピン抗体 さらに好適な試薬の組み合わせとしては下記の組み合
わせを例示することができる。
パク質抗体) (組み合わせ6) A群:固相化抗リポタンパク質抗体(または固相化抗
アポリポタンパク質抗体) B群:抗カルジオリピン抗体及び/または抗β2−GP
I抗体 (組み合わせ7) A群:固相化抗β2−GPI抗体 B群:抗リポタンパク質抗体(または抗アポリポタン
パク質抗体) A及びB群の試薬を調製する際に使用する抗体として
は、それ自体公知の方法を適宜応用して調製したものを
使用することができる。
質抗体症候群の患者血清、またはこの血清から単離精製
された抗体画分であってもよく、またNZWマウスとBXSB
マウスからのF1マウスの脾臓細胞とミエローマ細胞との
細胞融合により得られるモノクローナル抗体であっても
よい。
抗体または抗β2−GPI抗体は、既に市販されているも
のもあり、その場合にはそれを使用することができる。
また、公知の各血清タンパク質を抗原として使用し、常
法により調製されたものを使用することもできる。使用
する上記各抗体の種類は、ポリクローナル抗体、モノク
ローナル抗体、それらの活性フラグメント〔F(ab')
2、Fab'など〕など特に制限されない。なお、上記各抗
体を調製する際に抗原として使用する各血清タンパク質
は哺乳動物由来のものが好ましく、血清中から単離精製
されたもの、組換えDNA手法により調製されたもののい
ずれであってもかまわない。
体としては、通常使用されているもの、たとえば、ポリ
塩化ビニル、ポリスチレン、スチレン−ジビニルベンゼ
ン共重合体、スチレン−無水マレイン酸共重合体、ナイ
ロン、ポリビニルアルコール、ポリアクリルアミド、ポ
リアクリロニトリル、ポリプロピレン、ポリメチレンメ
タクリレートなどの合成有機高分子化合物、デキストラ
ン誘導体(セファデックスなど)、アガロースゲル(セ
ファロース、バイオゲルなど)、セルロース(ペーパー
ディスク、濾紙など)などの多糖類、ガラス、シリカゲ
ル、シリコーンなどの無機高分子化合物を例示すること
ができ、これらはアミノ基、カルボキシル基、カルボニ
ル基、水酸基、スルヒドリル基などの官能基が導入され
たものであってもよい。特に、ポリスチレンまたはポリ
塩化ビニルを好適な例として挙げることができる。
ディスクなど)、粒子状(ビーズなど)、管状(試験管
など)、繊維状、膜状、微粒子状(ラテックス粒子な
ど)、カプセル状、小胞体状などいずれの形状であって
もよく、測定法に応じて好適な形状の担体を適宜選択す
ればよい。
体を結合させることにより調製することができる。担体
と抗体の結合は、物理的吸着法、イオン結合法、共有結
合法、包括法など公知の方法〔たとえば、「固定化酵
素」(千畑一郎編、昭和50年3月20日、(株)講談社発
行)参照〕を採用することができ、とりわけ、物理的吸
着法は簡便である点で好ましい。また、上記結合は直接
行ってもよく、両物質の間に他の物質(スペーサーな
ど)を介して行ってもよい。
抑制するため、ゼラチン、BSAなどの通常のブロッキン
グ剤を用いてブロッキング処理を施してもよい。
ている標識剤で標識されていてもよく、そのような標識
剤としては、放射性同位体(たとえば32P、3H、14C、
125Iなど)、酵素(たとえばβ−ガラクトシダーゼ、ペ
ルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、グルコース
−6−リン酸デヒドロゲナーゼ、カタラーゼ、グルコー
スオキシダーゼ、乳酸オキシダーゼ、アルコールオキシ
ダーゼ、モノアミンオキシダーゼなど)、補酵素・補欠
分子族(たとえば、FAD、FMN、ATP、ビオチン、ヘムな
ど)、フルオレセイン誘導体(たとえば、フルオレセイ
ンイソチオシアネート、フルオレセインチオフルバミル
など)、ローダミン誘導体(たとえば、テトラメチルロ
ーダミンBイソチオシアネートなど)、ウムベリフェロ
ンおよび1−アニリノ−8−ナフタレンスルホン酸など
の蛍光色素、ルミノール誘導体〔たとえば、ルミノー
ル、イソルミノール、N−(6−アミノヘキシル)−N
−エチルイソルミノールなど〕などを例示することがで
きる。
学実験講座5免疫生化学研究法」(株)東京化学同人、
(1986年発行)第102〜112頁〕に記載されているような
公知の方法から適宜選択して実施すればよい。
は、通常のサンドイッチ法の手順をそのまま採用すれば
よい。すなわち、固相試薬と被検サンプルを反応させ、
必要によりBF分離後、さらに抗体試薬を反応させる(ツ
ーステップ法)か、固相試薬、被検サンプル及び抗体試
薬を同時に反応させ(ワンステップ法)、反応後いずれ
の場合でもそれ自体公知の方法によりサンプル中の酸化
リポタンパク質を検出または定量することができる。
試薬と抗体試薬として抗カルジオリピン抗体を使用し、
競合法によりβ2−GPIと酸化リポタンパク質の複合体
を測定する方法に関するものである。
体試薬として使用する抗カルジオリピン抗体は、上述の
ものと同じものを例示することができる。
2−GPI複合体は、担体(前記の抗体の結合に用いたも
のと同じもの)上にカルジオリピンを常法により結合さ
せ、これをさらにβ2−GPIと反応させて得られたもの
である。
の担体にβ2−GPIを固定化する点を除けば、固相化抗
体試薬と同様にして得られたものである。なお、特定の
担体とは、前記の定義のように、物理化学的処理(例え
ば、放射線照射、オゾン処理など)により、合成樹脂の
表面に水酸基、カルボニル基、カルボキシル基などの極
性基が導入された担体であり、具体的には、EBプレート
(ラボシステムズ社製)、Hタイププレート、Cタイプ
プレート(住友ベークライト社製)、マキシソーププレ
ート(ヌンク社製)などを例示することができる。
は、通常の競合法の手順をそのまま採用すればよい。す
なわち、抗体試薬に対し、固相試薬と被検サンプル中の
β2−GPI・酸化リポタンパク質複合体を競合反応さ
せ、反応後それ自体公知の方法によりサンプル中の酸化
リポタンパク質を検出または定量することができる。
細に付いては、たとえば以下の文献を参照すればよい。
社、昭和54年5月1日発行) 石川栄治ら編「酵素免疫測定法」(第2版)((株)
医学書院、1982年12月15日発行) 臨床病理 臨時増刊 特集第53号「臨床検査のための
イムノアッセイ−技術と応用−」(臨床病理刊行会、19
83年発行) 「バイオテクノロジー事典」((株)シーエムシー、
1986年10月9日発行) 「Methods in ENZYMOLOGY Vol.70」(Immunochemical
techniques(Part A)) 「Methods in ENZYMOLOGY Vol.73」(Immunochemical
techniques(Part B)) 「Methods in ENZYMOLOGY Vol.74」(Immunochemical
techniques(Part C)) 「Methods in ENZYMOLOGY Vol.84」(Immunochemical
techniques(Part D:Selected Immunoassay)) 「Methods in ENZYMOLOGY Vol.92」(Immunochemical
techniques(Part E:Monoclonal Antibodies and Gene
ral Immunoassay Methods)) [〜はアカデミックプレス社発行] (2) 本発明のキット 本発明の測定キットの中、キット1は本発明方法1
を、キット2は本発明方法2をそれぞれ実施するための
ものである。
試薬とB群から選ばれた抗体試薬の少なくとも二種類の
試薬を構成試薬として含有することを特徴としている。
アポリポタンパク質抗体) 固相化抗β2−GPI抗体 B群;抗カルジオリピン抗体 抗リポタンパク質抗体(または抗アポリポタン
パク質抗体) 抗β2−GPI抗体 また、キット2は、下記のC群から選ばれた固相試薬
と抗体試薬として抗カルジオリピン抗体を構成試薬とし
て含有することを特徴とするものである。
調製することができる。また、上記A〜C群に属する各
試薬のほかに、必要により、発色試薬、反応停止用試
薬、標準抗原試薬、サンプル前処理用試薬などの各試薬
から測定法に応じた適当な試薬を適宜選択し、本発明の
キットに添付することができる。
(aCL)抗体陽性血清で、カルジオリピンとβ2−GPIの
複合体に結合性を有する。
産生細胞とミエローマ細胞を細胞融合して得たハイブリ
ドーマから得られるモノクローナルaCL抗体〔The Journ
al of Immunology,149,1063−1068(1992)〕で、カル
ジオリピンとβ2−GPIの複合体に結合性を有する。
エローマ細胞を細胞融合して得たハイブリドーマから得
られるモノクローナル抗β2−GPI抗体で、β2−GPIに
結合性を有する(WO92/19755)。ただし、β2−GPI上
の酸化リポタンパク質との結合部位は認識しない。
マ細胞を細胞融合して得たハイブリドーマから得られる
モノクローナル抗LDL抗体で、酸化LDL及び非酸化LDLに
結合性を有する。ただし、酸化LDLのβ2−GPI結合部位
を認識しない(第3図参照)。
可能である(J.Bio.Chem.,269,15274−15279(1994),S
cience 241,215−218(1988),Am.J.Pathol.,135,815−
825(1989).Biochim,Biophys.Acta.963,208−214(198
8)など参照) 1D2及び5G6 ヒト精製アポBタンパク質(Medix Biotech Inc.Fost
er,CA)を免疫したBALB/cマウスの脾細胞とミエローマ
細胞を細胞融合して得たハイブリドーマから得られるモ
ノクローナル抗アポBタンパク質抗体で、アポBタンパ
ク質に結合性を有する。ただし、酸化LDLのβ2−GPI結
合部位を認識しない(第3図参照)。
ているので、それを使用してもかまわない。
に結合性を有する。ただし、酸化HDLのβ2−GPI結合部
位を認識しない。
知の方法により容易に取得可能である。
C)を、5μMCuSO4を含むPBS(2ml)中で37℃、24時間
処理した。
対し、8.1%SDS(0.1ml)、20%酢酸(pH3.5、0.75ml)
および0.8%チオバルビツール酸(0.75ml)を加え、95
℃で1時間反応させた。冷却後、蒸留水(0.5ml)、n
−ブタノールとピリジンの混合溶媒(15:1、2.5ml)を
添加撹拌した。3000rpm、20分間の遠心後、有機層を採
取し、532nmの吸光度を測定した。なお、標準品として
テトラメトキシプロパンを用いた。過酸化脂質量をマロ
ンジアルデヒド当量で表わすと、非酸化LDLでは8.8nmol
/mgであるのに対し、酸化LDLでは50.8nmol/mgであっ
た。
L(OxLDL)または非酸化LDL(native LDL)を50μlず
つ添加し、4℃で16−24時間静置した。0.05%Tween20
含有PBS(PBS−Tween)で洗浄後、適宜希釈したβ2−G
PIを100μl入れ、室温で1時間反応させた。洗浄後、
ペルオキシダーゼ標識抗β2−GPI抗体(Cof−22)を10
0μlずつ入れ、さらに室温で1時間反応させた。洗浄
後、0.005%過酸化水素含有0.3mMテトラメチルベンジジ
ン(TMBZ)溶液を100μlずつ添加し、室温で10分間反
応後、2N硫酸を100μlずつ添加して反応を停止し、450
nmの吸光度を測定した。
−GPIが結合することが明らかとなった。
反応性(第2図) ポリスチレンプレートの各ウエルに2μg/mlの酸化LD
Lもしくは非酸化LDLを50μlずつ添加し、4℃で16−24
時間静置した。PBS−Tweenで洗浄後、β2−GPI(100μ
g/ml)存在下もしくは非存在下で、適宜希釈したWB−CA
L−1を室温で1時間反応させた。洗浄後、ペルオキシ
ダーゼ標識抗マウスIgG抗体を100μlずつ添加し、さら
に室温で1時間反応させた。洗浄後、0.005%過酸化水
素含有0.3mM TMBZ溶液を100μlずつ添加して室温で10
分間反応後、2N硫酸を100μlずつ添加して反応を停止
し、450nmの吸光度を測定した。
複合体のみにaCL抗体が結合することが明らかとなっ
た。
応性(第3図) ポリ塩化ビニルプレートの各ウェルに2μg/mlの酸化
LDLもしくは非酸化LDLを50μlずつ添加し、4℃で16−
24時間静置した。PBSで洗浄後、3%ゼラチン溶液を200
μlずつ入れ、室温で1時間静置した。ゼラチン溶液を
除去後、適宜希釈したβ2−GPIおよび一定量のペルオ
キシダーゼ標識抗LDL抗体(9F5−3、10E−3)もしく
はペルオキシダーゼ標識抗アポBタンパク質抗体(1D
2、5G6)を室温で1時間反応させた(全量50μl)。洗
浄後、0.005%過酸化水素含有0.3mM TMBZ溶液を100μ
lずつ添加して室温で10分間反応後、2N硫酸を50μlず
つ添加して反応を停止し、450nmの吸光度を測定した。
アポBタンパク質抗体の両抗体とも酸化LDLのβ2−GPI
結合部位を認識しないことが明らかとなった。
プレート〔Cタイププレート(住友ベークライト社
製)〕の各ウエルに10μg/mlのβ2−GPIを50μlずつ
添加し、4℃で16−24時間静置した。PBS−Tweenで洗浄
後、β2−GPI(100μg/ml)存在下もしくは非存在下
で、aCL抗体、すなわち100倍希釈したSLE−1血清もし
くは0.5μg/mlのWB−CAL−1を、適宜希釈した酸化LDL
もしくは非酸化LDLと室温で1時間反応させた。洗浄
後、ペルオキシダーゼ標識抗ヒトもしくはマウスIgG抗
体を100μlずつ添加し、さらに室温で1時間反応させ
た。洗浄後、0.005%過酸化水素含有0.3mM TMBZ溶液を
100μlずつ添加して室温で10分間反応後、2N硫酸を100
μlずつを添加して反応を停止し、450nmの吸光度を測
定した。
相化β2−GPIとβ2−GPI・酸化LDL複合体が競合的に
反応し、この原理を利用して酸化LDLを測定できること
が明らかとなった。
(1)(第5図) ポリスチレンプレートの各ウェルに5μg/mlのaCL抗
体(WB−CAL−1もしくはWB−CAL−3)を50μlずつ添
加し、4℃で16−24時間静置した。PBS−Tweenで洗浄
後、適宜希釈した酸化LDLあるいは非酸化LDLのサンプル
を50μl添加し、更に、200μg/mlのβ2−GPIを50μl
ずつ添加して、室温にて1時間反応させた。洗浄後、ペ
ルオキシダーゼ標識抗LDL抗体(9F5−3)を100μlず
つ添加し、室温で1分間反応させた。洗浄後、0.005%
過酸化水素含有0.3mM TMBZ溶液を100μlずつ添加して
室温で10分間反応後、2N硫酸を100μlずつを添加して
反応を停止し、450nmの吸光度を測定した。
を利用したサンドイッチ法によりβ2−GPI・酸化LDL複
合体を特異的に測定でき、酸化LDLの測定に利用できる
ことが明らかとなった。
(2)(第6図) ポリスチレンプレートの各ウェルに5μg/mlの抗アポ
Bタンパク質抗体(1D2もしくは5G6)を50μlずつ添加
し、4℃で16−24時間静置した。PBSで3回洗浄後、適
宜希釈した酸化LDLあるいは非酸化LDLのサンプルを50μ
l添加し、更に、200μg/mlのβ2−GPIを50μlずつ添
加して、室温にて1時間反応させた。洗浄後、ペルオキ
シダーゼ標識抗β2−GPI抗体(Cof−22)を100μlず
つ添加し、室温で1時間反応させた。洗浄後、0.005%
過酸化水素含有0.3mM TMBZ溶液を100μlずつ添加して
室温で10分間反応後、2N硫酸を100μlずつ添加して反
応を停止し、450nmの吸光度を測定した。
抗体と抗β2−GPI抗体を利用したサンドイッチ法によ
りβ2−GPI・酸化LDL複合体を特異的に測定でき、酸化
LDLの測定に利用できることが明らかとなった。
(3)(第7図) ポリ塩化ビニルプレートの各ウェルに10μg/mlの抗β
2−GPI抗体(Cof−22)を50μlずつ添加し、4℃で16
−24時間静置した。PBSで洗浄後、3%ゼラチン溶液を2
00μlずつ添加し、室温で1時間静置した。ゼラチン溶
液を除去した後、100μg/mlのβ2−GPIを50μlずつ添
加し、室温で1時間反応させた。洗浄後、酸化LDLある
いは非酸化LDLのサンプルを50μl添加し、室温で1時
間反応させた。洗浄後、ペルオキシダーゼ標識抗LDL抗
体(10E3−3)を50μlずつ添加し、室温にて1時間反
応させた。洗浄後、0.005%過酸化水素含有0.3mM TMBZ
溶液を100μlずつ添加して室温で10分間反応後、2N硫
酸を50μlずつ添加して反応を停止し、450nmの吸光度
を測定した。
抗LDL抗体を利用したサンドイッチ法によりβ2−GPI・
酸化LDL複合体を特異的に測定でき、酸化LDLの測定に利
用できることが明らかとなった。
(4)(第8図) ポリスチレンプレートの各ウェルに5μg/mlのaCL抗
体(WB−CAL−1)を50μlずつ添加し、4℃で16−24
時間静置した。PBSで洗浄後、3%ゼラチン溶液を300μ
lずつ添加し、室温で1時間静置した。ゼラチン溶液を
除去した後、200μg/mlのβ2−GPIを50μlずつ添加
し、さらに適宜希釈したリポタンパク質を50μlずつ添
加し、室温で2時間反応させた。PBSで洗浄後、ペルオ
キシダーゼ標識抗アポBタンパク質抗体(1D2)を50μ
lずつ添加し、室温にて1時間反応させた。PBSで洗浄
後、0.005%過酸化水素含有0.3mM TMBZ溶液を100μl
ずつ添加して室温で20分間反応後、2N硫酸を50μlずつ
添加して反応を停止し、450nmの吸光度を測定した。
タンパク質抗体を利用したサンドイッチ法によりβ2−
GPI・酸化LDL複合体を測定でき、酸化LDLの測定に利用
できることが明らかとなった。
9図) ポリスチレンプレートの各ウェルに5μg/mlのaCL抗
体(WB−CAL−1)を50μlずつ添加し、4℃で16−24
時間静置した。PBSで洗浄後、3%ゼラチン溶液を300μ
lずつ添加し、室温で1時間静置した。ゼラチン溶液を
除去した後、200μg/mlのβ2−GPIを50μlずつ添加
し、さらに適宜希釈したリポタンパク質を50μlずつ添
加し、室温で2時間反応させた。PBSで洗浄後、ペルオ
キシダーゼ標識抗HDL抗体(H1)を50μlずつ添加し、
室温にて1時間反応させた。PBSで洗浄後、0.005%過酸
化水素含有0.3mM TMBZ溶液を100μlずつ添加して室温
で20分間反応後、2N硫酸を50μlずつ添加して反応を停
止し、450nmの吸光度を測定した。
を利用したサンドイッチ法によりβ2−GPI・酸化HDL複
合体を測定でき、酸化HDLの測定に利用できることが明
らかとなった。
体(WB−CAL−1)を50μlずつ添加し、4℃で16−24
時間静置した。PBSで洗浄後、ゼラチン溶液を300μlず
つ添加し、室温で1時間静置してブロックした。ゼラチ
ン溶液を除去した後、200μg/mlのβ2−GPIを50μlず
つ添加し、さらに適宜希釈した血清検体を50μlずつ添
加し、室温にて2時間反応させた。PBSで洗浄後、ペル
オキシダーゼ標識抗アポB抗体(1D2)を100μlずつ添
加し、室温で1時間反応させた。PBSで洗浄後、0.005%
過酸化水素含有0.3mM TMBZ溶液を100μlずつ添加して
室温で20分間反応後、1N硫酸を100μlずつ添加して反
応を停止し、450nmの吸光度を測定した。
体に比べ、急性心筋梗塞患者(AMI)検体に含まれる酸
化LDLの存在量は有意に高値を示した。
β2−GPIとの特異的な結合を利用したものであって、
この特異的な結合反応を利用することにより、リポタン
パク質の実用的な測定法の提供を初めて可能としたので
ある。
を、血中の存在状態であるβ2−GPI・酸化リポタンパ
ク質複合体として測定するため、動脈硬化疾患症(たと
えば、糖尿病性動脈硬化、心筋梗塞、脳梗塞など)の臨
床症状が強く反映された測定値を得ることができ、これ
ら疾患の診断に有用である。
Claims (10)
- 【請求項1】試料中の酸化リポタンパク質の存在もしく
は非存在を検出するための方法であって、 β2−グリコプロテインI(β2−GPI)を含む試料で
あって酸化リポタンパク質を含む場合にはβ2−GPIと
酸化リポタンパク質との複合体を形成している試料を用
意し; 該試料と、下記のA群から選ばれる少なくとも一種の固
相化抗体試薬およびB群から選ばれる少なくとも一種の
標識化抗体試薬からなる少なくとも二種の抗体試薬とを
反応させて、該試料中のβ2−GPIと酸化リポタンパク
質との複合体をサンドイッチ法によりアッセイして; 次いで、酸化リポタンパク質の存在もしくは非存在の指
標である該標識化抗体試薬に結合した該複合体を検出し
て、該試料中における酸化リポタンパク質の存在もしく
は非存在を検出する、上記方法。 A群:固相化抗カルジオリピン抗体 固相化抗リポタンパク質抗体 固相化アポリポタンパク質抗体 固相化抗β2−GPI抗体 B群:抗カルジオリピン抗体 抗リポタンパク質抗体 抗アポリポタンパク質抗体 抗β2−GPI抗体 - 【請求項2】固相化抗体試薬が固相化抗カルジオリピン
抗体であり、標識化抗体試薬が抗リポタンパク質抗体、
抗アポリポタンパク質抗体または抗β2−GPI抗体であ
る請求項1の方法。 - 【請求項3】固相化抗体試薬が固相化抗カルジオリピン
抗体であり、標識化抗体試薬が抗リポタンパク質抗体ま
たは抗アポリポタンパク質抗体と抗β2−GPI抗体であ
る請求項1の方法。 - 【請求項4】固相化抗体試薬が固相化抗リポタンパク質
または固相化抗アポリポタンパク質抗体であり、標識化
抗体試薬が抗カルジオリピン抗体または抗β2−GPI抗
体である請求項1の方法。 - 【請求項5】固相化抗体試薬が固相化抗リポタンパク質
抗体または固相化抗アポリポタンパク質抗体であり、標
識化抗体試薬が抗カルジオリピン抗体と抗β2−GPI抗
体である請求項1の方法。 - 【請求項6】固相化抗体試薬が固相化抗β2−GPI抗体
であり、標識化抗体試薬が抗カルジオリピン抗体、抗リ
ポタンパク質抗体または抗アポリポタンパク質抗体であ
る請求項1の方法。 - 【請求項7】固相化抗体試薬が固相化抗β2−GPI抗体
であり、標識化抗体試薬が抗リポタンパク質抗体または
抗アポリポタンパク質抗体と抗β2−GPI抗体である請
求項1の方法。 - 【請求項8】固相化抗体試薬が固相化抗カルジオリピン
抗体であり、標識化抗体試薬が抗カルジオリピン抗体で
ある請求項1の方法。 - 【請求項9】試料中の酸化リポタンパク質の存在もしく
は非存在を定量的に評価するための方法であって、 β2−グリコプロテインI(β2−GPT)を含む試料で
あって酸化リポタンパク質を含む場合にはβ2−GPTと
酸化リポタンパク質との複合体を形成している試料を用
意し; 該試料と、下記のA群から選ばれる少なくとも一種の固
相化抗体試薬およびB群から選ばれる少なくとも一種の
標識化抗体試薬からなる少なくとも二種の抗体試薬とを
反応させて、該試料中のβ2−GPIと酸化リポタンパク
質との複合体をサンドイッチ法によりアッセイして; 次いで、酸化リポタンパク質の存在もしくは非存在の指
標である該標識化抗体試薬に結合した該複合体を定量的
に評価して、該試料中における酸化リポタンパク質の存
在もしくは非存在を定量的に評価する、上記方法。 A群:固相化抗カルジオリピン抗体 固相多化抗リポタンパク質抗体 固相化アポリポタンパク質抗体 固相化抗β2−GPI抗体 B群:抗カルジオリピン抗体 抗リポタンパク質抗体 抗アポリポタンパク質抗体 抗β2−GPI抗体 - 【請求項10】動脈硬化性疾患の危険性を評価する請求
項9の方法。
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