JP2970277B2 - シャクナゲ属植物における培養苗条の発根促進法 - Google Patents
シャクナゲ属植物における培養苗条の発根促進法Info
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Description
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明はシャクナゲ属（Rhododen
dron）植物における培養苗条の発根促進法に関する。
dron）植物における培養苗条の発根促進法に関する。
【０００２】
【従来技術】シャクナゲ属植物は、北半球の寒帯および
温帯に分布し、南アジア、マレーシア、ニューギニア、
オーストラリアなどの山地にも産し、600 余種にのぼ
る。シャクナゲ属植物は、庭園樹のほか鉢植え、切花等
に用いられる。これらのシャクナゲ属植物のクローン増
殖は、種苗の増殖は従来挿し木によって行われてきた。
しかし、このような増殖法は多くの人手と土地を必要と
するばかりでなく、根が損傷を受けやすいという問題点
がある。また近年植物組織培養技術を利用した種苗の増
殖法も行われているが、培養中に発根するために、土壌
への移植時に根が損傷を受けることが多い。
温帯に分布し、南アジア、マレーシア、ニューギニア、
オーストラリアなどの山地にも産し、600 余種にのぼ
る。シャクナゲ属植物は、庭園樹のほか鉢植え、切花等
に用いられる。これらのシャクナゲ属植物のクローン増
殖は、種苗の増殖は従来挿し木によって行われてきた。
しかし、このような増殖法は多くの人手と土地を必要と
するばかりでなく、根が損傷を受けやすいという問題点
がある。また近年植物組織培養技術を利用した種苗の増
殖法も行われているが、培養中に発根するために、土壌
への移植時に根が損傷を受けることが多い。
【０００３】シャクナゲ属植物の発根促進法の例として
は、Pierik & Steegmans (ScientiaHorticulturae、vo
l.3 、1975) が、樹齢、照度、日長、糖分、植物ホルモ
ン等の条件を各発根を促進する要因について調べてい
る。また、Economou & Read (Journal of the American
Society for Horticultural Science、vol.111 、No.
2、1986) は、床土の種類とpHを各試験を行った。この
結果、床土は、ピートモス：バーミキュライト：パーラ
イト＝２：１：１の割合が良く、pHはpH4.0 が最適とい
う結論を得ている。これら２点の報告はいずれも通常の
実生あるいは挿し木による苗を材料としているものであ
り、培養苗条の発根促進法については述べられていな
い。
は、Pierik & Steegmans (ScientiaHorticulturae、vo
l.3 、1975) が、樹齢、照度、日長、糖分、植物ホルモ
ン等の条件を各発根を促進する要因について調べてい
る。また、Economou & Read (Journal of the American
Society for Horticultural Science、vol.111 、No.
2、1986) は、床土の種類とpHを各試験を行った。この
結果、床土は、ピートモス：バーミキュライト：パーラ
イト＝２：１：１の割合が良く、pHはpH4.0 が最適とい
う結論を得ている。これら２点の報告はいずれも通常の
実生あるいは挿し木による苗を材料としているものであ
り、培養苗条の発根促進法については述べられていな
い。
【０００４】また、培養苗条の発根促進法については、
特開昭63-109722 号公報に、吸着剤を含有する培地によ
る方法が示され、また、特開平1-269432号公報にはサイ
トカイニン類植物ホルモンだけを添加した液体倍地を用
いて根を持たない植物苗条を増殖させ、培養液を含浸さ
せた支持材に根を持たない苗条を挿して発根を促進させ
る方法も示されている。
特開昭63-109722 号公報に、吸着剤を含有する培地によ
る方法が示され、また、特開平1-269432号公報にはサイ
トカイニン類植物ホルモンだけを添加した液体倍地を用
いて根を持たない植物苗条を増殖させ、培養液を含浸さ
せた支持材に根を持たない苗条を挿して発根を促進させ
る方法も示されている。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】上記したような、従来
知られている植物種苗の生産方法では、生産工程におい
て根が損傷を受け易く、そのためこのような根部に損傷
のある幼種苗を育成してもその後の成育が悪く歩留まり
が低いという問題がある。また全般的にみて、従来の種
苗生産方法では人手がかかり生産効率が低い。本発明者
等はかかる状況のもとに種苗の生産工程において、発根
させた根が損傷を受けることのないような種苗生産方法
を探索し、これによって活力のある生育安定性の高い種
苗を効率良く生産する方法を提供するものである。
知られている植物種苗の生産方法では、生産工程におい
て根が損傷を受け易く、そのためこのような根部に損傷
のある幼種苗を育成してもその後の成育が悪く歩留まり
が低いという問題がある。また全般的にみて、従来の種
苗生産方法では人手がかかり生産効率が低い。本発明者
等はかかる状況のもとに種苗の生産工程において、発根
させた根が損傷を受けることのないような種苗生産方法
を探索し、これによって活力のある生育安定性の高い種
苗を効率良く生産する方法を提供するものである。
【０００６】
【課題を解決するための手段】本発明は、シャクナゲ植
物の茎頂部の組織片を第１回目の培養としてオーキシン
系植物ホルモン0.01〜5.0mg/l 、サイトカイニン系植物
ホルモン0.01〜5.0mg/l を含む培地を用いて無菌的に茎
頂部を伸長させ、実質的に根を持たない苗条に培養し、
ついで第２回目の培養としてこの苗条をオーキシン系植
物ホルモン0.01〜5.0mg/l 、サイトカイニン系植物ホル
モン0.01〜5.0mg/l を含む培地に移植し増殖を行い、６
〜７葉を持つ苗条に育成し、この苗条の基部から２〜４
枚の葉を切除し、次いでオーキシン系植物ホルモン0.01
〜5.0 mg/lの溶液に0.5 〜７２時間浸漬し、次いで発根
用床土に移植し、苗条を発根せしめて植物体にすること
を特徴とするシャクナゲ属植物における培養苗条の発根
促進法に係るものである。
物の茎頂部の組織片を第１回目の培養としてオーキシン
系植物ホルモン0.01〜5.0mg/l 、サイトカイニン系植物
ホルモン0.01〜5.0mg/l を含む培地を用いて無菌的に茎
頂部を伸長させ、実質的に根を持たない苗条に培養し、
ついで第２回目の培養としてこの苗条をオーキシン系植
物ホルモン0.01〜5.0mg/l 、サイトカイニン系植物ホル
モン0.01〜5.0mg/l を含む培地に移植し増殖を行い、６
〜７葉を持つ苗条に育成し、この苗条の基部から２〜４
枚の葉を切除し、次いでオーキシン系植物ホルモン0.01
〜5.0 mg/lの溶液に0.5 〜７２時間浸漬し、次いで発根
用床土に移植し、苗条を発根せしめて植物体にすること
を特徴とするシャクナゲ属植物における培養苗条の発根
促進法に係るものである。
【０００７】以下に本発明をよりさらに詳細に説明す
る。シャクナゲ属植物の組織 本発明に適用できるシャクナゲ属植物としては、アズマ
シャクナゲ、オオバシャクナゲ、キバナシャクナゲ、ツ
クシショクナゲ、ハクサンシャクナゲ、ホソバシャクナ
ゲ、ヤクシマシャクナゲ、ヒカゲツツジ、ゲンカイツツ
ジ、エゾムラサキツツジ、サカイツツジ、バイカツツ
ジ、エゾツツジ、チベットシャクナゲ、ケナシハクサン
シャクナゲ、ホンシャクナゲ、ニッコウキバナシャクナ
ゲ、ウラジロヒカゲツツジ、シロバナサカイツツジ、カ
ラムラサキツツジ、ヤマツツジ、オオシマツツジ、キリ
シマツツジ、ミヤマキリシマサツキ、マルバサツキ、フ
ヨウホウ、ミヤコツツジ、ハンノウツツジ、ブンゴニシ
キ、フジツツジ、オオヤマツツジ、アシタカツツジ、ウ
ンゼンツツジ、ヤクシマツツジ、サクラツツジ、ヨドガ
ワツツジ、チョウセンヤマツツジ、オオムラサキ、キシ
ツツジ、ケラマツツジ、モチツツジ、ムラサキリュウキ
ョウツツジ、テボタン、コメツツジ、オオコメツツジ、
チョウジコメツツジ、サイセカ、ミツバツツジ、トサノ
ミツバツツジ、コバノミツバツツジ、アラゲミツバツツ
ジ、トウゴクミツツジ。ダイセンミツバツツジ、サイコ
クミツバツツジ、コヨスミミツバツツジ、オンツツジ、
アマギツツジ、ジングウツツジ、ゴヨウツツジ、クロフ
ネツツジ、レンゲツツジ、ムラサキヤシオツツジ、アケ
ボノツツジ、アカヤシオ、オオバツツジなどの他、これ
らの栽培品種および種間雑種がある。また、組織培養に
用いる組織片（外植体）としては頂芽及び腋芽の茎頂を
使用することが有効である。
る。シャクナゲ属植物の組織 本発明に適用できるシャクナゲ属植物としては、アズマ
シャクナゲ、オオバシャクナゲ、キバナシャクナゲ、ツ
クシショクナゲ、ハクサンシャクナゲ、ホソバシャクナ
ゲ、ヤクシマシャクナゲ、ヒカゲツツジ、ゲンカイツツ
ジ、エゾムラサキツツジ、サカイツツジ、バイカツツ
ジ、エゾツツジ、チベットシャクナゲ、ケナシハクサン
シャクナゲ、ホンシャクナゲ、ニッコウキバナシャクナ
ゲ、ウラジロヒカゲツツジ、シロバナサカイツツジ、カ
ラムラサキツツジ、ヤマツツジ、オオシマツツジ、キリ
シマツツジ、ミヤマキリシマサツキ、マルバサツキ、フ
ヨウホウ、ミヤコツツジ、ハンノウツツジ、ブンゴニシ
キ、フジツツジ、オオヤマツツジ、アシタカツツジ、ウ
ンゼンツツジ、ヤクシマツツジ、サクラツツジ、ヨドガ
ワツツジ、チョウセンヤマツツジ、オオムラサキ、キシ
ツツジ、ケラマツツジ、モチツツジ、ムラサキリュウキ
ョウツツジ、テボタン、コメツツジ、オオコメツツジ、
チョウジコメツツジ、サイセカ、ミツバツツジ、トサノ
ミツバツツジ、コバノミツバツツジ、アラゲミツバツツ
ジ、トウゴクミツツジ。ダイセンミツバツツジ、サイコ
クミツバツツジ、コヨスミミツバツツジ、オンツツジ、
アマギツツジ、ジングウツツジ、ゴヨウツツジ、クロフ
ネツツジ、レンゲツツジ、ムラサキヤシオツツジ、アケ
ボノツツジ、アカヤシオ、オオバツツジなどの他、これ
らの栽培品種および種間雑種がある。また、組織培養に
用いる組織片（外植体）としては頂芽及び腋芽の茎頂を
使用することが有効である。
【０００８】培地 本発明に使用する培地は植物の組織培養に一般に用いら
れる培地を広く用いることができる。例えば、ムラシゲ
・スクーグ培地、Litvayの培地（ＬＭ培地）、Woody pl
ant medium培地（ＷＰＭ培地）あるいはこれらの培地の
組成を改変した培地などを例示できるが、本発明ではこ
の中でも特にＷＰＭ培地、もしくはＷＰＭ培地を改変し
た培地を用いるのが好ましい
れる培地を広く用いることができる。例えば、ムラシゲ
・スクーグ培地、Litvayの培地（ＬＭ培地）、Woody pl
ant medium培地（ＷＰＭ培地）あるいはこれらの培地の
組成を改変した培地などを例示できるが、本発明ではこ
の中でも特にＷＰＭ培地、もしくはＷＰＭ培地を改変し
た培地を用いるのが好ましい
【０００９】植物ホルモン 培地の植物ホルモンとしてはナフタレン酢酸（ＮＡ
Ａ）、インドール−３−酢酸（ＩＡＡ）、インドール−
３−酪酸（ＩＢＡ）、２，４−シクロロフェノキシ酢酸
（2,4-D ）、インドール−３−プロピオン酸（ＩＰ
Ａ）、ベンゾフラン−３−酢酸（ＢＦＡ），フェニル酪
酸（ＰＢＡ）、およびこれらの誘導体等のオーキシン
類、およびベンジルアデニン（ＢＡ）、カイネチン、ゼ
アチン、２−イソペンテニルアデニン（2iP ）、（２−
クロル−４−ピリジル）−３−フェニル尿素（４ＰＵ）
等のサイトカイニン類を例示できる。
Ａ）、インドール−３−酢酸（ＩＡＡ）、インドール−
３−酪酸（ＩＢＡ）、２，４−シクロロフェノキシ酢酸
（2,4-D ）、インドール−３−プロピオン酸（ＩＰ
Ａ）、ベンゾフラン−３−酢酸（ＢＦＡ），フェニル酪
酸（ＰＢＡ）、およびこれらの誘導体等のオーキシン
類、およびベンジルアデニン（ＢＡ）、カイネチン、ゼ
アチン、２−イソペンテニルアデニン（2iP ）、（２−
クロル−４−ピリジル）−３−フェニル尿素（４ＰＵ）
等のサイトカイニン類を例示できる。
【００１０】さらに、発根促進に用いる植物ホルモンと
して、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）、インドール−３−酢
酸（ＩＡＡ）、インドール−３−酪酸（ＩＢＡ）、２，
４−シクロロフェノキシ酢酸（2,4-D ）、インドール−
３−プロピオン酸（ＩＰＡ）、ベンゾフラン−３−酢酸
（ＢＦＡ），フェニル酪酸（ＰＢＡ）、およびこれらの
誘導体等のオーキシン類を、例示できる。
して、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）、インドール−３−酢
酸（ＩＡＡ）、インドール−３−酪酸（ＩＢＡ）、２，
４−シクロロフェノキシ酢酸（2,4-D ）、インドール−
３−プロピオン酸（ＩＰＡ）、ベンゾフラン−３−酢酸
（ＢＦＡ），フェニル酪酸（ＰＢＡ）、およびこれらの
誘導体等のオーキシン類を、例示できる。
【００１１】根を持たない苗条の再生 上記の培地にサイトカイニン類とオーキシン類との組合
せによる植物ホルモン及びショ糖を添加した固体もしく
は液体倍地に、表面殺菌を行ったシャクナゲ属植物の茎
頂の組織片を植え付ける。培養条件は室温15〜30℃、10
00〜20000luxの照度で明期10〜16時間、暗期14〜８時間
を与え培養する。組織片を植え付け後約４週間程度で組
織片から苗条の再生が始まり、約８週間後には苗高１〜
２cm程度に伸長する。
せによる植物ホルモン及びショ糖を添加した固体もしく
は液体倍地に、表面殺菌を行ったシャクナゲ属植物の茎
頂の組織片を植え付ける。培養条件は室温15〜30℃、10
00〜20000luxの照度で明期10〜16時間、暗期14〜８時間
を与え培養する。組織片を植え付け後約４週間程度で組
織片から苗条の再生が始まり、約８週間後には苗高１〜
２cm程度に伸長する。
【００１２】根を持たない苗条の増殖（第１回目の培
養） 上記の培地にサイトカイニン類とオーキシン類との組合
せによる植物ホルモン及びショ糖を添加した固体培地に
表面殺菌を行ったシャクナゲ属植物の組織片を植え付け
る。培養条件は室温10〜30℃、1000〜20000lux、明期12
〜16時間、暗期12〜８時間である。
養） 上記の培地にサイトカイニン類とオーキシン類との組合
せによる植物ホルモン及びショ糖を添加した固体培地に
表面殺菌を行ったシャクナゲ属植物の組織片を植え付け
る。培養条件は室温10〜30℃、1000〜20000lux、明期12
〜16時間、暗期12〜８時間である。
【００１３】根を持たない苗条の増殖（第２回目の培
養） 上記によって再生した根を持たない苗条を、前述の培地
にサイトカイニン類とオーキシン類との組合せによる植
物ホルモン及びショ糖を添加した固体培地に移植する。
培養条件は根を持たない苗条の再生の条件と同様である
が、好ましい条件は室温15〜25℃、5000〜15000lux、明
期12〜16時間、暗期12〜８時間である。
養） 上記によって再生した根を持たない苗条を、前述の培地
にサイトカイニン類とオーキシン類との組合せによる植
物ホルモン及びショ糖を添加した固体培地に移植する。
培養条件は根を持たない苗条の再生の条件と同様である
が、好ましい条件は室温15〜25℃、5000〜15000lux、明
期12〜16時間、暗期12〜８時間である。
【００１４】根を持たない苗条の移植後、１〜３週間程
度で苗条の増殖が始まる。この増殖の仕方は個体によっ
て異なるが、大別して次の２種類になる。１つの増殖形
態は、不定芽を多数形成し、多芽体となり増殖するもの
である。もう１つの増殖形態は、根を持たない苗条の基
部にカルスを形成し、このカルスから不定苗条が再分化
し増殖する。また、この苗条の基部に形成されたカルス
を切取り新鮮培地に移植することによって根を持たない
苗条の再分化及び増殖が図れるものである。
度で苗条の増殖が始まる。この増殖の仕方は個体によっ
て異なるが、大別して次の２種類になる。１つの増殖形
態は、不定芽を多数形成し、多芽体となり増殖するもの
である。もう１つの増殖形態は、根を持たない苗条の基
部にカルスを形成し、このカルスから不定苗条が再分化
し増殖する。また、この苗条の基部に形成されたカルス
を切取り新鮮培地に移植することによって根を持たない
苗条の再分化及び増殖が図れるものである。
【００１５】根を持たない苗条からの発根 上記によって増殖した根を持たない苗条をオーキシン系
植物ホルモン0.01〜5.0 mg/lを添加した溶液に0.5 〜７
２時間浸漬し、発根用培床に移して発根させる。この場
合の床土として具体的にはパーライト、バーミキュライ
ト、鹿沼土、赤玉土、日高砂（火山灰等の火山噴出
物）、畑土、ピートモス、ガラスビーズ、川砂、砂利等
または、これらを混合したものを例示できる。床土は苗
条を支えることのできるものであれば通常どのような形
のものでも、又はどのような材質のものでも構わない。
床土は必要に応じて滅菌処理を行う。この床土に苗条を
適宜間隔を保って１つ１つ挿して発根が行われる。な
お、この時、ビニール、プラスチックなどの非通気性膜
を用いて、床土からの水分の蒸発を防ぎ、高湿度を保つ
処理を行うことが望ましい。
植物ホルモン0.01〜5.0 mg/lを添加した溶液に0.5 〜７
２時間浸漬し、発根用培床に移して発根させる。この場
合の床土として具体的にはパーライト、バーミキュライ
ト、鹿沼土、赤玉土、日高砂（火山灰等の火山噴出
物）、畑土、ピートモス、ガラスビーズ、川砂、砂利等
または、これらを混合したものを例示できる。床土は苗
条を支えることのできるものであれば通常どのような形
のものでも、又はどのような材質のものでも構わない。
床土は必要に応じて滅菌処理を行う。この床土に苗条を
適宜間隔を保って１つ１つ挿して発根が行われる。な
お、この時、ビニール、プラスチックなどの非通気性膜
を用いて、床土からの水分の蒸発を防ぎ、高湿度を保つ
処理を行うことが望ましい。
【００１６】以下、本発明の方法を実施例に基づいて具
体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限
定されるものではない。
体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限
定されるものではない。
レンゲツツジ品種Exbury Azalea から選抜された個体外植体とその表面殺菌方法 レンゲツツジの品種Exbury Azalea から選抜された20年
生の個体から茎頂を含む約２cmの長さの枝を切り取って
以下の方法で表面殺菌を行った。70％エタノールで20秒
間浸漬しながら超音波洗浄を行い、続いて0.3 ％Tween2
0を含む20倍に希釈したアンチホルミンに３分間浸漬す
る（このうち１分間は超音波洗浄を行う）。この後、滅
菌水で３回すすぎアンチホルミンを洗い流す。
生の個体から茎頂を含む約２cmの長さの枝を切り取って
以下の方法で表面殺菌を行った。70％エタノールで20秒
間浸漬しながら超音波洗浄を行い、続いて0.3 ％Tween2
0を含む20倍に希釈したアンチホルミンに３分間浸漬す
る（このうち１分間は超音波洗浄を行う）。この後、滅
菌水で３回すすぎアンチホルミンを洗い流す。
【００１７】根を持たない苗条の再生 （培地及び植物ホルモン）一部改変したＷＰＭ培地（第
１表）を１／２に希釈し、これにショ糖３％を添加し
た。この培地にサイトカイニン系植物ホルモンとして２
ｉＰ ２mg/lとオーキシン系植物ホルモンとしてＩＡＡ
0.1mg/lを加え、pH5.4 に調整した。この培地を100ml
容量のガラス製三角フラスコに40mlずつ分注し、さらに
寒天0.7 ％を加えオートクレーブによって滅菌した（12
1 ℃、1.2 kg/cm2、15分間）。
１表）を１／２に希釈し、これにショ糖３％を添加し
た。この培地にサイトカイニン系植物ホルモンとして２
ｉＰ ２mg/lとオーキシン系植物ホルモンとしてＩＡＡ
0.1mg/lを加え、pH5.4 に調整した。この培地を100ml
容量のガラス製三角フラスコに40mlずつ分注し、さらに
寒天0.7 ％を加えオートクレーブによって滅菌した（12
1 ℃、1.2 kg/cm2、15分間）。
【００１８】
【表１】 第１表 Woody plant medium（ＷＰＭ）改変培地の含有成分 Components (mg/l) ────────────────────────── NH4NO3 400 K2SO4 990 MgSO4・ 7H2O 370 CaCl2・ 2H2O 96 Ca(NO3)2 ・ 4H2O 556 KH2PO4 170 H3BO4 6.2 MnSO4・ 4H2O 22.3 ZnSO4・ 7H2O 8.6 CuSO4・ 5H2O 0.025 Na2MoO2・ 2H2O 0.25 CoCl2・ 6H2O 0.025 Na2・ EDTA 37.3 FeSO4・ 7H2O 27.8 myo-Inositole 100.0 Thiamin HCl 0.1 Pyridoxine HCl 0.5 Nicotinic acid 0.5 Glycine 2.0 ──────────────────────────
【００１９】（外植体の植え付け及び培養条件）これに
前述の表面殺菌した茎頂を含む枝から成長点を含む１〜
２mmの大きさに茎頂部分を切り取り、１フラスコ当り２
茎頂ずつ植え付け、23℃で16時間明期（2000lux ）、８
時間暗期で培養した。茎頂植え付け後、約４週間で苗条
の伸長が認められた。また、８週間後には苗高が１cm程
度に伸長する。
前述の表面殺菌した茎頂を含む枝から成長点を含む１〜
２mmの大きさに茎頂部分を切り取り、１フラスコ当り２
茎頂ずつ植え付け、23℃で16時間明期（2000lux ）、８
時間暗期で培養した。茎頂植え付け後、約４週間で苗条
の伸長が認められた。また、８週間後には苗高が１cm程
度に伸長する。
【００２０】根を持たない苗条の増殖 （培地及び植物ホルモン）根を持たない苗条の再生に用
いた培地を同様のショ糖、植物ホルモンを含む培地をpH
5.4 に調整し、ミリポアフィルター付のポリカーボネイ
ト製培養ポット（底面積：約44cm2 ）に60mlずつ分注
し、さらに寒天0.7 ％を加え、オートクレーブによって
滅菌した（121 ℃、1.2 kg/cm2、15分間）。
いた培地を同様のショ糖、植物ホルモンを含む培地をpH
5.4 に調整し、ミリポアフィルター付のポリカーボネイ
ト製培養ポット（底面積：約44cm2 ）に60mlずつ分注
し、さらに寒天0.7 ％を加え、オートクレーブによって
滅菌した（121 ℃、1.2 kg/cm2、15分間）。
【００２１】（苗条の植え付け及び培養条件）この培地
に前述した根を持たない苗条を１ポット当り５〜７本程
度植え付け、外植体を培養した条件で培養した。増殖培
地移植後４〜８週間程度で根を持たない苗条の根元にカ
ルスが形成させ、このカルスから２〜３本の苗条が再分
化する。また、植え付けた根を持たない苗条の葉腋から
２〜３本程度の不定芽が伸長する。この苗条の根元にで
きたカルスから根を持たない苗条を切除し、成分の同じ
新鮮培地に移植することによって、同様の過程を経て、
根を持たない苗条が増殖できる。また、苗条の根元にで
きたカルスを成分の同じ新鮮培地に移植し、培養するこ
とによって、カルスから苗条の再分化が起こり、苗条の
増殖が図れる。これらの作業を繰り返すことによって、
半永久的に苗条の増殖が図れる。なお、この実施例にお
ける増殖率は４〜６倍である。増殖培地移植後、４〜６
週間で、６〜７葉を持つ根を持たない苗条になる。
に前述した根を持たない苗条を１ポット当り５〜７本程
度植え付け、外植体を培養した条件で培養した。増殖培
地移植後４〜８週間程度で根を持たない苗条の根元にカ
ルスが形成させ、このカルスから２〜３本の苗条が再分
化する。また、植え付けた根を持たない苗条の葉腋から
２〜３本程度の不定芽が伸長する。この苗条の根元にで
きたカルスから根を持たない苗条を切除し、成分の同じ
新鮮培地に移植することによって、同様の過程を経て、
根を持たない苗条が増殖できる。また、苗条の根元にで
きたカルスを成分の同じ新鮮培地に移植し、培養するこ
とによって、カルスから苗条の再分化が起こり、苗条の
増殖が図れる。これらの作業を繰り返すことによって、
半永久的に苗条の増殖が図れる。なお、この実施例にお
ける増殖率は４〜６倍である。増殖培地移植後、４〜６
週間で、６〜７葉を持つ根を持たない苗条になる。
【００２２】根を持たない苗条の発根 実施例１ 上記の根を持たない苗条を、基部から２〜４枚の葉を切
除し、インドール酪酸(IBA) 0.1mg /l溶液に24時間浸漬
し、この苗条を滅菌したバーミキュライトの床土に挿
し、ビニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ
月間育成し発根率を測定した。その結果を第２表に示し
た。ここで、発根率は以下の方法で算出した。 発根率＝〔（発根した苗条数）÷（処理した苗条数）〕
×100 ％
除し、インドール酪酸(IBA) 0.1mg /l溶液に24時間浸漬
し、この苗条を滅菌したバーミキュライトの床土に挿
し、ビニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ
月間育成し発根率を測定した。その結果を第２表に示し
た。ここで、発根率は以下の方法で算出した。 発根率＝〔（発根した苗条数）÷（処理した苗条数）〕
×100 ％
【００２３】実施例２ 実施例１で用いた根を持たない苗条を、基部から２〜４
枚の葉を切除し、ＩＢＡ 0.1mg/l溶液に24時間浸漬し、
この苗条を滅菌した日高砂小粒（粒径２mm以下）の床土
に挿し、ビニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で
３ヵ月間育成し発根率を測定した。その結果を第２表に
示した。ここで、発根率は実施例１の方法で算出した。
枚の葉を切除し、ＩＢＡ 0.1mg/l溶液に24時間浸漬し、
この苗条を滅菌した日高砂小粒（粒径２mm以下）の床土
に挿し、ビニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で
３ヵ月間育成し発根率を測定した。その結果を第２表に
示した。ここで、発根率は実施例１の方法で算出した。
【００２４】実施例３ 実施例１で用いた根を持たない苗条を、基部から２〜４
枚の葉を切除し、ＩＢＡ 0.1mg/l溶液に24時間浸漬し、
この苗条を滅菌したバーミキュライトと日高砂小粒（粒
径２mm以下）の混合の床土に挿し、ビニールで覆い、高
湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育成し発根率を測定
した。その結果を第２表に示した。ここで、発根率は実
施例１の方法で算出した。
枚の葉を切除し、ＩＢＡ 0.1mg/l溶液に24時間浸漬し、
この苗条を滅菌したバーミキュライトと日高砂小粒（粒
径２mm以下）の混合の床土に挿し、ビニールで覆い、高
湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育成し発根率を測定
した。その結果を第２表に示した。ここで、発根率は実
施例１の方法で算出した。
【００２５】実施例４ 実施例１で用いた根を持たない苗条を、基部から２〜４
枚の葉を切除し、ＩＢＡ 0.1 mg/l溶液に24時間浸漬
し、この苗条を滅菌したバーミキュライトと日高砂大粒
（粒径４mm以下）の混合の床土に挿し、ビニールで覆
い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育成し発根率
を測定した。その結果を第２表に示した。ここで、発根
率は実施例１の方法で算出した。
枚の葉を切除し、ＩＢＡ 0.1 mg/l溶液に24時間浸漬
し、この苗条を滅菌したバーミキュライトと日高砂大粒
（粒径４mm以下）の混合の床土に挿し、ビニールで覆
い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育成し発根率
を測定した。その結果を第２表に示した。ここで、発根
率は実施例１の方法で算出した。
【００２６】比較例１ 実施例１で用いた根を持たない苗条を、基部から２〜４
枚の葉を切除し、切り口に市販の発根促進剤オキシベロ
ンを塗布し、この苗条を実施例１と同じ床土に挿し、ビ
ニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育
成し発根率を測定した。その結果を第３表に示した。こ
こで、発根率は実施例１の方法で算出した。この場合の
発根率は実施例１に比べ低下した。
枚の葉を切除し、切り口に市販の発根促進剤オキシベロ
ンを塗布し、この苗条を実施例１と同じ床土に挿し、ビ
ニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育
成し発根率を測定した。その結果を第３表に示した。こ
こで、発根率は実施例１の方法で算出した。この場合の
発根率は実施例１に比べ低下した。
【００２７】比較例２ 実施例２で用いた根を持たない苗条を、基部から２〜４
枚の葉を切除し、切り口に市販の発根促進剤オキシベロ
ンを塗布し、この苗条を実施例２と同じ床土に挿し、ビ
ニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育
成し発根率を測定した。その結果を第３表に示した。こ
こで、発根率は実施例１の方法で算出した。この場合の
発根率は実施例２に比べ低下した。
枚の葉を切除し、切り口に市販の発根促進剤オキシベロ
ンを塗布し、この苗条を実施例２と同じ床土に挿し、ビ
ニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育
成し発根率を測定した。その結果を第３表に示した。こ
こで、発根率は実施例１の方法で算出した。この場合の
発根率は実施例２に比べ低下した。
【００２８】比較例３ 実施例３で用いた根を持たない苗条を、基部から２〜４
枚の葉を切除し、切り口に市販の発根促進剤オキシベロ
ンを塗布し、この苗条を実施例３と同じ床土に挿し、ビ
ニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育
成し発根率を測定した。その結果を第３表に示した。こ
こで、発根率は実施例１の方法で算出した。この場合の
発根率は実施例３に比べ低下した。
枚の葉を切除し、切り口に市販の発根促進剤オキシベロ
ンを塗布し、この苗条を実施例３と同じ床土に挿し、ビ
ニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育
成し発根率を測定した。その結果を第３表に示した。こ
こで、発根率は実施例１の方法で算出した。この場合の
発根率は実施例３に比べ低下した。
【００２９】比較例４ 実施例４で用いた根を持たない苗条を、基部から２〜４
枚の葉を切除し、切り口に市販の発根促進剤オキシベロ
ンを塗布し、この苗条を実施例４と同じ床土に挿し、ビ
ニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育
成し発根率を測定した。その結果を第３表に示した。こ
こで、発根率は実施例１の方法で算出した。この場合の
発根率は実施例４に比べ低下した。
枚の葉を切除し、切り口に市販の発根促進剤オキシベロ
ンを塗布し、この苗条を実施例４と同じ床土に挿し、ビ
ニールで覆い、高湿度を保持する。温室内で３ヵ月間育
成し発根率を測定した。その結果を第３表に示した。こ
こで、発根率は実施例１の方法で算出した。この場合の
発根率は実施例４に比べ低下した。
【００３０】
【表２】
【００３１】
【表３】
【００３２】
【発明の効果】本発明に係わるシャクナゲ属植物の培養
苗条における発根促進方法によれば、培養育成の過程に
おいて根が損傷を受けていないので育成速度が速く、し
かも活力の強い安定性に優れた種苗を効率良く生産する
ことができる。また、培養室内での育成期間が短くなる
ためコスト削減にもつながる。
苗条における発根促進方法によれば、培養育成の過程に
おいて根が損傷を受けていないので育成速度が速く、し
かも活力の強い安定性に優れた種苗を効率良く生産する
ことができる。また、培養室内での育成期間が短くなる
ためコスト削減にもつながる。
フロントページの続き (56)参考文献 Ｈｏｒｔｓｃｉｅｎｃｅ，26［５ ］（1991）ｐ．594−596 (58)調査した分野(Int.Cl.6，ＤＢ名) A01H 4/00 ＢＩＯＳＩＳ（ＤＩＡＬＯＧ) ＪＩＣＳＴファイル（ＪＯＩＳ)
Claims (1)
- 【請求項１】 シャクナゲ属植物の茎頂部の組織片を第
１回目の培養としてオーキシン系植物ホルモン0.01〜5.
0mg/l 、サイトカイニン系植物ホルモン0.01〜5.0mg/l
を含む培地を用いて無菌的に茎頂部を伸長させ、実質的
に根を持たない苗条に培養し、ついで第２回目の培養と
してこの苗条をオーキシン系植物ホルモン0.01〜5.0mg/
l 、サイトカイニン系植物ホルモン0.01〜5.0mg/l を含
む培地に移植し増殖を行い、６〜７葉を持つ苗条に育成
し、この苗条の基部から２〜４枚の葉を切除し、次いで
オーキシン系植物ホルモン0.01〜5.0 mg/lの溶液に0.5
〜７２時間浸漬し、次いで発根用床土に移植し、苗条を
発根せしめて植物体にすることを特徴とするシャクナゲ
属植物における培養苗条の発根促進法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4357710A JP2970277B2 (ja) | 1992-12-25 | 1992-12-25 | シャクナゲ属植物における培養苗条の発根促進法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4357710A JP2970277B2 (ja) | 1992-12-25 | 1992-12-25 | シャクナゲ属植物における培養苗条の発根促進法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06189646A JPH06189646A (ja) | 1994-07-12 |
| JP2970277B2 true JP2970277B2 (ja) | 1999-11-02 |
Family
ID=18455519
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4357710A Expired - Fee Related JP2970277B2 (ja) | 1992-12-25 | 1992-12-25 | シャクナゲ属植物における培養苗条の発根促進法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2970277B2 (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102919125A (zh) * | 2012-11-13 | 2013-02-13 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 云南杜鹃高效再生体系的建立方法 |
| CN103039367A (zh) * | 2013-01-18 | 2013-04-17 | 通化师范学院 | 一种适合于杜鹃花组织培养的基本培养基配方 |
| CN103039366A (zh) * | 2013-01-18 | 2013-04-17 | 通化师范学院 | 一种长白山杜鹃花属植物菌根化苗的工厂化方法 |
| CN103109746A (zh) * | 2013-03-10 | 2013-05-22 | 通化师范学院 | 一种杜鹃花属菌根试管内直接诱导和菌根化种苗快繁方法 |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102342246B (zh) * | 2010-07-30 | 2013-09-04 | 贵州省生物研究所 | 一种大白杜鹃组培快速繁殖方法 |
| CN102919133A (zh) * | 2012-12-03 | 2013-02-13 | 江苏省农业科学院 | 一种促进高山杜鹃紫水晶组培生根的技术方法 |
| CN103371103B (zh) * | 2013-07-30 | 2015-03-18 | 杭州植物园 | 一种马缨杜鹃组织培养快速繁殖方法 |
| CN103355173B (zh) * | 2013-07-30 | 2014-10-29 | 杭州植物园 | 一种腺萼马银花组织培养快速繁殖方法 |
| CN103371102B (zh) * | 2013-07-30 | 2015-04-22 | 杭州植物园 | 一种碎米花组织培养快速繁殖方法 |
| CN103636492B (zh) * | 2013-11-14 | 2015-07-08 | 石家庄市农林科学研究院 | 一种高山杜鹃粉金蝶组培快速繁殖方法 |
| CN103947551B (zh) * | 2014-04-22 | 2016-02-03 | 浙江大学 | 一种促进春鹃种子萌发成苗的方法 |
| CN105830917B (zh) * | 2016-03-24 | 2017-11-17 | 江苏省农业科学院 | 羊踯躅叶片再生植株的方法 |
| CN107242139B (zh) * | 2017-08-15 | 2024-04-19 | 石家庄市农林科学研究院 | 一种高山杜鹃‘粉金蝶’体细胞胚的诱导方法 |
| CN110172476B (zh) * | 2019-05-07 | 2020-11-06 | 元成环境股份有限公司 | 一种马缨杜鹃的遗传转化和再生体系建立的方法 |
| CN113519339A (zh) * | 2021-08-12 | 2021-10-22 | 广西壮族自治区中国科学院广西植物研究所 | 一种促进鳞尾木侧芽萌发的方法 |
-
1992
- 1992-12-25 JP JP4357710A patent/JP2970277B2/ja not_active Expired - Fee Related
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Ｈｏｒｔｓｃｉｅｎｃｅ，２６［５］（１９９１）ｐ．５９４−５９６ |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102919125A (zh) * | 2012-11-13 | 2013-02-13 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 云南杜鹃高效再生体系的建立方法 |
| CN102919125B (zh) * | 2012-11-13 | 2013-12-11 | 云南省农业科学院花卉研究所 | 云南杜鹃高效再生体系的建立方法 |
| CN103039367A (zh) * | 2013-01-18 | 2013-04-17 | 通化师范学院 | 一种适合于杜鹃花组织培养的基本培养基配方 |
| CN103039366A (zh) * | 2013-01-18 | 2013-04-17 | 通化师范学院 | 一种长白山杜鹃花属植物菌根化苗的工厂化方法 |
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| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH06189646A (ja) | 1994-07-12 |
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