JP2019536465A - ＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡ - Google Patents

Abstract

本開示は、コドン改変ＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の関節内送達による、変形性関節症などの大きな荷重負荷関節の変性状態の処置のための組成物および方法に関する。本開示は、ウマＩＬ−１Ｒａ（ｅｑＩＬ−１Ｒａ）およびヒトＩＬ−１Ｒａ（ｈＩＬ−１Ｒａ）をコードするコドン改変遺伝子の開発、ならびにコドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の関節内送達が、ウマ被験体において少なくとも６ヵ月間滑液中のｅｑＩＬ−１Ｒａの定常状態レベルを顕著に、例えばバックグラウンドの１００倍を超えて上昇させ、ウマＯＡモデルにおいて跛行、関節滲出液および滑膜炎の低減をもたらすことの知見に少なくとも部分的に関する。

Description

関連出願
この出願は、２０１６年１２月７日に出願された米国仮出願第６２／４３１，３３６号および２０１７年４月１８日に出願された米国仮出願第６２／４８６，９４４号（これらの全体の開示は、参考として本明細書に援用される）の利益を主張する。

政府の支援
本発明は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈによって付与されたＡＲ０４８５６６の下、政府の支援を受けてなされた。政府は、本発明に一定の権利を有する。

変形性関節症（ＯＡ）は、荷重負荷関節の変形性の消耗性状態である。ＯＡの病理は、関節軟骨の緩徐で持続的な侵食、関節縁での骨棘の発生、肋軟骨下骨の硬化性成長、滑膜炎ならびに多くの場合は滑膜炎および関節滲出液を特徴とする。ＯＡは、不治で、管理が困難で、しばしば障害性関節不全に進行する。ウマでは、変形性関節症は、高齢個体だけでなく若年のウマにとっての問題でもある。

インターロイキン−１（ＩＬ−１）が、変形性関節症（ＯＡ）などの、大きな荷重負荷関節の状態において軟骨減少、疼痛および炎症の関節内メディエーターとして働くという強い証拠がある。その天然の阻害剤、ＩＬ−１受容体アンタゴニスト（ＩＬ−１Ｒａ）は、有効な処置として有望であるが、臨床適用は、従来の薬物送達法によってＩＬ−１Ｒａの関節内有効濃度を達成し、維持することの難しさによって妨げられている。

本開示は、ウマＩＬ−１Ｒａ（ｅｑＩＬ−１Ｒａ）およびヒトＩＬ−１Ｒａ（ｈＩＬ−１Ｒａ）をコードするコドン改変遺伝子の開発、ならびにコドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の関節内送達が、ウマ被験体において少なくとも６ヵ月間滑液中のｅｑＩＬ−１Ｒａの定常状態レベルを顕著に、例えばバックグラウンドの１００倍を超えて上昇させ、ウマＯＡモデルにおいて跛行、関節滲出液および滑膜炎の低減をもたらすことの知見に少なくとも部分的に関する。コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子は、ｅｑＩＬ−１Ｒａタンパク質のアミノ酸配列にいかなる変化も有さずに、天然または内在性遺伝子と比較してｅｑＩＬ−１Ｒａの高レベルの発現を提供する。同様に、コドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡを使用するＩＬ−１Ｒａ発現は、天然ヒトＩＬ−１Ｒａ配列からのＩＬ−１Ｒａ発現をおよそ２〜４倍上回った。本開示は、健康な関節とは著しく対照的に、処置後の導入遺伝子発現が、正常組織または非罹患組織と比較して罹患滑膜、特に炎症および滑膜炎を有する領域においてはるかに高いという知見にも関する。この現象は、最悪の全体的な病理を有する動物が最も高いレベルのＩＬ−１Ｒａを産生することにつながる。

（例えば、ヒト、ウマまたは他の動物において）関節組織に常在する細胞にＩＬ−１Ｒａに関するｃＤＮＡを送達し、高レベルの非依存性発現を提供することによって、改変細胞の生合成機構は、トランスジェニックＩＬ−１Ｒａタンパク質を過剰産生し、滑液および周囲の組織に持続的に分泌するように方向付けられる。それにより罹患関節は、持続性の上昇したＩＬ−１Ｒａ産生の内在性部位になり、タンパク質の反復適用の必要性を除き、一方で特に疾患の部位に最も高い濃度の治療薬をもたらす。

したがって一部の態様では、本開示は、ＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子を含む組換え核酸を提供する。一部の実施形態では、ＩＬ−１ＲａはウマＩＬ−１Ｒａである。一部の実施形態では、ＩＬ−１ＲａはヒトＩＬ−１Ｒａである。一部の実施形態では、ウマＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子の配列は、配列番号２である。一部の実施形態では、ヒトＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子の配列は、配列番号１０である。

一部の実施形態では、ｅｑＩＬ−１ＲａまたはヒトＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子を含む組換え核酸は、コドン改変遺伝子の翻訳開始部位のすぐ上流にコザック配列をさらに含む。一部の実施形態では、コザック配列およびｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子は、配列番号３を有する。一部の実施形態では、コザック配列およびヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子は、配列番号１１を有する。一部の実施形態では、コザック配列は、関節における（例えば、ヒト関節またはウマ関節それぞれにおける）ヒトＩＬ−１Ｒａ（ｈＩＬ−１Ｒａ）またはｅｑＩＬ−１Ｒａの発現レベルをさらに改善する。

一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１ＲａまたはｈＩＬ−１Ｒａ遺伝子を含む組換え核酸は、ｅｑＩＬ−１ＲａまたはｈＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子の上流にプロモーターをさらに含む。一部の実施形態では、プロモーターは、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）最初期プロモーター／エンハンサーである。一部の実施形態では、ＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーは、配列番号４を有する。

ＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子を送達するためおよび関節において長期間にわたるｅｑＩＬ−１Ｒａタンパク質の持続的発現を確実にするために、アデノ随伴ウイルスの使用が検討された。したがって一部の態様では、本明細書では、本明細書で開示される核酸のいずれか１つを含む組換えアデノ随伴ウイルス（ｒＡＡＶ）粒子が提供される。一部の実施形態では、ｒＡＡＶ粒子は自己相補型（すなわち、ｓｃＡＡＶ粒子）である。

一部の実施形態では、ｒＡＡＶ粒子は血清型２．５である。一部の実施形態では、ｒＡＡＶ粒子は血清型２である。一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａを含むｒＡＡＶ粒子はＡＡＶ２．５である。一部の実施形態では、コドン改変ｈＩＬ−１Ｒａを含むｒＡＡＶ粒子はＡＡＶ２である。一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａを含むｒＡＡＶ粒子はＡＡＶ２である。一部の実施形態では、コドン改変ｈＩＬ−１Ｒａを含むｒＡＡＶ粒子はＡＡＶ２．５である。

一部の態様では、本明細書では、大きな荷重負荷関節の変性状態を処置する方法が提供される。方法は、それを必要とする被験体に本明細書で開示されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つを投与することを含む。一部の実施形態では、大きな荷重負荷関節の変性状態を処置する方法は、それを必要とする被験体に、治療有効量の本明細書で開示されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つを投与することを含む。

一部の実施形態では、大きな荷重負荷関節の変性状態は、変形性関節症である。一部の実施形態では、被験体はウマである。一部の実施形態では、被験体はヒトである。一部の実施形態では、本明細書で開示されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つは、関節内注射によって被験体に投与される。一部の実施形態では、ウマ被験体は、コドン改変ウマＩＬ−１Ｒａを含む、本明細書で開示されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つを投与される。一部の実施形態では、ヒト被験体は、コドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａを含む、本明細書で開示されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つが投与される。

以下の図面は本明細書の一部を形成し、本開示のある特定の態様をさらに実証するために含まれ、本明細書に提示した具体的な実施形態の詳細な説明と組み合わせて１つまたは複数のこれらの図面を参照してより理解され得る。図面中に示したデータは、本開示の範囲を決して限定しないことを理解されたい。

図１は、コドン改変ウマＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡの配列を示す。天然のウマＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡの配列は上（配列番号１）に、改変配列は下（配列番号２）に示される。塩基は、翻訳開始部位のＡＴＧから始まり翻訳終止コドンまで番号付けされる。改変のために使用したヌクレオチド置換はコロンによって示される。下の配列は、翻訳開始部位のすぐ上流に挿入されたコザックコンセンサス配列（１７）を示す。コザックコンセンサス配列を含む改変配列は、配列番号３である。

図２Ａ〜２Ｄは、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏでのｅｑＩＬ−１Ｒａ導入遺伝子の発現を示す。図２Ａは、ＧＦＰ、天然のｅｑＩＬ−１Ｒａ、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａ（Ｏｐｔ）、およびコザック配列リーダーを有するコドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａ（Ｋ＋Ｏｐｔ）のコード配列を含有するＨｐａ−ｔｒｓ−ｓｋ ｓｃＡＡＶベクタープラスミドによるウマ滑膜線維芽細胞のトランスフェクション後４８時間の馴化培地中のｅｑＩＬ−１Ｒａを示す。ｎ＝３トランスフェクション。図２Ｂは、血清型２．５にパッケージングされた漸増用量のｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａによるウマ滑膜線維芽細胞の感染後の馴化培地中のｅｑＩＬ−１Ｒａを示す。ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａの細胞１個当たりのウイルスゲノム（ｖｇ）を右に示す。１０^５ｖｇ／細胞のｓｃＡＡＶ．ＧＦＰによる平行感染を陰性対照として使用した。ｎ＝３感染。図２Ｃは、ウマの前肢における手根骨間（ＩＣ）関節および中手指節（ＭＣＰ）関節の解剖学的な位置を示す（矢印）（右）。手根骨間関節（矢印）、橈骨手根骨（ＲＣ）および橈骨手根骨関節（ａｎｔｅｂｒａｃｈｉｏｃａｒｐａｌ ｊｏｉｎｔ）（^＊）を示す、ウマの手根のＸ線画像である。図２Ｄは、それぞれのプロットの右に示したｖｇ用量で生理食塩水またはｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａのいずれかを注射した前肢関節の滑液中のｅｑＩＬ−１Ｒａを示す（ｎ＝６関節）。エラーバーは、±ＳＥＭを表す。

図３Ａ〜３Ｏは、健康な関節およびＯＡ関節への関節内注射後、ｓｃＡＡＶ．ＧＦＰによって形質導入された細胞の位置および表現型を示す。３頭の健康なウマおよび後期の自然発生したＯＡの３頭の手根骨間（ＩＣ）関節に５×１０^１２ｖｇのｓｃＡＡＶ．ＧＦＰを注射した。２週間後、関節組織を収集し、蛍光を分析した。代表的な健康な（図３Ａ）およびＯＡ（図３Ｂ）の手根骨間関節の対向関節面。図３Ｂの矢印は、全層軟骨侵食；骨棘成長（^＊）を示す。図３Ｃ〜３Ｄは、健康な関節の絨毛滑膜におけるｓｃＡＡＶ．ＧＦＰ発現を示す。図３Ｅ〜３Ｆは、ＯＡ関節の滑膜面にわたるＧＦＰ発現を示す。図３Ｃおよび３Ｅは、１０×の新しく採取した組織からである。図３Ｄ〜３Ｆは、２０×のパラフィン中の断面図である。図３Ｇ〜３Ｈは、健康な関節から削られた新しい軟骨におけるｓｃＡＡＶ．ＧＦＰ発現を示す。図３Ｉは、外植片培養において４８時間後に削る健康な軟骨におけるＧＦＰ活性を示す。図３Ｊ〜３Ｋは、ＯＡ関節から削られた新しい軟骨におけるＧＦＰ活性を示す。図３Ｌは、目に見える侵食のある領域からのＯＡ軟骨におけるＧＦＰ活性を示す。（図３Ｇ、３Ｉ、３Ｊ、３Ｌ １０×；図３Ｈ、３Ｋ ２０×）。図３Ｍは、ＯＡ関節（パラフィン切片）からの軟骨クラスターにおけるＧＦＰ発現を示す。図３Ｎは、新しく採取した骨棘組織（１０×）におけるＧＦＰ活性を示す。図３Ｏは、ｓｃＡＡＶ．ＧＦＰを受ける手根骨間関節にすぐ近位の橈骨手根骨関節から採取した新しい滑膜組織における代表的なＧＦＰ発現を示す。示した画像は、両群の６頭の動物からの複合物である。広範な曝露時間を使用して、様々な厚みおよび組成の新しい組織試料において、異なる倍率で変化する蛍光強度を捕捉した。外観の一様性のため個々のパネルのコントラストおよび明るさは線形に調整し、直接鏡検法によって見られる蛍光強度を反映した。

図４Ａ〜４Ｈは、ｓｃＡＡＶによる関節内遺伝子送達後のウマＯＡ組織におけるＧＦＰ発現を示す。結果からの目的のさらなる視野は図２に記載した。自然発生した後期ＯＡを有する３頭のウマの手根骨間関節に、５×１０^１２ｖｇのｓｃＡＡＶ．ＧＦＰを注射し、２週間後、関節組織を収集して蛍光を分析した。確立されたＯＡの病理変化の特徴を有する組織におけるＧＦＰ発現を示す。図４Ａおよび４Ｂは、新しく採取した組織の直接蛍光顕微鏡法による、炎症した滑膜組織におけるＧＦＰ発現を示す。図４Ａは５×であり図４Ｂは２０×である。図４Ｃおよび４Ｄは、目に見える侵食のある領域からのＯＡ軟骨におけるＧＦＰ活性を示す。両方とも５×倍率である。図４Ｅ〜４Ｇは、軟骨細胞クラスターにおけるＧＦＰ活性を示す。図４Ｅは、新しい薄片における直接蛍光を示す（４０×）。図４Ｆおよび４Ｇはパラフィン切片（それぞれ２０×および４０×）からである。図４Ｇでは、いくつかのクラスターにおける軟骨細胞を、周辺マトリクスの分解と関連して形態を変化させて示す。図４Ｈは、新しい骨棘組織におけるＧＦＰ発現を示す（２０×）。

図５Ａ〜５Ｇは、ＯＡのウマＯＣＦモデルにおける関節内ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａ遺伝子送達および発現を示す。図５Ａは、骨軟骨断片（ＯＣＦ）有効性試験の概略図である。全部で２０頭のウマを２つの群に均等に分けた。橈側手根骨における骨軟骨病変の外科的生成後、関節腔に５×１０^１２ｖｇのｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａの注射を受けた処置群の動物；等体積の生理食塩水を受けた対照動物。両方の手根骨間関節からの滑液、末梢血、および尿を隔週で収集した（^＊）。図５Ｂは、処置および対照群からのＯＣＦ関節の滑液における平均ｅｑＩＬ−１Ｒａレベルを示す。点線は、同じウイルス用量からの健康な関節における平均ＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａ発現を反映する（図５Ｃ参照）（ｎ＝１０）。図５Ｃは、処置群における各個体のＯＣＦ関節における滑液ｅｑＩＬ−１Ｒａを示すグラフである。各線は異なる動物を反映する。図５Ｄは、処置および対照群両方の尿における平均ｅｑＩＬ−１Ｒａを示す（ｎ＝１０）。図５Ｅは、処置および対照群両方の１０頭の動物のうち９頭に関して、末梢血からの血清における平均ｅｑＩＬ−１Ｒａを示す。図５Ｆは、処置および対照群両方の残りのウマからの血清におけるｅｑＩＬ−１Ｒａを示し、それは処置前の試験での他の１８頭の動物よりも＞２５×高かった。図５Ｇは、ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａを注射したＯＣＦ関節の末梢血血清および滑液におけるＡＡＶ２．５中和抗体力価を示す（ｎ＝１０）。エラーバーは、±ＳＥＭを表す。

図６Ａ〜６Ｂは、ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａによる処置後、関節跛行および滑液ＰＧＥ_２レベルの変化を示す。図６Ａは、運動トレーニング中の処置群と対照群の間の目に見える平均跛行スコアの相対変化を示す（左）。Ｌａｍｅｎｅｓｓ Ｌｏｃａｔｏｒ（登録商標）慣性センサー動作分析システムからの前肢跛行（ベクトル和）の相対変化（右）。両方に関して、第１週の平均跛行スコアに１の値を割り当てた。図６Ｂは、処置および対照群両方のＯＣＦ関節の滑液における平均ＰＧＥ_２レベルを示す。エラーバーは、±ＳＥＭを表す；^＊Ｐ＜０．０５。

図７Ａ〜７Ｂは、ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａによって処置したＯＣＦ関節における組織病理の変化についてのＭＲ画像の評価を示す。全てのウマの両方の手根骨間関節は、処置の直前（第０週）および実験プロトコールの終わり（第１２週）にＭＲイメージングによってスキャンした。スキャンは、滑膜滲出液、滑膜増殖、骨軟骨病変の重症度（ＯＣＦサイズ）、橈骨手根骨における骨髄浮腫、橈側手根骨および第三手根骨の硬化症、ならびに関節嚢浮腫および線維症に関して０から１０のスケールにスコア化し、ここで０＝正常および１０＝重症な病理である。図７Ａは、処置および対照群の１頭のウマからのＯＣＦ関節のアキシャルおよびサジタルスキャン（それぞれＰＤおよびＰＤ−ＦＳ）からの代表的な画像を示す。白い矢印は、ＣＥ−嚢滲出液；ＭＥ−骨髄浮腫；ＯＣＦ−骨軟骨断片、ＳＥ−滑膜滲出液を示す。対照の関節の第１２週のサジタルスキャンにおける黒い矢印は、高強度のシグナルおよび不完全なＯＣＦ修復を示す。図７Ｂは、ベースライン（左）として前処置のスコア（第０週）を使用するエンドポイント（第１２週）での、処置および対照群のＯＣＦモデルと関連する主な関節病理の共変数分析を示す。ＯＣＦ関節の全ＭＲＩスコアは、個々のＭＲＩ病理の値から算出した（右、斜交平行線）。偽手術された関節からの全ＭＲＩスコアは、反対の手根骨間関節においてベースラインの病理レベルを表す。エラーバーは、±ＳＥＭを表す；^＊Ｐ＜０．０５。

図８Ａ〜８Ｄは、ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａ処置と関連する組織病理の変化に関してＯＣＦ関節鏡検査法および組織学的切片の評価を示す。処置および対照群のウマの両方の手根骨間関節を、骨軟骨病変（第−２週）の生成後およびエンドポイント（第１２週）で、関節鏡で検査した。画像は、ＯＣＦサイズおよび局所軟骨損傷、滑膜炎、関節（全体）にわたる軟骨損傷ならびに靭帯の炎症についてスコア化した。エンドポイントでは、骨軟骨断片および局所滑膜組織を取り出し、切片にし、Ｈ＆Ｅまたはトルイジンブルーによって染色し、段階分けした。図８Ａは、ベースライン（左）として第−２週のスコアを使用する第１２週での、処置および対照群のＯＣＦモデルと関連する主な関節病理の関節鏡評価の共変数分析を示す。ＯＣＦ関節の全関節鏡スコアは、個々の病理の値から算出した（右、斜交平行線のバー）。偽手術された反対の手根骨間関節からの全スコアは、無傷の関節においてベースラインの病理を表す。図８Ｂは、生成（第−２週）およびエンドポイント（第１２週）の時間で、処置および対照のウマにおいて骨軟骨病変の代表的な関節鏡画像を提示する。図８Ｃは、収集したＯＣＦ組織（左）における個々の組織病理について、平均組織学的スコアを示す。全組織学的スコアは、個々の組織スコア（右）から算出した。図８Ｄは、処置および対照における骨修復組織の代表的な顕微鏡画像を示す。エラーバーは、±ＳＥＭを表す；^＊Ｐ＜０．０５。

図９Ａ〜９Ｂは、ｅｑＩＬ−１Ｒａ発現と関節病理の間の関連を示す。図９Ａは、ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａ注射の直前の処置したウマの全ＭＲＩスコア対第２週のＯＣＦ滑液ｅｑＩＬ−１Ｒａレベル（左）および第２週〜１２週からの平均ｅｑＩＬ−１Ｒａレベル（右）のプロットを示す。両方のプロットについて、矢印は、他の９頭の動物と比較して第２週で異常に高いｅｑＩＬ−１Ｒａ発現を有する１頭のウマからのデータ点を示す（図５Ｃ参照）。実線は、１０頭の動物全てのデータ点の最良適合直線プロットを示す。点線は、外れたデータ点無しで算出された最良適合直線プロットを示す。外れたデータ点あり（全て）および除外（９／１０）両方のＭＲＩスコアおよびｅｑＩＬ−１Ｒａレベルのピアソン相関係数（ｒ）を示す。図９Ｂは、処置（灰色）および対照（黒）群のウマのそれぞれのＯＣＦ関節についての注射の直前の全ＭＲＩスコア対エンドポイントでの全ＭＲＩスコアのプロットである。実線は、各群の最良適合直線プロットを示す。対応する一次方程式およびピアソン相関係数も示す。^＊Ｐ＜０．０５。

図１０は、天然またはコドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡを含有するｓｃＡＡＶベクタープラスミドによってトランスフェクトされたＨＥＫ２９３細胞におけるヒトＩＬ−１Ｒａの分泌を示す。

図１１は、天然および改変ヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡを含有するｓｃＡＡＶベクタープラスミドによってトランスフェクトされたヒト骨肉腫細胞におけるヒトＩＬ−１Ｒａの分泌を示す。エラーバーは、ＳＥＭを示す。

図１２は、天然およびコドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡを含有するＡＡＶ２カプシドによって感染された初代ヒト滑膜線維芽細胞におけるヒトＩＬ−１Ｒａの分泌を示す。ｎ＝３感染；エラーバーは、＋ＳＥＭを表す。

図１３は、天然ヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡの配列（上の配列；配列番号９）および１位のＡＴＧ翻訳開始部位のすぐ上流にコンセンサスコザック配列（下線）を有するＧｅｎｅＡｒｔコドン改変ＩＬ−１Ｒａ配列（下の配列；配列番号１０）のアライメントを示す。２つの配列間の差はコロンによって示される。配列アライメントの下に示すように、天然のＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡ配列の５３４ヌクレオチド中の１０５ヌクレオチドが改変によって変更された。コザックコンセンサス配列を含む改変配列は、配列番号１１である。

Ｉｌ−１Ｒａは、関節内軟骨減少、疼痛および炎症に関わるＩＬ−１の天然のアンタゴニストであることから、変形性関節症（ＯＡ）などの、大きな荷重負荷関節の変性状態の疾患の有望な治療薬である。しかし、ＩＬ−１Ｒａを疾患の部位、すなわち関節に送達することは困難である。罹患関節においてＩＬ−１Ｒａの治療有効レベルを長期間、維持することはさらに困難である。実際にウマでは、内在性ＩＬ−１Ｒａは低レベルで発現されている。事実、ｅｑＩＬ−１Ｒａタンパク質をコードする野生型ヌクレオチド配列を使用するＩＬ−１Ｒａの外因性発現も関節において高レベルのＩＬ−Ｒａを達成することの助けにならない。

この課題に対する解決策として、本開示の発明者らは、野生型ｅｑＩＬ−１Ｒａタンパク質と同一のアミノ酸配列を有するが、ＩＬ−１Ｒａの高い外因性発現レベルを生じるｅｑＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変核酸配列を開発した。翻訳開始部位のすぐ上流にコザック配列を含むようにさらなる改変が行われた。このコザック配列を含めることにより、ｅｑＩＬ−１Ｒａタンパク質の発現レベルがさらに改善される。開発されたコドン改変ＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の関節への送達は、担体としてのＡＡＶ粒子の使用によって達成された。驚くべきことに、注射時の関節における病理のレベルと下流ＩＬ−１Ｒａ産生との間に強い相関関係があることが見出された。驚くべきことに、本開示の処置方法によって罹患組織は、罹患していない組織よりも高いレベルのｅｑＩＬ−１Ｒａを発現する。

本発明者らは、天然ｈＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡによるレベルよりもおよそ２〜４倍高いレベルでのＩＬ−１Ｒａの分泌を生じるコザックリーダー配列を有するおよび有さないコドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａ（ｈＩＬ−１Ｒａ）も開発した。

ウマＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子を含む核酸
本明細書では、ウマＩＬ−１Ｒａ（ｅｑＩＬ−１Ｒａ）をコードするコドン改変遺伝子を含む組換え核酸が提供される。一部の実施形態では、ｅｑＩＬ−１Ｒａコードコドン改変遺伝子と内在性（または野生型または天然）ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子との間のヌクレオチド配列ミスマッチは、１０〜３０％（例えば、１５〜２５％、１７〜２３％、１９〜２１％、１０〜１５％、１５〜２０％、２０〜２５％または２５〜３０％）である。すなわち、ｅｑＩＬ−１Ｒａをコードするヌクレオチドの１０〜３０％は、コドン改変されている。一部の実施形態では、ｅｑＩＬ−１Ｒａコードコドン改変遺伝子は、野生型ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子と比較して２０．２％のミスマッチを有する。配列番号１は、野生型ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子のヌクレオチド配列を示す。配列番号２は、ｅｑＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変配列を示す。配列番号２の５３４ヌクレオチド中の１０８ヌクレオチドは、配列番号１と比較してミスマッチであり、２０．２％のミスマッチに相当する（図１）。
内在性ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子のヌクレオチド配列：
コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子のヌクレオチド配列の例：

一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を用いた細胞の形質導入は、同様の細胞を内在性（または天然もしくは野生型）ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を用いて形質導入した場合と比較して、５〜２００倍高い（例えば、５〜２００、１０〜１５０、１５〜１２０、２０〜１００、３０〜８０、３５〜６０、４０〜５０倍高い）ｅｑＩＬ−１Ｒａタンパク質レベルを生じる。野生型ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子は、天然もしくは内在性であるか、またはウマにおいて見出されるものである。

コザック配列
一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子は、コザック配列が先行している。一部の実施形態では、コザック配列は、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の翻訳開始部位のすぐ上流に先行している。一部の実施形態では、コザック配列は、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の翻訳開始部位の１〜５０ヌクレオチド上流である。一部の実施形態では、コザック配列は、ＧＣＣＡＣＣである。配列番号３は、コザック配列がすぐ上流に先行しているコドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の例を提供する。
コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子のヌクレオチド配列の例（コザック配列は下線付き）：

一部の実施形態では、コザック配列を含むコドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を用いた細胞の形質導入は、同様の細胞を内在性ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を用いて形質導入した場合と比較して、５〜２００倍高い（例えば、５〜２００、１０〜１５０、１５〜１２０、２０〜１００、３０〜８０、３５〜６０、４０〜５０倍高い）ｅｑＩＬ−１Ｒａタンパク質レベルを生じる。同様の細胞は、同じ遺伝子構成（ｇｅｎｅｔｉｃ ｍａｋｅ−ｕｐ）を有し、細胞に影響を与える１つの変数、例えば細胞にトランスフェクトするために使用されるＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡの配列が異なることを除いて同じ様式で培養および処理されるものである。

ヒトＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子を含む核酸
本明細書で企図されるのは、ヒトＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子を含む組換え核酸でもある。一部の実施形態では、ヒトＩＬ−１Ｒａコードコドン改変遺伝子と内在性（または野生型もしくは天然）ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子との間のヌクレオチド配列ミスマッチは、１０〜３０％（例えば、１５〜２５％、１７〜２３％、１９〜２１％、１０〜１５％、１５〜２０％ ２０〜２５％または２５〜３０％）である。すなわち、ヒトＩＬ−１Ｒａをコードするヌクレオチドの１０〜３０％はコドン改変されている。一部の実施形態では、ヒトＩＬ−１Ｒａコードコドン改変遺伝子は、野生型ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子と比較して１９．６％のミスマッチを有する。配列番号９は、野生型ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子のヌクレオチド配列を示す。配列番号１０は、ヒトＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変配列の例を示す。配列番号１０の５３４ヌクレオチドの内の１０５は、配列番号９と比較してミスマッチであり、１９．６％のミスマッチに相当する（図１３を参照されたい）。
内在性ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子のヌクレオチド配列の例：
コドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子のヌクレオチド配列の例：

一部の実施形態では、コドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子は、コザック配列が先行している。一部の実施形態では、コザック配列は、コドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の翻訳開始部位のすぐ上流に先行している。一部の実施形態では、コザック配列は、コドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の翻訳開始部位の１〜５０ヌクレオチド上流である。一部の実施形態では、コザック配列は、ＧＣＣＡＣＣである。配列番号１１は、コザック配列がすぐ上流に先行しているコドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子の例を示す。
コドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子のヌクレオチド配列の例（コザック配列は下線付き）：

一部の実施形態では、コザック配列を有するコドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を用いた、細胞の形質導入は、同様の細胞を内在性ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を用いて形質導入した場合と比較して、１．１〜５０倍高い（例えば、１．１〜３、１．４〜１０、１．５〜３０、２〜３０、２〜５０、２〜４、２．５〜５、３〜８、５〜２０または３０〜１５倍高い）ヒトＩＬ−１Ｒａタンパク質レベルを生じる。

プロモーター
プロモーターは、一般に、産物をコードする核酸の転写を開始する核酸の領域である。

ｅｑＩＬ−１ＲａまたはｈＩＬ−１Ｒａの外因性発現レベルを達成するために、多数のプロモーターのいずれかが使用されてよい。プロモーターは、例えば構成的プロモーター、組織特異的プロモーター、誘導性プロモーターまたは合成プロモーターであってよい。

本明細書に記載される場合、組換え核酸は、ウイルスプロモーターまたは、転写を促進することに一般に活性である哺乳動物遺伝子由来のプロモーターなどの１つまたは複数の構成的プロモーターを含み得る。構成的ウイルスプロモーターの非限定的例として、単純ヘルペスウイルルス（ＨＳＶ）、チミジンキナーゼ（ＴＫ）、ラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）、サルウイルス４０（ＳＶ４０）、マウス乳癌ウイルス（ＭＭＴＶ）、Ａｄ Ｅ１Ａおよびサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）最初期プロモーター／エンハンサーが挙げられる。他の構成的哺乳動物プロモーターの非限定的例として、βアクチンプロモーター（例えば、ニワトリβアクチンプロモーター）およびヒト伸長因子−１α（ＥＦ−１α）プロモーターによって例示されるなどの種々のハウスキーピング遺伝子プロモーターが挙げられる。

一部の実施形態では、本明細書で開示される組換え核酸のいずれか１つにおけるプロモーターは、疾患制御プロモーター（ｄｉｓｅａｓｅ−ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ ｐｒｏｍｏｔｅｒ）である。疾患制御プロモーターは、プロモーターが連結されているコドン改変遺伝子によってコードされるＩｌ−１Ｒａの発現を罹患細胞または組織において、非罹患細胞または組織におけるものよりも高いレベルで可能にするものである。一部の実施形態では、本明細書で開示される組換え核酸のいずれか１つにおける疾患制御プロモーターは、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）最初期プロモーター／エンハンサーである。一部の実施形態では、ＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーの含有は、非罹患組織と比較して罹患組織において１．５から２００倍高い（例えば、１．５〜１５０、２〜１２０、５〜１００、１０〜８０または２０〜５０倍高い）ｅｑＩＬ−１ＲａまたはｈＩＬ−１Ｒａ発現レベルを生じる。一部の実施形態では罹患および非罹患組織は、被験体の同じ関節にある。一部の実施形態では、罹患および非罹患組織は、同じ被験体だが異なる関節にある。一部の実施形態では、罹患および非罹患組織は、異なる被験体にある。ＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーの配列は、当技術分野において公知であり、Ｓｃｈｍｉｄｔら、（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎｄ Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｂｉｏｌ．、１９９０年、１０巻：４４０６頁）によって考察されている。

一部の実施形態では、ＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーの配列は、配列番号４である。一部の実施形態では、ＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーの配列は、配列番号４の活性の２０〜５０％（例えば、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、９５、９９または１００％）の活性を提供するような配列番号４の一部である。
ＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーヌクレオチド配列の例

プロモーターは、産物をコードする核酸の転写開始部位の上流（例えば、０ｂｐから−１００ｂｐ、−３０ｂｐ、−７５ｂｐまたは−９０ｂｐ）に位置付けられてよく、または翻訳開始部位はプロモーター内に位置付けられてよい。一部の実施形態では、プロモーターは、コザック配列のすぐ上流、またはコザック配列の９０ｂｐ上流までに位置付けられている。プロモーターは、１００〜１０００ヌクレオチド塩基対、または５０〜２０００ヌクレオチド塩基対の長さを有してよい。

ｅｑＩＬ−１ＲａまたはヒトＩＬ−１Ｒａの送達のためのｒＡＡＶ
ｅｑＩＬ−１ＲａまたはヒトＩＬ−１Ｒａコード導入遺伝子を送達するためのビヒクルとして、組換えアデノ随伴（ｒＡＡＶ）粒子が使用される。ＡＡＶは、臨床適用における遺伝子治療のための最も好ましいビヒクルの１つとして明らかになっている。その利益は、その増大した安全性、形質導入細胞の低免疫原性プロファイルおよび関節組織において長期間、有効な導入遺伝子発現を提供するその能力に関連する。自己相補型（二本鎖）ベクターの開発、および高力価ベクター産生のための方法の改善を含むＡＡＶ技術における最近の進歩は、本流の臨床使用のためのその可能性をさらに増加させている。

一部の実施形態では、本明細書で開示される核酸のいずれか１つをウマまたはヒト関節に送達するために使用されるｒＡＡＶ粒子の血清型は、血清型２である。一部の実施形態では、本明細書で開示される核酸のいずれか１つをウマまたはヒト関節に送達するために使用されるｒＡＡＶ粒子の血清型は、血清型２．５であり、自己相補型（ｓｃＡＡＶ２．５）である。ｓｃＡＡＶ２．５は、新規カプシド配列（キメラ）および固有のベクターゲノム構造（二重鎖）の両方の開発を含む第２世代ＡＡＶベクターである。ハイブリッドＡＡＶ血清型２．５は、血清型２と同じ組織向性を示すが、ＡＡＶ２中和抗体との反応性の低減を示す。一部の実施形態では、本明細書で開示される核酸のいずれか１つをウマまたはヒト関節に送達するために使用されるｒＡＡＶ粒子の血清型は、血清型１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、任意のハイブリッド血清型または改変もしくは操作されたＡＡＶカプシドである。

一部の実施形態では、ｒＡＡＶ粒子は、核酸の別の領域に相補的である核酸の領域を含有し、粒子に含まれる核酸の二本鎖の形成を開始する点において自己相補型（ｓｅｌｆ−ｃｏｍｐｌｉｍｅｎｔａｒｙ）である。

一部の実施形態では、高容量アデノウイルスベクターが、本明細書で開示されるｅｑＩＬ−１ＲａまたはヒトＩＬ−１Ｒａコード導入遺伝子のいずれか１つを送達するためのビヒクルとして使用される。

他の遺伝子送達ビヒクル、例えばレンチウイルスも、本明細書で開示されるｅｑＩＬ−１ＲａまたはヒトＩＬ−１Ｒａコード導入遺伝子のいずれか１つを送達するためのビヒクルとして使用され得ることが理解される。種々の遺伝子送達方法は、当技術分野において公知であり（例えばその全体が参照により本明細書に組み込まれるＮａｙｅｒｏｓｓａｄａｔら、（Ａｄｖ Ｂｉｏｍｅｄ Ｒｅｓ． ２０１２年；１巻：２７頁）を参照されたい）、本明細書で開示されるｅｑＩＬ−１ＲａまたはヒトＩＬ−１Ｒａコード導入遺伝子のいずれか１つを送達するためのビヒクルとして使用され得る。

ｒＡＡＶ粒子をパッケージングする方法
ｅｑＩＬ−１ＲａまたはヒトＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子を含む核酸を含むｒＡＡＶ粒子を産生する非限定的方法は、本明細書に記載されている。他の方法も当技術分野において公知であり、市販されている（例えば、Ｚｏｌｏｔｕｋｈｉｎら、Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｅｒｏｔｙｐｅ １， ２， ａｎｄ ５ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ａｄｅｎｏ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｖｉｒａｌ ｖｅｃｔｏｒｓ． Ｍｅｔｈｏｄｓ ２８巻（２００２年）１５８〜１６７頁；および参照により本明細書に組み込まれる米国特許公開第ＵＳ２００７００１５２３８号および第ＵＳ２０１２０３２２８６１号；Ｌｉら、Ｊ． Ｖｉｒｏｌ、２０１２年、８６巻（１５号）ならびにＡＴＣＣおよびＣｅｌｌ Ｂｉｏｌａｂｓ，Ｉｎｃ．から入手可能なプラスミドおよびキットを参照されたい）。例えば、コドン改変ｅｑＩＬ−１ＲａまたはヒトＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むプラスミドは、１つまたは複数のヘルパープラスミド、例えばｒｅｐ遺伝子（例えば、Ｒｅｐ７８、Ｒｅｐ６８、Ｒｅｐ５２およびＲｅｐ４０をコードする）およびｃａｐ遺伝子（本明細書に記載される改変ＶＰ２領域を含むＶＰ１、ＶＰ２およびＶＰ３をコードする）を含有しているもの、と組み合わされてよく、ｒＡＡＶ粒子がパッケージングされ、次に精製され得るように組換え細胞にトランスフェクトされてよい。

一部の実施形態では、パッケージングは、哺乳動物細胞または昆虫細胞などのヘルパー細胞または産生細胞において行われる。哺乳動物細胞の非限定的例として、これだけに限らないが、ＨＥＫ２９３細胞、ＣＯＳ細胞、ＨｅＬａ細胞、ＢＨＫ細胞またはＣＨＯ細胞（例えばＡＴＣＣ（登録商標）ＣＲＬ−１５７３（商標）、ＡＴＣＣ（登録商標）ＣＲＬ−１６５１（商標）、ＡＴＣＣ（登録商標）ＣＲＬ−１６５０（商標）、ＡＴＣＣ（登録商標）ＣＣＬ−２、ＡＴＣＣ（登録商標）ＣＣＬ−１０（商標）またはＡＴＣＣ（登録商標）ＣＣＬ−６１（商標）を参照されたい）が挙げられる。例示的昆虫細胞として、これだけに限らないがＳｆ９細胞（例えば、ＡＴＣＣ（登録商標）ＣＲＬ−１７１１（商標）を参照されたい）が挙げられる。ヘルパー細胞は、本明細書に記載される方法における使用のためのＲｅｐタンパク質および／またはＣａｐタンパク質をコードするｒｅｐおよび／またはｃａｐ遺伝子を含んでよい。一部の実施形態ではパッケージングは、ｉｎ ｖｉｔｒｏで行われる。

一部の実施形態では、ＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むプラスミドは、１つまたは複数のヘルパープラスミド、例えば、第１の血清型のｒｅｐ遺伝子および同じ血清型または異なる血清型のｃａｐ遺伝子を含有するものと組み合わされ、ｒＡＡＶ粒子がパッケージングされるようにヘルパー細胞にトランスフェクトされる。

一部の実施形態では、１つまたは複数のヘルパープラスミドは、ｒｅｐ遺伝子およびｃａｐ遺伝子を含む第１のヘルパープラスミド、ならびに次のヘルパー遺伝子：Ｅ１ａ遺伝子、Ｅ１ｂ遺伝子、Ｅ４遺伝子、Ｅ２ａ遺伝子およびＶＡ遺伝子の１つまたは複数を含む第２のヘルパープラスミドを含む。明確にするために、ヘルパー遺伝子は、ヘルパータンパク質Ｅ１ａ、Ｅ１ｂ、Ｅ４、Ｅ２ａおよびＶＡをコードする遺伝子である。一部の実施形態では、ｒｅｐ遺伝子は、ＡＡＶ３、ＡＡＶ５またはＡＡＶ６由来のｒｅｐ遺伝子であり、ｃａｐ遺伝子は、ＡＡＶ２、ＡＡＶ３、ＡＡＶ５またはＡＡＶ６由来であり、本明細書に記載される改変カプシドタンパク質を産生するための遺伝子への改変を含んでよい。一部の実施形態では、ｃａｐ遺伝子は、タンパク質ＶＰ１、ＶＰ２およびＶＰ３の１つまたは複数が発現されないように改変される。一部の実施形態では、ｃａｐ遺伝子は、ＶＰ２が発現されないように改変される。そのような改変を作製するための方法は、当技術分野において公知である（Ｌｕｘら、（２００５年）、Ｊ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、７９巻：１１７７６〜８７頁）。

ヘルパープラスミド、およびそのようなプラスミドを作製する方法は、当技術分野において公知であり、市販されている（例えば、ＰｌａｓｍｉｄＦａｃｔｏｒｙ、Ｂｉｅｌｅｆｅｌｄ、ＧｅｒｍａｎｙからのｐＤＦ６、ｐＲｅｐ、ｐＤＭ、ｐＤＧ、ｐＤＰ１ｒｓ、ｐＤＰ２ｒｓ、ｐＤＰ３ｒｓ、ｐＤＰ４ｒｓ、ｐＤＰ５ｒｓ、ｐＤＰ６ｒｓ、ｐＤＧ（Ｒ４８４Ｅ／Ｒ５８５Ｅ）およびｐＤＰ８．ａｐｅプラスミド；Ｖｅｃｔｏｒ Ｂｉｏｌａｂｓ、Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ、ＰＡ；Ｃｅｌｌｂｉｏｌａｂｓ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ；Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｓａｎｔａ Ｃｌａｒａ、Ｃａ；およびＡｄｄｇｅｎｅ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＭＡからの他の製品およびサービス；ｐｘｘ６；Ｇｒｉｍｍら、（１９９８年）、Ｎｏｖｅｌ Ｔｏｏｌｓ ｆｏｒ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ａｄｅｎｏ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ Ｖｉｒｕｓ Ｖｅｃｔｏｒｓ、Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ、９巻、２７４５〜２７６０頁；Ｋｅｒｎ， Ａ．ら、（２００３年）、Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ａ Ｈｅｐａｒｉｎ−Ｂｉｎｄｉｎｇ Ｍｏｔｉｆ ｏｎ Ａｄｅｎｏ−Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ Ｖｉｒｕｓ Ｔｙｐｅ ２ Ｃａｐｓｉｄｓ、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、７７巻、１１０７２〜１１０８１頁；Ｇｒｉｍｍら、（２００３年）、Ｈｅｌｐｅｒ Ｖｉｒｕｓ−Ｆｒｅｅ， Ｏｐｔｉｃａｌｌｙ Ｃｏｎｔｒｏｌｌａｂｌｅ， ａｎｄ Ｔｗｏ−Ｐｌａｓｍｉｄ−Ｂａｓｅｄ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ａｄｅｎｏ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ Ｖｉｒｕｓ Ｖｅｃｔｏｒｓ ｏｆ Ｓｅｒｏｔｙｐｅｓ １ ｔｏ ６、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙ、７巻、８３９〜８５０頁；Ｋｒｏｎｅｎｂｅｒｇら、（２００５年）、Ａ Ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎａｌ Ｃｈａｎｇｅ ｉｎ ｔｈｅ Ａｄｅｎｏ−Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ Ｖｉｒｕｓ Ｔｙｐｅ ２ Ｃａｐｓｉｄ Ｌｅａｄｓ ｔｏ ｔｈｅ Ｅｘｐｏｓｕｒｅ ｏｆ Ｈｉｄｄｅｎ ＶＰ１ Ｎ Ｔｅｒｍｉｎｉ、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、７９巻、５２９６〜５３０３頁；ならびにＭｏｕｌｌｉｅｒ， Ｐ．およびＳｎｙｄｅｒ， Ｒ．Ｏ． （２００８年）、Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｅｆｆｏｒｔｓ ｆｏｒ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ａｄｅｎｏ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｖｉｒａｌ ｖｅｃｔｏｒ ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ ｓｔａｎｄａｒｄｓ、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙ、１６巻、１１８５〜１１８８頁を参照されたい）。特異的な血清型に関する野生型ＡＡＶコード領域をコードするプラスミドも公知であり、入手可能である。例えばｐＳｕｂ２０１は、野生型ＡＡＶ２ゲノムのコード領域を含むプラスミドである（Ｓａｍｕｌｓｋｉら、（１９８７年）、Ｊ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、６巻：３０９６〜３１０１頁）。

例示的、非限定的、ｒＡＡＶ粒子産生方法は、次に記載される。望ましいＡＡＶ血清型ならびにアデノウイルスＶＡ、Ｅ２Ａ（ＤＢＰ）およびＥ４遺伝子についてのｒｅｐおよびｃａｐ ＯＲＦを、それらの天然プロモーターの転写制御下に含む、１つまたは複数のヘルパープラスミドが産生される、または得られる。一部の実施形態では、１つまたは複数のヘルパープラスミドは、第１の血清型（例えばＡＡＶ３、ＡＡＶ５およびＡＡＶ６）についてのｒｅｐ遺伝子、ｃａｐ遺伝子（第１の血清型のものであってもなくてもよい）ならびに必要に応じてアデノウイルスＶＡ、Ｅ２Ａ（ＤＢＰ）およびＥ４遺伝子の１つまたは複数をそれらの天然のプロモーターの転写制御下に含む。一部の実施形態では、１つまたは複数のヘルパープラスミドは、望ましいＡＡＶ血清型およびアデノウイルスＶＡ、Ｅ２Ａ（ＤＢＰ）およびＥ４遺伝子についてのｃａｐ ＯＲＦ（および必要に応じてｒｅｐ ＯＲＦ）をそれらの天然のプロモーターの転写制御下に含む。ｃａｐ ＯＲＦは、本明細書に記載される改変カプシドタンパク質を産生するための１つまたは複数の改変も含んでよい。ＨＥＫ２９３細胞（ＡＴＣＣ（登録商標）から入手可能）は、ＣａＰＯ_４媒介トランスフェクション、脂質またはポリエチレンイミン（ＰＥＩ）などのポリマー性分子を介して、ヘルパープラスミド（複数可）および本明細書に記載される核酸ベクターを含有するプラスミドを用いてトランスフェクトされる。次にＨＥＫ２９３細胞は、ｒＡＡＶ粒子産生を可能にするように少なくとも６０時間、インキュベートされる。代替的にＨＥＫ２９３細胞は、上に記載の方法を介して、本明細書に記載される組換え核酸のいずれか１つを含有するＡＡＶ−ＩＴＲ、ＲｅｐおよびＣａｐタンパク質をコードする遺伝子を含むヘルパープラスミドを用いてトランスフェクトされ、ヘルパーウイルスを用いて同時トランスフェクトされる。ヘルパーウイルスは、ＡＡＶの複製を可能にするウイルスである。ヘルパーウイルスの例は、アデノウイルスおよびヘルペスウイルスである。

代替的に、別の例ではＳｆ９に基づく産生安定細胞系に、本明細書で提供される組換え核酸のいずれか１つを含有する単一の組換えバキュロウイルスを感染させる。さらなる代替として別の例では、ＨＥＫ２９３またはＢＨＫ細胞系に、核酸ベクター含有ＨＳＶならびに、必要に応じて、本明細書に記載されるｒｅｐおよびｃａｐ ＯＲＦならびにアデノウイルスＶＡ、Ｅ２Ａ（ＤＢＰ）およびＥ４遺伝子を、それらの天然のプロモーターの転写制御下に含有する１つまたは複数のヘルパーＨＳＶを感染させる。次にＨＥＫ２９３、ＢＨＫまたはＳｆ９細胞は、ｒＡＡＶ粒子産生を可能にするように少なくとも６０時間インキュベートされる。次いでｒＡＡＶ粒子は、当技術分野において公知のまたは本明細書に記載される任意の方法を使用して、例えばイオジキサノールステップ勾配、ＣｓＣｌ勾配、クロマトグラフィーまたはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）沈殿によって精製されてよい。

薬学的組成物
本明細書では、本明細書で開示されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つを含む薬学的組成物が提供される。一部の実施形態では、薬学的組成物は、ｅｑＩＬ−１ＲａまたはヒトＩＬ−１Ｒａをコードする核酸を含むｒＡＡＶ粒子の被験体の関節への送達を助ける薬学的に許容される担体を含む。用語「担体」は、ｒＡＡＶ粒子が共に投与される希釈剤、アジュバント、賦形剤またはビヒクルを指す。

薬学的担体は、水ならびに、鉱油などの石油、ピーナッツ油、ダイズ油およびゴマ油などの植物油、動物油、または合成由来の油が挙げられる油などの滅菌液体であってよい。生理食塩溶液（例えば、滅菌発熱物質不含有生理食塩水）およびブドウ糖水溶液およびグリセロール溶液も液体担体として使用され得る。ＵＳＰグレード担体および賦形剤は、ｒＡＡＶ粒子の哺乳動物被験体への送達のために特に有用である。そのような組成物は、必要に応じてリポソーム、脂質、脂質複合体、ミクロスフェア、微小粒子、ナノスフェアまたはナノ粒子をさらに含んでよい、またはそれを必要する被験体の細胞、組織、器官または身体への投与のために他の方法で製剤化されてよい。そのような組成物を作製するための方法は、周知であり、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ： Ｔｈｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｙ、第２２版、Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｐｒｅｓｓ、２０１２年において見出すことができる。

注射可能な使用のために好適なｒＡＡＶ粒子組成物の薬学的形態として、滅菌水溶液または分散物が挙げられる。一部の実施形態では、形態は、無菌で、容易な注射器通過性（ｅａｓｙ ｓｙｒｉｎｇａｂｉｌｉｔｙ）が存在する程度に流動性である。一部の実施形態では、形態は、製造および保存の条件下で安定であり、細菌および真菌などの微生物の混入作用に対して保存される。一部の実施形態では、形態は無菌である。担体は、例えば、水、生理食塩水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコールおよび液体ポリエチレングリコールなど）、これらの好適な混合物ならびに／または植物油を含有する溶媒または分散媒であってよい。適切な流動性は、例えば、レシチンなどのコーティング剤の使用によって、分散物の場合は要求される粒子サイズの維持によって、および界面活性剤の使用によって維持され得る。

注射可能水溶液の投与のために、溶液は、必要に応じて適切に緩衝されてよく、液体希釈剤は、最初に十分な生理食塩水またはグルコースを用いて等張にされる。例えば、１投与量は、１ｍｌの等張ＮａＣｌ溶液に溶解されてよく、１０００ｍｌの皮下注入液に加えられるか、または注入の提案される部位に注射されるかのいずれかであってよい（例えば、「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ」、第１５版、１０３５〜１０３８頁および１５７０〜１５８０頁を参照されたい）。投与量におけるいくらかの変動は、処置される被験体の状態に応じて必然的に生じる。投与の責任を負う者は、いずれにしても、個々の被験体について適切な用量を決定する。さらに哺乳動物投与のために、調製物は、獣医学において一般に許容される無菌性、発熱性および一般的安全性ならびに純度基準に合致しなければならない。

典型的には、そのような組成物は少なくとも約０．１％またはそれより多い治療剤（例えば、ｒＡＡＶ粒子）を含有してよいが、当然のことながら活性成分（複数可）のパーセンテージは変動する場合があり、好都合には全製剤の重量または体積の約１または２％から約７０％または８０％の間またはそれより多くであってよい。必然的に、治療に有用なそれぞれの組成物における治療剤（複数可）（例えば、ｒＡＡＶ粒子）の量は、好適な投与量が化合物の任意の所与の単位用量で得られる方法で調製され得る。溶解度、生物学的利用能、生物学的半減期、投与経路、産物有効期間および他の薬理学的検討事項などの因子は、そのような薬学的製剤を調製する当業者によって企図され、そのため種々の投与量および処置レジメンが望ましい場合がある。

処置方法
本明細書では、大きな荷重負荷関節の変性状態を処置する方法であって、被験体に本明細書で開示されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つを関節内投与することを含む方法が提供される。

一部の実施形態では、被験体は哺乳動物（例えば、ヒトまたはウマ）である。一部の実施形態では、被験体はウマである。一部の実施形態では、被験体はヒトである。

一部の実施形態では、大きな荷重負荷関節の変性状態は、急性外傷（例えば、傷害もしくは外傷性負荷）または慢性侵食性疾患によって生じる。一部の実施形態では、大きな荷重負荷関節の変性状態は変形性関節症（ＯＡ）である。ウマＯＡは、変形性関節疾患（ＤＪＤ）としても公知である。ウマにおけるＯＡは、急な事故（ａｃｕｔｅ ｉｎｃｉｄｅｎｔ）または持続的な振とう性の力のいずれかからの関節への外傷によって生じる場合がある。固定および不適切な装蹄もウマにおいてＯＡを生じる場合がある。

一部の実施形態では、ｒＡＡＶ粒子または薬学的組成物のいずれか１つは、処置を必要としている関節に関節内注射によって投与される。ウマにおいて関節炎によって最も頻繁に冒され、そのため処置の必要がある関節として、膝、蹴爪、蹄（ｃｏｆｆｉｎ）、後脚膝関節（ｈｏｃｋ）およびつなぎ（ｐａｓｔｅｒｎ）（しばしば「趾骨瘤（ｒｉｎｇｂｏｎｅ）」とも称される）が挙げられる。一部の実施形態では、処置を必要とする関節は、中手指節（ＭＣＰ）関節または手根骨間（ＩＣ）関節である。したがって、一部の実施形態では、組換え遺伝子（例えばｒＡＡＶ中）は、これらの関節の１つに直接送達（例えば、注射）される。しかし、一部の実施形態では、組成物は、全身送達されてよい。

本明細書に記載されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つが、ＩＬ−１阻害剤の持続的産生が利益をもたらす任意の病的状態を処置するために使用され得ることは、理解される。一部の実施形態では、ＩＬ−１阻害剤の持続的産生が利益をもたらす病的状態は、痛風、偽痛風または痛風もしくは偽痛風に伴う疼痛および炎症である。ＩＬ−１阻害剤の持続的産生が利益をもたらす病的状態の他の非限定的例として、関節リウマチ、若年性関節炎、スチル病、多発性関節炎、慢性乳児神経皮膚関節症候群、血管炎、全身性エリテマトーデス、乾癬性関節症、結合組織障害、免疫再構築症候群、汎血管炎、シュニッツラー症候群、アミロイドーシス、血球貪食性組織球症（ｈｉｓｔｉｏｃｙｔｏｓｉｓ ｈａｅｍａｔｏｐｈａｇｉｃ）、マックル・ウェルズ症候群、骨粗鬆症、多発性軟骨炎、高眼圧症、強直性脊椎炎、エルドハイム・チェスター病、挫滅、ｓａｐｈｏ症候群、多発傷害、細胞溶解性肝炎、強皮症、筋萎縮性側索硬化症、腫瘍壊死因子受容体関連周期性症候群（ｔｕｍｏｕｒ ｎｅｃｒｏｓｉｓ ｆａｃｔｏｒ ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｐｅｒｉｏｄｉｃ ｓｙｎｄｒｏｍｅ）、抗炎症治療、自己免疫障害、不定障害（ｉｌｌ−ｄｅｆｉｎｅｄ ｄｉｓｏｒｄｅｒ）、骨髄障害、乾癬、免疫障害、キャッスルマン疾患、発熱、インターフェロンガンマ受容体欠損症、クリオピリン関連周期性症候群、皮膚筋炎、シェーグレン症候群、温熱じんましん（ｕｒｔｉｃａｒｉａ ｔｈｅｒｍａｌ）、リウマチ性多発筋痛症、血中免疫グロブリンｄ増加、乳がん、炎症およびライター症候群が挙げられる。一部の実施形態では、ＩＬ−１阻害剤の持続的産生が利益をもたらす病的状態（例えば、痛風または偽痛風）を処置する方法は、それを必要とする被験体に本明細書で開示されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つを関節内投与することを含む。一部の実施形態では、病的状態を処置する方法は、それを必要とする被験体に本明細書で開示されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つを関節外投与することを含む。

一部の実施形態では、本明細書で記載されるｒＡＡＶ粒子のいずれか１つは、持続性の炎症状態（例えば、結合組織における炎症状態）を処置するために使用される。一部の実施形態では、持続性の炎症状態は、跛行（例えば、腱炎または蹄葉炎（ｌａｍｉｎｉｔｉｓ））を生じる。一部の実施形態では、処置される慢性炎症は、肝臓、腸または呼吸器組織において生じる。上に述べられる状態のいずれかが大きな荷重負荷関節の変性状態と見なされる場合があることは理解される。

本明細書で使用される用語として、疾患を「処置する」は、被験体によって経験される疾患または障害の少なくとも１つの徴候または症状の頻度または重症度を低減することを意味する。本明細書の上または他所に記載される組成物は、治療有効量、すなわち、望ましい結果を産生できる量で典型的には被験体に投与される。望ましい結果は、投与される活性剤に依存する。例えば、ｒＡＡＶ粒子の治療有効量は、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子をウマまたはヒト関節にそれぞれ移入させることができる、粒子の量であってよい。治療有効量は、疾患、例えばＯＡを処置できる量であってよい。獣医学分野において周知のとおり、任意の一被験体のための投与量は、被験体のサイズ、体表面積、年齢、投与される具体的な組成物、組成物中の活性成分（複数可）、投与時期および経路、全般的健康ならびに同時に投与される他の薬物が挙げられる多数の要因に依存する。処置は、当技術分野における標準的技法または当技術分野において取得された技能および経験を使用して臨床医によって評価され得る（例えば、関節における炎症の評価）。

一部の実施形態では、「投与する（ａｄｍｉｎｉｓｔｅｒｉｎｇ）」または「投与（ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ）」は、薬理学的に有用なやり方で被験体に物質を提供することを意味する。

一部の実施形態では、１×１０^１０から１×１０^１３ウイルスゲノム（ｖｇ）（例えば、５×１０^１０から５×１０^１２ｖｇ、１×１０^１１から１×１０^１２ｖｇまたは２×１０^１１から９×１０^１１ｖｇ）は、処置される関節に一度に投与される。一部の実施形態では、注射される薬学的組成物またはｒＡＡＶの体積は、１〜２０ｍｌ（例えば、２〜１５、５〜１２または５〜１０ｍｌ）である。

一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶ粒子は、定期的に、例えば３ヵ月ごと、６ヵ月ごとまたは毎年または２〜５年ごとにウマ関節に投与される。一部の実施形態では、コドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶ粒子は、定期的に、例えば３ヵ月ごと、６ヵ月ごとまたは毎年または２〜５年ごとにヒト関節に投与される。一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１ＲａまたはｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶ粒子は、複数回（例えば、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１３、１４、１５または２０回）、定期的な間隔または不定期な間隔のいずれかでウマ関節またはヒト関節に投与される。一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶは、関節に１回だけ投与される。一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶは、疾患の症状が再発または増大する場合にだけ、ウマまたはヒト関節に投与される。一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶは、状態（例えば、ＯＡ）が診断された直後（例えば、診断の１ヵ月または１年以内）にウマまたはヒト関節に投与される。一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶは、変性状態が診断される前だが、変性状態をもたらす可能性がある事象（例えば、傷害）の発症後にウマまたはヒト関節に投与される。一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶは、変性状態をもたらす可能性がある外傷の発症直後（例えば１ヵ月以内）にウマまたはヒト関節に投与される。一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶは、関節疾患の最初の徴候が観察された場合にウマまたはヒト関節に投与される。大きな荷重負荷関節の変性状態の症状の非限定的例として、引きずり歩行または跛行、関節腫脹、ターンアウト活動性（ｔｕｒｎｏｕｔ ａｃｔｉｖｉｔｙ）の減少および関節の硬直または動きの減少が挙げられる。

コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶの注射時の病理のレベル（例えば、総ＭＲＩスコア）と、下流ＩＬ−１Ｒａ産生との間に強い相関があることから（実施例２を参照されたい）、処置は、外傷後だが、変形性疾患（例えば、ＯＡ）の診断の前に開始されてよい。さらなる労作を伴うことなく、当業者は、上の記載に基づいて、本開示をその最大限利用できると考えられる。次の具体的な実施形態は、したがって、単なる例示であるとして見なされ、いかなる方法においても本開示の他の部分の限定ではない。本明細書で引用される全ての刊行物は、本明細書で参照する目的または対象物について参照により組み込まれる。

一部の実施形態では、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶの罹患関節への注射は、コドン改変ｅｑＩＬ−１Ｒａまたはコドン改変ｈＩＬ−１Ｒａコード遺伝子を含むｒＡＡＶの非罹患関節または健康な関節への注射と比較して、高レベルのＩＬ−１Ｒａ産生をもたらす。一部の実施形態では、罹患関節でのＩＬ−１Ｒａの産生は、非罹患関節または健康な関節と比較して１．１〜５０倍（例えば１．１〜２、２〜４、２〜１０、５〜１０、５〜２０、１０〜２０、２０〜３０または３０〜５０倍）高い。

（実施例１：変形性関節症の処置のためのＩＬ−１ＲａのｓｃＡＡＶ−媒介遺伝子送達：ウマモデルにおける時間的発現および体内分布）
以下に議論したデータは、ｓｃＡＡＶが、ｅｑＩＬ−１Ｒａおよびコザック配列をコードするコドン改変遺伝子を使用して、ウマ関節においてｅｑＩＬ−１Ｒａの持続的な発現を提供し得ることを示す。

ウマの前肢の手根骨および中手指節（ｍｃｐ）関節を標的化する研究を行った。運動中、これらの関節がウマの体重の６０〜６５％を担持するため、外傷および過剰な負荷に続発性のＯＡにも非常に脆弱である。

関節内送達後の治療導入遺伝子発現のパターンおよびその相対的な安全性を特徴付けるため、ＩＬ−１ＲａのウマオルソログのｃＤＮＡを使用して、投薬および時間的発現試験を実施した。最も有効なベクター用量、および細胞学的レポーター遺伝子として緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を使用して、ウイルスゲノムの局所形質導入された細胞集団および全身分散への疾患の効果に重点を置いて、健康な関節および自然発生したＯＡを有するものへの送達後のベクターの体内分布を検査した。

試験動物
試験に使用した動物は、フロリダ大学に寄贈されたか、または地元農家および研修施設から購入したかのいずれかであった。試験の各パラメーターのエンドポイントは、以下に記載したように予め定義した。いかなる動物もデータ分析から除外しなかった。全ての動物手順は、ＮＩＨの実験動物の管理と使用に関する指針およびフロリダ大学の動物実験委員会の両方に従って行った。他に言及しない限り、ウマは大きな覆いのない放牧場で、十分に自由に運動させ、群で飼育した。

ＡＡＶベクターの構築および生成
ＩＬ−１Ｒａ導入遺伝子産物の免疫認識を最小限にし、ＡＡＶベクターによる相同なＩＬ−１Ｒａ遺伝子移入の薬物動態プロファイルをアセンブルするため、ＩＬ−１ＲａのウマオルソログをコードするＤＮＡ配列を治療レポーターとして使用した。トランスジェニックタンパク質の発現を最大にするため、天然のｅｑＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡをコドン改変し、コンセンサスコザック配列を翻訳開始コドンのすぐ上流に挿入した（図１）。この構築物において、導入遺伝子の発現はＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーによって駆動される。ＡＡＶベクターは、以前に記載した方法によって、フロリダ大学Ｖｅｃｔｏｒ Ｃｏｒｅまたはノースカロライナ大学チャペルヒル校Ｖｅｃｔｏｒ ＣｏｒｅでＡＡＶ２．５カプシドにパッケージングした。

ＧＦＰおよび改変ｅｑＩＬ−１ＲａをコードするｃＤＮＡを、ｐＨｐａ−ｔｒｓ−ＳＫプラスミド、ＡＡＶ２のゲノムから操作された自己相補型（二本鎖ＤＮＡ）ＡＡＶベクターバリアントの発現カセットのＳａｃ ＩＩおよびＮｏｔ Ｉ部位に指向的に挿入した。この構築物において、導入遺伝子の発現はＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーによって駆動される。ＡＡＶベクターは、フロリダ大学Ｖｅｃｔｏｒ Ｃｏｒｅまたはノースカロライナ大学チャペルヒル校Ｖｅｃｔｏｒ ＣｏｒｅでＡＡＶ２．５カプシドにパッケージングした。

ｉｎ ｖｉｖｏ投薬および発現
ｉｎ ｖｉｖｏ導入遺伝子発現分析のため、６頭の健康な、骨格的に成熟した、２〜７歳のウマを使用した。実験は、各動物の両前肢のＭＣＰおよび手根骨間関節の両方を使用して実施した。ベクター注射の２週間前に、各関節から滑液を関節穿刺によって吸引し、ベースラインのｅｑＩＬ−１Ｒａレベルを確立した。注射時に、無作為化した様式で、０、５×１０^１０、５×１０^１１および５×１０^１２ｖｇのｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａを含有する５または１０ｍＬの液量の乳酸加リンゲル液を各動物の４つの前肢関節に送達した。この戦略を使用して、最小数の被験体を使用するそれぞれの用量で導入遺伝子発現の動物間変動性の最高評価を提供した。注射後、動物は２４時間隔離下で飼育し、獣医スタッフによって注意深くモニターした。注射後７、１４、および３０日目、その後全部で６ヵ月間毎月、ＥＬＩＳＡによるｅｑＩＬ−１Ｒａ含量の測定のために滑液、末梢血および尿を各動物から収集した。滑液、末梢血および尿は別々の実験で最長１年間収集し、関節へのコドン最適化ＩＬ−１Ｒａの注射の効果の寿命を評価する。

ウマＩＬ−１ＲａのＥＬＩＳＡ
ウマＩＬ−１Ｒａのレベルを、特異的ＥＬＩＳＡ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を使用してアッセイした。処置および対照関節両方からの滑液試料を、５０ｕ／ｍｌでヒアルロニダーゼを含有する緩衝食塩水で１：１に希釈し、タンパク質含量の測定前に３７℃で３０分間インキュベートした。アッセイの変動性を明らかにするため、試薬希釈剤（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）中で２倍段階希釈した滑液試料を広範囲にわたって生成した。各希釈系列は２連で生成し、各希釈試料は３連のウェルでアッセイした。平均は、それぞれのアッセイの標準曲線の境界内での読み取りによって試料から算出した。

ｉｎ ｖｉｖｏでのベクターの体内分布
関節内注射後、ＡＡＶベクターの全身の体内分布を決定するため、３頭の健康なウマおよび後期の自然発生したＯＡの３頭の手根骨間関節に、５ｍｌの乳酸加リンゲル液中で希釈した５×１０^１２ｖｇのｓｃＡＡＶ．ＧＦＰを注射した。動物は、２週間後に安楽死させ、剖検した。筋骨格系以外の臓器では顕著な病変は検出されなかった。組織は注射した手根骨間関節、隣接する橈骨手根骨関節、隣接する四頭筋、同側ＭＣＰ関節、対側手根骨間関節および隣接する四頭筋、脳、心臓、肺、肝臓および脾臓から採取した。注射部位から最も離れた組織をまず採取し、試料のクロスコンタミネーションを最小限にするため注意が払われた。各試料の一部を、新しい組織の倒立蛍光顕微鏡、またはパラフィン切片および免疫組織化学染色後のいずれかによるＧＦＰ発現のその後の分析のため、１０％ ＦＢＳを含むＤＭＥＭ中に入れた。残りの組織部分をＲＮＡＬａｔｅｒ（Ａｍｂｉｏｎ）に入れ、ゲノムＤＮＡ（ｇＤＮＡ）のその後の単離のため−８０℃で保存した。

ベクターゲノムをアッセイするため、ｇＤＮＡを、製造業者の指示に従って、Ｑｉａｇｅｎ ＤＮｅａｓｙ Ｂｌｏｏｄ ａｎｄ Ｔｉｓｓｕｅ Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を使用して保存した組織試料から抽出した。ｇＤＮＡ濃度はＮａｎｏＤｒｏｐ分光光度計（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を使用して決定した。定量的リアルタイムＰＣＲは、１００ｎｇ ｇＤＮＡおよびＥｐｐｅｎｄｏｒｆ ＲｅａｌＰｌｅｘ ＰＣＲ ｍａｃｈｉｎｅ（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ）を使用して実施した。プライマーは、ベクター発現カセットのＣＭＶプロモーター中の配列にアニールするように設計した。フォワードおよびリバースプライマーの配列は、それぞれ、５’−ＣＡＣＧＣＴＧＴＴＴＧＡＣＣＴＣＣＡＴＡＧＡＡＧＡＣＡＣ（配列番号５）および５’−ＴＴＣＴＴＴＧＡＴＴＴＧＣＡＣＣＡＣＣＡＣＣＧＧＡＴＣＣＧ（配列番号６）であった。各セットの反応に関して、ｐＨｐａ−ｔｒ−ｓｋプラスミドＤＮＡの段階希釈を使用して標準曲線を生成した。ウマβアクチンに特異的なＰＣＲ反応（フォワードプライマー５’−ＣＣＡＧＣＡＣＧＡＴＧＡＡＧＡＴＣＡＡＧ（配列番号７）およびリバースプライマー５’−ＧＴＧＧＡＣＡＡＴＧＡＧＧＣＣＡＧＡＡＴ（配列番号８））および鋳型ＤＮＡ無しを、それぞれ、陽性および陰性対照として使用した。全てのｇＤＮＡ試料は３連でアッセイした。試料特異的な反応阻害を試験するため、ｇＤＮＡ試料のアリコートに、１００コピー／μｇのｇＤＮＡで、ｐＨｐａ−ｔｒｓ−ＳＫベクターＤＮＡでスパイクした。４０コピー／μｇまたはそれよりも多いスパイクインＤＮＡが検出された場合、ｇＤＮＡ試料は許容できると考えた。

免疫組織化学
目に見えるＧＦＰ活性を含有する体内分布試験からの組織試料を、パラホルムアルデヒド中で固定し、組織学のために処理し、パラフィン包埋した。５μｍでカットし、荷電したスライド上にマウントした切片は、脱パラフィンし、熱媒介性抗原回復を実施した。スライドは１０％ 正常血清でブロックし、次いで１：２００希釈のウサギ抗ＧＦＰ抗体（Ａｂｃａｍ）で、室温で１時間、続いてビオチン化二次抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で１：５００の希釈で、室温で３０分間インキュベートした。スライドはＤＡＰＩ（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）でマウントし、蛍光顕微鏡で見た。

ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａベクター構築物およびｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏでの特徴付け
ウマの関節へのヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡのｓｃＡＡＶ送達を含む以前の研究では、注射後１〜２週間でのピーク後、導入遺伝子発現は着実に減り、７週間後、ヒトＩＬ−１ＲａはＥＬＩＳＡによって滑液中に検出できないことが見出された。これは、異種導入遺伝子産物を発現する形質導入された細胞の免疫認識に原因がある。組換えアデノウイルスベクターによる測定可能なレベルのウマＩＬ−１Ｒａ発現を生成することが可能であったが、通常天然ｃＤＮＡからのタンパク質発現は比較的控えめであった。したがって、ＩＬ−１Ｒａ導入遺伝子産物の免疫認識を最小にし、発現を最大にするため、ウマＩＬ−１ＲａオルソログのコドンのｃＤＮＡを改変し、翻訳開始部位のすぐ上流にコンセンサスコザック配列リーダーあり（配列番号３）およびなし（配列番号２）の両方を合成した。ｓｃＡＡＶベクタープラスミド（ｐＨｐａ−ｔｒｓ−ｓｋ）への挿入後、両方の改変構築物は、一過性トランスフェクションアッセイにおいて天然の配列より３０〜５０倍増強した発現を生じた（図２Ａ）。コザック配列を含む構築物が、最高レベルのｅｑＩＬ−１Ｒａ発現を一貫して提供したため、それをウイルスパッケージングおよびｉｎ ｖｉｖｏ試験のために選択した。

以前のデータは、培養中のヒト滑膜線維芽細胞がＡＡＶ２による感染に対する優先性を有することを示した。ヒト試験への可能な移行を考慮すると、ｅｑＩＬ−１Ｒａベクター構築物はＡＡＶ２．５カプシド中にパッケージングされ、それはＡＡＶ２向性を維持するが、ヒト集団の間で蔓延しているＡＡＶ２中和抗体との反応性の減少を示す。一定範囲の用量のＡＡＶ２．５ベクターによるウマ滑膜線維芽細胞培養物の感染は、１０^５ウイルスゲノム（ｖｇ）／細胞で１０μｇ／ｍｌを超える、ｅｑＩＬ−１Ｒａの非常に高い発現をもたらした（図２Ｂ）。ＧＦＰを含有するＡＡＶ２．５ベクターにより１０^５ｖｇ／細胞で感染した並行する対照培養物において、ｅｑＩＬ−１Ｒ産生はバックグラウンドを超えなかった。

関節内送達後のｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａ発現に対するベクター用量の効果を決定するため、最小数の実験動物を使用して動物内および動物間の変動性への洞察を提供するように設計された手法をとった。６頭のウマそれぞれにおいて、３つの異なる用量（５×１０^１０、５×１０^１１および５×１０^１２ｖｇ、図２Ｄ）でのｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａの注射は、両前肢の両手根骨間関節およびＭＣＰ関節の間で無作為な順序で分配される。残りの関節は、等体積の送達ビヒクル（乳酸加リンゲル液）を注射し、陰性対照としての役目を果たした。その後、約６ヵ月の予め決定した間隔にわたって定期的に、滑液をそれぞれの前肢関節から吸引し、末梢血および尿を収集した。生体液中のｅｑＩＬ−１Ｒａ含量は市販のＥＬＩＳＡキットを使用して測定し、注射前の値と比較して解釈した。

３つの前肢関節においてＡＡＶを受けたにもかかわらず、急性的なまたはプロトコール中の任意の時点での有害効果は観察されなかった。流体ビヒクルのみを受けた対照関節の中では、滑液ｅｑＩＬ−１Ｒａは全体を通して注射前のレベル（＜１ｎｇ／ｍｌ）のままであった（図２Ｂ）。ウイルスを受けた関節では、平均レベルが５×１０^１０ｖｇで約６ｎｇ／ｍｌ〜５×１０^１２ｖｇで約４０ｎｇ／ｍｌの範囲で、滑液ｅｑＩＬ−１Ｒａの用量に関連した増加が、注射の２〜４週間以内に観察された。ピークのｅｑＩＬ−１Ｒａ産生は、注射後４〜８週間の間で生じ、試験の残りの間維持された（図２Ｂ）。ベクター用量と培養中に見られるｅｑＩＬ−１Ｒａ発現の間のほぼ直線関係と対照的に、ｉｎ ｖｉｖｏで試験した範囲にわたるベクター用量の１００倍の増加は、ＩＬ−１Ｒａ発現において約１０倍の増加をもたらすだけであった。さらに、５×１０^１１から５×１０^１２ｖｇへの用量の増加は、滑液ｅｑＩＬ−１Ｒａを１．５倍上昇させただけであった。したがって、これらの値は最大、またはほぼ最大である可能性がある。

健康な関節およびＯＡ関節におけるＡＡＶ２．５導入遺伝子発現
ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａの５×１０^１２ｖｇ用量が関節内に最高のｅｑＩＬ−１Ｒａ産生を一貫して提供し、適度に安全であると考えられるため、それをｉｎ ｖｉｖｏでのさらなる特徴付けのために選択した。ＡＡＶベクターおよび形質導入された細胞集団の局所および全身分布へのＯＡ環境の影響を決定するため、ＧＦＰのコード配列を含有するｓｃＡＡＶベクター構築物をＡＡＶ２．５カプシドにパッケージングした。次いで５×１０^１２ｖｇのｓｃＡＡＶ．ＧＦＰを、３頭の健康なウマおよび進行した自然発生したＯＡの３頭のウマの１つの手根骨間関節に注射した（図３Ａ〜３Ｂ）。２週間後、ウマは安楽死させ、注射した関節および体全体の部位から組織を収集した。

以前に試験したＡＡＶ血清型と同様に、それぞれの健康な関節においてＧＦＰ発現が優勢な部位は滑膜であった。新しい組織試料の検査により、関節嚢の内層全体の豊富な蛍光細胞が明らかになり、より厚い絨毛領域に集中していることが多かった（図３Ｃ〜３Ｄ）。ＧＦＰ活性は関節軟骨の薄片（ｓｈａｖｉｎｇ）で目に見えたが、かすかであり、散在する単離した細胞に限られた（図３Ｇ〜３Ｈ）。顕著に対照的に、ＯＡ滑膜のＧＦＰ活性は健康な関節よりもはるかに高かった。これらの試料は、低倍率でも明るく蛍光性であることが多かった（図３Ｅ）。蛍光細胞の密度は、滑膜の内層全体の広がりにわたって目に見えてより高いが、特に炎症および滑膜炎の領域で高かった（図３Ｆおよび４Ａ〜４Ｂ）。健康な関節と同様に、蛍光細胞はほぼ排他的に滑膜および滑膜下組織の範囲に限定され、わずかに支持線維組織に見られるのみであった。

明るい蛍光細胞の集団が回収した全ての薄片で容易に明らかであるように、ＯＡ軟骨はＧＦＰ活性の最も劇的な増強を示した（図３Ｊ〜３Ｋ）。全層侵食の近くで採取した薄片は、強い蛍光の巣状領域を含有することが多く（図３Ｌおよび４Ｃ〜４Ｄ）、紡錘形の形態を有する細胞を頻繁に含有し、線維軟骨細胞への脱分化と一致している（２０）。より高い倍率は、ＧＦＰ発現が常在の軟骨細胞集団の大部分で、目で見えたが、ＯＡ軟骨に特有の軟骨細胞クラスターで特に顕著であったことを示した（図３Ｍおよび４Ｅ〜４Ｇ）。明るい蛍光細胞のポケットはまた、ＯＡ関節の縁から回収した骨棘の表面に沿っても目で見えた（図３Ｎおよび４Ｈ）。

ウイルスを受けた健康な関節およびＯＡ関節両方に関して、手根の橈骨手根骨関節の滑膜は、目に見える蛍光を含有する手根骨間関節の外側の唯一の組織であった。その位置は、注射の部位にすぐ近位であるにもかかわらず（図２Ｃ）、まばらな蛍光細胞のみが見られ、ほんのわずかな採取した試料においてであった（図３Ｏ）。

関連する観察において、健康な軟骨の薄片におけるＧＦＰ発現（採取時にはほとんど検出できない）が、鮮やかな蛍光細胞の密集した集団が各試料中のマトリクス全体で見られるように、外植片培養において４８時間のインキュベーション後劇的に増加したことが見出された（図３Ｉ）。これは、大きいパーセンテージの軟骨細胞がｉｎ ｓｉｔｕでウイルスによって実際に形質導入されたが、健康な関節に関しては、目に見える閾値を超えて蛍光レポータータンパク質を発現できなかったことを示した。

ＡＡＶ２．５体内分布
関節内注射後、関節からのＡＡＶベクターの遊出を評価するため、全ＤＮＡを組織試料から単離し、定量的ＰＣＲによってベクターゲノム含量をアッセイした。表１に示すように、ベクターゲノムの全身分布は目に見えるＧＦＰ活性とかなり一致していた。全ての動物に関して、ウイルスを受けた関節からの組織は、最高のベクターゲノム含量を示した。個体間で広範な変動があるが、平均して、滑膜におけるベクターＤＮＡは軟骨よりも約３０〜５０倍高く、ＯＡと正常な関節の間に有意な差はなかった。検出可能だが、かなり少ないベクターゲノムが、両群のウマにおいて隣接する橈骨手根骨関節の滑膜で見出された。手根の外側で、健康な群の１頭の動物は、肝臓において少ない数のベクターゲノムを示したが、ＯＡ群の１頭の動物からの肝臓および脾臓も、ベクター含量が陽性であった。要するに、健康なおよび疾患状態両方の下で、検出された＞９９．７％のＡＡＶベクターゲノムは関節組織においてであった。これらの結果は、ベクターが主に関節内に含有され、ＯＡ環境は関節内での導入遺伝子発現を増強し得るが、関節外のベクター分散に重要な影響を及ぼさないようであることを示す。

本実施例に記載の試験は、大型哺乳動物関節において、遺伝子改変された細胞は６ヵ月にわたりタンパク質合成の上昇したレベルを持続し得ることを示す。関節病理、例えば急性外傷または慢性侵食性疾患は、ウイルス形質導入およびトランスジェニック発現を著しく増加し得る。さらに、健康な関節および罹患関節両方において、大多数のベクターＤＮＡは関節組織に維持され、ＩＬ−１Ｒａの局所での過剰産生は循環中に検出されない。データに基づき、遺伝子改変された細胞が、６ヵ月よりも長い間（例えば、最長１年、最長２年、最長５年または最長１０年）、上昇したレベルのタンパク質合成を持続し得ることが予測され得る。

ウマモデルへの利点
局所ＡＡＶ媒介遺伝子移入は、関節リウマチ（２６）の処置のためにヒト関節において以前に探究され、フェーズＩＩ試験に入った（２７）。残念ながら、関節で産生されたトランスジェニックタンパク質（腫瘍壊死因子αアンタゴニスト）の測定は、プロトコールの一部ではなく、ヒト関節において達成されたトランスジェニック発現のレベルおよび持続期間に関するこの治験から明らかになる情報はない。しかしながら、治療有効性へのその関係を考えると、この情報は有効な臨床適用に重要である。

この目的のため、ウマシステムの使用は特に情報価値があり、ヒトの処置に関連するスケールで、および自然発生したＯＡの関連で、遺伝子送達のためのＡＡＶベクターの能力を試験することを可能にすることが分かっている。滑液を連続的に吸引する能力は、関節内の導入遺伝子発現および意味のある薬物動態プロファイルの生成の直接定量を可能にする。さらに、非近交系動物の使用、骨軟骨傷害へのそれらの変動する応答、行動および治癒力の固有の差は、臨床設定でのヒトの処置と関連する変動性の妥当なシミュレーションを提供する。

遺伝子発現パターン
進行したＯＡに典型的な関節における細胞および形態学的変化と関連して、ＧＦＰレポーターの実質的により高い発現が観察された。滑膜において、慢性炎症性刺激は頻繁に、過形成、血管新生、白血球浸潤、および線維症性肥厚を誘導する。ＡＡＶ媒介ＧＦＰ発現は、ＯＡ関節の滑膜全体で一貫してより高いようであるが、蛍光は特に滑膜炎の領域で明白であり、増加した細胞充実性が、ＡＡＶ形質導入に受容性の標的細胞の密度を高める役目を果たした。

ＯＡ関節におけるＧＦＰ発現の最も顕著な増加は、関節軟骨において生じる。ＧＦＰ＋細胞がまばらで、蛍光がほとんど目に見えない健康な関節からの軟骨とは全く対照的に、豊富な明るい蛍光細胞がＯＡ関節から採取した薄片全体で見られ、侵食の明らかな徴候を有する部位で最も著しく増加した。マトリクス完全性の喪失は、ＯＡ軟骨においてベクター粒子の侵入および拡散を促進するようであるが、本データは、軟骨（および滑膜）における高められた導入遺伝子発現の多くは、炎症およびサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）最初期プロモーターのストレス誘導性活性化から生じることを示す。

健康な軟骨の軟骨細胞は、異常無く、休止状態で広く存在する。ＯＡでは、軟骨マトリクスの分解はその保護特性を減らし、局所的な軟骨細胞に過度の機械的負荷を生じさせる。これらの異常な力は、核因子κＢ（ＮＦ−κＢ）、およびストレス誘導性マイトジェン活性化タンパク質キナーゼ（ＭＡＰＫ）からのシグナル伝達を刺激し、通常休止した軟骨細胞の非常に活性化した状態への代謝を駆動する。活性化した軟骨細胞は、表現型の明らかな変化を受け、それらは増殖性になり、高レベルの炎症性サイトカインを分泌し、局所的なマトリクスをさらに分解するタンパク分解酵素を放出する。ＣＭＶ最初期プロモーターは通常、高レベルな構成的プロモーターと考えられるが、このエレメントからの転写はＮＦ−κＢ、ならびにｐ３８および他のストレス活性化タンパク質キナーゼからのシグナル変換に応答することが公知である。天然のウイルスでは、これらの経路の係合が、ＣＭＶ最初期プロモーターの活性化およびウイルス複製の開始に必要である。同様に、炎症および細胞性ストレスは、その制御下で導入遺伝子の発現を著しく増加し得る（４０，４３〜４５）。この点で、ＯＡ軟骨は、ストレス活性化軟骨細胞が富化され、高密度で侵食の領域に集合する。ＧＦＰ発現も、軟骨細胞増殖およびクラスター形成部位で、ならびに骨棘の表面に沿って目立ち、軟骨から滑膜への移行時に骨軟骨性前駆細胞（ｃｈｏｎｄｒｏ−ｏｓｓｅｕｓ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ）の持続的な活性化から生じる。ＧＦＰ発現の有力な活性化は、外植片培養におけるインキュベーション後、健康な関節からの軟骨薄片にも見られた。さらなるベクターが薄片に添加されないため、この誘導は軟骨細胞に既に存在するベクターＤＮＡから生じなければならなかった。したがって、これは、採取のストレスおよび／または成長条件の変化から形質導入した軟骨細胞における代謝および転写活性の劇的な増加を反映するはずである。

したがって、いくつかの報告が遺伝子治療適用のための合成の炎症誘導性プロモーターシステムの生成を記載しているが、ＣＭＶ最初期プロモーターは、少なくともＯＡおよび大型哺乳動物関節の状況内では、先天的に疾患調節性であるようである。さらに、ＯＡ軟骨において見られるＧＦＰ発現の領域的な差は、ＡＡＶベクターおよびＣＭＶプロモーターによって駆動される発現カセットにより、優先的に導入遺伝子発現を最大の病理的ストレス下の関節軟骨のエリアに方向付ける可能性を示している。これは、標的化軟骨保護および再生戦略の開発のための基礎を作る。

要するに、この試験からのデータは、ｓｃＡＡＶが大型哺乳動物関節において相同の治療導入遺伝子の持続的な発現を提供し得ることを実証する。さらに、遺伝子送達はＯＡに関しては著しくより効率的であるようであり、滑膜組織および関節軟骨において発現の増強を可能にする。

（実施例２：変形性関節症の処置のためのＩＬ−１ＲａのｓｃＡＡＶ−媒介遺伝子送達：ウマモデルにおける薬物動態および有効性）
この実施例では、ＯＡのウマの骨軟骨断片化（ＯＣＦ）モデルにおいてｒＡＡＶを使用するｅｑＩＬ−１Ｒａ送達を議論する。データは、組換えＡＡＶを使用する遺伝子ベース療法が、ヒトサイズの関節において抗関節炎タンパク質の有効な送達を提供し得ることを実証する。ＯＡの任意の既存の処置とは異なり、この手法は、疾患の痛みのある症状および侵食性の進行をブロックする能力を有する。

試験動物
試験に使用した動物は、フロリダ大学に寄贈されたか、または地元農家および研修施設から購入したかのいずれかであった。ＯＣＦモデルの有効性試験のため、動物の調教師および評価者は、処置群の割り当てを盲検化された。もともと処置群に割り当てられた１頭のウマは、麻酔回復中の合併症から生じる肺炎のため、実験プロトコールの中途で安楽死させた。この動物は、続いて、統計分析に必要な被験体数を満たすために置き換えられた。試験の各パラメーターのエンドポイントは、以下に記載したように予め定義した。提示した全てのデータは、実験プロトコールを完了した１０頭の処置動物、および１０頭の対照動物からであり、いかなる動物もデータ分析から除外しなかった。外れたデータ点の議論は、文章および図で明確に表した。全ての動物手順は、ＮＩＨの実験動物の管理と使用に関する指針およびフロリダ大学の動物実験委員会の両方に従って行った。他に言及しない限り、ウマは大きな覆いのない放牧場で、十分に自由に運動させ、群で飼育した。

ＡＡＶベクターの構築および生成
ＩＬ−１Ｒａ導入遺伝子産物の免疫認識を最小限にし、ＡＡＶベクターによる相同なＩＬ−１Ｒａ遺伝子移入の薬物動態プロファイルをアセンブルするため、ＩＬ−１ＲａのウマオルソログをコードするＤＮＡ配列を治療レポーターとして使用した。トランスジェニックタンパク質の発現を最大にするため、天然のｅｑＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡ（５７，５８）をコドン改変し（１６）（ＧｅｎｅＡｒｔ）、コンセンサスコザック配列（１７）を翻訳開始コドンのすぐ上流に挿入した（図１）。この構築物において、導入遺伝子の発現はＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーによって駆動される（３０）。ＡＡＶベクターは、以前に記載した方法によって（７）、フロリダ大学Ｖｅｃｔｏｒ Ｃｏｒｅまたはノースカロライナ大学チャペルヒル校Ｖｅｃｔｏｒ ＣｏｒｅでＡＡＶ２．５カプシドにパッケージングした（１８，１９）。

ウマＩＬ−１β、ＩＬ−１ＲａおよびＰＧＥ_２のＥＬＩＳＡ
ウマＩＬ−１Ｒａ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）、ＰＧＥ_２（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）およびウマＩＬ−１β（ＧｅｎＷａｙ）のレベルを、特異的ＥＬＩＳＡを使用してアッセイした。処置および対照関節両方からの滑液試料を、５０ｕ／ｍｌでヒアルロニダーゼを含有する緩衝食塩水で１：１に希釈し、タンパク質含量の測定前に３７℃で３０分間インキュベートした。アッセイの変動性を明らかにするため、血清および滑液試料の試薬希釈剤（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）中での２倍段階希釈物を広範囲にわたって生成した。各希釈系列は２連で生成し、各希釈試料は３連のウェルでアッセイした。平均は、それぞれのアッセイの標準曲線の境界内での読み取りによって試料から算出した。

ＯＣＦモデルにおける有効性試験
２〜９歳の間の、混合性別の２０頭のサラブレッドのウマをこのフェーズの試験で使用した。動物は、健康であり、跛行も手根骨関節疾患のＸ線学的徴候もなかった。疾患モデルの導入前に、ウマは、３週間、５日／週でトレッドミル運動によって条件付けられた。各運動日に、ウマは２分間速歩（４〜５ｍ／秒）、２分間ギャロップ（約９ｍ／秒）、再び２分間速歩をさせた。さらなる使用の前に、動物を無作為に処置および対照群に等しく分けた。

トレッドミル条件付け後、全身麻酔下で、両方の手根骨間関節において両側で関節鏡検査を実施した。手順の間に、無作為に割り当てた１つの関節において、関節面に垂直に配置した骨刀を使用して、８ｍｍの骨軟骨病変が橈骨手根骨の内側に作られた（１４）。断片は嚢組織に付着したままにした。天然の傷害を模倣するため（５９）、親骨のデブリドマン（１４）は実施しなかった。各ウマの対側関節は、偽手術された内部対照としての役目を果たした。全てのウマは、手術および適切な獣医医療を受けた後、馬屋で７日間飼育された。

手術２週間後、前肢関節の手術時手洗い後、処置群に割り当てられたウマのＯＣＦ関節は、総体積５ｍＬで乳酸加リンゲル液中に懸濁した５×１０^１２ｖｇのｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａの注射を受けた。対照群のウマは、ウイルスを含まない５ｍＬの乳酸加リンゲル液を受けた。注射１週間後、ウマは上記の５日／週のトレッドミル運動プログラムに、１０週間戻した。トレーニング中、ウマは毎週臨床検査し、跛行評価した。１０週間のトレーニング期間の終わりに、最終の関節鏡検査を両方の手根骨間関節で実施した。断片を除去し、親骨の病変を清拭および修復した。回復後、動物は調査の群れに戻した。両方の関節鏡手順中にデジタル画像を収集した。Ｘ線学的およびＭＲイメージングは、両方の関節鏡手順の直前および第０週の処置の前に実施した。プロトコール全体を通して隔週で、末梢血および尿を収集し、滑液を両方の手根骨間関節から吸引した。

跛行評価
前肢の跛行は１０週間、主観的および客観的方法両方による手術後のトレッドミルトレーニング期間の間、毎週評価した。主観的な視覚による跛行評価を、アメリカ馬臨床獣医師協会のガイドラインに従って、歩行および速歩（約４ｍ／秒）でのトレッドミル中のウマで、適切には盲検で、２人の有資格の評価者によって実施した。段階分けシステムは以下の通りであった：０、跛行が知覚できない；１、跛行の観察が困難であり、一貫して明らかではない；２、歩行時または直線を速歩する時に跛行の観察が困難であるが、ある特定の状況下では一貫して明らかである；３、全ての状況下で、速歩時に跛行が一貫して観察可能である；４、歩行時に跛行が明らかである；５、跛行が、動作時および／もしくは静止時に最小限の荷重負荷を生じるか、または完全な運動不能を生じる。

客観的な歩行評価のため、ウマの跛行を検出および評価するために特別に設計された慣性動作分析システム（Ｌａｍｅｎｅｓｓ Ｌｏｃａｔｏｒ（登録商標）、Ｅｑｕｉｎｏｓｉｓ）を使用した（２２，２３）。毎週のセッションのため、トレッドミルにおける約４ｍ／秒の速歩時に、少なくとも３回の測定を行った。各測定は、最低３０回の中断していない歩幅から算出した。跛行は、各測定中の歩幅ごとに左と右の歩幅の間の平均最大頭差（ｍｅａｎ ｍａｘｉｍｕｍ ｈｅａｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ）（ＨＤｍａｘ）および平均最小頭差（ｍｅａｎ ｍｉｎｉｍｕｍ ｈｅａｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ）（ＨＤｍｉｎ）を使用するベクトル和として算出した（２２，２３）。ＨＤｍａｘは、左の前肢位置の後に起こる最高の頭の高さに対する右前肢位置の後に起こる最高の頭の高さの差である。ＨＤｍｉｎは、左の前肢位置の間に起こる最低の頭の高さに対する右前肢位置の間に起こる最低の頭の高さの差である。各セッションに関して、少なくとも３回の測定からのＨＤｍａｘとＨＤｍｉｎの平均を使用して、以下：
のようにベクトル和（ＶＳ）を算出した。

主観的および客観的評価の両方に関して、第１週の跛行値は各ウマのベースラインとして使用した。各ウマの続く測定は、ベースラインに対するパーセント変化として算出した。

ＭＲイメージングおよび評価
両手根のＭＲ検査は、東芝 Ｔｉｔａｎ（日本）１．５ Ｔｅｓｌａ ｈｉｇｈ−ｆｉｅｌｄ ｕｎｉｔを使用して実施した。全身麻酔下で、ウマは、直交送受信膝用コイル（ＱＤ Ｋｎｅｅ）で、各手根骨を部分的に屈曲させて（１５〜２５度）、左側横臥位で置いた。ＭＲコイルおよびシーケンスを選択し、生きたウマに臨床的に適用できるように改変し（２４）、サジタルおよびアキシャルのプロトン密度（ＰＤ）、背側Ｔ２強調、アキシャルＴ２ショートタウ反転回復（ＳＴＩＲ）、サジタルの脂肪抑制を伴うプロトン密度（ＰＤ−ＳＦ）、およびサジタルの脂肪抑制を伴うスポイルドグラジエントエコー（ｓｐｏｉｌｅｄ ｇｒａｄｉｅｎｔ ｅｃｈｏ）（ＳＰＧＲ−ＦＳ）を含めた。全取得時間は、両肢の全てのシーケンスのためにおよそ１時間と２０分であった。各ウマのＭＲスキャンは、処置群の割り当てを盲検化した３人の評価者によって検査された。各手根骨間関節および時点の、６つのＭＲシーケンスからのスキャンの検討後、スコアは、０が正常を表し、１０が重症な病理を表す０〜１０のスケールを使用して、滑膜滲出液、滑膜増殖、骨軟骨病変の重症度、関節軟骨の損傷、橈骨手根骨における骨髄浮腫、橈側手根骨および第三手根骨の硬化症、関節嚢浮腫および関節嚢線維症を含むモデルと関連する優勢な病理に割り当てた（６０，６１）。スコア化は、手根骨間関節内のみへの関与に基づいた。各病理の最終スコアは、３人の評価者の平均を表す。全ＭＲ病理スコアは、個々の病理の合計から決定した（６０，６１）。

関節鏡評価
骨軟骨病変の生成後、および実験プロトコールのエンドポイントで再び、処置および対照群のウマの両方の手根骨間関節を検査し、関節鏡でイメージングした。手順の間に収集したデジタル画像は、病変のサイズおよび断片修復の程度、周辺の軟骨を伴う欠損の境界ゾーンの統合、表面軟骨全体の外観、ならびに滑膜および靭帯の外観に関して、３人の盲検化された評価者によってスコア化した。Ｄｙｍｏｃｋら（６２）からの基準に基づき、０が正常を表し、１０が重症な病理を表す０〜１０のスコア化システムを使用した。

組織学
関節鏡検査法のエンドポイントの間に取り除いた骨軟骨断片および滑膜組織を、パラホルムアルデヒド中で固定し、脱灰し、パラフィン包埋した。５μｍの連続切片を荷電したスライド上にマウントし、脱パラフィンおよび再湿潤化（ｒｅｈｙｄｒａｔｅ）し、３％過酸化物／メタノール中、室温で１０分間ブロックした。目的の領域の別の切片は、それぞれヘマトキシリンおよびエオシン（Ｈ＆Ｅ）ならびにトルイジンブルーで染色した。連続切片は、ＭｃＩｌｗｒａｉｔｈら（６３）から適用した段階分けシステムを使用して２人の盲検化した評価者によって分析および段階分けされた。簡単に言うと、関節軟骨の完全性は、軟骨細胞壊死、クラスター形成、原線維性、および／または巣状細胞喪失の徴候に基づいてスコア化した。滑膜は、血管分布、内膜肥厚、内膜下浮腫および／または内膜下線維症の徴候に基づき評価および段階分けした。白血球浸潤は炎症の読み取りと同じスケールでスコア化した。最終的に、軟骨下骨および修復境界面は、マトリクス品質、骨軟骨病変、骨リモデリング、および骨軟骨分裂（ｏｓｔｅｏｃｈｏｎｄｒａｌ ｓｐｌｉｔｔｉｎｇ）を評価した。総スコアは、個々のスコアの合計から算出した。

カプシド標的化中和抗体の測定
方法は、Ｌｉら（６４）によって記載されたものから適用した。滑液はＥＬＩＳＡのために記載されたようにヒアルロニダーゼで消化し、血清は補体不活性化のために３０分間５６℃でインキュベートした。無血清培地を使用して、前処置した血清または滑液から一連の２倍段階希釈物を生成した。希釈した試料は、ＡＡＶ２．５カプシド中にパッケージングされた約１×１０^９ｖｇ ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａと総体積２５０μｌで混合し、３７℃で１時間インキュベートし、抗体を結合させた。混合物を、次いで、２５０μｌの培養培地を含有する２４ウェルプレート中にウマ滑膜線維芽細胞のコンフルエントな培養物に添加した（総体積５００μｌ／ウェル）。標準的な培養条件下で４８時間インキュベーション後、馴化培地を採取し、ＥＬＩＳＡによってｅｑＩＬ−１Ｒａ含量をアッセイした。ＮＡｂ力価は、上記のようにプレインキュベートしたＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａに感染させた細胞によって産生されるｅｑＩＬ−１Ｒａレベルを、５０％まで減らすことができるが、生体液を含まない最高希釈の逆数として示した。

統計分析
分析は、独立した試料のｔ検定、共変数として役目を果たすベースラインスコアを用いる共分散ｔ検定の分析、および相関分析からなった。ほとんどの場合、先験的にｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａによる処置を受けたウマは、用いた診断評価からのより低い平均値を有し、したがって、その末尾側（ｔａｉｌ）の方向を規定するであろうと仮定されたため片側検定が用いられた。実験レイアウトは、処置群（処置または対照）に無作為に割り当てられたウマによる２試料反復測定デザインであった。データは、複数の独立した試料のｔ検定を使用して分析した。第１種過誤０．０５、検出力８０％およびエフェクトサイズ（ｅｆｆｅｃｔ ｓｉｚｅ）ｄ＝１．３（大）とすると、常に処置効果を示すため試験には全部で２０頭のウマが必要であった。ベースライン測定と反復測定の間に相関があると予測されたため、共変数としてベースライン測定を含めて、試験の検出力は８０％を超えた。

ＯＡの骨軟骨断片モデルにおけるｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａの有効性
ＡＡＶ媒介ＩＬ−１Ｒａ発現の機能的能力を評価するため、Ｆｒｉｓｂｉｅら（１４）から適用した、ＯＡのＯＣＦモデルを使用した。この試験（図５Ａに図解した）のため、２０頭の健康なサラブレッドのウマを均等な群：処置および対照に無作為に割り当てた。各動物の１つの手根骨間関節において、関節鏡で橈骨手根骨の内側部に８ｍｍの骨軟骨病変が生成された。対側関節は、並行して関節鏡検査を受け、偽手術された内部対照としての役目を果たした。手術２週間後（試験０日目）、処置群のウマのＯＣＦ関節は５×１０^１２ｖｇのｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａの注射を受けた。対照群のウマは、同様の注射体積の生理食塩水を受けた。１週間後（トランスジェニックＩＬ−１Ｒａ発現の開始の時間を考慮に入れる）、ウマは１０週間の運動トレーニングスケジュールに置かれ、骨軟骨傷害に関して、初期のＯＡに一致する病理を誘導する。

運動トレーニングの終わりに、動物の手根骨間関節は関節鏡で評価し、骨軟骨断片および隣接する滑膜を分析のために収集した。病変は清拭および修復され、回復後、動物は研究の群れに戻した。

ベクターの関節内注射後の局所および全身ｅｑＩＬ−１Ｒａレベル
処置群のＯＣＦ関節からの滑液のＥＬＩＳＡ測定は、１２週間の試験全体を通して、ｅｑＩＬ−１Ｒａ含量の顕著な増加を示した。注射後２週間で平均レベル２１４ｎｇ／ｍｌに達し、ｅｑＩＬ−１Ｒａ産生は、同じウイルス用量を受ける健康な関節で測定されたよりも約４倍多かった（図５Ｂ）。トレーニングプロトコールの過程にわたり、ｅｑＩＬ−１Ｒａ発現は徐々に低下し、第１２週では約５９ｎｇ／ｍＬと測定され、正常な関節で観察されたものに近かった。対照群のＯＣＦ関節、ならびに両群の偽手術された関節からの滑液において、全体を通してＩＬ−１Ｒａは処置前のレベルのままであり、１ｎｇ／ｍｌを超えなかった。処置した関節における平均ｅｑＩＬ−１Ｒａレベルのプロットは、適度に滑らかな傾向を示したが、個々の動物間の発現は非常に可変的であり（図５Ｃ）、特に最も早い時点では、発現は２３０倍超におよび、１頭の動物では９３０ｎｇ／ｍｌを超えた。試験の終わりまでに、初期の変動のほとんどは解消し、範囲は、約３０倍まで狭まり、最も高い発現は１１９ｎｇ／ｍｌであった。

関節からのトランスジェニックタンパク質の漏出をアッセイするため、各時点での尿および末梢血血清におけるｅｑＩＬ−１Ｒａ含量も測定した。尿中のｅｑＩＬ−１Ｒａは、処置および対照群の間で意味のある差がなく、一貫して低い（＜３ｎｇ／ｍｌ）ままであった（図５Ｄ）。同様に、血清中の平均ｅｑＩＬ−１Ｒａは、両群において１０頭中９頭のウマで４ｎｇ／ｍｌより少ないままであった（図５Ｅ）。注射の前に、処置および対照群のそれぞれからの１頭のウマは、明らかな原因無く１００ｎｇ／ｍｌを超える血清ｅｑＩＬ−１Ｒａレベルを示した（図５Ｆ）。これらの動物において循環するｅｑＩＬ−１Ｒａは続いて＞５００ｎｇ／ｍｌに上がったにもかかわらず、ｅｑＩＬ−１Ｒａの付随する増加は対照のウマのＯＣＦ関節、またはいずれかのウマの偽手術された関節の滑液中に見られず、それぞれにおけるｅｑＩＬ−１Ｒａは一貫して１ｎｇ／ｍｌより低いままであった。滑液中の内在性ＩＬ−１は、試験の過程にわたって全ての生体液中で検出のレベルより低い（１６ｐｇ／ｍｌ）ままであった。これらの結果は、これらの処置条件下で、トランスジェニックｅｑＩＬ−１Ｒａの発現が関節内に機能的に含有され、ＩＬ−１Ｒａレベルを全身的には上昇させないことを示す。逆に、血清中のｅｑＩＬ−１Ｒａの正常から最大２００倍の増加は、滑液中のｅｑＩＬ−１Ｒａ含量への検出可能な効果を有さなかった。

他の知見と一致して（２１）、時間によるＡＡＶ２．５中和抗体（ＮＡｂ）の平均レベルの増加が、ベクターを受けたウマの血清および滑液両方において観察された（図５Ｇ）。ベクターを受けた関節の滑液中のＮＡｂ力価は血液よりも一貫して高かった。対照動物の体液中では、常にＮａｂは検出されなかった。

ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａ処置と関連する跛行の減少
関節痛への処置効果を評価するため、視覚的な跛行スコア化を使用して、および接着した慣性センサーのワイヤレス検出を使用する動作分析によって、前肢跛行を評価した（２２、２３）。跛行は、注射後第１週でのトレーニング開始に対する平均パーセント変化として時間をわたりプロットした。対照と比較して、処置群の動物は、両方法により跛行の徐々にだが進行性の減少を示し、視覚的な評価によって第１０週に３６％（Ｐ＝０．０３）の改善でピークに達し（図６Ａ、左のパネル）、動作分析によって第１０および１１週に４０％（Ｐ＝０．０４）であった（図６Ａ、右のパネル）。これらの機能的指標による関節痛の減少と一致して、関節液（ｊｏｉｎｔ ｆｌｕｉｄ）中のプロスタグランジンＥ_２（ＰＧＥ_２）含量の測定は、第４週からプロトコールの終わりまで対照群よりも処置群において＞５０％の減少を示した（図６Ｂ）。

ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａ送達は急性骨軟骨傷害の修復を改善する
Ｘ線学的異常は、手術後２週間およびエンドポイントで全てのＯＣＦ関節で見られたが、イメージングセッション間の位置の変動性と合わさって、手根骨関節の解剖学的な複雑さは、ウマ間の均一な時間比較を妨げた。同時点で得た磁気共鳴（ＭＲ）画像は、各骨軟骨傷害と関連する関節病理の変化の明らかな提示を提供し、各個体に関して１２週間隔で処置前およびエンドポイントスコアの比較を可能にした（２４）。全ての場合、ＭＲ画像の変化は、外科的に生成された骨折の付近で、主に内側に見出された（図７Ａ）。傷害後２週間で、明白な高強度シグナルは橈側手根骨における各断片の境界を描写し、隣接する骨の密度の増加、骨髄中の局所体液蓄積（骨髄浮腫）、関節滲出液、滑膜肥厚、ならびに線維症性肥大および関節嚢の浮腫により、ＯＣＦ関節間の変動を伴った。各ウマのベースラインとしてこれらの病理の処置前スコア（第０週）を使用して、エンドポイントで得たＭＲスキャンでの共分散分析を実施し、関節形態への処置の効果を評価した。図７Ａ〜７Ｂに反映されるように、両群は関節嚢において、類似の嚢浮腫の喪失および線維症性肥厚の増加を伴い、同等の変化を示し、これは、主に関節鏡手順および輸液によるもので、骨軟骨病変によるものは少なかった。関節内ＩＬ−１Ｒａの抗炎症特性と一致して、処置群のＯＣＦ関節は対照群と比較して著しく減少した関節滲出液（３４％、Ｐ＝０．００８）および滑膜増殖（２７％、Ｐ＝０．００８）を示した（図７Ｂ）。処置群はまた、骨折修復において３２％（Ｐ＝０．０１）改善および骨髄浮腫において３６％（Ｐ＝０．０２）減少も示した。ＯＣＦによって誘導される主な病理にわたって、処置した関節は対照群と比較して全病理スコアにおいて２５％（Ｐ＝０．００１）減少を示した（図７Ｂ）。

ＯＣＦの生成中およびエンドポイント（断片の外科的修復直前）で撮った関節鏡の画像はまた、病理に関して盲検的にスコア化した。共変数分析は、ベースラインとして処置前スコア（第−２週）を使用して実施した（図８Ａ〜８Ｂ）。図８Ａに示すように、これらの結果はＭＲ画像からのものとほぼ一致した。処置群の動物は、骨軟骨病変（２９％、Ｐ＝０．０３）および骨折に隣接する関節軟骨（１７％、Ｐ＝０．０２）の著しく改善した修復を示した。グローバル軟骨スコアおよび靭帯炎症における改善に対する傾向があったが、これらは個々には統計的有意性は達成しなかった。しかしながら、累積的には、全ての病理パラメーターにわたって、処置したＯＣＦ関節は、全関節鏡病理スコアにおいて２４％（Ｐ＝０．０４）改善を示した（図８Ａ）。これらのデータと一致して、処置群の８／１０頭のウマにおいて、骨軟骨病変は、もともと作成された断片の除去のためにチゼルを必要とする程度まで修復した。逆に、対照群の７／１０頭のウマにおいて、修復組織は圧入試験中スポンジ状であり柔らかく、断片は関節鏡鉗子によって容易に除去された。

回収した断片および隣接する滑膜組織の組織学的検査は、ＯＣＦ病変の境界での修復骨の質に有意差を示した（図８Ｂ〜８Ｃ）。関節鏡検査法およびＭＲＩからの知見と一致して、処置群において、境界面の骨組織はより成熟し、より大きなミネラル化および定義した骨単位の層状骨の形成を伴うようであった（図８Ｄ）。対照群の修復組織は、主に一次網状骨から構成された。改善した軟骨に対する強い傾向があったが、スコアは統計的有意性の範囲のすぐ外に入る（Ｐ＝０．０６）。滑膜浸潤および線維症の平均スコアにおける中程度の減少も観察されたが、これらもまた統計的に有意ではなかった。基準の評価によって、処置した関節は未処置の対照群と比較して全病理スコアにおいて２４％（Ｐ＝０．００３）改善を示した（図８Ｃ）。

ｅｑＩＬ−１Ｒａレベルと関節病理の間の関連
自然発生したＯＡを有するウマ関節におけるＧＦＰ活性の増加を見ると（実施例１参照）、処置群のＯＣＦ関節におけるｅｑＩＬ−１Ｒａ発現と注射時の関節病理の重症度の間の関連は相関していた。各動物の第０週での全ＭＲＩスコアを、注射後第２週でのピーク滑液ｅｑＩＬ−１Ｒａレベル（図９Ａ、左パネル）、および１０週間の試験にわたる平均ｅｑＩＬ−１Ｒａレベル（図９Ａ、右パネル）と比較して、１０頭全てのウマを使用しても有意な相関は認められなかった。しかしながら、第２週で９３０ｎｇ／ｍｌのｅｑＩＬ−１Ｒａ発現を有するウマは外れ値とみなされた場合、注射時の関節病理および第２週で産生されたｅｑＩＬ−１Ｒａ（ｒ＝０．８０、Ｐ＝０．０１）および全ての時点にわたる平均ｅｑＩＬ−１Ｒａレベル（ｒ＝０．６９、Ｐ＝０．０３）の間に強い直接の相関が見出される。したがって、９０％の動物では、処置時の関節病理および関節で産生されたトランスジェニックＩＬ−１Ｒａの量の間に有意な直接関連があった。

興味深いことに、処置したＯＣＦ関節では、試験の１０週間の過程にわたる平均滑液ＩＬ−１Ｒａレベルは、約６〜１５９ｎｇ／ｍｌの範囲であったが、治療利益との有意な相関は依然として見られなかった。注射直前の各ウマの全ＭＲＩスコア 対 エンドポイントの全ＭＲＩスコアのプロットは、生理食塩水と比較したＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａによる処置の効果を示す（図９Ｂ）。処置および対照群の最良適合直線のための式を使用して、病理の開始にかかわらず、ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａでの一貫した２４〜２５％改善が推定される。最も悪い全体的な病理を有する動物が、通常、最も高いレベルのｅｑＩＬ−１Ｒａを産生したことを考慮すると（図９Ａ）、産生された具体的な量のＩＬ−１Ｒａにかかわらず、かなり一貫した処置効果が全ての処置動物で観察された。動物間の導入遺伝子発現の変動性を考えると（図５Ａ〜５Ｇ、および９Ａ）、これらのデータは、各動物に関して、ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａを受けるそれぞれの関節において産生されるＩＬ−１Ｒａのレベルが、このモデルシステムにおいて最大レベルの有効性を達成したことを示唆する。

これらの試験は、大型哺乳動物関節において、直接関節内ＡＡＶ媒介遺伝子送達が、滑液中の定常状態レベルの分泌型の相同な治療遺伝子産物（ＩＬ−１Ｒａ）を内在性バックグラウンドの５０倍を超えて上昇させ得ることを示す。急性骨軟骨病変に関しては処置した関節間の変動する発現にもかかわらず、ＩＬ−１Ｒａの持続的な増加は、傷害後第２週でのＡＡＶ．ＩＬ−１Ｒａの単回投与は、関節痛および関節内炎症を減らし、損傷した骨および隣接する軟骨の内在性修復を改善するように、意味のある利益を提供した。

要するに、これらのデータは、サイズがヒトの膝に比例する関節においてＡＡＶが持続的で、治療上適当なＩＬ−１Ｒａ発現を提供でき、関節傷害のすぐ後に適用した場合、前ＯＡの急性モデルの症状発生に対して保護し得ることを実証した。さらに、ベクターまたは導入遺伝子への有害な応答は観察されず、少なくともウマのシステム内でのＩＬ−１Ｒａの関節内過剰発現は全身的な免疫抑制の明らかなリスクを提供しなかった。

Ｉｓｈｉｈａｒａら（２１）による報告と同様に、滑液および血清中両方において、ベクター送達後のＮＡｂ力価の増加が観察された。しかしながら、関節の軟骨細胞の形質導入の見かけの効率を考えると、それらは比較的安定な細胞集団である可能性があり、頻繁なベクターの再投与は必要がない場合がある。さらに、一次抗体力価が減退するにつれて、低力価で循環するＮＡｂは、関節内に送達されたＡＡＶビリオンの超生理学的なボーラスを阻害することができない場合がある。

遺伝子発現パターン
薬物送達の従来の方法は、大きく予測可能な効果を達成するために規定される用量が投与され得る点で医師に妥当な程度の対照を提供する。現在のパラダイムでは、関節組織の細胞は組換えウイルスによって遺伝子改変され、関節腔および局所組織に抗関節炎タンパク質、ＩＬ−１Ｒａを継続的に合成および分泌する。しかしながら、任意の特定の時間で産生されたトランスジェニックＩＬ−１Ｒａの量が関節に存在する改変細胞の集合的合成を反映するので、レベルは、ウイルスによってもともと改変され、それらの組成物および代謝活性における変化を確実にする細胞集団の性質に基づいて広く変動することができる（個体内および個体間の両方）。

この点において、ウマ関節における本データは、処置時の関節の病理状態が、トランスジェニック発現に強力かつ直接的な影響を有することを示す。急性骨軟骨傷害を有する炎症した関節へのＡＡＶ．ＩＬ−１Ｒａ送達は、健康な関節に見られるよりも平均ＩＬ−１Ｒａレベルの約５倍の増加をもたらした。滑液中のＩＬ−１Ｒａは、処置後２週間で、ＯＣＦ関節間で１００倍を超える範囲であったが、１０頭の動物のうち９頭において、注射および下流のＩＬ−１Ｒａ産生の時間で、病理のレベル（全ＭＲＩスコア）間に強い直接の相関があった。炎症の喪失および骨折の治癒と同時に、高くしたＩＬ−１Ｒａ発現は同様に、次第に減少し、第１２週で、エンドポイントは正常な関節において産生されたレベルに近づいた。

ＯＡにおける治療遺伝子としてのＩＬ−１Ｒａ
ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａで処置した関節では、対照群に対して約２５％の病理における平均改善が観察された。抗炎症薬としてのその役割と一致して（４９）、ｅｑＩＬ−１Ｒａの持続的な過剰発現は、可動性を改善し、関節滲出液および滑膜炎を低減した。病変に隣接する軟骨における保護の証拠があったが、効果は関節全体ではなかった。この急性傷害モデルでは、骨軟骨病変に遠位の軟骨変性は中程度であり、処置によるあらゆる変化を検出することを困難にした。より完全に軟骨侵食を阻害するこの処置の能力に関して、１２ヵ月の時間枠にわたる慢性ＯＡモデルにおける局所ｓｃＡＡＶ．ｅｑＩＬ−１Ｒａ送達の有効性および安全性は、持続的なＩＬ−１Ｒａ発現がより明確な軟骨保護効果をもたらすことを示すと予想される。

興味深いことに、滑液ＰＧＥ_２の減少にもかかわらず、処置群は対照と比較して、骨軟骨骨折の修復の顕著な改善を示した。この知見は、骨折修復におけるシクロオキシゲナーゼ２およびプロスタグランジンのきわめて重要な役割を示す文献と矛盾するようである（５０、５１）。これらの分子は、骨治癒の急性炎症期に主に寄与するが、急性炎症期は、傷害後およそ７〜１４日で消散し始め、細胞の分化およびマトリクス合成の修復プロセスにとって代わられる（５２）。急性炎症は修復プロセスの開始に必要とされるが、持続的な炎症はＷｎｔ／β−カテニン経路の活性化および骨芽細胞分化を妨げることがあり、骨の修復を阻害する（５３，５４）。したがって、手術後２週間でベクターを投与することにより、ＩＬ−１Ｒａ過剰発現からの減少した炎症性シグナル伝達は、修復期中の骨芽細胞分化の増強に役立ち、治癒の改善をもたらす可能性がある。このように、関節傷害後、類似の時間枠でのＡＡＶ．ＩＬ−１Ｒａによる処置は、減少した炎症および増強した組織修復を可能な下流の軟骨保護と組み合わせて、外傷後ＯＡにおいて治療的／予防的利益を提供し得る。

広い範囲にわたる関節内ＩＬ−１Ｒａ発現にもかかわらず、滑液のｅｑＩＬ−１Ｒａ含量と治療利益の間の相関は観察されなかった。これは、ＩＬ−１ １型受容体の競合阻害剤としてのＩＬ−１Ｒａの作用様式に起因した（４）。ＩＬ−１シグナル伝達の能力により、ＩＬ−１Ｒａは、その活性を完全に阻害するためにＩＬ−１の１００〜１０００倍過剰に存在しなければならない（５５、５６）。ＯＣＦ関節において、滑液ＩＬ−１は、検出限界（１６ｐｇ／ｍｌ）未満であった。したがって、処置した関節の大部分では、ＩＬ−１Ｒａは６，０００倍過剰に存在し、最も低い発現の関節で少なくとも４００倍であった。ＩＬ−１Ｒａは公知のアゴニスト効果を有さない（４）ので、いったん利用可能なＩＬ−１受容体が占有されると、さらなるＩＬ−１Ｒａはさらなる利益を提供できない。これらの点を考慮すると、処置群において観察された関節病理の一貫した約２４〜２５％の改善は、ＩＬ−１Ｒａ送達のこの方法を有するこの疾患モデルにおいて達成可能な最大の利益を反映する可能性がある。

全体的なこれらのデータは、ＩＬ−１ＲａがＯＡの関節内遺伝子療法によく適していることを示す。それは、洗練された調節を必要とせず、治療閾値を超えた合成レベルだけを必要とする。達成されると、過剰生産は、ほとんど明白な有害結果を有さず、したがって、ｉｎ ｖｉｖｏでのウイルス媒介遺伝子送達と関連する広い変動に寛容である。データは、大規模な病理ならびに組織および臓器のレベルで媒介されるプロセスを含むきわめて複雑な疾患のＩＬ−１シグナル伝達構成成分をブロックすることができるだけであるため、ＩＬ−１Ｒａ遺伝子送達はＯＡの治療法になる可能性は低いことを示す。それでもなお、ＩＬ−１は炎症カスケードの主要なドライバーであり、細胞レベルで媒介されるＯＡの侵食性のプロセスの大部分に活発な役割を果たすので、疾患重症度の広範なスペクトルにわたり、患者に意味のある利益をもたらす可能性を有する。

要するに、この試験からのデータは、組換えＡＡＶを使用する遺伝子ベースの療法が、ヒトサイズの関節に、安全で、持続的な、抗関節炎タンパク質の有効な送達を提供し得ることを実証する。さらに、関節傷害後まもなく適用したＡＡＶ．ＩＬ−１Ｒａは、前ＯＡの急性モデルの症状発生を減少することができる。任意の既存の処置とは異なり、この手法は疾患の痛みのある症状および侵食性の進行をブロックする能力を有する。本明細書での知見に基づき、ＡＡＶ．ＩＬ−１Ｒａは有効性を適切なレベルの安全性と合わせ、ヒトおよびウマＯＡでの臨床試験を支えるプロファイルを提供する。

（実施例３：コドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡの生成）
遺伝子改変された細胞からのＩＬ−１Ｒａの最も高い発現（分泌）を提供した、ヒトインターロイキン−１受容体アンタゴニスト（ＩＬ−１Ｒａ）のｃＤＮＡは、遺伝子療法プロトコールにおける臨床適用の目的で生成された。この目的のため、天然のｃＤＮＡ配列コドンを２つのＤＮＡ合成会社ＧｅｎｅＳｃｒｉｐｔおよびＧｅｎｅＡｒｔのヒト最適化アルゴリズムを使用して改変した。２つの改変したＩＬ−１Ｒａ配列は、翻訳開始部位のすぐ上流にコンセンサスコザック配列ありおよびなしで、ＧｅｎｅＡｒｔから注文した。合成ｃＤＮＡを受け取ると、３つ全てを、ｐＨｐａ−ｔｒｓ−ＳＫプラスミド、ＡＡＶ２のゲノムから操作された自己相補型（二本鎖ＤＮＡ）ＡＡＶベクターバリアントの発現カセットのＳａｃＩＩおよびＮｏｔＩ部位に指向的に挿入し、Ｓｕｒｅ ＩＩ細菌細胞に形質転換した。この構築物において、導入遺伝子の発現はＣＭＶ最初期プロモーター／エンハンサーによって駆動される。それぞれの挿入の検証後、大規模培養物を３つの新しい構築物、ならびにａ）ヒトＩＬ−１Ｒａの天然のｃＤＮＡ、およびｂ）緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）のコード配列を含有する２つの既存のｓｃＡＡＶベクター構築物から生成した。各培養物からプラスミドを単離し、塩化セシウム勾配によって２回精製した。各ＤＮＡ調製物の濃度は、分光光度計およびアガロースゲルによる可視化によって決定した。

各構築物からのＩＬ−１Ｒａタンパク質の相対発現を決定するため、等量の各プラスミドを、約７０％コンフルエンシ―のＨＥＫ２９３細胞にトランスフェクトした。およそ４８時間後、各培養物からの馴化培地を収集し、ヒトＩＬ−１Ｒａ含量を市販のキットを使用してＥＬＩＳＡによって測定した。図１０は、各プラスミド構築物による３つのトランスフェクションからの平均レベルを示す。予想したように、ｓｃＡＡＶ．ＧＦＰプラスミドを受ける培養物には測定可能なＩＬ−１Ｒａは見られなかった。３つのコドン改変ｃＤＮＡからのＩＬ−１Ｒａ発現は、天然の配列からのＩＬ−１Ｒａ発現を約２〜４倍上回った。ＧｅｎｅＡｒｔによって合成された両構築物からのＩＬ−１Ｒａ発現はＧｅｎｅＳｃｒｉｐｔからのＩＬ−１Ｒａ発現を上回ったが、コンセンサスコザック配列を有するＧｅｎｅＡｒｔ ｃＤＮＡは最も高いＩＬ−１Ｒａ発現を提供した。

異なる細胞系において、２９３細胞で観察された結果を確かめるため（図１０）、ＧｅｎｅＡｒｔコドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡ（コザックリーダー配列ありおよびなし）を含有する等量のｓｃＡＡＶベクタープラスミドを、ヒト骨肉腫（ＯＳ）細胞の培養物に、約７５％コンフルエンシ―でトランスフェクトした。ＯＳ細胞の並行培養物に、ＧＦＰまたは天然のヒトＩＬ−１Ｒａのコード配列を含有するｓｃＡＡＶベクタープラスミドをトランスフェクトした。およそ４８時間後、培養物から培地を採取し、ＩＬ−１Ｒａ含量を市販のＥＬＩＳＡによって測定した。図１１は、各プラスミドによる３つのトランスフェクションからの平均レベルを示す。２９３細胞で見られたのと同様に（図１０）、改変構築物を受けるＯＳ細胞からのヒトＩＬ−１Ｒａ発現は、天然のヒト配列からのものよりも実質的に高く、コザック配列を有する改変配列は全体で最も高いレベルを産生した。

ウイルス媒介遺伝子送達に関して、改変ヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡの発現レベルを試験するため、ａ）ＧＦＰ、ｂ）天然のヒトＩＬ−１Ｒａ、およびｃ）コザックリーダーを有するＧｅｎｅＡｒｔコドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａ配列（ｏｐｔ＋Ｋ）のコード配列を含有するｓｃＡＡＶベクタープラスミドは、ＡＡＶ２カプシドにパッケージングした。それぞれのウイルス調製物の力価は、ＰＣＲおよびスロットブロットアッセイの両方によって決定した。初代ヒト滑膜線維芽細胞の培養物に、ＩＬ−１Ｒａウイルス調製物の両方を、細胞当たり１０^３〜１０^５のＤＮＡｓｅ耐性ウイルスゲノム（ｖｇ）の用量の範囲にわたって感染させた。１０^５ｖｇ／細胞のｓｃＡＡＶ．ＧＦＰによる並行感染は、陰性対照として使用した。感染５日後、感染した培養物によって馴化した培地を採取し、ＥＬＩＳＡによってＩＬ−１Ｒａ含量を分析した。図１２に示すように、コドン改変ヒトＩＬ−１Ｒａベクターを感染させた細胞は、全てのウイルス用量で、より高いレベルのトランスジェニックヒトＩＬ−１Ｒａを産生した。

図１３は、天然のヒトＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡおよび下線を引いたコザック配列を含むコドン改変ＩＬ−１Ｒａ配列のアライメントを示す。アライメントは、天然のＩＬ−１Ｒａ ｃＤＮＡ配列における５３４ヌクレオチド中１０５個が、改変によって変更されたことを示す。ＤＮＡ配列はＩＬ−１Ｒａ ＲＮＡの翻訳および発現を改善するために変更され、翻訳されたタンパク質のアミノ酸配列は天然のタンパク質と同一である。

他の実施形態
本明細書で開示される全ての特性は、任意の組合せで組み合わされてよい。本明細書で開示される各特性は、同じ、均等のまたは類似の目的を果たす代替的特性によって置き換えられてよい。したがって、そうでないと明確に述べる場合を除いて、開示される各特性は、一般的な一連の均等または類似の特性の一例にすぎない。

上の記載から当業者は、本開示の本質的な特徴を容易に確認でき、それを種々の使用および条件に適合させるために、本開示の種々の変更および改変を、その精神および範囲から逸脱することなく行うことができる。したがって、他の実施形態も特許請求の範囲内である。

均等物
いくつかの発明実施形態が本明細書に記載および例示されているが、当業者は、本明細書に記載される機能を実施するため、ならびに／または結果および／もしくは１つもしくは複数の利点を得るための種々の他の手段ならびに／または構成を容易に想定し、そのような変形形態および／または改変のそれぞれは、本明細書に記載される発明実施形態の範囲内であると見なされる。さらに一般には、当業者は、本明細書に記載される全てのパラメーター、大きさ、材料および配置が例示的であることが意図され、実際のパラメーター、大きさ、材料および／または配置が、発明教示が使用される１つまたは複数の具体的な適用に依存することを容易に理解する。当業者は、本明細書に記載される具体的な発明実施形態への多数の均等物を認識する、または単なる日常的な実験を使用して確認できる。したがって、前述の実施形態が例示の方法によってのみ示され、添付される特許請求の範囲およびその均等物の範囲内で、発明実施形態が具体的に記載される以外の方法で実施され、特許請求され得ることは理解される。本開示の発明実施形態は、本明細書に記載されるそれぞれ個々の特性、システム、論文、材料、キットおよび／または方法を対象とする。付加的に、２つまたはそれより多いそのような特性、システム、論文、材料、キットおよび／または方法の任意の組合せは、そのような特性、システム、論文、材料、キットおよび／または方法が互いに矛盾しない場合、本開示の発明範囲内に含まれる。

本明細書で定義され、使用される全ての定義は、辞書的定義、参照により組み込まれる文書における定義、および／または定義された用語の通常の意味を網羅して管理すると理解されるべきである。

本明細書で開示される全ての参考文献、特許および特許出願は、それについてそれぞれが引用される対象物に関して参照により組み込まれ、一部の場合は、文書全体を包含し得る。
本明細書で使用される場合、本明細書におけるおよび特許請求の範囲における、不定冠詞「ａ」および「ａｎ」は、そうでないと明らかに示される場合を除いて、「少なくとも１つ」を意味すると理解されるべきである。

本明細書で使用される場合、本明細書におけるおよび特許請求の範囲における句「および／または」は、結合される要素、すなわち一部の場合では結合して存在し、他の場合では分離して存在する要素の「いずれかまたは両方」を意味すると理解されるべきである。「および／または」を用いて列挙される複数の要素は、同じ様式にある、すなわち、そのように結合された要素の「１つまたは複数」と理解されるべきである。他の要素は、「および／または」節で具体的に同定された要素以外に、具体的に同定されたこれらの要素に関連するまたは関連しないに関わらず必要に応じて存在してよい。それにより、非限定的例として、「含む」などの非限定語（ｏｐｅｎ−ｅｎｄｅｄ ｌａｎｇｕａｇｅ）と併せて使用される場合「Ａおよび／またはＢ」の言及は、一実施形態では、Ａのみ（必要に応じてＢ以外の要素を含む）；別の実施形態では、Ｂのみ（必要に応じてＡ以外の要素を含む）；さらに別の実施形態では、ＡおよびＢの両方（必要に応じて他の要素を含む）；などを指す場合がある。

本明細書で使用される場合、本明細書におけるおよび特許請求の範囲における「または」は、上に定義した「および／または」と同じ意味を有すると理解されるべきである。例えば、列挙における項目を分離する場合、「または」または「および／また」は、包括的、すなわち少なくとも１つだけでなく、１つより多くを含んで、数または列挙における要素、および必要に応じて、追加的な列挙されていない項目の含有であるとして解釈される。「１つだけ」または「正確に１つ」または特許請求の範囲において使用される場合の「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ）」などの、それとは反対と明確に示される用語だけは、数または列挙における要素の正確に１つの要素の含有を指す。一般に、本明細書で使用される場合、用語「または」は、「いずれか（ｅｉｔｈｅｒ）」、「１つの」、「１つだけ」または「正確に１つ」などの排他的用語が先行する場合、排他的選択肢を示す（すなわち「一方または他方だが両方でなく」）としてだけ解釈される。「から本質的になる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙ ｏｆ）」は、特許請求の範囲において使用される場合、特許法の分野において使用されるその通常の意味を有する。

本明細書で使用される場合、本明細書においておよび特許請求の範囲において、１つまたは複数の要素の列挙を参照して、句「少なくとも１つ」は、要素の列挙における任意の１つまたは複数の要素から選択される少なくとも１つの要素を意味するが、要素の列挙において具体的に列挙されたそれぞれおよび全ての要素の少なくとも１つを必ずしも含まず、要素の列挙における要素の任意の組合せを排除しないと理解されるべきである。この定義は、具体的に同定されたこれらの要素に関連するまたは関連しないに関わらず、句「少なくとも１つ」が指す要素の列挙内において具体的に同定された要素以外に、要素が必要に応じて存在する場合があることも許容する。それにより、非限定的例として、「ＡおよびＢの少なくとも１つ」（または均等に、「ＡまたはＢの少なくとも１つ」または均等に「Ａおよび／またはＢの少なくとも１つ」）は、一実施形態では、少なくとも１つの、必要に応じて１つより多くを含んで、ＡをＢが存在せずに指し（および必要に応じてＢ以外の要素を含む）；別の実施形態では、少なくとも１つの、必要に応じて１つより多くを含んで、ＢをＡが存在せずに指し（および必要に応じてＡ以外の要素を含む）；さらに別の実施形態では、少なくとも１つの、必要に応じて１つより多くを含んで、Ａおよび少なくとも１つの、必要に応じて１つより多くを含む、Ｂを指す（および必要に応じて他の要素を含む）；などを指す場合がある。

それとは反対と明確に示される場合を除いて、１つより多いステップまたは作用を含む、本明細書で特許請求される任意の方法において、方法のステップまたは作用の順序は、方法のステップまたは作用が引用される順序に必ずしも限定されないことも理解されるべきである。

特許請求の範囲、および上の本明細書では、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」、「保有する（ｃａｒｒｙｉｎｇ）」、「有する（ｈａｖｉｎｇ）」、「含有する（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｖｏｌｖｉｎｇ）」、「保持する（ｈｏｌｄｉｎｇ）」、「からなる（ｃｏｍｐｏｓｅｄ ｏｆ）」などの全ての移行句は、非限定である、すなわち、含むがこれに限定されないことを意味すると理解される。移行句「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ）」および「から本質的になる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙ ｏｆ）」だけは、ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ Ｐａｔｅｎｔ Ｏｆｆｉｃｅ Ｍａｎｕａｌ ｏｆ Ｐａｔｅｎｔ Ｅｘａｍｉｎｉｎｇ Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ、２１１１．０３節に記載されるとおり、それぞれ限定的または半限定的移行句である。非限定的移行句（例えば、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」）を使用する本文書に記載される実施形態が、代替的実施形態では、非限定的移行句によって記載された特性「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ）」および「から本質的になる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙ ｏｆ）」としても企図されることは理解されるべきである。例えば、本開示が「ＡおよびＢを含む組成物」を記載する場合、本開示は、代替的実施形態「ＡおよびＢからなる組成物」およびに「ＡおよびＢから本質的になる組成物」も企図する。

Claims (13)

1. ＩＬ−１Ｒａをコードするコドン改変遺伝子を含む組換え核酸。
2. 前記ＩＬ−１Ｒａが、ウマＩＬ−１Ｒａ（ｅｑＩＬ−１Ｒａ）であり、配列番号２を有する、請求項１に記載の組換え核酸。
3. 前記ＩＬ−１Ｒａが、ヒトＩＬ−１Ｒａであり、配列番号１０を有する、請求項１に記載の組換え核酸。
4. ＩＬ−１Ｒａをコードする前記コドン改変遺伝子の翻訳開始部位のすぐ上流にコザック配列をさらに含み、前記コザック配列およびｅｑＩＬ−１Ｒａをコードする前記コドン改変遺伝子が配列番号３を有し、前記コザック配列およびｅｑＩＬ−１Ｒａをコードする前記コドン改変遺伝子が配列番号１１を有する、請求項２または３に記載の組換え核酸。
5. ＩＬ−１Ｒａをコードする前記コドン改変遺伝子の上流にプロモーターをさらに含む、前記請求項のいずれか一項に記載の組換え核酸。
6. 前記プロモーターがサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）最初期プロモーター／エンハンサーである、請求項５に記載の組換え核酸。
7. 前記請求項のいずれか一項に記載の核酸を含む組換えアデノ随伴ウイルス（ｒＡＡＶ）粒子。
8. 前記ｒＡＡＶが血清型２または２．５であり、自己相補型（ｓｃＡＡＶ２またはｓｃＡＡＶ２．５）である、請求項７に記載のｒＡＡＶ粒子。
9. 大きな荷重負荷関節の変性状態を処置する方法であって、それを必要とする被験体に請求項７または８に記載のｒＡＡＶ粒子を関節内投与するステップを含む、方法。
10. 大きな荷重負荷関節の前記変性状態が変形性関節症である、請求項９に記載の方法。
11. 前記被験体がウマである、請求項９または１０に記載の方法。
12. 前記被験体がヒトである、請求項９または１０に記載の方法。
13. 前記ｒＡＡＶ粒子が関節内注射によって投与される、請求項９〜１２のいずれか一項に記載の方法。