JP2018112558A - 体液中における疾患または状態のシグネチャーを検出する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、2008年6月18日出願の米国特許仮出願第61/073,434号、および2008年1月18日出願の米国特許仮出願第61/022,033号の出願日の利益を主張するものであり、各々の出願は、その全体が全ての目的のため、参照により本明細書に組み込まれる。
al. (2000) Nature 406:747、Lobenhofer et al. (2001) Health Perspect. 109:881、van't Veer et al. (2002) Nature 415:530 (2002)、Liotta and Kohn (2003) Nat. Genet. 33:10、Ginos et al. (2004) Cancer Res. 64:55、Liu (2005) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 102:3531、Grigoriadis et al. (2006) Breast Cancer Research 8:R56)。
、およびHerwig et al., Prostate 62 290 (2005)を参照のこと。これは、腫瘍細胞を貪
食する結果であると考えられる。胎児幹細胞、有核赤血球、胎児リンパ球、および相当量の無細胞胎児核酸が、母体血液中を循環していることが知られている。Cheung et al., Nat. Genet. 14, 264 (1996)を参照のこと。
6などが挙げられる。
ル化ヒドロキシトルエン(BHT、酸化防止剤として)を含有するクロロホルム:メタノール(2:1、体積:体積)を用いて)生体サンプルから脂質を抽出し、脂肪酸メチルエステルを調製し(例えば、14%BF3−メタノール試薬)、(例えば、HPLC、TLCにより、市販のガスクロマトグラフ、質量分析器、および/またはガスクロマトグラフ/質量分析器の組み合わせを用いたガスクロマトグラフ−質量分析により)該脂肪酸メチルエステルの定量化を行うことが挙げられる。脂肪酸質量は、種々の分析された脂肪酸の領域を内標準の確定された濃度のそれと比較することによって測定される。
標準的なクロマトグラフィ技術も、複合体化していない分子から複合体化分子を分離するのに用いることができる。例えば、ゲルろ過クロマトグラフィは、サイズに基づいて分子を分離するものであり、適切なゲルろ過樹脂をカラムの形態で用いることにより、例えば、相対的に大きな複合体を相対的に小さな複合体化を形成していない成分から分離してもよい。同様に、複合体化していない成分と比較したマーカー/プローブ複合体の帯電特性の相対的に差異を利用して、例えばイオン交換クロマトグラフィ樹脂を用いて、未複合体化していない成分から複合体を区別することができる。このような樹脂およびクロマトグラフィ技術は当業者に周知である(例えば、Heegaard (1998) J. Mol. Recognit. 11:141、Hage and Tweed (1997) J. Chromatogr. B. Biomed. Sci. Appl. 12:499を参照)。ゲ
ル電気泳動も、未結合成分からの複合体化アッセイ成分の分離に利用することができる(例えば、Ausubel et al編、Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York, 1987 1999を参照)。この技術では、タンパク質または核酸複合体が、例
えば、サイズまたは帯電に基づいて分離される。電気泳動プロセスの間、結合相互作用を維持するために、非変性ゲルマトリックス物質、および還元剤が存在しない条件が通常は好ましい。特定のアッセイに対する適切な条件およびその成分は、当業者に周知である。
RNA単離プロセス(1989、米国特許第4,843,155号)など、当業者に周知の技術を用いて容易に処理することができる。
14:579)、リガーゼ連鎖反応(Barany, 1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88:189)
、自家持続配列複製法(Guatelli et al., 1990, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:1874
)、転写増幅システム(transcriptional amplification system)(Kwoh et al. (1989)
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86:1173)、Q−ベータレプリカーゼ(Lizardiet al. (1988) Bio/Technology 6:1197)、ローリングサークル複製(米国特許第5,854,03
3号)による核酸増幅のプロセス、またはその他の任意の核酸増幅法が挙げられ、続いて、当業者に周知の技術を用いて増幅分子が検出される。これらの検出スキームは、核酸分子の検出において、このような分子の存在数が非常に少ない場合に特に有用である。本明細書で用いる増幅プライマーは、遺伝子の5’領域または3’領域(それぞれ、プラス鎖およびマイナス鎖、または逆も同様)にアニールすることができ、中間に短い領域を含む一対の核酸分子と定義される。一般に、増幅プライマーは、約10〜30ヌクレオチド長であり、約50〜200ヌクレオチド長の領域に隣接する。適切な条件下で適切な試薬を用いて、このようなプライマーにより、プライマーに隣接するヌクレオチド配列を含む核酸分子が増幅される。
用いて増幅分子が検出される。これらの検出スキームは、核酸分子の検出において、このような分子の存在数が非常に少ない場合に特に有用である。
enerated DNA probes)を含む二次元アレイで同定することができる。簡潔に述べると、プローブの第一のハイブリダイゼーションアレイを用いて、サンプルおよびコントロール中のDNAの長い範囲をスキャンし、一連のオーバーラッププローブの直線アレイを作製することによって配列間の塩基の変化を同定する。この工程により、点変異の同定が可能となる。第二のハイブリダイゼーションアレイがこの工程に続き、これにより、検出されたすべての変種または変異に相補的な低分子の特異的プローブアレイを用いて特定の変異の特性決定が可能となる。各々の変異アレイは平行プローブセットから成り、一方は野生型遺伝子に相補的であり、他方は突然変異遺伝子に相補的である。
たはSanger((1977) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 74:5463)によって開発された技術に
基づく反応が含まれる。また、診断アッセイを実施する際に、質量分析による配列決定(例えば、PCT国際公開公報WO94/16101、Cohen et al. (1996) Adv. Chromatogr. 36:127-162、およびGriffin et al. (1993) Appl. Biochem. Biotechnol. 38:147を参照)など、種々の自動配列決定手順のいずれをも用いることができることも意図される((1995) Biotechniques 19:448)。
は、コントロールDNAまたはRNAを検出のために標識してよい。
トロールマーカー核酸の一本鎖DNA断片を変性し、復元させる。一本鎖核酸の二次構造は配列に応じて異なり、得られた電気泳動移動度の変化により、単一塩基の変化でさえ検出することができる。このDNA断片は標識してもよく、標識したプローブで検出してもよい。アッセイの感度は、二次構造が配列の変化に対してより高感度である(DNAよりも)RNAを用いることで向上させることができる。ある実施形態では、本方法は、ヘテロ二重鎖解析を利用して、電気泳動移動度の変化に基づいて二本鎖へテロ二重鎖分子を分離する(Keen et al. (1991) Trends Genet. 7:5)。
らに、変異領域中に新規な制限部位を導入して切断に基づく検出を行うことが望ましい場合もある(Gasparini et al. (1992) Mol. Cell Probes 6:1)。ある実施形態では、増幅用Taqリガーゼを用いて増幅を実施することができることも想定される(Barany (1991) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:189)。そのような場合、5’配列の3’末端にて完
全一致する場合にのみライゲーションが起こり、それにより、増幅の有無を調べることで特定部位における既知の変異の存在を検出することが可能となる。
非貪食細胞からの貪食細胞の分離および発現プロファイルの解析のための代表的方法I
1.図2および図3を参照して、プレートをアビジンでコーティングする。
2.非貪食血液細胞(例えば、T細胞)に対するビオチン化抗体をウェルに添加し、室温で30分間インキュベートし、ウェルを洗浄する。
3.磁気ビーズを添加する。
4.WBC血液サンプルを添加する。
5.37℃でインキュベートする(30分〜1時間)
6.貪食細胞によるビーズの貪食、およびアビジン−ビオチン抗体の非貪食細胞への結合の後、プレートを磁石上に置き、洗浄する(磁気ビーズを内部へ取り込んだ貪食細胞および抗体と結合した非貪食細胞が残留し、その他すべての細胞は洗い流される)。
7.磁石を取り除き、貪食細胞を回収する。
8.貪食細胞(例えば、磁気ビーズと結合した細胞)および非貪食細胞(例えば、抗非貪食細胞ビオチン化抗体−アビジン結合を介してウェルの底部に結合した細胞)からRNAを単離し、cDNA、cRNAを調製し、これらを用いて貪食細胞および非貪食細胞の遺伝子プロファイル(例えば、全遺伝子アレイおよび/または癌遺伝子アレイ)を区別する。
9.各細胞サンプルからDNAを単離し、貪食細胞に選択的に存在する(すなわち、非貪食細胞には存在しない)腫瘍DNAシグネチャーを同定し、プロファイル(例えば、貪食細胞および非貪食細胞で得られた、全遺伝子アレイ、DNA変異、および/またはSNP)を比較する。
10.各細胞サンプルからタンパク質を単離し、ヒト腫瘍で過剰発現される既知のタンパク質(例えば、前立腺癌におけるPSAおよびPSMA、結腸癌におけるCEA、ならびに卵巣癌におけるCA125)に対する抗体を用いてウェスタンブロットを行い、貪食細胞および非貪食細胞で得られたプロファイルを比較する。あるいは、質量分析を用いて、タンパク質を同定する。
11.各細胞サンプルから脂質を単離し、例えばHPLCを用いて、その量および質を比較する。
非貪食細胞からの貪食細胞の分離および発現プロファイルの解析のための代表的方法II
1.図2および図3を参照して、血液サンプル中のRBCを溶解する。
2.スライドグラス上でWBCをサイトスピンにかける。
3.アセトン/メタノール中で細胞を固定する(−20℃、5分間)。
4.ヘマトキシリン・エオシン染料、および抗T細胞抗体で染色する。
5.レーザーキャプチャー顕微鏡(LCM)を用いて、T細胞(非貪食性)およびマクロファージ(貪食性)を単離する。
6.貪食細胞および非貪食細胞からRNAを単離し、cDNA、cRNAを調製し、これらを用いて貪食細胞および非貪食細胞の遺伝子プロファイル(例えば、全遺伝子アレイおよび/または癌遺伝子アレイ)を区別する。
7.各細胞サンプルからDNAを単離し、DNAアレイ解析を行い、貪食細胞および非貪食細胞で得られたプロファイル(例えば、全遺伝子アレイ、DNA変異、および/またはSNP)を比較する。
8.各細胞サンプルからタンパク質を単離し、ヒト腫瘍で過剰発現される既知のタンパク質(例えば、前立腺癌におけるPSAおよびPSMA、結腸癌におけるCEA、ならびに卵巣癌におけるCA125)に対する抗体を用いてウェスタンブロットを行い、貪食細胞および非貪食細胞で得られたプロファイルを比較する。あるいは、質量分析を用いて、タンパク質を同定する。
9.各細胞サンプルから脂質を単離し、例えばHPLCを用いて、その量および質を比較する。
非貪食細胞からの貪食細胞の分離および発現プロファイルの解析のための代表的方法III
1.図2および図3を参照して、血液サンプル中のRBCを溶解する。
2.磁気抗体結合ビーズを用いて、全血から非貪食細胞(例えば、T細胞)および貪食細胞(例えば、好中球および/またはマクロファージおよび/または単球)を単離する。
3.各細胞サンプルからRNAを単離し、cDNA、cRNAを調製し、これらを用いて貪食細胞および非貪食細胞の遺伝子プロファイル(例えば、癌遺伝子アレイ)を区別する。
4.各細胞サンプルからDNAを単離し、DNAアレイ解析を行い、貪食細胞および非貪食細胞で得られたプロファイルを比較する。
5.各細胞サンプルからタンパク質を単離し、ヒト腫瘍で過剰発現される既知のタンパク質(例えば、前立腺癌におけるPSAおよびPSMA、結腸癌におけるCEA、ならびに卵巣癌におけるCA125)に対する抗体を用いてウェスタンブロットを行い、貪食細胞および非貪食細胞で得られたプロファイルを比較する。あるいは、質量分析を用いて、タンパク質を同定する。
6.各細胞サンプルから脂質を単離し、例えばHPLCを用いて、その量および質を比較する。
非貪食細胞からの貪食細胞の分離および発現プロファイルの解析のための代表的方法IV
1.図2および図3を参照して、特定の細胞サブ集団(例えば、好中球、マクロファージ、単球、およびT細胞など)に対して特異的な蛍光抗体でWBCを染色する。
2.(例えば、FACSにより)細胞を選別する。
3.各細胞サンプルからRNAを単離し、cDNA、cRNAを調製し、これらを用いて貪食細胞および非貪食細胞の遺伝子プロファイル(例えば、癌遺伝子アレイ)を区別する。
4.各細胞サンプルからDNAを単離し、DNAアレイ解析を行い、貪食細胞および非貪食細胞で得られたプロファイルを比較する。
5.各細胞サンプルからタンパク質を単離し、ヒト腫瘍で過剰発現される既知のタンパク質(例えば、前立腺癌におけるPSAおよびPSMA、結腸癌におけるCEA、ならびに卵巣癌におけるCA125)に対する抗体を用いてウェスタンブロットを行い、貪食細胞および非貪食細胞で得られたプロファイルを比較する。あるいは、質量分析を用いて、タンパク質を同定する。
6.各細胞サンプルから脂質を単離し、例えばHPLCを用いて、その量および質を比較する。
非貪食細胞からの貪食細胞の分離および発現プロファイルの解析のための代表的方法V
1.図5および図6を参照して、WBCを各細胞サブ集団(例えば、好中球、マクロファージ、単球、およびT細胞)に対する蛍光抗体で染色し、次にDNA染料(例えば、ヨウ化プロピジウム)で染色する。
2.細胞を、T細胞、好中球(2n)、好中球(>2n)、マクロファージ(2n)、マクロファージ(>2n)、単球(2n)、および単球(>2n)へと選別する(FACS)。
3.T細胞、好中球(>2n)、マクロファージ(>2n)、および単球(>2n)からRNAを単離する。次に、cDNA、cRNAを調製し、これらを用いて貪食細胞および非貪食細胞の遺伝子プロファイル(例えば、癌遺伝子アレイ)を区別する。
4.T細胞、好中球(>2n)、マクロファージ(>2n)、および単球(>2n)からDNAを単離する。DNAアレイ解析を行い、貪食細胞および非貪食細胞で得られたプロファイルを比較する。
5.T細胞、好中球(>2n)、マクロファージ(>2n)、および単球(>2n)からタンパク質を単離する。ヒト腫瘍で過剰発現される既知のタンパク質(例えば、前立腺癌におけるPSAおよびPSMA、結腸癌におけるCEA、ならびに卵巣癌におけるCA125)に対する抗体を用いてウェスタンブロットを行い、貪食細胞および非貪食細胞で得られたプロファイルを比較する。あるいは、質量分析を用いて、タンパク質を同定する。
6.T細胞、好中球(>2n)、マクロファージ(>2n)、および単球(>2n)から脂質を単離する。例えばHPLCを用いて、脂質の量および質を比較する。
貪食細胞の分離および発現プロファイルの解析のための代表的方法VI
1.図5および図6を参照して、WBCを1つまたは複数の貪食細胞(例えば、好中球、マクロファージ、または単球)に対して特異的である蛍光抗体で染色し、次にDNA結合染料(例えば、ヨウ化プロピジウム)で染色する。
2.細胞を、2n貪食細胞と>2n貪食細胞に選別する(FACS)。
3.2n貪食細胞および>2n貪食細胞の各々からRNAを単離する。cDNA、cRNAを調製し、これらを用いて2n−貪食細胞および>2n−貪食細胞の遺伝子プロファイル(例えば、癌遺伝子アレイ)を区別する。
4.2n貪食細胞および>2n貪食細胞の各々からDNAを単離する。DNAアレイ解析を行い、2n−貪食細胞および>2n−貪食細胞から得られたプロファイルを比較する。
5.2n貪食細胞および>2n貪食細胞の各々からタンパク質を単離する。ヒト腫瘍で過剰発現される既知のタンパク質(例えば、前立腺癌におけるPSAおよびPSMA、結腸癌におけるCEA、ならびに卵巣癌におけるCA125)に対する抗体を用いてウェスタンブロットを行い、2n−貪食細胞および>2n−貪食細胞から得られたプロファイルを比較する。
6.2n貪食細胞および>2n貪食細胞の各々から脂質を単離する。例えばHPLCを用いて、脂質の量および質を比較する。
腫瘍を有するマウスから得られた貪食細胞における腫瘍特異的遺伝子シグネチャーの検出
本発明の実施形態によると、血液またはその他の体液中の「正常な非特異的ノイズ」シグネチャーと「腫瘍特異的」シグネチャーおよび/または「疾患特異的」シグネチャーとを区別する方法が提供される。腫瘍を有するマウスの血中単球/マクロファージおよび好中球の遺伝子発現プロファイルを、同じドナーマウスの非貪食T細胞の遺伝子発現プロファイルと比較し、同様の腫瘍を有するマウスおよび腫瘍を有しない動物の非貪食細胞中では発現されなかったか、または著しく異なって発現した、該貪食細胞内の腫瘍特異的シグネチャーを同定した。
胸腺欠損ヌードマウス(n=5)に、ヒト前立腺LNCaP癌細胞を皮下(s.c.)注射した。27日後(腫瘍サイズ=約0.4cm)、このマウスから心臓穿刺によりEDTA含有チューブへ採血(約1mL/マウス)を行った後、これを遠心分離した。バフィーコートを単離して洗浄し、好中球、マクロファージ、およびT細胞を、それぞれ、抗マウス好中球−免疫磁気ダイナビーズ(DynaBeads)、抗マウスマクロファージ−免疫磁気ダイナビーズ、および抗マウスT細胞−免疫磁気ダイナビーズを用いて分離した。各細胞サンプルからRNAを単離した(Triazol(登録商標))。RNAの品質は図3に示すようにして測定した。RNAの収量を図20に示す。cDNAおよびビオチン化cRNA(cRNA−B)を調製した。最後に、cRNA−Bサンプルを、癌遺伝子ヒトマイクロアレイ(Oligo GEArray(登録商標)Human Cancer PathwayFinder Microarray、OHS−033、SuperArray Bioscience)とインキュベートした。ハイブリダイゼーションの後、膜を洗浄し、アビジン−アルカリホスファターゼで染色し、化学発光(X線フィルム)を用いて遺伝子を検出した。
ヒトLS174T結腸腺癌腫瘍を皮下注射した胸腺欠損ヌードマウス(n=5)(腫瘍サイズ=約0.3cm)、マウス・ルイス肺癌腫細胞LLC1を皮下注射したC57Blマウス(n=5)(腫瘍サイズ=約0.6cm)、および106個のB16F10マウスメラノーマ細胞を22日前に静脈内注射したC57Blマウス(n=5)から単離された細胞を用いて同様の実験を行った(腫瘍細胞がマウス由来の場合、cRNA−Bサンプルは、Oligo GEArray(登録商標)Mouse Cancer PathwayFinder Microarray、OMM−033、SuperArray Bioscienceとハイブリダイズした)。RNAは、指数関数的に成長するLS174T、LLC1、B16F10、およびLNCaP培養細胞から、ならびに腫瘍を有しないC57Blおよびヌードマウスから単離した好中球、マクロファージ、およびT細胞から単離し、これらの癌関連遺伝子プロファイルを決定した。
ヒトLS174T結腸腺癌腫瘍を皮下注射した胸腺欠損ヌードマウス(n=5)(腫瘍サイズ=約0.3cm)、マウス・ルイス肺癌細胞LLC1を皮下注射したC57/Blマウス(n=5)(腫瘍サイズ=約0.6cm)、および106個のB16F10マウスメラノーマ細胞を22日前に静脈内注射したC57Blマウス(n=5)から単離された細胞を用いて同様の実験を行った(腫瘍細胞がマウス由来の場合、cRNA−Bサンプルを、Oligo GEARRAY(登録商標)Mouse Cancer PathwayFinder Microarray、OMM−033、SuperArray Bioscience、とハイブリダイズした(腫瘍がヒト由来の場合、Oligo GEArray(登録商標)Human Cancer PathwayFinder Microarray、OHS−033、を用いた)。RNAは、指数関数的に成長するLS174T、LLC1、B16F10、およびLNCaP培養細胞から、ならびに腫瘍を有しないC57Blおよびヌードマウスから単離した好中球、マクロファージ、およびT細胞からも単離し、これらの癌関連遺伝子プロファイルを決定した。
癌患者から得られた貪食細胞における腫瘍特異的遺伝子シグネチャーの検出
本発明のある実施形態によると、癌患者からの血中単球/マクロファージおよび好中球の遺伝子発現プロファイルを、同じドナー個人からの非貪食T細胞の遺伝子発現プロファイルと比較し、非貪食細胞中では発現されなかったか、または著しく異なって発現した、該貪食細胞内の腫瘍特異的シグネチャーを同定した。
頸部扁平上皮癌を有することが分かっており、手術を受ける予定である患者から、静脈血10ミリリットルを(EDTA含有チューブへ)採取した。室温、2000rpmにて5分間の遠心分離を行った後、バフィーコートをチューブへ移し、PBSで洗浄した。
卵巣癌を有する患者から単離された細胞を用いて同様の実験を行った。これらの実験から得られたデータによると、(罹患女性から得られた)好中球およびマクロファージは、非貪食T細胞によっては発現されなかったか、またはその発現が最小限であった、多くの癌関連遺伝子を発現した。
ヒト前立腺LNCaP腫瘍およびヒト結腸LS174T腫瘍を有するマウスから得られた貪食細胞における腫瘍特異的タンパク質シグネチャーの検出
タンパク質精製キット(Norgen,Incorporated、製品番号23500)を用いて、マウスWBC、T細胞、およびマクロファージからタンパク質を単離し、精製した。このアッセイは非常に簡便で所要時間が短く(およそ30分間)、単離されたタンパク質は、高品質で優れた収率であり(血液4mLあたり117.6±10.60μg、n=5)、図23に示すSDS−PAGE解析およびウェスタンブロットなど多くの下流用途に用いることができた。
ンである腫瘍特異的糖タンパク質(TAG−72)を提示する(Colcheret al. (1981) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78:3199、Colcher et al. (1984) Cancer Res. 44:5744、Kassis et al. (1996) J. Nucl. Med. 37:343)からである。精製したタンパク質サンプル
16μgを用いてウェスタンブロット解析を行った。基本的には、各サンプルを2容量分のSDSローディングバッファーと混合し、トリス−グリシン−SDSバッファー(pH8.4)中の未染色のプレシジョンplusプロテインスタンダード(precision plus protein standards)(Biorad)と共に、200ボルトにて10%SDS−PAGEで泳動した。ミニトランスブロット(Mini Trans−Blot)(Biorad)装置、ならびに25mMトリス、pH8.4、192mMグリシン、および20%メタノールを含有する転写バッファーを用いて、タンパク質をニトロセルロース膜へ転写した(4℃にて一晩)。膜を5%脱脂粉乳でブロッキングし(室温(RT)にて60分間)、B72.3、ヒトTAG−72に対するマウスモノクローナル抗体、またはヒトPSAに対するマウスモノクローナル抗体ER−PR8のいずれかとインキュベートした(RTにて1時間)。ブロットを洗浄し、次に、マウスIgGに特異的な二次抗体であるImmun−Starヤギ抗マウス−HRPコンジュゲート(Biorad)とインキュベートし、ルミノール溶液と過酸化物バッファー(Biorad)との1:1混合物でインキュベートして(RTにて5分間)発色させ、続いてオートラジオグラフィーを行った。
プロファイリング実験
血中貪食細胞の単離
患者から血液のサンプルを採取する。血液(約5mL)を、50μLの0.5M EDTAを含有する50mLチューブへ移す(最終EDTA濃度=約4.8mM)。チューブを緩やかにボルテックス攪拌し、25mLのRBC溶解バッファー(Norgen,Incorporated)を添加する。チューブを再度緩やかにボルテックス攪拌し、溶液の色が明赤色に変わるまで室温にてインキュベートし(3〜5分間)、2,000rpmにて3分間遠心分離する。上清を注意深く吸引した後、WBCを40mLのCa/Mgフリー0.1M PBS(2% FBS、2mM EDTA、および20mM グルコース含有)で洗浄し、次に、細胞(106/mL)を、(i)DNA、生存細胞透過性染料ヘキスト33342(4μg/mL、Em=483nm)、(ii)循環単球/マクロファージによって発現されるヒトF4/80抗原を認識する抗ヒト単球/マクロファージモノクローナル抗体(Alexa Fluor(登録商標)647−コンジュゲート、Em=668nm)、および(iii)ヒト循環好中球を認識する抗ヒト好中球モノクローナル抗体(RPE−コンジュゲート、Em=578nm)、を含む細胞染色溶液とインキュベートする(30分間、4℃、暗所)。次に、細胞を洗浄し、好中球(Nn=2)、好中球(Nn>2)、単球/マクロファージ(M/Mn=2)、および単球/マクロファージ(M/Mn>2)に選別する(BD FACSAria)。
ヒト全ゲノム遺伝子プロファイリングを実施する。ヒト腫瘍細胞、または好中球(Nn=2、Nn>2)および単球/マクロファージ(M/Mn=2、M/Mn>2)から得られたRNAサンプルに対して、GeneChip(登録商標)ヒトゲノムU133プラス2.0アレイ(Affymetrix,Incorporated)を用いる。このアレイでは、38,500の十分に特徴付けられたヒト遺伝子を含む、47,000を超す転写物およびバリアントの発現レベルが分析される。一般的には、抽出されたRNAを用い、上述のアレイを用いてヒト遺伝子の発現プロファイルを決定する。アレイの再現性を確実にするために、各サンプルを3個の反復サンプルでプロファイル化し、繰り返し実験を1回行う。マイクロアレイデータは、以下で記載するように癌誘発関連遺伝子についてフィルタリングし、定量的リアルタイム逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(RT−PCR)を用いて確認する。
Triazol(Invitrogen,Incorporated)を用いてRNAを単離し、このキットに付属のカートリッジを用いて精製する。RNAの品質および量は、Bioanalyzer 2100(Agilent Technologies,Incorporated、パロアルト、カリフォルニア州)およびDegradometerソフトウェアバージョン1.41(ワールドワイドウェブ:dnaarrays.org)を用いて評価する。これらの実験結果は、腫瘍の存在により乱された分子経路を見分ける際の手助けとなる。
得られた大規模/ハイスループットの分子発現データの解析は、(i)DNA含有量が2超である貪食細胞において特異的に発現された遺伝子を同定する能力、(ii)同定された遺伝子をアノテートする能力、および(iii)アノテートされた遺伝子を特定の腫瘍によって特異的に発現される遺伝子へ割り当てる能力に大きく依存する。マイクロアレイデータの統計解析は、例えば、「サンプル解析/比較」メニュー中のこの種の遺伝子リスト構築に容易に対応するdChipパッケージを用いて行うことができる。Affymetrix GeneChipsを用いる場合、1つまたは複数のGeneChipsおよび関連する方法を適用して、マイクロアレイ生データの質を確認する(Gautier et al.
(2004) Bioinformatics 20:307)。さらに、種々のバックグラウンド補正および標準化
の手順を利用して、(発現値を得るための)プローブセットの標準化および集計のための最適なプロトコルを得る(Huber et al. (2002) Bioinformatics 18 (Suppl. 1):S96、Wu
et al. (2004) Journal of the American Statistical Association 99:909、Seo and Hoffman (2006) BioMedCentral Bioinformatics 7:395)。2段階フィルトレーション(two−step filtration)アプローチにおいて、発明者らは、Pn=2の遺伝子プロファイルをPn>2の遺伝子プロファイルと比較して、発現された遺伝子のリストを構築し、次にこれらの遺伝子と各腫瘍細胞株に対して同定された腫瘍特異的遺伝子とを比較する、すなわち図5に示すPn=2遺伝子プロファイルのポストフィルトレーションである。例えば、(i)乳癌患者から血液を採取し、(ii)好中球(n>2およびn=2)を単離して、その遺伝子プロファイルを3つの反復サンプルで測定し、(iii)各同定された遺伝子の(3つのサンプルの)平均およびその対応する標準誤差(SE)を各グループ(Nn>2およびNn=2)に対して算出し、(iv)次に、この2つのグループの遺伝子発現プロファイルを比較し、ウェルチの改良2標本t検定に準じて、2倍以上の対数の絶対変化(absolute ≧2−fold log change)(Nn>2/Nn=2)に基づいて発現遺伝子のリスト(L−1)を同定し、(v)Nn=2の遺伝子発現プロファイルおよび(腫瘍および正常乳房組織生検から得られる)乳癌の遺伝子発現プロファイルを比較し、発現遺伝子のリスト(L−2)を同定し、(vi)L−1およびL−2の遺伝子を比較し(「サンプル解析/比較/比較の統合」、dChip)、共通の遺伝子をフィルタリングすることにより、Nn>2によって獲得/発現された乳癌特異的遺伝子シグネチャーを同定する。
各細胞型からの総タンパク質50〜100マイクログラムを変性し、トリス−(2−カルボキシエチル)ホスフィントリプシン(1mM)および0.02%ドデシル硫酸ナトリウムにより、60℃にて1時間還元する。続いてシステインをブロックし、総タンパク質をトリプシンにより、37℃にて12〜16時間消化する。得られたペプチドを、1時間、(113〜119および121にタグを有する)iTRAQで標識する(比較すべき細胞型の数に応じて、4種類または8種類)。標識後、別々にタグ付けされたサンプルを1つにまとめ、強カチオン交換カラム(Applied Biosystems 4.6×100 多孔性)を備えたAgilent 1200シリーズHPLCシステムへ注入する。次に、96個の回収した画分を14個の画分へプールし、各画分を、逆相条件下(LC Packings 15cm×75μm 分析用カラム)にてLC Packings Ultimate HPLCシステムへ注入し、2回目の分画を行う。逆相画分を、LC Packings Probotを用いて標的プレート上に直接スポットし、質量分析(Applied Biosystems 4800 Plus Proteomics Analyzer)によって分析する。データの取得後、ProteinPilotソフトウェアパッケージ(Applied Biosystems MDS Sciex)を用いてスペクトルを処理し、ProteinPilot(商標)ソフトウェアを用いて各細胞型における個々のタンパク質をその相対的発現レベルと共に同定する(癌関連プロテオミックシグネチャーの解析および同定は、図5に概略を示したゲノミックシグネチャーに対するものと同様である)。
Claims (50)
- 個人における癌細胞の存在を診断する方法であって、
個人からの血中貪食細胞から第一の発現プロファイルを得る工程と、
前記個人からの血中非貪食細胞から第二の発現プロファイルを得る工程と、
前記第一および第二の発現プロファイルを比較する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な1つまたは複数のマーカーの発現差異を同定する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な1つまたは複数のマーカーの発現差異を前記個人における癌細胞の存在と関連付ける工程と
を含む、方法。 - 前記1つまたは複数のマーカーが、DNA、RNA、タンパク質、脂質、炭水化物、およびこれらの組み合わせからなる群より選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、好中球、マクロファージ、単球、樹状細胞、および泡沫細胞の1つまたは複数からなる群より選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記血中非貪食細胞が、T細胞、B細胞、ヌル細胞、および好塩基球の1つまたは複数からなる群より選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞および前記血中非貪食細胞が、全血、尿、便、唾液、リンパ液、または脳脊髄液から単離される、請求項1に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞および前記血中非貪食細胞が、抗体を用いて単離される、請求項5に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞および前記血中非貪食細胞が、蛍光活性化細胞選別によって分離される、請求項5に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞および前記血中非貪食細胞が、WBC集団の細胞膜上に発現される分子受容体と結合するリガンドを用いて分離される、請求項5に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞および前記血中非貪食細胞が、ろ過、勾配遠心、溶出、マイクロフルイディクスからなる群より選択される1つまたは複数の方法によって分離される、請求項5に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞および前記血中非貪食細胞が、白血球の集団から単離される、請求項1に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞および前記血中非貪食細胞が、抗体を用いて単離される、請求項10に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞および前記血中非貪食細胞が、蛍光活性化細胞選別、ろ過、勾配遠心、溶出、およびマイクロフルイディクスからなる群より選択される1つまたは複数の方法によって分離される、請求項10に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞および前記血中非貪食細胞が、WBC集団の細胞膜上に発現される分子受容体と結合するリガンドを用いて分離される、請求項10に記載の方法。
- 前記個人が、不顕性癌、過去に診断された原発性癌、および転移性癌の1つまたは複数を有する、請求項1に記載の方法。
- 1つまたは複数のマーカーの存在を、癌治療の有効性と関連付ける工程をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 癌遺伝子、発癌遺伝子、および腫瘍抑制遺伝子の1つまたは複数に対応する、DNA、RNA、およびマイクロRNAの1つまたは複数から前記マーカーが選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記マーカーが、癌遺伝子、および発癌遺伝子、および腫瘍抑制遺伝子の1つまたは複数によってコードされるタンパク質およびポリペプチドの一方または両方である、請求項1に記載の方法。
- 癌を有する個人において、腫瘍特異的シグネチャーを同定するための方法であって、
癌を有する個人からの血中貪食細胞から第一の発現プロファイルを得る工程と、
前記癌を有する個人からの血中非貪食細胞から第二の発現プロファイルを得る工程と、
前記第一および第二の発現プロファイルを比較する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な2つ以上のマーカーの発現差異を同定する工程と、
前記特異的な2つ以上のマーカーの発現差異を前記癌を有する個人における腫瘍特異的シグネチャーと関連付ける工程と
を含む、方法。 - 前記2つ以上のマーカーが、DNA、RNA、タンパク質、脂質、炭水化物、およびこれらの組み合わせからなる群より選択される、請求項18に記載の方法。
- 前記2つ以上のマーカーが、2つ以上の癌遺伝子、発癌遺伝子、腫瘍抑制遺伝子、またはこれらの組み合わせに対応するDNAまたはRNAである、請求項18に記載の方法。
- 前記2つ以上のマーカーが、2つ以上の癌遺伝子、発癌遺伝子、腫瘍抑制遺伝子、またはこれらの組み合わせによってコードされるタンパク質またはポリペプチドである、請求項18に記載の方法。
- 個人における癌細胞の存在を診断するための方法であって、
個人からの血中貪食細胞から第一の発現プロファイルを得る工程と、
前記個人からの血中非貪食細胞から第二の発現プロファイルを得る工程と、
前記第一および第二の発現プロファイルを比較する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な循環性腫瘍細胞またはその細胞内断片の存在を同定する工程と、
循環性腫瘍細胞またはその細胞内断片の存在を前記個人における癌細胞の存在と関連付ける工程と
を含む、方法。 - 前記第二の発現プロファイルと比較して前記第一の発現プロファイルにおけるマーカーの量が増加していることが、循環性腫瘍細胞およびその細胞内断片の一方または両方の存在を示す、請求項22に記載の方法。
- 前記マーカーが、DNA、RNA、タンパク質、脂質、炭水化物、およびこれらの組み合わせからなる群より選択される、請求項23に記載の方法。
- 前記マーカーが、癌遺伝子、発癌遺伝子、腫瘍抑制遺伝子、またはこれらの組み合わせに対応するDNA、RNA、マイクロRNA、およびこれらの組み合わせからなる群より選択される、請求項23に記載の方法。
- 前記マーカーが、癌遺伝子、発癌遺伝子、腫瘍抑制遺伝子、またはこれらの組み合わせによってコードされるタンパク質またはポリペプチドである、請求項23に記載の方法。
- 個人における癌細胞の存在を診断するための方法であって、
個人から貪食細胞の集団を単離する工程と、
>2n貪食細胞から2n貪食細胞を分離する工程と、
前記2n貪食細胞から第一の発現プロファイルを得る工程と、
前記>2n貪食細胞から第二の発現プロファイルを得る工程と、
前記第一および第二の発現プロファイルを比較する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な1つまたは複数のマーカーの発現差異を同定する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な1つまたは複数のマーカーの発現差異を前記個人における癌細胞の存在と関連付ける工程と
を含む、方法。 - 前記1つまたは複数のマーカーが、DNA、RNA、タンパク質、脂質、炭水化物、およびこれらの組み合わせからなる群より選択される、請求項27に記載の方法。
- 前記1つまたは複数のマーカーが、2つ以上の癌遺伝子、発癌遺伝子、腫瘍抑制遺伝子、またはこれらの組み合わせに対応するDNA、RNA、マイクロRNA、およびこれらの組み合わせからなる群より選択される、請求項27に記載の方法。
- 前記1つまたは複数のマーカーが、2つ以上の癌遺伝子、発癌遺伝子、腫瘍抑制遺伝子、またはこれらの任意の組み合わせによってコードされるタンパク質またはポリペプチドである、請求項27に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、好中球、マクロファージ、単球、樹状細胞、泡沫細胞、およびこれらの任意の組み合わせからなる群より選択される、請求項27に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、全血、尿、便、唾液、リンパ液、または脳脊髄液から単離される、請求項27に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、抗体を用いて単離される、請求項32に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、蛍光活性化細胞選別、ろ過、勾配遠心、溶出、およびマイクロフルイディクスからなる群より選択される1つまたは複数の方法を用いて分離される、請求項32に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、WBC集団の細胞膜上に発現される分子受容体と結合するリガンドを用いて分離される、請求項32に記載の方法。
- 個人における感染性因子の存在を診断するための方法であって、
個人からの血中貪食細胞から第一の発現プロファイルを得る工程と、
前記個人からの血中非貪食細胞から第二の発現プロファイルを得る工程と、
前記第一および第二の発現プロファイルを比較する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な1つまたは複数のマーカーの発現差異を同定する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な1つまたは複数のマーカーの発現差異を前記個人における感染性因子の存在と関連付ける工程と
を含む、方法。 - 前記1つまたは複数のマーカーが、病原体DNA、病原体RNA、病原体タンパク質、病原体ポリペプチド、病原体脂質、およびこれらの組み合わせからなる群より選択される、請求項36に記載の方法。
- 前記感染性因子が、ウイルス、細菌、真菌、寄生生物、および感染性タンパク質からなる群より選択される、請求項36に記載の方法。
- 感染した個人において感染性因子特異的シグネチャーを同定するための方法であって、
感染した個人からの血中貪食細胞から第一の発現プロファイルを得る工程と、
前記感染した個人からの血中非貪食細胞から第二の発現プロファイルを得る工程と、
前記第一および第二の発現プロファイルを比較する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な2つ以上のマーカーの発現差異を同定する工程と、
前記特異的な2つ以上のマーカーの発現差異を前記感染した個人における感染性因子特異的シグネチャーと関連付ける工程と
を含む、方法。 - 前記2つ以上のマーカーが、病原体DNA、病原体RNA、病原体タンパク質、病原体ポリペプチド、病原体脂質、およびこれらの組み合わせからなる群より選択される、請求項39に記載の方法。
- 前記感染性因子が、ウイルス、細菌、真菌、寄生生物、および感染性タンパク質からなる群より選択される、請求項39に記載の方法。
- 個人における感染性因子の存在を診断するための方法であって、
個人からの血中貪食細胞から第一の発現プロファイルを得る工程と、
前記個人からの血中非貪食細胞から第二の発現プロファイルを得る工程と、
前記第一および第二の発現プロファイルを比較する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な循環性腫瘍細胞またはその細胞内断片の存在を同定する工程と、
循環性腫瘍細胞またはその細胞内断片の存在を前記個人における感染性因子の存在と関連付ける工程と
を含む、方法。 - 個人における感染性因子の存在を診断するための方法であって、
個人から貪食細胞の集団を単離する工程と、
>2n貪食細胞から2n貪食細胞を分離する工程と、
前記2n貪食細胞から第一の発現プロファイルを得る工程と、
前記>2n貪食細胞から第二の発現プロファイルを得る工程と、
前記第一および第二の発現プロファイルを比較する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な1つまたは複数のマーカーの発現差異を同定する工程と、
前記第一の発現プロファイルに特異的な1つまたは複数のマーカーの発現差異を前記個人における感染性因子の存在と関連付ける工程と
を含む、方法。 - 前記1つまたは複数のマーカーが、病原体DNA、病原体RNA、病原体タンパク質、病原体ポリペプチド、病原体脂質、およびこれらの組み合わせからなる群より選択される、請求項43に記載の方法。
- 前記感染性因子が、ウイルス、細菌、真菌、寄生生物、および感染性タンパク質からなる群より選択される、請求項43に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、好中球、マクロファージ、単球、樹状細胞、泡沫細胞、およびこれらの任意の組み合わせからなる群より選択される、請求項43に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、全血、尿、便、唾液、リンパ液、または脳脊髄液から単離される、請求項43に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、抗体を用いて単離される、請求項47に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、蛍光活性化細胞選別、ろ過、勾配遠心、溶出、およびマイクロフルイディクスからなる群より選択される1つまたは複数の方法を用いて分離される、請求項47に記載の方法。
- 前記血中貪食細胞が、WBC集団の細胞膜上に発現される分子受容体と結合するリガンドを用いて分離される、請求項47に記載の方法。
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