JP2017509342A - 癌免疫治療のためのcd123特異的キメラ抗原受容体 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、選択された膜抗原へ免疫細胞の特異性および反応性を向け直すことができる組換えキメラタンパク質であるキメラ抗原受容体(CAR)、より具体的には、細胞外リガンド結合が、CD123陽性細胞に対する特異的な免疫を付与するCD123モノクローナル抗体に由来するscFVであるCARに関する。インターロイキン3受容体α鎖(CD123)は、正常造血幹細胞と比較して、白血病腫瘍細胞に、特に、急性骨髄白血病(AML)の症例において、高頻度に過剰発現していることが同定されている。本発明によるCARが付与された操作された免疫細胞は、リンパ腫および白血病の処置に関してより高い有効性を示す。
エクスビボで生成された自己の抗原特異的T細胞の移入を含む養子免疫治療は、ウイルス感染および癌を処置するための有望な戦略である。養子免疫治療のために使用されるT細胞は、抗原特異的T細胞の増大または遺伝子操作を通したT細胞の向け直しのいずれかによって生成され得る(Park, Rosenberg et al. 2011)。ウイルス抗原特異的T細胞の移入は、移植に関連したウイルス感染および稀なウイルス関連悪性疾患の処置のために使用されている、よく確立された手法である。同様に、腫瘍特異的T細胞の単離および移入は、黒色腫の処置において成功が示されている。
本明細書において特に定義されない限り、使用される技術用語および科学用語は、全て、遺伝子治療、生化学、遺伝学、および分子生物学の領域の当業者によって一般的に理解されるのと同一の意味を有する。
を含むモノクローナル抗CD123抗体由来の細胞外リガンド結合ドメインVHおよびVLを含み、かつヒンジ、膜貫通ドメイン、ならびにCD3ζシグナリングドメインおよび4-1BB由来の共刺激ドメインを含む細胞質ドメインを含む。
を含み、ここでXはアミノ酸であり、アミノ酸は、アミノ酸のいずれか、例えば、アラニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リジン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、トレオニン、トリプトファン、チロシン、バリン、アスパラギン酸、グルタミン酸であり得る。
、またはそれらの組み合わせのうちの少なくとも一つを含む、前記のCD123特異的キメラ抗原受容体(CAR)を開示する。
、またはそれらの組み合わせのうちの少なくとも一つを含む、前記のCD123特異的キメラ抗原受容体(CAR)を開示する。
のうちの少なくとも一つ、および以下の配列:
のうちの少なくとも一つを含む、前記のCD123特異的キメラ抗原受容体(CAR)を開示する。
(a)免疫細胞を準備する工程、
(b)請求項1〜10のいずれか一項記載の少なくとも1種のCD123特異的キメラ抗原受容体を該細胞の表面に発現させる工程
を含む、免疫細胞を操作する方法を開示する。
(a)免疫細胞を準備する工程、
(b)CD123特異的キメラ抗原受容体をコードする少なくとも1種のポリヌクレオチドを該細胞へ導入する工程、
(c)該細胞においてポリヌクレオチドを発現させる工程
を含む、前記の免疫細胞を操作する方法を開示する。
(a)免疫細胞を準備する工程、
(b)CD123特異的キメラ抗原受容体をコードする少なくとも1種のポリヌクレオチドを該細胞へ導入する工程、
(c)CD123に特異的でない少なくとも1種の他のキメラ抗原受容体を導入する工程
を含む、前記の免疫細胞を操作する方法を開示する。
(a)請求項1〜10のいずれか一項記載のCD123特異的キメラ抗原受容体を表面に発現している免疫細胞を準備する工程、
(b)免疫細胞を患者へ投与する工程
を含む、その必要のある対象を処置する方法を開示する。
本発明は、細胞外リガンド結合ドメイン、膜貫通ドメイン、およびシグナリング伝達ドメインを含む、抗CD123キメラ抗原受容体(CAR)の新しい設計に関する。
本発明は、上記の本発明によるCARをコードするポリヌクレオチド、ベクターにも関する。
本発明による細胞とは、自然免疫応答および/または適応免疫応答の開始および/または実行に機能的に関与する造血系起源の細胞をさす。本発明による細胞は、好ましくは、ドナーから入手されたT細胞である。本発明によるT細胞は、幹細胞に由来し得る。幹細胞は、成体幹細胞、胚性幹細胞、より具体的には、非ヒト幹細胞、臍帯血幹細胞、前駆細胞、骨髄幹細胞、全能性幹細胞、または造血幹細胞であり得る。好ましい態様において、細胞は、ヒト細胞、具体的には、ヒト幹細胞である。
本発明は、参照によって本明細書に組み入れられるWO2014/130635、WO2013176916、WO2013176915に以前に記載されたCD123 CARをコードするポリヌクレオチドまたはベクターを免疫細胞へエクスビボで導入する工程を含む、免疫治療のための免疫細胞を調製する方法を包含する。
第1の局面によると、免疫細胞は、例えば、HLAまたはβ2mのタンパク質発現をコードするかまたは制御する遺伝子の不活性化と組み合わせられてもよい、WO 2013/176915に記載されたようなT細胞受容体(TCR)の1個以上の成分を発現する少なくとも1種の遺伝子を不活性化することによって、比較的非同種にされ得る。従って、移植片対宿主症候群および移植片拒絶のリスクは有意に低下する。
本発明は、T細胞受容体(TCR)の1個以上の成分を発現する少なくとも1種の遺伝子が不活性化されており、かつ/または遺伝子CTLA4、PPP2CA、PPP2CB、PTPN6、PTPN22、PDCD1、LAG3、HAVCR2、BTLA、CD160、TIGIT、CD96、CRTAM、LAIR1、SIGLEC7、SIGLEC9、CD244、TNFRSF10B、TNFRSF10A、CASP8、CASP10、CASP3、CASP6、CASP7、FADD、FAS、TGFBRII、TGFBRI、SMAD2、SMAD3、SMAD4、SMAD10、SKI、SKIL、TGIF1、IL10RA、IL10RB、HMOX2、IL6R、IL6ST、CSK、PAG1、SIT1、FOXP3、PRDM1(またはblimp1)、BATF、GUCY1A2、GUCY1A3、GUCY1B2、GUCY1B3より選択される1種の遺伝子がWO2014/184741において言及されるように不活性化されている、抗CD123 CAR、具体的には、SEQ ID N°44またはSEQ ID N°1+SEQ ID N°44の抗CD123 CARを発現する同種T細胞を提供する。
別の局面によると、本発明の抗CD123 CAR発現T細胞は、CD123陽性悪性細胞を処置するための標準治療として使用される免疫抑制薬または化学療法処置に対する耐性を改善するため、さらに遺伝子操作され得る。
・抗CD123 CAR発現T細胞;具体的には、SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:44、SEQ ID NO:46の抗CD123 CAR、好ましくは、SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:44、SEQ ID NO:46のヒト化123 CARを発現するT細胞を準備する工程、
・T細胞受容体(TCR)成分をコードする少なくとも1種の遺伝子を不活性化することによって、抗CD123 CAR発現T細胞を修飾する工程、
・抗CD123 CAR発現T細胞へ薬剤耐性を付与するために抗CD123 CAR発現T細胞を修飾する工程、
・操作された抗CD123 CAR発現T細胞を薬物の存在下で増大させる工程。
・抗CD123 CAR発現T細胞;具体的には、SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:44、SEQ ID NO:46の抗CD123 CAR、好ましくは、SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:44、SEQ ID NO:46のヒト化123 CARを発現するT細胞を準備する工程、
・抗CD123 CAR発現T細胞へ薬剤耐性を付与するために抗CD123 CAR発現T細胞を修飾する工程、
・T細胞受容体(TCR)成分をコードする少なくとも1種の遺伝子を不活性化することによって、抗CD123 CAR発現T細胞を修飾する工程、
・操作された抗CD123 CAR発現T細胞を薬物の存在下で増大させる工程。
・抗CD123 CAR発現T細胞;具体的には、SEQ ID NO:75、SEQ ID NO:76、SEQ ID NO:77の抗CD123 CAR、好ましくは、SEQ ID NO:75、SEQ ID NO:76、SEQ ID NO:77のヒト化123 CAR、より好ましくは、SEQ ID NO:75のヒト化123 CARを発現するT細胞を準備する工程、
・T細胞受容体(TCR)成分をコードする少なくとも1種の遺伝子を不活性化することによって、抗CD123 CAR発現T細胞を修飾する工程、
・抗CD123 CAR発現T細胞へ薬剤耐性を付与するために抗CD123 CAR発現T細胞を修飾する工程、
・操作された抗CD123 CAR発現T細胞を薬物の存在下で増大させる工程。
・抗CD123 CAR発現T細胞;具体的には、SEQ ID NO:75、SEQ ID NO:76、SEQ ID NO:77の抗CD123 CAR、好ましくは、SEQ ID NO:75、SEQ ID NO:76、SEQ ID NO:77のヒト化123 CAR、より好ましくは、SEQ ID NO:75のヒト化123 CARを発現するT細胞を準備する工程、
・抗CD123 CAR発現T細胞へ薬剤耐性を付与するために抗CD123 CAR発現T細胞を修飾する工程、
・T細胞受容体(TCR)成分をコードする少なくとも1種の遺伝子を不活性化することによって、抗CD123 CAR発現T細胞を修飾する工程、
・操作された抗CD123 CAR発現T細胞を薬物の存在下で増大させる工程。
具体的な態様において、少なくとも1種の薬剤耐性遺伝子の発現によって、薬剤耐性をT細胞に付与することができる。薬剤耐性遺伝子とは、化学療法剤(例えば、メトトレキサート)のような薬剤に対する「耐性」をコードする核酸配列をさす。換言すると、細胞における薬剤耐性遺伝子の発現は、薬剤耐性遺伝子なしの対応する細胞の増殖より大きな程度に薬剤の存在下で細胞の増殖を可能にする。細胞における薬剤耐性遺伝子の発現は、薬剤の存在下での細胞の増殖を可能にし、その活性には影響を与えない。本発明の薬剤耐性遺伝子は、代謝拮抗薬、メトトレキサート、ビンブラスチン、シスプラチン、アルキル化剤、アントラサイクリン、細胞傷害性抗生物質、抗イムノフィリン、それらの類似体または誘導体等に対する耐性をコードしていてよい。
別の具体的な態様において、薬剤感作遺伝子の不活性化によって、本発明の細胞(抗CD123 CAR発現免疫細胞)へ薬剤耐性を付与することができる。
別の具体的な態様において、本発明者らは、患者が異なる薬物によって処置された時の操作されたT細胞の選択を媒介するため、複数の薬物に対して耐性の同種T細胞、具体的には、同種抗CD123 CAR発現T細胞を使用して、「既製の」免疫治療戦略を開発しようと努力した。治療効率は、多剤耐性同種T細胞を遺伝子操作することによって有意に増強され得る。そのような戦略は、相乗効果を示す薬物組み合わせに応答する腫瘍の処置において特に有効であり得る。さらに、操作された多剤耐性T細胞は、増大することができ、最小限の用量の薬剤を使用して選択され得る。
いくつかの場合において、操作されたT細胞は投与後数年にわたり増大し存続することができるため、投与されたT細胞の選択的除去を可能にする安全機序を含むことが望ましい可能性がある。従って、いくつかの態様において、本発明の方法は、組換え自殺遺伝子によるT細胞の形質転換を含み得る。組換え自殺遺伝子は、対象へ投与された後、T細胞の直接毒性および/または調節されない増殖のリスクを低下させるため、使用される(Quintarelli C,Vera F,blood 2007;Tey SK,Dotti G.,Rooney CM,boil blood marrow transplant 2007)。自殺遺伝子は、インビボで形質転換細胞の選択的除去を可能にする。具体的には、自殺遺伝子は、無毒のプロドラッグを細胞傷害性薬物へ変換するかまたは毒性遺伝子発現産物を発現する能力を有する。換言すると、「自殺遺伝子」とは、単独でまたは他の化合物の存在下で細胞死を引き起こす産物をコードする核酸である。
本発明は、クロファラビンのような薬物に対して耐性である、治療的に使用するためのT細胞の製造を包含する。それらは、以前に説明されたようなdCK遺伝子の不活性化によって入手され得る。好ましい態様によると、T細胞は、以前に記載されたように、dCK遺伝子およびTCR遺伝子の不活性化を組み合わせることによって、化学療法に対して耐性となり、比較的非同種になる。
本発明は、CAR T細胞に特異的な表面受容体および耐性遺伝子の両方を発現する標的細胞を製造する方法も包含する。これらの標的細胞は、具体的には、CAR T細胞の細胞傷害性の試験のために有用である。これらの細胞は、臨床的に関連する用量のクロファラビンに対して容易に耐性であり、ルシフェラーゼ活性を保有している。この特色の組み合わせは、マウスモデルにおけるインビボの追跡を可能にするか、または必要とされた時にそれらを破壊する。
本発明は、CD123に結合するCARを発現する単離された細胞に関する。従って、本発明は、抗CD123 CAR発現細胞に関する。具体的な態様において、抗CD123 CAR発現細胞は、少なくとも1種の薬物に対して耐性であり、かつ/またはT細胞受容体成分をコードする少なくとも1種の妨害された遺伝子を含む。
具体的には、本発明は、同種T細胞、具体的には、同種抗CD123 CAR発現T細胞、好ましくは、Klon 43由来のscfvとの80%〜100%の同一性を有するペプチドを含む同種抗CD123 CAR発現T細胞に関し、Klon 43由来のscfvとの80%〜100%の同一性を有するペプチドを含む同種抗CD123 CAR発現T細胞は、より具体的には、薬物に対して耐性であり、免疫治療のために特に適当である。
前記の異なる方法は、薬剤耐性遺伝子、レアカットエンドヌクレアーゼ、キメラ抗原受容体(CAR)、具体的には、抗CD123 CAR、より具体的には、SEQ ID NO:1+SEQ ID NO:44を含むCAR、および自殺遺伝子のような関心対象のタンパク質を細胞において発現させる工程を含む。
本発明は、細胞を操作する方法によって入手可能な単離された細胞または細胞株にも関する。具体的には、単離された細胞は、少なくとも1種の上記のCARを含む。別の態様において、単離された細胞は、各々異なる細胞外リガンド結合ドメインを含むCARの集団を含む。具体的には、単離された細胞は、CARをコードする外因性のポリヌクレオチド配列を含む。本発明の遺伝子改変免疫細胞は、活性化されており、抗原結合機序と無関係に増殖する。
本発明の遺伝子改変免疫細胞は、活性化されており、抗原結合機序と無関係に増殖するが、本発明の免疫細胞、具体的には、T細胞は、T細胞の遺伝子改変の前であっても後であっても、例えば、米国特許第6,352,694号;第6,534,055号;第6,905,680号;第6,692,964号;第5,858,358号;第6,887,466号;第6,905,681号;第7,144,575号;第7,067,318号;第7,172,869号;第7,232,566号;第7,175,843号;第5,883,223号;第6,905,874号;第6,797,514号;第6,867,041号;および米国特許出願公開第20060121005号に記載されるような方法を一般に使用して、さらに活性化させ増大させることができる。T細胞は、インビトロまたはインビボで増大させることができる。
別の態様において、既に記載されたような異なる方法によって入手された単離された細胞または単離された細胞に由来する細胞株は、医薬として使用され得る。
(a)既に記載された方法のいずれかによって入手可能な免疫細胞を準備する工程、
(b)形質転換された免疫細胞を患者へ投与する工程。
好ましい態様において、本発明は、60歳を超える患者または20歳未満の患者におけるAMLの処置を提供する。より好ましい態様において、本発明は、小児処置、特に、AMLまたはAMLに関連する疾患もしくは合併症に対する小児処置を提供する。
一つの具体的な態様において、本発明は、患者、具体的には、AMLに関係する合併症を起こしている患者の健康状態を改善する医薬を提供する。より好ましくは、本発明の操作された抗CD123 CAR発現T細胞は、SEQ ID NO:1+SEQ ID NO:44の少なくとも1種の抗CD123 CARを発現しており、AMLに関係する合併症の処置のための医薬として使用される。
一つの態様において、本発明は、AMLに関係する病理学的状態の処置のための抗CD123 CAR発現T細胞も提供する。好ましくは、本発明は、AMLに関係する病理学的状態の処置のためのSEQ ID NO:1+SEQ ID NO:44の少なくとも1種の抗CD123 CARを発現する細胞を提供する。本発明は、AML関連骨髄新生物、急性骨髄白血病、および骨髄異形成症候群の治療、再発したまたは難治性の急性骨髄白血病の処置、成人における再発したまたは難治性の急性前骨髄球性白血病の処置、急性前骨髄(promyeloid)白血病の処置、60歳を超える成人における急性骨髄白血病の処置を提供する。
別の局面によると、本発明は、CD123+細胞によって媒介される疾患の処置のための組成物を提供する。これらのCD123+細胞によって媒介される疾患には、炎症、自己免疫疾患が含まれる。
本発明は、疾患を処置するために使用するための組成物、またはその方法も提供する。一つの局面において、疾患は、血液癌、具体的には、幹細胞癌であり、(急性骨髄性白血病(AML)、慢性骨髄性白血病、急性リンパ性白血病、慢性リンパ性白血病、および骨髄異形成症候群のような)白血病、ならびに(多発性骨髄腫、非ホジキンリンパ腫、バーキットリンパ腫、ならびに小細胞型および大細胞型の濾胞性リンパ腫のような)リンパ腫を含む悪性リンパ増殖性状態、またはそれらの合併症を含むが、これらに限定されない。
他に特記されない限り、「a」、「an」、「the」、および「少なくとも1」は、交換可能に使用され、1または複数を意味する。ポリペプチド配列内のアミノ酸残基は、1文字コードによって本明細書において表記され、例えば、QはGln、すなわちグルタミン残基を意味し、RはArg、すなわちアルギニン残基を意味し、DはAsp、すなわちアスパラギン酸残基を意味する。
初代T細胞培養物
フィコール勾配密度媒体を使用して、EFS(Etablissement Francais du Sang,Paris,France)によって提供されたバフィーコート試料から、T細胞を精製した。PBMC層を回収し、T細胞を市販されているT細胞濃縮キットを使用して精製した。精製されたT細胞を、20ng/mLヒトIL-2、5%ヒト、およびビーズ:細胞比1:1のDynabeads Human T activator CD3/CD28(Life Technologies)が補足されたX-Vivo(商標)-15培地(Lonza)において活性化した。
T細胞の精製および活性化の後、4日目または11日目に、トランスフェクションを行った。5百万個の細胞を、異なるCAR構築物をコードする15μgのmRNAによってトランスフェクトした。最終体積200μlの「Cytoporation buffer T」(BTX Harvard Apparatus)において、0.4cmギャップキュベットにおいて、3000V/cmで0.1mSパルスを2回適用した後、325V/cmで0.2mSパルスを4回適用することによって、Cytopulseテクノロジーを使用して行われたT7 mRNAポリメラーゼトランスフェクションを使用して、CAR mRNAを作製した。細胞をX-Vivo(商標)-15培地で直ちに希釈し、5%CO2と共に37℃でインキュベートした。IL-2を、20ng/mLで、電気穿孔の2時間後に添加した。
96穴プレートにおいて、様々なレベルのCD123タンパク質を発現する等量の細胞と共に、T細胞をインキュベートした(40,000細胞/ウェル)。共培養を、5%CO2で37℃で6時間、100μlの最終体積のX-Vivo(商標)-15培地(Lonza)において維持した。共培養の開始時に、1μg/mlの抗CD49d、1μg/mlの抗CD28、および1×モネンシン溶液と共に蛍光性抗CD107a抗体を添加することによって、細胞刺激中にCD107a染色を行った。6時間のインキュベーション期間の後、細胞を、固定可能な生死細胞判定色素および蛍光色素結合型抗CD8によって染色し、フローサイトメトリーによって分析した。CD8+/CD107a+細胞の%として、そしてCD8+細胞におけるCD107a染色についての平均蛍光強度シグナル(MFI)を決定することによって、脱顆粒活性を決定した。脱顆粒アッセイは、mRNAトランスフェクションの24時間後に実施された。
96穴プレートにおいて、様々なレベルのCD123タンパク質を発現する細胞株と共に、T細胞をインキュベートした(40,000細胞/ウェル)。共培養を、5%CO2で37℃で24時間、100μlの最終体積のX-Vivo(商標)-15培地(Lonza)において維持した。このインキュベーション期間の後、プレートを5分間1500rpmで遠心分離し、上清を新しいプレートに回収した。細胞培養上清中のIFNγ検出をELISAアッセイによって行った。IFNγ放出アッセイは、mRNAトランスフェクションの24時間後に細胞共培養を始めることによって実施された。
96穴プレートにおいて、同一のウェルにおいて、10,000個の標的細胞(CD123発現)および10,000個の対照細胞(CD123陰性)と共に、T細胞をインキュベートした(100,000細胞/ウェル)。標的細胞および対照細胞は、CAR+T細胞との共培養の前に、蛍光性の細胞内色素(CFSEまたはCell Trace Violet)によって標識された。共培養物を5%CO2で37℃で4時間インキュベートした。このインキュベーション期間の後、細胞を固定可能な生死細胞判定色素によって標識し、フローサイトメトリーによって分析した。各細胞集団(標的細胞またはCD123陰性対照細胞)の生存率を決定し、特異的細胞溶解の%を計算した。細胞傷害アッセイは、mRNAトランスフェクションの48時間後に実施された。
CARの発現のための組換えレンチウイルスベクターによるT細胞の形質導入を、T細胞精製/活性化の3日後に実施した。T細胞の表面のCAR検出を、ヒトCD123タンパク質の細胞外ドメインのマウスIgG1 Fc断片との融合からなる組換えタンパク質を使用して行った。このタンパク質のCAR分子との結合を、タンパク質のマウスFc部分を標的とする蛍光色素結合型二次抗体によって検出し、フローサイトメトリーによって分析した。
AML異種移植片マウスモデルとして、免疫不全NOGマウスに、CD123発現MOLM13-ルシフェラーゼ細胞を静脈内(iv)注射した。任意で、マウスは抗癌処置を受容した。次いで、異なる用量の試験されるCAR+T細胞、またはCARレンチウイルスベクターによって形質導入されていないT細胞を、(腫瘍細胞株の注射の2日後または7日後のいずれかに)マウスにiv注射した。異なる動物における腫瘍進行を追跡するため、T細胞注射の当日(D0)、T細胞注射後7日目、14日目、21日目、28日目、および40日目に生物発光シグナルを決定した。
T細胞受容体α定常鎖領域(TRAC)遺伝子内の15bpスペーサーによって分離された2個の17bp長配列(半標的と呼ばれる)を標的とする異種二量体TALEヌクレアーゼを設計し作製した。各半標的は、表10にリストされた半TALEヌクレアーゼのリピートによって認識される。
様々な抗CD123抗体断片を使用したCD123 CARの構築
初代T細胞培養物
フィコール勾配密度媒体(Ficoll Paque PLUS/GE Healthcare Life Sciences)を使用して、EFS(Etablissement Francais du Sang,Paris,France)によって提供されたバフィーコート試料から、T細胞を精製した。PBMC層を回収し、市販されているT細胞濃縮キット(Stem Cell Technologies)を使用して、T細胞を精製した。20ng/mLヒトIL-2(Miltenyi Biotec)、5%ヒト血清(Sera Laboratories)、およびビーズ:細胞比1:1のDynabeads Human T activator CD3/CD28(Life Technologies)が補足されたX-Vivo(商標)-15培地(Lonza)において、精製されたT細胞を活性化した。活性化後、20ng/mLヒトIL-2(Miltenyi Biotec)および5%ヒト血清(Sera Laboratories)が補足されたX-Vivo(商標)-15培地(Lonza)において、細胞を増殖させ維持した。
T細胞の精製および活性化の後、4日目または11日目に、トランスフェクションを行った。5百万個の細胞を、異なるCAR構築物をコードする15μgのmRNAによってトランスフェクトした。mMESSAGE mMACHINE T7キット(Life Technologies)を使用してCAR mRNAを作製し、Rneasy Mini Spin Columns(Qiagen)を使用して精製した。最終体積200μlの「Cytoporation buffer T」(BTX Harvard Apparatus)において、0.4cmギャップキュベットにおいて、3000V/cmで0.1mSパルスを2回適用した後、325V/cmで0.2mSパルスを4回適用することによって、Cytopulseテクノロジーを使用してトランスフェクションを行った。細胞をX-Vivo(商標)-15培地(Lonza)で直ちに希釈し、5%CO2と共に37℃でインキュベートした。電気穿孔の2時間後に、20ng/mLのIL-2(Miltenyi Biotec)を添加した。
96穴プレートにおいて、等量のCD123タンパク質を発現する細胞または発現しない細胞と共に、T細胞をインキュベートした(40,000細胞/ウェル)。共培養を、5%CO2で37℃で6時間、100μlの最終体積のX-Vivo(商標)-15培地(Lonza)において維持した。共培養の開始時に、1μg/mlの抗CD49d(BD Pharmingen)、1μg/mlの抗CD28(Miltenyi Biotec)、および1×モネンシン溶液(eBioscience)と共に蛍光性抗CD107a抗体(APC結合型、Miltenyi Biotec)を添加することによって、細胞刺激中にCD107a染色を行った。6時間のインキュベーション期間の後、細胞を、固定可能な生死細胞判定色素(eFluor 780、eBioscience)および蛍光色素結合型抗CD8(PE結合型、Miltenyi Biotec)によって染色し、フローサイトメトリーによって分析した。CD8+/CD107a+細胞の%として、そしてCD8+細胞におけるCD107a染色についての平均蛍光強度シグナル(MFI)を決定することによって、脱顆粒活性を決定した。脱顆粒アッセイは、mRNAトランスフェクションの24時間後に実施された。
96穴プレートにおいて、CD123タンパク質を発現する細胞株または発現しない細胞株と共に、T細胞をインキュベートした(40,000細胞/ウェル)。共培養を、5%CO2で37℃で24時間、100μlの最終体積のX-Vivo(商標)-15培地(Lonza)において維持した。このインキュベーション期間の後、プレートを5分間1500rpmで遠心分離し、上清を新しいプレートに回収した。細胞培養上清中のIFNγ検出をELISAアッセイ(Human IFN-gamma Quantikine ELISA Kit、R&D Systems)によって行った。IFNγ放出アッセイは、mRNAトランスフェクションの24時間後に細胞共培養を始めることによって実施された。
96穴プレートにおいて、同一のウェルにおいて、10,000個の標的細胞(CD123発現)および10,000個の対照細胞(CD123陰性)と共に、T細胞をインキュベートした(100,000細胞/ウェル)。標的細胞および対照細胞は、CAR+T細胞との共培養の前に蛍光性の細胞内色素(CFSEまたはCell Trace Violet、Life Technologies)によって標識された。共培養物を5%CO2で37℃で4時間インキュベートした。このインキュベーション期間の後、細胞を固定可能な生死細胞判定色素(eFluor 780、eBioscience)によって標識し、フローサイトメトリーによって分析した。各細胞集団(標的細胞またはCD123陰性対照細胞)の生存率を決定し、特異的細胞溶解の%を計算した。細胞傷害アッセイは、mRNAトランスフェクションの48時間後に実施された。
キメラ抗原受容体(CAR)を生成し、CD123+細胞に対する脱顆粒活性についてスクリーニングするため、7G3、32716、Klon 43、12F1、26292、およびOld4に由来する6種の異なるscFvを使用した。
このため、バフィーコート試料からT細胞を単離し、CD3/CD28ビーズを使用して活性化した。細胞を、活性化の後、11日目に、異なる候補をコードするmRNAによって一過性トランスフェクトした。CD123を発現する細胞または発現しない細胞と共培養された時の脱顆粒能力、IFNγ放出、および細胞傷害活性を測定することによって、CAR活性を査定した。
T細胞の精製/活性化の3日後に、CARの発現のための組換えレンチウイルスベクターによるT細胞の形質導入を実施した。レンチウイルスベクターは、HEK-293細胞におけるゲノムプラスミドおよびヘルパープラスミドのトランスフェクションによって、Vectalys SA(Toulouse,France)によって作製された。形質導入は、形質導入1回当たり106個の細胞を使用して、5の感染多重度で実施された。T細胞の表面のCAR検出は、(LakePharmaによって作製された)ヒトCD123タンパク質の細胞外ドメインのマウスIgG1 Fc断片との融合からなる組換えタンパク質を使用して行われた。このタンパク質のCAR分子との結合を、タンパク質のマウスFc部分を標的とするPE結合型二次抗体(Jackson Immunoresearch)によって検出し、フローサイトメトリーによって分析した。
AML異種移植片マウスモデルとして、免疫不全雌NOGマウスに、MOLM13-ルシフェラーゼ細胞を静脈内(iv)注射した。6〜8週齢のNOG(NOD.Cg-PrkdcscidII2rgtm1Sug/JicTac)マウスをTaconic(Ry,Danemark)から入手した。MOLM13-Luc細胞株を確立するため、MOLM13細胞(DSMZ ACC 554)を、GFPおよびホタルルシフェラーゼをコードするレンチウイルス(amsbio LVP438-PBS)によって形質導入した。GFP陽性細胞を、ネオマイシン(ref 10131-027、Gibco,Life Technologies,Saint-Aubin,France)によって選択した。参考までに、MOLM13細胞株は、初期骨髄異形成症候群(MDS、芽球増加を伴う不応性貧血、RAEB)の後に1995年に再発した急性骨髄白血病AML FAB M5aを有する20歳男性の末梢血から確立された。
図15は、Klon43-v3 CAR発現T細胞のインビボ活性を示す。
Claims (35)
- 図2に図示されるV1、V3、およびV5より選択されるポリペプチド構造のうちの一つを有する、CD123特異的キメラ抗原受容体(123 CAR)であって、
該構造が、モノクローナル抗CD123抗体由来のVHおよびVLを含む細胞外リガンド結合ドメイン、ヒンジ、膜貫通ドメイン、CD3ζシグナリングドメインおよび4-1BB由来の共刺激ドメインを含む細胞質ドメインを含み、
該123 CARが、SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:44、またはSEQ ID NO:46のいずれかと少なくとも80%の配列同一性を有する、
CD123特異的キメラ抗原受容体(123 CAR)。 - 図2に図示されるポリペプチド構造V3を有し、SEQ ID NO:44と少なくとも80%の配列同一性を有する、請求項1記載のCD123特異的キメラ抗原受容体(123 CAR)。
- 細胞外リガンド結合ドメインVHおよびVLがヒト化されている、請求項1〜3のいずれか一項記載のCD123特異的キメラ抗原受容体(123 CAR)。
- 構造V3がCD8αヒンジおよび膜貫通ドメインを含む、請求項1〜6のいずれか一項記載のCD123特異的CAR。
- VHおよびVLが、SEQ ID NO:19および20より選択されるポリペプチド配列と少なくとも80%の同一性を有する、請求項1〜7のいずれか一項記載のCD123特異的CAR。
- CD123に特異的でない別の細胞外リガンド結合ドメインをさらに含む、請求項1〜8のいずれか一項記載のCD123特異的CAR。
- シグナルペプチド、好ましくは、SEQ ID NO:1またはSEQ ID NO:2のシグナルペプチドをさらに含む、請求項1〜8のいずれか一項記載のCD123特異的CAR。
- 請求項1〜10のいずれか一項記載のCD123特異的キメラ抗原受容体をコードする、ポリヌクレオチド。
- 請求項11記載のポリヌクレオチドを含む、発現ベクター。
- 請求項1〜10のいずれか一項記載のCD123特異的キメラ抗原受容体を細胞表面膜に発現している、操作された免疫細胞。
- Tリンパ球に由来し、任意で抗癌薬に対して耐性であり、かつαTCRまたはβTCRをコードする遺伝子の欠失を保持している、請求項13記載の操作された免疫細胞。
- 前記操作された免疫細胞においてTCRの発現が抑制されている、請求項13または14のいずれか一項記載の操作された免疫細胞。
- 前記免疫細胞において少なくとも1種のMHCタンパク質、好ましくはβ2mまたはHLAの発現が抑制されている、請求項13〜15のいずれか一項記載の操作された細胞。
- 少なくとも1種の免疫抑制薬、化学療法薬、または抗癌薬に対する耐性を付与するために変異させた、請求項13〜16のいずれか一項記載の操作された細胞。
- 治療において使用するための、請求項13〜17のいずれか一項記載の操作された細胞。
- 患者がヒトである、請求項18記載の治療において使用するための操作された細胞。
- 状態がCD123発現細胞を特徴とする前悪性または悪性の癌状態である、請求項18または19記載の治療において使用するための操作された細胞。
- 状態が、過剰量のCD123発現細胞を特徴とする状態である、請求項18〜20のいずれか一項記載の治療において使用するための操作された細胞。
- 悪性癌状態が血液癌状態である、請求項20〜21のいずれか一項記載の治療において使用するための操作された細胞。
- 血液癌状態が白血病または悪性リンパ増殖性障害である、請求項22記載の治療において使用するための操作された細胞。
- 白血病が、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病、骨髄異形成症候群、急性リンパ性白血病、慢性リンパ性白血病、および骨髄異形成症候群からなる群より選択される、請求項23記載の治療において使用するための操作された細胞。
- 白血病が急性骨髄性白血病(AML)である、請求項23または24記載の治療において使用するための操作された細胞。
- 血液癌が悪性リンパ増殖性障害である、請求項23記載の治療において使用するための操作された細胞。
- 悪性リンパ増殖性障害がリンパ腫である、請求項26記載の治療において使用するための操作された細胞。
- リンパ腫が、多発性骨髄腫、非ホジキンリンパ腫、バーキットリンパ腫、ならびに濾胞性リンパ腫(小細胞型および大細胞型)からなる群より選択される、請求項27記載の操作された細胞。
- 癌細胞の傷害を引き起こすために有効な量の請求項13〜17のいずれか一項記載の操作された細胞と血液癌細胞を接触させる工程を含む、血液癌細胞に傷害を与える方法。
- (a)免疫細胞を準備する工程、
(b)請求項1〜10のいずれか一項記載の少なくとも1種のCD123特異的キメラ抗原受容体を該細胞の表面に発現させる工程
を含む、免疫細胞を操作する方法。 - (a)免疫細胞を準備する工程、
(b)CD123特異的キメラ抗原受容体をコードする少なくとも1種のポリヌクレオチドを該細胞へ導入する工程、
(c)該細胞においてポリヌクレオチドを発現させる工程
を含む、請求項30記載の免疫細胞を操作する方法。 - (a)免疫細胞を準備する工程、
(b)CD123特異的キメラ抗原受容体をコードする少なくとも1種のポリヌクレオチドを該細胞へ導入する工程、
(c)CD123に特異的でない少なくとも1種の他のキメラ抗原受容体を導入する工程
を含む、請求項30記載の免疫細胞を操作する方法。 - (a)請求項1〜10のいずれか一項記載のCD123特異的キメラ抗原受容体を表面に発現している免疫細胞を準備する工程、
(b)該免疫細胞を患者へ投与する工程
を含む、その必要のある対象を処置する方法。 - 前記免疫細胞がドナーから提供される、請求項33記載の方法。
- 前記免疫細胞が患者自身から提供される、請求項33記載の方法。
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