JP2015514395A - 髄膜炎菌(Neisseriameningitidis)組成物およびその方法 - Google Patents
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Abstract
Description
用語「抗原」は通常、同族抗体が選択的に結合し得る少なくとも1つのエピトープを含有する生体分子、通常はタンパク質、ペプチド、多糖、脂質、もしくはコンジュゲートを言うか、または場合によっては、動物内に注射もしくは吸収される組成物を含む、動物における抗体の産生もしくはT細胞の応答もしくはその両方を刺激し得る免疫原性物質を言う。免疫応答は、分子全体に対して、または分子の1つもしくは複数の様々な部分(例えば、エピトープまたはハプテン)に対して生じ得る。この用語は、個別の分子、または均質なもしくは異種の抗原性分子集団を言うために用いることができる。抗原は、抗体、T細胞受容体、または特異的な液性および/もしくは細胞性免疫の他のエレメントによって認識される。用語「抗原」には、すべての関連する抗原性エピトープが含まれる。所与の抗原のエピトープは、当技術分野において周知のあらゆる数のエピトープマッピング技術を用いて同定することができる。例えば、Epitope Mapping Protocols in Methods in Molecular Biology、Vol.66(Glenn E.Morris編、1996)Humana Press、Totowa、N.J.を参照されたい。例えば、線状エピトープは、例えば、タンパク質分子の部分に対応する多数のペプチドを固体担体上で同時に合成し、ペプチドを担体に付着させたままペプチドと抗体とを反応させることによって決定することができる。このような技術は、当技術分野において知られており、例えば、参照することによってすべてその全体が本明細書に組み込まれる、米国特許第4,708,871号;Geysenら(1984)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 81:3998〜4002;Geysenら(1986)Molec.Immunol.23:709〜715において記載されている。同様に、立体構造エピトープは、例えばX線結晶学および2次元核磁気共鳴などによってアミノ酸の空間的立体構造を決定することによって同定することができる。例えば、上記のEpitope Mapping Protocolsを参照されたい。さらに、本発明の目的では、「抗原」はまた、免疫学的応答を誘発する能力をタンパク質が維持する限りの、天然配列に対する修飾、例えば欠失、付加、および置換(通常は保存的な性質であるが、非保存的であり得る)を含むタンパク質を言うために用いることができる。これらの修飾は、部位特異的突然変異生成を介する、もしくは特定の合成手順を介する、もしくは遺伝子操作アプローチを介する、意図的なものであり得るか、または、抗原を産生する宿主の突然変異などを介する、偶発的なものであり得る。さらに、抗原は、微生物、例えば細菌から誘導することができるか、得ることができるか、もしくは単離することができるか、または生物全体であり得る。同様に、核酸免疫化の用途におけるような、抗原を発現するオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドもまた、この定義に含まれる。合成抗原、例えば、ポリエピトープ、隣接エピトープ、および他の組換え抗原または合成によって誘導された抗原もまた含まれる(Bergmannら(1993)Eur.J.Immunol.23:2777 2781;Bergmannら(1996)J.Immunol.157:3242 3249;Suhrbier,A.(1997)Immunol.and Cell Biol.75:402 408;Gardnerら(1998)12th World AIDS Conference、Geneva、Switzerland、Jun.28〜Jul.3、1998を参照されたい)。
本発明はまた、これまでに同定されていない、非脂質化P2086変異体を発現させる困難性を同定し、これらの困難性を克服するための方法およびそれから得られる新規な組成物を提供する。非脂質化P2086変異体をコードするプラスミド構築物は、非脂質化変異体の強力な発現をもたらしたが、これらの変異体は、N末端Cys上でピルビル化されていた。ピルビル化は、ポリペプチドの製造の一貫性または均一性の可能性を阻害するかまたは低減させる。本発明者らはさらに、非脂質化P2086変異体の配列からのN末端Cysの欠失によって、非脂質化P2086変異体のピルビル化が避けられることを見出した。N末端Cysのコドンの欠失によってピルビル化を克服しようと試みることによって、発現が無効になるか、または不溶性の変異体の発現が低減した。あるいは、非脂質化P2086変異体からのN末端Cysの除去によって、一部の変異体における発現が減少した。しかし、驚くべきことに、本発明者らは、少なくともピルビル化されていない非脂質化A05変異体、A12変異体、A22変異体、A62変異体、B01変異体、B09変異体、B22変異体、およびB44変異体が、N末端Cys残基が欠失しているにも関わらず発現され得ることを発見した。全体として、これらのポリペプチドは、対応する野生型の非脂質化配列と比較してCys欠失以外のさらなる修飾がなくても発現され得た。例えば、実施例2および4を参照されたい。さらに、本発明者らは、ピルビル化されていない非脂質化変異体が驚くべきことに免疫原性であり、これらが殺菌性抗体を予想外に誘発することを発見した。
本発明者らは、驚くべきことに、単離されたピルビル化されていない非脂質化ORF2086ポリペプチドを発見した。本発明者らはさらに、このポリペプチドが、予想外に免疫原性であり、殺菌性の免疫応答を誘発し得ることを発見した。
別の態様において、本発明は、単離されたポリペプチドを産生するための方法に関する。本方法は、配列番号21に対する90%を超える同一性を有する配列を含むポリペプチドを細菌細胞において発現させることを含み、前記配列は、配列番号21のアミノ酸13〜18、配列番号21のアミノ酸21〜34、および配列番号21のアミノ酸70〜80からなる群から選択される少なくとも1つのドメイン、またはその組み合わせを含み、ポリペプチドは、N末端システインを欠いている。本方法はさらに、ポリペプチドを精製することを含む。前記方法において産生されるポリペプチドは、ピルビル化されていない非脂質化ORF2086ポリペプチドを含む。好ましくは、ポリペプチドは免疫原性である。好ましい実施形態において、細菌細胞は大腸菌(E.coli)である。
B09:1つの態様において、本発明は、1位のN末端Cysが欠失している配列番号18、または配列番号49で示されるアミノ酸配列を含む、単離されたポリペプチドに関する。配列番号49をコードする例示的なヌクレオチド配列には、配列番号46、配列番号47、および配列番号48から選択される配列が含まれる。好ましくは、ヌクレオチド配列は配列番号46である。1つの態様において、本発明は、配列番号46を含む単離されたヌクレオチド配列に関する。1つの態様において、本発明は、配列番号47を含む単離されたヌクレオチド配列に関する。1つの態様において、本発明は、配列番号48を含む単離されたヌクレオチド配列に関する。
好ましい実施形態において、単離されたピルビル化されていない非脂質化ORF2086ポリペプチドを含む、本明細書において記載される組成物は、免疫原性である。髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)ORF2086のヌクレオチド配列によってコードされるタンパク質を含む免疫原性組成物は、当技術分野において知られている。例示的な免疫原性組成物には、参照することによってその全体が本明細書に組み込まれる、WO2003/063766および米国特許出願公開第US20060257413号および米国特許出願公開第US20090202593号において記載されているものが含まれる。これらの文献において記載されるこのような免疫原性組成物は、ORF2086タンパク質として同定される、殺菌活性を示すタンパク質、その免疫原性部分、および/またはその生物学的同等物を含む。ORF2086タンパク質とは、ナイセリア(Neisseria)種のオープンリーディングフレーム2086によってコードされるタンパク質を言う。
1つの態様において、本明細書中に記載の単離されたポリペプチドおよび組成物は、哺乳動物において、血清群A、B、C、E29、H、I、K、L、W−135、X、YおよびZから選択される血清群などの髄膜炎菌(N.meningitidis)の任意の血清群からの感染に対する殺菌性の免疫応答を誘発する。好ましい実施形態において、本明細書中に記載の単離されたポリペプチドおよび組成物は、哺乳動物において、血清群A、B、C、W−135、Yおよび/またはXからの感染に対する殺菌性の免疫応答を誘発する。
1つの態様において、本発明は、哺乳動物において血清群A髄膜炎菌(N.meningitidis)に特異的な殺菌性抗体を誘発する方法に関する。1つの態様において、本発明は、哺乳動物において血清群C髄膜炎菌(N.meningitidis)に特異的な殺菌性抗体を誘発する方法に関する。1つの態様において、本発明は、哺乳動物において血清群W135髄膜炎菌(N.meningitidis)に特異的な殺菌性抗体を誘発する方法に関する。1つの態様において、本発明は、哺乳動物において血清群X髄膜炎菌(N.meningitidis)に特異的な殺菌性抗体を誘発する方法に関する。1つの態様において、本発明は、哺乳動物において血清群Y髄膜炎菌(N.meningitidis)に特異的な殺菌性抗体を誘発する方法に関する。1つの態様において、本発明は、哺乳動物において血清群A、B、C、W−135、Xおよび/またはY髄膜炎菌(N.meningitidis)に特異的な殺菌性抗体を誘発する方法に関する。1つの態様において、本発明は、哺乳動物において血清群Bの髄膜炎菌(N.meningitidis)に特異的な殺菌性抗体を誘発する方法に関する。例示的な実施形態において、本方法は、ORF2086サブファミリーB血清群B髄膜炎菌(N.meningitidis)、ORF2086サブファミリーA血清群B髄膜炎菌(N.meningitidis)、またはその組み合わせに特異的な殺菌性抗体を誘発することを含む。
本明細書において記載される免疫原性組成物はまた、特定の実施形態において、1つまたは複数のアジュバントを含む。アジュバントは、免疫原または抗原と共に投与された場合に免疫応答を増強させる物質である。限定はしないが、インターロイキン1−α、1−β、2、4、5、6、7、8、10、12(例えば、米国特許第5,723,127号を参照されたい)、13、14、15、16、17、および18(およびその突然変異形態)、インターフェロン−α、β、およびγ、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)(例えば、米国特許第5,078,996号およびATCC受託番号39900を参照されたい)、マクロファージコロニー刺激因子(M−CSF)、顆粒球コロニー刺激因子(G−CSF)、ならびに腫瘍壊死因子αおよびβを含む、多くのサイトカインまたはリンホカインが、免疫調節活性を有することが示されており、したがって、アジュバントとして有用である。
1つの態様において、本発明は、ピルビル化されていない非脂質化ORF2086ポリペプチドを産生する方法に関する。本方法は、対応する野生型配列と比較してN末端システインが欠失しているORF2086ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を発現させることを含み、このヌクレオチド配列は、細菌細胞において発現され得る発現系に作動可能に連結している。本方法によって産生される例示的なポリペプチドには、本明細書において記載されるあらゆるポリペプチドが含まれる。例えば、好ましくは、ポリペプチドは、対応する野生型配列と比較して1位のシステインが欠失している、配列番号12、配列番号13、配列番号14、配列番号15、配列番号16、配列番号17、配列番号18、配列番号19、配列番号20、配列番号21、配列番号58、配列番号70で示されるアミノ酸配列を有する。別の好ましい実施形態において、ポリペプチドは、1位のシステインが欠失している配列番号76に記載のアミノ酸配列を有する。さらなる例示的なポリペプチドには、配列番号44、配列番号49、配列番号50、配列番号55、配列番号57、配列番号62、配列番号64、配列番号66、配列番号68、配列番号71、および配列番号75から選択されるアミノ酸配列を有するポリペプチドが含まれる。さらなる例示的なポリペプチドには配列番号77のアミノ酸配列を有するポリペプチドが含まれる。さらなる例には配列番号80(B24)および配列番号81(B24)が含まれる。本方法はさらに、ポリペプチドを精製することを含む。
特定の実施形態において、本発明の免疫原性組成物はさらに、アジュバント、緩衝液、凍結保護物質、塩、二価陽イオン、非イオン性洗剤、フリーラジカル酸化の阻害剤、希釈剤、または担体の少なくとも1つを含む。
本発明の免疫原性組成物は、単位用量形態または多用量形態(例えば、2回用量、4回用量、またはそれ以上)にパッケージすることができる。多用量形態では、バイアルが典型的であるが、充填済みシリンジよりも必ずしも好ましいというわけではない。適切な多用量フォーマットには、限定はしないが、容器当たり2から10回用量で、用量当たり0.1から2mLのものが含まれる。特定の実施形態において、用量は0.5mL用量である。例えば、参照することによって本明細書に組み込まれる、国際特許出願WO2007/127668を参照されたい。
血清殺菌アッセイ
カニクイザル(Cynomolgus macaques)(n=5/群)を、AlPO4に吸着させたrLP2086タンパク質またはrP2086(A+B)タンパク質を用いて筋肉内で免疫化した。カニクイザルは、非ヒト霊長類の例である。動物に、0週目、4週目、および24週目にワクチン接種し、ORF2086特異的IgGおよび機能的抗体の力価を、0週目、4週目、6週目、および26週目に決定した。血清のORF2086特異的IgGの力価を、rLP2086AおよびBに対して決定した。
髄膜炎菌(N.meningitidis)株M98250771(A05)の残基27〜286に対応する成熟P2086アミノ酸配列は、ゲノムDNAからのPCR増幅に元々由来するものであった。配列TGCCATATGAGCAGCGGAAGCGGAAG(配列番号22)を有するフォワードプライマーは、5’配列にアニーリングされ、クローニングのためのNdeI部位を含有していた。配列CGGATCCCTACTGTTTGCCGGCGATGC(配列番号23)を有するリバースプライマーは、遺伝子の3’末端にアニーリングされ、制限部位BamHIの前にある終結コドンTAGを含有していた。799bpの増幅断片をまず、中間ベクターPCR2.1(Invitrogen、Carlesbac、CA)内にクローニングした。このプラスミドをNdeIおよびBamHIで切断し、NdeIおよびBamHIで切断されている発現ベクターpET9a(Novagen、Madison、WI)内にライゲーションした。得られたベクターpLA100(これは配列番号54を含む)は、脂質化タンパク質内に存在するN末端システインを有さない株M98250771(1位のN末端Cysが欠失している配列番号13、または配列番号55を参照されたい)から、成熟サブファミリーA05 P2086を発現した。BLR(DE3)大腸菌(E.coli)宿主株[F−ompT hsdSB(rB−mB−)gal dcmΔ(srl−recA)306::Tn10(TetR)(DE3)](Novagen)を用いて、fHBPの発現を得た。
非脂質化プラスミド構築物は強力に発現されたが、非脂質化タンパク質変異体は、N末端Cys残基でピルビル化されていた。例えば構築物を発現させる方法を説明する、実施例8および9を参照されたい。このピルビル化を克服するために、N末端Cysコドンを欠失させた。例えば実施例10を参照されたい。N末端Cysの欠失は、しかし、A22変異体およびB22変異体の発現を無効にした。例えば図4を参照されたい。A05変異体、B01変異体、およびB44変異体は、しかし、N末端Cys残基が欠失しているにもかかわらず、依然として発現した。例えば、1位のN末端Cysが欠失している配列番号13(A05)、配列番号35(B01のN末端)、および1位のN末端Cysが欠失している配列番号21(B44)を参照されたい。例えば図5を参照されたい。さらに、非脂質化B09変異体の発現は、N末端Cys残基の欠失によって影響されなかった。例えば実施例4を参照されたい。
なぜA05変異体、B01変異体、およびB44変異体がN末端Cysの不存在下で発現し、A22変異体およびB22変異体が発現しなかったのかを解明するために、これらの変異体の配列をアラインした。A05変異体、B01変異体、およびB44変異体はすべて、N末端Cysの直後の、伸長した一連の10個または11個のGly残基およびSer残基(すなわちGly/Serストーク)を有している。A22変異体およびB22変異体は、しかし、6個のGly残基およびSer残基からなるGly/Serストークを有していたにすぎない。したがって、A22変異体およびB22変異体のGly/Serストークを、さらなるGly残基およびSer残基の挿入によって拡張した。
非脂質化B09変異体の発現は、N末端Cys残基の欠失によって影響されなかった(1位のシステインが欠失している配列番号18、または配列番号49を参照されたい)。例えば図6を参照されたい。B09変異体の配列の評価は、B09変異体が、A22変異体およびB22変異体のGly/Serストークと同様に、6個のGly残基およびSer残基からなるGly/Serストークを有することを示した。実際、B09変異体およびA22変異体のN末端尾部は、アミノ酸レベルで同一である。B09変異体およびA22変異体(それぞれ配列番号53および42)のN末端尾部は、しかし、核酸レベルで、2つの核酸、すなわち配列番号8の核酸15および39が異なる。例えば図6を参照されたい。B22変異体のN末端尾部の最初の14個のアミノ酸は、B09変異体およびA22変異体に同一であり、B22変異体のN末端尾部は、15番目のアミノ酸で異なるにすぎない。B22変異体の核酸1〜42は、A22変異体の核酸1〜42に同一である。B22変異体(配列番号52を参照されたい)の核酸1〜42は、最適にアラインした場合、B09(配列番号53を参照されたい)の核酸1〜42に同一であるが、核酸15および39で異なる。したがって、B22変異体は、B09変異体と、配列番号8のアミノ酸15および39で異なる。この最後の文は誤植を含んでおり、B22変異体がB09変異体と配列番号8の核酸15および39で異なることを述べるものである。
ATGAGCTCTGGAGGTGGAGGAAGCGGGGGCGGTGGA(配列番号28)
MSSGGGGSGGGG(配列番号29)
ATGAGCTCTGGAAGCGGAAGCGGGGGCGGTGGA(配列番号30)
MSSGSGSGGGG(配列番号31)
ATGAGCTCTGGAGGTGGAGGA(配列番号32)
MSSGGGG(配列番号33)
ATGAGCAGCGGGGGCGGTGGA(配列番号34)
MSSGGGG(配列番号33)
ISCOMATRIX製剤ワクチンは、迅速な免疫応答を生じさせ、その結果、血清殺菌アッセイにおいて測定される4倍を超える応答比率を達成するために必要な投与の数が低減する。5頭のアカゲザルからなる群を、二価の非脂質化rP2086ワクチンの異なる製剤で免疫化した。ワクチンは、ピルビル化されていない非脂質化A05変異体(1位のN末端Cysが欠失している配列番号13、または配列番号54によってコードされる配列番号55)およびピルビル化されていない非脂質化B44変異体(1位のN末端Cysが欠失している配列番号21、または配列番号51によってコードされる配列番号44)を含んでいた。アジュバント単位は以下の通りである:AlPO4は250mcgであり、ISCOMATRIXは10mcgと100mcgとの間である。表2〜5において示されるAlPO4のアジュバント単位はミリグラム単位で示され、したがって、250mcgに対して0.25(ミリグラム)と示される。
組換えによって発現される非脂質化P2086変異体(B44)は、多様なfHBP変異体(約85%から約92%未満のID)のLP2086配列を示す株に対するSBAによって測定される広範な防御を誘発する。これらの応答比率を、AlPO4と共に製剤された非脂質化ワクチンについて得た。二価のfHBPワクチンによって生じたサブファミリーB fHBP MnB株に対するSBA応答比率を示す表6を参照されたい。非脂質化ワクチン(「脂質化」の欄の下の「−」によって表される)は、タンパク質当たり1mcgの、ピルビル化されていない非脂質化A05変異体(1位のN末端Cysが欠失している配列番号13)およびピルビル化されていない非脂質化B44変異体(1位のN末端Cysが欠失している配列番号21)を含んでいた。
先の実施例において達成された発現レベルは多くの適用に適切であるが、さらなる最適化が望ましく、タンパク質の完全長にわたるさらなるコドン最適化を含有する大腸菌(E.coli)発現構築物を調製および試験した。Cysを有さないB44タンパク質の発現のための1つのこのような改良された配列は、配列番号43で示される核酸配列であることが見出された。実施例9において示されるように、配列番号43を含有する発現構築物は、最適化されていない野生型配列の発現と比較して増強した発現を示した。
大腸菌(E.coli)K−12株(recA、fhuA、およびaraAの欠失を有する野生型W3110(CGSC4474)の誘導体)の細胞を、配列番号45を含むプラスミドpEB063、配列番号46を含むpEB064、配列番号47を含むプラスミドpEB065、または配列番号48を含むプラスミドpLA134で形質転換した。K−12株に対する好ましい修飾は、発酵目的に有用であるが、タンパク質の発現に必要ではない。
大腸菌(E.coli)B株(BLR(DE3)、Novagen)の細胞を、配列番号51を含むプラスミドpLN056で形質転換した。大腸菌(E.coli)K−12株(野生型W3110の誘導体)の細胞を、配列番号43を含むプラスミドpDK087で形質転換した。細胞を、グルコース−塩規定培地に接種した。37℃で8時間インキュベートした後、線状グルコース流加物をアプライし、インキュベーションをさらに3時間続けた。イソプロピルβ−D−1−チオガラクトピラノシド(IPTG)を0.1mMの最終濃度まで培養物に添加し、その後、37℃で12時間インキュベートした。細胞を、16,000×gで10分間にわたる遠心分離によって回収し、Lienco Technologies(St.Louis、MO)から入手したEasy−Lyse(商標)Cell Lysing Kit”、およびローディングバッファーを添加することによって溶解した。上清を、SDS−PAGEゲルのクマシー染色および/またはウェスタンブロット分析によってB09の発現について分析し、走査デンシトメーターによって定量した。走査デンシトメトリーの結果を以下の表8に示す。
本実施例は、非脂質化ORF2086タンパク質のN末端Cys残基が、例えば大腸菌(E.coli)において発現した場合にピルビル化され得ることを示す。
5〜10群のアカゲザルを、用量当たり250mcgのAlPO4と共に製剤されたB09変異体(配列番号48によってコードされる配列番号49)またはB44変異体(配列番号43によってコードされる配列番号44)、またはA05、B09、およびB44(それぞれ、配列番号55、配列番号48によってコードされる配列番号49、および配列番号43によってコードされる配列番号44)で免疫化した。サルを、表9および10において列挙されているような単独のまたは組み合わせた各10mcgの非脂質化fHBPで、0週目、4週目、および8週目に、筋肉内経路を介してワクチン接種した。0週目および12週目の両方で、血清試料を、サブファミリーAまたはサブファミリーBのfHBP変異体を用いるMnB株に対するSBAにおいて分析した。レスポンダーを、力価が4倍上昇した動物として記録した。試験したB44変異体は、最適化された構築物(配列番号43)であり、これまでの研究(上記の表)において観察された広い応答比率は、最適化された構築物(表9)である単独のまたはB09と組み合わされたB44ワクチンについて維持された。B09ワクチン単独(表10)もまた、広く交差反応性の免疫応答を生じさせ得た(表10)。
Charles River Canadaから入手した、2.5〜3.5kgの、20頭のメスのニュージーランドホワイトウサギを、全細胞ELISAによってプレスクリーニングし、10頭の動物を、fHBP変異体B02(配列番号16)およびB44(配列番号21)を示す試験株に対するそれらの低いバックグラウンド力価に基づいて、この研究のために選択した(表11)。3頭の動物からなる群を、0週目、4週目、および9週目に、0.5ml用量当たり50μgのISCOMATRIXと共に製剤された100μgの各タンパク質でi.m.で免疫化した(表12)。群1を、非脂質化B44(配列番号44)でワクチン接種した。対照群には、AlPO4(250mcg)と共に製剤された脂質化B01でワクチン接種されたものが含まれた。ウサギを、0週目、4週目、9週目、および10週目に採血した。10週目の個別の血清を調製し、fHBP Bサブファミリーの複数の血清群Bの髄膜炎菌株に対する血清殺菌アッセイによって分析した。
5頭のウサギからなる群を、表14において記載されているように非脂質化fHBP変異体で免疫化した。ワクチンを、0週目、4週目、および9週目に投与した。0週目および10週目に回収されたウサギの血清試料を、相同なおよび異種のfHBP配列を有する株に対するSBAによって分析した。表14は、3回目の免疫化の後のレスポンダーパーセントを示す。3回目の免疫化(10週目)の1週間後、すべての血清試料は、相同な株および同一のfHBPサブファミリーの他の試験株に対して殺菌活性を示した。ウサギの採血前の血清は、全体として、試験した株に対して既存の殺菌活性を示さなかった。
>非脂質化A05(配列番号55)
SSGSGSGGGGVAADIGTGLADALTAPLDHKDKGLKSLTLEDSISQNGTLTLSAQGAEKTFKVGDKDNSLNTGKLKNDKISRFDFVQKIEVDGQTITLASGEFQIYKQDHSAVVALQIEKINNPDKIDSLINQRSFLVSGLGGEHTAFNQLPSGKAEYHGKAFSSDDAGGKLTYTIDFAAKQGHGKIEHLKTPEQNVELASAELKADEKSHAVILGDTRYGSEEKGTYHLALFGDRAQEIAGSATVKIREKVHEIGIAGKQ
>pEB042(配列番号65)
ATGAGCTCTGGAAGCGGAAGCGGGGGCGGTGGAGTTGCAGCAGACATTGGAACAGGATTAGCAGATGCACTGACGGCACCGTTGGATCATAAAGACAAAGGCTTGAAATCGCTTACCTTAGAAGATTCTATTTCACAAAATGGCACCCTTACCTTGTCCGCGCAAGGCGCTGAAAAAACTTTTAAAGTCGGTGACAAAGATAATAGCTTAAATACAGGTAAACTCAAAAATGATAAAATCTCGCGTTTTGATTTCGTGCAAAAAATCGAAGTAGATGGCCAAACCATTACATTAGCAAGCGGTGAATTCCAAATATATAAACAAGACCATTCAGCAGTCGTTGCATTGCAAATTGAAAAAATCAACAACCCCGACAAAATCGACAGCCTGATAAACCAACGTTCCTTCCTTGTCAGCGGTTTGGGCGGTGAACATACAGCCTTCAACCAATTACCAAGCGGCAAAGCGGAGTATCACGGTAAAGCATTTAGCTCAGATGATGCAGGCGGTAAATTAACTTATACAATTGACTTTGCAGCAAAACAAGGACATGGCAAAATTGAACATTTAAAAACACCCGAACAGAACGTAGAGCTCGCATCCGCAGAACTCAAAGCAGATGAAAAATCACACGCAGTCATTTTGGGTGACACGCGCTACGGCAGCGAAGAAAAAGGTACTTACCACTTAGCTCTTTTTGGCGACCGAGCTCAAGAAATCGCAGGTAGCGCAACCGTAAAGATAAGGGAAAAGGTTCACGAAATTGGGATCGCGGGCAAACAATAA
>非脂質化A12(配列番号66)
SSGGGGSGGGGVAADIGAGLADALTAPLDHKDKSLQSLTLDQSVRKNEKLKLAAQGAEKTYGNGDSLNTGKLKNDKVSRFDFIRQIEVDGQTITLASGEFQIYKQNHSAVVALQIEKINNPDKIDSLINQRSFLVSGLGGEHTAFNQLPDGKAEYHGKAFSSDDPNGRLHYSIDFTKKQGYGRIEHLKTPEQNVELASAELKADEKSHAVILGDTRYGGEEKGTYHLALFGDRAQEIAGSATVKIREKVHEIGIAGKQ
>pEB043(配列番号67)
ATGAGCTCTGGAGGTGGAGGAAGCGGGGGCGGTGGAGTTGCAGCAGACATTGGAGCAGGATTAGCAGATGCACTGACGGCACCGTTGGATCATAAAGACAAAAGTTTGCAGTCGCTTACCTTAGATCAGTCTGTCAGGAAAAATGAGAAACTTAAGTTGGCGGCGCAAGGCGCTGAAAAAACTTATGGAAACGGTGACAGCTTAAATACAGGTAAACTCAAAAATGATAAAGTCTCGCGTTTTGATTTCATTCGTCAAATCGAAGTAGATGGCCAAACCATTACATTAGCAAGCGGTGAATTCCAAATATATAAACAAAACCATTCAGCAGTCGTTGCATTGCAAATTGAAAAAATCAACAACCCCGACAAAATCGACAGCCTGATAAACCAACGTTCCTTCCTTGTCAGCGGTTTGGGCGGTGAACATACAGCCTTCAACCAATTACCAGACGGCAAAGCGGAGTATCACGGTAAAGCATTTAGCTCAGATGATCCGAACGGTAGGTTACACTATTCCATTGACTTTACCAAAAAACAAGGATACGGCAGAATTGAACATTTAAAAACGCCCGAACAGAACGTAGAGCTCGCATCCGCAGAACTCAAAGCAGATGAAAAATCACACGCAGTCATTTTGGGTGACACGCGCTACGGCGGCGAAGAAAAAGGTACTTACCACTTAGCCCTTTTTGGCGACCGCGCTCAAGAAATCGCAGGTAGCGCAACCGTAAAGATAAGGGAAAAGGTTCACGAAATTGGGATCGCGGGCAAACAATAA
>非脂質化A22(配列番号68)
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>pEB058(配列番号69)
ATGAGCTCTGGAGGTGGAGGAGTTGCAGCAGACATTGGAGCAGGATTAGCAGATGCACTGACGGCACCGTTGGATCATAAAGACAAAAGTTTGCAGTCGCTTACCTTAGATCAGTCTGTCAGGAAAAATGAGAAACTTAAGTTGGCGGCGCAAGGCGCTGAAAAAACTTATGGAAACGGTGACAGCTTAAATACAGGTAAACTCAAAAATGATAAAGTCTCGCGTTTTGATTTCATTCGTCAAATCGAAGTAGATGGCCAACTTATTACATTAGAAAGCGGTGAATTCCAAATATATAAACAAGACCATTCAGCAGTCGTTGCATTGCAAATTGAAAAAATCAACAACCCCGACAAAATCGACAGCCTGATAAACCAACGTTCCTTCCTTGTCAGCGGTTTGGGCGGTGAACATACAGCCTTCAACCAATTACCAAGCGGCAAAGCGGAGTATCACGGTAAAGCATTTAGCTCAGATGATGCAGGCGGTAAATTAACTTATACAATTGACTTTGCAGCAAAACAAGGACATGGCAAAATTGAACATTTAAAAACACCCGAACAGAACGTAGAGCTCGCATCCGCAGAACTCAAAGCAGATGAAAAATCACACGCAGTCATTTTGGGTGACACGCGCTACGGCGGCGAAGAAAAAGGTACTTACCACTTAGCTCTTTTTGGCGACCGAGCTCAAGAAATCGCAGGTAGCGCAACCGTAAAGATAAGGGAAAAGGTTCACGAAATTGGGATCGCGGGCAAACAATAA
>A62(配列番号70).GenBank:ACI46789.1
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>非脂質化A62(配列番号71)
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>pLA164(配列番号72)
ATGAGCAGCGGAGGGGGCGGTGTCGCCGCCGACATCGGTGCGGGGCTTGCCGATGCACTAACCGCACCGCTCGACCATAAAGACAAAGGTTTGCAGTCTTTAACGCTGGATCAGTCCGTCAGGAAAAACGAGAAACTGAAGCTGGCGGCACAAGGTGCGGAAAAAACTTATGGAAACGGCGACAGCCTTAATACGGGCAAATTGAAGAACGACAAGGTCAGCCGCTTCGACTTTATCCGTCAAATCGAAGTGGACGGGAAGCTCATTACCTTGGAGAGCGGAGAGTTCCAAGTGTACAAACAAAGCCATTCCGCCTTAACCGCCCTTCAGACCGAGCAAGTACAAGACTCGGAGGATTCCGGGAAGATGGTTGCGAAACGCCAGTTCAGAATCGGCGACATAGCGGGCGAACATACATCTTTTGACAAGCTTCCCAAAGGCGGCAGTGCGACATATCGCGGGACGGCGTTCGGTTCAGACGATGCTGGCGGAAAACTGACCTATACTATAGATTTCGCCGCCAAACAGGGACACGGCAAAATCGAACACTTGAAAACACCCGAGCAAAATGTCGAGCTTGCCTCCGCCGAACTCAAAGCAGATGAAAAATCACACGCCGTCATTTTGGGCGACACGCGCTACGGCGGCGAAGAAAAAGGCACTTACCACCTCGCCCTTTTCGGCGACCGCGCCCAAGAAATCGCCGGCTCGGCAACCGTGAAGATAAGGGAAAAGGTTCACGAAATCGGCATCGCCGGCAAACAGTAA
>pDK086(配列番号73)
ATGTCCAGCGGTTCAGGCAGCGGCGGTGGAGGCGTGGCAGCAGATATCGGAACAGGTTTAGCAGATGCTCTGACAGCACCCTTAGATCACAAAGACAAAGGACTTAAATCACTGACATTGGAAGATTCTATCTCGCAAAATGGTACTCTCACTCTTTCAGCCCAAGGCGCAGAAAAAACATTTAAAGTAGGCGATAAAGATAACTCCTTAAATACAGGTAAATTAAAAAATGACAAAATCTCACGGTTTGATTTCGTTCAGAAAATTGAAGTAGATGGACAAACGATTACATTAGCAAGCGGCGAATTCCAAATTTATAAACAAGACCATTCAGCAGTAGTAGCATTACAAATCGAAAAAATTAACAACCCGGACAAAATTGATTCTCTTATTAACCAACGCTCTTTTCTCGTATCAGGACTTGGTGGTGAACATACAGCGTTTAATCAACTGCCGTCAGGAAAAGCAGAATATCATGGTAAAGCATTTTCATCAGACGACGCAGGTGGCAAACTGACCTATACTATTGACTTTGCAGCAAAACAGGGACATGGAAAAATTGAACATTTAAAAACACCCGAACAGAACGTAGAACTGGCCTCAGCAGAATTGAAAGCTGATGAAAAATCCCATGCAGTAATTTTAGGCGATACACGTTACGGTAGCGAAGAAAAAGGTACATATCACTTAGCTCTTTTTGGCGATCGTGCTCAAGAAATTGCTGGTTCCGCAACAGTTAAAATCCGTGAAAAAGTACATGAAATCGGCATTGCAGGTAAACAATAA
>A29(配列番号74)
CSSGGGGSGGGGVAADIGTGLADALTAPLDHKDKGLKSLTLEDSIPQNGTLTLSAQGAEKTFKAGDKDNSLNTGKLKNDKISRFDFVQKIEVDGQTITLASGEFQIYKQNHSAVVALQIEKINNPDKIDSLINQRSFLVSGLGGEHTAFNQLPGDKAEYHGKAFSSDDPNGRLHYTIDFTNKQGYGRIEHLKTPELNVDLASAELKADEKSHAVILGDTRYGSEEKGTYHLALFGDRAQEIAGSATVKIGEKVHEIGIAGKQ
>非脂質化B22(配列番号75)
SSGGGGVAADIGAVLADALTAPLDHKDKSLQSLTLDQSVRKNEKLKLAAQGAEKTYGNGDSLNTGKLKNDKVSRFDFIRQIEVDGQLITLESGEFQVYKQSHSALTALQTEQVQDSEHSGKMVAKRQFRIGDIAGEHTSFDKLPEGGRATYRGTAFGSDDASGKLTYTIDFAAKQGHGKIEHLKSPELNVDLAASDIKPDKKRHAVISGSVLYNQAEKGSYSLGIFGGQAQEVAGSAEVETANGIRHIGLAAKQ
>非脂質化A05(配列番号76)(pPW102)
CGSSGGGGVAADIGTGLADALTAPLDHKDKGLKSLTLEDSISQNGTLTLSAQGAEKTFKVGDKDNSLNTGKLKNDKISRFDFVQKIEVDGQTITLASGEFQIYKQDHSAVVALQIEKINNPDKIDSLINQRSFLVSGLGGEHTAFNQLPSGKAEYHGKAFSSDDAGGKLTYTIDFAAKQGHGKIEHLKTPEQNVELASAELKADEKSHAVILGDTRYGSEEKGTYHLALFGDRAQEIAGSATVKIREKVHEIGIAGKQ
>非脂質化A05(配列番号77)
GSSGGGGVAADIGTGLADALTAPLDHKDKGLKSLTLEDSISQNGTLTLSAQGAEKTFKVGDKDNSLNTGKLKNDKISRFDFVQKIEVDGQTITLASGEFQIYKQDHSAVVALQIEKINNPDKIDSLINQRSFLVSGLGGEHTAFNQLPSGKAEYHGKAFSSDDAGGKLTYTIDFAAKQGHGKIEHLKTPEQNVELASAELKADEKSHAVILGDTRYGSEEKGTYHLALFGDRAQEIAGSATVKIREKVHEIGIAGKQ
>コンセンサス(配列番号78)
CSSGGGGVAADIGAGLADALTAPLDHKDKGLQSLTLDQSVRKNEKLKLAAQGAEKTYGNGDSLNTGKLKNDKVSRFDFIRQIEVDGQLITLESGEFQIYKQSHSALVALQTEQINNSDKSGSLINQRSFRISGIAGEHTAFNQLPKGGKATYRGTAFSSDDAGGKLTYTIDFAAKQGHGKIEHLKTPEQNVELASAELKADEKSHAVILGDTRYGGEEKGTYHLALFGDRAQEIAGSATVKIREKVHEIGIAGKQ
>コンセンサス(配列番号79)
SSGGGGVAADIGAGLADALTAPLDHKDKGLQSLTLDQSVRKNEKLKLAAQGAEKTYGNGDSLNTGKLKNDKVSRFDFIRQIEVDGQLITLESGEFQIYKQSHSALVALQTEQINNSDKSGSLINQRSFRISGIAGEHTAFNQLPKGGKATYRGTAFSSDDAGGKLTYTIDFAAKQGHGKIEHLKTPEQNVELASAELKADEKSHAVILGDTRYGGEEKGTYHLALFGDRAQEIAGSATVKIREKVHEIGIAGKQ
非脂質化A05 fHBPタンパク質のコード配列(配列番号55)を発現が最適化されたB44配列(配列番号43)とアラインした。両者間のアミノ酸が同一であった箇所ではすべて、B44(配列番号43)からのコドンを使用してA05遺伝子中のものを置換した。制限エンドヌクレアーゼ部位NdeIおよびBamHIをそれぞれNおよびC末端に付加して、最適化された配列をCeltek Genesで新規合成した。生じた遺伝子(配列番号65)をpET30a内にそれらの部位でサブクローニングした。
pLA164(配列番号72)で形質転換させたBLR(DE3)大腸菌(E.coli)B recAをA62(配列番号71)の発現に使用した。プラスミドpEB042(配列番号65)を大腸菌(E.coli)宿主BD643(W3110:DE3ΔrecAΔfhuAΔaraA)に形質転換させて株BD660を得て、A05(配列番号55)を発現させた。A22(配列番号68)の発現は、宿主BD559(これもW3110:DE3ΔrecAΔfhuAΔaraAである)中に存在するプラスミドpEB058(配列番号69)からなる株BD592からであった。最後に、プラスミドpEB043(配列番号67)を宿主BD483(W3110:DE3ΔrecA)に形質転換させて、株BD540を得てA12(配列番号66)を発現させた。
発現株をグルコースに基づく最少培地中で発酵させた。終夜開始培養を、37℃、1vvm通気、カスケードdO調節、20%で作動中の10リットルの発酵槽に接種した。バッチ添加したグルコースが培地から枯渇した際(約OD600=15で)、3.8g/L/時の限定的な直線形グルコース供給を開始した。供給は、0.1mMのIPTGを用いた誘導まで、および続くタンパク質発現期間を通して続けた。A05(配列番号55)の発現には、株BD660をOD600=25で誘導し、発酵を誘導後7時間(HPI)まで続けた。それぞれ株BD592およびBD540からのA22(配列番号68)およびA12(配列番号66)の発現は、OD600=40で誘導し、誘導後24時間(HPI)の間発酵させることによって達成した。発酵の完了後、細胞ペーストを遠心分離によって収集した。
rP2086タンパク質は、大腸菌(E.coli)株の細胞質中で可溶性タンパク質として産生される。可溶性の細胞質抽出物は、典型的には、rP2086のサブファミリーAの特定の変異体を発現する凍結細胞を低張性緩衝液(プロテアーゼ阻害剤を含有する10mMのHepes−NaOH、pH7.4)中で解凍し、微小流動化装置内、約20,000psi下で細胞を破壊することによって得られる。RNaseおよびDNAseを加えて核酸を消化し、すべての未破壊細胞を除去するための低速での遠心分離、その後、膜、細胞壁および他のより大きな細胞内成分を除去するための高速(100,000×g以上)での遠心分離の後、細胞質抽出物を上清として収集する。25%、その後、50%の飽和硫酸アンモニウムに順次調整し、それぞれの調整後に低速の遠心分離によって沈殿した物質を除去することによって、細胞質抽出物をさらに清澄にする。その後、10mMのHepes−NaOH、pH7.4、1mMのNa2EDTAの緩衝液中の50%飽和硫酸アンモニウム中のrP2086を疎水性相互作用カラム(フェニルセファロース、GE Healthcareから購入)へと吸着させ、その後、10mMのHepes−NaOH、pH7.4、1mMのNa2EDTAの緩衝液を用いて硫酸アンモニウム濃度を0%まで直線的に減少させることでrP2086を溶出させることによって、低分子量イオン性細胞成分を除去する。その後、rP2086含有画分を、プールした画分の10mMのトリス−HCl、pH8.6、1mMのNa2EDTA通過(passage)の緩衝液へと、同じ緩衝液で平衡化した陰イオン交換カラム(TMAE、EMDから購入)上で調整することによって、大多数の負荷電タンパク質を除去する。その後、rP2086を含有する緩衝液を1mMのリン酸ナトリウムを含有する10mMのHepes−NaOH、pH7.4へと交換し、タンパク質をセラミックヒドロキシアパタイトへと吸着させ、その後、pH7.4で250mMまでのリン酸ナトリウムの直線勾配で溶出させることによって、rP2086をセラミックヒドロキシアパタイト(BioRadから入手)上のクロマトグラフィーによってさらに精製する。上述の単位操作は、多くの場合は精製されたrP2086サブファミリーAメンバーを得るために十分である。しかし、発現レベルは10倍を超えて変動する場合があるため、rP2086が範囲の下端で発現された場合、または超純粋なrP2086が必要な場合(NMR構造決定のために高濃度で)は、以下の追加の単位操作を追加する:等電点電気泳動、次いでセラミックヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー。初期のヒドロキシアパタイトステップからのrP2086タンパク質を含有する緩衝液を25mMのトリス−アセテート、pH8.3へと交換し、タンパク質を同じ緩衝液で平衡化した等電点電気泳動PBE94カラム(GE Healthcareから入手)へと吸着させ、その後、ポリバッファー94−アセテート、pH6の緩衝液で溶出させる。rP2086タンパク質はその大体のpIで溶出され、タンパク質を含有する画分をプールする。その後、rP2086含有画分の緩衝液を1mMのリン酸ナトリウムを含有する10mMのHepes−NaOH、pH7.4へと交換し、上述のように吸着および溶出させる。このプロセスによって調製されたrP2086サブファミリーAメンバーは、SDS−PAGE分析によって典型的には>95%均一であり、ほとんどの場合は>99%均一である。
発酵の完了後、細胞スラリーを連続的な遠心分離によって回収し、20mMのトリス、5mMのEDTA、pH6.0で元の発酵体積の約1/4まで再懸濁させる。細胞懸濁液の溶解を高圧ホモジネーション(2回、4000〜9000psi)によって達成する。ホモジネートにDADMACを最終濃度0.5%まで加える。溶液を15〜25℃で60分間撹拌し、その間に重い(heavy)沈殿物が形成される。溶液を連続的な遠心分離によって清澄にする。タンパク質(A05、A12およびA22)を、2つのクロマトグラフィーステップ、次いで最終緩衝液交換を使用して精製する。遠心分離物のpHを5.5に調整し、GigaCap−Sカラム(CEX)上に載せる。タンパク質が樹脂に結合し、続いて、塩化ナトリウム勾配を使用して溶出させる。CEXカラムからのプールにクエン酸ナトリウムを最終濃度1.5Mで加え、溶液をフェニル−650Mカラム(HIC)に載せる。タンパク質が樹脂に結合し、続いて、クエン酸ナトリウム段階勾配を使用して溶出させる。精製されたタンパク質を含有するHICプールを、ダイアフィルトレーションによって最終原体緩衝液内に交換する。5kDの再生酢酸セルロース限外濾過カセットを利用する。タンパク質濃度は1.5〜2.0mg/mLを標的とする。ダイアフィルトレーションした濃縮水を、0.2ミクロンのフィルターを通して濾過した後、貯蔵ボトルに満たす。原体を−70℃で保管する。
機能的抗体の力価を、ワクチン内に含有される配列に相同または異種のどちらかの配列を有するfHBPを発現する野生型または操作された髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群B株に対する血清殺菌アッセイ(SBA)によって試験した。rP2086ワクチンで免疫化されたウサギにおける血清殺菌抗体を、ヒト補体を用いたSBAを使用して決定した。ウサギ免疫血清を熱失活させて固有の補体活性を除去し、その後、96ウェルマイクロタイタープレート内で、Ca2+およびMg2+を含むダルベッコPBS(D−PBS)中で2倍に連続希釈して、髄膜炎菌(N.meningitidis)株に対する血清殺菌活性について試験した。操作された株を用いた組み合わせ研究には、それぞれの成分の有効濃度が、それぞれを個別に試験した場合の半分となるように、上述の段階希釈の前に目的の血清を1:1の比で混合した。アッセイで使用した細菌はKellogg補助物質を補ったGC培地(GCK)において成長させ、650nmでの光学密度によってモニタリングした。アッセイで使用するために細菌を0.50〜0.55の最終OD650で採取し、D−PBS中で希釈し、1000〜3000CFUをアッセイ混合物に加えた。検出可能な殺菌活性を有さないヒト血清を外因性の補体源として使用した。補体源を、それぞれの個別の試験株に対する適合性について試験した。同質遺伝子株には、単一のヒト血清が同定され、これはすべての同質遺伝子株に対するSBAについて適格であった。免疫血清を加えない対照において生存する細胞の数が75%を超える場合にのみ、補体源を使用した。30分間、37℃で、5%のCO2、振盪器上で700rpmの振盪を用いたインキュベーションの後、D−PBSを反応混合物に加え、アリコートを、野生型基準株には50%GCK培地、操作された株には100%GCK培地で事前に満たしたマイクロフィルタープレートに移した。マイクロフィルタープレートを濾過し、37℃で、5%CO2を用いて終夜インキュベーションし、マイクロコロニーを染色および定量した。血清の殺菌力価は、免疫血清を含まない対照ウェルにおけるCFUと比較してCFUが50%低減した血清希釈率の、補間された逆数として定義した。抗rP2086免疫血清による死滅に対する感受性は、抗rP2086免疫血清におけるSBA力価が対応する免疫前血清と比較して4倍以上上昇していた場合に定めた。開始希釈率でアッセイ株に対して陰性であった血清には、アッセイでの検出限界の2分の1の力価を付与した。
Charles River(カナダ)から入手したホワイトニュージーランドメスウサギ(2.5〜3.5kg)を2つの研究で使用した。第1の研究では、3頭のウサギの群を、脂質化A05または非脂質化A05 fHBP製剤のどちらかのそれぞれ30mcgまたは3mcgのどちらかで免疫化した。第2の研究では、5頭のウサギ/群を、500μg/mLのAlPO4をアジュバントとした20μg/mLのrP2086A変異体を用いて右後肢に筋肉内で免疫化した(0.5ml/用量/2カ所の部位)。動物を0週目、4週目および9週目にワクチン接種し、0週目および6週目に採血し、10週目に全採血した。LP2086に特異的な殺菌性抗体の力価を0週目、6週目および10週目に決定した。
適用範囲の幅に対する効果を評価するために、血清の組み合わせを評価した。血清を組み合わせた結果として非特異的な死滅は誘導されなかったことを確認するために、ワクチン接種の前対後の血清の対を試験した。サブファミリーA内で多様性を表した4つの同質遺伝子株にわたって、個々の血清について、および血清の組み合わせについてGMの上昇の倍数を計算した。試験した組み合わせの一部について上昇倍数の増加が検出され、これにより、より多くのサブファミリーA変異体を含めることによって適用範囲の幅を増加することができるという証拠が提供された(表19)。最適な組み合わせは、A05(配列番号55)とA62(配列番号71)またはA62(配列番号71)とA12(配列番号66)であると考えられる(表20)。
本研究は、Charles River、カナダから入手した2.5〜3.5kgの範囲のニュージーランドホワイトウサギにおいて実施した(表21)。研究を始める前に、A05およびB02株に対する全細胞ELISAを使用して、55頭のウサギを既存の抗体について事前にスクリーニングした。スクリーニング後、比較的低い抗体の力価(特異的IgG力価<350)を有するウサギの後肢に、0.5mL/部位(1.0mL/用量、表22を参照)、0週目、4週目、および9週目に、筋肉内でワクチン接種した。1群当たり3頭のウサギが存在していた。ウサギを0週目、4週目、6週目、9週目に採血し、10週目に全採血した。血清試料を調製し、0週目および10週目の血清試料をSBAによって分析した。髄膜炎菌コンジュゲートワクチン(MENVEO(登録商標)、髄膜炎菌(A、C、Y、およびW−135群)オリゴ糖ジフテリアCRM197コンジュゲートワクチン、Novartis)、二価rLP2086および四価非脂質化変異体ならびにそれらの組み合わせを表23〜26に従って調製した。
複数の血清群B、CおよびYの髄膜炎菌株(表27)に対する、マイクロコロニーに基づいた血清殺菌アッセイ(SBA)を、個々の血清試料に対して行った。ドナーからのヒト血清は、アッセイで試験した株の補体源として適格であった。補体介在性の抗体依存性の殺菌力価を補間し、アッセイにおいて髄膜炎菌細胞の50%を死滅させた試験血清の希釈率の逆数として表した。アッセイの検出限界はSBA力価4であった。4未満のSBA力価には数字2を付与した。採血前の力価と比較した、10週目の血清におけるSBA力価の4倍以上の上昇を計算し、比較した。
血清殺菌抗体は、髄膜炎菌性の疾患に対する防御の免疫学的代替手段である。脂質化、非脂質化rfHBP、四価コンジュゲートワクチンを、単独でまたは組み合わせて用いて免疫化したかにかかわらず、ウサギにおいて誘発された殺菌性抗体をSBAによって決定した。SBAは、天然に生じる補体介在性の細菌溶解を模倣することによって、血清試料中の抗体のレベルを測定する。ヒトでは、1:4のSBA力価が防御的であるとみなされ、免疫化の前対後で力価の4倍の上昇も免疫学的に関連性のある免疫応答であるとみなされる。0週目および10週目から採取されたウサギ血清試料を、いくつかの髄膜炎菌血清群の株に対するSBAによって分析した。表28(より高い用量)および表29(より低い用量)に示されるように、3回目の免疫化(10週目)の1週間後、四価コンジュゲートワクチンはMnCおよびMnY試験株に対するSBA応答しか誘発しなかった。すべての他の血清試料は、相同株およびワクチン製剤中のものと同じfHBPサブファミリーからの他の試験株に対して殺菌活性を示した。それぞれ30mcgの用量の脂質化A05/B01(それぞれ配列番号13および58)を単独で用いた免疫化が、相同株に対して、および両fHBPサブファミリーからの他の試験株に対して最も高い殺菌性抗体を誘発したことに留意されたい(表28)。同様に、非脂質化A05/B09/B22/B44(それぞれ配列番号55、49、75、および44)を単独で用いた免疫化も、いくつかの髄膜炎菌血清群の株に対する殺菌性抗体を誘発したが、SBA力価は脂質化二価ワクチンよりも3〜15倍低かった(表30)。脂質化fHBP、高用量の非脂質化fHBPおよびすべての組み合わせにおいて、様々な血清群(sergroup)のすべての株に対して100%レスポンダー比率(SBA力価の4倍以上の上昇)が達成された。
脂質化fHBPは、それぞれ30mcg/用量ですべての髄膜炎菌B、CおよびY試験株に対して3〜15倍高いSBA力価を誘発した。非脂質化fHBPは、それぞれ30mcg/用量ですべての髄膜炎菌B、CおよびY試験株に対して4〜23倍高いSBA力価を誘発した(表28〜29)。
より高い用量のコンジュゲートワクチンでは、fHBPまたはその組み合わせは、より低い用量よりもSBA応答を増加させた(表28〜30)。1単位のヒト用量のコンジュゲートワクチンは、髄膜炎菌CおよびY株に対して10分の1単位の用量のコンジュゲートワクチンよりも2〜8倍高いSBA力価を誘発した。それぞれ30mcg/用量の脂質化fHBPは、すべての試験株に対してそれぞれ3mcg/用量よりも2〜4倍高いSBA力価を誘発した。それぞれ30mcg/用量の非脂質化fHBPは、すべての髄膜炎菌血清群B、CおよびY株に対してそれぞれ3mcg/用量よりも4〜15倍高いSBA力価を誘発した。
コンジュゲートワクチンとfHBPとの組み合わせを使用した場合、どちらかの成分を単独で使用した場合よりも、特に、より低い用量の脂質化または非脂質化fHBPを添加した場合に、髄膜炎菌血清群CおよびY株に対するSBA応答がより高いという傾向が存在する(表29)。本研究では、いくつかの髄膜炎菌血清群の株に対する機能的活性を、AlPO4を用いて配合した組換え脂質化または非脂質化fHBPとコンジュゲートワクチンとを単独でまたは組み合わせて用いて免疫化したニュージーランドホワイトウサギからの血清を使用して評価した。コンジュゲートワクチンを受けたウサギは髄膜炎菌血清群CおよびY株に対するSBA応答のみを誘発し、血清群B株に対しては誘発しなかった。AlPO4を用いて配合した脂質化または非脂質化fHBPは、試験したすべての髄膜炎菌血清群の株に対して殺菌性であった血清抗体を誘発した。
研究は、Charles River、カナダから入手した2.5〜3.5kgの範囲のニュージーランドホワイトウサギにおいて実施した(表31)。ウサギの後肢に、0.5mL/部位(1.0mL/用量、表32を参照)、0週目、4週目および9週目に、筋肉内でワクチン接種した。試験した抗原のそれぞれの配列番号を表33に列挙する。1群当たり10頭のウサギが存在していた。ウサギを0週目、6週目に採血し、10週目に全採血した。血清試料を調製し、0週目および10週目の血清試料を、髄膜炎菌(N.meningitidis)の単離体のパネルに対するSBAにおいて分析した。
配列番号2は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A05の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号3は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A12の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号4は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A12−2の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号5は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A22の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号6は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B02の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号7は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B03の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号8は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B09の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号9は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B22の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号10は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B24の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号11は、N末端Cysをコードするコドンを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B44の遺伝子のDNA配列を示す。
配列番号12は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A04のアミノ酸配列を示す。
配列番号13は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A05のアミノ酸配列を示す。
配列番号14は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A12のアミノ酸配列を示す。
配列番号15は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A22のアミノ酸配列を示す。
配列番号16は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B02のアミノ酸配列を示す。
配列番号17は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B03のアミノ酸配列を示す。
配列番号18は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B09のアミノ酸配列を示す。
配列番号19は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B22のアミノ酸配列を示す。
配列番号20は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B24のアミノ酸配列を示す。
配列番号21は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B44のアミノ酸配列を示す。
配列番号22は、実施例2において示される、フォワードプライマーのDNA配列を示す。
配列番号23は、実施例2において示される、リバースプライマーのDNA配列を示す。
配列番号24は、実施例2、表1において示される、フォワードプライマーのDNA配列を示す。
配列番号25は、実施例2、表1において示される、リバースプライマーのDNA配列を示す。
配列番号26は、実施例2、表1において示される、フォワードプライマーのDNA配列を示す。
配列番号27は、実施例2、表1において示される、リバースプライマーのDNA配列を示す。
配列番号28は、実施例4において示される、Gly/SerストークのDNA配列を示す。
配列番号29は、例えば配列番号28によってコードされる、実施例4において示されるGly/Serストークのアミノ酸配列を示す。
配列番号30は、実施例4において示されるGly/SerストークのDNA配列を示す。
配列番号31は、例えば配列番号30によってコードされる、実施例4において示されるGly/Serストークのアミノ酸配列を示す。
配列番号32は、実施例4において示されるGly/SerストークのDNA配列を示す。
配列番号33は、例えば配列番号32および配列番号34によってコードされる、Gly/Serストークのアミノ酸配列を示す。
配列番号34は、実施例4において示されるGly/SerストークのDNA配列を示す。
配列番号35は、図5において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B01のN末端のアミノ酸配列を示す。
配列番号36は、図5において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B44のN末端のアミノ酸配列を示す。
配列番号37は、図5において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A05のN末端のアミノ酸配列を示す。
配列番号38は、図5において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A22のN末端のアミノ酸配列を示す。
配列番号39は、図5において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B22のN末端のアミノ酸配列を示す。
配列番号40は、図5において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A19のN末端のアミノ酸配列を示す。
配列番号41は、図6において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体のN末端のアミノ酸配列を示す。
配列番号42は、図6において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A22のN末端のDNA配列を示す。
配列番号43は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B44の遺伝子の、コドンを最適化されたDNA配列を示し、この配列において、N末端システインをコードするコドンは、配列番号11と比較して欠失している。プラスミドpDK087は、配列番号43を含む。
配列番号44は、脂質化されていない髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B44のアミノ酸配列を示す。配列番号44は配列番号21に同一であり、配列番号21の1位のN末端システインが欠失している。配列番号44は、例えば配列番号43によってコードされる。
配列番号45は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B09の遺伝子の、コドンを最適化されたDNA配列を示し、この配列において、N末端システインをコードするコドンは欠失しており、配列は、配列番号8と比較して、さらなるGly/Ser領域をコードするコドンを含む。プラスミドpEB063は、配列番号45を含む。
配列番号46は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B09の遺伝子の、コドンを最適化されたDNA配列を示し、この配列において、N末端システインをコードするコドンは、配列番号8と比較して欠失している。プラスミドpEB064は、配列番号46を含む。
配列番号47は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B09の遺伝子の、コドンを最適化されたDNA配列を示し、この配列において、N末端システインをコードするコドンは、配列番号8と比較して欠失している。プラスミドpEB065は、配列番号47を含む。
配列番号48は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B09の遺伝子のDNA配列を示し、この配列において、N末端システインをコードするコドンは、配列番号8と比較して欠失している。プラスミドpLA134は、配列番号48を含む。
配列番号49は、脂質化されていない髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B09のアミノ酸配列を示す。配列番号49は配列番号18に同一であり、配列番号18の1位のN末端システインが欠失している。配列番号49は、例えば、配列番号46、配列番号47、および配列番号48からなる群から選択されるDNA配列によってコードされる。
配列番号50は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B09のアミノ酸配列を示し、この配列において、N末端システインをコードするコドンは欠失しており、配列は、配列番号18と比較して、さらなるGly/Ser領域をコードするコドンを含む。配列番号50は、例えば配列番号45によってコードされる。
配列番号51は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B44の遺伝子のDNA配列を示し、この配列において、N末端システインをコードするコドンは、配列番号11と比較して欠失している。プラスミドpLN056は、配列番号51を含む。
配列番号52は、図6において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B22のN末端のDNA配列を示す。
配列番号53は、図6において示される、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B09のN末端のDNA配列を示す。
配列番号54は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A05の遺伝子のDNA配列を示し、この配列において、N末端システインをコードするコドンは、配列番号2と比較して欠失している。
配列番号55は、脂質化されていない髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A05のアミノ酸配列を示す。配列番号55は配列番号13に同一であり、配列番号13の1位のN末端システインが欠失している。配列番号55は、例えば配列番号54によってコードされる。
配列番号56は、実施例7において示される、セリン−グリシン反復配列のアミノ酸配列を示す。
配列番号57は、脂質化されていない髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B01のアミノ酸配列を示す。配列番号57は配列番号58に同一であり、配列番号58の1位のN末端システインが欠失している。
配列番号58は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B01のアミノ酸配列を示す。
配列番号59は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B15のアミノ酸配列を示す。
配列番号60は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B16のアミノ酸配列を示す。
配列番号61は、配列番号19のアミノ酸位置1のN末端Cysのコドンがグリシンのコドンで置き換えられている、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B22のDNA配列を示す。
配列番号62は、配列番号19のアミノ酸位置1のN末端Cysがグリシンで置き換えられている、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B22のアミノ酸配列を示す。
配列番号63は、配列番号15のアミノ酸位置1のN末端Cysのコドンがグリシンのコドンで置き換えられている、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A22のDNA配列を示す。
配列番号64は、配列番号15のアミノ酸位置1のN末端Cysがグリシンで置き換えられている、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A22のアミノ酸配列を示す。
配列番号65は、ピルビル化されていない非脂質化A05ポリペプチドをコードする、コドンを最適化されたDNA配列(pEB042)を示す。
配列番号66は、脂質化されていない髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A12のアミノ酸配列を示す。配列番号66は配列番号14に同一であり、配列番号14の1位のN末端システインが欠失している。配列番号66は、例えば配列番号67によってコードされる。
配列番号67は、ピルビル化されていない非脂質化A12ポリペプチドの、コドンを最適化されたDNA配列を示す。
配列番号68は、脂質化されていない髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A22のアミノ酸配列を示す。配列番号68は配列番号15に同一であり、配列番号15の1位のN末端システインが欠失している。配列番号68は、例えば配列番号69によってコードされる。
配列番号69は、ピルビル化されていない非脂質化A22ポリペプチドの、コドンを最適化されたDNA配列を示す。
配列番号70は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)血清群B、2086変異体A62のアミノ酸配列を示す。
配列番号71は、脂質化されていない髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A62のアミノ酸配列を示す。配列番号71は配列番号70に同一であり、配列番号70の1位のN末端システインが欠失している。
配列番号72は、配列番号71のコドンを最適化されたDNA配列を示す。
配列番号73は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A05遺伝子の、コドンを最適化されたDNA配列(pDK086)を示し、配列番号2と比較してN末端システインをコードするコドンが欠失している。
配列番号74は、アミノ酸位置1にN末端Cysを含む、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A29のアミノ酸配列を示す。
配列番号75は、脂質化されていない髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B22のアミノ酸配列を示す。配列番号75は配列番号19に同一であり、配列番号19の1位のN末端システインが欠失している。
配列番号76は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A05のアミノ酸配列を示す。
配列番号77は、脂質化されていない髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体A05のアミノ酸配列を示す。配列番号77は配列番号19に同一であり、配列番号76の1位のN末端システインが存在しない。
配列番号78は、図9A〜9Bに示すコンセンサス配列のアミノ酸配列を示す。
配列番号79は、配列番号78の1位のCysが存在しない以外は、配列番号78に同一である。
配列番号80は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B24のアミノ酸配列を示す。配列番号80は配列番号20に同一であり、配列番号20の1位のN末端システインが欠失している。
配列番号81は、髄膜炎菌(N.meningitidis)、血清群B、2086変異体B24のアミノ酸配列を示す。配列番号81は配列番号20に同一であり、配列番号20の1〜3位の残基が欠失している。
Claims (51)
- 配列の最初の20個のアミノ酸残基がシステインを含まない、配列番号71に少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含む単離されたポリペプチド。
- 配列番号71の1〜184位のアミノ酸配列を含む、請求項1に記載の単離されたポリペプチド。
- 配列番号71の185〜254位のアミノ酸配列からの少なくとも6個の連続したアミノ酸を含む、請求項1に記載の単離されたポリペプチド。
- ピルビル化されていない、請求項1に記載の単離されたポリペプチド。
- 脂質化されていない、請求項1に記載の単離されたポリペプチド。
- 免疫原性である、請求項1に記載の単離されたポリペプチド。
- アミノ酸配列が配列番号71に記載の配列からなる、請求項1に記載の単離されたポリペプチド。
- 請求項1〜7のいずれかに記載のポリペプチドを含む免疫原性組成物。
- A12ポリペプチドをさらに含む、請求項8に記載の免疫原性組成物。
- A05ポリペプチドをさらに含む、請求項8に記載の免疫原性組成物。
- B09ポリペプチドをさらに含む、請求項8に記載の免疫原性組成物。
- B44ポリペプチドをさらに含む、請求項8に記載の免疫原性組成物。
- A12、B09、およびB44ポリペプチドをさらに含む、請求項8に記載の免疫原性組成物。
- A05、A12、B09、およびB44ポリペプチドをさらに含む、請求項8に記載の免疫原性組成物。
- それぞれのポリペプチドが脂質化されていない、請求項9〜14のいずれかに記載の免疫原性組成物。
- それぞれのポリペプチドがピルビル化されていない、請求項9〜14のいずれかに記載の免疫原性組成物。
- 配列番号71に記載のアミノ酸配列からなる単離されたポリペプチドをコードする単離された核酸配列。
- 配列番号72を含む、請求項17に記載の単離された核酸配列。
- 髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群B由来の単離されたピルビル化されていない非脂質化ORF2086ポリペプチドと、
a)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Aの莢膜糖のコンジュゲート
b)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Cの莢膜糖のコンジュゲート
c)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群W135の莢膜糖のコンジュゲート、および
d)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Yの莢膜糖のコンジュゲート
から選択される少なくとも1つのコンジュゲートとを含む免疫原性組成物。 - a)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Aの莢膜糖のコンジュゲート
b)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Cの莢膜糖のコンジュゲート
c)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群W135の莢膜糖のコンジュゲート、および
d)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Yの莢膜糖のコンジュゲート
から選択される少なくとも2つのコンジュゲートを含む、請求項19に記載の免疫原性組成物。 - a)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Aの莢膜糖のコンジュゲート
b)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Cの莢膜糖のコンジュゲート
c)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群W135の莢膜糖のコンジュゲート、および
d)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Yの莢膜糖のコンジュゲート
から選択される少なくとも3つのコンジュゲートを含む、請求項19に記載の免疫原性組成物。 - 髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Aの莢膜糖のコンジュゲート、髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Cの莢膜糖のコンジュゲート、髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群W135の莢膜糖のコンジュゲート、および髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Yの莢膜糖のコンジュゲートを含む、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドがサブファミリーAポリペプチドである、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドがサブファミリーBポリペプチドである、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化A05である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化A12である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化A22である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化B01である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化B03である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化B09である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化B15である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化B16である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化B22である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化B24である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化B44である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、ピルビル化されていない非脂質化A62である、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- ポリペプチドが、配列番号44、配列番号49、配列番号55、配列番号66、配列番号68、配列番号71、配列番号76、配列番号77、配列番号80、配列番号81、および配列番号75からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項19に記載の免疫原性組成物。
- 哺乳動物において髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)に対する免疫応答を誘導する方法であって、髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群B由来の単離されたピルビル化されていない非脂質化ORF2086ポリペプチドと、
a)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Aの莢膜糖のコンジュゲート、
b)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Cの莢膜糖のコンジュゲート、
c)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群W135の莢膜糖のコンジュゲート、および
d)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Yの莢膜糖のコンジュゲート
から選択される少なくとも1つのコンジュゲートとを含む、効果的な量の免疫原性組成物を哺乳動物に投与することを含む方法。 - 哺乳動物において髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Cに対する殺菌性抗体を誘発する方法であって、髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群B由来の単離されたピルビル化されていない非脂質化ORF2086ポリペプチドを含む、効果的な量の免疫原性組成物を哺乳動物に投与することを含む方法。
- ポリペプチドが、配列番号71に記載のアミノ酸配列、または1位のシステインが欠失している、配列番号12、配列番号13、配列番号14、配列番号15、配列番号16、配列番号17、配列番号18、配列番号19、配列番号20、および配列番号21からなる群から選択されるアミノ酸配列からなる、請求項39に記載の方法。
- 免疫原性組成物が、
a)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Aの莢膜糖のコンジュゲート、
b)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Cの莢膜糖のコンジュゲート、
c)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群W135の莢膜糖のコンジュゲート、および
d)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Yの莢膜糖のコンジュゲート
から選択される少なくとも1つのコンジュゲートをさらに含む、請求項39に記載の方法。 - 哺乳動物において髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Yに対する殺菌性抗体を誘発する方法であって、髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群B由来の単離されたピルビル化されていない非脂質化ORF2086ポリペプチドを含む、効果的な量の免疫原性組成物を哺乳動物に投与することを含む方法。
- ポリペプチドが、配列番号71に記載のアミノ酸配列、または1位のシステインが欠失している、配列番号12、配列番号13、配列番号14、配列番号15、配列番号16、配列番号17、配列番号18、配列番号19、配列番号20、および配列番号21からなる群から選択されるアミノ酸配列からなる、請求項42に記載の方法。
- 免疫原性組成物が、
a)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Aの莢膜糖のコンジュゲート、
b)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Cの莢膜糖のコンジュゲート、
c)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群W135の莢膜糖のコンジュゲート、および
d)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Yの莢膜糖のコンジュゲート
から選択される少なくとも1つのコンジュゲートをさらに含む、請求項42に記載の方法。 - 哺乳動物において髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)に対する殺菌性抗体を誘発する方法であって、髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群B由来の単離されたピルビル化されていない非脂質化ORF2086ポリペプチドと、
a)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Aの莢膜糖のコンジュゲート、
b)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Cの莢膜糖のコンジュゲート、
c)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群W135の莢膜糖のコンジュゲート、および
d)髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)血清群Yの莢膜糖のコンジュゲート
から選択される少なくとも1つのコンジュゲートとを含む、効果的な量の免疫原性組成物を哺乳動物に投与することを含む方法。 - 配列番号71に少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含む単離されたポリペプチド。
- 配列が配列番号71を含む、請求項46に記載のポリペプチド。
- 脂質化されていない、請求項46に記載のポリペプチド。
- ピルビル化されていない、請求項46に記載のポリペプチド。
- 脂質化されておらず、かつピルビル化されていない、請求項46に記載のポリペプチド。
- 免疫原性である、請求項46に記載のポリペプチド。
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