JP2014172896A - 毛髪用組成物 - Google Patents
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Landscapes
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Abstract
【解決手段】スイレン科(Nympaeaceae)ハス属(Nelumbo)の植物の種子を微生物で発酵させて得られる発酵物及び/又はローヤルゼリーを微生物で発酵させて得られる発酵物を含む毛髪用組成物であって、当該毛髪用組成物は毛乳頭細胞賦活作用及び/又はインシュリン様成長因子−1(IGF−1)合成促進作用を有する。
【選択図】なし
Description
また、本発明において、発酵に用いる微生物は、麹菌、納豆菌、酵母及び乳酸菌から選ばれたものであることが好ましい。
また、本発明の毛髪用組成物は、イネ科タケ亜科の竹の若芽であるタケノコの抽出物をさらに含むことでもよい。
また、本発明は上記毛髪用組成物を配合した毛髪化粧料である。
なお、本発明において、化粧料なる文言は、所謂医薬部外品を含む広義の意味で用いるものとする。
Gaertner)或いはアメリカキバス(Nelumbo Lutea Pers.)などが挙げられるが、それらのうちでも、ハス(Nelumbo nucifera Gaertner)の使用が好ましい。
ブレビス(L. brevis)、ラクトバシルス カゼイ(L. casei)等のラクトバシルス(Lactobacillus)属の乳酸菌;カルノバクテリウム ディバージェンス(Carnobacterium
divergens)、カルノバクテリウム ピシコーラ(Carnobacterium piscicola)等のカルノバクテリウム(Carnobacterium)属の乳酸菌;ロイコノストック メセンテロイズ(Leuconostoc
mesenteroides)、ロイコノストック シトレウム(Leuconostoc citreum)等のロイコノストック(Leuconostoc)属の乳酸菌; ストレプトコッカス フェーカリス(Streptococcus
faecalis)、ストレプトコッカス ピオジェネス(Streptococcus pyogenes)等のストレプトコッカス属の乳酸菌;エンテロコッカス
カゼリフラバス(Enterococcus caseliflavus)、エンテロコッカス サルフレウス(Enterococcus sulfreus)等のエンテロコッカス(
Enterococcus)属の乳酸菌;ラクトコッカス プランタラム(Lactococcus
plantarum) ラクトコッカス ラフィノラクティス(Lactococcus rafinolactis)等のラクトコッカス属の乳酸菌;ヴェイセラ
コンフューザ(Weissella confusa)、ヴェイセラ カンドウレリ(Weissella kandleri)等のヴェイセラ属の乳酸菌;アトポビウム ミニュタム(Atopobium minutum)、アトポビウム パービュラス(Atopobiumparvulus)等のアトポビウム(Atopobium)属の乳酸菌;バゴコッカス フルビアリス(Vagococcus
fluvialis)、バゴコッカス サーモニナラム(Vagococcus salmoninarum)等のバゴコッカス(Vagococcus)属の乳酸菌;ペディオコッカス ダムノサス(Pediococcus
damnosus)、ペディオコッカス ペントサセウス(Pediococcus pentosaceus)等のペディオコッカス(Pediococcus)属の乳酸菌等が挙げられる。それら乳酸菌のうちでも、得られる発酵物の皮膚生理活性の観点とさらに極端な嫌気性でなく取り扱い易いという点から、ラクトバシルス
プランタラム(Lactobacillus plantarum)の使用が最も好ましい。
フラバス(Aspergillus flavus)、アスペルギルス ポリオキソジェネス(Aspergillus polyoxogenes)、アスペルギルス ソーヤ(Aspergillus
sojae)等の黄麹菌、アスペルギルス アワモリ(Aspergillus awamori)、アスペルギルス
カワウチ(Aspergillus kawauchii)、アスペルギルス ウサミ(Aspergillus usami)、
アスペルギルス ニガー(Aspergillus niger)等の黒麹菌、モナスカス アンカ(Monascus
anka)、モナスカス ピロサス(Monascus pilosus)等の紅麹菌などが挙げられる。それらのうちでも、得られる発酵物の皮膚生理活性の観点とさらに発酵液の着色や発酵臭が比較的少ないことから、アスペルギルス
オリゼー(Aspergillus oryzae)が最も好ましい。
circulans)等のバシルス属の細菌などが挙げられる。なかでも、食品に広く使用されており、安全性が高い点でバシルス ナットー(Bacillus natto)が最も好ましい。
アワモリ(Saccharomyces awamori)、サッカロミセス チェバリエリ(Saccharomyces chevalieri)、サッカロミセス カールスバージェンシス(Saccharomyces carlsbergensis)、サッカロミセス バヨナス(Saccharomyces
bayon us)等のサッカロミセス属の酵母、トルラスポラ デルブルエキ(Torulaspora
delbruekii)、トルラスポラ ファーメンタチ(Torulaspora fermentati)、トルラスポラ
ロゼイ(Torulaspora rosei)等のトルラスポラ属の酵母、ジゴサッカロミセス ローキシ(Zygosaccharomyces rouxii)、ジゴサッカロミセス ソーヤ(Zygosacchar
omyces soya)、ジゴサッカロミセス サケ(Zygosaccharomyces sake)、ジゴサッカロミセス
ミソ(Zygosaccharomyces miso)、ジゴサッカロミセス ラクティス(Zygosaccharomyces lactis)等のジゴサッカロミセス属の酵母、カンディダ ベルサチリス(Candida versatilis)、カンディダ エチェリシイ(Candida
etchellsii)、カンディダ ケフィール(Candida kefyr)、カンディダ サケ(Candida sake)、カンディダ スコッティ(Candida scottii)等のカンディダ属の酵母、オーレオバシディウム
プルランス(Aureobasidium Pullulans)、オーレオバシディウム マンソニー(Aureobasidium mansonii)、オーレオバシディウム マイクロスティクタム(Aureobasideium microstictum)等のオーレオバシディウム属の酵母などが挙げられる。それらのうちでも、食品に最も広く利用され、発酵力が強いという点からサッカロミセス
セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)が最も好ましい。
ミクロスポラス チネンシス(Rhizopus microsporus chinensis)、リゾプス ミクロスポラス
オリゴスポラス(Rhizopus microsporus oligosporus)、リゾプス ニベウス(Rhizopus niveus)、リゾプス オリゼー(Rhizopus oryzae)等のリゾプス菌の真菌(カビ)が挙げられる。なかでも、インドネシアをはじめ東南アジア地域で発酵食品に広く使用されており、安全性が高い点で、リゾプス
ミクロスポラス オリゴスポラス(Rhizopus microsporus oligosporus)やリゾプス オリゼー(Rhizopus oryzae)が最も好ましい。
微生物の接種量は107〜108個/mLが適量である。接種量が上記の範囲より多くなっても発酵の進行時間は殆ど変わらず、一方上記の範囲より少なくなると発酵完了までに長時間を要することとなって好ましくない。
bambusoides) 、ハチク(Phyllostachys nigra)、ホテイチク(Phyllostachys aurea)、キッコウチク(Phyllostachys
heterocycla)、ホウライチク(Bambusa multiplex)、ナリヒラダケ(Semiarundinaria fastuosa)、チシマザサ(ネマガリダケ)(Sasa
kurilensis)、トウチク(Sinobambusa tootsik)、シホウチク (Chimonobambusa quadrangularis)、カンチク(Chimonobambusa
marmorea)、ヤダケ (Pseudosasa japonica)、メダケ(Pleioblastus simonii)が挙げられるが、本願発明はこれに限るものではない。
ハスの種子(渋皮を除去したもの)100gを粉砕し、精製水1900gを加えて懸濁液を調製し、加熱殺菌した。この懸濁液に乳酸菌(ラクトバチルス プランタラム)を108個/mL接種し、窒素気流下に37℃で3日間静置培養した。培養終了後加熱殺菌し、培養液をろ過して、ハス種子の乳酸菌発酵物溶液1400g(固形分濃度2.5%)を得た。
発酵素材としてハスの種子の粉砕物に代えてハスの全草100gの細切物を用いる他は製造例1と同様にして、ハスの全草の乳酸菌発酵物溶液1150g(固形分濃度1.2%)を得た。
微生物として、乳酸菌(ラクトバチルス プランタラム)に代えて麹菌であるアスペルギルス オリゼーを用いる他は製造例1と同様にして、ハス種子の麹菌発酵物溶液1400g(固形分濃度 2.4%)を得た。
微生物として、乳酸菌(ラクトバチルス プランタラム)に代えて納豆菌であるバシルス ナットーを用いる他は製造例1と同様にして、ハス種子の納豆菌発酵物溶液1380g(固形分濃度2.6%)を得た。
微生物として、乳酸菌(ラクトバチルス
プランタラム)に代えて酵母であるサッカロミセス セレビシエを用いる他は製造例1と同様にしてハス種子の酵母発酵物溶液1405g(固形分濃度2.1%)を得た。
凍結乾燥ローヤルゼリー30gを粉砕し、精製水970gを加えて懸濁液を調製し、加熱殺菌した。この懸濁液に乳酸菌(ラクトバチルス プランタラム)を108個/mL接種し、37℃で3日間静置培養した。培養終了後培養液を加熱殺菌し、室温まで冷却後ろ過して、ローヤルゼリーの乳酸菌発酵物溶液850gを得た(固形分濃度2.2%)。
乳酸菌に代えて麹菌(アスペルギルス オリゼー)を用いる他は製造例1と同様にして、ローヤルゼリーの麹菌発酵液840gを得た(固形分濃度2.0%)。
乳酸菌に代えて納豆菌(バシルス ナットー)を用いる他は製造例1と同様にして、ローヤルゼリーの納豆菌発酵液845g(固形分濃度2.1%)を得た。
乳酸菌に代えて酵母(サッカロミセス
セレビシエ)を用いる他は製造例1と同様にして、ローヤルゼリー発酵液880gを得た(固形分濃度2.3%)。
モウソウチク(Phyllostachys pubescens)のタケノコ(地上に芽が出る前のもの)の皮の乾燥粉砕物50gに精製水500gおよび乳酸0.45gを混合し、静置した状態で、40℃下において4時間抽出を行い、抽出物溶液381gを得た。その後、得られた抽出物溶液をろ過し、さらに、ろ過した溶液に対して0.5%の活性炭(フタムラ化学株式会社製)を添加して活性炭処理を1時間行い、淡褐色のタケノコの皮の抽出物溶液332gを得た(pH6.0、固形分濃度1.2%)。
タケノコとして製造例1のモウソウチクに代えてマダケ(Phyllostachys bambusoides)のタケノコ(地上部が約30cmのもの)を用いるほかは、製造例10と同様にして抽出物溶液を調製し、淡褐色のタケノコの皮の抽出物溶液335gを得た(pH6.0、固形分濃度1.1%)
マダケ(Phyllostachys bambusoides)のタケノコ(地上部が約30cmのもの)の可食部の乾燥粉砕物50gに精製水500gおよび乳酸0.45gを混合し、静置した状態で、40℃下において4時間抽出を行い、抽出物溶液384gを得た。その後、得られた抽出物溶液をろ過し、さらに、ろ過した溶液に対して0.5%の活性炭(フタムラ化学株式会社製)を添加して活性炭処理を1時間行い、淡褐色のタケノコの可食部の抽出物溶液345gを得た(pH6.0、固形分濃度1.4%)。
ハスの種子(渋皮を除去したもの)200gを粉砕し、精製水1900gを加えて懸濁液を調製し、80℃で2時間加熱した。この液をろ過して、ハス種子抽出物溶液1340g(固形分濃度2.0%)を得た。
ハスの種子(渋皮を除去したもの)100gを粉砕し、精製水1900gを加えて懸濁液を調製し、加熱殺菌した。この液にパパイン1.0gを加えた後、pHを7.5に調整し、45℃に15時間保持した。この液をろ過して、ハス種子酵素分解物溶液1400g(固形分濃度2.1%)を得た。
凍結乾燥ローヤルゼリー60gを粉砕し、精製水940gを加えて懸濁液を調製し、加熱殺菌した。室温まで冷却後この液をろ過して、ローヤルゼリー抽出液710gを得た(固形分濃度2.0%)。
凍結乾燥ローヤルゼリー30gを粉砕し、精製水970gを加えて懸濁液を調製し、加熱殺菌した。この懸濁液にグルコアミラーゼ0.3g、パパイン0.3g及びペクチナーゼ0.3gを加えた後、37℃で3日間酵素加水分解を行った。加水分解終了後酵素を加熱失活させ、室温まで冷却後ろ過して、ローヤルゼリーの酵素加水分解抽出液690gを得た(固形分濃度2.2%)。
[成分] 部
l−メントール 0.8
製造例1の発酵物溶液 2.0
1,3−ブチレングリコール 10.0
フェノキシエタノール 0.2
エタノール 20.0
精製水 全量が100部となる量
上記の成分を十分攪拌混合して育毛料を得た。
処方例1の成分中、製造例1の発酵物溶液に代えて製造例2の発酵物溶液を用いるほかは処方例1と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
処方例1の成分中、製造例1の発酵物溶液に代えて製造例6の発酵物溶液を用いるほかは処方例1と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
[成分] 部
l−メントール 0.8
製造例1の発酵物溶液 1.0
製造例6の発酵物溶液 1.0
1,3−ブチレングリコール 10.0
フェノキシエタノール 0.2
エタノール 20.0
精製水 全量が100部となる量
上記の成分を十分攪拌混合して育毛料を得た。
処方例4の成分中、製造例1の発酵物溶液に代えて製造例10の抽出物溶液を用いるほかは処方例4と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
処方例4の成分中、製造例6の発酵物溶液に代えて製造例11の抽出物溶液を用いるほかは処方例4と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
[成分] 部
l−メントール 0.8
製造例1の発酵物溶液 1.0
製造例6の発酵物溶液 1.0
製造例10の抽出物溶液 1.0
1,3−ブチレングリコール 10.0
フェノキシエタノール 0.2
エタノール 20.0
精製水 全量が100部となる量
上記の成分を十分攪拌混合して育毛料を得た。
処方例7の成分中、製造例10の抽出物溶液に代えて製造例11の抽出物溶液を用いるほかは処方例7と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
処方例7の成分中、製造例10の抽出物溶液に代えて製造例12の抽出物溶液を用いるほかは処方例7と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
[成分] 部
グリチルリチン酸ジカリウム 0.1
モノニトログアヤコールナトリウム 0.02
塩酸ピリドキシン 0.03
アデノシン 1.0
製造例1の発酵物溶液 1.0
トリメチルグリシン 0.5
乳酸 0.2
1,3−ブチレングリコール 10.0
フェノキシエタノール 0.2
ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油 0.4
L−アルギニン 適量
エタノール 20
精製水 全量が100部となる量
上記の成分を十分攪拌混合して育毛料を得た。
処方例10の成分中、製造例1の発酵物溶液に代えて製造例2の発酵物溶液を用いるほかは処方例10と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
処方例10の成分中、アデノシンに代えて、ミノキシジルを用いるほかは処方例10と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
処方例10の成分中、アデノシンに代えて6‐ベンジルアミノプリンを用いるほかは処方例10と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
処方例10の成分中、製造例1の発酵物溶液に代えて製造例6の発酵物溶液を用い、かつ。アデノシンに代えて6‐ベンジルアミノプリンを用いるほかは処方例1と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
[A成分] 部
流動パラフィン 15.0
ワセリン 15.0
サラシミツロウ 2.0
防腐剤 0.1
香料 0.1
[B成分]
製造例1で得られた発酵物溶液 1.0
製造例6で得られた発酵物溶液 1.0
6‐ベンジルアミノプリン 1.0
カルボキシビニルポリマー 0.1
キサンタンガム 0.1
グリセリン 5.0
1、3−ブチレングリコール 2.0
ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油 3.0
キレート剤 0.1
色素 0.01
精製水 全量が100部となる量 [C成分]
苛性ソーダ 0.05 上記のA成分とB成分をそれぞれ80℃以上に加熱溶解した後、攪拌しながらA成分をB成分に加え、ホモジナイザーを用いて乳化した。これを30℃まで冷却した後、C成分を加えてさらに攪拌混合して乳液を得た。
[A成分] 部
N−ヤシ油脂肪酸メチルタウリンナトリウム 10.0
ポリオキシエチレン(3)アルキルエーテル硫酸ナトリウム 20.0
ラウリルジメチルアミノ酢酸ベタイン 10.0
ヤシ油脂肪酸ジエタノールアミド 4.0
メチルパラベン 0.1
[B成分]
クエン酸 0.1
製造例1の発酵物溶液 2.0
1,3−ブチレングリコール 2.0
精製水 全量が100部となる量
A成分及びB成分をそれぞれ80℃に加温して均一に溶解した後、A成分にB成分を加え、攪拌を続けて室温まで冷却してヘアシャンプーを得た。
処方例16の成分中、製造例1の発酵物溶液に代えて製造例2の発酵物溶液を用いるほかは処方例16と同様にしてヘアシャンプーを得た。
処方例16の成分中、製造例1の発酵物溶液に代えて製造例6の発酵物溶液を用いるほかは処方例16と同様にしてヘアシャンプーを得た。
[A成分] 部
N−ヤシ油脂肪酸メチルタウリンナトリウム 10.0
ポリオキシエチレン(3)アルキルエーテル硫酸ナトリウム 20.0
ラウリルジメチルアミノ酢酸ベタイン 10.0
ヤシ油脂肪酸ジエタノールアミド 4.0
メチルパラベン 0.1
[B成分] 部
クエン酸 0.1
製造例1の発酵物溶液 1.0
製造例6の発酵物溶液 1.0
1,3−ブチレングリコール 2.0
精製水 全量が100部となる量
A成分及びB成分をそれぞれ80℃に加温して均一に溶解した後、A成分にB成分を加え、攪拌を続けて室温まで冷却してヘアシャンプーを得た。
処方例19の成分中、製造例1の発酵物溶液に代えて製造例10の抽出物溶液を用いるほかは処方例19と同様にしてヘアシャンプーを得た。
処方例19の成分中、製造例6の発酵物溶液に代えて製造例11の抽出物溶液を用いるほかは処方例19と同様にしてヘアシャンプーを得た。
[A成分] 部
N−ヤシ油脂肪酸メチルタウリンナトリウム 10.0
ポリオキシエチレン(3)アルキルエーテル硫酸ナトリウム 20.0
ラウリルジメチルアミノ酢酸ベタイン 10.0
ヤシ油脂肪酸ジエタノールアミド 4.0
メチルパラベン 0.1
[B成分]
クエン酸 0.1
製造例1の発酵物溶液 1.0
製造例6の発酵物溶液 1.0
製造例10の抽出物溶液 1.0
1,3−ブチレングリコール 2.0
精製水 全量が100部となる量
A成分及びB成分をそれぞれ80℃に加温して均一に溶解した後、A成分にB成分を加え、攪拌を続けて室温まで冷却してヘアシャンプーを得た。
処方例22の成分中、製造例10の抽出物溶液に代えて製造例11の抽出物溶液を用いるほかは処方例22と同様にして.ヘアシャンプーを得た。
処方例22の成分中、製造例10の抽出物溶液に代えて製造例12の抽出物溶液を用いるほかは処方例22と同様にして.ヘアシャンプーを得た。
[A成分] 部
ポリオキシエチレン(10)硬化ヒマシ油 1.0
塩化ジステアリルジメチルアンモニウム 1.5
塩化ステアリルトリメチルアンモニウム 2.0
2−エチルヘキサン酸グリセリル 1.0
セタノール 3.2
ステアリルアルコール 1.0
メチルパラベン 0.1
[B成分]
製造例1の発酵物溶液 2.0
1,3−ブチレングリコール 5.0
精製水 全量が100部となる量
A成分及びB成分をそれぞれ80℃に加温して均一に溶解した後、A成分にB成分を加え、攪拌を続けて室温まで冷却してヘアリンスを得た。
処方例25の成分中、製造例1の発酵物溶液に代えて製造例2の発酵物溶液を用いるほかは処方例25と同様にしてヘアリンスを得た。
処方例25の成分中、製造例1で得られた発酵物溶液に代えて製造例6で得られた発酵物溶液を用いるほかは処方例25と同様にしてヘアリンスを得た。
製造例1の発酵物溶液に代えて比較製造例1の抽出物溶液を用いるほかは、処方例1と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
製造例1の発酵物溶液に代えて比較製造例3の抽出物溶液を用いるほかは、処方例1と同様にして育毛用ヘアトニックを得た。
製造例1の発酵物溶液に代えて比較製造例2の抽出物溶液を用いるほかは、処方例16と同様にしてヘアシャンプーを得た。
製造例1の発酵物溶液に代えて比較製造例4の抽出物溶液を用いるほかは、処方例16と同様にしてヘアーシャンプーを得た。
ヒト毛乳頭細胞ACI3047を、無血清CSC培地を入れた96穴マイクロプレートに1×104個/穴播種し、37℃,5.0%CO2の条件下に1日間プレ培養した後、製造例1〜5の発酵物溶液を試料溶液として培地に添加し、同条件でさらに3日間培養した。ここで、各発酵物は、培地全量に対して溶液濃度としての終濃度が1.25%、2.5%、5.0%となるように培地に添加した。次に、培地を除去し、0.03%のMTTを添加して37℃に1時間保持した後、生成したホルマザンをイソプロパノールで抽出し、マイクロプレートリーダー(Model 450、バイオラッド社製)を用いて波長570−630nmでMTT値を測定した。また、比較対照として、比較製造例1の抽出物溶液及び比較製造例2の酵素加水分解物溶液についても、同濃度の試験を行った。また、試料溶液に代えてPBS(-)を添加した試料無添加の場合(Control)についても上記と同様の操作を行い、ここに得られたMTT値に対する各試料添加時のMTT値の相対値を求め、毛乳頭細胞MTT活性率(%)とした。また、試験系が正常に機能しているかを確認するために、試料溶液の代わりに陽性対照として100mMのグルコースを添加した場合についても、同様の試験を行った。
[表1]
表1に示すように、本発明に係る製造例1〜5の発酵物溶液は、濃度依存的に格段にすぐれた毛乳頭細胞賦活効果を示した。これに対して、非発酵物である比較製造例1の抽出物溶液、及び比較製造例2の酵素加水分解物溶液は、毛乳頭細胞賦活効果を示さなかった。なお、陽性対照であるグルコースも効果を示したことから、本試験系が正常に行われたことも確認された。
ヒト毛乳頭細胞ACI3047を、無血清CSC培地を入れた96穴マイクロプレートに1×104個/穴播種し、37℃,5.0%CO2の条件下に1日間プレ培養した後、製造例6〜9の発酵物溶液を試料溶液として培地に添加し、同条件でさらに3日間培養した。ここで、各発酵物は、培地全量に対して溶液濃度としての終濃度が2.0%となるように培地に添加した。次に、各培養上清をとり、Human
IGF−1 ELISA KIT(R&D Systems,USA)を用いて、培養上清中のIGF−1の測定を行った。また、比較対照として、比較製造例3の抽出物溶液及び比較製造例4の酵素加水分解物溶液についても、同濃度の試験を行った。試料溶液に代えてPBS(-)を添加した試料無添加の場合(対照)についても上記と同様の操作を行い、ここに得られたIGF−1量に対する各試料添加時のIGF−1量の相対値を求め、IGF−1合成促進率(%)とした。また、試験系が正常に機能しているかを確認するために、試料溶液の代わりに陽性対照としてIGF−1合成促進効果を有することが知られているミノキシジル(200μM)を添加した場合についても、同様の試験を行った。
[表2]
表2に示すように、本発明に係る製造例6〜9の発酵物溶液は、すぐれたIGF−1合成促進効果を示した。これに対して、非発酵物である比較製造例3の抽出物溶液、及び比較製造例4の酵素加水分解物溶液は、IGF−1合成促進効果を示さなかった。なお、陽性対照であるミノキシジルも効果を示したことから、本試験系が正常に行われたことも確認された。IGF−1は、局所に投与することで、当該局所のアポトーシス抑制作用、代謝亢進(酸素消費亢進)作用、システインの取込促進作用等を有することから、本発明に係る製造例6〜9の発酵物によれば、IGF−1の合成促進により、毛乳頭細胞の代謝を活性化し、毛母細胞の成長を促進することができる。また、毛周期の退行期や休止期の発現に関与するアポトーシスを抑制することもできる。さらに、システインの取り込みを増加させることで、毛髪のコシやハリを高めることもできる。
処方例1,3〜7の各育毛用ヘアトニックを用いて、モニター試験を行った。男性型脱毛症患者である被験者(30〜65歳の男性)を20名毎のグループを分け、当該被験者を対象として、処方例1,3〜7の各育毛用ヘアトニックを頭部に1日2回連続6か月間塗布した後、毛髪の増加及び成長について、以下の判定基準に基づき評価を行った。
[評価判定基準]
A:毛髪が増加,成長した
B:毛髪がやや増加,成長した
C:変化なし
D:毛髪がやや減少,退行した
E:毛髪が減少,退行した
[表3]
表3に示すように、本発明に係る処方例1,3〜7の育毛用ヘアトニックは、比較処方例1、3の育毛用ヘアトニックと比較して、すぐれた育毛・養毛効果を示すことが確認された。
処方例16,18〜22のヘアシャンプーを用いて、モニター試験を行った。被験者(25〜65歳の女性)を20名毎のグループに分け、当該被験者を対象として、処方例16,18〜22のヘアシャンプーを頭部に1日1回連続30日間使用した後の髪のコシ、ハリについて、以下の判定基準に基づき評価を行った。
[コシの評価判定基準]
A:強くなった
B:やや強くなった
C:変化なし
D:やや弱くなった
E:弱くなった
[コシの評価判定基準]
A:増した
B:やや増した
C:変化なし
D:やや失われた
E:失われた
[表4]
表4に示すように、本発明に係る処方例16,18〜22のヘアシャンプーは、比較処方例2、4のヘアシャンプーと比較して、すぐれた髪のコシ、ハリの改善効果を示すことが確認された。
Claims (4)
- スイレン科(Nympaeaceae)ハス属(Nelumbo)の植物の種子を微生物で発酵させて得られる発酵物及び/又はローヤルゼリーを微生物で発酵させて得られる発酵物を含む毛髪用組成物。
- 発酵に用いる微生物が、麹菌、納豆菌、酵母及び乳酸菌から選ばれたものである請求項1に記載の毛髪用組成物。
- イネ科タケ亜科の竹の若芽であるタケノコの抽出物をさらに含むことを特徴とする請求項1又は2に記載の毛髪用組成物。
- 請求項1〜3のいずれか1項に記載の毛髪用組成物を配合した毛髪化粧料。
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