JP2013121359A - 胎児遺伝形質の非侵襲的検出 - Google Patents
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Abstract
【課題】胎児遺伝形質の非侵襲的検出方法を提供する。
【解決手段】胎児遺伝形質の非侵襲的検出を実施する方法であって、前記方法が、妊婦の血漿または血清サンプルをサイズ分離に付し、その中に存在する細胞外DNAが実質的に500またはそれ未満の塩基対を含むDNAから成る前記サンプルの分画を入手し、検出されるべき胎児遺伝形質を前記サンプル分画で決定することを含む前記非侵襲的検出を実施する方法。検出は、PCR（ポリメラーゼ連鎖反応）技術、リガンド連鎖反応もしくはプローブハイブリダイゼーション技術、または核酸アレーの手段によって実施することができる。
【選択図】なし
【解決手段】胎児遺伝形質の非侵襲的検出を実施する方法であって、前記方法が、妊婦の血漿または血清サンプルをサイズ分離に付し、その中に存在する細胞外DNAが実質的に500またはそれ未満の塩基対を含むDNAから成る前記サンプルの分画を入手し、検出されるべき胎児遺伝形質を前記サンプル分画で決定することを含む前記非侵襲的検出を実施する方法。検出は、PCR（ポリメラーゼ連鎖反応）技術、リガンド連鎖反応もしくはプローブハイブリダイゼーション技術、または核酸アレーの手段によって実施することができる。
【選択図】なし
Description
本発明は胎児の遺伝形質の非侵襲的検出に関する。
末梢血流中に循環細胞外DNAが存在することは十分に確認された現象である。本明細書では、妊婦の場合、細胞外胎児DNAが母親の循環系中に存在し、母親の血漿または血清で検出できることを示した。この循環系中の胎児遺伝物質を用いて、母親のゲノムには全く存在しない胎児遺伝子座の非常に信頼性の高い決定を、例えばPCR（ポリメラーゼ連鎖反応）技術によって実施することができることが実験によって示された。そのような胎児遺伝子座の例は、HDN（胎児および新生児の溶血性疾患）の危険性が高い妊娠における胎児RhD遺伝子、またはX染色体連鎖疾患（例えば血友病または脆弱X染色体症候群）の危険性が高い妊娠における胎児Y染色体特異的配列である。
しかしながら、より複雑な他の胎児遺伝子座（例えば異数性のような染色体異常、またはダウン症候群関連染色体異常、または遺伝性メンデル型遺伝疾患およびそれぞれ前記に附随する遺伝子マーカー、例えば単一遺伝子異常、例えば嚢胞性線維症または異常ヘモグロビン症）はより問題が多い。前記問題は、母系循環中細胞外DNAの大部分（一般的には＞90％）が母親由来であることによる。この膨大な母親由来の循環中細胞外DNAは、胎児の遺伝子異常、例えば染色体異常（例えば異数性）または遺伝性メンデル型遺伝疾患（例えば嚢胞性線維症または異常ヘモグロビン症）に中心的に関与するような異常を少量の循環中細胞外胎児DNAから決定することを（不可能でないとしても）困難にしている。
母親の血液中の循環中細胞外胎児DNAおよび循環中細胞外母系DNAの検査によって、驚くべきことに循環中細胞外胎児DNAの大半は約500塩基対またはそれ未満の比較的小さなサイズを有し、一方、循環中細胞外母系DNAの大半は約500塩基対よりも大きいサイズをもつことが示された。実際のところ、ある種の事例では、約500塩基対より小さい循環DNA物質はほぼ完全に胎児性のようである。したがって、母親の循環系の循環細胞外胎児DNAは、循環中細胞外母系DNA（約500塩基対より大きい）よりサイズが小さいことが判明した（約500塩基対またはそれ未満）。
この驚くべき発見は本発明の基礎を構成し、前記にしたがって、約500塩基対より小さい循環系細胞DNAフラグメントを分離することにより、膨大な循環系細胞外母系DNAから胎児DNAを濃縮することが可能である。
この選択的濃縮（約500塩基対またはそれ未満の循環DNAフラグメントのサイズによる識別を基にしている）によって、大半が胎児の細胞外DNAで構成された分画がもたらされる。これによって、胎児の遺伝形質（染色体異常（例えば異数性またはダウン症候群に附随する染色体異常）に中心的に関与するものを含む）、または遺伝性メンデル型遺伝疾患およびそれぞれ前記に附随する遺伝子マーカー（例えば単一遺伝子異常、例えば嚢胞性線維症または異常ヘモグロビン症）の分析が可能になる（前記を決定することは、不可能ではないとしても、これまでのところ上記で述べたように困難であることが確認されていた）。したがって、母親の循環中の細胞外胎児DNAのサイズによる分離は、父系検査が可能な父系遺伝による多形性現象を含む胎児の遺伝形質の非侵襲的検出を促進する。
500未満の塩基対をもつ細胞外胎児DNAがPCRによって濃縮された妊婦の血漿サンプルのゲル電気泳動による分離、および男子の胎児DNA（胎児Y染色体特異的配列）の検出が非特許文献１や非特許文献２に記載されている。
Clinical Chemistry、1999、45(9)巻、1570〜1572頁
The Australian & New Zealand Journal of Obsterics & Gynaecology、2003(Feb)、43(1)巻、10〜15頁
本発明は以下を提供する：
−妊婦の血漿または血清サンプル（好ましくは実質的に細胞を含まない）の分画であって、前記サンプルがサイズ分離に付された結果として、その中に存在する細胞外DNAが実質的に500またはそれ未満の塩基対を含むDNAから成る前記血漿または血清サンプル分画；
−胎児遺伝形質の非侵襲的検出を目的とする前記サンプル分画の使用；および
−胎児遺伝形質の非侵襲的検出を実施する方法であって、前記方法が、妊婦の血漿または血清サンプルをサイズ分離に付し、その中に存在する細胞外DNAが実質的に500またはそれ未満の塩基対を含むDNAから成る前記サンプルの分画を入手し、検出されるべき胎児遺伝形質を前記サンプル分画で決定することを含む前記非侵襲的検出を実施する方法。
−妊婦の血漿または血清サンプル（好ましくは実質的に細胞を含まない）の分画であって、前記サンプルがサイズ分離に付された結果として、その中に存在する細胞外DNAが実質的に500またはそれ未満の塩基対を含むDNAから成る前記血漿または血清サンプル分画；
−胎児遺伝形質の非侵襲的検出を目的とする前記サンプル分画の使用；および
−胎児遺伝形質の非侵襲的検出を実施する方法であって、前記方法が、妊婦の血漿または血清サンプルをサイズ分離に付し、その中に存在する細胞外DNAが実質的に500またはそれ未満の塩基対を含むDNAから成る前記サンプルの分画を入手し、検出されるべき胎児遺伝形質を前記サンプル分画で決定することを含む前記非侵襲的検出を実施する方法。
前記血清または血漿サンプルは好ましくは実質的に細胞を含まず、それは公知の方法、例えば遠心分離または無菌的ろ過によって達成することができる。
前記血清または血漿サンプルの細胞外DNAのサイズ分離は、以下を含む（ただしこれらに限定されない）多様な方法によって実施することができる：
−クロマトグラフィーまたは電気泳動、例えばアガロースもしくはポリアクリルアミドでのクロマトグラフィー、イオンペア逆相高速クロマトグラフィー（IP RP HPLC）、（K.H. Hecker, S.M. Green, K. Kobayashi、J. Biochem. Biophys. Methods 2000（Nov. 20）、46(1-2)：83〜93参照）、セルフコーティング低粘性ポリマーマトリックスでの毛細管電気泳動（M. Du, J.H. Flanagan Jr, B, Lin, Y. Ma、Electrophoresis 2003(Sep)、24(18)：3147〜53参照）、超小型化電気泳動装置での選択的抽出（R. Lin, D.T. Burke, MA. Burn, J. Chromatogr. A.、2003(Aug 29)、1020(2)：255〜68参照）、粘性低下ポリマーマトリックスによるマイクロチップ電気泳動（F. Xu, M. Jabasini, S. Liu, Y. Baba、Analyst.、2003(Jun)、128(6)：589〜92参照）、吸着膜クロマトグラフィー（MA. Teeters, S.E. Conrardy, B.L. Thomas, T.W. Root, EN. Lightfoot, J. Chromatogr. A.、2003(Mar 7)、989(1)：165〜73参照）など；
−密度勾配遠心分離（L. Raptis, HA. Menard, J. Clin、Invest.、1980(Dec)、66(6)：1391〜9参照）；および
−ナノテクノロジーを用いる方法、例えば超小型エントロピートラップアレー（J. Han, HG. Craighead、Analytical Chemistry、７４巻、No.2、2002(Jan 15)参照）など。
−クロマトグラフィーまたは電気泳動、例えばアガロースもしくはポリアクリルアミドでのクロマトグラフィー、イオンペア逆相高速クロマトグラフィー（IP RP HPLC）、（K.H. Hecker, S.M. Green, K. Kobayashi、J. Biochem. Biophys. Methods 2000（Nov. 20）、46(1-2)：83〜93参照）、セルフコーティング低粘性ポリマーマトリックスでの毛細管電気泳動（M. Du, J.H. Flanagan Jr, B, Lin, Y. Ma、Electrophoresis 2003(Sep)、24(18)：3147〜53参照）、超小型化電気泳動装置での選択的抽出（R. Lin, D.T. Burke, MA. Burn, J. Chromatogr. A.、2003(Aug 29)、1020(2)：255〜68参照）、粘性低下ポリマーマトリックスによるマイクロチップ電気泳動（F. Xu, M. Jabasini, S. Liu, Y. Baba、Analyst.、2003(Jun)、128(6)：589〜92参照）、吸着膜クロマトグラフィー（MA. Teeters, S.E. Conrardy, B.L. Thomas, T.W. Root, EN. Lightfoot, J. Chromatogr. A.、2003(Mar 7)、989(1)：165〜73参照）など；
−密度勾配遠心分離（L. Raptis, HA. Menard, J. Clin、Invest.、1980(Dec)、66(6)：1391〜9参照）；および
−ナノテクノロジーを用いる方法、例えば超小型エントロピートラップアレー（J. Han, HG. Craighead、Analytical Chemistry、７４巻、No.2、2002(Jan 15)参照）など。
このようにして得たサンプル分画は、既に通常の態様で容易に検出できる胎児遺伝形質（例えば、HDN（胎児および新生児の溶血性疾患）の危険性が高い妊娠における胎児RhD遺伝子、またはX染色体連鎖疾患（例えば血友病または脆弱X染色体症候群）の危険性が高い妊娠における胎児Y染色体特異的配列など）のその後の決定を可能にするだけでなく、下記を含む（ただしこれらに限定されない）より複雑な他の胎児遺伝子座の決定もまた可能にする：
−染色体異常（例えば異数性またはダウン症候群）、または遺伝性メンデル型遺伝疾患およびそれぞれ前記に附随する遺伝子マーカー（例えば単一遺伝子異常、例えば嚢胞性線維症または異常ヘモグロビン症）；および
−父系が決定されたとき決定的となる胎児遺伝形質。
−染色体異常（例えば異数性またはダウン症候群）、または遺伝性メンデル型遺伝疾患およびそれぞれ前記に附随する遺伝子マーカー（例えば単一遺伝子異常、例えば嚢胞性線維症または異常ヘモグロビン症）；および
−父系が決定されたとき決定的となる胎児遺伝形質。
胎児遺伝形質の前記のような決定は、例えばPCR（ポリメラーゼ連鎖反応）技術、リガーゼ連鎖反応、プローブハイブリダイゼーション技術、核酸アレー（いわゆる“DNAチップ”）などの方法によって実施することができる。
以下の実施例は本発明をさらに例証するが、本発明の範囲をいかなる態様によっても制限するものと解してはならない。
例１：アガロースゲル電気泳動によるサイズ分画後の母親の血漿におけるリアルタイム定量的ポリメラーゼ連鎖反応（PCR）による男子胎児DNAの検出
材料と方法
対象者およびサンプルの処理：
男子胎児をもつ第三期トリメスターの妊婦７人を本実験のために募集した。16から18ｍLの血液サンプルをEDTAチューブに採集した。1600gで10分の遠心および1600gで10分の第二回目の遠心後に6から9mLの血漿を得た。
例１：アガロースゲル電気泳動によるサイズ分画後の母親の血漿におけるリアルタイム定量的ポリメラーゼ連鎖反応（PCR）による男子胎児DNAの検出
材料と方法
対象者およびサンプルの処理：
男子胎児をもつ第三期トリメスターの妊婦７人を本実験のために募集した。16から18ｍLの血液サンプルをEDTAチューブに採集した。1600gで10分の遠心および1600gで10分の第二回目の遠心後に6から9mLの血漿を得た。
DNAの単離：
キアゲンマキシ（QIAgen Maxi）キットを用い製造元のプロトコルにしたがって、5から7mLの血漿からDNAを抽出した。DNAは1.5mLの容積に溶出させた。
キアゲンマキシ（QIAgen Maxi）キットを用い製造元のプロトコルにしたがって、5から7mLの血漿からDNAを抽出した。DNAは1.5mLの容積に溶出させた。
DNA沈澱：
１．血漿DNAに以下を添加した：1/10容積のNaAc（3M、pH5.2）、2容積の無水エタノール、MgCl２（最終濃度0.01M）およびグリコゲン（最終濃度50μg/mL）。前記溶液をボルテックスミキサーで完全に溶解させた。
２．前記溶液を-70℃で一晩保存した。
３．前記DNAを20000gで30分、4℃で遠心分離によって回収した。
４．上清を注意深く取り除き、ペレットを500μLの70％エタノールで洗浄した。
５．前記ペレットを風乾し、35μLの蒸留水に溶解した。
１．血漿DNAに以下を添加した：1/10容積のNaAc（3M、pH5.2）、2容積の無水エタノール、MgCl２（最終濃度0.01M）およびグリコゲン（最終濃度50μg/mL）。前記溶液をボルテックスミキサーで完全に溶解させた。
２．前記溶液を-70℃で一晩保存した。
３．前記DNAを20000gで30分、4℃で遠心分離によって回収した。
４．上清を注意深く取り除き、ペレットを500μLの70％エタノールで洗浄した。
５．前記ペレットを風乾し、35μLの蒸留水に溶解した。
DNA分離：
１．DNA電気泳動のために1％のアガロースゲル（Invitrogen, カタログ番号：15510-027）を調製した。
２．前記ゲルに28μLのDNA溶液をロードした。
３．80ボルトで1時間ゲルを電気泳動した。
４．DNAサイズマーカー（New England Biolabs, 100bpラダーおよびラムダのHindIII消化物）にしたがって、特定のDNAサイズに対応する小片を切り出した。前記特定のゲルフラグメントに含まれるDNAサイズは以下のとおりであった：90から300塩基（ベース）、300から500ベース、500から1000ベース、1.0から1.5キロベース（“kb”）、1.5から23kbおよび＞23kb。
５．キアエクス（QIAEX）IIゲル抽出キット（Qiagen、カタログ番号：20021）を用いて前記DNAをアガロースゲル片から精製し、35μLのトリス塩酸（pH8.0、10ｍM）に溶出させた。
１．DNA電気泳動のために1％のアガロースゲル（Invitrogen, カタログ番号：15510-027）を調製した。
２．前記ゲルに28μLのDNA溶液をロードした。
３．80ボルトで1時間ゲルを電気泳動した。
４．DNAサイズマーカー（New England Biolabs, 100bpラダーおよびラムダのHindIII消化物）にしたがって、特定のDNAサイズに対応する小片を切り出した。前記特定のゲルフラグメントに含まれるDNAサイズは以下のとおりであった：90から300塩基（ベース）、300から500ベース、500から1000ベース、1.0から1.5キロベース（“kb”）、1.5から23kbおよび＞23kb。
５．キアエクス（QIAEX）IIゲル抽出キット（Qiagen、カタログ番号：20021）を用いて前記DNAをアガロースゲル片から精製し、35μLのトリス塩酸（pH8.0、10ｍM）に溶出させた。
リアルタイムPCR：
Y染色体由来配列（SRY）および染色体由来配列（GAPDH遺伝子）をアプライドバイオシステムズ（Applied Biosystems, ABI）7000配列検出系を用いリアルタイムの定量的PCRにより増幅し、サイズ分離分画における胎児DNAおよび全DNAの量を定量した。SRYのためのタックマン（TaqMan）系は以下から成っていた：増幅プライマー、SRY＿Fwd：TCC TCA AAA GAA ACC GTG CATおよびSRY＿Rev：AGA TTA ATG GTT GCT AAG GAC TGG AT、並びにFAM標識TaqMan MGB（小溝結合物質、Minor Groove Binder）プローブSRY＿MGB：TCC CCA CAA CCT CTT。GAPDH遺伝子のためのTaqMan系は以下のプライマーおよびプローブから成っていた：GAPDH＿Fwd：CCC CAC ACA CAT GCA CTT ACC、GAPDH＿Rev：CCT AGT CCC AGG GCT TTG ATTおよびGAPDH＿MGB：TAG GAA GGA CAG GCA AC。
Y染色体由来配列（SRY）および染色体由来配列（GAPDH遺伝子）をアプライドバイオシステムズ（Applied Biosystems, ABI）7000配列検出系を用いリアルタイムの定量的PCRにより増幅し、サイズ分離分画における胎児DNAおよび全DNAの量を定量した。SRYのためのタックマン（TaqMan）系は以下から成っていた：増幅プライマー、SRY＿Fwd：TCC TCA AAA GAA ACC GTG CATおよびSRY＿Rev：AGA TTA ATG GTT GCT AAG GAC TGG AT、並びにFAM標識TaqMan MGB（小溝結合物質、Minor Groove Binder）プローブSRY＿MGB：TCC CCA CAA CCT CTT。GAPDH遺伝子のためのTaqMan系は以下のプライマーおよびプローブから成っていた：GAPDH＿Fwd：CCC CAC ACA CAT GCA CTT ACC、GAPDH＿Rev：CCT AGT CCC AGG GCT TTG ATTおよびGAPDH＿MGB：TAG GAA GGA CAG GCA AC。
TaqMan増幅反応は総反応容積25μLで設定し、以下を含んでいた：1倍濃度のユニバーサルPCR反応ミックス（ABI）中の6μLのサンプルDNA溶液、300nMの各プライマー（HPLC精製、Mycrosynth, Switzerland）および200nMの各プローブ（ABI）。各サンプルは2つの増幅系の各々についてデュープリケートで分析した。既知量のゲノムDNAを含む標準曲線を各分析で平行して泳動させた。
温度サイクルは以下のプロトコルにしたがって実施した：アンプイレーズ（Amp Erase）活性を可能にするために50℃で2分の最初のインキュベーション；アンプリタックゴールド（AmpliTaq Gold）の活性化のために95℃で10分；さらに60℃1分および95℃15秒を40サイクル。
前記7000配列検出系によって採集された増幅データは、配列検出ソフトによって計算した標準曲線の勾配、およびコピー数計算のためのリファレンスサンプルとしてサンプル反応物と同様なDNAコピー数をもつ希釈曲線で使用した標準DNA溶液の結果を用いて定量した。
結果
表１は、調べた5件の妊娠で、胎児に由来するDNAフラグメントはほぼ完全に500塩基対よりも小さいサイズであり、300塩基よりも小さいサイズについては約70％が胎児由来であったことを示している。
表１は、調べた5件の妊娠で、胎児に由来するDNAフラグメントはほぼ完全に500塩基対よりも小さいサイズであり、300塩基よりも小さいサイズについては約70％が胎児由来であったことを示している。
これらの結果は、母親の循環系で循環している胎児由来の遊離DNAは母親の血液中の全遊離DNAのサイズ分離によって特異的に濃縮できることを示している。末端の適用に応じて、胎児DNAの濃縮のために選択されるDNAサイズは300塩基以下または500塩基以下であろう。
上記の表の最初の欄に出現する“kb”という略語は1000塩基対を表し、表の第二および第三の欄に示されている数字はパーセンテージの平均値で、括弧内の数字はその範囲を示している。
例２：マイクロサテライトマーカー（“短いタンデムリピート”（STR）とも称される）のポリメラーゼ連鎖反応（PCR）によるアガロースゲル電気泳動後の胎児DNAの検出
材料と方法
対象者およびサンプルの処理：
妊婦由来の18ｍLの血液サンプルおよびその配偶者由来の9mLの血液をEDTAチューブに採集し、例１で述べたように遠心分離によって血漿を分離した。母親のバッフィーコート（すなわち、1600gで10分の第一回遠心後に得られた細胞ペレットの白色上部層）をPBSで２回洗浄した。
材料と方法
対象者およびサンプルの処理：
妊婦由来の18ｍLの血液サンプルおよびその配偶者由来の9mLの血液をEDTAチューブに採集し、例１で述べたように遠心分離によって血漿を分離した。母親のバッフィーコート（すなわち、1600gで10分の第一回遠心後に得られた細胞ペレットの白色上部層）をPBSで２回洗浄した。
DNAの単離：
血漿由来DNAをハイピュア（High Pure ）DNA鋳型キット（Roche）の改良物を用いて抽出し、真空を用いて200μL用に通常使用されるフィルターに前記全サンプルを通した。50μLの溶出緩衝液中に前記DNAを溶出させた。
血漿由来DNAをハイピュア（High Pure ）DNA鋳型キット（Roche）の改良物を用いて抽出し、真空を用いて200μL用に通常使用されるフィルターに前記全サンプルを通した。50μLの溶出緩衝液中に前記DNAを溶出させた。
父系DNAは、ハイピュアDNA鋳型キットを用いて400μLの父親由来の全血から抽出し、100μLに溶出させた。母系DNAは、ハイピュアDNA鋳型キットを用いてバッフィーコートから単離し、100μLに溶出させた。
DNA分離：
DNAはアガロースゲルで電気泳動によってサイズ分離した。
DNAはアガロースゲルで電気泳動によってサイズ分離した。
短いタンデムリピートに特異的なPCR：
500塩基よりも小さいサイズの分画から、21番染色体上の4ヌクレオチドリピート由来配列を文献（Li et al.、Clinical Chemistry、49(4)：2003）に記載されたように多重PCR反応で増幅させた。血漿DNAの濃度が低いので、母親の血漿中の胎児DNAはセミネストPCRプロトコルを用いて調べた。
500塩基よりも小さいサイズの分画から、21番染色体上の4ヌクレオチドリピート由来配列を文献（Li et al.、Clinical Chemistry、49(4)：2003）に記載されたように多重PCR反応で増幅させた。血漿DNAの濃度が低いので、母親の血漿中の胎児DNAはセミネストPCRプロトコルを用いて調べた。
母系および父系ペアの遺伝子型は全ゲノムDNAを用いて実施し、21番染色体上のマイクロサテライトマーカーをモニターした。
用いたSTRマーカーは以下のとおりであった：
D211S11；
D21S1270；
D21S1432；および
D21S1435
用いたSTRマーカーは以下のとおりであった：
D211S11；
D21S1270；
D21S1432；および
D21S1435
得られたDNAフラグメントをシークェンサーによる毛細管電気泳動によってサイズ分離し、特異的マーカーに対する各対立遺伝子を表すピーク領域をソフトウェアによって測定した。
結果
サイズ分離分画でのみ（＜300bpおよび300−500bp）D21S11の胎児対立遺伝子（すなわち父親から遺伝した228bp対立遺伝子および母親から遺伝した232bp対立遺伝子、すなわち各親から1つの対立遺伝子）が検出可能であった。
考察
STRフラグメントの分析によって、母親のリピート配列とは長さが異なる父親の対立遺伝子の検出が可能になり、さらにピーク領域間の比率を計算することによって、正常な胎児の核型と一致しないパターンを特定することが可能になる。母親の循環系に存在するSTRの父親由来の対立遺伝子のサイズを特定することによってある種の染色体異常を非侵襲的に検出することが可能になる。さらにまた父系検査を非侵襲的態様で出生前に実施することができる。
STRフラグメントの分析によって、母親のリピート配列とは長さが異なる父親の対立遺伝子の検出が可能になり、さらにピーク領域間の比率を計算することによって、正常な胎児の核型と一致しないパターンを特定することが可能になる。母親の循環系に存在するSTRの父親由来の対立遺伝子のサイズを特定することによってある種の染色体異常を非侵襲的に検出することが可能になる。さらにまた父系検査を非侵襲的態様で出生前に実施することができる。
Claims (13)
- 次の（ａ）〜（ｃ）の工程、すなわち、
（ａ）実質的に細胞の入っていない妊婦の血漿または血清サンプルからデオキシリボ核酸（DNA）を調製し、その結果調製DNAを生じる工程と、
（ｂ）調製DNAをサイズによって分離し、その結果分離DNAを生じる工程と、及び、
（ｃ）分離DNAから、５００またはそれ未満の塩基対のDNA分画を単離し、その結果単離した分画中に細胞外胎児DNAが濃縮される工程とを含む方法。 - （ｃ）の工程において、分離DNAから５００未満の塩基対のDNA分画を単離する、請求項１に記載の方法。
- （ｃ）の工程において、分離DNAから３００またはそれ未満の塩基対のDNA分画を単離する、請求項１に記載の方法。
- （ｃ）の工程において、分離DNAから３００未満の塩基対のDNA分画を単離する、請求項１に記載の方法。
- 前記分画中のDNAの７０％が細胞外胎児DNAである、請求項４に記載の方法。
- 実質的に細胞の入っていない血漿サンプルから調製DNAを生じる、請求項１に記載の方法。
- 実質的に細胞の入っていない血清サンプルから調製DNAを生じる、請求項１に記載の方法。
- （ｂ）の工程がクロマトグラフィーを含んでいる、請求項１に記載の方法。
- 前記クロマトグラフィーが高速液体クロマトグラフィーを含んでいる、請求項８に記載の方法。
- （ｂ）の工程が電気泳動を含んでいる、請求項１に記載の方法。
- 前記電気泳動が毛細管電気泳動を含んでいる、請求項１０に記載の方法。
- （ｂ）の工程が密度勾配遠心分離を含んでいる、請求項１に記載の方法。
- （ｂ）の工程がナノテクノロジー手法を含んでいる、請求項１に記載の方法。
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- 2021-05-11 US US17/317,240 patent/US20210262035A1/en active Pending
Patent Citations (2)
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Non-Patent Citations (1)
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| JPN6014028107; 日本産科婦人科学会雑誌 ｖｏｌ．５５， ｎｏ．２, 200302, ｐ．４７４［Ｐ-９１０］ * |
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