TWI725686B - 用於產生液珠的管狀結構及液珠產生方法 - Google Patents

用於產生液珠的管狀結構及液珠產生方法 Download PDF

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Abstract

本揭露關於一種用於產生液珠的管狀結構以及使用所述管狀結構產生液珠的方法。所述管狀結構中具有微管道結構且可用於產生液珠、收集液珠、核酸放大及/或原位進行液珠偵測等目的。

Description

用於產生液珠的管狀結構及液珠產生方法
本揭露是有關於一種用於產生液珠的管狀結構及液珠產生方法。
液珠式數位聚合酶連鎖反應（Droplet Digital Polymerase Chain Reaction，ddPCR）是一種對核酸分子進行絕對定量的方法。在一般的液珠式數位聚合酶連鎖反應中，可利用液珠產生器將樣品劃分成數百乃至數萬個奈升甚至皮升級別的單個油包水液珠。在這些液珠中，有些液珠不含核酸分子，或僅含單一核酸分子。之後對液珠中的檢體進行PCR擴增，最後再以螢光訊號進行檢測以及統計分析。相對於傳統的定量聚合酶連鎖反應，數位聚合酶連鎖反應可展現高靈敏性、高準確性且多目標的定量能力。
目前，使用市售的ddPCR機台進行檢測的方法包括以下步驟：利用液珠產生器產生液珠；將產生的液珠放置於96孔盤的封膜機，進行封膜：將封膜後的96孔盤置入PCR機器，執行核酸放大；以及將經核酸放大後的液珠抽取至液珠檢測儀，以進行光學判讀。因各操作流程在不同的容器以及不同機台內處理，因此，樣品容易在轉移的過程中損耗且程序自動化相當困難。同時，ddPCR過程中需要會消耗大量耗材，尤其用於產生液珠的液珠產生器，因有檢體交叉汙染疑慮，無法重複使用，而使檢測的成本提高。
目前缺乏能夠方便且精準用於液珠數位聚合酶連鎖反應的產品。
本揭露提供一種用於產生液珠的管狀結構以及使用所述管狀結構產生液珠的方法。本揭露的管狀結構中具有微孔或微管道以將水相試劑分離，此水相試劑經由管狀結構內油相液體的剪切作用，而形成具有油包水結構的液珠。由於本揭露的管狀結構以單一管狀結構即可生成液珠，相較於現有技術使用的多槽結構更不佔空間。在本揭露的一些實施例中，本揭露的管狀結構在液珠產生後還可持續用於進行液珠式數位聚合酶連鎖反應或其他生物化學反應，並可於原位進行液珠偵測或液珠分離，而無需將液珠移出至另一反應容器或機台。在這種情況下，液珠之產生、後續所進行生物化學反應(例如聚合酶連鎖反應)以及最終之液珠偵測檢驗或收集等，皆可於本揭露的單一管狀結構中完成而無需更換不同容器耗材或反應槽。因此，可以在無交互汙染疑慮下進行精準的生物化學反應及/或檢測，不但可降低生物化學檢測成本，且操作便捷而能夠進一步實現程序自動化之目的。
本揭露的管狀結構包括外管、試劑容置區、第一微管道、注油管道、排氣管道、儲油區、液珠容置區以及第二微管道。所述試劑容置區設置於所述管狀結構內部的上部中間處且沿著管身長度方向延伸。所述第一微管道設置於所述管狀結構內部且位於所述試劑容置區下方。所述第一微管道的第一端連接至所述試劑容置區且透過連接的所述第一端與所述試劑容置區連通，且所述第一微管道沿著所述管身長度方向延伸。所述注油管道與所述排氣管道設置於所述管狀結構內部的上部處且分別位於所述試劑容置區的相對兩側，其中所述注油管道與所述排氣管道沿著所述管身長度方向延伸。所述儲油區設置於所述管狀結構內部的下部處，其中所述注油管連接至所述儲油區上方且與所述儲油區相連通。所述液珠容置區設置於所述管狀結構內部的下部處，其中所述排氣管連接至所述液珠容置區上方且與所述液珠容置區相連通。所述第二微管道位於所述儲油區與所述液珠容置區之間且連接至所述儲油區與所述液珠容置區，其中所述第二微管道沿著垂直於所述管身長度方向的徑向延伸。所述第一微管道以相對於所述第一端的第二端垂直連接至所述第二微管道，且所述第二微管道與所述儲油區、所述液珠容置區以及所述第一微管道相連通。所述第一微管道的直徑小於所述第二微管道的直徑。
本揭露的用於產生液珠的管狀結構包括試劑容置內管以及油劑容置外管。所述試劑容置內管設置於所述管狀結構內部的中間處且沿著管身長度方向延伸，其中所述試劑容置內管具有第一空腔以容置試劑液且所述試劑容置內管包括微孔陣列位於所述試劑容置內管的下部。所述油劑容置外管位於所述試劑容置內管外部且圍繞所述試劑容置內管的側部及所述下部，其中，所述油劑容置外管具有第二空腔以容置油體，所述微孔陣列位於所述試劑容置內管與所述油劑容置外管之間，所述試劑容置內管中的所述試劑液可通過所述微孔陣列而在所述油劑容置外管中的所述油體中分離形成所述液珠。
本揭露的液珠產生方法包括：提供管狀裝置，所述管狀結構包括設置於所述管狀結構內部的試劑容置區、油劑容置區、液珠容置區以及第一與第二微管道，其中所述第一微管道連接於所述試劑容置區下方且與所述試劑容置區連通，所述第二微管道連接於所述油劑容置區與所述液珠容置區之間且與所述油劑容置區與所述液珠容置區相連通，所述第一微管道垂直連接至所述第二微管道，且所述第一與第二微管道彼此相連通；加入包含檢體的試劑液至所述試劑容置區中；加入油劑至所述油劑容置區中；以及驅使所述試劑液通過所述第一微管道並驅使所述油劑流入所述第二微管道，使所述油劑包覆所述試劑液而形成所述液珠。
基於上述，本揭露的管狀結構利用其內所包含的第一微管道與第二微管道的立體垂直流路相交的立體結構，在非同一平面上建構液珠產生機制，以油包水（water-in-oil）的方式，在微管導道內產生液珠。從產生液珠、偵測液珠、分離液珠，到最後液珠收集，皆可在同一管狀結構耗材內完成。不但可減少檢測過程人為操作的失誤，增加可靠度，提升檢測功能性。並且因為減少耗材使用以及樣品耗損，可以達成低成本且精準有效率的生化檢測方式。
為讓本揭露的上述特徵和優點能更明顯易懂，下文特舉實施例，並配合所附圖式作詳細說明如下。
下文列舉實施例並配合附圖來進行詳細地說明，但所提供的實施例並非用以限制本揭露所涵蓋的範圍。此外，附圖僅以說明為目的，並未依照原尺寸作圖。為了方便理解，在下述說明中相同的元件將以相同的符號標示來說明。另外，關於文中所使用「包含」、「包括」、「具有」等等用語，均為開放性的用語，也就是指「包含但不限於」。再者，文中所提到的方向性用語，例如「上」、「下」等，僅是用以參考附圖的方向，並非用來限制本揭露。
在本文中，液珠（droplet）是指具有內外雙層結構的微滴，其中內層為水相，外層為油相。液珠的體積可以是例如小於約1微升（或在約1微升與1奈升之間或在約1微升與1皮升之間）、小於約1奈升（或在約1奈升與約1皮升之間）、或小於約1皮升（或在約1皮升與1飛升之間）等。液珠可以具有小於約1000、100、10或1微米的直徑（或平均直徑），或約1000至10微米的直徑（或平均直徑）等。液珠可以是球形的或非球形的。液珠可各自包覆不小於液珠一半尺寸的待測樣品，進行分別定量計數。
在本文中，「試劑液」是指用於形成液珠內層的水相試劑，其可藉由例如混合檢體、水及/或PCR試劑而形成。舉例而言，檢體可包括生物檢體（例如血液、血漿、唾液、精液、卵子、尿液）、生物分子（Biomolecules）、奈米顆粒、病毒、食物檢體或環境檢體等。舉例而言，檢體可以是從人體或動物血液、血漿、唾液、精液、卵子、尿液、分子生物、病毒等來源中提取的核酸片段（包括DNA或RNA等）或模板（template）、將食品或中藥材消化稀釋後的液狀檢體或是例如飲水、清洗用水、灌溉用水等環境檢體。檢體中可包括例如呈色劑、螢光標記或磁性標記以便於後續檢測。PCR試劑可包括脫氧核糖核苷三磷酸（deoxy-ribonucleotide triphosphated--NTP）、鎂離子、氯化鉀、硫酸鉀、酵素（enzyme）、引子（primer）、探針（probe）、緩衝液（buffer）、細胞組織裂解緩衝液（lysis buffer）、奈米顆粒等，但不限於此。舉例而言，試劑液中亦可包含螢光染劑以便於後續偵測。
在本文中，「油劑」是指用於形成液珠外層的油相的疏水性物質。油劑可包括具有耐熱性的油，例如可包括矽油、植物油、氟化油，如FC-40、FC-7500，或礦物油，如烷烴，或其組合，但不限於此。
圖1A及圖1B分別為本揭露的第一實施例的管狀結構的剖視圖及俯視圖。
參照圖1A及圖1B，本揭露的第一實施例的管狀結構100包括試劑容置內管101、油劑容置外管102、外管支撐部103以及環狀支撐肋104。試劑容置內管101底部具有陣列型的微孔105。微孔直徑可為0.05 mm~0.5 mm，較佳為0.3 mm。油劑容置外管102的底部為封閉型結構。環狀支撐肋104連接試劑容置內管101與油劑容置外管102。外管支撐部103讓管狀結構100可放置於實驗載台上以方便於實驗取放。
使用管狀結構100產生液珠的方法包括：於試劑容置內管101的第一空腔111中置放試劑液；於油劑容置外管102的第二空腔112置放油劑；利用例如空氣壓力的外部驅動力，使第一空腔111中的試劑液通過微陣列型的微孔105形成微小液滴並進入第二空腔112而與第二空腔112中的油劑結合形成油包水的液珠。
根據本揭露的第一實施例的管狀結構100可使用模製方法利用例如透明壓克力製造。詳言之，以精密加工分別製造試劑容置內管101、油劑容置外管102及環狀支撐肋104，再將各組件進行組合而形成管狀結構100，但不限於此。
圖2A是本揭露的第二實施例的管狀結構200的剖視圖。圖2B是說明使用本揭露的第二實施例的管狀結構200產生液珠的方法的示意圖，圖2B對應於圖2A的虛線方框部分。
參照圖2A及圖2B，本揭露的第二實施例的管狀結構200具有外管202且管內可分為上部及下部。上部包括試劑容置區210、注油管道220、排氣管道230、注油孔212、排氣孔214、第一微管道215、油區連接孔道225以及液珠區連接孔道235。下部包括儲油區240、液珠容置區250、第二微管道245以及中隔板204。試劑容置區210設置於上部中間處且沿著管身長度方向延伸。第一微管道215設置於試劑容置區210下方。第一微管道215具有連接至試劑容置區210的第一端以及與第一端相對且連接至液珠容置區250的第二端且第一微管道215的第二端與第二微管道245的一端相切。注油管道220與排氣管道230分別位於試劑容置區210的相對兩側且沿著管身長度方向延伸。注油管道220上方具有注油孔212。注油管道220藉由油區連接孔道225與下方的儲油區240相連通。排氣管道230上方具有排氣孔214。排氣管道230藉由液珠區連接孔道235與下方的液珠容置區250相連通。儲油區240與液珠容置區250由中隔板204隔開。中隔板204上方具有第二微管道245。中隔板204可為透明的，且從第二微管道245下方沿著管身長度方向延伸至管狀結構200的底部處。第二微管道245位於儲油區240與液珠容置區250的頂面處，且沿著垂直於管身長度方向的徑向延伸。也就是說，第二微管道245、儲油區240與液珠容置區250的上表面可實質上共面。第二微管道245可具有連接至儲油區240的第三端以及與第三端相對且連接至液珠容置區250的第四端，且第一微管道215的第二端垂直連接至第二微管道245的第四端。
在本揭露的實施例中，第一微管道215的內徑可例如為0.05至0.5 mm，第二微管道245的內徑可例如為0.1至1 mm。此外，第一微管道215的內徑可小於第二微管道245的內徑，因此所形成的液珠可完整地被油膜包覆。
參照圖2B，使用管狀結構200產生液珠的方法包括：於注油孔212將油劑O注入注油管道220並使油劑O填充儲油區240，將試劑液W填充於試劑容置區210，利用注射幫浦壓縮空氣，使得試劑液W與油劑O分別通過第一微管道215及第二微管道245，並藉由油劑O的出口流體壓力剪切使油劑O包覆試劑液W而形成液珠D。所形成的液珠D可存放在液珠容置區250。
圖3A是本揭露的第三實施例的管狀結構300的剖視圖。圖3B是說明使用本揭露的第三實施例的管狀結構300產生液珠的方法的示意圖，圖3B對應於圖3A的虛線方框部分。
參照圖3A及圖3B，本揭露的第三實施例的管狀結構300具有外管302且管內可分為上部及下部。上部包括試劑容置區310、注油管道320、排氣管道330、注油孔312、排氣孔314、第一微管道315、油區連接孔道325以及液珠區連接孔道335。下部包括儲油區340、液珠容置區350、第二微管道345以及中隔板304。試劑容置區310設置於上部中間處，且沿著管身長度方向延伸。第一微管道315設置於試劑容置區310下方。第一微管道315可具有連接至試劑容置區310的第一端及與第一端相對且連接至第二微管道345上方的第二端，使試劑容置區310與第二微管道345彼此連通。注油管道320與排氣管道330分別位於試劑容置區310的相對兩側且沿著管身長度方向延伸。注油管道320上方具有注油孔312。注油管道320藉由油區連接孔道325與下方的儲油區340相連通。排氣管道330上方具有排氣孔314。排氣管道330藉由液珠區連接孔道335與下方的液珠容置區350相連通。儲油區340與液珠容置區350由中隔板304隔開。中隔板304上方具有第二微管道345。中隔板304可為透明的，且從第二微管道345下方沿著管身長度方向延伸至管狀結構300的底部處。第二微管道345位於儲油區340與液珠容置區350的頂面處，且沿著垂直於管身長度方向的徑向延伸。也就是說，第二微管道345、儲油區340與液珠容置區350的上表面可實質上共面。第二微管道345具有連接至儲油區340的第三端以及與第三端相對且連接至液珠容置區350的第四端，且第一微管道315的第二端垂直連接至第二微管道345的介於所述第三端與所述第四端的中段處。
在本揭露的實施例中，第一微管道315的內徑可例如為0.05至0.5 mm，第二微管道345的內徑可例如為0.1至1 mm。此外，第一微管道315的內徑可小於第二微管道345的內徑，因此所形成的液珠可完整地被油膜包覆。
參照圖3B，使用管狀結構300產生液珠的方法包括：於注油孔312將油劑O注入注油管道320並使油劑O填充儲油區340，將試劑液W填充於試劑容置區310，利用注射幫浦壓縮空氣，使得試劑液W連續通過第一微管道315而到達第二微管道345並在第二微管道345中與連續通過第二微管道345的油劑O相遇，藉由試劑液W與油劑O的表面張力的差異使油劑O包覆試劑液W而形成液珠D。所形成的液珠D可存放在液珠容置區350。
圖4A是本揭露的第四實施例的管狀結構400的立體透視圖。圖4B是本揭露的第四實施例的管狀結構400的俯視圖。圖4C是本揭露的第四實施例的管狀結構400的剖視圖。
參照圖4A至圖4C，本揭露的第四實施例的管狀結構400具有外管402且管內可分為上部及下部。上部包括試劑容置區410、上層預封儲油區460、上層液珠容置區470、第一微管道415、油區連接孔道425以及液珠區連接孔道區435。下部包括下層預封儲油區440、下層液珠容置區450、第二微管道445以及中隔板404。試劑容置區410設置於上部中間處且沿著管身長度方向延伸。第一微管道415設置於試劑容置區410下方。第一微管道415具有連接至試劑容置區410的第一端以及與第一端相對且連接至第二微管道445上方的第二端，而使試劑容置區410與第二微管道445彼此連通。上層預封儲油區460與上層液珠容置區470分別位於試劑容置區410的相對兩側且沿著管身長度方向延伸。如圖4B所示，從管狀結構400的上方觀察時，上層預封儲油區460與上層液珠容置區470可具有圓弧形狀或半月形狀。因此相較於第二實施例的管狀結構200或第三實施例的管狀結構300的管狀注油管道可填充更多的油劑。上層預封儲油區460藉由油區連接孔道425與下方的下層預封儲油區440相連通。上層液珠容置區470藉由液珠區連接孔道435與下方的下層液珠容置區450相連通。下層預封儲油區440與下層液珠容置區450由中隔板404隔開。中隔板404上方具有第二微管道445。中隔板404可為透明的，且從第二微管道445下方沿著管身長度方向延伸至管狀結構400的底部處。第二微管道445位於下層預封儲油區440與下層液珠容置區450的頂面處，且沿著垂直於管身長度方向的徑向延伸。也就是說，第二微管道445、下層預封儲油區440與下層液珠容置區450的上表面可實質上共面。第二微管道445具有連接至下層預封儲油區440的第三端以及與第三端相對且連接至下層液珠容置區450的第四端，且第一微管道415的第二端垂直連接至第二微管道445的介於所述第三端與所述第四端的中段處。
在本揭露的實施例中，第一微管道415的內徑可例如為0.05至0.5 mm，第二微管道445的內徑可例如為0.1至1 mm。此外，第一微管道415的內徑可小於第二微管道445的內徑，因此所形成的液珠可完整地被油膜包覆。
管狀結構400與管狀結構300的結構類似，不同之處在於管狀結構400更包括上層液珠容置區470以及上層預封儲油區460。因此使用管狀結構400產生液珠時，油劑已預先封填在預封儲油結構中，可直接將試劑液填充於試劑容置區410，利用注射幫浦壓縮空氣，同時帶動試劑容置區的試劑液與預封儲油結構內的油劑，而無須由外部注入油劑。另外，所產生的液珠可分別儲存在上層液珠容置區470與下層液珠容置區450中。
圖5A是本揭露的第五實施例的管狀結構的立體透視圖。圖5B是本揭露的第五實施例的管狀結構500的剖視圖。圖5C是說明使用本揭露的第五實施例的管狀結構500產生液珠的方法的示意圖，圖5C對應於圖5B的虛線方框部分。
參照圖5A至圖5C，本揭露的第五實施例的管狀結構500具有外管502且管內可分為上部及下部。上部包括上層試劑容置區510、注油管道520、排氣管道530、注油孔512、排氣孔514、油區連接孔道525以及液珠區連接孔道535。下部包括儲油區540、液珠容置區550、下層試劑容置區580、第一微管道515以及第二微管道545。上層試劑容置區510與下層試劑容置區580分別設置於上部中間處與下部中間處且沿著管身長度方向延伸。上層試劑容置區510與下層試劑容置區580彼此連通。上層試劑容置區510的內徑可大於下層試劑容置區580的內徑。注油管道520與排氣管道530分別位於上層試劑容置區510的相對兩側且沿著管身長度方向延伸。注油管道520上方具有注油孔512。注油管道520藉由油區連接孔道525與下方的儲油區540相連通。排氣管道530上方具有排氣孔514。排氣管道530藉由液珠區連接孔道535與下方的液珠容置區550相連通。儲油區540與液珠容置區550設置於下層試劑容置區580的相對兩側。第一微管道515設置於下層試劑容置區580下方以及儲油區540與液珠容置區550之間，且沿管身方向沿伸至管狀結構內部的底部處而與第二微管道545連接。第一微管道515具有連接至下層試劑容置區580下方的第一端以及與第一端相對且連接至第二微管道545上方的第二端，而使下層試劑容置區580與第二微管道545彼此連通。第二微管道545位於管狀結構的內部的底部處且沿著垂直於管身長度方向的徑向延伸。第二微管道545可具有連接至儲油區540的第三端以及連接至液珠容置區550的第四端，且第一微管道515的第二端垂直連接至第二微管道545的介於所述第三端與所述第四端的中段處。
管狀結構500的底部可為光滑平坦表面使得管狀結構500下方的偵測模組可透過管狀結構500的底部直接觀察第二微管道545中的液珠。
在本揭露的實施例中，第一微管道515的內徑可例如為0.05至0.5 mm，第二微管道545的內徑可例如為0.1至1 mm。此外，第一微管道515的內徑可小於第二微管道545的內徑，因此所形成的液珠可完整地被油膜包覆。
使用管狀結構500產生液珠的方法與使用管狀結構300產生液珠的方法類似，不同之處在於第一微管道515與第二微管道545設置於接近底部平面，方便液珠形成後的直接偵測，便於即時調整流體驅動流速等參數。液珠產生後，流進液珠容置區550，在第二微管道545的下方可配置光學偵測系統，可藉由光學偵測系統的即時偵測來判斷是否有液珠通過第二微管道545，以便即時進行壓力驅動系統的調控。液珠產生完畢後，可接著對管狀結構500進行溫度控制循環，使在液珠內的檢體進行聚合酶連鎖反應，以擴增液珠內的檢體。舉例而言，可使用具有加熱功能的載台對管狀結構500進行溫度控制循環，但本揭露不限於此。聚合酶連鎖反應結束後，可再藉由壓力驅動系統推動液珠使液珠從液珠容置區550通過第二微管道545而到達儲油區540。因此，可再次藉由光學偵測系統對通過第二微管道545的液珠進行光學訊號偵測。
也就是說，ddPCR的液珠產生、聚合酶連鎖反應到液珠偵測等步驟皆可於本揭露的第五實施例的管狀結構500中進行而無需更換耗材，因此可簡化ddPCR的程序並降低成本。
圖6A是本揭露的第六實施例的管狀結構的立體透視圖。圖6B是本揭露的第六實施例的管狀結構600的俯視圖。圖6C是本揭露的第六實施例的管狀結構600的剖視圖。
參照圖6A至圖6C，本揭露的第六實施例的管狀結構600具有外管602且管內可分為上部及下部。上部包括上層試劑容置區610、上層預封儲油區660、上層液珠容置區670、注油孔612、排氣孔614、油區連接孔道625以及液珠區連接孔道區635。下部包括下層預封儲油區640、下層液珠容置區650、下層試劑容置區680、第一微管道615、以及第二微管道645。上層試劑容置區610與下層試劑容置區680分別設置於上部中間處與下部中間處且沿著管身長度方向延伸。上層試劑容置區610與下層試劑容置區680彼此連通。上層試劑容置區610的內徑可大於下層試劑容置區680的內徑。上層預封儲油區660與上層液珠容置區670分別位於上層試劑容置區610的相對兩側且沿著管身長度方向延伸。從管狀結構600的上方觀察時，上層預封儲油區660與上層液珠容置區670可具有圓弧形狀或半月形狀。上層預封儲油區660上方具有注油孔612。上層預封儲油區660下方藉由油區連接孔道625與下方的下層預封儲油區640相連通。上層液珠容置區670具有排氣孔614。上層液珠容置區670下方藉由液珠區連接孔道635與下方的下層液珠容置區650相連通。下層預封儲油區640與下層液珠容置區650設置於下層試劑容置區680的相對兩側。第一微管道615設置於下層試劑容置區680下方以及下層預封儲油區640與下層液珠容置區650之間，且沿管身方向沿伸至管狀結構內部的底部處而與第二微管道645連接。第一微管道615具有連接至下層試劑容置區680下方的第一端以及與第一端相對且連接至第二微管道645上方的第二端，而使下層試劑容置區680與第二微管道645彼此連通。第二微管道645位於管狀結構的內部的底部處且沿著垂直於管身長度方向的徑向延伸。第二微管道645具有連接至下層液珠容置區650的第三端以及與第三端相對且連接至下層預封儲油區640的第四端，且第一微管道615的第二端垂直連接至第二微管道645的介於所述第三端與所述第四端的中段處。
管狀結構600的底部可為光滑平坦表面使得管狀結構600下方的偵測模組可透過管狀結構600的底部直接觀察第二微管道645中的液珠。
在本揭露的實施例中，第一微管道615的內徑可例如為0.05至0.5 mm，第二微管道645的內徑可例如為0.1至1 mm。此外，第一微管道615的內徑可小於第二微管道645的內徑，因此所形成的液珠可完整地被油膜包覆。
使用管狀結構600產生液珠的方法與使用管狀結構400產生液珠的方法類似，不同之處在於第一微管道615與第二微管道645設置於接近底部平面，方便液珠形成後的直接偵測，便於即時調整流體驅動流速等參數。液珠產生後，流進下層液珠容置區650，在第二微管道645的下方可配置光學偵測系統，可藉由光學偵測系統的即時偵測來判斷是否有液珠通過第二微管道645，以便即時進行壓力驅動系統的調控。液珠產生完畢後，可接著對管狀結構600進行溫度控制循環，使在液珠內的檢體進行聚合酶連鎖反應，以擴增液珠內的檢體。舉例而言，可使用具有加熱功能的載台對管狀結構600進行溫度控制循環，但本揭露不限於此。聚合酶連鎖反應結束後，可再藉由壓力驅動系統推動液珠使液珠從下層液珠容置區650通過第二微管道645而到達下層預封儲油區640。因此，可再次藉由光學偵測系統對通過第二微管道645的液珠進行光學訊號偵測。
也就是說，ddPCR的液珠產生、聚合酶連鎖反應到液珠偵測等步驟皆可於本揭露的第六實施例的管狀結構600中進行而無需更換耗材，因此可簡化ddPCR的程序並降低成本。
參照圖4A、圖5A及圖6A，根據本揭露的實施例的管狀結構還可包括可對合於管狀結構頂部的外蓋，以避免交叉污染，防止溢漏，且便於儲存運送。適用於本揭露的外蓋並無特別限制且可具有各種形式。圖式中的外蓋僅為舉例說明，根據本揭露的實施例的管狀結構的外蓋不以此為限。
根據本揭露的實施例的管狀結構可由高分子聚合材料形成。舉例而言，高分子聚合材料可為丙烯腈-丁二烯-苯乙烯（acrylonitrile-butadiene-styrene，ABS）共聚物、丙烯腈-苯乙烯樹脂（acrylonitrile-styrene resin，AS）、塊狀模料（Bulk Molding Compound，BMC）、醋酸纖維素（cellulose acetate，CA）、硝化纖維素（cellulose nitrate，CN）、環烯烴共聚物（cyclo-olefin copolymer，COC）、環烯烴聚合物（cyclo-olefin polymer，COP）、乙基纖維素（ethyl cellulose，EC）、環氧樹脂（epoxy resin，EP）、乙烯/乙酸乙烯酯共聚物（ethylene vinyl acetate copolymer，EVA）、全氟（乙烯-丙烯）塑膠（perfluoro(ethylene-propylene)，FEP）、纖維強化塑膠（fiber reinforced plastics，FRP）、三聚氰胺甲醛樹脂（melamine formaldehyde resin，MF）、聚甲基丙烯酸甲酯（polymethylmethacrylate，PMMA）、聚醯胺（polyamide，PA）、聚芳酯（polyarylate，PAR）、聚丁烯（polybutene，PB）、聚(對酞酸丁二酯)（poly(butylene terephthalate)，PBT）、聚碳酸酯（polycarbonate，PC）、聚二甲基矽氧烷（polydimethylsiloxane，PDMS）、低密度聚乙烯（low density polyethylene，LDPE）、高密度聚乙烯（high density polyethylene，HDPE）、聚乙烯（PE）、聚(醚/醚/酮)（poly(ether-ether-ketone)，PEEK）、聚對苯二甲酸乙二酯（PET）、聚醚碸（poly(ether sulfone)，PES）、酚醛樹脂（phenol-formaldehyde resin，PF）、聚甲醛（polyoxymethylene，POM）、聚丙烯（polypropylene，PP）、聚氧二甲苯（polyphenylene oxide，PPO）、聚對苯硫醚（poly(p-phenylene sulfide)，PPS）、耐衝擊聚苯乙烯（high impact polystyrene，HIPS）、聚苯乙烯（polystyrene，PS）、聚碸（poly sulphone，PSF）、聚四氟乙烯（poly(tetrafluoroethylene)，PTFE）、聚胺甲酸酯（polyurethane，PU）、聚乙烯醇（polyvinyl alcohol，PVA）、聚(乙酸乙烯酯)（poly(vinyl acetate)，PVAC）、聚(乙烯醇縮丁醛)（poly(vinyl butyral)，PVB）、聚氯乙烯（PVC）、聚氯乙烯醋酸乙烯酯（polyvinyl chloride acetate，PVCA）、聚偏二氯乙烯（polyvinylidenechloride，PVDC）、聚乙烯甲醛（polyvinyl formal，PVFM）、飽和聚酯（saturated polyester，SP）、尿素甲醛樹脂（urea formaldehyde resin，UF）、不飽和聚酯（unsaturated polyester，UP）或其任意之組合，但本揭露不以此為限。所形成的管狀結構可為透明的。
根據本揭露的實施例的管狀結構可藉由例如吹塑成形、擠出成形、壓力成形及射出成形等通用模製方法來獲得。根據本揭露的實施例的管狀結構可藉由分別製造個別組件並將各組件接合而製造。舉例來說，可分別製造管狀結構的上部組件、下部組件及外蓋後，再將其接合。各組件的接合方式並沒有特別限制。舉例而言，接合方式可為熱熔接合、超音波接合、UV硬化法、化學鍵接合、膠黏接合法、榫接合等，但本揭露不以此為限。
在本揭露的實施例中，在管狀結構上方可配置液體驅動模組作為動力源以藉由空氣推動管狀結構內的試劑液與油劑通過微管道而在第二微管道或液珠容置區內使所述油劑包覆所述試劑液而形成油包覆試劑的液珠。舉例而言，所述液體驅動模組可包括例如注射幫浦（syringe pump）、蠕動幫浦（peristaltic pump）等動力源以推動空氣而推動管狀結構內的試劑液與油劑而形成液珠。在另一實施例中，可對管狀結構進行加熱以藉由管狀結構內部的空氣驅動試劑液與油劑。舉例來說，本揭露的液珠產生方法可包括使用熱源驅動空氣，同時加熱試劑容置區與注油管道，內部空氣同時驅動試劑液與所述油劑，而在第二微管道內使所述油劑包覆所述試劑液而形成油包覆試劑的液珠。
在本揭露的實施例中，於管狀結構下方可配置有偵測模組以即時偵測管狀結構中的液珠。具體而言，偵測模組可透過管狀結構的平面透明底部直接觀察於第二微管道中的液珠。舉例來說，可使用電磁場方式或光學方式偵測液珠。電磁場方式偵測包括藉由磁場、電場、電磁波，偵測液珠的電磁場訊號強度。光學方式偵測包括藉由冷光、吸收光、螢光等方式偵測液珠的訊號強度。具體而言，偵測模組例如可為光學顯微鏡或光譜分析儀，但不限於此。偵測模組可在液珠產生時即時偵測液珠產生的狀態，以調整液體驅動模組的參數。對於需要PCR放大的檢體，亦可於PCR反應後，藉由液體驅動模組而使液珠從液珠區通過第二微管道而進行即時偵測。或者，對於不需要進行PCR放大的稀釋檢體，做定量式的濃度判讀。
舉例而言，當要檢測食物檢體或環境檢體中的微量農藥分子時，可使用拉曼光譜檢測液珠的拉曼散射，以定量液珠內微量的農藥分子，以確定農藥殘留量。當要檢測食物檢體或環境檢體中的微量金屬時，可在檢體中加入呈色劑而與檢體中的金屬反應生成有顏色的物質。接著利用本揭露的管狀結構產生液珠。以光度計量測液珠的吸收光強度以定量液珠內微量金屬的濃度，以確定重金屬的含量。
在本揭露的實施例中，置放管狀結構的載台可具有溫度控制功能。所述載台可用於在液珠產生期間加熱管狀結構中的加熱試劑容置區與注油管道以驅動試劑液與油劑或是當液珠於管狀結構中產生後，可藉由載台直接對管狀結構進行溫度控制以使管狀結構內的液珠進行PCR反應而擴增。
在以下實例中將更詳細地闡述本揭露。然而，提供以下實例僅是為了說明本揭露，且因此本揭露並非僅限於以下實例。
實例 1 ：中置型微管道預封油槽管狀結構
以射出成型製作本揭露的第四實施例的中置型微管道預封油槽管狀結構。材料為聚丙烯，成品分為上、中、下三件，管狀結構外徑為6 mm，中間以超音波焊接接合此三組件，使之成為一體。參照圖4A，實例1的管狀結構具有外蓋。外蓋為密封蓋，具有可彎折結構，結構上方分別具有試劑孔密封套、注油孔與排氣孔的密封套，可在封蓋時將試劑容置區、注油管道與排氣管道密封，防止檢測過程的汙染。上層管狀結構內含試劑容置區、第一微管道、上層預封儲油區與上層液珠容置區。下層管狀結構包括下層預封儲油區、第二微管道、中隔板及下層液珠容置區。
圖7A及圖7B分別為實例1的管狀結構的上部的下表面及下部的上表面的電子顯微鏡照片。參照圖7A，實例1的管狀結構的上部有中間隔板分隔上層預封儲油區與上層液珠容置區，在中間隔板上方有一直徑為0.1mm的通孔（即第一微管道），連通試劑容置區，管壁斷面上方具有超音波焊接結構，用以接合管狀結構的下部，在管壁斷面上有凸出的定位銷，便於做超音波接合前的定位；參照圖7B，管狀結構的下部具有中隔板分隔下層預封儲油區與下層液珠容置區，在中間隔板上有一寬度為0.2 mm的橫向微流道（即第二微管道），作為連接下層預封儲油區與下層液珠容置區的通道，在管壁斷面上有對應於管狀結構上部位置，用以超音波接合的凹陷的定位孔。
實例 2 ：下置型微管道預封油槽管狀結構
實例2以射出成型製作本揭露的第六實施例的下置型微管道預封油槽管狀結構。材料為聚丙烯，成品分為多件拆接分別製作，再將各分件上、下層連接成整體，使之成為一體的管狀結構。
圖8A、圖8B、圖8C及圖8D分別為實例2的管狀結構的上部的下表面、中部上表面、中部下表面及下部的上表面的電子顯微鏡照片。參照圖8A，管狀結構的上部中間處具有上層試劑容置區分隔上層預封儲油區與上層液珠容置區，在上層試劑容置區周圍、管壁斷面周圍與中間隔板斷面上方具有超音波焊接結構，用以接合管狀結構的中部，在管壁斷面上有凸出的定位銷，便於做超音波結合前的定位；參照圖8B，管狀結構的中部中間處具有下層試劑容置區分隔下層預封儲油區與下層液珠容置區，在管壁斷面上有對應於管狀結構上部下表面的位置，有用以超音波接合的凹陷定位孔；參照圖8C，管狀結構的中部下表面具有中間隔板分隔下層預封儲油區與下層液珠容置區，隔板上方設計一直徑為0.1mm的通孔，連通上層試劑容置區，在管壁斷面周圍與中間隔板斷面上方具有超音波焊接結構，用以接合管狀結構的下部，在管壁斷面上有凸出的定位銷，便於做超音波結合前的定位；參照圖8D，管狀結構的下部具有中間隔板分隔下層預封儲油區與下層液珠容置區，在中間隔板上有一寬度為0.2 mm的橫向微流道，作為下層預封儲油區與下層液珠容置區的通道，在管壁斷面上有對應於管狀結構中部下表面位置，用以超音波接合的凹陷的定位孔。
以下說明使用本揭露的管狀結構進行液珠式數位聚合酶連鎖反應（ddPCR）的實驗實例。
實例 3 ： 實驗設備之設置
圖9為本揭露的液珠式數位聚合酶連鎖反應裝置的示意圖。參照圖9，本揭露的液珠式數位聚合酶連鎖反應裝置包括液體驅動模組1、卡匣模組2與偵測模組3。卡匣模組2包含本揭露的管狀結構與置放管狀結構的載台。液體驅動模組1包括注射管、馬達、可動組件、固定機構與位置感測元件。本揭露的管狀結構置放於載台內部，由加熱板控制載台的溫度上升、下降。本揭露的管狀結構下方具有透光視窗，可經由設置在載台下方的偵測模組3進行偵測。偵測模組3可包括例如光學CCD，記錄管內液珠產生的結果，或者亦可包括光電倍增管（PMT），接收液珠的光學訊號，並由控制器紀錄與分析。
實例 4 ：試劑液之製備
本揭露的實例中所使用的試劑液分別按照表1所示的試劑成分、濃度與體積進行製備。
表 1
  試劑液A (L858R試劑液) 試劑液B (exon 2試劑液) 試劑液C (λDNA試劑液)
成分 濃度 體積 (μL) 濃度 體積 (μL) 濃度 體積 (μL)
H2 O   9.06   3.6   5.98
Master mix 1 x 10 1 x 5 1 x 10
F primer 0.9 μM 0.18        
R primer 0.9 μM 0.18        
probe-mut 0.2 μM 0.04        
probe-wt 0.2 μM 0.04        
exon 2 F/R/P     3 μM 3 μM 2 μM 1    
FIP         1.6 μM 0.32
BIP         1.6 μM 0.32
F3         0.2 μM 0.04
B3         0.2 μM 0.04
螢光染劑SYBR         1 x 0.2
染料ROX         0.25 x 0.1
DNA 1 ng/μL 0.5 2 ng/μL 0.4    
λDNA         0.5 ng/μl 2
實驗實例
實驗實例 A ：液珠產生測試
根據表2的參數及試劑使用與實例1相同的方法製造具有不同微管道尺寸的管狀結構，並使用不同的流速同時推動試劑液與油劑（Droplet generation oil for probes；購自Bio-Rad）。收集並以光學顯微鏡觀察所產生的液珠。
表 2
實驗實例 A-1 A-2 A-3 A-4
試劑液 染色純水 試劑液A 試劑液A 試劑液A
第一微管道直徑（微米） 300 100 100 100
第二微管道直徑（微米） 500 200 200 200
試劑液流速（微升/分） 12 12 6 60
油劑液流速（微升/分） 30 30 15 150
圖10A及圖10B分別為實驗實例A-1的液珠在油膜乾燥前後的光學顯微鏡影像。圖11A及圖11B分別為實驗實例A-2的液珠在油膜乾燥前後的光學顯微鏡影像。圖12為實驗實例A-3的液珠在油膜乾燥前的光學顯微鏡影像。圖13為實驗實例A-4的液珠在油膜乾燥前的光學顯微鏡影像。
於圖10A中可觀察到純水在油液中漂浮。於圖10B中可觀察到微液珠產生合併的狀態。比較實驗實例A-1及A-2，可明顯觀察到在相同操作條件下，當微管道尺寸減小時，可得到較小的液珠。比較實驗實例A-3及A-4，可明顯觀察到流速愈慢，得到較小的液珠；流速愈快，得到較大的液珠。此外，使用本揭露的管狀結構可產生尺寸均勻的液珠。
實驗實例 B ：載台模組之設置
載台模組可用於置放本揭露的管狀結構並對管狀結構中的液珠區進行溫度控制以執行聚合酶連鎖反應。以下將藉由實例更詳細地闡述適用於本揭露的管狀結構的載台模組。然而，適用於本揭露的管狀結構的載台模組不以此為限。
實驗實例 B-1 ： T 型加熱載台模組之設置
圖14為實驗實例B-1的T型加熱載台模組的立體示意圖。
參照圖14，實驗實例B-1的T型加熱載台模組具有可同時置放多個管狀卡匣的T型加熱載台1000，材料為鋁合金。其中，加熱載台1000下方有絕熱板1100，避免熱源導入機台內，加熱載台1000的側邊有致冷晶片1200，提供加熱、冷卻循環所需的溫度控制器，致冷晶片1200放置於散熱銅板1300上，散熱銅板1300內部具有散熱功能的鰭片設計，散熱銅板1300的一側連接散熱風扇1400，散熱風扇可將致冷晶片1300產生的熱源導出。
實驗實例 B-2 ：單平面型薄殼板加熱載台模組之設置
圖15為實驗實例B-2的單平面型薄殼板加熱載台模組的立體示意圖。
參照圖15，實驗實例B-2的單平面型薄殼板加熱載台模組具有可同時置放多個管狀卡匣的單平面型薄殼板加熱載台2000，材料為鋁合金，表面做陽極處理。其中，薄殼板加熱載台2000的結構實體厚度減少，以降低溫控循環過程金屬的熱損失，加熱載台2000下方可具有絕熱板（未繪示），避免熱源導入機台內；加熱載台2000的一側平面與致冷晶片2200相接，致冷晶片2200提供加熱、冷卻循環所需的溫度控制器，致冷晶片2200放置於散熱銅板2300上，散熱銅板2300內部具有散熱功能的鰭片設計，散熱銅板的一側連接散熱風扇2400，散熱風扇2400可將致冷晶片2200產生的熱源導出。
實驗實例 B-3 ：單平面套管型加熱載台模組之設置
圖16為實驗實例B-3的單平面套管型加熱載台模組的立體示意圖。
參照圖16，實驗實例B-3的單平面套管型加熱載台模組具有可同時置放多個管狀卡匣的單平面套管型加熱載台3000，材料為鋁合金，表面做陽極處理。其中，管狀卡匣緊緊置入套管型加熱載台3000內部，各管間以空氣隔絕，形成各自獨立的結構，金屬材料部分做極簡化，可以降低溫控循環過程金屬的熱損失。套管型加熱載台3000下方承板3100為另一絕熱材料，避免熱源導入機台內；加熱載台3000的一側平面與致冷晶片3200相接，致冷晶片3200提供加熱、冷卻循環所需的溫度控制器，致冷晶片3200放置於散熱銅板3300上，並在與銅板3300接觸的平面上塗佈導熱膏，增加導熱效果，散熱銅板3300內部具有散熱功能的鰭片設計，散熱銅板3300的一側連接散熱風扇3400，散熱風扇3400可將致冷晶片3200產生的熱源導出。
實驗實例 B-4 ：多管單側平邊型加熱載台模組之設置
圖17為實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台模組的立體示意圖。
參照圖17，實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台模組具有可同時置放多個管狀卡匣的多管單側平邊型加熱載台4000，材料為鋁合金。其中，多管單側平邊型加熱載台4000的側邊為一平面，與致冷晶片4200貼合，提供加熱、冷卻循環所需的溫度控制器，加熱載台4000各管中間有間隙，用以隔絕不同管間的熱傳效應，維持各管間一致的均溫狀態。致冷晶片4200放置於散熱銅板4300上，散熱銅板4300內部具有散熱功能的鰭片設計，散熱銅板4300的一側連接散熱風扇4400，散熱風扇4400可將致冷晶片4200產生的熱源導出。
實驗實例 C ：溫度循環測試
實驗實例C分別以實驗實例B-1、實驗實例B-2、實驗實例B-3以及實驗實例B-4的加熱載台模組進行溫度循環測試以比較不同加熱載台模組的溫度控制效果。
實驗實例 C-1 ： 測試實驗實例 B-1 的 T 型加熱載台模組的溫度控制效果
在載台內部分別置入一般商用PCR管（購自Axygen；型號：PCR-02-C）與實例1的管狀結構。PCR管內裝有200 μL的油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia）。在實例1的管狀結構中間與外側分別裝入30 μL的油。PCR管於實例1的管狀結構的管內各槽插入白金溫度感測器，由記憶式四視窗溫度計（TM-947SD）記錄各感測位置的溫度，比較在同樣溫控條件下，各感測點溫度隨時間的變化曲線。
圖18為實驗實例C-1的溫度變化曲線圖。循環溫度控制設定在98℃與58℃之間。其中，PCR管內溫度反應最慢，因管內的液體體積最多，升溫與降溫的反應速率比較慢，提供的熱源無法到達設定的溫度範圍；在實例1的管狀結構內，由於油液體積較少，其管內油的升降溫度變化速率明顯高於PCR的管內溫度的量測結果，其中，以靠近加熱源的位置，有更佳的升降溫反應速率。
T型加熱載台設計具有可雙面加熱的優點，但金屬體積較大而降低了加熱與冷卻的反應速率。以管狀結構側邊槽內溫度變化為例，從30℃升溫到80℃的時間需要59秒，升溫速率約為0.85℃/sec；從90℃降溫到60℃的時間則需要28秒，降溫速率約為1.1℃/sec。
實驗實例 C-2 ： 測試實驗實例 B-2 的單平面型薄殼板加熱載台模組的溫度控制效果
以實驗實例B-2的單平面型薄殼板加熱載台模組做溫度循環測試。在載台內部置入3個實例1的管狀結構，在實例1的管狀結構內側與外側分別裝入30 μL的油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia），並在管內各槽插入白金溫度感測器，由記憶式四視窗溫度計（TM-947SD）記錄各感測位置的溫度，比較在同樣循環溫控條件，各感測點溫度隨時間的變化曲線。
圖19為實驗實例C-2的溫度變化曲線圖。循環溫度控制點分別設定為93℃、57℃與71.5℃，回饋控制的溫度感測器置於加熱載台外側孔內，溫度感測器分別量測管狀結構內側與外側槽內油的溫度，由於管狀結構內側緊鄰加熱源，其管內油的升降溫度變化速率明顯高於管狀結構外側溫度的量測結果。
實驗實例B-2的單平面型薄殼板加熱載台，由於減少載台的金屬體積，在使用相同溫控設備情況下，大幅提升了加熱與冷卻的反應速率。以管狀結構內側邊槽內溫度變化為例，從30℃升溫到80℃的時間僅需24秒，升溫速率約為2.1℃/sec；從90℃降溫到60℃的時間則僅需要21秒，降溫速率約為1.4℃/sec。實驗實例B-2的單平面型薄殼板加熱載台可更有效率地對本揭露的管狀結構進行溫度控制。
實驗實例 C-3 ： 測試實驗實例 B-3 的單平面套管型加熱載台模組的溫度控制效果
以實驗實例B-3的單平面套管型加熱載台做溫度循環測試，在載台內部中間置入單一個實例1的管狀結構，在實例1的管狀結構內側、中間與外側分別裝入30 μL的油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia），並在管內各槽插入白金溫度感測器，由記憶式四視窗溫度計（TM-947SD）記錄各感測位置的溫度。
循環溫度控制點分別設定為93℃、57℃與71.5℃，回饋控制的溫度感測器置於加熱載台中間孔內，溫度感測器分別量測管狀結構內側、中間與外側槽內油的溫度，比較在同樣循環各感測點溫度隨時間的變化曲線。
圖20為實驗實例C-3的溫度變化曲線圖。其中，內側槽內從30℃升溫到80℃的時間需要26秒，升溫速率約為1.92℃/sec；從90℃降溫到60℃的時間則需要17秒，降溫速率約為1.76℃/sec。實驗實例B-3的單平面套管型加熱載台對內側槽內溫度變化速率達到與實驗實例B-2的單平面型薄殼板加熱載台相同的水準。此外，對於外側槽內溫度也有顯著的提昇效果，且各槽的升降溫速率較為一致，與溫度設定值的差距減小，尤其適合做為溫控循環的加熱載台。
實驗實例 C-4 ： 實驗實例 B-4 的多管單側平邊型加熱載台模組的溫度循環測試
以實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台做溫度循環測試。在載台外部包覆絕熱材料，在載台內部置入3個PCR管（購自Axygen；型號：PCR-02-C），並在PCR管內裝入20 μL的礦物油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia）與10 μL的試劑液B。在各管內槽插入白金溫度感測器，由記憶式四視窗溫度計(TM-947SD)記錄各感測位置的溫度。
圖21為實驗實例C-4的溫度變化曲線圖。循環溫度控制設定在95℃與62.5℃之間，溫度量測結果顯示，PCR各管內的循環溫度變化曲線趨於一致，到達溫度穩定平衡區域，各管間的溫度誤差量>0.5℃。比較循環溫度控制的設定曲線與PCR管內溫度的溫度量測值，PCR管內溫度反應較慢，因熱量由加熱板傳遞至加熱載台，再由加熱載台傳遞至管內，升溫與降溫的反應速率比較慢，到達穩定溫度所需要時間較長。
實驗實例 C-5 ：比較商用 PCR 管與本揭露之管狀結構的循環溫度控制效果
實驗實例C-5比較商用PCR管與根據本揭露的管狀結構的循環溫度控制效果。在2個實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台內部分別置入3個商用PCR管（購自Axygen；型號：PCR-02-C）與3個實例1的管狀結構。商用PCR管與根據本揭露的管狀結構內各裝有20μL的礦物油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia）與10μL的試劑液B。在中間管的內槽插入白金溫度感測器，由記憶式四視窗溫度計(TM-947SD)記錄各感測位置的溫度，比較在同樣溫控條件，各感測點溫度隨時間的變化曲線。
圖22為實驗實例C-5的溫度變化曲線圖。實驗循環溫度結果顯示，實例1的管狀結構中的邊槽的液體具有更快的升溫與降溫速率。由於實例1的管狀結構中的邊槽內的液體分布的空間為薄壁半環形狀，相較於一般商用PCR管內液體在底部的球狀分布，更有利於循環溫度升降時的反應速率。
實驗實例 C-6 ：比較不同散熱板材料對 PCR 循環溫度的影響
實驗實例C-6比較不同散熱板材料對PCR循環溫度的影響。散熱板的功能是將致冷晶片所產生的熱量導出分布於散熱板上，再由風扇排放於空氣中。也就是說，致冷晶片的一側為加熱載台，而另一側為散熱板。在固定其他實驗條件狀態下，分別以黃銅與鋁合金製作散熱板。以實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台做溫度循環測試。加熱載台內部放置商用PCR管，並在商用PCR管內裝入20 μL的礦物油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia）與10μL的試劑液B。在各管內槽插入白金溫度感測器，由記憶式四視窗溫度計(TM-947SD)記錄各感測位置的溫度，比較在同樣溫控條件，各感測點溫度隨時間的變化曲線。
圖23為實驗實例C-6的溫度變化曲線圖。實驗結果顯示散熱板材質對管內液體溫度的升降溫速率並無顯著影響。因此雖然純銅的熱傳導能力高於純鋁，但銅合金具有單位體積重量較大的缺點，而鋁合金具有便宜、密度低、容易加工成型等優點，並廣泛使用在CPU散熱器產品上。在散熱性能無顯著差別的狀態下，使用鋁合金製作散熱板具有更高的經濟效益。
實驗實例 D ：聚合酶連鎖反應（ PCR ）
實驗實例 D-1 ：比對使用本揭露之實驗設備與商業 PCR 儀器進行聚合酶連鎖反應的結果
實驗實例D-1使用本揭露實例1的管狀結構與實驗實例B-3的單平面套管型加熱載台模組進行聚合酶連鎖反應測試，並將測試結果與使用商業聚合酶連鎖反應儀器進行聚合酶連鎖反應測試的結果進行比對。本實驗實例採用恆溫環狀擴增法（Loop mediated isothermal amplification （LAMP））進行測試。商業PCR儀器為多重螢光基因定量光譜分析儀（Applied Biosystems Inc., 7500，Real time PCR）。聚合酶連鎖反應結束後，利用瓊脂膠體電泳（agarose gel electrophoresis）偵測聚合酶連鎖反應的結果，以平行比對使用本揭露的實驗設備與商業PCR儀器的實驗結果進行聚合酶連鎖反應的結果。
首先，將20 μL的試劑液C與20 μL的油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia）分別加入實例1的管狀結構的試劑容置區與油槽。使用實驗實例B-3的單平面套管型加熱載台模組對管狀結構分別進行恆溫66.5℃及65℃持溫90分鐘的恆溫PCR實驗測試。另外，使用多重螢光基因定量光譜分析儀以相同試劑在65℃的操作溫度下進行PCR放大。接著，以瓊脂膠體電泳判讀λDNA放大的訊號。
圖24為使用ABI 7500與本揭露的實驗設備進行聚合酶連鎖反應後以瓊脂膠體電泳判讀λDNA放大的訊號的照片。如圖24的左邊部分所示，使用ABI 7500儀器平台所產生DNA的放大結果，Positive訊號亮度高與Negative訊號有顯著的差異。中間為DNA Ladder，有不同長度片段的DNA，作為DNA分子量分析的參考。圖24右邊則是使用本揭露的單平面套管型加熱載台進行恆溫PCR後的結果。結果顯示當恆溫溫度為66.5℃時，Positive與Negative皆無訊號放大結果。當恆溫溫度為65℃時，Positive與Negative皆可產生正確的結果。從本實驗實例結果可以觀察到，使用本揭露的管狀結構與加熱載台在適當的反應條件下，確實可有效地進行聚合酶連鎖反應並得到正確的結果。
實驗實例 D-2 ：商用 PCR 管材的 PCR 測試
實驗實例D-2在配備有溫度控制裝置的實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台中置入3個商用PCR管（購自Axygen；型號：PCR-02-C）進行PCR實驗。PCR實驗完成後，利用瓊脂膠體電泳（agarose gel electrophoresis）進行DNA放大後的平行比對。
首先，將10 μL的PCR試劑液B與20 μL的油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia）加入商用PCR管中，並於封蓋後進行循環溫度測試。在實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台模組內，先升溫在95℃持溫10分鐘後，再進行雙溫層多次熱循環實驗，進行DNA放大實驗測試。實驗固定參數高溫溫度為95℃與低溫溫度62.5℃，操作控制參數分別為高溫持溫時間、低溫持溫時間與熱循環次數。進行DNA放大之控制參數測試。結果顯示於圖25及表3中。
圖25為實驗實例D-2的PCR實驗的瓊脂膠體電泳實驗結果的照片。圖25的最左欄為DNA Ladder，有不同長度片段的DNA，作為DNA分子量分析的參考。圖25的第2-4欄為同一熱循環操作條件在不同管件產生的DNA放大訊號結果，各管的Positive訊號皆為正確，結果顯示，經過熱循環的實驗流程，DNA在正確的位置被放大，且各管間的重複性良好。圖25的第5-7欄縮短高溫持溫時間為10秒，固定其他實驗條件，瓊脂膠體電泳結果顯示，DNA放大訊號強度增加，且各管間亦維持高強度的放大訊號。圖25的第8-10欄則維持第一次的實驗條件，增加熱循環的次數，並置放Negative樣本作比對，瓊脂膠體電泳結果顯示，DNA放大訊號強度皆比第一次的操作條件增加，Positive與Negative皆可產生正確的結果。
實驗結果顯示使用配備有溫度控制裝置的實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台，使用商用PCR管件做DNA放大測試，在可控制的操作條件下，可以達成DNA訊號放大的結果。
表 3
欄 2 3 4 5 6 7 8 9 10
高溫 95℃-20秒 95℃-10秒 95℃-20秒
低溫 62.5℃-40秒 62.5℃-40秒 62.5℃-40秒
循環 35次 35次 40次
P/N P P P P P P N P P
實驗實例 D-3 ：使用實例 1 的管狀結構進行 PCR 測試
實驗實例D-3在配備有溫度控制裝置的實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台中置入3個實例1的管狀結構進行PCR實驗。同時，使用96孔PCR熱循環儀(Applied Biosystems Inc.，Veriti)進行試劑驗證測試，再利用瓊脂膠體電泳（agarose gel electrophoresis）進行DNA放大後的平行比對。
首先，將20 μL的PCR試劑液B與20 μL的油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia）加入實例1的管狀結構內側槽，並於封蓋後進行循環溫度測試。在實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台模組內，進行高溫95℃與低溫62.5℃兩個設定溫度間的溫度循環35次的測試。另外，使用商用的96孔PCR熱循環儀循環儀(Applied Biosystems Inc.，Veriti)進行驗證測試，以相同試劑進行平行比對。結果顯示於圖26及表4中。
表 4
欄 2 3 4 5 6 7
平台 Veriti 實例B-4
高溫 95℃-20s 95℃-30s
低溫 63℃-45s 62.5℃-40s
循環 35次 35次
P/N P N P N N P
本實驗以瓊脂膠體電泳判讀DNA放大的訊號，圖26為實驗實例D-3的PCR實驗的瓊脂膠體電泳實驗結果的照片。最左邊為DNA Ladder，不同長度片段的DNA，作為DNA分子量分析的參考。從左邊起算第2-5欄為使用ABI Veriti熱循環儀平台所產生DNA的放大結果，Positive訊號亮度高與Negative訊號有顯著的差異。圖25的第6-7欄則是使用實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台配合根據本揭露的實例1的管狀結構進行PCR的結果。Positive訊號在相同位置產生高亮度訊號，表示有DNA放大的結果；Negative則無DNA放大訊號，訊號判別皆正確。
實驗實例 D-4 ：不同條件下 PCR 測試結果的比較
實驗實例D-4比較不同系統與不同管件在不同操作條件狀態的PCR結果。實驗實例D-4在配備有溫度控制裝置的實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台中分別置入商用PCR管（購自Axygen；型號：PCR-02-C）與實例1的管狀結構進行PCR實驗。同時，使用96孔PCR熱循環儀(Applied Biosystems Inc.，Veriti)進行試劑驗證測試。
首先，在各管內裝入20 μL的礦物油（CAS No. 8042-47-5；購自Tedia）與10 μL的試劑液B。接著根據表5的實驗操作參數進行PCR實驗。PCR實驗完成後，再利用瓊脂膠體電泳（agarose gel electrophoresis）進行DNA放大後的平行比對。實驗實例D-4的操作條件與瓊脂膠體電泳結果如圖27與表5所示。
表 5
欄 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
平台 Veriti 實例B-4
管   實例1 商用PCR管
高溫 95℃ 96℃ 95℃ 95℃ 95℃
時間 20s 45s 10s 10s 0s
低溫 63℃ 63.5℃ 62℃ 62.5℃ 62℃
時間 45s 75s 40s 30s 30s
循環 35次 40次 35次 35次 35次
P/N P N P P P P N P P N P P P
圖27為實驗實例D-4的PCR實驗的瓊脂膠體電泳實驗結 果的照片。圖27最左欄為DNA Ladder，具有不同長度片段的DNA，作為DNA分子量分析的參考。從左邊起算第2-3欄為使用ABI Veriti熱循環儀平台所產生DNA的放大結果，Positive訊號亮度高與Negative訊號有顯著的差異。從左邊起算第4-5欄為使用根據本揭露的加熱載台與管狀結構所產生的DNA放大結果。使用實例1的管狀結構與實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台所產生的Positive訊號清楚。接著，從左邊起算第6-14欄為使用實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台與商用PCR管（購自Axygen；型號：PCR-02-C），在不同熱循環操作條件下，所產生DNA的放大結果。其中，第6-8欄為高溫溫度95℃、高溫持溫時間為10秒、低溫溫度62℃、低溫持溫時間40秒、熱循環次數35次，各管皆可產生正確的DNA放大訊號；第9-11欄變更低溫溫度為62.5℃並縮短低溫持溫時間為30秒，各管亦可產生正確的DNA放大訊號；第12-14欄進一步縮短高溫持溫時間為0秒，並維持低溫持溫時間，DNA放大的結果亦可正確判讀。
由此系列實驗證明，以本揭露的加熱載台配合商用PCR管件與本揭露的管狀結構皆可完成DNA放大的結果。
綜上所述，本揭露提供一種可用於液珠式數位聚合酶連鎖反應的管狀結構以及使用所述管狀結構產生液珠的方法。所述管狀結構可用於產生液珠、聚合酶連鎖反應及/或偵測，可減少液珠式數位聚合酶連鎖反應的耗材使用量、簡化液珠式數位聚合酶連鎖反應的流程，並降低液珠式數位聚合酶連鎖反應的成本。
雖然本揭露已以實施例揭露如上，然其並非用以限定本揭露，任何所屬技術領域中具有通常知識者，在不脫離本揭露的精神和範圍內，當可作些許的更動與潤飾，故本揭露的保護範圍當視後附的申請專利範圍所界定者為準。
100、200、300、400、500、600:管狀結構 101:試劑容置內管 102:油劑容置外管 103:外管支撐部 104:環狀支撐肋 105:微孔 111:第一空腔 112:第二空腔 202:外管 204:中隔板 210:試劑容置區 212:注油孔 214:排氣孔 215:第一微管道 220:注油管道 225:油區連接孔道 230:排氣管道 235:液珠區連接孔道 240:儲油區 245:第二微管道 250:液珠容置區 302:外管 304:中隔板 310:試劑容置區 312:注油孔 314:排氣孔 315:第一微管道 320:注油管道 325:油區連接孔道 330:排氣管道 335:液珠區連接孔道 340:儲油區 345:第二微管道 350:液珠容置區 402:外管 410:試劑容置區 415:第一微管道 425:油區連接孔道 435:液珠區連接孔道 440:下層預封儲油區 445:第二微管道 450:下層液珠容置區 460:上層預封儲油區 470:上層液珠容置區 502:外管 510:上層試劑容置區 512:注油孔 514:排氣孔 515:第一微管道 520:注油管道 525:油區連接孔道 530:排氣管道 535:液珠區連接孔道 540:儲油區 545:第二微管道 550:液珠容置區 580:下層試劑容置區 602:外管 610:上層試劑容置區 612:注油孔 614:排氣孔 615:第一微管道 625:油區連接孔道 635:液珠區連接孔道 640:下層預封儲油區 645:第二微管道 650:下層液珠容置區 660:上層預封儲油區 670:上層液珠容置區 680:下層試劑容置區 1:液體驅動模組 2:卡匣模組 3:偵測模組 1000、2000、3000、4000:載台 1100、3100:絕熱板 1200、2200、3200、4200:致冷晶片 1300、2300、3300、4300:散熱銅板 1400、2400、3400、4400:散熱風扇 D:液珠 O:油劑 W:試劑液
圖1A及圖1B分別為本揭露的第一實施例的管狀結構的剖視圖及俯視圖。 圖2A是本揭露的第二實施例的管狀結構的剖視圖。 圖2B是說明使用本揭露的第二實施例的的管狀結構產生液珠的方法的示意圖，圖2B對應於圖2A的虛線方框部分。 圖3A是本揭露的第三實施例的管狀結構的剖視圖。 圖3B是說明使用本揭露的第三實施例的管狀結構產生液珠的方法的示意圖，圖3B對應於圖3A的虛線方框部分。 圖4A是本揭露的第四實施例的管狀結構的立體透視圖。 圖4B是本揭露的第四實施例的管狀結構的俯視圖。 圖4C是本揭露的第四實施例的管狀結構的剖視圖。 圖5A是本揭露的第五實施例的管狀結構的立體透視圖。 圖5B是本揭露的第五實施例的管狀結構的剖視圖。 圖5C是說明使用本揭露的第五實施例的的管狀結構產生液珠的方法的示意圖，圖5C對應於圖5B的虛線方框部分。 圖6A是本揭露的第六實施例的管狀結構的立體透視圖。 圖6B是本揭露的第六實施例的管狀結構的俯視圖。 圖6C是本揭露的第六實施例的管狀結構的剖視圖。 圖7A及圖7B分別為實例1的管狀結構的上部的下表面及下部的上表面的電子顯微鏡照片。 圖8A至圖8D分別為實例2的管狀結構的上部的下表面、中部上表面、中部下表面及下部的上表面的電子顯微鏡照片。 圖9為本揭露的液珠式數位聚合酶連鎖反應裝置的示意圖。 圖10A及圖10B分別為實驗實例A-1的液珠在油膜乾燥前後的光學顯微鏡影像。 圖11A及圖11B分別為實驗實例A-2的液珠在油膜乾燥前後的光學顯微鏡影像。 圖12為實驗實例A-3的液珠在油膜乾燥前的光學顯微鏡影像。 圖13為實驗實例A-4的液珠在油膜乾燥前的光學顯微鏡影像。 圖14為實驗實例B-1的T型加熱載台模組的立體示意圖。 圖15為實驗實例B-2的單平面型薄殼板加熱載台模組的立體示意圖。 圖16為實驗實例B-3的單平面套管型加熱載台模組的立體示意圖。 圖17為實驗實例B-4的多管單側平邊型加熱載台模組的立體示意圖。 圖18為實驗實例C-1的溫度變化曲線圖。 圖19為實驗實例C-2的溫度變化曲線圖。 圖20為實驗實例C-3的溫度變化曲線圖。 圖21為實驗實例C-4的溫度變化曲線圖。 圖22為實驗實例C-5的溫度變化曲線圖。 圖23為實驗實例C-6的溫度變化曲線圖。 圖24為使用ABI 7500與本揭露的實驗設備進行聚合酶連鎖反應後以瓊脂膠體電泳判讀λDNA放大的訊號的照片。 圖25為實驗實例D-2的PCR實驗的瓊脂膠體電泳實驗結果的照片。 圖26為實驗實例D-3的PCR實驗的瓊脂膠體電泳實驗結果的照片。 圖27為實驗實例D-4的PCR實驗的瓊脂膠體電泳實驗結果的照片。
300:管狀結構
302:外管
304:中隔板
310:試劑容置區
312:注油孔
314:排氣孔
315:第一微管道
320:注油管道
325:油區連接孔道
330:排氣管道
335:液珠區連接孔道
340:儲油區
345:第二微管道
350:液珠容置區

Claims (29)

  1. 一種用於產生液珠的管狀結構，包括：試劑容置區，設置於所述管狀結構內部的上部中間處且沿著管身長度方向延伸；第一微管道，設置於所述管狀結構內部且位於所述試劑容置區下方，且所述第一微管道沿著所述管身長度方向延伸；注油管道與排氣管道，設置於所述管狀結構內部的上部處且分別位於所述試劑容置區的相對兩側，其中所述注油管道與所述排氣管道沿著所述管身長度方向延伸；儲油區，設置於所述管狀結構內部的下部處，其中所述注油管道連接至所述儲油區上方且與所述儲油區相連通；液珠容置區，設置於所述管狀結構內部的下部處，其中所述排氣管道連接至所述液珠容置區上方且與所述液珠容置區相連通；第二微管道，位於所述儲油區與所述液珠容置區之間且連接至所述儲油區與所述液珠容置區，其中所述第二微管道沿著垂直於所述管身長度方向的徑向延伸，所述第一微管道的一端垂直連接至所述第二微管道，且所述第二微管道與所述儲油區、所述液珠容置區以及所述第一微管道相連通。
  2. 如申請專利範圍第1項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述第二微管道位於所述管狀結構的內部的底部處，所述第一微管道位於所述儲油區與所述液珠容置區之間，從所述試 劑容置區下方沿著所述管身長度方向延伸至所述管狀結構內部的所述底部處而與所述第二微管道連接。
  3. 如申請專利範圍第1項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述管狀結構的底部表面為光滑平坦表面。
  4. 如申請專利範圍第1項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述第二微管道位於所述儲油區與所述液珠容置區的頂面處，所述第一微管道從所述試劑容置區下方沿著所述管身長度方向延伸而與所述第二微管道連接。
  5. 如申請專利範圍第4項所述的用於產生液珠的管狀結構，更包括透明區塊位於所述儲油區與所述液珠容置區之間且位於所述第二微管道下方，所述透明區塊從所述第二微管道下方沿著所述管身長度方向延伸至所述管狀結構的底部處。
  6. 如申請專利範圍第1項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述第二微管道的第一端連接至所述儲油區，而所述第二微管道的與所述第一端相對的第二端連接至所述液珠容置區，所述第一微管道的所述一端垂直連接至所述第二微管道的所述第二端。
  7. 如申請專利範圍第1項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述第一微管道的直徑小於所述第二微管道的直徑。
  8. 如申請專利範圍第1項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述第二微管道的第一端連接至所述儲油區，而所述第二微管道的與所述第一端相對的第二端連接至所述液珠容置區， 所述第一微管道的所述一端垂直連接至所述第二微管道的介於所述第一端與所述第二端的中段處。
  9. 如申請專利範圍第1項所述的用於產生液珠的管狀結構，更包括可對合於所述管狀結構頂部的外蓋。
  10. 如申請專利範圍第1項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述管狀結構的材料為高分子聚合材料。
  11. 如申請專利範圍第10項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述高分子聚合材料包括ABS、AS、BMC、CA、CN、COC、COP、EC、EP、EVA、FEP、FRP、MF、PA、PAR、PB、PBT、PC、PDMS、LDPE、HDPE、PE、PEEK、PET、PES、PF、PMMA、POM、PP、PPO、PPS、HIPS、PS、PSF、PTFE、PU、PVA、PVAC、PVB、PVC、PVCA、PVDC、PVFM、SP、UF、UP或前述之任意組合。
  12. 如申請專利範圍第1項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述儲油區中預封有油。
  13. 一種用於產生液珠的管狀結構，包括：試劑容置內管，設置於所述管狀結構內部的中間處且沿著管身長度方向延伸，其中所述試劑容置內管具有第一空腔以容置試劑液，且所述試劑容置內管包括微孔陣列位於所述試劑容置內管的下部；以及油劑容置外管，位於所述試劑容置內管外部且圍繞所述試劑容置內管的側部及所述試劑容置內管的下部，其中，所述油劑容 置外管具有第二空腔以容置油體，所述微孔陣列位於所述試劑容置內管與所述油劑容置外管之間，所述試劑容置內管中的所述試劑液可通過所述微孔陣列而在所述油劑容置外管中的所述油體中分離形成所述液珠。
  14. 如申請專利範圍第13項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述微孔陣列之微孔的直徑為0.05mm至0.5mm。
  15. 如申請專利範圍第13項所述的用於產生液珠的管狀結構，更包括可對合於所述管狀結構頂部的外蓋。
  16. 如申請專利範圍第13項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述管狀結構的材料為高分子聚合材料。
  17. 如申請專利範圍第16項所述的用於產生液珠的管狀結構，其中所述高分子聚合材料包括ABS、AS、BMC、CA、CN、COC、COP、EC、EP、EVA、FEP、FRP、MF、PA、PAR、PB、PBT、PC、PDMS、LDPE、HDPE、PE、PEEK、PET、PES、PF、PMMA、POM、PP、PPO、PPS、HIPS、PS、PSF、PTFE、PU、PVA、PVAC、PVB、PVC、PVCA、PVDC、PVFM、SP、UF、UP或前述之任意組合。
  18. 一種液珠產生方法，包括：提供管狀結構，所述管狀結構包括設置於所述管狀結構內部的試劑容置區、油劑容置區、液珠容置區以及第一微管道與第二微管道，其中所述第一微管道連接於所述試劑容置區下方，且與所述試劑容置區連通，所述第二微管道連接於所述油劑容置區與 所述液珠容置區之間，且與所述油劑容置區與所述液珠容置區相連通，所述第一微管道垂直連接至所述第二微管道，且所述第一微管道與所述第二微管道彼此相連通；加入包含檢體的試劑液至所述試劑容置區中；加入油劑至所述油劑容置區中；以及驅使所述試劑液通過所述第一微管道，並驅使所述油劑流入所述第二微管道，以使所述油劑包覆所述試劑液而形成油包覆試劑的液珠。
  19. 如申請專利範圍第18項所述的液珠產生方法，其中驅使所述試劑液通過所述第一微管道並驅使所述油劑流入所述第二微管道包括使用動力源搭配空氣，加壓驅動所述試劑液通過所述第一微管道並同時加壓驅動所述油劑流入所述第二微管道，而在所述液珠容置區內使所述油劑包覆所述試劑液而形成油包覆試劑的液珠。
  20. 如申請專利範圍第18項所述的液珠產生方法，其中驅使所述試劑液通過所述第一微管道並驅使所述油劑流入所述第二微管道的方式包括使用動力源搭配空氣，加壓驅動所述試劑液通過所述第一微管道並同時加壓驅動所述油劑流入所述第二微管道，而在所述第二微管道內使所述油劑包覆所述試劑液而形成油包覆試劑的液珠。
  21. 如申請專利範圍第18項所述的液珠產生方法，其中在驅使所述試劑液通過所述第一微管道並驅使所述油劑流入所述第二微管道時加熱所述管狀結構。
  22. 如申請專利範圍第18項所述的液珠產生方法，其中所述油劑在加入所述試劑液前預封於所述油劑容置區中。
  23. 如申請專利範圍第18項所述的液珠產生方法，其中所述檢體包括生物檢體、生物分子、奈米顆粒、病毒、食物檢體或環境檢體。
  24. 如申請專利範圍第23項所述的液珠產生方法，其中所述生物檢體包括血液、血漿、唾液、精液、卵子或尿液。
  25. 如申請專利範圍第23項所述的液珠產生方法，更包括以光學方式檢測包含所述試劑液的所述液珠，且所述檢體更包括螢光標記或呈色劑。
  26. 如申請專利範圍第23項所述的液珠產生方法，更包括以拉曼光譜檢測包含所述試劑液的所述液珠的拉曼散射。
  27. 如申請專利範圍第23項所述的液珠產生方法，更包括以光度計檢測包含所述試劑液的所述液珠的吸收光強度。
  28. 如申請專利範圍第23項所述的液珠產生方法，更包括以電磁方式檢測包含所述試劑液的所述液珠，且所述檢體更包括磁性標記。
  29. 如申請專利範圍第18項所述的液珠產生方法，更包括對包含所述試劑液的所述液珠進行熱循環反應，其中所述檢體包 含核苷酸分子或去氧核苷酸分子且所述試劑液包含聚合酶連鎖反應(PCR)反應試劑，而於所述液珠內進行聚合酶連鎖反應(PCR)。
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