CN110088290A - 在乳液微滴中结合多重置换扩增和pcr - Google Patents

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Abstract

本文所述的方法和系统提供了改进的基于乳液液滴的核酸扩增方法，其允许基于核酸扩增技术(例如PCR)检测的序列以检测、定量和/或分选包含在生物系统中的核酸。核酸可以是自由漂浮的或包含于活体或非活体结构，包括颗粒、病毒和细胞。核酸可包括例如DNA或RNA。

Description

在乳液微滴中结合多重置换扩增和PCR
交叉引用
本申请要求在2016年8月10日提交的美国临时申请第62/373,317号的优先权，该申请通过引用整体并入本文。本申请涉及美国专利申请公开No.2015/0232942的公开内容并且通过引用并入本文。
政府支持
本发明是在由美国国立卫生研究院授予的资助号为AR068129、R01EB019453和R21HG007233的政府支持下完成的。政府拥有本发明的一定权利。
背景技术
核酸的定量和测序对现代生物学的极为重要。用于检测和定量核酸的新方法，诸如数字聚合酶链式反应(PCR)，提供比传统实时定量PCR更高的准确度，并且还提供所存在的分子数目的绝对计数，从而避免了对内部标准(internal standard)的需要。液滴PCR已成为用于实施数字PCR的方便的高通量方法。然而，现有液滴数字PCR技术的缺点在于，在某些情况下，比起这些技术目前能提供的输入DNA的量，后续的测序步骤需要更大量的输入DNA的量才能有所收益。另外，对于利用FACS分选微滴的方法，这种分选可能导致污染DNA的引入，在DNA文库制备的情况下该污染DNA淹没(overwhelm)了感兴趣的分选DNA的量。本公开解决了上述问题并提供相关的优势。
发明内容
本文所描述的方法和系统提供了改进的基于乳液液滴的核酸扩增方法，其允许基于利用核酸扩增技术(例如PCR)检测的序列来检测、定量和/或分选生物系统中包含的核酸。核酸可以是自由漂浮的或包含在活体或非活体结构(包括颗粒、病毒和细胞)内。核酸可包括例如DNA或RNA。本公开部分基于以下令人惊讶的发现：非特异性扩增技术，例如多重置换扩增(MDA)，可以在聚合酶链式反应(PCR)的同一乳液微滴中进行。还提供了用于实践本公开的方法的系统和设备。
在示例性实施方案中，所公开的方法包括在多个乳液微滴(例如单乳液微滴或多重乳液微滴或大型单层囊泡(GUV))中包封可包括异质细胞、病毒和/或核酸群的样品，其中每个多重乳液微滴或GUV包括被不混溶壳包围的第一可混溶相流体，其中多重乳液微滴或GUV位于第二可混溶相载体流体中。在一些实施方案中，可以在包封之前稀释样品，例如以便在多重乳液微滴或GUV中包封控制数量的细胞、病毒和/或核酸。可以在使用本文所述的一种或多种方法将核酸扩增试剂(例如非特异性核酸扩增试剂(例如，MDA试剂))和PCR试剂在包封时加入单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV中或者在稍后的时间添加到单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV中。然后使单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV经历足以导致非特异性扩增和随后的PCR扩增的核酸扩增条件，使得如果单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV包含对应于感兴趣的靶标(例如感兴趣的细胞，病毒或核酸)的核酸，单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV将被可检测地标记，例如荧光标记，作为荧光测定(注入扩增DNA或 PCR的Sybr染色)的结果。为了回收目标核酸或包含目标核酸的实体，可以使用微流体(例如，介电电泳、膜阀等)或非微流体技术(例如，FACS)对可检测地标记的单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV进行分选。非特异性扩增步骤提供增加量的目标核酸用于随后的PCR扩增和检测。
根据本公开的多重乳液微滴可以例如通过以下步骤形成：(1)使混溶相流体(包括例如，细胞、病毒和/或核酸)连同核酸扩增试剂一起在微流控装置的通道中流动；(2)使混溶相流体与不混溶相流体接触(例如使用单乳液液滴制造器)，其中核酸和扩增试剂的混溶相流体溶液与不混溶相流体的接触导致形成由不混溶相流体包围的混溶相微滴(例如，单乳液微滴)；(3)使由不混溶相流体包围的混溶相微滴在微流控装置的通道内流动；(4)使由不混溶相流体包围的混溶相微滴与混溶相载体流体接触(例如使用双重乳液微滴制备器)，其中由不混溶相流体包围的混溶相微滴与混溶相载体流体的接触导致形成多重乳液微滴(例如，双重乳液微滴)，每个多重乳液微滴包含由不混溶相流体包围的混溶相微滴，其中所述不混溶相流体又被混溶相载体流体包围。可通过诱导多重乳液微滴经历去湿来从多重乳液微滴生成GUV，其中不混溶相流体被清除，留下一表面活性剂膜，该膜外部附着有的小的不混容相微滴的。可在微流体控制下进行该方法的一个或多个步骤。
在一些实施方案中，将包含病毒的样品包封在单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV中，并使其经历核酸扩增条件，如本文所述的。在一些实施方案中，使包封的病毒经历一种或多种病毒裂解技术，诸如蛋白酶k消化或热裂解。对目标病毒特异的核酸扩增测定可使含有目标病毒或源自目标病毒的核酸的单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV被可检测地标记，例如荧光标记。然后可通过分选单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV并通过微滴破裂(例如，通过化学或电学方式)回收其内容物来回收病毒和/或病毒核酸。
在一些实施方案中，将样品(例如包含细胞的样品)包封在单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV中，并使其经历核酸扩增条件，如本文所述的。在一些实施方案中，使样品(例如包括包封的细胞的样品)经历一种或多种细胞裂解技术，例如蛋白酶k消化或热裂解。例如，可以使含有细胞的微滴与蛋白酶接触以消化细胞蛋白质。适用于本公开的方法的蛋白酶包括本领域熟知的蛋白酶，例如丝氨酸蛋白酶，枯草杆菌蛋白酶型蛋白酶，例如蛋白酶K、brofasin等。在一些实施方案中，在足以消化细胞蛋白质的条件下，例如在50℃下30分钟或在足以消化微滴中包含的细胞蛋白质的任何其它合适的温度和时间下，将微滴与蛋白酶K一起孵育。
对目标细胞特异性的核酸扩增测定可使含有目标细胞或源自目标细胞的核酸的单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV被可检测地标记，例如荧光标记。然后可通过分选单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV并通过微滴破裂(例如，通过化学或电学方式)回收其内容物来回收细胞和/或细胞核酸。
可在如本文所述的单乳液微滴或多重乳微滴或GUV中进行的另外的核酸扩增反应包括例如链置换扩增(SDA)和滚环扩增(RCA)。
在根据本公开的方法的一个方面，提供了用于富集靶核酸序列的方法，其中所述方法包括将包含核酸的样品包封在多个单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV中；将多重置换扩增(MDA)试剂和聚合酶链式反应(PCR)试剂(包括合适的引物)引入单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV中；在足以进行MDA扩增的条件下孵育单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV然后在足以进行PCR扩增的条件下孵育单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV，以产生PCR扩增产物，其中所述合适的PCR引物可包括各自与靶核酸序列所包含的一种或多种寡核苷酸杂交的一种或多种引物，并且其中PCR扩增产物不包括整个靶核酸序列；在孵育之前或之后将检测组分引入单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV中；通过检测组分的检测来检测PCR扩增产物的存在或不存在，其中检测到检测组分指示PCR扩增产物和靶核酸序列的存在；以及基于检测组分的检测分选单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV，其中所述分选将包含PCR扩增产物和靶核酸序列(存在时)的单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV与不包含PCR扩增产物和靶核酸序列的单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV分开；并将来自所分选的单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV的核酸序列汇集，以提供靶核酸序列(存在时)的富集集合。可在微流体控制下进行这些步骤中的一个或多个。上述步骤之后可以是一个或多个测序步骤，例如一种或多种下一代测序技术。
如本文所述，术语“下一代测序”通常是指相对于标准DNA测序(例如，Sanger测序)的提升。尽管标准DNA测序能够使得从业者确定DNA序列中核苷酸的精确顺序，但是下一代测序也提供了平行测序，在此期间可以一致地测序数百万个碱基对DNA片段。标准DNA测序通常需要单链DNA模板分子、DNA引物和DNA聚合酶以扩增DNA模板分子。下一代测序有助于高通量测序，与标准DNA测序相比，可以在相当短的时间内对整个基因组进行测序。下一代测序还可有助于鉴定引起疾病的突变以诊断病理症状。下一代测序还可以在单一分析中提供关于样品的整个转录组的信息，而无需事先了解基因序列。
任何合适的非特异性核酸扩增方法和试剂，例如MDA方法和试剂，可以与所公开的方法结合使用，条件是这些方法和试剂与任何其他方法和试剂相容，例如，与该方法随后的扩增步骤和/或试剂(例如PCR扩增步骤和试剂)相容。可以与Taq DNA聚合酶组合使用的合适MDA聚合酶的实例是Bst聚合酶。Bst聚合酶可能具有优于其他MDA聚合酶(例如phi29聚合酶)的优势，因为Bst聚合酶在更宽的温度范围内有效并且在与Taq DNA聚合酶相似的缓冲条件下具有活性。
在实施主题方法时，可采用多种不同的基于PCR的测定，诸如定量PCR(qPCR)。用于此类测定的引物的数量和性质可以至少部分地基于所进行测定的类型、生物样品的性质和/或其它因素而变化。在某些方面，可被添加至微滴(例如，多重乳液微滴或GUV)的引物的数目可以为1至100种或更多，和/或可包括检测约1至100种或更多种不同基因(例如，癌基因)的引物。除了此类引物以外或取而代之地，还可在实施主题方法时使用一种或多种探针(例如，探针)。
如本文中所用，术语“滴”、“液滴”和“微滴”可以互换使用以表示含有至少第一流体相，例如含水相(例如，水)的微小的、通常为球形的微室，其由与第一流体相不混溶的第二流体相(例如，油)约束(bounded)。在一些实施方案中，第二流体相将是不混溶相载体流体。结合主题方法、装置和/或系统使用或产生的液滴可以是球形的，或者它们可以具有任何其他合适的形状，例如卵形或椭圆形。微滴(包括例如多重乳液微滴)具有尺寸，例如直径，范围为通常在约0.1μm至约1000μm，并且可用于包封细胞、DNA、酶和其它组分。在一些实施方案中，微滴(例如，多重乳液微滴)具有尺寸，例如直径为例如约1.0μm至1000μm(包括端值)，诸如1.0μm至750μm、1.0μm至500μm、1.0μm至100μm、1.0μm至10μm或1.0μm至5μm(包括端值)。在一些实施例中，如本文所述的液滴具有尺寸，例如直径为约1.0μm至5μm、5μm至10μm、10μm至100μm、100μm至500μm、500μm至750μm、或750μm至1000μm(包括端值)。因此，上述术语可用于指在微流控装置之中或之上产生的或由其产生的微滴，例如多重乳液微滴。
可从双重乳液微滴形成的GUV通常具有与它们所源自的双重乳液微滴相似的尺寸。因此，根据本公开的GUV可具有尺寸，例如直径的范围为约0.1μm至约1000μm。
微滴(例如，多重乳液微滴或GUV)本身可以变化，包括在尺寸、组成、含量等方面。微滴或GUV通常可具有约0.001皮升至1000皮升或更多，例如约0.001皮升至约0.01皮升、约0.01皮升至约0.1皮升、约0.1皮升至约1皮升、约1皮升至约10皮升、约10皮升至约100皮升或约100皮升至约1000皮升或更多的内部体积。此外，微滴可以通过或不通过表面活性剂和/或颗粒来稳定。
如本文所用，术语“载体流体”是指被配置或选择为包含一个或多个液滴的流体，如本文所述。载体流体可包括一种或多种物质，并且可具有一种或多种性质，例如粘度，其允许载体流体流过微流体装置或该装置一部分。在一些实施方案中，载体流体包括，例如：油或水，并且可以是液相或气相。
将试剂添加至微滴(例如多重乳液微滴或GUV)的方法可大幅度变化。可在一个步骤或多个步骤(诸如2个或更多个步骤、4个或更多个步骤或10个或更多个步骤)中添加试剂。在某些方面，可通过一个或多个包封和破裂步骤将试剂添加至多重乳液微滴或GUV中。例如，在一些实施方案中，所公开的方法可包括以下步骤：将合适的样品例如病毒、细胞或核酸包封在第一多重乳液微滴或GUV中，将一种或多种试剂和所述第一多重乳液微滴或GUV包封在第二多重乳液微滴或GUV中，并且破裂所述第一多重乳液微滴或GUV，从而使样品与所述一种或多种试剂接触。
在一个这样的实施方案中，将细胞与合适的裂解缓冲液一起包封至双重乳液或GUV中，在足以进行细胞裂解和/或蛋白质消化的条件下孵育，并加热灭活蛋白酶。然后将双重乳液或GUV包封在包含合适的核酸扩增试剂的双重乳液或GUV中并破裂，以将其内容物释放至包封双重乳液或GUV中，从而使细胞裂解物与核酸扩增试剂混合。然后可在适合于核酸扩增的条件下孵育剩余的双重乳液或GUV。
作为对上述方法的变型，可将细胞与合适的裂解缓冲液包封至单乳液中。在任选的蛋白酶灭活步骤后，然后可通过液滴合并将单乳液与含有合适的核酸扩增试剂的单乳液合并。然后将合并的单乳液微滴包封至双重乳液或GUV中以供后续的核酸扩增。或者，可将细胞与合适的裂解缓冲液包封在单乳液中，然后在任选的蛋白酶灭活步骤后，将其包封至含有核酸扩增剂的双重乳液或GUV中。应当注意的是，可使用同一微流控装置或使用两种或更多种不同的微流控装置(所述微流控装置可以以或可以不以流体连接)进行封装至单乳液中的步骤和封装至双重乳液中的步骤。
在一些实施方案中，所公开的方法可包括以下步骤：将一种或多种试剂包封在第一多重乳液微滴或GUV中，将合适的样品，例如病毒、细胞或核酸以及所述第一多重乳液微滴或GUV包封在第二多重乳液微滴或GUV中，并破裂所述第一多重乳液微滴或GUV，从而使所述样品与所述一种或多种试剂接触。
在一些实施方案中，所公开的方法可包括以下步骤：向第二多重乳液微滴或GUV添加试剂，其中所述添加包括将包含所述试剂的第一多重乳液微滴或GUV包封在第二多重乳液微滴或GUV中，并在第二多重乳液微滴或GUV内破裂所述第一多重乳液微滴或GUV，以使试剂与第二个多重乳液微滴或GUV的内容物接触。
如上所述，当使用单乳液液滴作为所公开的方法的一部分时，可使用适用于单乳液液滴的各种技术，包括例如液滴聚结、皮量注入(picoinjection)、多个液滴聚结等，这将在本文中更全面地描述。在某些实施方案中，通过其中注入流体本身用作电极的方法来添加试剂。注入流体可包含允许其原样使用的一种或多种类型的溶解的电解质。当注入流本身用作电极时，可避免在微流控芯片中出于向液滴添加试剂的目的而对金属电极的需要。在某些实施方案中，注入流体不用作电极，而是使用一个或多个液体电极代替金属电极。
可以使用各种不同的检测组分来应用检测核酸扩增产物的不存在或存在的各种方式。目标检测组分包括但不限于荧光素及其衍生物；罗丹明及其衍生物；青色素及其衍生物；香豆素及其衍生物；Cascade蓝及其衍生物；Lucifer黄及其衍生物；BODIPY及其衍生物等。示例性荧光团包括吲哚羰菁(C3)、吲哚二羰菁(C5)、Cy3、Cy3.5、Cy5、Cy5.5、Cy7、德克萨斯红、太平洋蓝、俄勒冈绿488、Alexa fluor-355、Alexa Fluor 488、Alexa Fluor 532、Alexa Fluor 546、Alexa Fluor-555、Alexa Fluor 568、Alexa Fluor 594、Alexa Fluor647、Alexa Fluor 660、Alexa Fluor 680、JOE、丽丝胺、罗丹明绿、BODIPY、异硫氰酸荧光素(FITC)、羧基荧光素(FAM)、藻红蛋白、罗丹明、二氯罗丹明(dRhodamine)、羧基四甲基罗丹明(TAMRA)、羧基-X-罗丹明(ROX)、LIZ、VIC、NED、PET、SYBR、PicoGreen、RiboGreen等。检测组分可以包括珠粒(例如，磁性或荧光珠粒，诸如Luminex珠粒)等。在某些方面，检测可涉及在热循环期间将微滴保持在固定位置，这样可对其重复成像。此类重复成像可涉及使用Megadroplet阵列，这将在本文中更全面地描述。在某些方面，检测可涉及固定和/或透化一个或多个微滴(例如，一个或多个多重乳液微滴或GUV)中的一个或多个细胞。
本文公开的方法的合适受试者包括哺乳动物，例如人。所述受试者可以是表现出疾病状况的临床表现或已被诊断患有疾病的受试者。在某些方面，受试者可以是已被诊断患有癌症，表现出癌症的临床表现，或因一种或多种因素诸如家族史、环境暴露、基因突变、生活方式(例如，饮食和/或吸烟)、一种或多种其它疾病状况的存在等而被确定为处于发展癌症的风险中的受试者。在某些方面，受试者可以是这样的受试者，其已被诊断患有微生物感染，表现出微生物感染的临床表现，或因一种或多种因素诸如家族史、环境暴露、基因突变、生活方式(例如，饮食和/或旅行)、一种或多种其它疾病状况的存在等而被确定为处于发展微生物感染的风险中。在某些方面，受试者可以是这样的受试者，其已被诊断患有病毒感染，表现出病毒感染的临床表现，或因一种或多种因素诸如家族史、环境暴露、基因突变、生活方式(例如，饮食和/或旅行)、一种或多种其它疾病状况的存在等而被确定为处于发展病毒感染的风险中。
本公开还提供微流控系统和装置。在某些方面，根据本公开的微流控系统包括样品加载区，例如细胞加载区；与样品加载区流体连通的单乳液液滴制造器、双重乳液液滴制造器；核酸扩增区和检测区。在一些实施方案中，双重乳液液滴制造器与单乳液液滴制造器流体连通。在其它实施方案中，可将双重乳液液滴制造器提供为不与单乳液液滴制造器流体连接的不同的系统部件。在一些实施方案中，核酸扩增区可包括热循环仪。在一些实施方案中，核酸扩增区与双重乳液液滴制造器流体连接。在一些实施方案中，系统包括检测区，其检测来自核酸扩增区存在或不存在反应产物，并且其可与核酸扩增区流体连接。在一些实施方案中，系统包括流体连接至单乳液液滴制造器的一个或多个室。此类室可包括例如用于将第一试剂添加至单乳液微滴的工具和/或加热元件。在一些实施方案中，系统包括流体连接至核酸扩增区的分选区或组合检测/分选区。在一些实施方案中，可选地或者除了“芯片上”分选区以外，微滴的分选还可在“芯片外”进行。例如，在水相包不混溶相包水相双重乳液的情况下，可使用芯片外流式细胞仪装置，例如FACS装置进行分选。在一些实施方案中，将包括如上所述的一个或多个元件的系统嵌在一个或多个微流控装置中。
附图说明
可从下面结合附图阅读的详细描述最好地理解本发明。包括在附图中的是以下图：
图1是显示根据本公开的一些实施方案的通过两步乳化形成的双重乳液的示意图。图A示意性地示出了不混溶相包混溶相单乳液例如油包水或水包油单乳液的形成。图B示意性地示出了在再注入不混溶相包混溶相单乳液后，混溶相包不混溶相包混溶相双重乳液(例如水包油包水双重乳液或油包水包油双重乳液)的形成。虽然在图1中被示出了为单独的部件，但应当注意，在所公开的装置、方法和系统的一些实施方案中，可在单个微流控装置中将单乳液液滴制造器和双重乳液液滴制造器提供为流体连接的部件。在双重乳液微滴形成后，收集双重乳液微滴以供进行随后的核酸扩增。此类核酸扩增可在微流控装置(例如，包括一个或多个单乳液和双重乳液液滴制造器的微流控装置)的核酸扩增区中进行，或在单独的核酸扩增仪器中“芯片外”进行。
图2是显示图1所示的通过两步乳化形成的双重乳液的更详细的实施方案的示意图。图2中的图A显示其中将PCR试剂和核酸于含水流体中引入微流控装置的流动通道中的实施方案。单乳液滴制造器引入不与含水流体混溶的流体例如油，以形成含有PCR试剂和核酸的单乳液微滴。然后将单乳液微滴再注入微流控装置的第二流动通道(图B)。双重乳液液滴制造器引入与含水流体混溶的流体(例如水)以及合适的表面活性剂(例如清洁剂)，以形成含有PCR试剂和核酸的双重乳液微滴。虽然在图2中被表示为单独的部件，但应当指出的是，在所公开的装置、方法和系统的一些实施方案中，可在单个微流控装置中将单乳液液滴制造器和双重乳液液滴制造器提供为流体连接的部件。在形成双重乳液微滴后，收集双重乳液微滴以供进行随后的PCR扩增。此类PCR扩增可在集成至微流控装置(例如，包括一个或多个单乳液和双重乳液液滴制造器的微流控装置)的热循环仪中进行，或在单独的热循环仪中“芯片外”进行。
图3提供可用于制备根据本公开的双重乳液的微流控装置的“M形接合点”部分的示意图。
图4提供可用于制备根据本公开的双重乳液的微流控装置的“M形接合点”部分的另一示意图(左上)。图4还提供可用于制备根据本公开的双重乳液的微流控装置的“M形接合点”部分的图像(右下)。
图5提供微流控装置的“M形接合点”部分的两个图像。顶部图像显示在对于右下方所示的构造(其中两个中间通道比内部通道高)的双重乳液的形成中被油包封的内相。底部图像显示对于左下方所示的具有相同高度的内部和中部通道的构造的不完全的双重乳液形成，其中内相位在油外部。
图6是显示根据本公开的实施方案的示例性双重乳液或GUV PCR工作流程的示意图。通常，将野生型和突变型DNA的混合群体封装至双重乳液或GUV中并进行热循环。通过DNA染色来鉴定含有突变型DNA序列的双重乳液或GUV，当与由所述突变型DNA扩增产生的PCR产物结合时，所述染料发荧光。通过使用一个或数个微流控装置，将核酸分子(图A)与PCR试剂(图B)一起分散至双重乳液微滴或GUV中。在标准PCR机中进行热循环之后，含有单一目标模板(或不止一种)的双重乳液或GUV将经历扩增，而没有模板的空的双重乳液或GUV将不会扩增。然后可用可扩散到双重乳液或GUV的核心并使扩增子染色的嵌入DNA染料对这些双重乳液或GUV进行染色(图C)。然后可使这些双重乳液或GUV经历“flow dropometry”(图D)，由此在流式细胞仪上定量双重乳液或GUV。基于泊松统计，样本中亮型液滴或GUV的百分比可表示目标模板的绝对数量。可以使用荧光激活细胞分选(FACS)器对这些亮液滴或GUV进行分选，以用于随后的应用诸如测序。
图7提供已如实施例1中所述对其进行了热裂解并测定了其TolA基因组区域的大肠杆菌(E.coli)的双重乳液PCR荧光读出。图4显示PCR扩增的双重乳液的明场图像(左)、FITC读出(中)和合并的明场FITC读出(右)。
图8提供显示可用于将单乳液包封在双重乳液中的装置的三维示意图的两个不同视图。其包括其中引入单乳液(例如油滴中的水)的通道，该通道打开通至其中添加另外的混溶相流体的大通道。这将注入的液滴聚集通过孔口，使得它们被包封在不混溶相液滴中并形成双重乳液，例如水包油包水双重乳液。
图9提供可用于构建双重乳化装置的PDMS板的两个示意图。左侧的板具有两个高度的通道-用于液滴再注入的短通道和收缩(constriction)通道(见上图)以及用于水相和出口的高通道。右侧的板只有高通道。为了完成装置，将板对齐并密封在一起，使得通道相面对。使用等离子体氧化法粘合装置。
图10提供将再注入的单乳液包封在双重乳液中的双重乳化装置的显微图像。再注入的单乳液从上方进入并被封装在装置的中心所示的收缩部分中。然后它们作为双重乳液出来，显示其中4个朝向装置的底部。
图11显示可用于与所公开的方法、系统和装置结合产生双重乳液微滴的同轴流动聚焦双重乳化装置的示意图(左)和图像(右)。内相、中间相和载体相在接合点处合并，在所述接合点处，由于载体相的高度的扩大和高流速而产生内相和中间相的同轴锥形体。使所述锥形体流动聚焦通过收缩，从而剥离单分散双重乳液。改变三相的流速比例以使得能够形成小(左)和大(右)的双重乳液。比例尺为50μm。
图12显示使用平面空间图案化微流控的双重乳液液滴制造器的图像。使该装置化学图案化为在其上半部分是疏水性的，并且在其下半部分是亲水性的，从而使得在上接合点处产生油包水液滴，并在下接合点处进行水包油双重乳化。
图13显示使用与数字PCR结合的双重乳液发生器的剂量反应曲线。将λDNA以1:2稀释在从950个拷贝的DNA/μL至0.928个拷贝的DNA/μL的预期范围内，包封所述DNA，以及经历所述dPCR技术(n＝3；误差线＝标准偏差)。
图14提供双重乳液数字PCR和MESA工作流程的示意图。使用两步(显示的)或一步(未显示的)双重乳化将包含核酸或细胞的样品分配至双重乳液中。将双重乳液收集在管中并进行热循环，从而在单一靶分子包封的情况下，在含有靶标的双重乳液中进行数字扩增。然后使双重乳液经历FACS分析和分选。
图15.双重乳液中的数字PCR。左图显示用于进行数字PCR的双重乳液的明场和荧光图像，右图显示绘制为侧向散射对比前向散射的双重乳液的FACS图，其中显示了门控参数。红色事件表示荧光低于最小荧光设门(未显示)的双重乳液，而绿色事件表示强度高于该阈值的双重乳液。行对应于具有不同靶DNA浓度(以皮克表示的)的样品(如所标记的)。在PCR之前，未检测到荧光阳性事件，但在PCR之后，检测到许多荧光阳性事件，其中事件数量受靶DNA浓度影响。
图16提供用于进行对于阳性收集通道(中图)和阴性收集通道(下图)的数字微滴式PCR预分选(上图)和后分选的双重乳液的图像。预分选群由亮液滴和暗液滴混合物组成，但是后分选阳性收集物包含几乎所有亮液滴，阴性收集物含有几乎所有暗液滴。
图17提供用于检测样品的λ病毒(Lambda virus)基因组和从样品富集出λ病毒基因组的双重乳液的FACS数据。上图显示双重乳液(显示大的实体的清晰群体，对应于所述双重乳液)的侧向散射对比向前散射。下图显示SSC×FSC图右上方上的“大的”事件的门控群体的侧向散射对比荧光通道(FITC)。随着λ病毒浓度增加，更多的双重乳液被检测为是荧光的，如通过在下图中从左至右比较所显示的。
图18提供HIV前病毒基因组、基因以及用于液滴中基因组检测的引物的位置以及所分选的分子的qPCR分析的图解。前病毒在于细胞间可变化的位置上被嵌入人基因组内。将样品片段化成约100kb的分子，并且基于所述分子是否含有前病毒基因组来分选所述分子。将gag引物组用于第一分选，将收集的核酸稀释，然后使用env引物组进行第二次分选。
图19提供显示使用MESA从人基因组DNA中富集出的HIV前病毒的定量PCR(标准的)测量的图表。四个图对应于gag、pol、env和LTR引物组的标准测量。红色曲线对应于人基因组DNA的原始样品(其中HIV前病毒据估计以10个拷贝/样品的比率存在)，所述原始样品用作标准品。蓝色曲线对应于在液滴MDA和于缓冲液中稀释100倍(使得对应于蓝色和红色曲线的样品中的DNA浓度与使用紫外线光谱仪测量的相等)后所分选的样品的测量。蓝色和红色曲线平均偏移约12Ct曲线，对应于目标浓度的约4000倍差异。当针对100倍的所分选的物质校正时，这导致MESA富集的样品中前病毒增加估计约400,000倍。使用连续两轮MESA对样品进行分选。
图20将T4的 PCR图像提供为单乳液图(A)和双重乳液图(B)。图(C)提供显示含有从FACS分选回收的T4的荧光双重乳液的图像。图(D)显示双重乳液的FSC-A(前向散射面积)对比SSC-A(侧向散射面积)log-log图和FITC通道荧光频率直方图。荧光图是由FSC-A/SSC-A图上的限定区中设门事件推导而来的。显示了所分选的荧光液滴的百分比。
图21提供了门控散点图，其显示了基于实施例9中乳液的绝对FITC荧光的流式细胞仪分选结果。
图22显示实施例9的映射的组装DNA重叠群。顶部图谱对应于分选的阳性乳剂，而底部图谱对应于未分选的乳剂。
具体实施方式
本文所描述的方法和系统提供一种改进的基于乳液液滴的核酸扩增方法，其允许基于生物系统中包含的核酸的序列(如利用核酸扩增技术例如PCR检测的)来检测、定量和/或分选所述核酸。核酸可以是自由漂浮的或包含在有生命或无生命结构(包括颗粒、病毒和细胞)内。核酸可包括例如DNA或RNA。本公开部分基于以下令人惊讶的发现：非特异性扩增技术，例如多重置换扩增(MDA)，可以在与聚合酶链反应(PCR)相同的乳液微滴中进行。还提供了用于实施本公开的方法的系统和装置。
在更详细地描述本发明之前，应当理解，本发明不限于所描述的特定实施方案，并且其同样当然可以变化。还应当理解，本文使用的术语仅用于描述特定实施方案的目的，并不旨在是限制性的，因为本发明的范围将仅受所附权利要求的限制。
在提供了值的范围的情况下，应当理解，也具体地公开了介于该范围上限与下限之间的每个居间值(直至下限的十分之一，除非上下文另有明确规定)。在所述范围内介于任何所述值或居间值之间的每个较小范围以及在该所述范围内的任何其它所述或居间值也包括在本发明内。这些较小范围的上限和下限可独立地包括在该较小的范围内或从该范围内排除，并且其中在该较小范围内包括上下限之一、不包括上下限两者或包括上下限两者的每一个范围也涵盖在本发明内，服从于所述范围内的任何特别排除的限值。当所述范围包括上下限值之一或两者时，排除那些所包括的限值之一或两者的范围也包括在本发明中。
除非另有定义，否则本文使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属领域的普通技术人员通常理解的相同的含义。尽管与本文所述类似或等同的任何方法和材料可用于本发明的实施或测试中，但现在可描述一些可能的和示例性的方法和材料。本文提及的任何和所有出版物通过引用并入本文以公开和描述与所引述的出版物相关的方法和/或材料。应当理解，只要存在矛盾，本公开取代所引用的出版物的任何公开。
必须指出，如本说明书中和所附权利要求中所用，除非上下文中另外明确指定，否则单数形式“一种/一个”和“该(the)”包括复数指示物。因此，例如，提及“微滴”包括多个这样的微滴，并且对“多乳液微滴”的提及包括提及一种或多种多乳液微滴等等。
要进一步指出的是，可撰写权利要求来排除任何可选元素。这样，该陈述意图用作与权利要求要素的描述联合使用此类排他性术语“单独地”、“仅仅”等或使用“否定(negative)”限制的在先在基础。
本文所论述的出版物仅针对它们在本申请提交日之前的公开内容而提供。此外，所提供的公开日可能不同于实际的公开日，这可能需要独立地进行确认。在此类出版物可能陈述与本公开的明确或隐含的定义或公开内容相冲突的定义或公开内容的情况下，以本公开的定义为准。
如在阅读本公开内容后对于本领域技术人员是很显然的，本文中描述的和举例说明的单个实施方案的每一个具有可容易地与其它几个实施方案的任一个的特征分开或组合的分立的组分和特征而不背离本发明的范围或精神。可以以所引用事件的顺序或以逻辑上可能的任何其它顺序进行任何引用的方法。
方法
如上概述的，本公开的方面包括使用单乳液液滴或多重乳液微滴和/或GUV从生物样品检测和/或分选组分的方法。方面包括用于细胞的检测、定量和/或基因分型的方法，所述细胞是例如正常哺乳动物细胞(例如，非肿瘤细胞)、肿瘤细胞(例如，循环肿瘤细胞(CTC))或微生物细胞。其它目标实施方案包括细胞的基于PCR的检测和/或分选、病毒颗粒的基于PCR的检测和/或分选以及来自核酸的异质群体的核酸的基于PCR的检测和/或分选。
如本文中所用，术语“生物样品”涵盖从各种来源获得的各种样品类型，所述样品类型包含生物材料。例如，该术语包括从哺乳动物受试者(例如，人受试者)获得的生物样品以及从食物、水或其它环境来源获得的生物样品等。定义涵盖血液和生物来源的其它液体样品，如以及固体组织样品，诸如活检样本或组织培养物或从其衍生的细胞及其后代。该定义还包括在获得后以任何方式(诸如通过用试剂处理、增溶或富集某些组分诸如多核苷酸)操纵的样品。术语“生物样品”涵盖临床样品，还包括培养物中的细胞、细胞上清液、细胞裂解物、细胞、血清、血浆、生物流体和组织样品。“生物样品”包括细胞，例如细菌细胞或真核细胞；生物体液诸如血液、脑脊髓液、精液、唾液等；胆汁；骨髓；皮肤(例如，皮肤活检物)；和从个体获得的抗体。
如本文所用，术语“分离的”，当在分离的细胞的语境中使用时，是指感兴趣的细胞，其处于与细胞天然存在的环境不同的环境中。“分离的”意指包括在样品内的细胞，所述样品基本上富集感兴趣的细胞和/或其中感兴趣的细胞被部分或基本上纯化。
如本文更全面地描述的，在各个方面，主题方法可用于检测来自此类生物样品的各种组分。目标组分包括但不一定限于细胞(例如，循环细胞和/或循环肿瘤细胞)、病毒、多核苷酸(例如，DNA和/或RNA)、多肽(例如，肽和/或蛋白质)，和可存在于生物样品中的许多其它组分。
术语“核酸”、“核酸分子”、“寡核苷酸”和“多核苷酸”可互换使用，是指任何长度的核苷酸的聚合形式，即脱氧核糖核苷酸或核糖核苷酸，或其类似物。该术语包括例如DNA、RNA及其修饰形式。多核苷酸可以具有任何三维结构，并且可以执行已知或未知的任何功能。多核苷酸的非限制性实例包括基因、基因片段、外显子、内含子、信使RNA(mRNA)、转运RNA、核糖体RNA、核酶、cDNA、重组多核苷酸、支链多核苷酸、质粒、载体、任何序列的分离的DNA、对照区、任何序列的分离的RNA、核酸探针和引物。核酸分子可以是线性的或环状的。
如本文中所用，“多核苷酸”或“寡核苷酸”是指核苷酸单体的线性聚合物，并且可以互换使用。多核苷酸和寡核苷酸可具有各种结构构型中的任何一种，例如是单链的、双链的或两者的组合，以及具有更高级的分子内或分子间二级/三级结构，例如发夹、环、三链体区域等。多核苷酸的大小通常在数个单体单元(例如5-40个)(此时它们通常被称为“寡核苷酸”)至数千个单体单元。每当多核苷酸或寡核苷酸由字母序列(大写或小写)诸如“ATGCCTG”表示时，可以理解，核苷酸以从左至右的5′→3′的顺序表示，并且“A”表示脱氧腺苷，“C”表示脱氧胞苷，“G”表示脱氧鸟苷，“T”表示胸苷，“I”表示脱氧肌苷，“U”表示尿苷，除非另有说明或根据上下文是明显的。除非另外指出，否则术语和原子编号规则将遵循Strachan和Read，Human Molecular Genetics 2(Wiley-Liss，New York，1999)中公开的那些规则。
本文中可互换使用的术语“多肽”、“肽”和“蛋白质”是指具有任何长度的氨基酸的聚合形式。NH2是指存在于多肽的氨基末端的游离氨基。COOH是指存在于多肽的羧基末端的游离羧基。按照标准多肽命名法，使用J.Biol.Chem.，243(1969)，3552-3559。
在某些方面，提供了用于对细胞(包括正常细胞或肿瘤细胞诸如CTC)进行计数和/或基因分型的方法。此类方法的一个特点是使用微流体。
如上所概述的，本公开的方法通常涉及在单乳液液滴或多重乳液微滴和/或GUV中进行核酸扩增，随后检测和/或分选单乳液液滴或多重乳液微滴和/或GUV。图1显示根据本公开的一些实施方案的通过两步乳化形成双重乳液的示意图。图A示意性地示出了不混溶相包混溶相单乳液(例如油包水或水包油单乳液)的形成。图B示意性地示出了在再注入不混溶相包混溶相单乳液后，混溶相包不混溶相包混溶相双重乳液(例如水包油包水双重乳液或油包水包油双重乳液)的形成。虽然在图1中被表示为单独的部件，但应当指出的是，在所公开的装置、方法和系统的一些实施方案中，可在单个微流控装置中将单乳液液滴制造器和双重乳液液滴制造器作提供为流体连接的部件。在双重乳液微滴形成后，收集双重乳液微滴以用于随后的核酸扩增。此类核酸扩增可在微流控装置(例如，包括一个或多个单乳液和双重乳液液滴制造器的微流控装置)的核酸扩增区中发生，或在单独的核酸扩增仪器中“芯片外”进行。
或者，在双重乳液微滴形成后，可使双重乳液微滴经历去润湿条件，形成GUV，其中将双重乳液的不混溶相流体从壳中清除，留下表面活性剂的膜，其中小的不混溶相液滴附着在所述膜的外部。
图2显示通过图1所示的两步乳化形成双重乳液的更详细的实施方案的示意图。图2中的图A显示其中将PCR试剂和核酸于含水流体中引入微流控装置的流动通道中的实施方案。单乳液液滴制造器引入与含水流体例如油不混溶的流体，以形成含有PCR试剂和核酸的单乳液微滴。然后将单乳液微滴再注入微流控装置的第二流动通道(图B)。双重乳液液滴制造器引入与含水流体例如水混溶的流体以及合适的表面活性剂例如清洁剂，以形成含有PCR试剂和核酸的双重乳液微滴。虽然在图2中被表示为单独的部件，但应当指出的是，在所公开的装置、方法和系统的一些实施方案中，可在单个微流控装置中将单乳液液滴制造器和双重乳液液滴制造器提供为流体连接的部件。在形成双重乳液微滴后，收集双重乳液微滴用于随后的PCR扩增。此类PCR扩增可在集成至微流控装置(例如，包括一个或多个单乳液和双重乳液液滴制造器中的微流控装置)中的热循环仪中进行，或在单独的热循环仪中“芯片外”进行。
或者，在双重乳液微滴形成后，可使双重乳液微滴经历去润湿条件，其中将双重乳液的不混溶相流体从壳中清除，留下表面活性剂的膜，其中小的不混溶相液滴附着于所述膜的外部。
对于其中将热循环仪集成至微流控装置中的实施方案，可使含有MDA试剂和PCR试剂的单乳液微滴或多重乳液微滴或GUV流过在对MDA和PCR有效的条件下孵育液滴的通道。通过实施例的方法，针对MDA，适当的条件可通过将单乳液液滴或多乳液微滴或GUV暴露于MDA孵育的多个循环(例如，1至10、2至9、3至8、4至7或5至6个循环)。其中循环包括在例如25℃下孵育5分钟，然后在42℃下孵育25分钟。针对PCR，适当的条件可通过使多重乳液微滴和/或GUV流过蛇形分布在保持在65℃和95℃、或者86℃、60℃和20℃的各个区域上的通道来实现。随着单乳液液滴或多重乳液微滴和/或GUV移动通过所述区域，它们的温度根据PCR的需要循环。在PCR反应期间，如果单乳液液滴或多重乳液微滴和/或GUV含有选定的引物被设计用来检测的核酸时，扩增被启动。这些特定PCR产物的存在可通过例如使单乳液液滴或多重乳液微滴和/或GUV发荧光的荧光输出来检测。因此，可以诸如通过使用流式细胞术扫描单乳液液滴或多重乳液微滴和/或GUV来检测荧光液滴的存在。在某些方面，单乳液液滴或多重乳液微滴和/或GUV也可使用例如液滴分选来进行分选，以回收目标液滴。通过使用本公开的命名法，从而“在微流体控制下”进行上述步骤。也就是说，在一个或多个微流控装置上，或至少部分地在一个或多个微流控装置上进行所述步骤。
根据本文所述的方法将来自生物样品的组分初始包封在单乳液微滴中可通过任何方便的方式来实现。目标包封方法还包括但不限于流体动力学触发的液滴形成以及由Link等，Phys.Rev.Lett.92，054503(2004)(其公开内容通过引用并入本文)描述的那些方法。
本公开的某些方法的特征是使用基于聚合酶链式反应(PCR)的测定来检测某些寡核苷酸和/或基因(例如，存在于细胞中的癌基因)的存在。基于PCR的目标测定的实例包括但不限于定量PCR(qPCR)、定量荧光PCR(QF-PCR)、多重荧光PCR(MF-PCR)、单细胞PCR、PCR-RFLP/实时PCR-RFLP、热启动PCR、巢式PCR、原位聚合酶克隆PCR(in situ polony PCR)、原位滚环扩增(RCA)、桥式PCR、皮滴定PCR、乳液PCR和逆转录酶PCR(RT-PCR)。其它合适的扩增方法包括连接酶链式反应(LCR)、转录扩增、自持序列复制、靶多核苷酸序列的选择性扩增、共有序列引物聚合酶链式反应(CP-PCR)、任意引物聚合酶链式反应(AP-PCR)、简并寡核苷酸引物PCR(DOP-PCR)和基于核酸的序列扩增(NABSA)。
可使用基于PCR的测定来检测某些基因(例如，某些癌基因)的存在。在此类测定中，对于每个目标基因是特异的一个或多个引物与每个细胞的基因组反应。这些引物具有对于特定基因是特异的序列，以使得当它们与所述细胞的基因组互补时，它们将唯一地杂交并启动PCR。如果存在目标基因并且引物是匹配的，则生成基因的许多拷贝。为了确定特定基因是否存在，可通过探测单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV的液体的测定，诸如通过用嵌入染色剂(如SybrGreen或溴化乙锭)对该溶液进行染色，将PCR产物与固体基质诸如珠粒(例如，磁珠或荧光珠粒，诸如Luminex珠粒)杂交，或通过分子间反应诸如FRET检测它们来检测PCR产物。这些染料、珠粒等各自是“检测组分”(在本文中广泛地并一般地用于指用于检测核酸扩增产物(例如PCR产物)的存在或不存在的任何组分的术语)的实例。
现在将在下文中更详细地概述这些基本方法的许多变型。
在多重乳液微滴和/或GUV中检测细胞(例如，肿瘤细胞)
主题方法的方面涉及检测生物样品中一种或多种细胞或细胞亚组(例如，肿瘤细胞)的存在。此类方法可包括例如将细胞包封在多重乳液微滴和/或GUV中的步骤，所述多重乳液微滴和/或GUV包含由不混溶的壳包围的第一混溶相流体，其中所述多重乳液微滴和/或GUV位于第二混溶相载体流体中；使多重乳液微滴和/或GUV经历足以在多重乳液微滴和/或GUV中实现细胞裂解的条件；使多重乳液微滴和/或GUV经历足以灭活或去除对核酸扩增具有抑制作用的一种或多种材料的条件；将核酸扩增试剂(例如，MDA扩增试剂和/或PCR扩增试剂)引入多重乳液微滴和/或GUV；使多重乳液微滴和/或GUV经历足以导致靶核酸(存在时)扩增的扩增条件；以及检测因靶核酸(存在时)的扩增而产生的扩增产物。
可使用任何便利的方式从受试者中回收生物样品(例如全血)。可使用例如处理步骤如离心、过滤等处理生物样品以除去除细胞外的组分。如果需要，可在将细胞包封至多重乳液微滴和/或GUV中之前用一种或多种抗体和/或探针对细胞进行染色。
在其中可导致细胞裂解，从而释放它们的基因组的条件下，还可将一种或多种裂解剂添加至含有细胞的多重乳液微滴和/或GUV中。在将细胞包封至多重乳液微滴和/或GUV后，可添加裂解剂。可使用任何便利的裂解剂，诸如蛋白酶K或细胞毒素。在具体实施方案中，可将细胞与含有清洁剂诸如Triton X100和/或蛋白酶K的裂解缓冲液共包封在多重乳液微滴和/或GUV中。其中可引起细胞爆裂的特定条件将取决于所使用的特定裂解剂而变化。例如，如果将蛋白酶K作为裂解剂掺入，则可将多重乳液微滴和/或GUV加热至约37-60℃持续约20分钟以裂解细胞并使得蛋白酶K能够消化细胞蛋白，然后将它们加热至约95℃持续约5-10分钟以使蛋白酶K失活。
在某些方面，细胞裂解还可以或者替代地依赖不涉及添加裂解剂的技术。例如，裂解可通过机械技术来实现，所述机械技术可采用各种几何特征来实现细胞的刺孔、剪切、研磨等。还可使用其它类型的机械破裂，诸如声学技术。另外，还可使用热能来裂解细胞。可在本文所述的方法中使用实现细胞裂解的任何便利的手段。
可将引物引入针对待检测的每个基因和/或遗传标志物例如癌基因的多重乳液微滴和/或GUV中。因此，在某些方面，用于各种基因和/或遗传标志物(例如，所有癌基因)的引物可同时存在于多重乳液微滴和/或GUV中，从而提供多重测定。可使多重乳液微滴和/或GUV进行温度循环，使得含有靶细胞(例如，癌细胞)的多重乳液微滴和/或GUV将进行PCR。替代性地或额外地，可使用MDA或其他等温核酸扩增方法，例如环介导的等温扩增(LAMP)、链置换扩增(SDA)、解旋酶依赖性扩增(HDA)和切口酶扩增反应(NEAR)。只有对应于基因组中存在的癌基因和/或遗传标志物的引物才将诱导扩增，从而在多重乳液微滴和/或GUV中生成这些癌基因和/或遗传标志物的许多拷贝。检测这些扩增产物的存在可通过各种方式来实现，诸如通过使用FRET，用嵌入染料染色或将它们连接至珠粒上。可光学探测多重乳液微滴和/或GUV以检测扩增产物。在一些实施方案中，光学探测多重乳液微滴和/或GUV可能涉及对初始群体中存在的肿瘤细胞的数量进行计数和/或允许鉴定存在于每个肿瘤细胞中的癌基因。
主题方法可用于确定生物样品是否含有特定的目标细胞，例如肿瘤细胞。在某些方面，主题方法可包括定量生物样品中存在的目标细胞例如肿瘤细胞的数目。定量生物样品中存在的目标细胞(例如，肿瘤细胞)的数目可以至少部分地基于在其中检测到扩增产物的多重乳液微滴和/或GUV的数目。例如，可在其中预期大多数微滴含有0个或1个细胞的条件下产生多重乳液微滴和/或GUV。可使用本文中更全面描述的技术除去不含任何细胞的多重乳液微滴和/或GUV。在进行上文中概述的PCR步骤后，可对被检测到含有扩增产物的多重乳液微滴和/或GUV的总数进行计数，以便定量生物样品中目标细胞例如肿瘤细胞的数量。在某些方面，所述方法还可包括对多重乳液微滴和/或GUV的总数进行计数，以便测定作为目标细胞例如肿瘤细胞的来自生物样品的细胞的分数或百分数。
在一些实施方案中，将扩增试剂(例如MDA扩增试剂和/或PCR扩增试剂)引入多重乳液微滴和/或GUV中包括将扩增试剂引入第二混溶相载体流体，其中扩增试剂从第二混溶相载体流体中扩散，通过不混溶的壳，并进入多重乳液微滴和/或GUV的第一混溶相流体中。
可通过分选多重乳液微滴和/或GUV并通过微滴破裂(例如通过如本文中更详细描述的化学、电学或机械手段)回收它们的内容物来回收目标细胞和/或细胞材料。可使用各种合适的分选技术和相关装置来对含有扩增产物(包括本文所述的那些扩增产物)的多重乳液微滴和/或GUV进行分选和分离。上述方法也可以在单乳液中进行。
多重乳液微滴和/或GUV中的核酸检测
如本文所讨论的，所公开的方法可用于检测来自各种生物样品的目标核酸(例如，DNA或RNA)。此类方法可包括例如将核酸和扩增试剂(例如MDA扩增试剂和/或PCR扩增试剂)包封在多重乳液微滴和/或GUV中的步骤，所述多重乳液微滴和/或GUV包含由不混溶的壳包围的第一混溶相流体，其中将多重乳液微滴和/或GUV置于第二混溶相载体流体中；以及使所述多重乳液微滴和/或GUV经历足以导致核酸扩增的扩增条件；以及检测由核酸的扩增产生的扩增产物。在一些实施方案中，第二混溶相载体流体是经缓冲的水相载体流体，并且在一些实施方案中，第一和第二混溶相流体是相同的。扩增条件可以是MDA条件和PCR条件，例如RT-PCR条件和/或额外的等温扩增条件，例如环介导的等温扩增(LAMP)、链置换扩增(SDA)、解旋酶依赖性扩增(HDA)和切口酶扩增反应(NEAR)。
可通过分选多重乳液微滴和/或GUV并通过微滴破裂(例如，通过如本文更详细描述的化学、电学或机械手段)回收它们的内容物来回收目的核酸。可使用各种合适的分选技术和相关装置来分选和分离含有扩增产物(包括本文所述的那些扩增产物)的多重乳液微滴和/或GUV。上述方法也可以在单乳液中进行。
在一个方面，提供了用于富集靶核酸序列的方法，其中所述方法包括将包含核酸的样品包封在多个多重乳液微滴和/或GUV中；将MDA试剂和聚合酶链式反应(PCR)试剂和多个合适的引物引入多重乳液微滴和/或GUV；在足以进行MDA扩增的条件下和在足以进行PCR扩增的条件下分别孵育多重乳液微滴和/或GUV以产生PCR扩增产物，其中合适的PCR引物可包括各自与靶核酸序列所包含的一个或多个寡核苷酸杂交的一个或多个引物，并且其中PCR扩增产物不包括整个靶核酸序列；在孵育之前或之后将检测组分引入多重乳液微滴和/或GUV中；通过检测组分的检测来检测PCR扩增产物的存在或不存在，其中所述检测组分的检测指示PCR扩增产物和靶核酸序列的存在；以及基于所述检测组分的检测来分选所述多重乳液微滴和/或GUV，其中所述分选将包含PCR扩增产物和靶核酸序列(存在时)的多重乳液微滴和/或GUV与不包含所述PCR扩增产物和所述靶核酸序列的多重乳液微滴和/或GUV分离；以及将来自所分选的多重乳液微滴和/或GUV的核酸序列汇集，以提供目标核酸序列(存在时)的富集集合。可在微流体控制下进行这些步骤中的一个或多个。上述方法也可以在单乳液中进行。
上述方法允许例如基于PCR可检测子序列的存在从异质系统中富集出DNA分子。所述DNA分子可以是短的(例如，数百个碱基)或长的(例如，兆碱基或更长)。可将样品包封在微滴中，使得以数字化方式在微滴中检测靶分子，即，每个微滴含有0个或1个靶分子。然后可基于例如荧光来分选微滴以回收靶分子。该方法可用于在DNA片段的异质样品中富集大的基因组区域(例如长度上为兆碱基量级)。
上述方法使得能够回收足够量的DNA，而不需要进行PCR来扩增DNA以供进行测序。无扩增DNA样品制备是有价值的，例如，当PCR不保留目标序列或表观遗传因子，或不能回收具有所需长度的序列(例如，大于约10kb，长片段PCR(long-range PCR)的实际限度)时。
上述方法的另一个应用是富集DNA以用于表观遗传学测序。DNA上的表观遗传标志物因PCR而未得到保留，因此对其进行测序需要来自宿主核酸的未扩增的DNA。通过上述方法，可获得足够量的DNA以供进行测序而不需要进行PCR，并从而保留表观遗传标志物。
当靶核酸的长度超过长链PCR的实际限度时，例如，当核酸大于约10kb时，和/或当需要保留DNA上的表观遗传学标志物时。上述方法具有特定的效用。在一些实施方案中，待富集的靶核酸长度大于约100kb，例如长度大于约1兆(megabase)碱基。在一些实施方案中，待富集的靶核酸的长度为约10kb至约100kb，约100kb至约500kb，或约500kb至约1兆碱基。
扩增后和/或纯化后，可使用化学和渗透方法破裂乳液以用于将来分析。例如，可将等体积的1H、1H、2H、2H-全氟代-1-辛醇添加至纯化的样品中，并通过吸移或涡旋混合。然后可使所得的混合物平衡，并将含水层洗脱出来以用于进一步分析。类似地，可将大量过量的纯净水添加至分选后样品中，混合，并使其在室温下孵育数小时。然后可直接分析所得的混合物的纯化的目标样品。
多重置换扩增
如上所述，在实施本发明的方法中，MDA可用于以通常无偏和非特异性的方式扩增核酸，例如基因组DNA，用于下游分析，例如通过下一代测序。为清楚起见，MDA可以适当地与本文所述的任何方法结合使用。
根据本公开的方法的示例性实施方案包括：将从生物样品获得的核酸模板分子包封在微滴(例如，单乳液微滴或多重乳液微滴)中，引入MDA试剂和多个MDA引物进入微滴，并在有效产生MDA扩增产物的条件下孵育微滴，其中孵育有效地从核酸模板分子产生MDA扩增产物。在一些实施方案中，包封和引入步骤作为单个步骤发生，例如，其中核酸模板分子与MDA试剂和多个MDA引物混合并乳化，例如使用微流体装置的流动聚焦元件。
本文所描述的基于MDA分析的条件可以以一种或多种方式变化。例如，可被添加至(或包封于)微滴的MDA引物的数量可以变化。术语“引物”指一个或多个引物，并且是指寡核苷酸，无论是天然存在的(如在纯化的限制性消化中)还是合成产生的，所述寡核苷酸，当被置于其中催化与核酸链互补的引物延伸产物的合成的条件下时，能够用作沿互补链合成的起始点。此类条件包括在合适的缓冲液(“缓冲液”包括作为辅因子，或影响pH、离子强度等的取代物)中和在合适的温度下存在四种不同的脱氧核糖核苷三磷酸和聚合诱导剂诸如合适的DNA聚合酶(例如Φ29DNA聚合酶或Bst DNA聚合酶)。引物优选是单链的，以在扩增中获得最大效率。在MDA的背景下，定期使用随机六聚体引物。
如本文所用的核酸序列的互补序列是指当与所述核酸序列对齐以使得一个序列的5′末端与另一个序列的3′末端配对时，处于“反向平行缔合”的寡核苷酸。互补不需要是完全的；稳定的双链体可含有错配碱基对或不匹配的碱基。核酸技术领域的技术人员可根据经验考虑多种变量来确定双链体的稳定性，所述多种变量包括例如寡核苷酸的长度、寡核苷酸中的胞嘧啶和鸟嘌呤碱基的百分比浓度、离子强度和错配碱基对的发生率。
可添加至(或包封于)微滴的MDA引物的数量可以为约1种至约500种或更多种，例如约2种至100种引物，约2种至10种引物，约10种至20种引物，约20种至30种引物，约30种至40种引物，约40种至50种引物，约50种至60种引物，约60种至70种引物，约70种至80种引物，约80种至90种引物，约90种至100种引物，约100种至150种引物，约150种至200种引物，约200种至250种引物，约250种至300种引物，约300种至350种引物，约350种至400种引物，约400种至450种引物，约450种至500种引物，或约500种引物或更多种引物。
可以在一个步骤中或在多于一个步骤中将这些引物和/或试剂添加到微滴中。例如，引物可以在两个或更多个步骤、三个或更多个步骤、四个或更多个步骤、或五个或更多个步骤中添加。在使用裂解剂的情况下，无论引物是在一个步骤中还是在多于一个步骤中添加，它们可以在添加裂解剂之后添加，在添加裂解剂之前添加，或者与添加裂解剂同时添加。当在添加裂解剂之前或之后添加时，MDA引物可以在与添加裂解剂分离的单独步骤中添加。
一旦将引物添加到微滴中，就可以在足以进行MDA的条件下孵育微滴。微滴可以在与用于添加引物的相同的微流体装置上孵育，或者可以在单独的装置上孵育。在某些实施方案中，在足以进行MDA扩增的条件下微滴可以在与用于细胞裂解的相同微流体装置上孵育。孵育微滴可以采用多种形式，例如微滴可以在恒定温度下孵育，例如30℃，例如约8至约16小时。或者，可以使用在25℃下持续5分钟，然后在42℃下持续25分钟的循环。
尽管本文描述的用于产生MDA扩增产物的方法不需要使用特异性探针，但是本发明的方法还可以包括将一种或多种探针引入微滴中。如本文关于核酸所用，术语“探针”通常是指标记的寡核苷酸，其与靶核酸中的序列形成双链体结构，这是由于探针中至少一个序列与目标区域序列中的序列的互补性。探针优选不含与用于引发MDA反应的序列互补的序列。添加的探针的数量可以是约1至500，例如，约1至10个探针、约10至20个探针、约20至30个探针、约30至40个探针、约40至50个探针、约50至60个探针、约60至70个探针、约70至80个探针、约80至90个探针、约90至100个探针、约100至150个探针、约150至200个探针、约200至250个探针、约250至300个探针、约300至350个探针、约350至400个探针、约400至450个探针、约450至500个探针、或约500个探针或更多。可以在添加一种或多种引物之前、之后或之后将探针引入微滴中。
在某些实施方案中，基于MDA的测定可用于检测细胞中存在的某些RNA转录物或测序一种或多种RNA病毒的基因组。在此类实施方案中，可使用本文所述的任何方法将MDA试剂加入微滴中。在添加(或包封)MDA试剂之前或之后，可以在允许逆转录的条件下孵育微滴，然后在允许如本文所述的MDA的条件下孵育微滴。微滴可以在与用于添加MDA试剂相同的微流体装置上孵育，或者可以在单独的装置上孵育。在某些实施方案中，在允许MDA的条件下孵育微滴在与用于包封和/或裂解一种或多种细胞的微流体装置相同的装置上进行。
在某些实施方案中，添加到用于MDA的微滴中的试剂还包括能够检测MDA扩增产物的荧光DNA探针。可以使用任何合适的荧光DNA探针，包括但不限于SYBR Green、分子信标(Molecular Beacons)和Scorpion探针。在某些实施方案中，添加到微滴中的试剂包括一种以上的DNA探针，例如两种荧光DNA探针、三种荧光DNA探针或四种荧光DNA探针。多种荧光DNA探针的使用允许在单一反应中同时测量MDA扩增产物。
PCR
如上所述，在实施本发明的方法中，基于PCR的测定可用于检测某些感兴趣的核酸的存在，例如感兴趣的基因和/或遗传标记，例如致癌基因，存在于细胞或核酸的异质样品中。这种基于PCR的测定可以在相同的微滴(例如单乳液微滴或多乳液微滴)中进行，作为的MDA扩增先前或随后的步骤。这种基于PCR的测定的条件可以以一种或多种方式变化。
例如，可以添加到单乳液微滴或多乳液微滴和/或GUV中的PCR引物的数量可以变化。术语“引物”可以指多于一种引物，并且是指寡核苷酸，无论是天然发生的(如在纯化的限制性消化物中)，还是合成产生的，其都能够在处于催化合成与核酸链互补的引物延伸产物的条件下作为沿着互补链的合成起始点起作用。这些条件包括在合适的缓冲液中存在四种不同的脱氧核糖核苷三磷酸和聚合诱导剂，例如DNA聚合酶或逆转录酶(“缓冲液”包括作为辅因子或影响pH、离子强度等的取代基)，并在合适的温度下。引物优选是单链的，以获得最大的扩增效率。
本文所用的核酸序列的互补序列是指寡核苷酸，当与核酸序列比对，使得一个序列的5'末端与另一个序列的3'末端配对时，是处于“反平行关联”的。互补性不需要是完美的；稳定的双链体可能含有错配的碱基对或不匹配的碱基。核酸技术领域的技术人员可以根据经验考虑许多变量，包括例如寡核苷酸的长度、寡核苷酸中胞嘧啶和鸟嘌呤碱基的浓度百分比、离子强度和错配碱基对的发生率，确定双链体稳定性。
可以添加到单乳液微滴或多乳液微滴和/或GUV中的PCR引物的数量可以为约1至约500或更多，例如，约2至100种引物、约2至10种引物、约10至20种引物、约20至30种引物、约30至40种引物、约40至50种引物、约50至60种引物、约60至70种引物、约70至80种引物、约80至90种引物、约90至100种引物、约100至150种引物、约150至200种引物、约200至250种引物、约250至300种引物、约300至350种引物、约350至400种引物、约400至450种引物、约450种至约500种引物、或约500种引物或更多。
这些引物可包含用于一种或多种目标基因例如癌基因的引物。添加的目标基因的引物数量可以是约1种至500种，例如约1种至10种引物，约10种至20种引物，约20种至30种引物，约30种至40种引物，约40种至50种引物，约50种至60种引物，约60种至70种引物，约70种至80种引物，约80种至90种引物，约90种至100种引物，约100种至150种引物，约150种至200种引物，约200种至250种引物，约250种至300种引物，约300种至350种引物，约350种至400种引物，约400种至450种引物，约450种至500种引物，或约500种引物或更多种引物。目标基因和癌基因包括但不限于BAX、BCL2L1、CASP8、CDK4、ELK1、ETS1、HGF、JAK2、JUNB、JUND、KIT、KITLG、MCL1、MET、MOS、MYB、NFKBIA、EGFR、Myc、EpCAM、NRAS、PIK3CA、PML、PRKCA、RAF1、RARA、REL、ROS1、RUNX1、SRC、STAT3、CD45、细胞角蛋白、CEA、CD133、HER2、CD44、CD49f、CD146、MUC1/2和ZHX2。
可以在一个步骤或不止一个步骤中将此类引物和/或试剂添加至单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV中。例如，可在两个或更多个步骤，三个或更多个步骤，四个或更多个步骤，或五个或更多个步骤中添加引物。无论是在一个步骤中还是在不止一个步骤中添加引物，可在添加裂解剂之后，在添加裂解剂之前，或在添加裂解剂的同时添加它们。当在添加裂解剂之前或之后添加时，可在与添加裂解剂分开的步骤中添加PCR引物。
一旦已将引物添加至单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV中，就可在允许进行PCR的条件下孵育所述单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV。可在用于添加引物的同一微流控装置中孵育单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV，或者可在单独的装置中孵育单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV。在某些实施方案中，在允许PCR扩增的条件下，在用于包封和裂解细胞的同一微流控装置上孵育单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV。孵育单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV可以采取多种形式。在某些方面，可使含有PCR混合物的单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV在有效用于PCR的条件下流过孵育微滴的通道。使单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV流过通道可涉及蛇形分布在保持在对PCR有效的温度下的各种温度区上的通道。此类通道可以例如在两个或多个温度区上循环，其中至少一个区保持在约65℃，并且至少一个区保持在约95℃。或者，可以使用86℃、60℃和20℃的区。当单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV移动通过此类区域时，它们的温度根据PCR的需要循环。本领域技术人员可容易地确定区域的精确数目和每个区域的各自温度，以实现所需的PCR扩增。
在其它实施方案中，孵育单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV可涉及Megadroplet阵列的使用。在此类装置中，凹陷进通道(例如，PDMS通道)的数百、数千或数百万个捕集阱的阵列位于热系统的上方。可对通道加压，从而防止气体逸出。微流控通道的高度小于单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV的直径，从而导致单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV采用扁平的煎饼形状。当单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV在未占据的凹陷上方流过时，其采用较低的、能量上更有利的曲率半径，从而导致将单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV完全拉入捕集阱的力。通过使单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV作为密集流水来流动，可以确保阵列上的所有捕集阱都被占据。整个装置可使用加热器来进行热循环。
在某些方面，加热器包括珀尔帖板，散热器和控制计算机。珀尔帖板允许通过控制施加的电流来加热或冷却芯片，使之高于或低于室温。为了确保受控和可重现的温度，计算机可使用集成的温度探针监测阵列的温度，并可根据需要调整施加的电流以加热和冷却。金属(例如铜)板允许在冷却循环期间均匀地施加热量和耗散多余的热量，使得能够在约1分钟内从约95℃冷却至约60℃。
本发明的方法还可包括将一个或多个探针引入单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV。如本文中关于核酸所用的，术语“探针”是指由于探针中的至少一个序列与靶区域中的序列的互补性而与靶核酸中的序列形成双链体结构的标记的寡核苷酸。在一些实施方案中，探针不含与用于引发聚合酶链式反应的序列互补的序列。添加的探针的数量可以是约1个至500个，例如约1个至10个探针，约10个至20个探针，约20个至30个探针，约30个至40个探针，约40个至50个探针，约50个至60个探针，约60个至70个探针，约70个至80个探针，约80个至90个探针，约90个至100个探针，约100个至150个探针，约150个至200个探针，约200个至250个探针，约250个至300个探针，约300个至350个探针，约350个至400个探针，约400个至450个探针，约450个至500个探针或约500个探针或更多个探针。可在添加一种或多种引物之前，紧接其或之后将探针引入多重乳液微滴和/或GUV中。目标探针包括但不限于探针(例如，如Holland,P.M.；Abramson,R.D.；Watson,R.；Gelfand,D.H.(1991)."Detection of specific polymerase chain reaction product by utilizingthe 5’—3’exonuclease activity of Thermus aquaticus DNA polymerase".PNAS,88(16):7276-7280中所述的)。
在某些实施方案中，可使用基于RT-PCR的测定来检测存在于细胞中的某些目标转录物(例如，癌基因)的存在。在此类实施方案中，除了用于进行本文所述的PCR的试剂(统称为“RT-PCR试剂”)以外，还将逆转录酶和cDNA合成所需的任何其它试剂添加至单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV中。使用本文所述的任何合适的方法将RT-PCR试剂添加至单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV中。一旦将用于RT-PCR的试剂添加至单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV中，就可在允许逆转录的条件下，随后在允许进行本文所述的PCR的条件下，孵育单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV。可在与用于添加RT-PCR试剂的同一微流控装置上孵育单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV，或可在单独的装置上孵育。在某些实施方案中，在允许RT-PCR的条件下，在用于包封和裂解细胞的同一微流控装置上孵育单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV。
在某些实施方案中，添加至单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV以供进行RT-PCR或PCR的试剂还包括能够检测RT-PCR或PCR产物的荧光DNA探针。可使用任何合适的荧光DNA探针，包括但不限于SYBR Green、分子信标和Scorpion探针。在某些实施方案中，添加至单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV中的试剂包括不止一种DNA探针，例如两种荧光DNA探针、三种荧光DNA探针或四种荧光DNA探针。多种荧光DNA探针的使用允许在单个反应中同时测量RT-PCR或PCR产物。
双重PCR
为了扩增稀有转录物，可使已如本文所述进行第一步RT-PCR或PCR反应的多重乳液微滴和/或GUV进一步进行第二步PCR反应。在一些实施方案中，将已经历第一步RT-PCR或PCR反应的第一多重乳液微滴和/或GUV包封在第二多重乳液微滴和/或GUV中，所述第二多重乳液微滴和/或GUV含有另外的PCR试剂，包括但不限于酶(例如DNA聚合酶)、DNA探针(例如荧光DNA探针)和引物，然后破裂第一多重乳液微滴和/或GUV。在某些实施方案中，含有另外的PCR试剂的第二多重乳液微滴和/或GUV大于已经历第一步RT-PCR或PCR反应的微滴。这可能是有益的，例如，因为其允许对可对第二步PCR具有抑制性的细胞组分进行稀释。第二步PCR反应可在用于进行第一步反应的同一微流控装置上或在不同的微流控装置上进行。也可以使用单乳液微滴代替多重乳液微滴来进行上述方法
在一些实施方案中，用于第二步PCR反应的引物是与第一步骤RT-PCR或PCR反应中使用的引物相同的引物。在其它实施方案中，第二步PCR反应中使用的引物不同于第一步反应中使用的引物。
数字PCR
本文所述的方法和装置可用于使用例如数字PCR定量核酸。在数字PCR中，稀释来自溶液的靶核酸，使得当样品被分离在隔室中时，大多数隔室包封了0或1个靶分子，尽管通常可使用较高的加载速率(只要可对它们进行建模)。将足以扩增靶核酸的试剂也包括在隔室中，并且使隔室经历适合于扩增的条件。隔室可具有各种结构，包括在衬底中制造的微孔或单个乳液液滴。还可将它们形成为例如本公开的多重乳液微滴，例如双重乳液和/或GUV。在一些此类实施方案中，将样品在双重乳液中分区，并使双重乳液经历扩增。含有靶标的液滴经历扩增，而那些不含靶标的那些液滴不经历扩增，并且因此不产生核酸扩增产物。如果包括检测组分，则包含靶标的双重乳液可以填充可检测的信号，从而允许通过例如成像或flow dropometry来鉴定它们。使用双重乳液进行此类数字PCR的强有力的有利方面是可将双重乳液悬浮在与分配的样品混溶的含水载体相中，因此可以容易地使用商购可得的流式细胞仪和荧光激活细胞分选机(FACS)来进行检测和/或分选。
如本文所述的，这允许从样品富集出靶实体(target entity)，这对于不容易在其中实现分选的其它方法是不可能的。所公开的方法可用于通过对双重乳液的分数进行计数来定量溶液中的核酸，所述双重乳液具有荧光并进行了扩增，并因此在大多数情况下含有至少一种靶核酸；由于随机原因或例如灰尘或干扰扩增反应的特异性的其它污染物的包封，可发生假扩增。还可包括探针、分子信标、SYBR和其它种类的检测组分，从而允许使用多个光谱以同时检测靶标中不同核酸序列的扩增，或由于多个靶标被包封在同一双重乳液中，这在一些情况下可以是有利的。
测量核酸的长度
本文描述的方法和装置可用于测量溶液中的核酸的长度分布。这可通过设计探针序列来实现，所述探针序列在沿靶核酸长度的具有已知距离的不同区域处与所述靶核酸退火。然后可将探针与靶核酸混合并分配在多重乳液微滴，例如双重乳液和/或GUV中。每个多重乳液微滴和/或GUV可含有例如两个引物和探针组，所述引物和探针组发出具有已知间隔距离的两个不同区域存在于靶标上的信号。可对于探针的不同组合重复这一点，使得不同的对探测靶标的不同距离和不同区域。如果需要，可使样品经历扩增、分析和分选。在分析中，会发现一些多重乳液微滴和/或GUV只用所述探针之一进行扩增，而其它多重乳液微滴和/或GUV则例如只用另一种探针扩增。这表明在这些多重乳液微滴和/或GUV中，一种类型含有只针对一种所述探针的区域，而另一种类型含有针对另一种探针的区域。在该群体中，还可以有用两种探针进行扩增的多重乳液微滴和/或GUV，这表明其中的靶核酸含有两个区域。在该相同的悬浮液中，除了当然未进行扩增并因此可推测地不含靶向区域的液滴以外，还将会有大量包含可测量的分数的3种类型的液滴中的每一种的多重乳液微滴和/或GUV。该数据可用于推断溶液中核酸的长度。
例如，如果溶液中的核酸在很大程度上完整如整个分子，则大多数进行扩增的液滴将会表现出利用探针和引物组的扩增，因此将显示混合信号。相反，如果核酸靶标被高度片段化，则大多数检测事件将是一种或另一种探针，只有罕见情况是两种探针。由于探针之间的距离可以是已知的，因此这允许估计溶液中分子的长度和片段。可使用靶向不同区域和/或在其间具有不同距离的不同探针组来重复该过程，以更全面地表征靶核酸的片段化。上述方法也可以使用单乳液微滴代替多重乳液微滴来进行。
多重乳液微滴和/或GUV中的MESA
本文所述的方法可用于进行微流控富集以供进行靶核酸的序列分析(MESA)。这通过使用这样的方法来实现：所述方法将靶核酸包封在多重乳液微滴和/或GUV中并在这些液滴中进行扩增，当液滴含有靶序列时产生荧光信号。然后可对这些液滴进行分选，从而将核酸富集在分选池中。如果需要，还可将反应多重化以区分含有多个不同子序列的分子。扩增也可用于在分选之前、与之同时或之后扩增所分选的核酸，以使得能够进行测序。
该方法的一个关键有利方面是在多重乳液微滴和/或GUV中扩增的区域可被简单地用作“检测区域”，即扩增子不必包含经历测序的分子。相反，当靶分子存在于多重乳液微滴和/或GUV中时，它们发出信号，使得可以回收整个分子以用于下游分析。这很有效，因为其允许大的核酸(甚至是太大而无法有效扩增的核酸)被回收，以用于下游分析。例如，假设存在一种被认为是尚未发现的微生物中的重要生物学途径(例如，信号级联)的一部分的基因。目标是回收编码参与该途径的蛋白质的基因，使得可对它们进行测序和研究。这不能使用现有的富集方法来容易地实现，因为未知的微生物可能不是可专门培养的并且，另外地，序列大部分未知的途径不能使用杂交探针来纯化，因为除了单个基因以外，用于杂交的探针的序列也是未知的，其可能太小而无法拉出(pull out)整个途径。然而，这可使用本文所述的MESA方法来实现。
在一些实施方案中，可将来自靶标的核酸片段化至大至足以包封整个途径的大小，诸如，例如数十或数百个千碱基，甚至兆碱基或更长的片段。如果途径存在于片段内，则其可含有已知的基因。使片段化的核酸(其中大多数不含靶标)经历本文所述的技术，从而产生多重乳液微滴，例如双重乳液和/或GUV，其大部分不含途径，因此未表现出扩增，而稀少的液滴确实含有途径并进行扩增。然后可通过例如FACS分选荧光亮的双重乳液来回收阳性液滴。然后可使这些液滴经历进一步操作，诸如必要时，特异性和非特异性扩增、通过数字或定量PCR的定量以及DNA测序。MESA相对于其它富集策略的强大的有利方面在于，其允许基于仅具有数十上百个碱基对的短的已知序列来检测和回收非常大的核酸(甚至达到整个基因组的大小)。几乎没有其它富集方法具有使用这样有限量的关于序列的信息从异质集合中富集出这样大的核酸序列的能力。
所述方法还可用于鉴定个体基因组的DNA序列。在该实施方案中，可将来自靶标的核酸片段化并连同PCR试剂和对于目标DNA序列是特异的引物包封在多重乳液微滴(例如，双重乳液)和/或GUV中。扩增后，可使用FACS将阳性多重乳液微滴和/或GUV分选至各个隔室，例如孔板阵列中。然后可使各个隔室经历进一步操作，诸如特异性或非特异性扩增。然后将所得的扩增子用于制备用于下一代测序技术的文库，或用作直接用于Sanger测序的材料。该技术可用于例如被设计来鉴定在个体患者中发现的逆转录病毒群体(诸如HIV)中的遗传差异的方法。
如上所论述的，本文所述的方法可用于数字PCR和用于测序分析的相关微流控富集(MESA)。在一些实施方案中，使用微流控双重乳化将包含核酸、病毒、细胞、颗粒等的样品分配在双重乳液中。将双重乳液液滴收集至储存器诸如PCR管中，并在适于扩增的条件(诸如热循环)下进行孵育。还可使用等温方法，如MDA、MALBAC、LAMP等。荧光报告分子可包含在液滴中或添加至载体相中以诱导含有靶核酸的液滴和不含所述靶核酸的液滴之间的荧光差异。
例如，可将Sybr green添加至载体相中，使得其分配至双重乳液中。由于Sybr在双链DNA存在的情况下变得具有多得多的荧光，因此经历扩增的液滴将比未经历扩增的那些液滴的荧光更亮。为了定量样品中靶分子的数量，可使液滴经历流式细胞术分析，甚至进行荧光激活细胞分选(FACS)，见图14。
当液滴流过流式细胞仪时，可记录关于它们的大小和荧光的信息。在以有限稀释度加载靶分子的情况下，一些液滴将被检测为有荧光的，因为它们含有靶分子，并且其它液滴将被检测为暗的，因为它们不含靶分子，如图14(左下)所示的。根据泊松分布，亮的液滴比暗的液滴的分数可用于估计原始样品中的靶分子的起始浓度。通过使用FACS基于荧光分选液滴，有可能回收含有靶分子的双重乳液，并且通过破碎双重乳液来回收靶分子。这可用于筛选大的、异质的核酸群体以选择性地回收靶序列。上述方法也可以使用单乳液微滴在合适的情况下代替多重乳液微滴来进行。
多重乳液微滴和/或GUV中的PCR激活细胞分选(PACS)
MESA技术使得能够从溶液中富集裸核酸，但可将类似的方法应用于包含在实体内(诸如在细胞、病毒、孢子、颗粒等内)的核酸，其中该方法在很大程度上是相同的。例如，可将包含靶核酸的实体包封在多重乳液微滴例如双重乳液和/或GUV中，并如上所述使其经历足以扩增所述靶核酸的条件。然后可基于扩增对多重乳液微滴和/或GUV进行分选，以回收具有靶标的实体。
当将该技术应用于实体，特别是具有膜或保护壳的实体时，重要的考虑是核酸必须可得以进行扩增以进行特异性检测，这可能需要专门的程序。例如，可将实体与释放核酸的试剂(诸如蛋白酶、溶菌酶、清洁剂、强碱等)包封在多重乳液微滴和/或GUV中。还可将它们包封在例如可被浸泡在裂解剂中的凝胶颗粒中，所述裂解剂可通过多重乳液微滴和/或GUV壳分配以诱导裂解。还可将它们包封在例如可被浸泡在裂解剂中的凝胶颗粒中。然后可将含有实体的核酸的这些凝胶颗粒包封在多重乳液微滴和/或GUV中，以通过扩增程序进行检测。可以选择凝胶，使得其不抑制裂解或扩增反应，诸如，例如通过确保其孔径足够大以使得试剂能够扩散通过凝胶同时捕获核酸，或通过使其能够在加热多重乳液微滴和/或GUV时熔化(就像使用琼脂糖时一样)实现。如果需要，还可官能化凝胶以连接所需细胞化合物(诸如RNA分子)，所述细胞化合物否则可从凝胶中渗出并成为不可检测的。可被实施来使扩增试剂能够接近靶核酸的另一个程序是使用电流来裂解细胞、病毒、颗粒等，因此它们将被包封在多重乳液微滴和/或GUV中。这可以例如通过使细胞流过其中电流流过的通道(这可例如在细胞膜中产生孔，并促进细胞裂解)来实现。也可以使用单乳液微滴在合适的情况下代替多重乳液微滴来进行上述方法。
活细胞PCR激活细胞分选(PACS)
迄今为止描述的将多重乳液例如双重乳液、PCR和分选应用于细胞包括生物体的裂解以及在大多数情况下死亡。然而，通过改进该方法和使用本文所述的方法，也可能回收存活的完整细胞。这可通过例如在使得细胞内容物渗漏至包封多重乳液微滴和/或GUV中同时维持细胞活力的条件下，将活细胞包封在多重乳液微滴和/或GUV中来实现。通过例如使细胞流过其中电流也流过的通道(这可在细胞膜中诱导孔形成并使细胞裂解物能够渗漏出来)，这是可能的。当细胞通过该通道出来时，其膜可封闭起来，而泄漏的裂解物仍然存在于细胞周围。对于层流条件，可以进行这样的操作，使得细胞周围的裂解物与细胞一起流动并且被包封在相同的隔室中，诸如多重乳液微滴和/或GUV。还可包括适合于扩增细胞核酸或检测其它细胞组分的试剂，使得细胞周围的裂解物在液滴中时可与试剂相互作用。可设计反应使得产生荧光信号，使得能够通过分选回收含有靶细胞的液滴，并允许细胞的活回收。这是该技术的强大用途，因为其提供了PACS的有利方面-基于序列生物标志物(诸如分子和RNA)区分细胞的能力，同时保持细胞寿命，从而可以进行其它反应和分析。上述方法也可以使用单乳液微滴在合适的情况下代替多重乳液微滴来进行。
质谱激活细胞分选(MS-ACS)
在一些实施方案中，本文所述的方法依赖于在多重乳液微滴(例如，双重乳液)和/或GUV中将反应区室化、检测多重乳液微滴和/或GUV内的反应产物，以及分选多重乳液微滴和/或GUV以基于这些产物回收特定实体并进行适当分析的能力。可进行许多类型的测定，诸如酶促测定(例如PCR)，以区分不同实体，诸如细胞与病毒。然而，在某些情况下，酶促技术可能无法检测到目标分析物。在这些情况下，可实施其它方法，诸如光谱方法。一种非常强大的检测方法是质谱法，因为其是灵敏和通用的。然而，质谱的局限性在于其是破坏性技术，破坏了其分析的样品。如果目标是仅回收信息，这可能是可接受的，但在一些情况下，需要额外地从系统中回收材料，所述材料通常将被质谱仪破坏。
使用本文所述的方法，可将质谱法用于分析样品，同时仍允许回收样品。例如，假设目的是鉴定表达参与途径的蛋白质的细胞。可将细胞加载至多重乳液微滴，例如双重乳液和/或GUV中并进行培养，使得在每个多重乳液微滴和/或GUV中存在许多细胞，和/或使得允许它们产生通路的产物，例如分子、化合物等，所述产物将填充多重乳液微滴和/或GUV。然后可使多重乳液微滴和/或GUV流入装置，该装置将分裂一部分多重乳液微滴和/或GUV，捕获来自细胞或细胞分泌物的一些材料，可使所述材料经历破坏性质谱。然后分选另外的部分。质谱仪可用于分析采样部分中的化合物，并且该信息可用于确定如何分选液滴的同类型部分(sister portion)。通过使用该方法，可能使用非常灵敏和通用的质谱来专门分选细胞，同时允许回收整个细胞或细胞裂解物。也可以使用单乳液微滴在合适的情况下代替多重乳液微滴来进行上述方法。
集落生长和裂解
将细胞包封在多重乳液微滴(例如，双重乳液和/或GUV)中的能力对于培养生物体诸如细胞和病毒是有价值的。例如，如果使细胞在单个共享体积中生长，则细胞之间的竞争可能导致某些细胞占据群体，使得它们在一段培养时间后包含大部分细胞。通过将细胞在多重乳液微滴和/或GUV中分区并培养它们，可以控制和/或缓和竞争。此外，可以设定多重乳液微滴和/或GUV的渗透性，使得某些分子能够通过，而另一些分子不能通过。这允许例如对生长重要的信号传导分子或其它分子自由地通过多重乳液微滴和/或GUV壳，以更好地控制培养条件。上述方法也可以使用单乳液微滴在合适的情况下代替多重乳液微滴来进行。
数字ELISA
在一些实施方案中，所公开的方法和装置可用于使用数字ELISA程序定量样品中的表位。在一些实施方案中，例如，与固体基质(诸如平面基质表面或珠粒表面)结合的表位可另外地与用酶催化剂标记的亲和试剂结合。可洗涤样品以除去未结合的亲和试剂和酶。标记的表位或其一部分然后可以以各种方式释放在溶液中。为了容易起见，可以通过可化学降解或通过例如热或光的应用降解的键使酶催化剂结合至亲和试剂。或者，可以破坏亲和试剂与表位之间的相互作用，或者可破坏表位与底物之间的相互作用。如果结合发生在珠粒上，则可在洗涤步骤后将珠粒悬浮在溶液中，从而悬浮酶催化剂。然后可将悬浮的酶催化剂与足以检测酶催化剂的试剂(诸如酶催化剂可将其转化为荧光产物的底物)包封在多重乳液微滴(例如，双重乳液)和/或GUV中。然后可在适于催化的条件下孵育多重乳液微滴和/或GUV，当存在催化剂时，产生含有大量反应产物的多重乳液微滴和/或GUV，当催化剂不存在时，产生少量所述多重乳液微滴和/或GUV。然后可相较于暗型多重乳液微滴和/或GUV，定量荧光多重乳液微滴和/或GUV的数量，从而提供存在于样品中的催化剂分子的数量的度量。然后可使用该信息来推断原始样品中的表位浓度。
通过使用本文所述的多路复用(multiplexing)方法，这也可在结合后无需要洗涤样品的情况下实现。例如，可将两种检测相同靶标的抗体引入样品，每种抗体用不同的催化剂标记。然后将样品包封在多重乳液微滴(例如，双重乳液)和/或GUV中。在许多情况下，若靶存在，其应该被两种抗体结合，如在典型的“夹心”ELISA中发生的一样，除了在该情况下分子在溶液中自由扩散而不是结合至基质外。如在先前的实例中一样，结果将是有时仅含有一种抗体或含有两种抗体的多重乳液微滴和/或GUV，其可通过监测液滴中催化剂反应的存在来检测。如果恰当地控制稀释以使得大多数液滴是空的，则应该可能将两种催化剂产物的存在归因于靶标存在于液滴中，而仅一种催化剂产物的存在可能对应于未结合的抗体。通过定量双重阳性液滴的分数，有可能估计溶液中靶标的分数，而不必进行洗涤程序。上述方法也可以使用单乳液微滴在合适的情况下代替多重乳液微滴来进行。
多路复用(multiplexing)
在主题方法的某些实施方案中，可检测和分析特定细胞的多个生物标志物。检测到的生物标志物可包括但不限于细胞基因组中的一种或多种蛋白质、转录物和/或遗传标记或其组合。通过基于标准荧光的检测，可同时探测的生物标志物的数量可被限定于可在每一个多重乳液微滴和/或GUV内单独显现的荧光染料的数量。在某些实施方案中，可以增加可在特定的多重乳液微滴和/或GUV内单独检测到的生物标志物的数量。例如，这可通过将染料分离至多重乳液微滴和/或GUV的不同部分来实现。在具体实施方案中，可将与染料和探针(例如，核酸或抗体探针)缀合的珠粒(例如珠粒)包封在多重乳液微滴和/或GUV中以增加分析的生物标志物的数量。在另一个实施方案中，可使用荧光偏振来获得更大数量的用于单细胞的不同生物标志物的可检测信号。例如，可将荧光染料连接至各种探针，并且可在不同的偏振条件下显现多重乳液微滴和/或GUV。这样，可使用相同的着色染料来为用于单个细胞的不同探针靶标提供信号。固定的和/或透化的细胞(如下文更详细地论述的)的使用也允许升高的多路复用水平。例如，标记的抗体可用于靶向定位至细胞组分的蛋白质靶标，而标记的PCR和/或RT-PCR产物在多重乳液微滴和/或GUV内是游离的。这允许相同颜色的染料用于抗体和通过RT-PCR产生的扩增子。也可以使用单乳液微滴在合适的情况下代替多重乳液微滴来进行上述方法。
微滴，包括多重乳液微滴，及其生成
在实施本公开的方法时，微滴例如多重乳液微滴的组成和性质可以变化。例如，在某些方面，可使用表面活性剂来稳定微滴。因此，微滴可包括表面活性剂稳定的乳液，例如表面活性剂稳定的单乳液或表面活性剂稳定的双重乳液。可使用允许在微滴中进行所需反应的任何便利的表面活性剂。在其它方面，微滴不被表面活性剂或颗粒稳定。
使用的表面活性剂取决于许多因素诸如用于乳液的油相和水相(或其它合适的不混溶相，例如，任何合适的疏水相和亲水相)。例如，当在氟碳油中使用含水液滴时，表面活性剂可具有亲水性嵌段(PEG-PPO)和疏水性氟化嵌段( FSH)。然而，如果将油转化为烃油，例如，代替地选择表面活性剂以使其具有疏水性烃嵌段，如表面活性剂ABILEM90。在选择表面活性剂时，在选择表面活性剂时可考虑的所需性质可包括以下的一种或多种：(1)表面活性剂具有低粘度；(2)表面活性剂不与用于构建该装置的聚合物混溶，因此其不会使设备膨胀；(3)生物相容性；(4)测定试剂不溶于表面活性剂；(5)表面活性剂表现出良好的气体溶解度，因为其允许气体进出；(6)表面活性剂具有高于用于MDA和PCR的温度(例如95℃)的沸点；(7)乳液稳定性；(8)表面活性剂使具有所需尺寸的液滴稳定；(9)表面活性剂可溶于载体相中而不溶于液滴相中；(10)表面活性剂具有有限的荧光性质；和(11)表面活性剂在一定温度范围内保持溶于载体相中。
还可设想其它表面活性剂，包括离子表面活性剂。还可在油中包含其它添加剂以使微滴稳定，所述其它添加剂包括在高于35℃的温度下增加液滴稳定性的聚合物。
可将本文所述的微滴制备为乳液，例如制备为分散在不混溶相载体流体(例如，氟碳油或烃油)中的水相流体，或反之亦然。特别地，本公开的多重乳液微滴可提供为双重乳液(例如，作为分散在水相载体流体中的不混溶相流体中的水相流体)、四重乳液(例如，分散在水相载体流体中的不混溶相流体中的水相流体中的不混溶相流体中的水相流体)等。可选择微流控通道(或其上的涂层)的性质(例如，亲水的或疏水的)，以便与在微流控工作流程中的特定点处使用的乳液类型相容。例如，亲水性通道可与双重乳液阶段结合使用，而疏水通道可用于单乳液阶段。
可使用如下文更详细描述的微流控装置生成单乳液。微流控装置可形成由尺寸极其均一的液滴组成的乳液。微滴生成过程可通过将两种不混溶的流体(诸如油和水)泵入接合点来实现。接合点的形状、流体性质(粘度、界面张力等)和流速影响所生成的微滴的性质，但是对于相对宽的性质范围，可使用方法诸如T形接合点和流动聚焦来生成具有受控均匀尺寸的微滴。为了改变微滴尺寸，可改变不混溶液体的流速，因为在一定性质范围内对于T形接合点和流动聚焦方法，微滴尺寸取决于两种流体流速的总流速和比率。为了利用微流控方法生成乳液，通常将两种流体加载至两个入口储存器(注射器、压力管)中，然后根据需要加压以产生所需的流速(使用注入泵、压力调节器、重力等)。这以所需的流速泵送流体通过装置，从而生成具有所需尺寸和速率的微滴。
可使用如下文更详细描述的微流控装置来生成双重乳液。双重乳液包括包含在液滴内的液滴。特别有用的双重乳液种类包括包封在略大的油滴内的含水液滴，其本身分散在载体水相中。双重乳液是有价值的，因为结构的内部“核心”可用于包含活性化合物，如溶解的溶质或生物材料，其中它们被周围的油壳与外部环境隔离。可使用许多微流控技术来生成双重乳液，包括在两步和一步过程中生成它们的微流控技术。双重乳液的微流控生成的益处与单乳液的微流控生成相同，所述益处是可在宽范围内控制双重乳液尺寸(内部和外部液滴尺寸)，并且可形成具有高度均一性的微滴。
在微流体中生成双重乳液比生成单乳液更难，因为在相关长度尺度(10-100μm)上，界面和润湿性质比惰性性质占优势。因此，用于包封相的流体取决于通道的润湿性质。例如，如果通道是亲水性的，则水相将倾向于润湿通道壁并置换油，从而包封油相并生成水包油乳液。另一方面，如果通道是疏水性的，则水将避开壁并被油包封，生成油包水乳液。基于其润湿性来克服装置的该天然倾向性以形成特定乳液极性可具有挑战性。生成水包油包水乳液可使用装置来实现，所述装置具有两个润湿区域(在一个区域中是疏水的以形成油包水液滴并且在另一个区域中是亲水的以生成水包油液滴)，或被设计来在至少一个区域中克服装置的天然润湿性质。
可使用空间图案化的润湿性来形成双重乳液。为了使用润湿控制的液滴形成来生成双重乳液，使用具有空间图案化的润湿性的装置，或者顺序地使用具有不同润湿性的两个装置。这是因为，对于W/O/W双重乳液，通常首先生成W/O乳液，然后将乳液包封至O/W乳液中。为了实现这一点，可功能化第一流动聚焦液滴发生器以具有疏水润湿性，使得当引入水和油时，将天然地生成W/O液滴。然后，将该装置流入至第二流动聚焦装置，所述第二流动聚焦装置被功能化为亲水性的，并且其中可以引入第二水相。这将将包封内部含水液滴的油滴相包封在第二水相中，从而生成包封所述第一含水液滴的油滴，其为双重乳液。为了形成相反极性O/W/O双重乳液，可将第一流动聚焦装置功能化为亲水性的(以形成O/W)并将第二流动聚焦装置功能化为疏水性的(形成W/O)。还可通过添加具有交替润湿性的附加液滴发生器来生成更高级的多重乳液，诸如三重和四重乳液。也可使用不同的液滴生成几何形体，如T形接合点。
可用同轴流动聚焦形成双重乳液。基于润湿的双重乳化对于形成许多不同组合物的多重乳液是强劲的和有效的，但其缺点是空间图案化润湿性需要额外的制造步骤，所述步骤可具有挑战性并且具有降低的再现性。因此，在具有均匀润湿性的装置中形成双重乳液的方法是有价值的，因为它们简化了制造。实现此目的的一种方法是利用从通道壁剪切润湿相的三维同轴流动聚焦几何形状，使得它们被包封，即使它们天然地倾向于作为包封相。例如，这可通过将润湿相通过小开口注入接合点并且同时注入载体相(其由于润湿性而不能正常地包封第一相)，从而使其包围第一相并将其包封来实现。因此，与其中包封相由通道的润湿性决定的基于润湿的液滴生成相反，在该模式中，包封相由接合点的几何形状和注入流体的方向决定。
可使用利用几何控制方法的两步双重乳化来形成双重乳液。在几何控制的两步双重乳化中，通过其润湿(例如，疏水的)使用第一液滴生成接合点来形成单乳液(例如，W/O)。然后该装置流入至同轴流动聚焦接合点中，在所述接合点中使用几何控制效应将包封液滴的润湿相本身包封在第三相(例如，W)中，从而产生双重乳液(例如，W/O/W)。
样品材料和/或试剂(例如，核酸和/或扩增试剂(例如，PCR扩增试剂))的包封可以通过许多方法实现，包括微流控和非微流控方法。在微流控方法的环境下，有许多可以应用的技术，包括玻璃微毛细管双重乳化或在润湿性图案化装置中使用序贯液滴生成的双重乳化。微毛细管技术通过产生不混溶相的同轴射流(所述同轴射流通过同轴流动聚焦通过喷嘴被诱导分裂成液滴)来形成液滴。然而，该方法的潜在缺点是所述装置通常由经对准并胶合在一起的微毛细管制成。由于滴形成喷嘴的尺寸为数十微米，因此在毛细管对准时即使小的不准确也可能导致装置故障。故障。相反地，在空间图案化液滴生成接合点中的连序液滴形成可在光刻制造的装置中实现，使得它们被更简单地构建和大量产生，同时在尺度上保持一致。本文描述了此类装置的实例。然而，在某些情况下，这些装置的平面性质对于生成双重乳液可能是不理想的，因为在与通道壁接触的同时，分离相都进入装置，因此必须慎重地图案化润湿性以使得能够在适当的位置吞入合适的相。这可使得装置更加难以制造，并且在一些情况下可阻止润湿性能未被优化以用于所述装置的液体的乳化。因此，在一些实施方案中，本公开提供将毛细管和光刻制造的装置的最佳属性组合的方法和相关装置。
例如，在一些实施方案中，可使用利用几何控制方法的同时双重乳化。此类方法在本文中可被称为“M形接合点双重乳化”方法。该方法，除只有一个将所有3个相引入其中的接合点并且内和外液滴几乎同时或完全同时形成外，类似于两步几何控制方法。在该方法中，将内相(例如，W)通过小通道注入至几何控制的液滴发生器中，并且将第二相(例如，O)通过其两侧的另外两个通道注入，这两个通道与第一通道同高或比其更高。因为通道壁优先选择第二相(疏水的)，这将导致内相被第二相包围并被包封在第二相中，尽管其也不需要破裂以形成液滴。第三相(例如，W)也被同时引入接合点中，使得通过几何控制，其能够包封第二相。这产生双重射流结构，其中第一相(例如，W)被包封在第二相(例如，O)中，其本身被包封在第三相(例如，W)中。然后可通过几种方法(包括共流液滴生成和同轴流动聚焦)将双重射流分解成双重乳液。流速、通道尺度、润湿性和流体性质均可被调整来控制相的包封，以及调整双重乳液液滴的尺寸。
在一些实施方案中，可使用光刻方法制造包括在接合点处连接的五个输入通道的装置。该设备被设计成使得两个侧面(中间)通道之间的内部通道具有比任一侧上的通道短的高度。另外，内部和两个中间通道在接合点处连接两个外部通道，所述外部通道比每个内部通道和两个中间通道高，并从外部通道引入用于双重乳液的载体流体。然后将形成双重乳液的3个相引入装置，使得内部包封的相从中心最短的入口引入，并且从两个侧面(中间)通道引入中间壳流体。在其中连接所有通道的接合点处从两个外部通道引入载体流体。由于通道的几何形状的缘故，内部流体将被包封在中间流体内，所述中间流体本身将被包封在载体流体内。这将生成类似于在微毛细管装置中观察到的双重射流。双重射流的组成可以是可形成双重乳液(诸如水/油/水、油/油/水、油/水/油等)的任何相。此外，流体的取向和，从而双重乳液的结构不强烈地依赖于接触通道壁的流体的固有润湿性质，而是依赖于它们在装置中排列的取向。通常，内部流体将形成双重乳液的内部液滴，而侧面通道中的流体将形成壳体，并且外部通道中的流体将形成载体。
在示例性装置中，中间流体通道可与内部流体通道具有相同的高度，或比内部流体通道短或高。通常，优选的是，中间通道比内部通道高，这便于内部流体被交叉接合点中的中间流体包围，因为内部流体又被更高的侧面通道所包围。在形成同轴射流后，可使用各种方法(诸如，例如，基于堵塞的液滴生成、通过收缩的同轴流加压或气泡触发的液滴生成)诱导其分解成液滴。另外，可使用双重乳液的几何破裂将液滴分裂成部分，以制造更小的液滴。
图3-5中提供了可用于生成如本文所述的双重乳液的微流控装置的“M形接合点”部分的示意图。显示了内部、中间、外部流体通道。
在形成多重乳液例如双重乳液后，可对它们进行额外的操作以改变其性质。例如，在许多双重乳液制剂中，双重乳液的壳对某些分子是可渗透的，从而允许这些分子被被动地扩散至双重乳液内或从其排出。这可以用于例如调整双重乳液中的环境。类似地，双重乳液的内部液滴可通过例如使溶剂扩散进或扩散出它们而收缩或生长。例如，通过将双重乳液分散在包含高浓度盐的缓冲液中，可诱发水相流体扩散出双重乳液，直到内部液滴与外部载体相的摩尔渗透压浓度匹配，此时液滴尺寸将保持恒定。这可用于改变内部液滴的尺寸，或者可选择通过添加或除去过量溶剂来浓缩或稀释双重乳液中包含的试剂。
还可使用技术(诸如溶剂萃取)来改变双重乳液的壳，例如，在水包油包水双重乳液的情况下，从壳中除去过量的疏水相。这可引起双重乳液的其它变化诸如，例如它们通过去润湿或其它现象转变成脂质囊泡、聚合物囊泡或胶质体(colloidosome)。气泡也可被引入双重乳液，例如在内部液滴中或中间的包封相中。在一些实施方案中，如果需要，还可以利用膨胀和压缩空气的能力，以例如增加或减小双重乳液的尺寸或双重乳液壳的厚度。中间相的气泡例如可通过减小系统的压力而膨胀，这将对内部液滴施加力，该力例如可用于诱导向另一种结构(诸如聚合物囊泡或囊泡)的转变。
大型单层囊泡(GUV)
双重乳液通常是指乳液内的乳液，即，包含在第二不混溶相的液滴内的液滴。它们可通过表面活性剂来稳定，但重要的是，除了任选的表面活性剂之外，中间相“壳”还包括液相。随着壳的体积减小，双重乳液与液滴内的液滴的相似度不及与囊泡样结构的相似度，其中在囊泡样结构中核心流体被包封在表面活性剂分子的薄膜中。双重乳液可用于通过使它们经历去润湿转变而形成此类“小囊泡”，其中中间液相流体被从壳中清除，但表面活性剂层得以保留，从而生成小囊泡，其包含一薄层表面活性剂分子包围的含水核心和最初附着于壳的小油滴。
双重乳液去润湿的倾向取决于不同溶液和表面活性剂的性质，特别是不同相相对于彼此的界面张力。当添加至载体相中时，包含氟化油、表面活性剂、(聚醚胺)-表面活性剂和普朗尼克(pluronic)的含水制剂似乎能够形成双重乳液和小囊泡，双重乳液和小囊泡直至95℃以上都是热稳定的。流体是基于六氟环氧丙烷与官能性末端基团结合的氟化合成油。其它表面活性剂诸如20(聚山梨酯20)和80(失水山梨醇单油酸酯)可与或不与增稠剂(诸如PEG、藻酸盐、甘油等)一起使用，以由双重乳液诱导GUV形成。
表面活性剂和热稳定性双重乳液和GUV
不希望受任何特定理论的束缚，提出热稳定性双重乳液和/或GUV的制备依赖于表面活性剂的使用，所述表面活性剂能够形成可承受高温(诸如与标准PCR反应相关的那些高温)的膜或双重乳液界面。实现这一点的一种方法可以是使用具有相对高的分子量的表面活性剂，使得当在液滴的界面上或膜构型中组装时，从界面除去表面活性剂(或破坏膜)所需的能量高于可由kT提供的能量。
可用于提供热稳定性双重乳液和/或GUV的示例性表面活性剂是“生物相容性”表面活性剂，其包括PEG-PFPE(聚乙二醇-全氟聚醚)嵌段共聚物例如(参见，例如，Holtze等，“Biocompatible surfactants for water-in-fluorocarbonemulsions，”Lab Chip，2008，8，1632-1639，其公开内容通过引用并入本文)；和在油相中包含离子型并在水相中包含(聚醚胺)的表面活性剂(参见，例如，DeJournette等，“Creating Biocompatible Oil-Water Interfaces without Synthesis:Direct Interactions between Primary Amines and Carboxylated PerfluorocarbonSurfactants”，Anal.Chem.2013，85(21):10556-10564，其公开内容通过引用并入本文)。可使用另加和/或替代的表面活性剂，只要它们形成稳定的界面即可。因此，许多合适的表面活性剂将是具有高分子量的嵌段共聚物表面活性剂(如)。这些实例包括氟化分子和溶剂，但也可使用非氟化分子。
因此，在一些实施方案中，本公开提供了热稳定性双重乳液，包括例如由不混溶液体(例如，油和表面活性剂)包封的混溶液体(例如，核酸和PCR试剂)，所述不混溶液体又被包封在第二混溶液体(例如，1％普朗尼克F-56和10％PEG35K)中。这些双重乳液适用于进行生物学反应，诸如PCR、RT-PCR、蛋白质间相互作用研究等。
在形成乳液，特别是双重乳液时的考虑是使它们稳定，因此使它们保持双重乳液，并且不破裂或聚结。这通常使用稳定剂诸如表面活性剂来实现。然而，在一些情况下，生成极其稳定的双重乳液可能是有利的。在本文所述的方法中，可以例如通过使用可被交联的中间相(包封相)诸如聚合物凝胶相(如聚二甲基硅氧烷)来实现。或者，可通过例如产生交联基团而使表面活性剂本身彼此交联。该基团可存在于表面活性剂的疏水尾部上，或者可选择地存在于亲水头部上。其可将表面活性剂彼此交联，或者可选择地可通过从水相中添加试剂(诸如诱导聚合、共价键联等的分子)来诱导交联。生物分子如抗体或生物素-链霉亲和素也可用于生成表面活性剂-表面活性剂交联。
使界面交联是使双重乳液壳热稳定的另一种方法。例如，可通过使油相交联或通过使膜囊泡交联来实现这种交联。如上所述，用于使界面交联的一种方法使用生物分子，诸如链霉亲和素。例如，聚合物的头部基团可用多种生物素进行生物素化。然后将链霉亲和素添加至水相中，由此将不同的聚合物交联在一起并在水/油界面处产生交联壳。然后可将这些壳直接分散在水中，或者如果需要，包封成双重乳液。
微滴的类型
在实施本发明的方法时，微滴的组成和性质可以变化。例如，在某些方面，表面活性剂可用于稳定微滴。因此，微滴可以包括表面活性剂稳定的乳液。可以使用任何允许在液滴中进行所需反应的方便的表面活性剂。在其他方面，微滴不被表面活性剂或颗粒稳定。
使用的表面活性剂取决于许多因素，例如用于乳液的油相和水相(或其他合适的不混溶相，例如任何合适的疏水相和亲水相)。例如，当在碳氟化合物油中使用水性液滴时，表面活性剂可具有亲水性嵌段(PEG-PPO)和疏水性氟化嵌段(Krytox FSH)。然而，例如，如果将油转换为烃油，则选择表面活性剂以使其具有疏水性烃嵌段，例如表面活性剂ABILEM90。在选择表面活性剂时，可考虑的所需性质可包括以下一种或多种：(1)表面活性剂具有低粘度；(2)表面活性剂与用于构建装置的聚合物不混溶，因此它不会使装置膨胀；(3)生物相容性；(4)测定试剂不溶于表面活性剂；(5)表面活性剂具有良好的气体溶解性，因为它允许气体进出；(6)表面活性剂的沸点高于用于MDA的温度或液滴将暴露于其中的任何其他反应的温度；(7)乳液稳定性；(8)表面活性剂稳定所需尺寸的液滴；(9)表面活性剂可溶于载体相而不溶于液滴相；(10)表面活性剂具有有限的荧光性质；(11)表面活性剂在一定温度范围内保持可溶于载体相。
还可以设想其他表面活性剂，包括离子表面活性剂。其他添加剂也可以包含在油中以稳定液滴，包括在高于35℃的温度下增加液滴稳定性的聚合物。
在一些实施方案中，合适的表面活性剂是PEG-PFPE两亲性嵌段共聚物表面活性剂。这种表面活性剂可用于摇动乳液MDA方法中。在一些实施方案中，用于制备微滴(例如摇动的乳液微滴)的合适的油是氟化油HFE-7500。
在一些实施方案中，核酸模板分子可以包封在多乳液微滴中，其中每个多乳液微滴包括由不混溶壳包围的第一可混溶相流体，其中多重乳液微滴位于第二混溶相运载流体。在一些实施方案中，可以在包封之前稀释样品，例如，以便在多乳液微滴中包封受控数量的细胞、病毒和/或核酸。可以使用本文所述的一种或多种方法将核酸扩增试剂(例如MDA试剂)在包封时加入到多重乳液微滴中或在稍后的时间加入到多重乳液微滴中。然后使多重乳液微滴经历核酸扩增条件。在一些实施方案中，添加标记使得如果多重乳液微滴包含核酸模板分子，则多乳液微滴将可检测地被标记，例如，荧光测定的荧光标记，例如扩增DNA的Sybr染色。为了回收扩增的核酸，可以使用微流体(例如，介电电泳、膜阀等)或非微流体技术(例如，FACS)分选可检测标记的多重乳液微滴。
在一些实施方案中，微滴包括在微滴内包封或隔室化的核酸模板分子以及MDA混合物，该MDA混合物包含DNA聚合酶、多种MDA试剂和多种MDA引物。在其他方面，微滴还可包括检测组分。如本文所述，此类微滴还可包括PCR扩增试剂。
在一些实施方案中，微滴包括单个核酸模板分子。在其他实施方案中，可以存在多个核酸模板分子，其分隔在单个微滴中。
在一些实施方案中，在引入和孵育步骤之前，微滴不包括多于一种核酸模板分子。在其他实施方案中，在引入和孵育步骤之前，微滴可包括多个核酸模板分子。
在一些实施方案中，可以通过控制产生的微滴的数量来改变待扩增的核酸模板分子的数量。在其他实施方案中，可以改变微滴的大小以获得预定量的衍生自核酸模板分子的MDA扩增产物。
在一些实施方案中，微流体和非微流体方法都可用于产生微滴以提供MDA扩增产物。
在一些实施方案中，核酸模板分子的起始量(在扩增之前)是低的，例如，不超过10fg(例如，不超过5fg或不超过1fg)的核酸模板分子被包封在微滴中。在一些实施方案中，在扩增前将约10fg至约1fg(例如，约5fg至1fg)包封在微滴中。在一些实施方案中，微滴还可以包括检测组分，例如荧光报道分子。荧光报道分子可以指示特定微滴何时经历扩增。
在一些实施方案中，微滴可包括由包封的核酸模板分子产生的扩增子。如本文所述，“扩增子”通常是指产物的扩增产物，其是天然或人工扩增的产物。术语扩增子通常可以指基因组序列的一个或多个拷贝，例如RNA或DNA序列。
在一些实施方案中，微滴的内部体积可为约0.01pL或更小、约0.1pL或更小、1pL或更小、约5pL或更小、10pL或更小、100pL或更小、或1000pL或更小。在一些实施方案中，微滴的内部体积可为约1fL或更小、约10fL或更小、或100fL或更小。在一些实施方案中，微滴的内部体积可以包括液体体积，其范围在皮升和飞升(femotliters)之间(例如，约0.001pL至约1000pL)。在一些实施方案中，微滴的内部体积严格地延伸至纳升级以下(例如，严格地延伸至皮升以下，严格地延伸至飞升以下，或其组合)。
在一些实施方案中，微滴中核酸模板分子的初始浓度为约0.001pg至约10pg，例如约0.01pg至约1pg、或约0.1pg至约1pg。
在一些实例中，微滴可以创建为多分散微滴或单分散微滴。
向微滴、多重乳液微滴和GUV中添加试剂
在实施主题方法时，可在一个或多个步骤(例如约2个、约3个、约4个或约5个或更多个的步骤)中将许多试剂添加至微滴中。向微滴中添加试剂的方法可以以多种方式变化，这取决于例如微滴的乳化阶段，例如，不同的方法可适用于向单乳液微滴相对于多重乳液微滴(诸如双重乳液微滴)中添加试剂。目标方法包括但不限于由Ahn等，Appl.Phys.Lett.88，264105(2006)；Priest等，Appl.Phys.Lett.89，134101(2006)；Abate等，PNAS，2010年11月9日，第107卷第45期19163-19166；和Song等，Anal.Chem.，2006，78(14)，第4839-4849页(所述文献的公开内容通过引用并入本文)描述的那些方法。
例如，可通过包括将微滴与含有试剂的第二微滴合并的方法将所述试剂添加至单乳液微滴中。包含在第二微滴中的试剂可通过任何便利的手段添加，具体包括本文所述的那些手段。可将该微滴与第一微滴合并以产生包含第一微滴和第二微滴的内容物的微滴。
还可以或替代地使用技术(诸如液滴聚结和/或皮量注入(picoinjection))将一种或多种试剂添加至单乳液微滴中。在液滴聚结中，可使靶微滴与含有要添加至所述靶微滴中的试剂的微滴并排流动。可使两种微滴如此流动，以使得它们彼此接触，但不接触其它微滴。然后可使这些微滴通过电极或施加电场的其它手段，其中电场可使微滴去稳定化，使得它们被合并在一起。
在皮量注入中，可使靶微滴流过含有待添加的试剂的通道，其中试剂处于升高的压力下。然而，由于表面活性剂的存在，在电场不存在的情况下，微滴将流过而不被注入，因为涂覆微滴的表面活性剂可防止流体进入。然而，如果在微滴通过注射器时对所述微滴施加电场，则含有试剂的流体将被注入至微滴中。添加至微滴中的试剂的量可通过几个不同的参数来控制，诸如通过调整注入压力和流动滴的速度，通过接通和断开电场等来控制。
在其它方面，还可以或替代地通过不依赖于将两种微滴合并在一起或将液体注入微滴中的方法，将一种或多种试剂添加至单乳液微滴中。相反，可通过以下方法将一种或多种试剂添加至微滴中，所述方法涉及将试剂乳化成非常小的液滴流，和使这些小滴与靶微滴合并的步骤。此类方法在本文中称为“通过多滴聚结的试剂添加”。这些方法利用了这样一个事实，即由于与靶微滴的尺寸相比待添加的液滴的尺寸小，所以小滴将比靶微滴流动快并在它们后面聚集。然后可以通过例如施加电场来合并该聚集物。也可以或者替代地使用该方法，通过使用几个不同流体的小滴共流液流，将多种试剂添加至微滴中。为了能够有效地合并微小微滴和靶微滴，重要的是使微小液滴小于含有靶微滴的通道，并且还使注入靶微滴的通道与施加电场的电极之间的距离足够长，以便给予微小液滴时间来“追赶”靶微滴。如果该通道太短，则并非所有的微小液滴都会与靶微滴合并，并且可能添加少于所需量的试剂。在一定程度上，这可以通过增加电场的大小来补偿，这倾向于允许相隔更远的液滴合并。除了在相同的微流控装置上制备微小液滴以外，还可以，或替代地使用另一微流控液滴制造器或通过均质化来离线(offline)制备，然后将其注入至含有靶微滴的装置中。
因此，在某些方面，通过以下方法将试剂添加至微滴中，所述方法涉及将试剂乳化成液滴流，其中液滴小于微滴的尺寸；使液滴与微滴一起流动；以及使液滴与微滴合并。包含在液滴流中的液滴的直径可在为微滴直径的约75％或更小的范围内变化，例如，流动液滴的直径为微滴直径的约75％或更小、为微滴直径的约50％或更小、为微滴直径的约25％或更小、为微滴直径的约15％或更小、为微滴直径的约10％或更小、为微滴直径的约5％或更小、或为微滴直径的约2％或更小。在某些方面，多个流动液滴(诸如2个或更多个液滴、3个或更多个、4个或更多个、或5个或更多个)可与微滴合并。此类合并可通过任何便利的手段来实现，包括但不限于通过施加电场，其中电场有效地将流动液滴与微滴合并。
作为上述方法的变型，流体可以是喷射的。也就是说，不是将待添加的流体乳化成流动液滴，而是可以形成该流体的长射流并使其与靶微滴并排流动。然后可通过例如施加电场来合并这两种流体。结果是具有其中存在微滴的凸起的射流，所述凸起由于Rayleighplateau不稳定性而在合并之前可天然地分解成具有大致的靶微滴尺寸的液滴。设想了许多变型。例如，可将一种或多种试剂诸如胶凝剂和/或表面活性剂添加至喷射流体中以使其更容易喷射。此外，也可调整连续流体的粘度以使得能够喷射，诸如由Utada等，Phys.Rev.Lett.99，094502(2007)(其公开内容通过引用并入本文)所述的那样。
在其它方面，可通过使用溶液中溶解的电解质，使用将注入流体本身用作电极的方法来添加一种或多种试剂。
另一方面，通过将待向其添加试剂的微滴(即，“靶微滴”)包裹在含有待添加的所述试剂(“靶试剂”)的液滴内部来将所述试剂添加至较早时形成的微滴中。在某些实施方案中，此类方法通过首先将靶微滴包封在合适的疏水相(例如，油)的壳中以形成双重乳液来进行。然后将双重乳液用含有靶试剂的微滴包封以形成三重乳液。为了将靶液滴与含有靶试剂的液滴组合，然后使用任何合适的方法使双重乳液爆裂，所述方法包括但不限于施加电场、添加使微滴界面去稳定的化学物质、使三重乳液流过收缩和其它微流体几何形状、应用机械搅拌或超声波、升高或降低温度或通过将磁性颗粒包封在微滴(当通过磁场拉动时，其可破裂双重乳液界面界面)中。
在国际PCT申请公开第WO2014/028378号(出于所有目的，其公开内容通过引用整体并入本文)中更详细地描述了上述向微滴添加试剂的方法的方面。
尽管向微滴添加试剂的上述方法可适合于向单乳液微滴添加试剂，但上述一种或多种方法可能不适于直接向多重乳液微滴诸如双重乳液微滴和/或GUV添加试剂。这可以是这样的情况，例如，在该情况下此类方法会破坏多重乳液微滴和/或GUV的结构。然而，上述方法可用于向单乳液微滴添加试剂，然后将单乳液微滴包封以形成多重乳液微滴和/或GUV。因此，下面描述向多重乳液微滴和/或GUV中添加试剂的其它方法。例如，在一些实施方案中，可通过向混溶相载体流体中添加试剂来将试剂(诸如被设计来可检测地标记核酸扩增产物的可检测的标记物和/或被设计来产生核酸扩增产物的核酸扩增试剂)添加至多重乳液微滴和/或GUV，其中试剂从混溶相载体流体扩散通过多重乳液微滴和/或GUV的不混溶的壳，并进入多重乳液微滴和/或GUV的第一混溶相流体。
在一些实施方案中，多重乳液微滴和/或GUV是第二多重乳液微滴和/或GUV，并且向第二多重乳液微滴和/或GUV中添加核酸扩增试剂的方法包括将核酸，例如靶核酸包封在第一多重乳液微滴和/或GUV中，将扩增试剂和第一多重乳液微滴包封在第二多重乳液微滴和/或GUV中，并破裂第一多重乳液微滴和/或GUV，从而使核酸与扩增试剂接触。
在一些实施方案中，多重乳液微滴和/或GUV是第二多重乳液微滴和/或GUV，并且向第二多重乳液微滴和/或GUV中添加核酸扩增试剂的方法包括将核酸扩增试剂包封在第一多重乳液微滴和/或GUV中，将核酸例如靶核酸和第一多重乳液微滴和/或GUV包封在第二多重乳液微滴和/或GUV中，并破裂第一多重乳液微滴和/或GUV，从而使核酸与扩增试剂接触。
在一些实施方案中，多重乳液微滴和/或GUV是第一多重乳液微滴和/或GUV，并且合适的方法包括通过以下方式向第一多重乳液微滴和/或GUV中添加试剂：将所述第一多重乳液微滴和/或GUV包封在包含所述试剂的第二多重乳液微滴和/或GUV中，并破裂第二多重乳液微滴和/或GUV内的第一多重乳液微滴和/或GUV，从而使所述试剂与第一多重乳液微滴和/或GUV的内容物接触。
在一些实施方案中，多重乳液微滴和/或GUV是第二多重乳液微滴和/或GUV，并且合适的方法包括通过以下方式向第二多重乳液微滴和/或GUV中添加试剂：将包含所述试剂的第一多重乳液微滴和/或GUV包封在第二多重乳液微滴和/或GUV中，并破裂第二多重乳液微滴和/或GUV内的第一多重乳液微滴和/或GUV以使所述试剂与第二多重乳液微滴和/或GUV的内容物接触。
检测PCR产物
在实施主题方法使，可检测核酸扩增产物(例如，PCR产物)的方式可变化。例如，如果目标只是对存在于群体中的特定细胞类型(例如，肿瘤细胞)的数量进行计数，则这可通过使用简单的二元测定(binary assay)来实现，在所述测定中将SybrGreen或任何其它染色剂和/或嵌入染色剂添加至每个多重乳液微滴和/或GUV中，使得如果存在表征基因(例如，癌基因)并且产生PCR产物，多重乳液微滴和/或GUV将变得发荧光。荧光的变化可归因于荧光偏振。检测组分可包括嵌入染色剂(例如SybrGreen)的使用。
可使用多种不同的检测组分来实施主题方法，包括使用本领域已知的荧光染料。荧光染料通常可被分为家族，诸如荧光素及其衍生物；罗丹明及其衍生物；青色素及其衍生物；香豆素及其衍生物；Cascade蓝及其衍生物；Lucifer黄及其衍生物；BODIPY及其衍生物等。示例性荧光团包括吲哚羰花青(C3)、吲哚二羰花青(C5)、Cy3、Cy3.5、Cy5、Cy5.5、Cy7、德克萨斯红、太平洋蓝、俄勒冈绿488、Alexa fluor-355、Alexa Fluor 488、Alexa Fluor532、Alexa Fluor 546、Alexa Fluor-555、Alexa Fluor 568、Alexa Fluor 594、AlexaFluor 647、Alexa Fluor 660、Alexa Fluor 680、JOE、丽丝胺、罗丹明绿、BODIPY、异硫氰酸荧光素(FITC)、羧基荧光素(FAM)、藻红蛋白、罗丹明、二氯罗丹明(dRhodamine)、羧基四甲基罗丹明(TAMRA)、羧基-X-罗丹明(ROX)、LIZ、VIC、NED、PET、SYBR、PicoGreen、RiboGreen等。荧光团及其用途的描述可见于其它地方，R.Haugland，Handbook of FluorescentProbes and Research Products，第9版(2002)，Molecular Probes，Eugene，Oreg.；M.Schena，Microarray Analysis(2003)，John Wiley&Sons，Hoboken，N.J.；SyntheticMedicinal Chemistry 2003/2004 Catalog，Berry和Associates，Ann Arbor，Mich.；G.Hermanson，Bioconjugate Techniques，Academic Press(1996)；以及Glen Research2002Catalog，Sterling，VA。
在其它方面，特别是如果目标是进一步表征存在的核酸，例如癌基因，则可能需要额外的测试。例如，在多重测定的情况下，这可通过使光学输出与哪个基因在多重乳液微滴和/或GUV中扩增相关来实现。一种替代方法是使用二进制输出(例如，利用嵌入染色剂)来确定哪些多重乳液微滴和/或GUV具有任何癌基因。然后可以对这些微滴和/或GUV进行分选以回收这些微滴和/或GUV，以便更详细地分析它们以确定它们包含哪些癌基因。为了确定存在于此类微滴和/或GUV中的癌基因，可使用微流控技术或非微流控技术。通过使用非微流控技术，可将鉴定为含有癌基因的微滴和/或GUV置于孔板上的孔中，在所述孔中将其稀释至较大体积，从而释放在多重PCR反应期间产生的所有PCR产物。然后将来自该孔的样品转移到其它孔中，将向其中的每一个孔中添加用于所述癌基因之一的引物。然后使这些孔进行温度循环以启动PCR，此时将添加嵌入染色剂以使具有匹配的癌基因和引物的孔点变亮。
因此，在实践主题方法时，可基于例如荧光的变化来检测组分。在某些方面，荧光的变化是由荧光共振能量转移(FRET)导致的。在该方法中，可使用特殊的引物组，其中5′引物具有猝灭剂染料，并且3′引物具有荧光染料。这些染料可以布置在引物上的任何地方，无论是在末端还是在中间。因为引物是互补的，因此它们将作为双链体存在于溶液中，使得荧光染料的发射将被猝灭剂染料猝灭，因为它们将彼此靠近，从而导致溶液看起来变暗。PCR后，这些引物将被并入长PCR产物中，因此将彼此远远分开。这将使荧光染料发光，导致溶液变得发荧光。因此，为了检测是否存在特定的癌基因，可在荧光染料波长处测量微滴和/或GUV的强度。为了检测是否存在不同的癌基因，这可用不同的着色染料(针对不同的引物)来进行。这将导致微滴和/或GUV在对应于存在于细胞中的癌基因的引物的所有波长处变得发出荧光。
分选
在实施本公开的方法时，可采用一个或多个分选步骤。目标分选方法包括但不一定限于涉及使用膜阀、分叉通道、表面声波和/或介电电泳的方法。目标分选方法还包括由Agresti等，PNAS第107卷，第9期，4004-4009(其公开内容通过引用并入本文)描述的那些方法。可通过分选来富集群体，因为含有具有或不具有所需性质的成员混合物的群体可通过除去不具有所需性质的那些成员来富集，从而产生具有所需性质的富集群体。
可在本文所述的任何步骤之前或之后应用分选。此外，可将两个或多个分选步骤(例如约2个或更多个、约3个或更多个、约4个或更多个、或约5个或更多个等分选步骤)应用于微滴(例如，单乳液微滴、多重乳液微滴和/或GUV)的群体。当应用多个分选步骤时，步骤可在一个或多个方式(例如，基于不同性质进行分选，使用不同技术进行分选等)方面基本上相同或不同。
微滴可基于一种或多种性质进行分选。目标性质包括但不限于一种或多种组分的尺寸、粘度、质量、浮力、表面张力、电导率、电荷、磁性、荧光和/或存在或不存在。在某些方面，分选可以至少部分地基于细胞在微滴中的存在或不存在。在某些方面，分选可以至少部分地基于核酸扩增产物例如PCR扩增产物的存在或不存在的检测，例如，如通过荧光PCR扩增产物的检测所示的。
可以采用微滴分选，例如，除去其中不存在细胞的微滴。包封可产生其中不存在细胞的一个或多个微滴(包括大部分微滴)。如果此类空微滴留在系统中，它们将被处理为任何其它微滴，在此期间试剂和时间将被浪费。为了达到最高的速度和效率，可用微滴分选除去这些空微滴。例如，液滴制造器可靠近滴下-至-喷射过渡(dripping-to-jettingtransition)操作，使得在细胞不存在的情况下，形成8μm的液滴；相反，当细胞存在时，流中产生的扰动将触发射流分解，形成直径25μm的液滴。因此，该装置可产生空的8μm的液滴的双分散群体和含单细胞的25μm的液滴，然后可使用例如流体动力学分选仪按大小对其进行分选，以仅回收较大的含单个细胞的液滴。
目标被动分选仪包括流体力学分选仪，其基于小微滴和大微滴穿行通过微流控通道的不同方式，根据尺寸将微滴分选至不同的通道中。同样令人感兴趣的是大型分选仪，其简单实例是在重力场中含有不同质量的微滴的管。通过离心、搅动和/或振动管，较易的较轻微滴将自然地迁移至容器的顶部。具有磁特性的微滴可以以类似的方法进行分选，除了通过对容器施加磁场外，具有磁特性的微滴将根据这些性质的强度而自然地向所述磁场迁移。主题方法中使用的被动分选仪也可涉及相对大的通道，其将基于微滴的流动性质同时分选大量的微滴。
皮量注入也可用于改变单乳液微滴的电性质。这可用于例如通过添加离子来改变微滴的电导率，然后可将该离子用于分选它们，例如通过使用介电电泳。或者，皮克注入也可用于使微滴(例如，液滴)带电荷。这可通过将带电荷的流体注入至微滴中，使得在注入之后，微滴将带电荷来实现。这可产生其中一些微滴带电荷而其它微滴不带电荷的微滴的集合，然后可通过使它们流过电场区域来提取带电荷的微滴，所述电场将基于它们的电荷量使它们偏转。通过注入不同量的液体(通过调节皮量注入)，或通过调节电压以对固定的注入体积注入不同的电荷，可调整微滴上的最终电荷，以产生具有不同电荷的微滴。然后，它们将在电场区域中偏转不同的量，从而允许它们被分选至不同的容器中。
流式细胞术(FC)可用作本文所述的任何方法中的芯片上微滴分选的替代技术。在Lim和Abate，Lab Chip，2013，13，4563-4572(出于所有目的，其公开内容通过引用整体并入本文)中描述了此类方法以及可在该方法的实施中使用的装置。简言之，可以例如使用技术如本文所述的分裂和皮量注入来形成和操作微滴，从而产生单乳液。然后可将这些单乳液双重乳化，例如以提供如本文所述的多重乳液微滴和/或GUV，例如，通过使用如本文中或Lim和Abate，Lab Chip，2013，13，4563-4572中所述的一种或多种装置。然后可通过FC(例如，FACS)分析双重乳液。
可用于形成适于FC分析的双重乳液和/或GUV的装置及其表征和应用在本文中参考图1、2、6和8-12进行了更详细地描述。图6中提供了包括通过FACS进行分选的实施方案的工作流程方案。
使用本公开的方法和装置生成的多重乳液微滴(例如双重乳液和/或GUV)可用于进行各种包封的化学和生物学反应，包括例如涉及酶的反应，诸如PCR。在许多情况下，反应的结果可以是可能有兴趣要检测的产物。另外，回收具有不同水平的产物或多种产物的组合的多重乳液微滴和/或GUV可能是感兴趣的。这可以以各种方式使用本发明来实现。例如，可将反应物分配至多重乳液微滴和/或GUV反应器中，使得不同的多重乳液微滴和/或GUV反应至不同水平并且并具有不同的终产物浓度。然后可使用例如光谱技术(诸如光学或荧光成像、流式细胞术、拉曼光谱、质谱等)来探测(interrogate)多重乳液微滴和/或GUV。可使用这些方法或其组合来测定多重乳液微滴和/或GUV中不同化合物的浓度。在双重乳液的情况下，可将这些方法与使用例如基于微流控的分选或流式细胞术分选多重乳液微滴和/或GUV的机制组合。可分析阳性和阴性分选的多重乳液微滴和/或GUV的内容物，以鉴定这些分选集合的不同性质。
另外，在一些情况下，可能需要将个别阳性分选的液滴加载至单独的孔中以用于进一步研究，使得能够例如对每个阳性分选的液滴进行另外的详细的个别分析。作为非限制性实例，本公开的方法和装置可用于探测含有特定核酸序列的病毒。可以例如将来自异质群体的病毒与足以裂解和扩增靶核酸的试剂加载至多重乳液微滴(例如双重乳液)和/或GUV中。然后可用流式细胞术对所述多重乳液微滴和/或GUV进行分析和分选，以检测和回收经历靶核酸扩增的所有液滴。例如，这些液滴可被分选至单个阳性集合中，或被单个地分选至孔板阵列上的孔中。如果需要，甚至可将它们以特定的组加载，使得阵列上的每个孔具有阳性事件的所需组合，所述组合可全部相同或表现出不同的扩增靶。然后可使所分选的液滴经历额外的分析诸如，例如质谱或下一代测序。
在汇集分析的情况下，将来自加载至阳性容器中的所有细胞的核酸混合在一起并作为整体进行分析。然而，通过将单个液滴加载至孔中，可单独分析每个孔的内容物，例如通过在汇集和测序之前对每个孔中的核酸进行条形码编码。这允许例如靶物种的单个病毒基因组的裂解，以便不仅检测靶物种，而且还恢复个体基因组，使得可获得相同物种的不同成员之间的比较。此类分析对于诸如宏基因组学或对于研究病毒多样性的各种应用是有用的。
在本发明的一些实施方案中，除了需要用于检测的扩增以外，还需要扩增靶分子以使得能够例如对所分选的靶核酸者进行额外分析。例如，在一些应用中，靶标将包含测序所需的核酸，但由靶标提供的核酸的量将太小而不能进行测序。在这些情况下，可在多重乳液微滴和/或GUV的分选之前或之后应用扩增方法，诸如特异性PCR和/或非特异性多重置换扩增。例如，在具有相对小的线性基因组的病毒(诸如脊髓灰质炎病毒或HIV)的情况下，可在分选之前或之后进行PCR，以在分选之后提供每个基因组的足够拷贝，以使实现测序分析。例如，可将个体基因组包封在液滴中并经历全基因组或部分基因组的扩增。在该反应的同时或之后，可进行额外的扩增以鉴定多重乳液微滴和/或GUV中的基因组，并且基于该信息分选多重乳液微滴和/或GUV。现含有大量靶核酸拷贝的这些分选的双重乳液因此可更容易地经历后续分析。
或者，可将个体基因组包封并进行检测扩增，使得例如每个阳性多重乳液微滴和/或GUV包含仅一个拷贝的全长靶核酸和大量小的检测区扩增子。基于这些扩增子，可将多重乳液微滴和/或GUV回收作为集合，为每个阳性分选事件提供靶基因组的一个全长拷贝。为了制备测序文库，随后可使用PCR(所述PCR是特异性的并具有处于所需区域侧翼的引物)或者，可选择地使用扩增整个基因组的非特异性方法(诸如多重置换扩增(MDA)或多次退火环状循环扩增(MALBAC))来扩增这些阳性基因组。另外，如果不汇合阳性多重乳液微滴和/或GUV，例如，如果将阳性多重乳液微滴和/或GUV分选至孔板阵列中，随后使用特异性的并具有处于所需区域侧翼的引物的PCR进行扩增，所得的单个扩增子可直接用作用于Sanger测序的材料。
所公开的方法和装置的强大有利方面是其进行大量独立的单独反应，然后应用各种光谱技术来检测反应产物并将其分选至经历所需反应的回收特定反应器的能力。在公开的方法的执行中可能出现的挑战是，在某些情况下，进行进一步分析所需的阳性事件可能是非常罕见的。例如，如果所公开的方法用于检测大型多样性病毒集合中的特定病毒，其中期望的病毒以极低的水平存在，则可能需要分析大量的单个病毒以回收特定病毒。而且，如果需要回收物质的多个实例，则可能需要分析更大数量的总病毒。由于可利用公开的方法进行和分选的反应数量是有限的，所以可能存在靶太稀少而不能可靠地检测的情况。
在某些情况下，本公开的方法可用于分层分选法(tiered sorting process)以回收极罕见的事件，每个分选轮提供富集因子。通过重复地对样品进行分选，可富集样品的靶标，使得总富集成为所有个别富集的乘积。例如，假设本公开的系统能够生成、分析和分选最多100万个多重乳液微滴和/或GUV。在理想条件下，这意味着，例如，以十亿分之一存在的事件不可能通过系统的直接使用被检测到。然而，通过在每个分选轮进行分层分选和富集靶标，可回收此类罕见事件。
例如，在第一轮中，可在百万个多重乳液微滴和/或GUV中分离100亿个用于测试的实体，使得每个多重乳液微滴和/或GUV含有约10,000个实体。如果靶实体以十亿分之一存在，那么在此类样品中，将存在至多10个包含靶标并因此为阳性的多重乳液微滴和/或GUV。将分选这些微滴和/或GUV，每个提供10,000个实体，产生总共有10万个实体，其中混合了10个所需的实体。在一些情况下，该富集可以是足够的，但在其它情况下，可能需要进一步富集，甚至达到100％的纯度。在该情况下，可使用分层分选方法，将100,000个实体加载至100万个液滴中，使得例如10个液滴中有1个含有1个实体，根据泊松分布进行加载。在该情况下，测定为靶标阳性的大多数液滴将只含有该靶标实体，尽管由于泊松加载(Posissonloading)的随机性质，一些液滴还会含有恰好与阳性一起被共同包封的阴性脱靶实体。
当分析和分选100万个液滴时，10个将再次被确定含有靶实体，并且将通过分选进行回收，从而提供对于靶标是几乎完全纯的高度富集的群体。为了进一步富集，可进行另一轮分选。分层分选的效率是，在该情况下，最终富集是单次富集的乘积。例如，如果该方法能够在一轮中富集为10^3的最大值，则通过对同一样品进行两次分选，最终富集将变为10^3x10^3＝10^6.，而再一轮将提供例如10^9的最终富集。另外，取决于用户需求，在每一轮中富集可以相似或不同。例如，可使用具有少量关系的第一轮来提供例如10^3的富集，然后可使用更密集的轮来进行10^6的富集，再次产生10^9的最终富集。这些值可以根据需要进行调整，以针对特定应用进行优化，但分层分选方法通常提供非常强大的有利方面：即使在富集功效有限的情况下，也能从大量群体中富集极罕见的事件。
当使用所公开的方法来利用PCR激活分选进行富集时，可能需要特别的考虑来确保每个富集成功并增加溶液中靶标的浓度。例如，如果目标是检测大群体中非常罕见的病毒，那么在第一轮中，可以针对病毒基因组中的特定序列生成扩增引物。这些引物将产生该区域的许多拷贝，所述拷贝将被收集到分选的室中。如果该相同的区域用于额外的分选轮，那么较早轮的产物扩增子将被检测和分选，从而导致大量的阳性事件，这将削弱实现大的富集的方法的效率。在该情况下，可以修改后期轮中的引物，以不检测来自较早轮的扩增产物。这可以以多种方式来实现，包括例如使用巢式PCR方法，在所述方法中后期轮中的引物从早期轮中使用的区域之外扩增，使得来自早期轮的产物不能在后期轮中扩增。或者，可在后期轮中靶向完全不同的区域，诸如相同基因的不同部分或完全不同的基因。这些方法的组合也可用于获得高度富集的样品。
合适的受试者和/或样品
主题方法可应用于从各种不同的受试者获取的生物样品。在许多实施方案中，受试者是“哺乳动物(mammal)”或“哺乳动物(mammalian)”，其中这些术语广泛地用于描述在哺乳纲内的生物体，包括食肉目动物(例如，狗和猫)、啮齿目动物(例如，小鼠、豚鼠和大鼠)和灵长目动物(例如，人、黑猩猩和猴)。在许多实施方案中，受试者是人。主题方法可应用于处于任何发育阶段(即，新生儿、婴儿、少年、青少年、成人)的两种性别的人受试者，其中在某些实施方案中，人受试者是少年、青少年或成人。虽然本发明可应用于人受试者，但是应当理解，也可对其它动物受试者(即，在“非人受试者”中)诸如但不限于鸟、小鼠、大鼠、狗、猫、家畜和马进行主题方法。因此，应当理解，需要根据本公开的评估的任何受试者是合适的。
此外，合适的受试者包括经诊断患有或未患有病况诸如癌症的那些患者。合适的受试者包括表现出和未表现出一种或多种癌症的临床表现的那些受试者。在某些方面，由于一种或多种因素诸如家族史、化学和/或环境暴露、遗传突变(例如，BRCA1和/或BRCA2突变)、激素、感染因子、辐射暴露、生活方式(例如，饮食和/或吸烟)、一种或多种其它疾病状况的存在等，受试者可以是处于发展癌症的风险中的受试者。
如上面更全面地描述的，可从此类受试者获得各种不同类型的生物样品。在某些实施方案中，从受试者中抽取全血。当需要时，可在实施主题方法之前，诸如通过离心、分级分离、纯化等处理全血。从受试者抽取的全血样品的体积可以为100mL或更少，例如约100mL或更少，约50mL或更少，约30mL或更少，约15mL或更少，约10mL或更少，或约5mL或更少，或约1mL或更少。
本文提供的主题方法和装置与固定的细胞和活细胞均相容。在某些实施方案中，用活细胞实施主题方法和装置。在其它实施方案中，使用固定细胞实施主题方法和装置。固定细胞样品允许洗涤样品以提取可能干扰下游分析的小分子和脂质。另外，固定和透化细胞允许用表面蛋白以及细胞内蛋白的抗体对细胞进行染色。结合本文所述的核酸扩增方法，此类染色可用于实现高水平的多路复用，因为抗体被定位于细胞样品，而核酸扩增产物在多重乳液微滴和/或GUV内是游离的。此类配置允许相同颜色的染料用于抗体和通过核酸扩增产生的扩增子。可使用任何合适的方法来固定细胞，包括但不限于使用甲醛、甲醇和/或丙酮的固定。
多重乳液微滴和/或GUV中的一般反应
本文公开的方法和装置通常有利于进行大量区室化反应，以及随后使用各种检测方法(诸如光谱术、化学技术、生物技术、测序等)对这些反应进行读取和分选。反应可包括无生物分子存在的情况下进行的有机或无机反应，或涉及生物分子和/或细胞的反应，诸如酶促反应，例如PCR。反应还可涉及细胞材料或基于细胞的提取物，包括可在不使用活细胞的情况下表达DNA、RNA和蛋白质的转录和翻译提取物。这可用于合成生物学应用，包括例如筛选活性的途径。
例如，由一种或多种蛋白质实现的途径可由包封在具有无细胞提取物的多重乳液微滴(例如，双重乳液)和/或GUV中的能够表达一种或多种途径蛋白的核酸编码。还可包括测定组分，从而允许测试途径。基于途径活性和测定的测量，可对反应器进行分选以回收恰好包封特别期望的途径的多重乳液微滴和/或GUV。分选后，可对其进行分析、扩增等，以继续进行筛选，或可选择地进行定向进化并生成增强的途径序列的过程。
多重乳液微滴和/或GUV中的反应还可用于如下应用，诸如核酸操作，包括生成具有较少偏差(bias)的测序文库或将分子与特定特征结合。例如，可将表达特定基因序列的细胞包封在多重乳液微滴和/或GUV中，然后经历本公开的方法以扩增和连接所述序列，从而生成可分析或用于其它应用的单个分子。例如，如果细胞包括生成人抗体的细胞，则可将对应于细胞的重链和轻链的基因连接在一起以产生单个分子，可分析所述单个分子以检测重链与轻链的配对或生成抗体样分子，诸如scFv或Fab。
用酶联探针检测蛋白质或DNA
本文所述的方法和装置可以以各种方式用于检测和分选异质溶液中的实体。迄今为止描述的一些实施方案使用在单乳液微滴或多重乳液微滴(例如双重乳液)和/或GUV中进行的核酸扩增来实现该目的，但本公开也可使用其它方法。例如，当所公开的方法和装置用于检测核酸时，可通过例如以下方式来实现：例如将单个核酸实体包封在单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV中，然后使它们经历使用对于靶核酸是特异的引物的扩增，检测靶扩增子，然后基于扩增进行分选。然而，可使用其它手段，诸如通过将亲和试剂结合至靶标上来生成其它可检测信号。例如，如果靶标是核酸，则可合成对于靶标是特异的探针，所述探针可与靶标(存在时)杂交，这些探针可用染料标记，或者在一些情况下，可用催化剂诸如酶基或非酶基催化剂来进行标记。可使现在由其探针结合的靶标经历纯化以除去未结合的探针，并使用本文所述的方法将剩余的材料包封在多重乳液微滴和/或GUV中。
在催化剂连接的探针的情况下，还可将催化剂的底物包含在单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV中。在该情况下，包含靶标的单乳液或多重乳液将与探针结合，从而将包含催化剂，导致底物的催化和产物的生成，所述产物可以例如是有荧光的。随着时间的推移，这将导致单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV填充有荧光产物。相反地，空的或含有脱靶分子的单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV不会含有催化剂，从而导致无产物生成，因此无可检测的信号。此类方法的结果是单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV的大集合，其中一些是有荧光的并且其它的是暗的，使得能够通过分选包封荧光的单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV来回收靶标。该方法还可应用于可与亲和试剂(诸如抗体)结合的其它种类的靶标诸如生物分子、病毒、细胞等。在该情况下，亲和试剂可以例如与催化剂结合，并且可如上针对被核酸探针结合的核酸靶标所述进行该方法。
在这两个实例中，可进行洗涤以除去未结合的催化剂，否则未结合的催化剂将被包封在单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV中并产生假阳性。然而，如果除去未结合的催化剂的洗涤是不希望的或不可能的，则替代方法是使用多路复用测定，在所述多路复用测定中例如将两个信号的定位用于鉴定阳性事件。例如，如果目标是检测溶液中的核酸靶标，则可合成针对靶标上的两个不同序列的探针，每个探针结合有不同的催化剂，所述催化剂进行例如产生荧光产物的反应。在一个实施方案中，不同催化剂的荧光产物可具有不同颜色，例如一种催化剂产生绿色荧光产物，另一种催化剂产生红色荧光产物。正常情况下，探针可与靶标结合。在该情况下，虽然溶液中存在许多未结合的探针，但在大多数情况下，除非它们都结合于同一靶核酸，否则对应于第一类型的催化剂的探针将不会与被具有不同催化剂的第二探针物理结合。
还可根据需要稀释溶液来以高浓度进行杂交。然后可降低浓度，使得任何给定的与液滴等体积的溶液将仅含有一个探针或具有两个结合的探针的靶标。然后可将该溶液与催化剂的底物一起包封，对其进行孵育、检测和分选。在本实施方案中，许多单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV将仅含有红色或绿色催化剂，但其它微滴和/或GUV物质将含有结合至靶标的红色和绿色-催化剂。这将允许通过检测在两个波长处发射荧光的液滴来区分含有靶核酸的液滴与仅含有催化剂的液滴，而无需洗涤。
另外，当两种催化剂的未结合的探针恰好被共同包封在同一液滴中时，可能会发生假阳性，但可通过充分稀释溶液来减轻这一点，以确保该事件比靶标的存在大体上更罕见，使得鉴定的双重阳性单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV在大多数情况下可与靶标的存在相关联。类似的技术，通过使用不同种类的亲和试剂(所述试剂可再次与具有不同反应性的催化剂结合)诸如结合分子如抗体，可应用于其它种类的靶标如细胞或蛋白质。
检测癌症
根据本公开的方法还涉及用于检测癌症的方法。此类方法可包括将从受试者的生物样品获得的寡核苷酸包封在多重乳液微滴和/或GUV中，其中至少一个寡核苷酸存在于多重乳液微滴和/或GUV中；将聚合酶链式反应(PCR)试剂、检测组分和多种PCR引物引入多重乳液微滴和/或GUV中，并在允许PCR扩增的条件下孵育多重乳液微滴和/或GUV以产生PCR扩增产物，其中所述多种PCR引物包括各自与一种或多种癌基因杂交的一种或多种引物；以及通过检测组分的检测来检测PCR扩增产物的存在或不存在，其中检测到检测组分表明存在PCR扩增产物。
检测到对应于一种或多种癌基因的一种或多种PCR扩增产物可表明受试者患有癌症。添加至微滴中的特定癌基因可以变化。在某些方面，癌基因对于特定类型的癌症例如乳腺癌、结肠癌等可以是特异的。
此外，在实施主题方法时，待检测组分所来源的生物样品可以变化，并且可至少部分地基于被寻求检测的特定类型的癌症。例如，如果需要确定受试者是否患有乳腺癌等，则在某些情况下可将乳腺组织用作生物样品。在实施用于检测癌症的方法时，可以产生对于本文所述的一般步骤的任何变化，诸如可加入的引物的数量、添加试剂的方式、合适的受试者等。也可以使用单乳液微滴代替多重乳液微滴来进行上述方法。
装置
如上所指出的，本发明的实施方案采用微流控装置。本发明的微流控装置可以以各种方式来表征。在某些实施方案中，例如，微流控装置具有至少一个“微”通道。此类通道可具有至少一个毫米级或更小(例如，小于或等于约1毫米)的横截面尺度。本领域技术人员将理解，对于某些应用，可调整该尺度；在一些实施方案中，该至少一个横截面尺度为约500微米或更小。在一些实施方案中，再次根据应用允许，该横截面尺度为约100微米或更小(或甚至约10微米或更小，有时甚至约1微米或更小)。横截面尺度是通常垂直于中心线流动方向的横截面尺度，然而应当理解，当遇到流经弯管或易于改变流动方向的其它特征时，起作用的横截面尺度不必严格垂直于流动。还应当理解，在一些实施方案中，微通道可以具有两个或更多个横截面尺度，诸如矩形横截面的高度和宽度或椭圆形横截面的主轴和短轴。可将这些尺度中的任一个与此处给出的尺寸进行比较。注意，本发明中采用的微通道可具有非常不成比例的两个尺度，例如具有约100-200微米的高度和1厘米或更多厘米量级的宽度的矩形横截面。当然，某些装置可采用这样的通道，其中两个或更多个轴在尺寸上非常相似或甚至相同(例如，具有正方形或圆形横截面的通道)。
在一些实施方案中，使用微细制造技术制造本发明的微流控装置。此类技术通常用于制造集成电路(IC)、微机电装置(MEMS)、显示装置等。在微流控装置制造中可用于生产小尺度图案的微细制造方法的类型有光刻(包括X射线光刻、电子束光刻等)、自对准沉积和蚀刻技术、各向异性沉积和蚀刻工艺、自组装掩模形成(例如，形成疏水-亲水共聚物层)等
鉴于上述内容，应当理解，本文所述的一些原理和设计特征可被缩放至更大的装置和系统，包括使用达到毫米或甚至厘米级的通道横截面的通道的装置和系统。因此，当将一些装置和系统描述为“微流控”时，意图是在某些实施方案中，描述等同地应用于一些更大尺度的装置。
当体积微流控“装置”时，通常旨在表示单个实体，其中一个或多个通道、储存器、站等共享连续的衬底，其可以是或不是单块的。微流控“系统”可包括一个或多个微流控装置和相关联的流体连接、电连接、控制/逻辑特征等。微流控装置的方面包括存在一个或多个流体流动路径，例如通道，其具有如本文所述的尺度。
在某些实施例中，本发明的微流控装置提供流体介质的连续流动。流经微流控装置中的通道的流体表现出许多有趣的特性。通常，无量纲的雷诺数极低，导致总是保持层状的流动。另外，在该方案中，两种流体接合将不容易混合，而单独扩散可驱使两种化合物的混合。
现在将描述适合与本发明一起使用的微流控装置部件的各种特征和实例。
衬底
微流控系统中使用的衬底是在其中提供用于流体输送的必需元件的载体。基本结构可以是单块的、层压的或以其它方式切片的。通常，衬底包括用作分子文库和试剂(如果需要)的导管的一个或多个微通道。它们还可包括输入口、输出口和/或特征以辅助流控制。
在某些实施方案中，衬底选择可取决于装置的应用和设计。衬底材料通常被选择来与各种操作条件相容。给定材料的微细制造过程中的限制在选择合适的衬底中也是相关考虑因素。有用的初底材料包括例如玻璃、聚合物、硅、金属和陶瓷。
聚合物是用于微流控装置的标准材料，因为它们适于成本效益和大批量生产。聚合物可根据其模塑行为分为三类：热塑性聚合物、弹性体聚合物和硬塑性聚合物。热塑性聚合物可在高于玻璃化转变温度下被模制成形状，并且将在冷却至低于玻璃化转变温度后保持这些形状。弹性体聚合物可在施加外力时被拉伸，但一旦外力撤除就会恢复至初始状态。弹性体在达到它们的分解温度后才会熔化。必须将硬塑性聚合物浇铸成最终形状，因为它们在温度达到其分解温度之前稍微软化。
本发明的微细制造装置中可使用的聚合物有聚(二甲基硅氧烷)(PDMS)、聚酰胺(PA)、聚对苯二甲酸丁二酯(PBT)、聚碳酸酯(PC)、聚乙烯(PE)、聚甲基丙烯酸甲酯(PMMA)、聚甲醛(POM)、聚丙烯(PP)、聚苯醚(PPE)、聚苯乙烯(PS)和聚砜(PSU)。聚合物的化学和物理性质可限制其在微流控装置中的用途。具体来说，与玻璃相比，对化学品的耐受性较差、老化、机械稳定性和紫外光稳定性可限制聚合物在某些应用中的使用。
也可以用作衬底材料的玻璃在某些操作条件下具有特定的有利方面。由于玻璃对大多数液体和气体具有化学惰性，因此特别适合用于采用某些具有溶解塑料的倾向的溶剂的应用。另外，其透明性质使玻璃对于光学或紫外线检测特别有用。
表面处理和涂层
表面改性可用于控制微流控装置的功能力学(例如，流控制)。例如，保持流体物质不被吸附至通道壁或用于将抗体附着至表面以检测生物组分是有利的。
聚合物装置特别倾向于是疏水性的，因此通道的加载可能是困难的。聚合物表面的疏水性也使得难以控制电渗流(EOF)。涂覆聚合物表面的一种技术是将聚电解质多层(PEM)施加于通道表面。PEM涉及用交替的正和负聚电解质溶液连续填充通道，从而允许多层形成静电键。虽然层通常不粘合至通道表面，但即使在长期贮存后它们也可完全覆盖通道。在聚合物表面上施加亲水层的另一种技术涉及将聚合物紫外光接枝至通道的表面。通过将表面暴露于紫外线照射同时将该装置同时暴露于单体溶液而在表面上产生第一接枝部位，自由基。单体反应以形成在反应部位共价结合的聚合物。
玻璃通道通常具有高水平的表面电荷，从而导致蛋白质吸附并可能阻碍分离过程。在一些情况下，将聚二甲基硅氧烷(PDMS)和/或表面活性剂涂层施加至玻璃通道可以是有利的。可用于阻止表面吸附的其它聚合物包括聚丙烯酰胺、二醇基团、聚硅氧烷、环氧丙氧基丙基甘油酯(glyceroglycidoxypropyl)、聚(乙二醇)和羟基乙基化的聚(乙烯亚胺)。此外，对于电渗装置，具有携带强度可通过操纵装置内部的条件(例如pH)来调节的电荷的涂层是有利的。流动的方向也可基于涂层来选择，因为涂层可以带正电或带负电。
还可施加专用涂层来将某些物质固定在通道表面上-该方法被本领域技术人员称为“使表面官能化”。例如，聚甲基丙烯酸甲酯(PMMA)表面可用胺涂覆来促进各种官能团或靶标的附接。或者，可通过氧等离子体处理工艺使PMMA表面变得亲水。
可用化学和/或气态材料处理装置，以改变表面化学性质。为了产生瞬时疏水性通道结，例如一个或多个液滴形成接合点，可在升高的温度下孵育该装置，持续延长的时期。为了产生永久性改性，可使用Aquapel处理装置。这些改性将有利于产生油包水液滴，例如微滴。相反地，为了产生瞬时亲水性通道结，例如一个或多个液滴形成接合点，可将接合点暴露于氧等离子体。为产生更永久的改性，可使用如由Vickers等，Anal.Chem，2006，78(21)，第7446-7452页所描述的溶剂萃取通道接合点。这些改性将有利于通过水相产生油包水液滴的夹断(pinching-off)，从而有利于双重乳液液滴的形成。
当将微流控装置用于乳液的生成时，可能必需调节通道壁的润湿性，然而，通道润湿性改性可能是困难的，需要额外的装置制造步骤，诸如化学或紫外光图案化。在一些实施方案中，本文所述的方法可用于容易地制造具有通道润湿性的微流控装置。例如，在某些实施方案中，可以处理具有通道的微流控装置，使得某些通道比其它通道接受更大剂量的等离子体氧化。
例如，用于在使用疏水性第一液滴制造器和亲水性第二液滴形成接合点的两步法中生成双重乳液的装置，可通过例如用胶带封闭装置的入口并使装置的出口打开来产生。然后使装置经历氧等离子体处理。因为出口是开放的，所以活性氧离子将扩散至出口通道中，处理其并使其亲水。在通道的出口附近，这将产生大的氧等离子体剂量，并因此产生亲水壁，但进一步沿通道向上，远离开放出口，氧将不得不向更远处扩散，这将导致较低的剂量。这将导致等离子体剂量在整个通道的长度上逐渐变化，其中出口处剂量高，并且远离出口处剂量低，包括几乎所有封闭的入口。如果等离子体氧化改变通道的润湿性，则这可用于实现空间图案化润湿性，其中出口附近的润湿性将是亲水性的并且更远离将是疏水性的，这是产生双重乳液所必需的。
可使用类似的方法来改变装置的化学性质，通过例如利用被等离子体氧化的表面相较于未被等离子体氧化的表面的不同反应性来改变。例如，通过使用本文所述的方法，可给予通道空间图案化剂量的等离子体氧化。然后可用与例如装置的氧化或非氧化的部分选择性反应的试剂填充它们，从而在某些区域而不是其它区域反应。这可用于增强化学性质，诸如润湿性，或者通过将新型部分附接至通道表面来产生新的表面性质。还可将各种类型的特征用于指导和调整等离子体剂量，诸如具有狭窄横截面的长通道、具有不同设计尺寸的缝隙的柱状物等。
利用有限扩散等离子体氧化进行的空间润湿性图案化
用于图案化润湿性的常见方法依赖于这样的方法，所述方法可以以高度空间控制(诸如光激活聚合和化学处理的流动限制)来改变通道的表面性质。然而，这些方法是复杂的，要求高度受控的光图案与装置对准，或者仔细控制流速。官能化疏水性聚合物装置以使它们具有亲水性的一种方法是利用等离子体氧化，已显示所述等离子体氧化以>90度的水-油接触角将PDMS的常规疏水润湿转换成完全润湿(接触角为0度)。通过空间控制对其施加等离子体处理的地方，可能可使用等离子体氧化来空间控制润湿性。
等离子体氧化依赖于在待氧化的通道表面附近产生氧气离子的能力；如果气体扩散被限制在装置的特定区域，则可能处理这些区域，然而不处理其它区域。实现该目的的一种方法是将两个向大气开放的储存器通过长的电阻通道连接，通过该通道，储存器之间的气体扩散相对较慢。如果第一储存器对大气开放并且第二储存器关闭(例如通过用阻挡物(如胶带)密封第一储存器的入口)，则分子将仅能够经由将第二储存器连接至第一储存器的通道扩散至第二储存器中，这将是相对较慢的。这提供了利用等离子体氧化空间图案化润湿性的方法。将第一入口打开并且第二入口用胶带密封的装置放入等离子体氧化器中。如在标准氧等离子体处理中一样，将室抽真空并用纯氧冲洗。这允许原来在装置中的气体被纯氧替代。然后接通等离子体，电离氧气并生成与表面结合的自由基，使表面氧化。为了使反应继续，可用新鲜氧气补充储存器中的气体。虽然对于连接至开放入口的第一储存器，这种情况快速发生，但在第二储存器中补充要慢得多，因为新鲜氧气只能经由长连接通道进入第二储存器。结果是第一室比第二室更快地氧化；如果适当地控制处理时间，这允许第一室被制成亲水的，而第二室保持疏水性，生成具有空间图案化的润湿性的装置。可应用阀和其它方法来控制扩散速率和路径以生成具有受控性质的图案。
利用等离子体氧化的空间图案化润湿性可用于双重乳化。通过使用氧等离子体空间润湿性图案化，有可能使双乳化装置官能化。为了实现这一点，该装置首先被设计来包含通过相对长而窄的通道连接的两个液滴发生器，所述通道将在等离子体处理期间限制氧扩散。对于W/O/W双重乳液，第一接合点可以是疏水性的，并且第二接合点是亲水的。因为包括PDMS在内的大多数聚合物是天然疏水的，而氧等离子体处理使它们具有亲水性，因此仅需要处理第二接合点。因此，第一液滴发生器的入口被封闭，而第二液滴发生器的入口和装置出口保持打开。然后将该装置进行等离子体处理，优先处理第二接合点并使其亲水，并使第一接合点疏水。该方法的一个不利方面可以是在相对较长的模糊不清的路径上润湿性将从亲水性转化为疏水性。然而，其是简单的，可扩展至大量装置的并行图案化，并产生强效和可重现的模式。
微流控元件
微流控系统可包含许多微通道、阀、泵、反应器、混合器和其它部件。这些部件中的一些及其一般结构和尺度将在下面讨论。
各种类型的阀可用于本发明的微流控装置中的流控制。这些阀包括但不限于被动阀和止回阀(膜、阀瓣、双瓣阀、泄漏阀等)。通过这些阀的流速取决于阀的各种物理特征，诸如表面积、流动通道的尺寸、阀材料等。阀还具有在微流控装置设计期间应考虑的相关操作和制造有利方面/不利方面。
微泵与其它微流控组件一样受到制造限制。泵设计中的典型考虑因素包括气泡的处理、堵塞和耐久性。目前可用的微泵包括但不限于电动等效泵、固定行程微位移、蠕动微膜和具有集成止回阀的泵。
大型装置(macrodevice)依赖于扰动力诸如振动和搅拌来混合试剂。相比之下，此类扰动力在微型装置(microdevice)中实际上是不可实现的；微流控装置中的混合通常通过扩散来实现。由于通过扩散进行混合可以是缓慢且低效的，所以通常设计微结构来增强混合过程。这些结构以增加流体区域之间的界面表面积的方式操纵流体，从而加速扩散。在某些实施方案中，使用微流控混合器。此类混合器可以在本发明的微流控分离装置的上游(在一些情况下与之集成)提供。
微混合器可分为两大类：有源混合器和无源混合器。有源混合器通过对流动区域施加有源控制(例如变化的压力梯度、电荷等)来工作。无源混合器不需要输入的能量，并且仅使用“流体动力学”(例如压力)来以恒定速率驱动流体流动。无源混合器的一个实例涉及在由板隔开的彼此的顶部之上叠加两个流动流。一旦移除分离板，流动流就彼此接触。两种液体的叠加增加了接触面积并且减小了扩散长度，从而增强了扩散过程。如果需要进行热管理，则可将混合和反应装置连接至传热系统。与大型热交换器一样，微热交换可具有并流、逆流或错流流动方案。微流控装置通常具有介于约10μm和约10cm之间的通道宽度和深度。共同的通道结构包括长的主分离通道和终止于缓冲液、样品或废物储存器中的三个较短的“分支”侧通道。分离通道的长度可以为几厘米，并且3个侧通道的长度通常只有几毫米。当然，微流控装置的实际长度、横截面积、形状和分支设计取决于应用以及其它设计考虑因素，诸如通量(取决于流动阻力)、速度分布(velocity profile)、停留时间等。
本文描述的微流控装置可包括电场发生器，以进行本文描述的方法的某些步骤，包括但不限于皮量注入、液滴聚结、选择性液滴融合和液滴分选。在某些实施方案中，使用金属电极产生电场。在具体实施方案中，使用液体电极生成电场。在某些实施方案中，液体电极包括填充有导电液体(例如盐水或缓冲液)并且位于微流控装置中需要电场的位置的液体电极通道。在特定实施方案中，使用电源或高压放大器对液体电极进行通电。在一些实施方案中，液体电极通道包括入口，使得可将导电液体添加至液体电极通道。可以例如通过将填充有液体的管连接至入口并施加压力来将此类导电液体添加至液体电极通道中。在特定实施方案中，液体电极通道还包括用于从通道释放导电液体的出口。在具体实施方案中，液体电极用于本文所述的微流控装置的皮量注入、液滴聚结、选择性液滴融合和/或液滴分选方面。液体电极可用于例如不对通过施加电场注入的材料进行充电的情况。
如本文所述的液体电极也适用于本文讨论的特定微流控装置之外。例如，液体电极可用于其中通常使用金属电极的各种装置。另外，液体电极可能特别适用于柔性装置，诸如被设计为佩戴在身体上的装置和/或由于其操作而必须弯曲的装置。
在某些实施方案中，紧邻与输入微通道、配对微通道和/或皮量注入微通道中的一个或多个的接合点的下游的微流控装置通道的一个或多个壁包括一个或多个脊。微通道壁中的此类脊被构造来捕获一层合适相例如合适的疏水相(例如，油)，从而阻止不混溶相(例如，水相)接触微通道的壁，这可导致通道壁的润湿。此类润湿可能是不期望的，因为其可能导致不可预测的液滴形成和/或允许流体在液滴之间转移，导致污染。在某些实施方案中，脊允许以较高的流速比R(Qaq/Qsum)形成液滴。
在某些实施方案中，微流控装置的一个或多个微通道(例如，输入微通道、配对微通道、皮量注入微通道，和/或位于这些通道中的一个或多个的上游或下游的流动通道)的宽度为100微米或更小，例如90微米或更小、80微米或更小、70微米或更小、60微米或更小、50微米或更小、例如45微米或更小、40微米或更小、39微米或更小、38微米或更小、37微米或更小、36微米或更小、35微米或更小、34微米或更小、33微米或更小、32微米或更小、31微米或更小、30微米或更小、29微米或更小、28微米或更小、27微米或更小、26微米或更小、25微米或更小、20微米或更小、15微米或更小、或10微米或更小。在一些实施方案中，上述微通道的一个或多个的宽度为约10微米至约15微米、约15微米至约20微米、约20微米至约25微米、约25微米至约30微米、约30微米至约35米、约35微米至约40微米、约40微米至约45微米、约45微米至约50微米、约50微米至约60微米、约60米至约70微米、约70微米至约80微米、约80微米至约90微米或约90微米至约100微米。
在某些实施方案中，所述一个或多个脊的每一个的基底的长度为约10微米至约20微米，例如长度为约11微米至19微米、长度为约12微米至约18微米、长度为约13微米至约17微米、长度为约14微米至约16微米或长度为约15微米。
在某些实施方案中，所述一个或多个脊的每一个的峰具有约1至约10微米，例如1微米至约9微米、约2微米至约8微米、约3微米至约7微米、约4微米至约6微米，或约5微米的宽度。在某些实施方案中，所述一个或多个脊中的每一个的峰具有约1微米至约2微米、约2微米至约3微米、约3微米至约4微米、约4微米至约5微米、约5微米至约6微米、约6微米至约7微米、约7微米至约8微米、约8微米至约9微米或约9微米至约10微米的宽度。
在某些实施方案中，所述一个或多个脊中的每一个的高度为约5微米至约15微米，例如，约6微米至约14微米、约7微米至约13微米、约8微米至约12微米、约9微米至约11微米或约10微米。
在某些实施方案中，所述一个或多个脊的每一个的基底与所述一个或多个脊的每一个的高度的比率为约1.0:0.75至约0.75:1.0。在某些实施方案中，所述一个或多个脊的每一个的基底与所述一个或多个脊的每一个的峰的宽度的比率为约1.0:0.5至约1.0:0.1，例如约1.0:0.2、约1.0:0.3或约1.0:0.4。
在某些实施方案中，所述一个或多个脊的每一个的基底与所述一个或多个脊的每一个的高度与所述一个或多个脊的峰的宽度的比率为约1:0.75:0.5。
在某些实施方案中，本文所述的通道具有多个沿通道壁延伸一段距离的脊。该距离可以是例如约50微米至约500微米，例如，约50微米至约450微米、约100微米至约400微米、约150微米至约350微米、约200微米至约300微米或约250微米。在某些实施方案中，可提供多个沿通道壁延伸一段距离的脊，其中沿通道壁的距离与通道的宽度之间的比率为约10:1至约1:2，例如，约10:1、约9:1、约8:1、约7:1、约6:1、约5:1、约4:1、约3:1、约2:1、约1:1或约1:2。
应当注意，针对特定应用可适当地按比例放大或缩小上面论述的各种尺度中的一个或多个尺度，例如，可适当地以2、5、10或更大的因子按比例放大或缩小上述尺度中的每一个尺度。
在一些实施方案中，一个或多个通道接合点，例如一个或多个液滴形成接合点，诸如皮量注射器接合点，包括“步降(step-down)”结构，其中在皮量注射器接合点处和皮量注射器接合点下游的流动通道的部分比皮量注射器接合点上游的流动通道的部分宽。该步降结构有利于液滴的夹断，从而有利于液滴的形成。可基于要形成的液滴的所需尺寸来选择步长，其中较大的步产生较大的液滴。此类结构也可以帮助避免材料在从皮量注射器注入至液滴后从皮量注射器滴下。在一些实施方案中，皮量注射器接合点处和皮量注射器接合点下游的流动通道的宽度比紧接皮量注射器接合点上游的流动通道的宽度宽约5％至约50％，例如宽约5％至约10％、宽约10％至约20％、宽约20％至约30％、宽约30％至约40％或宽约40％至约50％。
在一些实施方案中，用氧等离子体处理一个或多个通道接合点，例如一个或多个液滴形成接合点。该处理将暂时改变PDMS的天然疏水性，以便有利于通过水相夹断油包水液滴，从而有利于双重乳液液滴的形成。可通过使用如由Vickers，等，Anal.Chem，2006，78(21)，第7446-7452页描述的溶剂萃取使改性变得“永久”。
在一些实施方案中，可将同轴流动聚焦装置用于制备适于与本文所述方法结合使用的双重乳液。该装置可包括例如约50μm高的通道，在所述通道中引入单乳液滴作为紧密堆积；紧密堆积使间隙油减少至最少，从而允许形成薄壳双重乳液。双重乳化接合点包括比单乳液通道更高和更宽的通道；将含水载体流体引入Y形通道，如图8-11中所示。单乳液通道在载体相通道中在水平和垂直方向上居中；当以足够的速度引入含水载体相时，该几何形状确保了包封单乳液的油从壁上提升，形成悬浮在流动水相中的“锥体”，如图8-11中所示。该非平面几何形状允许在为均匀疏水的装置中形成双重乳液。
锥体的下游是在通道中在垂直和水平方向上居中的收缩，如图8的示意图中所示。该特征允许形成仅具有一个核心的薄壳双重乳液：当锥体延伸到收缩部分时，其通过冲击载体相流体动力地聚焦；这产生足够的剪切力来从锥体尖端撕下单个液滴，如图8所示。在没有收缩的情况下，双重乳液可能包含多个核心。
用微流控装置生成单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV通常涉及使用一个或多个泵来以需要的流速将必需的溶液注入至装置中。泵体积庞大，需要动力，并且通常可能需要与控制器集成在一起，以驱动正确的流速。在一些情况下，可能需要在不使用泵的情况下产生液滴，特别是双重乳液。例如，通过使用本文所述的方法，在不使用泵的情况下生成单乳液或多重乳液(包括双重乳液)是可能的。
在一些此类实施方案中，可制造具有这样的通道尺度设置的装置，使得对于特定压力通过它们的流体流速受到控制。例如，如果期望使特定流体更慢地流过通道，则可将通道延长或变窄，增加其流体动力学阻力，使得对于通过通道的相同压降，流速降低。由于流体动力学阻力对通道直径(约D^-4)和通道长度(约L)的强烈依赖性，因此可能使用通道尺度的几何控制对于恒定的压降在宽范围内调节流速。因此可将这与用于在装置的通道上产生压降的方法组合，例如，通过使用具有压缩空气的空气压力泵或储存器相对于出口对入口加压。或者，可通过施加真空来减小出口压力，从而产生从入口至出口的压降。
产生压降的另一种方法是使用重力势能。例如，一种方法是相较于出口增加装置入口处的流体的高度。还可使用其它形成双重乳液的几何形状，诸如玻璃毛细管几何形状，用可润湿性图案化的两步和一步形成，以及被配置用于产生更高级多重乳液的几何形状。
制造方法
微细制造过程根据在衬底中使用的材料类型和所需的生产体积而不同。对于小批量生产或原型，制造技术包括LIGA、粉末爆破、激光烧蚀、机械加工、放电加工、光成形等。用于微流控装置的大量生产的技术可使用光刻或基于母版的复制工艺。用于从硅/玻璃制造衬底的光刻工艺包括通常用于制造半导体装置的湿式和干式蚀刻技术。注塑和热压印通常用于大量生产塑料衬底。
玻璃、硅和其它“硬”材料(光刻、蚀刻、沉积)
光刻、蚀刻和沉积技术的组合可用于将微槽和微腔从玻璃、硅和其它“硬”材料制成。基于上述技术的技术通常用于制造尺度为0.1-500微米的装置。
基于当前半导体制造工艺的微细制造技术通常在洁净室中进行。洁净室的质量按照以立方英寸计尺寸<4μm的颗粒的数目来分类。用于MEMS微细制造的典型洁净室级别为1000至10000。
在某些实施方案中，光刻可用于微细制造。在光刻中，通过光学掩模将已沉积在衬底上的光致抗蚀剂暴露于光源。常规光致抗蚀剂方法允许高达10-40μm的结构高度。如果需要更高的结构，可使用产生高达1mm的高度的较厚的光致抗蚀剂诸如SU-8或聚酰亚胺。
在将掩模上的图案转印至光致抗蚀剂覆盖的衬底上后，然后使用湿法或干法对衬底进行蚀刻。在湿蚀刻中，使未被掩模保护的衬底区域在液相中经历化学侵蚀。蚀刻工艺中使用的液体试剂取决于蚀刻是各向同性还是各向异性。各向同性蚀刻通常使用酸来形成三维结构，诸如玻璃或硅中的球形腔。各向异性蚀刻使用高碱性溶剂来形成平坦表面诸如孔和通道。硅上的湿各向异性蚀刻产生倾斜的通道轮廓。
干蚀刻涉及由气相或等离子体相中的离子攻击衬底。干蚀刻技术可用于产生矩形通道横截面和任意通道路径。可使用各种类型的干蚀刻，包括物理、化学、物理化学(例如，RIE)以及利用抑制剂的物理化学干蚀刻。物理蚀刻使用通过电场加速的离子来轰击衬底表面以“蚀刻”结构。化学蚀刻可采用电场将化学品物质迁移到基底表面。然后化学品物质与基底表面反应以产生空隙和挥发性物质。
在某些实施方案中，沉积用于微细制造。沉积技术可用于产生金属层、绝缘体层、半导体层、聚合物层、蛋白质层和其它有机物质层。大多数沉积技术属于两个主要类别之一：物理气相沉积(PVD)和化学气相沉积(CVD)。在属于PVD的一种方法中，使衬底靶与容纳气体(其例如可通过蒸发产生)接触。气体中的某些物质吸附至靶标表面，形成构成沉积物的层。在微电子制造工业中通常使用的另一种方法中，使用氩离子束或其它适当的能量源来溅射含有待沉积的材料的靶标。然后溅射的材料沉积在微流控装置的表面上。在CVD中，与靶标接触的物质与表面反应，形成化学键合于物体上的组分。其它沉积技术包括：旋涂、等离子喷涂、等离子体聚合、浸涂、铸造和Langmuir-Blodgett膜沉积。在等离子喷涂中，将含有直径高达100μm的颗粒的细粉末悬浮在载气中。将含有颗粒的混合物通过等离子体射流加速并加热。熔化的颗粒溅至衬底上并冷冻以形成致密的涂层。等离子体聚合从含有有机蒸汽的等离子体产生聚合物薄膜(例如PMMA)。
一旦已将微通道、微腔和其它特征蚀刻至玻璃或硅衬底中，通常就密封蚀刻的特征，以确保微流控装置是“防水的”。当密封时，可在所有表面上施加粘附以使彼此接触。密封工艺可涉及融合技术，诸如开发用于玻璃与硅、玻璃与玻璃或硅与硅之间的键合的那些融合技术。
阳极结合可用于将玻璃键合至硅上。在玻璃与硅之间施加电压，并且升高系统的温度以引起表面的密封。电场和升高的温度诱导玻璃中的钠离子迁移至玻璃-硅界面。玻璃-硅界面中的钠离子与硅表面高度反应，在表面之间形成牢固的化学键。理想地，使用的玻璃的类型应具有接近硅的热膨胀系数的热膨胀系数(例如，Pyrex Corning 7740)。
融合键合可用于玻璃与玻璃之间或硅与硅之间的密封。首先通过施加高接触力来强制并对准衬底。一旦接触，原子吸引力(主要是范德华力)将衬底保持在一起，以使它们可被放置在炉中并在高温下退火。取决于材料，使用的温度范围介于约600℃与1100℃之间。
聚合物/塑料
根据本发明的实施方案，可采用许多技术来微加工塑料衬底。这些技术有激光烧蚀、光固化成型、、氧等离子体蚀刻、粒子射流烧蚀(particle jet ablation)和微电蚀(microelectro-erosion)。这些技术中的一些也可用于将其它材料(玻璃、硅、陶瓷等)成型。
为了产生微流控装置的多个拷贝，采用复制技术。此类技术涉及首先制造包含要复制的图案的母版或模具插件。然后，将母版用于通过聚合物复制工艺大量生产聚合物衬底。
在复制过程中，将包含在模具中的母版图案复制至聚合物结构上。在某些实施方案中，将聚合物和固化剂混合物在高温下倒入模具中。冷却混合物后，聚合物含有模具的图案，然后将其从模具中取出。或者，可将塑料注入包含模具插件的结构中。在显微注入中，将加热至液态的塑料注入至模具中。分离并冷却后，塑料保持模具的形状。
在模制工艺中可使用PDMS(聚二甲基硅氧烷)(一种硅基有机聚合物)来形成微流控结构。由于其弹性特征，PDMS非常适用于介于约5μm和500μm之间的微通道。PDMS的特定特性使其特别适用于微流控目的：
1)其是光学透明的，这允许流动的可视化；
2)当与适量的网状剂混合时，PDMS具有有利于保持微流体连接“防水”的弹性体性质；
3)使用膜的阀和泵可由PDMS制成，因为其具有弹性；
4)未处理的PDMS是疏水的，并且在通过氧等离子体氧化表面后或浸入强碱后变得暂时亲水；氧化的PDMS本身粘附至玻璃、硅或聚乙烯上，只要这些表面本身暴露于氧等离子体。
5)PDMS是可透气的。即使在管道中存在气泡(因为气泡被迫从材料中排出)，也容易用液体填充通道。但其对非极性有机溶剂也是可渗透的。
显微注入可用于形成在广泛的微流体设计中使用的塑料衬底。在此过程中，首先在高于塑料的玻璃化转变温度的温度下，在真空和压力下，将液体塑料材料注入至模具中。然后将塑料冷却至低于玻璃化转变温度。去除模具后，所得的塑料结构是模具图案的反面图案。
另一种复制技术是热压印，其中将聚合物聚合物衬底和母版加热至高于聚合物的玻璃化转变温度Tg(对于PMMA或PC，其约为100-180℃)。然后以预设的挤压力将压印母版压在衬底上。然后将该体系冷却至低于Tg，然后分离模具和衬底。
通常，聚合物在与模具工具分离时经历最高的物理力，特别是当微结构包含高深宽比和垂直壁时。为了避免损坏聚合物微结构，可考虑衬底和模具工具的材料性质。这些性质包括：侧壁粗糙度、侧壁角度、压印母版与衬底之间的化学界面以及温度系数。压印工具的高侧壁粗糙度可损坏聚合物微结构，因为在分离过程中粗糙度促成工具与结构之间的摩擦力。如果摩擦力大于聚合物的局部拉伸强度，则微结构可被破坏。对于垂直壁，工具与衬底之间的摩擦在微结构上可以是重要的。母版与衬底之间的化学界面也受到关注。因为压印过程使系统温度升高，所以在母版与衬底的界面中可形成化学键。这些界面键可干扰分离过程。工具和衬底的热膨胀系数的差异可产生额外的摩擦力。
可使用各种技术来形成模具、压印母版和含有用于通过上述复制工艺复制塑料结构的图案的其它母版。此类技术的实例包括LIGA(下面所述的)、烧蚀技术和各种其它机械加工技术。类似的技术也可用于小批量生产掩模、原型和微流控结构。用于模具工具的材料包括金属、金属合金、硅和其它硬质材料。
可将激光烧蚀用于直接在衬底上或通过使用掩模形成微结构。该技术使用精确定向的激光器，通常具有介于红外线与紫外线之间的波长。激光烧蚀可在玻璃和金属衬体上以及聚合物衬底上进行。可通过相对于固定激光束移动衬底表面或相对于固定衬底移动光束来进行激光烧蚀。可利用激光烧蚀来制造各种微孔、槽和高深宽比结构。
某些材料诸如不锈钢制成非常耐用的模具插件，并且可被微加工以形成下至10μm范围的结构。存在用于微细制造的各种其它微加工技术，包括μ-放电加工(μ-EDM)、μ-铣削、聚焦离子束铣削。μ-EDM允许在导电材料中制造三维结构。在μ-EDM中，通过在电极(阴极工具)与工件(阳极)之间生成的高频放电来除去材料。将工件和工具均浸没在电介质流体中。该技术产生相对更粗糙的表面，但在材料和几何形状方面提供了灵活性。
可使用电镀来制造例如镍合金的复制模具工具/母版。该工艺始于光刻步骤，其中将光致抗蚀剂用于进行电镀的确定的结构。要电镀的区域没有抗蚀剂。对于具有高深宽比和低粗糙度要求的结构，可将LIGA用于产生电镀形式。LIGA是Lithographic(光刻)、Galvanoformung(电镀)、Abformung(成型)的德语首字母缩略词。在属于LIGA的一个方法中，将厚的PMMA层暴露于来自同步加速器源的x射线。由LIGA产生的表面具有较低的粗糙度(约10nm RMS)，并且所得镍工具对于大多数聚合物具有良好的表面化学性质。
与玻璃和硅装置一样，聚合物微流控装置必须密封起来才能起作用。用于微流控装置的键合方法中的常见问题包括通道的阻塞和通道的物理参数的变化。层合是用于密封塑料微流控装置的一种方法。在一个层合方法中，涂覆有熔化粘合剂层(通常5-10μm)的PET箔(约30μm)用加热辊滚动至微结构上。通过该过程，将盖箔密封在通道板上。几个研究组已经报道了通过在界面处聚合产生的键合，其中加热结构并且在相对侧施加力以封闭通道。但过大的施加的力可能损坏微结构。存在用于塑料与塑料之间和塑料与玻璃之间的界面的可逆和不可逆键合技术。一种可逆密封的方法涉及首先用甲醇充分漂洗PDMS衬底和玻璃板(或第二片PDMS)，并使所述表面彼此接触，然后进行干燥。然后将微结构在65℃下于烘箱中干燥10分钟。该过程不需要洁净室。通过首先用甲醇充分漂洗片，然后用氮气流分别干燥它们来完成不可逆密封。然后将两张片置于空气等离子体清洁器中并以高功率氧化约45秒。然后将衬底彼此接触，并且不可逆密封自发形成。
其它可用的技术包括激光和超声波焊接。在激光焊接中，聚合物通过激光产生的热量连接在一起。该方法已被用于制造微型泵。超声波焊接是可用于一些应用的另一种键合技术。
应当注意，尽管常常参照聚合酶链式反应(PCR)扩增技术来描述本文所述的核酸扩增技术，但此类描述并不旨在是限制性的。在某些实施方案中，可使用非PCR扩增技术，诸如各种等温核酸扩增技术；例如，实时链置换扩增(SDA)、滚环扩增(RCA)和多重置换扩增(MDA)。因此，在技术上可行的情况下，可用一种或多种合适的非PCR扩增技术，例如一种或多种等温核酸扩增技术来代替本文所述的一种或多种PCR扩增技术。
关于PCR扩增模块，有必要提供此类模块，至少用于扩增核酸的构建块(例如，充足浓度的四种核苷酸)、引物、聚合酶(例如，Taq)和适当的温度控制程序)。可在通过扩增模块的外部口提供的或来自上游来源的缓冲溶液中提供聚合酶和核苷酸构建块。在某些实施方案中，提供给分选模块的缓冲液流含有用于核酸扩增的所有原料中的一些。特别地对于PCR，反应混合物的精确温度控制对于实现高反应效率是非常重要的。芯片上热控制的一个方法是焦耳加热，其中将电极用于在确定的位置上加热模块内部的流体。流体电导率可用作用于功率控制的温度反馈。
在某些方面，可使含有PCR混合物的单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV流过在对PCR有效的条件下孵育液滴的通道。使微滴流过通道可涉及蛇形分布在保持在对PCR有效的温度下的各种温度区上的通道。此类通道可以例如在两个或更多个温度区上循环，其中至少一个区域保持在约65℃，并且至少一个区域保持在约95℃。随着微滴移动通过此类区域，它们的温度根据PCR的需要循环。本领域技术人员可容易地确定区域的精确数目和每个区域的各自温度以实现所需的PCR扩增。
在其它实施方案中，孵育单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV可涉及Megadroplet阵列的使用。在此类装置中，阵列由其中通道天花板缩进有数百万直径约25μm的圆形捕集阱的通道组成。使用分配板(连接捕获通道的入口的大通道)将单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV分配至捕获通道中。由于分配通道相较于捕获通道尺寸较大(分配通道的高度和宽度约为100×500μm，相比之下，单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV捕获通道的高度和宽度仅为约15×100μm)，因此分配通道的流体动力学阻力为捕获通道的流体动力学阻力的约1/1500；这确保了在捕获通道开始填充之前，分配通道用单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV填充，从而允许单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV均匀分配至捕获通道。当液滴流入捕获通道时，它们的形状略微变薄，因为通道的垂直高度比液滴短15μm，或10μm。当单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV靠近捕集阱时，其界面采用更大、能量上更有利的曲率半径。为了最小化其表面能，单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV完全填充捕集阱，使其能够采用最低、能量上最有利的平均曲率半径。在捕集阱被单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV占据后，其它单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV不能进入，因为捕集阱大到足以仅适合仅一个单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV；另外的单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV被转移至下游，以占据他们遇到的第一个空捕集阱。因为使用紧密堆积的乳液填充阵列，所以每个捕集阱将被多重乳液微滴和/或GUV占据，因为这是在低流量条件下能量上最有利的状态。在液滴阵列填充后，注入油以除去多余的液滴，并且对阵列进行热循环并成像。
各种不同的方式可用于填充装置的捕集阱。例如，由于液滴密度为碳氟载体油的63％，因此也可通过相对于地球引力场翻转装置来将浮力效应和离心用于填充和排空捕集阱。也就是说，如果单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV比油相重，则可将孔压印至装置的“底”中，使得当乳液流过其上方时，单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV将沉入孔中。可调节乳液的流速以使其最佳化，并且可使液滴尺寸与孔的尺寸大致相同，以使孔只能一次装配一滴。在其它方面，也可或替代地将单乳液微滴或多重乳液微滴和/或GUV贮存在没有孔的大室中。
所述装置可使用由珀尔帖板、散热器和控制计算机组成的加热器来实现热循环。珀尔帖板可通过控制所施加的电流来将芯片加热和/或冷却芯片至高于或低于室温。为了确保受控和可重现的温度，计算机使用集成温度探头监测阵列的温度，并根据需要调整施加的电流以进行加热和冷却。金属(例如，铜)板允许在冷却循环期间均匀地施加热量和耗散多余的热量，从而在不到1分钟的执行下从95℃冷却至60℃。为了对微滴进行成像，某些实施方案可包括扫描仪床。在某些方面，扫描仪床是Canoscan 9000F扫描仪床。
为了有效地从靶组分中扩增核酸，微流控系统可包括细胞裂解或病毒蛋白质衣壳破坏模块，以在将样品提供给扩增模块之前游离核酸。细胞裂解模块可依赖于化学、热和/或机械手段来实现细胞裂解。因为细胞膜由脂质双层组成，所以含有表面活性剂的裂解缓冲液可溶解脂质膜。通常，通过外部口将裂解缓冲液直接引入裂解室，使得细胞在分选或其它上游过程中不被过早裂解。在其中需要细胞器完整性的情况下，化学裂解方法可能不合适。通过剪切和磨损机械地破坏细胞膜在某些应用中是合适的。依靠机械技术的裂解模块可采用各种几何特征来实现对进入模块的细胞的穿孔、剪切、研磨等。其它类型的机械破裂诸如声学技术也可以产生适当的裂解物。另外，也可使用热能来裂解细胞，诸如细菌、酵母和孢子。加热破坏细胞膜并释放细胞内物质。为了使得能够在微流控系统中实现亚细胞分级分离，裂解模块也可采用电动技术或电穿孔。电穿孔通过施加引起质膜变化并破坏跨膜电位的外部电场来在细胞膜中产生瞬时或永久性孔。在微流控电穿孔装置中，膜可被永久性破坏，并且细胞膜上的孔持续释放所需的释放的细胞内物质。
本公开的示例性非限制性方面
上述本发明的主题的方面(包括实施方案)单独地或与一个或多个其它方面或实施方案的组合可能是有益的。在不限制前述描述的情况下，下面提供了编号为1-69的本公开的某些非限制性方面。在阅读本公开后对于本领域技术人员将显而易见的是，每个单独编号的方面可以与前述或后续单独编号的方面中的任一个一起使用或组合。这旨在为所有这些方面的组合提供支持，并且不限于下面明确提供的方面的组合：
1.一种核酸扩增方法，所述方法包括：
将核酸和扩增试剂包封在多重乳液微滴中，所述多重乳液微滴包含由不混溶的壳包围的第一混溶相流体，其中所述多重乳液微滴位于第二混溶相载体流体中；以及
使所述多重乳液微滴经历足以导致所述核酸扩增的扩增条件；以及
检测由所述核酸的扩增产生的扩增产物。
2.根据第1项所述的方法，其中所述第二混溶相载体流体是缓冲的水相载体流体。
3.根据第1项所述的方法，其中所述第一与第二混溶相流体相同。
4.根据第1-3项中任一项所述的方法，其中使所述多重乳液微滴经历扩增条件包括使所述多重乳液微滴经历聚合酶链式反应(PCR)条件。
5.根据第1-3项中任一项所述的方法，其中使所述多重乳液微滴经历扩增条件包括使所述多重乳液微滴经历等温扩增条件。
6.根据第5项所述的方法，其中所述等温扩增条件选自环介导的等温扩增(LAMP)、链置换扩增(SDA)、解旋酶依赖性扩增(HDA)和切口酶扩增反应(NEAR)。
7.根据第1-6项中任一项所述的方法，所述方法包括在扩增后可检测地标记所述扩增产物。
8.根据第1-6项中任一项所述的方法，其中所述扩增试剂包括可检测地标记的引物和/或探针。
9.根据第1-8项中任一项所述的方法，所述方法包括用荧光标记物可检测地标记所述扩增产物，并通过荧光激活细胞分选术(FACS)分选所述多重乳液微滴。
10.根据第1-9项中任一项所述的方法，所述方法包括通过调整所述第二混溶相流体的组成来调整所述第一混溶相流体的组成。
11.根据第1-10项中任一项所述的方法，所述方法包括通过向所述第二混溶相载体流体中添加可检测的标记物来可检测地标记所述扩增产物，其中所述可检测的标记物从所述第二混溶相载体流体中扩散，通过所述不混溶的壳，并进入所述第一混溶相流体。
12.根据第1-11项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第二多重乳液微滴，并且所述包封包括将所述核酸包封在第一多重乳液微滴中，将所述扩增试剂和所述第一多重乳液微滴包封在所述第二多重乳液微滴中，并破裂所述第一多重乳液微滴，从而使所述核酸与所述扩增试剂接触。
13.根据第1-11项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第二多重乳液微滴，并且所述包封包括将所述扩增试剂包封在第一多重乳液微滴中，将所述核酸和所述第一多重乳液微滴包封在所述第二多重乳液微滴中，并破裂所述第一多重乳液微滴，从而使所述核酸与所述扩增试剂接触。
14.根据第1-11项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第一多重乳液微滴，并且所述方法包括向所述第一多重乳液微滴中添加试剂，其中所述添加包括将所述第一多重乳液微滴包封在包含所述试剂的第二多重乳液微滴中，并破裂所述第二多重乳液微滴内的所述第一多重乳液微滴，以使所述试剂与所述第一多重乳液微滴的内容物接触。
15.根据第1-11项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第二多重乳液微滴，并且所述方法包括向所述第二多重乳液微滴中添加试剂，其中所述添加包括将包含所述试剂的第一多重乳液微滴包封在所述第二多重乳液微滴中，并破裂在所述第二多重乳液微滴内的所述第一多重乳液微滴，以使所述试剂与所述第二多重乳液微滴的内容物接触。
16.一种核酸扩增方法，所述方法包括：
将多个疑似含有靶核酸的核酸与扩增试剂包封在多个多重乳液微滴中，使得每个多重乳液微滴包含包封在其中的扩增试剂和0个或1个核酸，其中每个多重乳液微滴包含由不混溶的壳包围的第一混溶相流体，并且其中每个多重乳液微滴位于第二混溶相载体流体中；以及
使所述多重乳液微滴经历足以导致所述靶核酸(存在时)扩增的扩增条件；以及
检测由所述靶核酸(存在时)的扩增产生的扩增产物。
17.根据第16项所述的方法，其中所述第二混溶相载体流体是缓冲的水相载体流体。
18.根据第16项所述的方法，其中所述第一与第二混溶相流体相同。
19.根据第16-18项中任一项所述的方法，其中使所述多重乳液微滴经历扩增条件包括使所述多重乳液微滴经历聚合酶链式反应(PCR)条件。
20.根据第16-18项中任一项所述的方法，其中使所述多重乳液微滴经历扩增条件包括使所述多重乳液微滴经历等温扩增条件。
21.根据第20项所述的方法，其中所述等温扩增条件选自环介导的等温扩增(LAMP)、链置换扩增(SDA)、解旋酶依赖性扩增(HDA)和切口酶扩增反应(NEAR)。
22.根据第16-21项中任一项所述的方法，所述方法包括在扩增后可检测地标记所述扩增产物(存在时)。
23.根据第16-21项中任一项所述的方法，其中所述扩增试剂包括可检测地标记的引物和/或探针。
24.根据第16-23项中任一项所述的方法，所述方法包括用荧光标记物可检测地标记所述扩增产物(存在时)，并通过荧光激活细胞分选术(FACS)分选所述多重乳液微滴，以鉴定含有所述靶核酸(存在时)的多重乳液微滴。
25.根据第16-24项中任一项所述的方法，所述方法包括通过调整所述第二混溶相载体流体的组成来调整所述第一混溶相流体的组成。
26.根根据第16-25项中任一项所述的方法，所述方法包括通过向所述第二混溶相载体流体中添加可检测的标记物来可检测地标记所述扩增产物(存在时)，其中所述可检测的标记物从所述第二混溶相载体流体中扩散，通过所述不混溶的壳，并进入所述第一混溶相流体。
27.根据第16-26项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第二多重乳液微滴，并且所述包封包括将所述多个核酸包封在多个第一多重乳液微滴中，将所述扩增试剂和所述第一多重乳液微滴包封在所述第二多重乳液微滴中，并破裂所述第二多重乳液微滴中的所述第一多重乳液微滴，从而使所述核酸与所述扩增试剂接触。
28.根据第16-26项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第二多重乳液微滴，并且所述包封包括将所述扩增试剂包封在第一多重乳液微滴中，将所述多个核酸和所述第一多重乳液微滴包封在所述第二多重乳液微滴中，并破裂所述第二多重乳液微滴中的所述第一多重乳液微滴，从而使所述核酸与所述扩增试剂接触。
29.根据第16-26项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第一多重乳液微滴，并且所述方法包括向所述第一多重乳液微滴中添加试剂，其中所述添加包括将所述第一多重乳液微滴包封在包含所述试剂的第二多重乳液微滴中，并破裂所述第二多重乳液微滴内的所述第一多重乳液微滴，以使所述试剂与所述第一多重乳液微滴的内容物接触。
30.根据第16-26项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第二多重乳液微滴，并且所述方法包括向所述第二多重乳液微滴中添加试剂，其中所述添加包括将包含所述试剂的第一多重乳液微滴包封在所述第二多重乳液微滴中，并破裂所述第二多重乳液微滴内的所述第一多重乳液微滴，以使所述试剂与所述第二多重乳液微滴的内容物接触。
31.一种核酸扩增方法，所述方法包括：
使核酸和扩增试剂的混溶相流体溶液在微流控装置的通道中流动；
使核酸和扩增试剂的混溶相流体溶液与不混溶相流体接触，其中核酸和扩增试剂的所述混溶相流体溶液与所述不混溶相流体的接触导致由所述不混溶相流体包围的混溶相微滴形成；
使由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴在微流控装置的通道中流动；
使由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴与混溶相载体流体接触，其中由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴与所述混溶相载体流体的接触导致多重乳液微滴形成，每个多重乳液微滴包含由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴，其中所述不混溶相流体被所述混溶相载体流体包围；
使所述多重乳液微滴经历足以导致核酸的混溶相流体溶液中的靶核酸(存在时)扩增的扩增条件；以及
检测由核酸的混溶相流体溶液中的所述靶核酸(存在时)的扩增产生的扩增产物。
32.根据第31项所述的方法，其中所述混溶相载体流体是缓冲的水相载体流体。
33.根据第31项所述的方法，其中所述混溶相流体溶液的混溶相流体与所述混溶相载体流体相同。
34.根据第31-33项中任一项所述的方法，其中使所述多重乳液微滴经历扩增条件包括使所述多重乳液微滴经历聚合酶链式反应(PCR)条件。
35.根据第31-33项中任一项所述的方法，其中使所述多重乳液微滴经历扩增条件包括使所述多重乳液微滴经历等温扩增条件。
36.根据第35项所述的方法，其中所述等温扩增条件选自环介导的等温扩增(LAMP)、链置换扩增(SDA)、解旋酶依赖性扩增(HDA)和切口酶扩增反应(NEAR)。
37.根据第31-36项中任一项的方法，所述方法包括在扩增后可检测地标记所述扩增产物。
38.根据第31-36项中任一项所述的方法，其中所述扩增试剂包括可检测地标记的引物和/或探针。
39.根据第31-38项中任一项的方法，所述方法包括用荧光标记物可检测地标记所述扩增产物，并通过荧光激活细胞分选术(FACS)分选所述多重乳液微滴。
40.根据第31-39项中任一项所述的方法，所述方法包括通过调整所述混溶相载体流体的组成来调整所述混溶相流体溶液的组成。
41.根据第31-40项中任一项所述的方法，所述方法包括通过向所述混溶相载体流体中添加可检测的标记物来可检测地标记所述扩增产物，其中所述可检测的标记物从所述混溶相载体流体中扩散，通过所述不混溶相流体，并进入所述混溶相流体溶液。
42.根据第31-41项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第一多重乳液微滴，并且所述方法包括向所述第一多重乳液微滴中添加试剂，其中所述添加包括将所述第一多重乳液微滴包封在包含所述试剂的第二多重乳液微滴中，并破裂所述第二多重乳液微滴内的所述第一多重乳液微滴，以使所述试剂与所述第一多重乳液微滴的内容物接触。
43.根据第31-41项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第二多重乳液微滴，并且所述方法包括向所述第二多重乳液微滴中添加试剂，其中所述添加包括将包含所述试剂的第一多重乳液微滴包封在所述第二多重乳液微滴中，并破裂所述第二多重乳液微滴内的所述第一多重乳液微滴，以使所述试剂与所述第二多重乳液微滴的内容物接触。
44.一种核酸扩增方法，所述方法包括：
使核酸和扩增试剂的混溶相流体溶液在微流控装置的通道中流动；
使核酸和扩增试剂的混溶相流体溶液与不混溶相流体接触，其中核酸和扩增试剂的混溶相流体溶液与所述不混溶相流体的接触导致由所述不混溶相包围的混溶相微滴形成，其中每个混溶相微滴包含包封在其中的扩增试剂和0或1个核酸；
使由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴在微流控装置的通道中流动；
使由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴与混溶相载体流体接触，其中由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴与所述混溶相载体流体的接触导致多重乳液微滴形成，每个多重乳液微滴包含由所述不混溶相流体包围的混溶相微滴，其中所述不混溶相流体被所述混溶相载体流体包围；
使所述多重乳液微滴经历足以导致核酸的混溶相溶液中的靶核酸(存在时)扩增的扩增条件；以及
检测由所述核酸的混溶相溶液中的所述靶核酸(存在时)的扩增产生的扩增产物。
45.根据第44项所述的方法，其中所述混溶相载体流体是缓冲的水相载体流体。
46.根据第44项所述的方法，其中所混溶相流体溶液的混溶相流体与所述混溶相载体流体相同。
47.根据第44-46项中任一项所述的方法，其中使所述多重乳液微滴经历扩增条件包括使所述多重乳液微滴经历聚合酶链式反应(PCR)条件。
48.根据第44-46项中任一项所述的方法，其中将使述多重乳液微滴经历扩增条件包括使所述多重乳液微滴经历等温扩增条件。
49.根据第48项所述的方法，其中所述等温扩增条件选自环介导的等温扩增(LAMP)、链置换扩增(SDA)、解旋酶依赖性扩增(HDA)和切口酶扩增反应(NEAR)。
50.根据第44-49项中任一项的方法，所述方法包括在扩增后可检测地标记所述扩增产物。
51.根据第44-49项中任一项的方法，其中所述扩增试剂包括可检测地标记的引物和/或探针。
52.根据第44-51项中任一项的方法，所述方法包括用荧光标记物可检测地标记所述扩增产物，并通过荧光激活细胞分选术(FACS)分选所述多重乳液微滴。
53.根据第44-52项中任一项的方法，所述方法包括通过调整所述混溶相载体流体的组成来调整所述混溶相流体溶液的组成。
54.根据44-53项中任一项所述的方法，所述方法包括通过向所述混溶相载体流体中添加可检测的标记物来可检测地标记所述扩增产物，其中所述可检测的标记物从所述混溶相载体流体中扩散，通过所述不混溶相流体，并进入所述混溶相流体溶液。
55.根据第44-54项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第一多重乳液微滴，并且所述方法包括向所述第一多重乳液微滴中添加试剂，其中所述添加包括将所述第一多重乳液微滴包封在包含所述试剂的第二多重乳液微滴中，并破裂所述第二多重乳液微滴内的所述第一多重乳液微滴，以使所述试剂与所述第一多重乳液微滴的内容物接触。
56.根据第44-54项中任一项所述的方法，其中所述多重乳液微滴是第二多重乳液微滴，并且所述方法包括向所述第二多重乳液微滴中添加试剂，其中所述添加包括将包含所述试剂的第一多重乳液微滴包封在所述第二多重乳液微滴中，并破裂所述第二多重乳液微滴内的所述第一多重乳液微滴，以使所述试剂与所述第二多重乳液微滴的内容物接触。
57.一种核酸扩增方法，所述方法包括：
使核酸的混溶相流体溶液在微流控装置的通道中流动；
使核酸的混溶相流体溶液与不混溶相流体接触，其中核酸的混溶相流体溶液与不混溶相流体的接触导致由不混溶相流体包围的混溶相微滴形成；
使由所述不混溶相流体包围的混溶相微滴在微流控装置的通道中流动；
使由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴与包含扩增试剂的混溶相载体流体接触，其中由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴与包含扩增试剂的所述混溶相载体流体的接触导致多重乳液微滴形成，每个多重乳液微滴包含由所述不混溶相流体包围的混溶相微滴，其中所述不混溶相流体被所述混溶相载体流体包围，并且其中扩增试剂从所述混溶相载体流体扩散，通过所述不混溶相流体，并进入所述混溶相微滴；
使所述多重乳液微滴经历足以导致核酸的混溶相流体溶液中的靶核酸(存在时)扩增的扩增条件；以及
检测由核酸的混溶相流体溶液中的所述靶核酸(存在时)扩增产生的扩增产物。
58.一种核酸扩增方法，所述方法包括：
将细胞包封在多重乳液微滴中，所述多重乳液微滴包含由不混溶的壳包围的第一混溶相流体，其中所述多重乳液微滴位于第二混溶相载体流体中；
使所述多重乳液微滴经历足以在所述多重乳液微滴中实现所述细胞的裂解的条件；
使所述多重乳液微滴经历足以使一种或多种材料失活或除去所述材料的条件，所述材料对核酸扩增具有抑制作用；
将核酸扩增试剂引入所述多重乳液微滴；
使所述多重乳液微滴经历足以导致靶核酸(存在时)扩增的扩增条件；以及
检测由所述靶核酸(存在时)扩增产生的扩增产物。
59.根据第58项所述的方法，其中将所述扩增试剂引入所述多重乳液微滴包括将所述扩增试剂引入所述第二混溶相载体流体，其中所述扩增试剂从所述第二混溶相载体流体中扩散，通过所述不混溶的壳，并进入所述第一混溶相流体。
60.根据第58项所述的方法，其中所述多重乳液微滴不包含多于一个细胞。
61.根据第58-60项中任一项所述的方法，所述方法包括用荧光标记物可检测地标记所述扩增产物(存在时)，并通过荧光激活细胞分选术(FACS)分选所述多重乳液微滴。
62.一种核酸扩增方法，所述方法包括：
使第一混溶相流体中的细胞在微流控装置的通道中流动；
使所述第一混溶相流体与不混溶相流体接触，其中所述第一混溶相流体与所述不混溶相流体的接触导致包含所述细胞并由所述不混溶相流体包围的混溶相微滴形成；
使由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴在微流控装置的通道中流动；
使由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴与第二混溶相流体接触，其中由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴与所述第二混溶相流体的接触导致多重乳液微滴形成，所述多重乳液微滴包含由所述不混溶相流体包围的所述混溶相微滴，其中所述不混溶相流体被所述第二混溶相流体包围；
使所述多重乳液微滴经历足以在所述多重乳液微滴中实现所述细胞的裂解的条件；
使所述多重乳液微滴经历足以使一种或多种材料失活或除去所述材料的条件，所述材料对核酸扩增具有抑制作用；
将核酸扩增试剂引入所述多重乳液微滴；
使所述多重乳液微滴经历足以导致靶核酸(存在时)扩增的扩增条件；以及
检测由所述靶核酸(存在时)扩增产生的扩增产物。
63.根据第62项所述的方法，其中将所述扩增试剂引入所述多重乳液微滴包括将所述扩增试剂引入所述第二混溶相流体，其中所述扩增试剂从所述第二混溶相流体扩散，通过所述不混溶相流体，并进入第一混溶相流体。
64.根据第62项所述的方法，其中所述多重乳液微滴不包含多于一个细胞。
65.根据第62-64项中任一项所述的方法，所述方法包括用荧光标记物可检测地标记所述扩增产物(存在时)，并通过荧光激活细胞分选术(FACS)分选所述多重乳液微滴。
66.一种微流控装置，所述装置包括：
包含混溶相流体的样品接收通道；
与所述样品接收通道流体连通的单乳液液滴制造器，所述单乳液液滴制造器包括包含不混溶相载体流体的一个或多个通道，其中所述单乳液液滴制造器使所述不混溶相载体流体与所述混合相流体接触，从而形成单乳液液滴；
与单乳液液滴制造器流体连通的双重乳液液滴制造器，其中所述双重乳液液滴制造器包括一个或多个包含混溶相载体流体的通道，其中所述双重乳液液滴制造器使所述混溶相载体流体与所述单乳液液滴接触，从而形成双重乳液液滴；
与所述双重乳液液滴制造器流体连通的热循环仪，其中所述热循环仪接收所述双重乳液液滴并使所述双重乳液液滴进行热循环。
67.根据第64项所述的微流控装置，其包括检测器，其中所述检测器检测所述双重乳液液滴中核酸扩增产物的存在或不存在。
68.根据第66项或第68项所述的微流控装置，所述装置包括与所述热循环仪流体连通的微流控分选仪。
69.一种系统，其包括第64-68项中任一项的微流控装置和荧光激活细胞分选仪(FACS)，其中所述FACS基于所述双重乳液液滴中核酸扩增产物的存在或不存在来接收和分选所述双重乳液液滴。
70.根据上述任一方面的方法，其中所述扩增试剂包括多重置换扩增(MDA)试剂和聚合酶链式反应(PCR)试剂，并且其中使所述多重乳液微滴经历扩增条件包括对所述多重乳液微滴经历MDA扩增条件和PCR扩增条件。
71.一种核酸扩增方法，包括：
a)将核酸和扩增试剂包封在乳剂微滴中，其中扩增试剂包括非特异性扩增试剂和PCR扩增试剂；
b)使乳液微滴经历经历足以导致核酸进行非特异性扩增的扩增条件，以提供扩增产物；
c)使乳液微滴经历足以导致来自步骤b)的扩增产物的PCR扩增进行扩增条件，以提供PCR扩增产物；和
d)检测由步骤c)得到的PCR扩增产物。
72.根据权利要求71所述的方法，其中所述非特异性扩增试剂包括多重置换扩增(MDA)试剂。
73.根据权利要求72的方法，其中MDA试剂包含在缓冲条件下有活性的聚合酶，在该条件下Taq DNA聚合酶具有活性。
74.根据权利要求73的方法，其中聚合酶是Bst聚合酶。
75.根据权利要求71-74中任一项的方法，其中PCR扩增试剂包含Taq DNA聚合酶。
76.根据权利要求71-75中任一项的方法，其中所述乳液微滴是多重乳液微滴，其包含被不混溶壳包围的第一可混溶相流体，其中所述多乳液微滴位于第二可混溶相载体流体中。
77.根据权利要求76所述的方法，其中所述第二可混溶相载体流体是缓冲的水相载体流体。
78.根据权利要求77所述的方法，其中所述第一和第二可混溶相流体是相同的。
79.根据权利要求71-78中任一项的方法，包括扩增后可检测地标记PCR的扩增产物。
80.根据权利要求71-79中任一项的方法，其中PCR扩增试剂包含可检测地标记的引物和/或探针。
81.根据权利要求71-80中任一项的方法，包括使用荧光标签可检测地标记PCR扩增产物的扩增产物以及通过荧光激活细胞分选术(FACS)分选多重乳液微滴。
实施例
如可从上文提供的公开内容所理解的，本公开具有各种各样的应用。因此，提供下列实施例以为本领域普通技术人员提供如何产生和使用本发明的完整公开内容和说明，并且无意限制本发明者视为它们的发明的范围，它们也无意表示下面的实验是全部实验或所实施的唯一实验。本领域技术人员将容易地认识到可以改变或修改以产生基本类似结果的各种非关键参数。因此，提供下列实施例以为本领域普通技术人员提供如何产生和使用本发明的完整公开内容和说明，并且无意限制本发明者视为它们的发明的范围，它们也无意表示下面的实验是全部实验或所实施的唯一实验。已努力确保关于使用的数字(例如量、温度等)的准确性，但应当解释一些实验误差和偏差。除非另外指出，否则份是按重量计的份，分子量是重均分子量，温度以摄氏度数表示，压力是大气压或接近大气压。可使用标准缩写，例如，bp，碱基对；kb，千碱基；pl，皮升；s或sec，秒；min，分钟；h或hr，小时；aa，氨基酸；nt，核苷酸；等等。
实施例1：使用双重乳液PCR检测核酸
材料和方法
在聚(二甲基硅氧烷)(PDMS)中使用标准光刻技术制造微流控芯片。为了制造母版，将一层SU-8光致抗蚀剂(Microchem)旋涂至硅晶片上，然后在聚酯薄膜掩模((FinelineImaging)下暴露于来自Blakray装置的紫外光。然后将晶片在热板上于95℃下烘烤1分钟，然后在丙二醇单甲醚乙酸酯(PGMEA)中显影。然后将以11:1比例混合的PDMS聚合物和交联剂倒在母版上，然后在75℃下烘烤4小时。然后将装置从母版剥离，并使用0.75mm活检取芯针冲孔。之后，在氧等离子体处理之后将该装置键合至载玻片上。为了使装置通道疏水，将Aquapel冲洗至通道中，之后将装置在65℃烘箱中烘烤20分钟。光致抗蚀剂的厚度保持在25μm，而流动聚焦接合点处的通道宽度为20μm。
制备包含源自热裂解大肠杆菌(E.Coli)的DNA分子、2％聚乙二醇6K(Invitrogen)、2％-20、TolA检测引物和PCR主混合物(Phusion HF Flex 2x MM)的混合物。以1μM的工作浓度使用引物，引物如下：TolA正向5′-GTTGATTCAGGTGCGGTAGTT-3′(SEQ ID NO：1)，TolA反向5′-GCCTGCTGTTCCTTCATCTT-3′(SEQ ID NO：2)。将该混合物加载至回充有HFE-7500油的1ml注射器中。
将混合物以400μL h-1引入具有20μm喷嘴的平面流动聚焦装置中。以400μL hr-1引入载体油相，所述载体油相包含其中添加了按重量计2％的生物相容性氟化表面活性剂的HFE-7500氟化油。生物相容性表面活性剂可包括与 FSH结合的PEG600或类似分子量分子。或者，可将的离子形式添加至油相中，并将添加至水相中，从而在界面处生成稳定双重乳液囊泡的离子键。
通过使用这些流速和装置尺度，生成了直径约25μm的单分散单乳液。将单乳液液滴收集至1mL聚碳酸酯注射器中并使其乳浆化2分钟。为了生成双重乳液微滴，以200μLhr-1的流速将乳浆状单乳液引入另一个具有25μm喷嘴的平面流动聚焦装置。同时，以400μL hr-1引入载体水相。载体相用10％聚乙二醇(分子量35K)增稠，这使得这些流速的剪切速率更高，从而使得能够改善双重乳化。载体相也含有按重量计1％的普朗尼克F-68，以稳定所生成的双重乳液。
将双重乳液微滴收集到PCR管中并以3000rpm离心5分钟以使其浓缩。然后将它们重悬浮于1x HF无清洁剂缓冲液和1％普朗尼克F-68中。使用以下条件在T100热循环仪(Bio-Rad)上对该悬浮液进行热循环：95℃：10分钟，35个循环(95℃：10秒，55℃：30秒以及72℃：15秒)。然后通过以3000rpm离心浓缩双重乳液微滴，然后重悬浮至1x SYBR green(Invitrogen)溶液中，随后成像。
结果
图7中提供了上述双重乳液PCR的成像结果。因为靶分子的初始加载是随机的，所以一些双重乳液微滴是荧光的，由至少一个靶分子接种的，而其它微滴不是荧光的，没有靶标。通过将荧光统计数字与泊松分布拟合，可能校正多个包封，并获得准确的靶分子浓度。这些数据表明，双重乳液微滴在25μm时是热稳定的，并可用于数字PCR。
实施例2：双重乳液的FACS分析的预测实施例
可通过FACS分选双重乳液微滴。用于此类分选的示例性条件如下：用PBS以1:1比例稀释双重乳液微滴，并将其转移至12x75mm圆底管中以用FACSAria IIu(BDBiosciences)分析。PBS用作鞘液，以对应于200个事件/秒的流速运行事件。将细胞仪维持在4℃的温度，并在事件记录期间以300rpm的速度旋转管。为了检测FITC和探针，用488nm激光激发FITC-BSA和探针，其发射通过具有串联的505nm低通滤波器的530±30nm带通滤波器。
实施例3：通过大型单层囊泡(GUV)中的PCR的核酸检测的预测性实施例展示热稳 定性飞升GUV的微流控生成和FACS分选
大型单层囊泡(GUV)是悬浮在混溶水相中的膜结合的含水流体的囊。与液滴一样，它们可包封试剂，从而用作生物反应的隔室。取决于膜的化学性质，GUV可被制备成选择性可渗透的，捕获大分子如DNA和RNA，但允许小分子(如核苷酸和ATP)自由通过它们的膜。该选择性渗透性使GUV中的反应比乳液液滴中的反应更高效，因为随着反应进行，新的试剂可扩散进来。然而，在GUV中进行反应的挑战是它们易碎，由数个分子层厚度的膜组成，该膜可由于机械应力或热而容易破裂。为了在GUV中进行PCR，必须鉴定可承受高达95℃的重复热循环的膜组成。GUV的使用将允许反应器被制造得比数字液滴PCR中使用的反应器小得多，从而节省试剂，增加通量，并允许更多的反应。这反过来会提高dPCR的灵敏度，从而使其能够更准确地检测和定量DNA。
将分子和PCR试剂引入微流控装置并加载至GUV中。分子的浓度是固定的，使得平均来说，10个GUV中有1个包含单个分子，而其余的是空的。将悬浮在水相中的GUV离心以使其浓缩，除去上清液，并添加含有反应所必需的试剂的PCR缓冲液。然后将GUV在PCR仪中进行热循环。在热循环过程中，含有单分子的GUV经历扩增，而空白的那些GUV则不会扩增。取决于所使用的检测方法，这通过使连接至PCR探针的染料解除猝灭或通过允许嵌入染料如SYBR Green扩散至核心中并使扩增子染色来使扩增的GUV发荧光。到此时，GUV已经准备好进行FACS定量和分选。第二次浓缩热循环的GUV并重悬浮于FACS缓冲液中。在FACS期间，使用前向和侧向散射检测所有GUV，同时监测适用于PCR染料的通道的荧光值。FACS记录具有荧光的GUV的比例，提供原始溶液中靶DNA浓度的测量并且，如果打开分选，则分选落入指定的设门参数内的GUV。通过将悬浮液与全氟辛醇混合并涡旋来破裂所分选的GUV，然后将核酸制备物用于回收原始靶分子并弃除扩增子。
用于生成GUV的微流控方法。通过首先生成双重乳液，然后诱导双重乳液进行去润湿，来生成GUV。在去润湿中，将双重乳液(例如，油)的不混溶相从壳中清除，留下表面活性剂的膜，其中少量不混溶相液滴附着于膜的外部。所产生的GUV的尺寸由其所承载的双重乳液的尺寸决定：如果双重乳液是单分散的，则所产生的GUV也是单分散的。在初步实验中，已经证明了生成直径低至10μm的极度单分散的双重乳液的能力(图11)。这些双重乳液可用于形成具有相同尺寸的单分散GUV。
鉴定以100kHz实现的GUV产生的微流控喷嘴尺寸。在GUV的微流控生成中，随着GUV变小，产生率增加。因此，将监控和修改GUV的生产，以鉴定使得能够在数小时内生成10亿个的尺寸。在同轴流动聚焦和基于堵塞的生成中，GUV尺寸取决于剪切喷嘴的尺度和几何形状。因此，将测试适合于以100kHz形成5μm GUV的不同喷嘴尺寸和几何形状。将使用如图11所示的同轴流动聚焦装置，已显示所述装置产生下至10μm的双重乳液。该装置具有简单的益处，在一步法中快速形成双重乳液，并且也不需要润湿性图案化，从而使制造变得容易。如果同轴流动聚焦不充分，则将测试平面润湿性图案化装置中的流动聚焦，已显示所述装置生成单分散双重乳液(图12)。在该方法中，将微流控通道在某些区域中空间图案化为疏水性的，使得能够形成油包水乳液，并且在其它区域中是亲水性的，从而允许将含水液滴包封在油滴中，生成水包油包水双重乳液。该方法的主要有利方面是其允许使用较少的载体流体生成双重乳液，使其更具成本效益。然而，其不能如同轴流动聚焦一样快地产生液滴，因为其受限于基于堵塞的液滴生成，而同轴流动聚焦可以以快得多的喷射方案运行。
根据需要调整化学配方以100kHz产生热稳定性GUV。根据需要，通过在载体相中包含不同的表面活性剂(如20、80、普朗尼克等)和/或不同的增稠剂(例如PEG、藻酸盐、甘油等)来调整GUV的壳和载体相的配方。应慎重选择表面活性剂，因为它们会影响GUV的生成速率和稳定性。还应该选择载体相的粘度以匹配表面活性剂，因为在液滴生成过程中，尺寸和速率取决于毛细管数，而毛细管数本身本身取决于流体(和从而表面活性剂)的界面张力和载体相(和从而增稠剂)的剪切速率。一旦确定适合的喷嘴几何结构就可能会起作用的组合是在载体相中包含普朗尼克表面活性剂，在内相中包含和(以屏蔽我们的氟化聚醚PEG表面活性剂中未结合的羧酸盐)以及在载体相中包含增稠剂(包括高分子量PEG、BSA和甘油)的组合。可能需要调整乳液的化学成分以优化用于5μm GUV，其具有比40μm GUV更高的曲率。这可通过合成具有不同亲水-疏水嵌段尺寸的表面活性剂以及在载体相中包含添加剂来完成。
鉴定用于生成热稳定性GUV的另外的嵌段共聚物表面活性剂。为了生成热稳定性囊泡，将测试在水相中组装成囊泡时具有高熔化温度的嵌段共聚物表面活性剂。囊泡膜的熔化温度取决于其在载体相中的溶解度，所述溶解度又取决于其化学和分子量。因此，将测试高分子量氟化表面活性剂。这些表面活性剂将包括用于疏水-亲水嵌段的具有不同分子量的六氟丙烯环氧化物-聚乙二醇表面活性剂的氟封端的同聚物。这些嵌段的相对分子量是重要的，因为它们决定了囊泡膜上分子的几何形状和堆叠，所述几何形状和堆叠又影响了去润湿、熔化温度和最稳定的天然膜曲率。6,000-10,000(对于六氟丙烯环氧化物嵌段)和600-800(对于PEG嵌段)的分子量在产生直径为40μm的热稳定性GUV上是有效的。这些重量可能需要变化以通过使PEG嵌段更小来稳定小得多的5μm GUV。商购可得的六氟丙烯环氧化物(Krytox)和PEG(Jeffamine)有广泛的分子量。将测试不由可影响表面活性剂的几何形状并影响GUV热稳定性和尺寸的聚环氧乙烷加帽的PEG嵌段。将测试添加剂(包括BSA和其它蛋白质)结合难以通过纯化去除的从表面活性剂的不完全合成剩下的悬垂羧酸盐的用途。
测量GUV的最大FACS检测和分选。GUV是分散在水相中的水性流体的膜结合的囊。对于FACS，它们因此显示为具有与细胞相似的组成和大小的细胞。因此，FACS分选GUV与分选细胞相同，并且可在任何商购可得的系统上进行，而无需对该仪器或过程进行修改。当FACS分选GUV时，分选速率取决于流动注入速率和GUV浓度。40μm GUV可以以最大流速(75psi，FACSAria)进行FACS分析，并且它们可在分选后保持完整。预计对于5μm GUV也是如此，因为GUV对分解的强效性取决于其拉普拉斯压力p＝2λ/r，其中r是GUV半径，当GUV变小为1/r，所述强效性增加。要确认5μm GUV可以以这些速率进行FACS分选，如果它们不能，将对不同的配方进行测试，以鉴定具有增强的抗剪切性的那些配方。为了进一步提高分选速率，可浓缩样品。可通过离心浓缩40μm GUV，然后通过添加适量的FACS缓冲液将其重悬浮至工作浓度。将测试较小的5μm GUV的通过离心的浓缩，所述GUV可能由于其较小的重力质量而更难以旋转沉淀。要调整的参数将是旋转速度和时间。也可测试通过超速离心进行的浓缩。GUV载体相的粘度将会变化，因为沉降速度受重力与粘滞曳力的比率(mg/ηv)的控制。40μm GUV容易在离心中保存下来，因此预计5μm GUV也会保存下来，因为它们的更高的拉普拉斯压力应当使其对剪切和压缩力更加强效。实现的最大堆积密度可能是64％，对于随机紧密堆积的球体来说，该值是堵塞相变。高于该密度，悬浮液将具有弹性模量，这可能导致FACS喷嘴堵塞。
表征分选误差率。随着样本变得更浓以增加FACS的分选速率，两个GUV同时进入的概率增加。因此，如果GUV中的一个被标记出来以进行分选，则另一个也将被分选。控制该现象的统计数据由泊松分布来描述，并预测递增的样品密度将增加阳性分选错误。将监测该现象，并将排队统计将用于对错误过程建模。预期模型将分解，因为流动由于载体相中的增稠剂、GUV之间的相互作用以及堵塞效应而变为非牛顿型。因此，将改变这些参数以测试模型的有效性，并确定绝对最大分选速率是多少以及错误率如何与系统参数相适应。
实施分层分选以高度富集极其罕见的阳性GUV。因为大多数FACS分选错误是由两个或更多个GUV同时进入分选仪而导致的，大多数分选错误是阳性错误：几乎所有阳性GUV被回收，但因此有许多阴性GUV被回收。该类型的分选错误适用于分层分选，以持续富集目标群体。例如，为了保守富集每分选轮100倍，可在约3小时内分选10亿个GUV，产生1000万个GUV，其中阳性被富集100倍。将分选减慢至1kHz导致几乎完美的分选，从而允许剩余的1000万个GUV在另外3小时内被分选，以回收基本纯的阳性GUV溶液。通过使用分层分选，应该可能通过约6小时的分选检测和回收具有数十亿个GUV的群体中的数10个阳性GUV。这将使所公开的方法可用于检测和回收在不同群体中以极低丰度存在的分子、病毒或细胞。
单个GUV至孔中的FACS分选。因为GUV被FACS作为细胞来处理，与细胞一样，它们可被单独地分选至孔中。将测试和优化完成此操作的方法。可用全氟辛醇破裂GUV，并且使用下述方法，我们应该能够除去在GUV-PCR期间生成的污染性扩增子。此后，可用非特异性方法(MDA、MALBAC)扩增该分子，对扩增子进行条形码编码，并对经条形码编码的读数进行测序。这应当使得能够对与染色体一样大的分子进行回收和测序，并且此类分子的数量仅受限于可进行FACS加载的孔的数量(例如，384个/板)和可用的测序容量的数量限制。这对于筛选大型多样化群体以鉴定、回收稀有分子、病毒或真核细胞和对其进行测序是有价值的。本文所用的术语“核酸条形码序列”、“核酸条形码”、“条形码”等是指具有可用于鉴定和/或区分与一种或多种第二分子不同的一个或多个第一分子，核酸条形码缀合至所述一种或多种第一分子。核酸条形码序列通常较短，例如长度为约5至20个碱基，并且可以与一个或多个目标靶分子或其扩增产物缀合。核酸条形码序列可以是单链或双链的。
针对含水液滴优化和表征GUV-PCR和基准点效率
当液滴的尺寸减小时，在其内部进行的反应的效率下降。反应抑制是两个因素的结果：随着液滴变小，它们的体积随着直径的立方而减小，使得一半尺寸的液滴具有1/8的体积。体积的该快速减少意味着对于非常小的液滴，试剂可以是限制性的。抑制的另一个原因是液滴的油-水界面由于它们的两亲性组成而使酶变性。因为表面积体积比随着液滴变小而增加，界面抑制变得更加普遍。由于这些原因，即使可能生成直径小于5μm的液滴，大多数基于液滴的反应的实际下限为约50μm。将对GUV配方进行测试，以鉴定提供比液滴更高的生物相容性的那些配方，以使得反应器尺寸能够减小至5μm，体积减小1000倍。这将使得相同体积的试剂的反应性能能够达到1000倍以上。
优化5μm GUV中的PCR。将生成5μm GUV，并测定不同化学配方对其稳定性和PCR效率的影响。为了在GUV中进行PCR，将已知浓度的含有BRAF基因的质粒分散，使得它们以平均每滴0.1与DNA聚合酶、dNTP、PCR缓冲液和扩增该基因的100个碱基的片段的预设计的引物一起存在。使用Qubit 2.0荧光计来荧光测定初始质粒浓度。然后对GUV进行热循环，并将SYBR green添加至载体相中，所述SYBR green通过GUV膜化学分配并且对进行扩增的GUV特异性地染色。为了定量GUV-PCR效率，将对GUV成像，以测量具有荧光的分数以及终点值的平均值和标准偏差。为了基准化此过程对液滴反应的效率，将用QX100数字液滴PCR仪(Bio-Rad)重复本实验。将用全氟辛醇破裂来自QX100对照实验的GUV和液滴并回收DNA，并用凝胶电泳和荧光计分析，以估计产率。将对所有混合组合进行本工作流程。由于这是多参数优化，因此所有数据将以阵列格式存储，所述阵列格式将混合物组成与液滴荧光统计和DNA产率发生关联，从而允许使用多元回归来预测最佳混合组合，将独立地测试所述组合。
研究添加剂对GUV稳定性和PCR效率的影响。将测试已知乳液稳定剂和PCR添加剂，以研究其对GUV-PCR的影响，包括可结合表面活性剂的羧酸酯基团的聚醚胺，从而抑制酶吸附至界面；这应显著提高GUV中的反应效率。还将以0.1、1和10与表面活性剂的摩尔比测试 ED-600、ED-900和ED-2003。还将测试牛血清白蛋白(BSA)，其吸附至两亲性界面并生成屏蔽酶以免于变性的生物相容性“皮肤”。将在PCR混合物中测试0.5、1和2％(w/v)的BSA浓度。载体相还将补充有不同浓度的dNTP(起始于200μM)和MgCl2(1.5mM)，随着试剂被反应消耗，它们可以化学分配至GUV中并提高效率。
表征通过囊泡膜的化学分配和鉴定控制其的方法。将研究GUV膜的渗透性，并鉴定用于减弱的方法。大分子如DNA和蛋白质保持良好地包封在GUV中，但小分子如SYBR green，能够随着时间推移扩散至它们中。使用不同分子量的FITC-葡聚糖(5kDa、10kDa、20kDa、30kDa、40kDa、50kDa)，膜渗透性将被表征为随温度、小分子尺寸和化学性质而变化。在低分子量级下，将利用黄嘌呤家族染料(荧光素、罗丹明)、花青家族染料(吲哚菁、氧化碳菁oxycarbocyanine)和香豆素衍生物(4-羟基香豆素)。将这些结果与可比较浓度的荧光素的释放曲线进行比较。在已对这些分子的渗透性进行了表征之后，将测试不同的减弱渗透性的方法，包括向载体相中添加5％BSA(w/v)，这大大降低了40μm GUV中SYBR分配的速率。还将以不同浓度测试较小的蛋白质卵白蛋白、β-酪蛋白和t4基因蛋白32。除了蛋白质以外，还将0.1、1和10的与表面活性剂的摩尔比来研究( ED-600、ED-900和ED-2003)聚合物。还将研究聚二醇(Dow)，其可用胺官能化并且经显示形成大量树枝状聚合物，所述聚合物比线性聚合物如PEG更好地屏蔽疏水性界面。
探索多重PCR的方法。多重 PCR对于其中在单个样品中使两个或更多个序列必须相关的应用是有价值的。通过使用GUV-PCR，这将使得能够将突变定位在相同染色体上，或者鉴定具有特定基因组合的微生物，仅列举两个实例。多重 PCR依赖于使用具有不同光谱的染料标记探针的能力，从而允许利用分光光度计测量技术同时测量几个区域的扩增。 PCR使用利用荧光团和猝灭剂标记的探针，以及伴随的引物组。在扩增过程中，探针与引物之间的区域退火，并被某些DNA聚合酶的5′-3′外切核酸酶活性切割；裂解释放荧光团，使其发荧光并提供扩增的光学读数。将使用QX100(一种就多重单一乳液PCR验证的商业产品)作为对照设计和测试探针。质粒pUC19中的三个非重叠区域将被靶向，并且将在Stratagene Mx3005p qPCR仪中测量扩增效率。验证后，将在QX100中进行重新测试探针，以确认它们也以数字格式工作，这是重要的测试，因为在常规qPCR中有效的探针在液滴PCR中并不总是能够充分发挥作用，从而产生不提供DNA浓度的准确测量的异质终点荧光值。如果探针组在液滴格式中表现不佳，则将测试具有修改的识别序列的新探针组。一些探针在液滴形式上比其它探针更有效，并且因为探针供应商通常不会针对这些格式提供他们的DNA的说明书，因此验证探针组的唯一方法是使用液滴PCR实验。然而，通常可能在2-3次尝试中鉴定针对特定区域的良好探针组。
分子信标。分子信标是具有比诸如的线性探针更高的杂交特异性的PCR探针，因为它们使用二级结构来增加杂交的熵。这些探针包括发夹-环和茎结构，报告物和猝灭剂在茎的末端。如一样，PCR导致报告物和猝灭剂分离，产生荧光增加。这些探针的其它益处是它们不需要具有外切核酸酶活性的聚合酶，并且还通过反应保持完整，这导致在PCR结束时只有大分子良好地保留在GUV中。如实验一样，pUC19的三个区域将用不同的探针靶向，并且所有探针将在于GUV中测试之前用qPCR和液滴PCR进行验证。
蝎型探针。如分子信标一样，蝎型探针是双标记的发夹环探针，其利用染料-猝灭剂分离来在扩增下产生荧光。然而，这些约25个核苷酸探针解折叠，然后环区域与扩增子的靶区域结合。该策略的有利方面是探针保持与扩增子结合，再次使其成为良好地限制在GUV中的大分子结构的一部分。另外，由于不需要发夹的酶切并且探针是引物扩增子的一部分，因此反应倾向于比分子信标或 PCR更高效。如分子信标和实验一样，将在pUC19上测试三个非重叠探针组。
优化破坏GUV的方法。GUV的主要优点之一是它们将允许对用数字PCR检测的个体DNA分子进行FACS分选。为了充分利用这一点，需要从GUV中强力回收分子以进行下游测序的方法。在初步实验中，已经证明了使用1:1(v/v)的HFE-7500和全氟辛醇组成的缓冲液对40μm GUV的受控破裂。该破碎缓冲液通过溶解全氟化双层膜而破裂GUV。因为GUV破裂是化学性质的，因此预计其将同样好地作用于5μm GUV。如果不是这样，并且发现5μm GUV更难破裂，则将测试增强破裂的机械方法，包括使GUV流过1μm过滤器，使用50Hz的高剪切匀浆和珠磨以及20-100kHz的超声破碎。也可测试通过具有施加的高压AC场的微流控通道的流动的使用，已在初步实验中显示这破裂GUV。还将使这些方法与被设计来使GUV去稳定的化学技术(包括添加使表面活性剂的PEG部分增溶的氯仿)组合。还将测试通过添加高渗或低渗溶液(已显示这分别压碎或爆裂GUV)来进行的渗透性休克的使用。如果需要，可被测试的另一种方法是使用高pH和低pH，这已被证明在破裂乳液中是有效的。
从回收的DNA中除去GUV-PCR扩增子的开发方案。在初步实验中，已通过qPCR、DNA测序和凝胶电泳证实，>1兆碱基的靶分子在数字PCR后保留下来。然而，在该过程结束时，这些靶分子将与GUV中的数千个短的扩增子混合。分选后，这些扩增子代表在测序前应除去的DNA污染物。作为测试系统，使用dUTP而不是dTTP扩增pUC19的一个区域，使得在GUV-PCR中生成的所有扩增子将具有代替胸腺嘧啶的尿嘧啶。然后可使用尿嘧啶DNA糖基化酶选择性地消化这些扩增子，该糖基化酶催化尿嘧啶与其糖之间的N-糖苷键的水解，仅留下缺少尿嘧啶的原始靶分子。另一种方法将是使用生物素化的引物，使得可用链霉亲和素缀合的琼脂糖珠粒选择性地除去扩增子。qPCR将用于估计这些纯化后污染扩增子的浓度。
通过进行超过10亿次数字GUV-PCR，以及通过用FACS回收阳性分子，表现出比竞争 平台高1000倍的灵敏度
本实验的目标是证明GUV-PCR可用于以为最佳商业替代方案1000倍的灵敏度定量DNA，并且还证明了通过FACS分选选择性回收分子的能力。作为原理论证证明，将筛选合成DNA样品和患者样品。患者样品筛选的目标将是显示GUV-PCR使得能够以比现有商业产品和公开的液滴技术更低的浓度和更大的准确度检测癌症DNA。本实施例不旨在是限制性的：无需修改的相同工作流程可用于检测来自其它来源(胎儿、病原体)的血液中的DNA，以筛选大的多样化的基因组片段文库来富集目标区域，以分选染色体和以无培养的方式回收天然生态中的不可培养的病毒和微生物。
合成DNA加标实验。将进行加标实验来证明GUV-PCR用于检测和回收极其罕见的DNA变体的实用性。BRAF(一种原癌基因)的罕见突变等位基因将被用作稀有分子模型。将BRAF的该变体V600E克隆至pUC19载体。还将野生型BRAF克隆至pUC19以提供背景分子。探针将被设计用于检测变体，以便在热循环时，仅具有突变等位基因的GUV发荧光。在用这两种BRAF变体的质粒转化电感受态大肠杆菌后，将提取DNA，并用Qubit荧光计进行定量。已经开发了在无预先扩增分选的DNA存在的情况下转化并回收少至10个分选的分子的方案。这将用于计算两种DNA制剂中质粒分子的分子浓度。通过使用这些数字，将以10-9至10-4制备突变型至野生型的加标。基于对于5μm GUV的微流控生成的预期通量，对于为0.1的泊松载荷，应该可能检测和分选以少至1亿分之一存在的几个突变体。热循环后，将使GUV以50kHz的速率经历FACS，允许在约5小时内分选10亿个GUV。所分选的GUV将使用上述方案破裂，并且qPCR将用于定量扩增子相对于原始模板的相对量。为了确认突变等位基因的富集，将对其进行PCR扩增，然后克隆至TOPO-TA载体，转化至大肠杆菌中，进行DNA制备和Sanger测序。通过改变加标比、DNA浓度、GUV加载速率和表征方法的灵敏度以及稀有分子的检测和分选极限的FACS参数，将重复该过程。
检测、回收获自慢性骨髓性白血病患者的血液中的Bcr/abl转录物并对其进行测序。大多数慢性骨髓性白血病(CML)患者具有染色体9和22的长臂的易位，所述易位将c-abl癌基因从自染色体9q34调换至染色体22q11上的BCR基因。该融合提供用于监测CML的疾病进展的特异性标志物。qPCR技术目前用于检测该标志物，但它们的有限的灵敏度和精确度在许多情况下，特别是在疾病的早期(此时DNA以非常低的浓度存在)阻碍了监测。在本实验中，将证明GUV-PCR对该诊断应用的实用性，使得能够通过阳性分子的直接分选来检测浓度低至1/1000的这些癌症标志物，甚至回收所述癌症标志物和对其进行测序。骨髓样品将购自患者和其它未受影响的供体。RNA将用Qiagen的试剂盒提取，用Qubit荧光计定量，并用Quantitect逆转录试剂盒将其经历逆转录。引物只有在它们融合后才能扩增Bcr/abl转录物。将用本文所论述的PCR试剂包封总cDNA，并将进行GUV工作流程和FACS分选，从而提供总bcr/abl分子的绝对定量。使用FACSAria将阳性GUV单个地FACS分选至384孔板上的孔中，破裂GUV，并用对于bcr和abl是特异的引物扩增所述序列。将所得PCR产物克隆至TOPO-TA载体中，将其转化入电感受态大肠杆菌中，并对提取的DNA进行Sanger测序以定量患者中的Bcr/abl融合的统计量(即b2/a2，b3/a2等)。
实施例4：使用手压泵进行的双重乳液的被动生成的预测性实施例
可使用由手动泵诸如注射器施加的恒定压力被动地生成双重乳液。对于该方法，入口储存器装载有待双重乳化的溶液，并将入口密封在保压容器内。出口保持对大气敞开。然后，通过压缩连接至入口的储存器的活塞诸如注射器，使入口压力储存器内的空气压缩受控的量，从而产生受控的压力和贯穿装置的压力差。该压力差泵动液体通过双重乳化器，从而生成双重乳液液滴。
可选择通道尺度、流体性质和施加的压力，以确保所需双重乳液的正确形成。由于压力储存器的体积可以相较于装置和入口以及使用机械锁或刻度标记控制的压缩体积是大的，所以该方法允许稳定的、长寿命的和受控的压力施加和双重乳液的生成。
实施例5：用于双重乳液产生的装置的制备
为了产生用于单装置双重乳液产生的母版，将一层SU-8光致抗蚀剂旋涂在硅晶片上，然后在聚酯薄膜掩模存在的情况下暴露于紫外光。然后将晶片在135℃下烘烤1分钟。将第二层SU-8光致抗蚀剂旋涂在暴露的PDMS上，并在第二聚酯薄膜掩模存在的情况下暴露于紫外光，然后在95℃下进行第二次烘烤1分钟。然后在丙二醇单甲醚乙酸酯中对晶片进行显影。然后将以11:1比例混合的PDMS聚合物和交联剂倒在母版上并在75℃下烘烤4小时。然后将装置从母版剥离，并使用0.75mm活检取芯针冲孔，接着进行氧等离子体处理并键合至一层PDMS。为了使装置通道成为疏水性的，将PDMS芯片在75℃下孵育2天。第一入口的通道尺度为15x15μm，第并且二接合点的通道尺度为30x30μm。为了在第二接合点处产生亲水接合点同时在第一接合点处保持疏水性质，在第二进水口和出口保持暴露的同时，封闭进油口和进水口。然后用氧等离子体处理该装置2分钟。为了产生更持久的表面化学改性，可在如Vickers，等，Anal.Chem，2006，78(21)，第7446-7452页中所述的氧等离子体处理之前，用溶剂处理该装置。
实施例6：使用单一装置双重乳液制备的双重乳液中的DNA扩增和检测
使用根据实施例5制备的单一装置双重乳液制备装置和如下所述的方法扩增并分析来源于λ噬菌体的DNA分子。
材料和方法
将来源于λ噬菌体的DNA分子系统地稀释2倍。制备包含λ噬菌体DNA稀释液、4％聚乙二醇6K、4％Tween-20、λ检测引物和P CR主混合物的混合物。以1μm的工作浓度使用引物，引物如下：5′-CTTTGAATGCTGCCCTTCTTC(SEQ ID NO：3)和5′-CAGATAAC CATCTGCGGTGATA(SEQ ID NO：4)。
将混合物加载至反向填充有HFE-7500油的1ml注射器中。以90μL hr-1将混合物引入具有20μm喷嘴的平面流动聚焦装置中。以80μL hr-1引入不混溶相，其包含以按重量计2％添加了生物相容性氟化表面活性剂的HFE-7500氟化油。以250μL hr-1引入载体相，其含有1％的普朗尼克F-68以及4％的Tween-20和10％的PEG35K。将双重乳液收集在0.2mL PCR管中。
使用以下条件孵育所得的双重乳液：95℃下2分钟；40个循环：95℃下30秒，60℃下1.5分钟以及72℃下20秒。循环乳液用1x SYBR Green处理。将染色乳液注入至FACS Aria2上，其中相较于阴性对照测定阳性荧光。
结果
对于对定量核酸靶分子是有效的双重乳液数字液滴PCR(3DPCR)，具有荧光的液滴的比例应当随着溶液中靶分子的浓度而按比例变化，使得荧光液滴的分数的测量可用于推断分子的原始浓度。为了说明这一点，以0、50和250pg的不同靶分子浓度产生3个核酸样品，图15。使样品经历如图14所示出的3DPCR分析，并以明场和荧光模式成像(图15)。如所预期的，荧光液滴的比例随着靶浓度的增加而增加。为了定量这些发现，用FACS仪扫描液滴。双重乳液是在FACS上强烈散射的相对较大的物体。因此，当数据用于将每个事件的测量的侧向散射绘制随前向散射变化时，观察了多个群体，小的散射物体(可能是油滴和颗粒物)的大群体以及大的散射事件的较小的群体，其是双重乳液并且出现在图15(右图)中的红色门控群体中。在PCR之前，观察到所有的双重乳液都是暗的并且落在定义的为PCR阳性的荧光阈值以下，但是在热循环之后，一部分双重乳液显示出明亮的荧光并且落在阈值以上。因此，随着靶浓度增加，出现了阳性液滴的群体(绿点，图15，右图)，其中阳性液滴的分数随着靶浓度升高而增加。
使用FACS数据，可测量不同的已知靶浓度的样品的阳性和阴性滴的精确分数。当将该分数随靶浓度变化作图时，其在3-4个数量级上大致是线性的，并且与基于液滴载荷的泊松分布的预期比率相当一致，如图13中所示。这表明通过使用FACS测量阳性双重乳液液滴的分数，可以准确地估计靶分子的浓度。
FACS仪具有以极高的速度分选荧光实体的附加能力-一些仪器报告最大分选速度为100kHz。当与3DPCR组合时，这提供了用于从异质样品中富集靶分子的有效方法。该方法允许分选单个靶分子，以回收样品中的所有靶分子并弃除脱靶分子。为了说明这一点，生成包含特定浓度的靶分子的样品。在该浓度下，观察到极少量阳性双重乳液混入大得多的暗双重乳液的群体中，如图16(上图)中所示。然而，在FACS分选双重乳液后，观察到阳性事件的收集容器具有几乎全是荧光的液滴，而阴性事件的容器具有几乎全部暗的液滴，图16。这表明，通过使用FACS，可能基于荧光对3DPCR液滴进行分选，当与PCR组合时，这使得能够进行DNA分子的序列特异性分选以进行MESA富集。
实施例7：在双重乳液中使用多重数字PCR测量基因组大小分布的预测性
实施例
样品的基因组大小分布可用双重乳液中的多重数字PCR反应来测量。通常，探针被设计用于沿基因组间隔的区域。基因组一端上的探针具有第一有色染料，并且所有其它的探针均具有第二染料。在双重乳液(例如，如本文所述制备的双重乳液)中利用每对探针进行多重数字PCR反应。可通过比较随探针之间的距离变化的针对每对探针的双重阳性双重乳液液滴的数量来测量样品的基因组大小分布。
作为具体实例，探针可被设计来评估λ噬菌体样品的大小分布。设计了用第一染料(例如，Cy5)标记的第一探针，以在基因组的一个末端杂交，并设计了用第二染料(例如，FAM)标记的另外的探针，以在跨基因组的各个附加点上杂交。
在单一装置中制备双重乳液。首先通过具有氟化表面活性剂的HFE包封PCR混合物(例如，铂多重主混合物)、引物和靶DNA，所述HFE又由包含PEG、Tween、普朗尼克S-68、KCl、MgCl2的第二水层包封。将乳液收集在含有KCl和MgCl2的PCR反应容器中。然后使这些反应容器直接循环以进行PCR扩增。为每对探针制备数字PCR样品。例如，对于长度为约48.5kb的λ噬菌体基因组和在1kb处杂交的第一探针以及在4kb、18kb、35kb和46kb处杂交的其余探针，制备4个单独的数字PCR反应：
1.1kb处的Cy5探针与4kb处的FAM探针
2.1kb处的Cy5探针与18kb处的FAM探针
3.1kb处的Cy5探针与35kb处的FAM探针
4.1kb处的Cy5探针与46kb处的FAM探针
根据为PCR混合物规定的循环参数，使双重乳液进行热循环，并且以一式三份测试样品。可将荧光显微镜用于对热循环的双重乳液液滴进行成像。双重乳液液滴的4个群体是可鉴定的：无信号的空液滴、具有来自一个探针的信号的液滴、具有来自另一个探针的信号的液滴以及具有来自两个探针的信号的液滴。使用成像分析软件对落入这四个群体的液滴数量进行定量。作为使用显微镜和成像分析的替代方案，微流控检测器或FACS可用于分析双重乳液液滴的荧光。
如果双重乳液液滴对于两个标记的探针均呈阳性，则基因组样品是完整的并且包含被两个探针靶向的基因组区域。类似地，如果双重乳液液滴仅对一个探针呈阳性，则将该包封的样品被片段化，并且不包含被另一探针靶向的基因组区域。
将双重阳性双重乳液液滴的分数随基因组上的探针之间的距离变化进行绘图。如果样品完好无损，则无论探针沿基因组间隔的距离有多远，所有呈阳性的液滴对于两个探针均呈阳性。如果样品具有一定量的片段化或降解，则双重阳性双重乳液液滴的数量将随着探针之间的距离增加而减小。更广泛降解的样品将具有双重阳性液滴的数量(随探针之间距离增加而变化)的更大减少。通过使用该方法，可将多重数字PCR用于测量DNA和RNA样品的基因组大小分布。
实施例8：用于从人基因组DNA富集HTV前病毒的双重乳液MESA
作为利用FACS分选病毒基因组的能力的说明，进行了实验，其中将λ病毒以不同浓度加载至样品中，并使用MESA和FACS分选每个样品，图17。观察到强烈散射液滴的不同群体(图17，上图)。当对大散射事件进行设门并随侧向散射对比荧光强度的变化作图时，缺乏λ的阴性群体不产生阳性事件，而具有每微升62.5个拷贝的群体产生阳性事件，并且每微升250个拷贝的样本产生甚至更多阳性事件，如图17(下图)所示。这表明3DPCR/MESA可用于检测溶液中的病毒基因组，检测是定量的，通过使用仪器的分选能力，应当可能回收病毒基因组。
本文描述的MESA方法提供了用于富集靶核酸(以用于测序分析)的强有力的方法。相较于其它方法(如寡核苷酸杂交捕获)，MESA使用少得多的信息(例如，＜100bp的已知序列)来特异性地回收大得多的分子(兆碱基)，或者如果在细胞或病毒内，特异性地回收甚至整个基因组。为了说明这一点，将MESA用于对经历抗逆转录病毒(ART)疗法的感染个体中的前病毒HIV病毒库进行测序。用ART成功治疗的患者通常具有很少的感染症状，因为病毒被阻止大量复制。相应地，患者的T细胞可以仅以1/1000个细胞的速率感染。这意味着在没有富集或PCR扩增的情况下，回收一个HIV前病毒的基因组序列需要对等同于约1000个人基因组的DNA进行测序，这通常是成本高昂的。另一方面，对仅有1000个HIV变体的库进行测序将需要对等同于超过100万个人基因组的DNA的测序，这是不可行的。用于从人基因组DNA中富集出前病毒的方法常常是无效的，因为病毒基因组很小，嵌入在人基因组内的未知位置，并且以极低的水平呈现。另外，PCR富集倾向于选择性地扩增含有缺失的短的基因组，其不太可能具有生物相关性，因为相应的病毒通常是有缺陷的。
MESA提供了在感染的个体中获得HIV前病毒库的方式。在本实验中，如图18所示，生成对HIV中的4个不同基因(gag、pol、env和3′LTR的区域)特异的引物组。Gag和env探针用于MESA分选，并且pol和3′LTR探针被保留用于下游富集的qPCR确认。由于HIV以如此极低的水平存在，因此需要被分选的核酸分子数量非常多。例如，在2000个人T细胞中有1个的保守感染率下，并在将基因组片段化成100kb分子时，必须对约120兆分子进行分选以回收1000个HIV基因组。由于目前的产量约为约1000万个液滴，所以需要将约12,000个基因组片段加载至每个双重乳液中，其中一个可能含有前病毒基因组。在分选数小时以回收所有1000个预期的阳性液滴后，回收了约1200万个100kb的分子，其中据估计HIV约为0.008％。这是相较于起始浓度约10,000倍的富集，但仍然相对较低。为了使测序成为可行，进行第二次富集。这次，采用并运行以及稀释来自第一个MESA的分选输出，使得1000万个液滴中的每一个平均含有1.2个分子。分选数小时，回收约1200个100kb的分子。在这些回收分子中，预期83％将含有前病毒基因组，使样品再富集10,000倍。
连续地进行多个MESA分选的富集功能是要付出成本的，这即使在开始时使用大量材料的情况下也是如此，极少的材料在最后被回收，因此不太可能对材料进行直接测序，这通常需要纳克量。为了解决该问题，使用非特异性多重置换扩增(MDA)来扩增分选的材料，其中100kb的分子是良好的底物并导致准确的扩增。这允许产生足够的材料来生成测序文库。
为了定量双重MESA分选和分选后MDA的结果，利用qPCR分析。将样品分成四个反应。将每个稀释100倍，并与gag、pol、env或3′LTR的引物组之一组合，图19。还建立了比较样品，其由这样的浓度的原始未富集的人基因组DNA组成，以使得前病毒预期存在10拷贝。100倍的稀释度确保MESA分选的比较样品处于相同的DNA浓度，从而允许测定的Ct值与分选的样品中的前病毒的拷贝数之间直接相关。进行qPCR分析，发现MESA分选的样品在15-20个热循环之间升高，而标准品在约30个热循环时升高。这对应于约12.5次循环的平均Ct偏移，当与100倍稀释相结合时，这对应于相对于起始浓度的105-107倍的富集。这表明MESA，特别是对相同样品连续进行时，可用于高度富集含有靶序列的核酸。
为了说明该方法的一般适用性，其用于从样品中富集出T4病毒，图20。如在标准单乳液数字PCR(图20，图A)中，用3DPCR观察数字液滴荧光(图20，图B)。然而，3DPCR中使用的双重乳液的强大优点是可通过用FACS分选液滴来回收阳性液滴，如图20(图C)所示。再次地，观察到大散射体的清晰群体，其为双重乳剂(图20，图D)，并且当绘制双重乳液的强度直方图时，其是双峰的，具有暗液滴的大群体和荧光液滴的较小群体(10.6％)，如图20(图E)中所示。结合λ病毒和HIV的数据，这些结果证明了MESA用于富集含有病毒序列的核酸以及可用PCR测定检测的任何其它序列的一般适用性。
实施例9：在乳液微滴中结合多位移扩增和PCR
为了测试多重置换扩增(MDA)是否会充分增加包封的DNA的初始量以允许有效构建下一代测序文库，测试了一种3步骤的方案，其通常包括(1)在含有MDA和所需的所有试剂的双重乳液中包封感兴趣的DNA，然后(2)对隔离的样品中存在的所有DNA进行非特异性扩增，然后(3)使用 PCR反应确定含有目标DNA的乳液。
在存在随机六聚体和特异于染色体XIV区域的引物的情况下，首先将来自酿酒酵母(S.cerevisiae)的纯化的缓冲DNA在热循环仪中加热至86℃持续5分钟以富集。冷却至室温后，使用如本文所述的双乳液微流体芯片，在包封之前将变性的DNA与BSA、dNTP、Bst2.0、Taq DNA聚合酶和对靶区域特异的探针DNA混合。然后使样品经历5个循环的MDA孵育(25℃持续5分钟，然后在42℃下孵育25分钟)，接着立即进行反应的特定温度条件(86℃持续2分钟，然后进行35个如下循环：86℃持续30秒，60℃持续1:30，和20℃持续20秒)。
在反应之后，使用基于乳液的绝对FITC荧光的流式细胞仪分选样品，然后使用方案进行文库构建。然后使用系统对文库进行测序。
图21显示了从这些实验获得的结果。图21显示门控散点图，其中加载足够的初始酿酒酵母以获得约1％阳性乳剂。如图所示，在MDA和反应后，存在约1％FITC阳性乳液(圆形)。收集大约10K阳性乳剂，以及相似数量的未分选乳剂，并制成使用系统测序的文库。随后的序列组装成重叠群。虽然未分选的测序数据(图22，底部图)显示缺乏映射到染色体XIV的大的重叠群，但分选的测序数据(图22，顶部图)显示了以感兴趣的探测区域为中心的大的测序区域。
前述仅仅说明了本发明的原理。应理解，本领域的技术人员将能够设计不同的布置，其尽管未在本文明确地描述或显示，但使本发明的原则具体化，且包含在其精神和范围内。另外，本文叙述的所有实施例和条件措辞都主要旨在帮助读者理解本发明的原则，而不对这类具体叙述的实例和条件的限制。此外，叙述本发明的原则、方面和实施方案的本文的所有陈述以及其具体实例都旨在涵盖其结构和功能二者的等同形式。另外，期望此类等同物包括目前已知的等同物和未来开发的等同物，即无论结构如何，开发的进行相同功能的任何元件。因而，本发明的范围无意限定于本文中显示和描述的示例性实施方案。相反，本发明的范围和精神由所附权利要求体现。

Claims (11)

1.一种核酸扩增方法，包括：
e)将核酸和扩增试剂包封在乳液微滴中，其中所述扩增试剂包含非特异性扩增试剂和PCR扩增试剂；
f)使所述乳液微滴经历足以导致所述核酸进行非特异性扩增的扩增条件，以提供扩增产物；
g)使所述乳液微滴经历足以导致来自步骤b)的所述扩增产物进行PCR扩增的扩增条件，以提供PCR扩增产物；以及
h)检测从步骤c)得到的PCR扩增产物。
2.根据权利要求1所述的方法，其中所述非特异性扩增试剂包括多重置换扩增(MDA)试剂。
3.根据权利要求2所述的方法，其中MDA试剂包括在缓冲条件下有活性的聚合酶，其中在所述缓冲条件下Taq DNA聚合酶具有活性。
4.根据权利要求3所述的方法，其中所述聚合酶是Bst聚合酶。
5.根据权利要求1-4中任一项所述的方法，其中所述PCR扩增试剂包含Taq DNA聚合酶。
6.根据权利要求1-5中任一项所述的方法，其中所述乳液微滴是包含被不混溶壳包围的第一可混溶相流体的多重乳液微滴，其中所述多重乳液微滴位于第二可混溶相载体流体中。
7.根据权利要求6所述的方法，其中所述第二可混溶相载体流体是缓冲的水相载体流体。
8.根据权利要求1所述的方法，其中所述第一和第二可混溶相流体是相同的。
9.根据权利要求1-8中任一项所述的方法，包括在扩增后可检测地标记PCR扩增产物。
10.根据权利要求1-8中任一项所述的方法，其中所述PCR扩增试剂包含可检测地标记的引物和/或探针。
11.根据权利要求1-10中任一项所述的方法，包括用荧光标记可检测地标记所述PCR扩增产物，并通过荧光激活细胞分选术(FACS)分选所述多重乳液微滴。
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