JP2010515677A - 免疫グロブリン断片を用いたインスリン分泌結合体 - Google Patents
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Abstract
Description
ペプチドを安定化させ且つタンパク質加水分解酵素による分解を抑制するための方法として、タンパク質加水分解酵素に敏感な特定のアミノ酸配列を変更する試みが行われてきた。例えば、血中グルコース濃度を減少させる作用をし、第2型糖尿病を治療するGLP−1(7−37または7−36アミド)は、生理活性半減期が約4分以下(Kreymann et al., 1987)と短いが、これはジペプチジルペプジダーゼIV(Dipeptidyl pepdidase IV、DPP IV)によるGLP−1の8番目のアミノ酸(Ala)と9番目のアミノ酸(Asp)間の切断によるGLP−1の力価喪失に起因する。結果的に、DPP IVに抵抗性を有するGLP−1類似体に対する様々な研究が行われた。このような研究によってAla8をGlyで置換し(Deacon et al., 1998; Burcelin et al., 1999)、或いはAla8をLeuまたはD−Alaで置換して(Xiao et al., 2001)DPP IVに対する抵抗性を増加させながら活性を維持することができた。GLP−1のN末端アミノ酸His7はGLP−1の活性に非常に重要であり、DPP IVのターゲットとして提供される。したがって、米国特許第5,545,618号では、N末端をアルキルまたアシル基に変形し、Gallwitzなどは7番目のHisをN−メチル化(N-methylation)またはα−メチル化(alpha-methylation)させるか、あるいはHis全体をイミダゾールで置換してDPP IV抵抗性を増加させ、生理活性を維持した。
このようなインスリン分泌ペプチドの問題点は、ペプチドの大きさが小さいため、腎臓から回収されず、体外に消失されることである。よって、腎臓における消失を抑制するために、ポリエチレングリコール(PEG)などの溶解度の高い高分子物質をペプチドの表面に化学的に付加させる方法が使用されてきた。
本発明で使用されるインスリン分泌ペプチドは、インスリン分泌機能を保有したペプチドであって、膵臓ベータ細胞のインスリンの合成および発現を刺激する。このようなペプチドは、前駆物質(precursors)、アゴニスト(agonist)、誘導体(derivatives)、断片(fragments)および変異体(variants)を含み、好ましくはGLP(Glucagon like peptide)−1、エキセンディン3(exendin 3)およびエキセンディン4(exendin 4)である。
GLP−1は、小腸で分泌されるホルモンであって、一般に、インスリンの生合成および分泌を促進し、グルカゴン分泌を抑制し、細胞内のグルコース吸収を促進する。グルカゴン前駆体は小腸で3つのペプチド、すなわちグルカゴン、GLP−1およびGLP−2に分解される。ここで、GLP−1はGLP−1(1−37)を意味し、元々インスリン分泌機能のない形態であるが、GLP−1(7−37)の形態でプロセスされて活性型GLP−1(7−37)になる。GLP−1(7−37)アミノ酸配列は、次のとおりである:
GLP−1(7−37)
HAEGT FTSDV SSYLE GQAAK EPIAW LVKGR G
GLP−1断片は、天然型GLP−1のN末端またはC末端に対して一つまたはそれ以上のアミノ酸が追加または削除された形態を意味し、追加されたアミノ酸は天然に存在しないアミノ酸(例えば、D型アミノ酸)も可能である。
GLP−1変異体は、天然型GLP−1とアミノ酸配列が少なくとも一つ異なるペプチドであって、インスリン分泌機能を保有したペプチドを意味する。
エキセンディン3とエキセンディン4は、GLP−1と53%のアミノ酸配列類似性を示す39個のアミノ酸からなるインスリン分泌ペプチドであり、エキセンディン−3とエキセンディン−4のアミノ酸配列は、次のとおりである:
エキセンディン−3
HSDGT FTSDL SKQME EEAVR LFIEW LKNGG PSSGA PPPS
エキセンディン−4
HGEGT FTSDL SKQME EEAVR LFIEW LKNGG PSSGA PPPS
エキセンディン断片は、天然型エキセンディンのN末端またはC末端に対して一つまたはそれ以上のアミノ酸が追加または削除された形態を意味し、天然に存在しないアミノ酸(例えば、D型アミノ酸)の追加も可能である。このようなエキセンディン断片はインスリン分泌機能を保有する。
エキセンディン変異体は、天然型エキセンディンとアミノ酸配列が少なくとも一つ異なるペプチドであって、インスリン分泌機能を保有したペプチドを意味する。
エキセンディンアゴニスト、誘導体、断片および変異体でそれぞれ使用された製造方法は、独立に使用でき、組み合わせも可能である。例えば、本発明は天然型インスリン分泌ペプチドとはアミノ酸配列が少なくとも一つ異なり、N末端アミノ酸残基に脱アミノ化アミノ酸配列を有するインスリン分泌ペプチドも含まれる。
また、本発明で使用されたインスリン分泌ペプチドは、様々な部位で非ペプチド性重合体と結合できる。本発明で製造したペプチド結合体は、インスリン分泌ペプチドの結合部位によって活性の差異があり得る。
たとえば、N末端部位およびC末端などのN末端以外の部位にそれぞれカップリングしてインビトロ(in vitro)活性の差異を確認することができる。アルデヒド反応基は、低いpHでN末端に選択的に反応し、高いpH条件、例えばpH9.0ではリジン残基とも共有結合を形成することができる。反応pHを変えながらPEG化(Pegylation)反応を行った後、イオン交換カラムを用いて反応混合物から位置異性体を分離することができる。
インスリン分泌ペプチドが、生体内活性に重要な部位であるN末端以外の位置にカップリングする場合、天然型アミノ酸配列で変更しようとするアミノ酸残基位置に反応性のあるアミン基を導入して非ペプチド性重合体のアルデヒドリンカーを用いて共有結合を形成することができる。
非ペプチド性重合体にあるアルデヒドリンカーを使用すると、このようなアルデヒドリンカーは、N末端およびリシン残基にあるアミン基と反応し、選択的に反応収率を向上させるために、変形された形態のインスリン分泌ペプチドを使用することができる。たとえば、N末端をブロッキングする方法、リシン残基を置換する方法、カルボキシル末端にアミン基を導入する方法などを用いて反応することが可能なアミン基を所望の位置に一つのみ維持することができ、これによりPEG化およびカップリング収率を向上させることができる。N末端の保護方法は、ジメチル化(dimethylation)の他に、メチル化(methylation)、脱アミノ化(deamination)またはアセチる化(acetylation)方法も使用可能であり、このようなアルキル化(alkylation)方法に限定されない。
具体的な一実施例において、本発明者らは、インスリン分泌ペプチドのリシン残基に選択的にPEGをカップリングするための方法として、pH9.0で天然型エキセンディン−4のPEG化反応を誘導した。他の方法として、リシン残基でPEG化するために、pH7.5でN末端が除去または保護された形態のエキセンディン−4誘導体のPEG化反応を行った。N末端ヒスチジンのアルファアミン基を除去する方法、N末端アミノ基をヒドロキシル基で置換する方法、N末端ヒスチジンのアルファアミン基に2つのメチル基を付ける方法、一番目のアミノ酸(ヒスチジン)のアルファ炭素およびこれに結合されているN末端アミン基を除去してイミダゾ−アセチル基のみを残す方法などを用いて、N末端のPEG化を予め防止した。このような誘導体を下記化学式1に示した。
<化学式1>
本発明で使用されるインスリン分泌ペプチドは、キャリア物質と非ペプチド性重合体によって連結される。
本発明に使用可能なキャリア物質は、免疫グロブリンFc領域、アルブミン、トランスフェリン(transferrin)およびPEGよりなる群から選択でき、好ましくは免疫グロブリンFc領域である。
場合に応じて、Fc領域はリン酸化(phosphorylation)、硫酸化(sulfation)、アクリル化(acrylation)、糖化(glycosylation)、メチル化(methylation)、ファルネシル化(farnesylation)、アセチル化(acetylation)、およびアミド化(amidation)などによって変更されてもよい。
前述したFc誘導体は、本発明のFc領域と同一の生物学的活性を示す誘導体であり、あるいはいわゆるFc領域の熱、pHなどに対する構造的安定性を増大させた誘導体である。
好ましくは、ヒト由来のFc領域は微生物から得た組み換え型免疫グロブリンFc領域である。
また、本発明の免疫グロブリンFc領域は、天然型糖鎖、天然型に比べて増加した糖鎖、天然型に比べて減少した糖鎖、または糖鎖が除去された形態であってもよい。このような免疫グロブリンFc糖鎖の増減または除去には、通常の方法、例えば化学的方法、酵素学的方法、および微生物を用いた遺伝工学的方法などが利用できる。ここで、Fcから糖鎖が除去された免疫グロブリンFc領域は、補体(Clq)の結合力が著しく低下し、抗体−依存性細胞毒性または補体−依存性細胞毒性が減少または除去されるので、生体内における不要な免疫反応を誘発しない。このような点から、糖鎖が除去された、または脱糖化された免疫グロブリンFc領域は、薬物のキャリアとしての本来の目的にさらに符合する形態であるといえる。
一方、免疫グロブリンFc領域は、ヒトまたは牛、ヤギ、豚、マウス、ウサギ、ハムスター、ラット、モルモットなどの動物起源であってもよく、好ましくはヒト起源である。また、免疫グロブリンFc領域は、IgG、IgA、IgD、IgE、IgM由来またはこれらの組み合わせ(combination)またはこれらのハイブリッド(hybrid)によるFc領域であってもよい。免疫グロブリンFc領域は、好ましくはヒトの血液に最も豊かなタンパク質に該当するIgGまたはIgGM由来であり、最も好ましくはリガンド結合タンパク質の半減期を向上させるものと知られているIgG由来である。
一方、本発明において、「組み合わせ」とは、二量体または多量体を形成するとき、同一起源の単鎖免疫グロブリンFc領域を暗号化するポリペプチドが相異なる起源の単鎖ポリペプチドと結合を形成することを意味する。すなわち、二量体または多量体は、IgG Fc、IgA Fc、IgM Fc、IgD FcおよびIgE Fc断片よりなる群から選ばれた2つ以上の断片から製造可能である。
一方、IgGはIgG1、IgG2、IgG3およびIgG4のサブクラスに分けることができ、本発明ではこれらの組み合わせまたはこれらのハイブリッドも可能である。好ましくはIgG2およびIgG4サブクラスであり、最も好ましくは補体依存的毒性(CDC、Complementdependent cytotoxicity)などのエフェクター機能が殆どないIgG4のFc領域である。
本発明において、「非ペプチド性重合体」は、繰返し単位が少なくとも2つ結合した生体適合性重合体を意味し、前記繰返し単位はペプチド結合ではなく任意の共有結合によって互いに連結される。
本発明に使用可能な非ペプチド性重合体は、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコールとプロピレングリコールとの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、たとえばPLA(ポリ乳酸)やPLGA(ポリ乳酸−グリコール酸)などの生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸、およびこれらの組み合わせよりなる群から選択でき、好ましくはポリエチレングリコールである。また、当該分野で公知になっているこれらの誘導体および当該分野の技術水準で容易に製造することが可能な誘導体も本発明の範囲に含まれる。
本発明に使用される非ペプチド性重合体は、免疫グロブリンFc領域およびタンパク質薬物と結合できる反応基を有する。
このような本発明のインスリン分泌ペプチド結合体は、インスリンの合成および分泌の促進、食欲抑制、体重減少、ベータ細胞の血中グルコース敏感度の増加、ベータ細胞増殖の促進、胃内容排出の遅延、グルカゴン抑制などといった既存のインスリン分泌ペプチドの生体内活性を維持させるうえ、インスリン分泌ペプチドの血中半減期およびこれによる前記ペプチドの生体内効力持続効果が画期的に増加するので、糖尿、肥満、急性冠症候群(Acute coronary syndrome)または多嚢胞性卵巣症候群(Polycystic ovary syndrome)の治療に有用である。
(1)両末端にアルデヒド、マレイミドまたはスクシンイミド誘導体反応基を有する非ペプチド性重合体をインスリン分泌ペプチドのアミン基またはチオール基に共有結合によって連結する段階と、
(2)前記(1)の反応混合物から、N−末端以外の位置に非ペプチド性重合体が共有結合されたインスリン分泌ペプチドを含む結合体を分離する段階と、
(3)分離された結合体の非ペプチド性重合体の他方の末端に免疫グロブリンFc領域を共有結合によって連結することにより、非ペプチド性重合体の両末端がそれぞれ免疫グロブリンFc領域およびインスリン分泌ペプチドと結合されたペプチド結合体を生成する段階とを含む、インスリン分泌ペプチド結合体の製造方法を提供する。
本発明において、用語「結合体」とは、非ペプチド性重合体とインスリン分泌ペプチドとが共有結合によって連結された中間体であって、後で、結合体にある非ペプチド性重合体の他方の末端に免疫グロブリンFc領域を結合させる。
(1)両末端にアルデヒド反応基を有する非ペプチド性重合体をインスリン分泌ペプチドのリシン残基に共有結合によって連結させる段階と、
(2)前記(1)の反応混合物から、リシン残基に非ペプチド性重合体が共有結合されたインスリン分泌ペプチドを含む結合体を分離する段階と、
(3)分離された結合体の非ペプチド性重合体の他方の末端に免疫グロブリンFc領域を共有結合によって連結することにより、非ペプチド性重合体の両末端がそれぞれ免疫グロブリンFc領域およびインスリン分泌ペプチドと結合されたタンパク質結合体を生成する段階とを含む製造方法を提供する。さらに好ましくは、前記(1)の非ペプチド性重合体とインスリン分泌ペプチドのリシン残基とはpH7.5以上で連結される。
また、本発明の別の様態において、本発明は、本発明のインスリン分泌ペプチド結合体を含む糖尿病治療用薬学的組成物を提供する。
一方、製剤学的剤形に適した担体、賦形剤および希釈剤の例としては、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、キシリトール、エリスリトール、マルチトール、澱粉、アカシア、アルギネート、ゼラチン、リン酸カルシウム、ケイ酸カルシウム、セルロース、メチルセルロース、未晶質セルロース、ポリビニルピロリドン、水、メチルヒドロキシベンゾエート、プロピルヒドロキシベンゾエート、タルク、ステアリン酸マグネシウムまたは鉱物油などが使用できる。また、 製剤学的剤形は充填剤、抗凝集剤、潤滑剤、湿潤剤、香料および防腐剤などをさらに含むことができる。
本発明において、「投与」は、ある適切な方法で患者に所定の物質を導入することを意味する。前記結合体の投与経路は、薬物が目的の組織に到達することができる限りはいずれの一般な経路を通じても投与できる。投与方法としては、腹腔内投与、静脈内投与、筋肉内投与、皮下投与、皮内投与、経口投与、局所投与、鼻内投与、肺内投与および直腸内投与など様々であるが、これに限定されない。ところが、経口投与の際に、ペプチドは消化されるため、経口用組成物は活性薬剤をコートし、あるいは胃における分解から保護されるように剤形化することが好ましい。好ましくは注射剤の形態で投与できる。また、薬学的組成物は、活性物質が標的細胞に移動することが可能な任意の装置によって投与できる。
また、本発明に係る薬学的組成物の投与回数および投与量は、治療する疾患、投与経路、患者の年齢、性別、体重および疾患の重症度などの様々な関連因子と共に、活性成分である薬物の種類に応じて決定される。本発明の薬学的組成物は、生体内持続性および力価に優れるので、本発明の薬学的製剤の投与回数および投与量を著しく減少させることができる。
実施例1.エキセンディン−4のPEG化(peglylation)と位置異性体の分離
3.4K PropionALD(2)PEG(プロピオンアルデヒド基を2つ持っているPEG、IDB Inc.,韓国)をエキセンディン−4(AP、米国)のN末端にPEG化させるために、ペプチドとPEGのモル比を1:15、ペプチドの濃度を3mg/mLにして、4℃で90分間反応させた。この際、反応はpH4.0の100mM濃度のNaOAc緩衝液内で、還元剤としての20mM SCB(NaCNBH3)を添加して行った。3.4K PropionLAD(2)PEGをエキセンディン−4のリシン(Lys)残基にPEG化させるために、ペプチドとPEGのモル比を1:30、ペプチドの濃度を3mg/mLにして、4℃で3時間反応させた。この際、反応はpH9.0の100mM濃度のNa−Phosphate緩衝液内で、還元剤としての20mM SCBを添加して行った。各反応液はSOURCE Q(XK16mL、Amersham Biosciences)を通じて1次的にモノ−PEG化ペプチドを精製し、SOURCE S(XK16mL、Amersham Biosciences)を通じて異性体を分離した。N末端がPEG化されたピークが最も前に、その後に順次2つのリシンがPEG化されたピークが出ることが分かった。ペプチドマッピング方法で溶出されたピークのPEG化位置を確認することができた。Lys12PEG化結合体がまず溶出され、Lys27PEG化結合体は最も後方に溶出され、N−末端位置異性体およびLys12位置異性体を完璧に分離することができた。
流速:2.0mL/分
勾配:A0→40%80分B(A:20mMトリスpH8.5、B:A+0.5M NaCl)
カラム:SOURCE S(XK16mL、Amersham Biosciences)
流速:2.0mL/分
勾配:A0→100%50分B(A:20mMクエン酸pH3.0、B:A+0.5M KCl)
実施例1の方法を用いて3.4K PropionALD(2)PEGをエキセンディン−4のN末端と反応させた後、N末端の異性体のみを精製して免疫グロブリンFcとカップリングさせた。ペプチドと免疫グロブリンFcのモル比を1:8、全体タンパク質濃度を50mg/mLにして4℃で17時間反応させた。反応は100mM K−P(pH6.0)で行った。ここに、還元剤としての20mM SCBを添加した。カップリング反応液は、2つの精製カラムを経て精製される。まず、カップリング反応に参与していない多量の免疫グロブリンFcを除去するために、SOURCE Q(XK 16mL、Amersham Biosciences)を用いた。Salt gradientとして20mMトリス(pH7.5)および1M NaClを使用すると、相対的に結合力の弱い免疫グロブリンFcがまず溶出され、相次いでエキセンディン−4−免疫グロブリンFcが溶出される。1次精製によってある程度免疫グロブリンFcが除去されるが、イオン交換カラムでは免疫グロブリンFcとエキセンディン−4−免疫グロブリンFcの結合力の差が大きくないため、完全には分離されない。したがって、2物質の疎水性を用いて2次精製を行った。SOURCE ISO(HR16mL、Amersham Biosciences)に20mMトリス(pH7.5)1.5M硫酸アンモニウムを用いて、1次精製された試料を結合させた後、益々硫酸アンモニウムの濃度を低めながら試料を溶出させる。HICカラムで結合力の弱い免疫グロブリンFcがまず溶出され、結合力の強いエキセンディン−4−免疫グロブリンFc試料が後で溶出される。これらは、疎水性の差異が大きいため、イオン交換カラムより一層分離が容易である。ところが、モル比の差による過量の免疫グロブリンFcが反応に投入されるため、HICカラムのみを使用しては高純度の結合体を得ることができない。HPLC逆相分析の結果、純度は91.6%を示した(図1)。
流速:2.0mL/分
勾配:A0→25%70分B(A:20mMトリスpH7.5、B:A+1M NaCl)
カラム:SOURCE ISO(HR16mL、Amersham Biosciences)
流速:7.0mL/分
勾配:B100→0%60分B(A:20mMトリスpH7.5、B:A+1.5M 硫酸アンモニウム)
実施例1の方法を用いて3.4K PropionALD(2)PEGをエキセンディン−4のLysと反応させた後、Lys異性体のみを精製して免疫グロブリンFcとカップリングさせた。2つのLys異性体ピークのうち、反応が多くN末端の異性体とは確然に区分される最も後方の異性体ピーク(Lys−27位置異性体)を用いてカップリングを行った。反応は、ペプチドと免疫グロブリンFcのモル比を1:8、全体タンパク質濃度を50mg/mLにして、4℃で16時間行った。反応は100mM K−P(pH6.0)で行い、還元剤として20mM SCBを添加した。カップリング反応の後、16mLのSOURCE Qと16mLのSOURCE ISOを用いた2段階の精製方法は、実施例2と同様である。HPLC逆相分析の結果、純度は91.7%を示した(図2)。
3.4K PropionALD(2)PEGをデス−アミノ−ヒスチジル−エキセンディン−4(DAエキセンディン−4、AP、米国)のLysとPEG化するために、ペプチドと3.4K PropionALD(2)のモル比を1:30、ペプチドの濃度を3mg/mLにして、4℃で12時間反応させた。反応液はpH7.5の100mM Na−phosphateであり、還元剤として20mM SCBを添加した。SOURCE Q(XK16mL、Amersham Biosciences)とSOURCE S(XK16mL、Amersham Biosciences)を用いてPEG化ペプチドを2段階で精製した。異性体の精製過程で、2つのLys異性体ピークのうち、反応が多くN末端の異性体とは確然に区分される最も後方の異性体ピーク(Lys−27位置異性体)を用いてカップリングを行った。反応は、ペプチドと免疫グロブリンFcのモル比を1:8、全体タンパク質濃度を60mg/mLにして、4℃で20時間行った。反応は100mM K−P(pH6.0)で行い、還元剤として20mM SCBを添加した。カップリング反応の後、16mLのSOURCE Qと16mLのSOURCE ISOを用いた2段階の精製方法は、実施例2と同様である。HPLC逆相分析の結果、純度は95.8%を示した(図3)。
流速:2.0mL/分
勾配:A0→20%70分B(A:20mMトリスpH9.0、B:A+1M NaCl)
カラム:SOURCE S(XK16mL、Amersham Biosciences)
流速:2.0mL/分
勾配:A0→50%50分B(A:20mMクエン酸pH3.0、B:A+1.M KCl)
ベータ−ヒドロキシ−イミダゾ−プロピオニルエキセンディン−4(HYエキセンディン−4、AP、米国)を用いて、実施例4と同様の方法で、3.4K PropionALD(2)PEGをHYエキセンディン−4のLysと反応させた後、2つのLys異性体ピークのうち、反応が多くN末端の異性体とは確然に区分される最も後方の異性体ピーク(Lys−27位置異性体)を用いてカップリングを行った。反応は、ペプチドと免疫グロブリンFcのモル比を1:8、全体タンパク質濃度を60mg/mLにして、4℃で20時間行った。反応は100mM K−P(pH6.0)で行い、還元剤として20mM SCBを添加した。カップリング反応の後、16mLのSOURCE Qと16mLのSOURCE ISOを用いた2段階の精製方法は、実施例2と同様である。HPLC逆相分析の結果、純度は93.9%を示した(図4)。
イミダゾ−アセチルエキセンディン−4(CAエキセンディン−4、AP、米国)を用いて、実施例4と同一の方法で、3.4K PropionALD(2)PEGをCAエキセンディン−4のLysと反応させた後、2つのLys異性体ピークのうち、反応が多くN末端の異性体とは完全に区分される最も後方の 異性体ピーク(Lys27位置異性体)を用いてカップリングを行った。反応はペプチドと免疫グロブリンFcのモル比を1:8、全体タンパク質濃度を60mg/mLにして、4℃で20時間行った。反応は100mM K−P(pH6.0)内で行い、還元剤として20mM SCBを添加した。カップリング反応の後、16mLのSOURCE Qと16mLのSOURCE ISOを用いた2段階の精製方法は、実施例2と同様である。HPLC逆相分析の結果、純度は95.8%を示した(図5)。
3.4K PropionALD(2)PEGをSer12変異されたDAエキセンディン−4(AP、米国)のLysとPEG化させるために、ペプチドと3.4K PropionALD(2)のモル比を1:30、ペプチドの濃度を3mg/mLにして、25℃で3時間反応させた。この際、反応はpH7.5の100mM Na−Phosphateで行い、還元剤として20mM SCBを添加した。SOURCE S(XK16mL、Amersham Biosciences)を用いた異性体精製過程なしで、SOURCE Q(XK16mL、Amersham Biosciences)を用いてモノ−PEG化(Mono-pegylated)ペプチド精製過程のみを実施例4と同様に行った。反応はペプチドと免疫グロブリンFcのモル比を1:8、全体タンパク質濃度を60mg/mLにして、4℃で20時間行った。反応は100mM K−P(pH6.0)内で行い、還元剤として20mM SCBを添加した。Ser12変異されたDAエキセンディン−4は、他のペプチドに比べてさらに強い陰イオン性質を示すため、SOURCE Qカラム精製過程のみでも、効果的に反応に参与していない過量の免疫グロブリンFcを除去することができた。したがって、SOURCE ISOカラム精製は省略された。SOURCE Qカラム精製条件は実施例2と同様である。HPLC逆相分析の結果、純度は92.5%を示した(図6)。
Arg12変異されたDAエキセンディン−4(AP、米国)を用いて、実施例7と同様の方法で、3.4K PropionALD(2)PEGをArg12変異されたDAエキセンディン−4のLysと反応させ、精製した後、カップリングを行った。反応はペプチドと免疫グロブリンFcのモル比を1:8、全体タンパク質濃度を60mg/mLにして、4℃で20時間行った。反応は100mM K−P(pH6.0)内で行い、還元剤として20mM SCBを添加した。カップリング反応の後、16mLのSOURCE Qと16mLのSOURCE ISOを用いた2段階の精製方法は、実施例2と同様である。HPLC逆相分析の結果、純度は99.2%を示した(図7)。
実施例4と同一の方法で、3.4K PropionALD(2)PEGをデス−アミノ−ヒスチジル−エキセンディン−4(DA−エキセンディ−4、AP、米国)のLys残基と反応させ、精製した。反応は、ペプチドとキャリアとしてのヒト血液由来アルブミン(緑十字、韓国)のモル比を1:7、全体タンパク質濃度を50mg/mLにして、4℃で24時間行った。反応は100mM Ka−P(pH6.0)内で行い、還元剤として20mM SCBを添加した。カップリング反応の後、16mLのSOURCE Qと16mLのSOURCE ISOを用いた2段階の精製方法は、実施例2と同様である。HPLC逆相分析の結果、純度は90.3%を示した(図8)。
ジメチル−ヒスチジル−エキセンディン−4(DMエキセンディン−4、AP、米国)を用いて、実施例4と同様の方法で、ジメチル−ヒスチジル−エキセンジン−4(Lsy27)−免疫グロブリンFc結合体を製造した。HPLC逆相分析の結果、純度は96.4%を示した(図9)。
3.4K ButyrALD(2)PEG(ブチルアルデヒド基を2つ持っているPEG、Nektar、米国)をGLP−1(AP、米国)のN末端にPEG化させるために、ペプチドとPEGのモル比を1:5、ペプチドの濃度を3mg/mLにして、4℃で90分間反応させた。この際、反応はpH6.0の100mM濃度のK−P緩衝液内で行い、還元剤として20Mm SCB(NaCNBH3)を添加して反応させた。反応はペプチドと免疫グロブリンFcのモル比を1:10、全体タンパク質濃度を50mg/mLにして、4℃で16時間行った。反応は100mM K−P(pH6.0)内で行い、還元剤として20mM SCBを添加した。カップリング反応の後、16mLのSOURCE Qと16mLのSOURCE ISOを用いた2段階の精製方法は実施例2と同様である。HPLC逆相分析の結果、純度は91%を示した(図10)。
3.4K PropionALD(2)PEGをデス−アミノ−ヒスチジル−GLP−1(Ap.,米国)のLysとPEG化させるために、ペプチドと3.4K PropionALD(2)のモル比を1:30、ペプチドの濃度を3mg/mLにして、4℃で4時間反応させた。この際、反応はpH7.5の100mM Na−phosphate内で行い、還元剤として20Mm SCBを添加した。SOURCE Q(XK16mL、Amersham Biosciences)を用いてモノPEG化ペプチドのみを精製した。反応はペプチドと免疫グロブリンFcのモル比を1:6、全体タンパク質濃度を60mg/mLにして、4℃で16時間行わせた。反応は100mM K−P(pH6.0)内で行い、還元剤として20mM SCBを添加した。カップリング反応の後、16mLのSOURCE Qと16mLのSOURCE ISOを用いた2段階の精製方法は実施例2と同様である。ところが、GLP−1−免疫グロブリンFc結合体は、エキセンディン−4−免疫グロブリンFc結合体より免疫グロブリンFcとの疎水性差が少ないため、16mLのSOURCE ISOカラムにおける分離能が低下する。したがって、16mLのSOURCE ISOカラム精製をもう1回繰り返した。HPLC逆相分析の結果、純度は91.9%を示した(図11)。
3.4K ButyrALD(2)PEG(ブチルアルデヒド基を2つ持っているPEG、Nektar、米国)を用いて、実施例1と同一の方法で3.4K−エキセンディン−4を製造した。その後、3.4K−エキセンディン−4を実施例3と同一の方法で免疫グロブリンFcとカップリングした。HPLC逆相分析の結果、純度は92.3%を示した(図12)。
エキセンディン−4持続型製剤の効力を測定する方法として、インビトロ細胞の活性を測定する方法を用いた。通常、GLP−1のインビトロ活性は、インスリノーマ細胞またはランゲルハンス島(islet of Langerhans)を分離してGLP−1処理による細胞内のcAMP増加有無を確認することにより測定される。
本発明で使用されたインビトロ活性測定方法は、RIN−m5F(ATCC.)であり、この細胞はラットのインスリノーマ細胞として知られており、GLP−1受容体を持っているため、GLP−1系統のインビトロ活性を測定する方法として多く用いられている。RIN−m5FにGLP−1、エキセンディン−4および試験物質を濃度別に処理して、試験物質による細胞内の信号伝達物質であるcAMPの発生度合いによるEC50値を測定し、比較する試験で行った。その結果は表1にまとめた。
DAエキセンディン−4:デス−アミノ−ヒスチジル(des-amino-histidyl)エキセンディン−4
HYエキセンディン−4:ベータ−ヒドロキシ−イミダゾ−プロピオニル(beta-Hydroxy-imidazo-propionyl)エキセンディン−4
CAエキセンディン−4:イミダゾ−アセチルエキセンディン−4
Ser12 DAエキセンディン−4:12番目のリシン残基がSerで置換されたDAエキセンディン−4
DA GLP−1:デス−アミノ−ヒスチジル(des-amino-histidyl)−GLP−1
エキセンディン−4(N)−PEG−Fc:エキセンディン−4のN末端とFc領域とがPEGで連結された結合体
エキセンディン−4(Lys27)−PEG−Fc:エキセンディン−4の27番目のリシン残基とFc領域とがPEGで連結された結合体
DMエキセンディン−4(Lys27)−PEG−Fc:ジメチル−ヒスチジルエキセンディン−4の27番目のリシン残基とFc領域とがPEGで連結された結合体
DAエキセンディン−4(Lys27)−PEG−Fc:デス−アミノ−ヒスチジルエキセンディン−4の27番目のリシン残基とFc領域とがPEGで連結された結合体
HYエキセンディン−4(Lys27)−PEG−Fc:ベータ−ヒドロキシ−イミダゾ−プロピオニルエキセンディン−4の27番目のリシン残基とFc領域とがPEGで連結された結合体
CAエキセンディン−4(Lys27)−PEG−Fc:イミダゾ−アセチルエキセンディン−4の27番目のリシン残基とFc領域とがPEGで連結された結合体
Ser12 DAエキセンディン−4(Lys27)−PEG−Fc:12番目のリシン残基がSerで置換されたデス−アミノ−ヒスチジルエキセンディン−4の27番目のリシン残基とFc領域とがPEGで連結された結合体
DAエキセンディン−4(Lys27)−PEG−アルブミン:デス−アミノ−ヒスチジルエキセンディン−4の27番目のリシン残基とアルブミンとがPEGで連結された結合体
DA GLP−1(Lys20,28)−PEG−Fc:デス−アミノ−ヒスチジルGLP−1のリシン残基とFc領域とがPEGで連結された結合体
エキセンディン−4持続型製剤のインビボ効力を測定するために、糖尿モデルマウスとしてのdb/dbマウスを用いて血糖の減少を確認した。約6〜7週齢の糖尿モデルマウスを試料制限していない状態で2週間持続型製剤を100mcg/kgで1回投与し、天然型エキセンディン−4は毎日100mcg/kg用量を投与した。試験物質を投与した後、毎日採血して血糖の変化を測定し、特に天然型エキセンディン−4は毎日投与1時間後に血糖の濃度を測定した(図14)。エキセンディン−4誘導体の結合体は1回投与により10日以上血中グルコース濃度の減少効果が維持されたが、これに対し、天然型エキセンディン−4結合体は8日以後から血中グルコース濃度の減少効果が無くなることが確認された。
Claims (33)
- インスリン分泌ペプチドと免疫グロブリンFc領域とが、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール−プロピレングリコールの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸およびこれらの組み合わせよりなる群から選ばれる非ペプチド性重合体によって互いに連結され、前記インスリン分泌ペプチドのN末端以外のアミノ酸残基に前記非ペプチド性重合体が結合されたことを特徴とする、インスリン分泌ペプチド結合体。
- 前記インスリン分泌ペプチドは、GLP−1、エキセンディン−3、エキセンディン−4、これらのアゴニスト(agonist)、これらの誘導体(derivative)、これらの断片(fragment)、これらの変異体(variant)、およびこれらの組み合わせからよりなる群から選ばれることを特徴とする、請求項1に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 前記誘導体は、天然型インスリン分泌ペプチドのN末端アミン基の置換、除去および変更の中から選ばれたいずれか一つの方法によって製造され、インスリン分泌機能を保有するペプチド、これらの断片およびこれらの変異体よりなる群から選ばれることを特徴とする、請求項2に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 前記誘導体は、天然型インスリン分泌ペプチドのアルファカーボンおよびN末端アミン基が除去されたペプチド、これらの断片およびこれらの変異体よりなる群から選ばれることを特徴とする、請求項2に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- N末端アミン基の置換、除去または変更によって製造されたエキセンディン−4誘導体と免疫グロブリンFc領域とが、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール−プロピレングリコールの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸およびこれらの組み合わせよりなる群から選ばれる非ペプチド性重合体によって互いに連結され、天然型エキセンディン−4結合体より血糖低下効果および生体内持続性が向上したことを特徴とする、インスリン分泌ペプチド結合体。
- 前記エキセンディン−4誘導体は、エキセンディン−4のN末端アミン基が除去されたエキセンディン−4誘導体、エキセンディン−4のN末端アミン基がヒドロキシル基で置換されたエキセンディン−4誘導体、エキセンディン−4のN末端アミン基がジメチル基に変更されたエキセンディン−4誘導体、インスリン分泌ペプチドのうちエキセンディン−4の一番目のアミノ酸(ヒスチジン)のアルファ炭素を除去したエキセンディン−4誘導体、エキセンディン−4の12番目のアミノ酸(リシン)がセリンで置換されたエキセンディン−4誘導体、およびエキセンディン−4の12番目のアミノ酸(リシン)がアルギニンで置換されたエキセンディン−4誘導体よりなる群から選ばれることを特徴とする、請求項5に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- エキセンディン−4のN末端アミン基が除去されたデス−アミノ−ヒスチジル(des-amino-histidyl)エキセンディン−4と免疫グロブリンFc領域とが、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール−プロピレングリコールの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸およびこれらの組み合わせよりなる群から選択される非ペプチド性重合体によって互いに連結され、天然型エキセンディン−4結合体より血糖低下効果および生体内持続性が向上したことを特徴とする、インスリン分泌ペプチド結合体。
- エキセンディン−4のN末端アミン基が除去されたデス−アミノ−ヒスチジルエキセンディン−4とアルブミンとが、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール−プロピレングリコールの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸およびこれらの組み合わせよりなる群から選択される非ペプチド性重合体によって互いに連結され、天然型エキセンディン−4結合体より血糖低下効果および生体内持続性が向上したことを特徴とする、インスリン分泌ペプチド結合体。
- エキセンディン−4のN末端アミン基がヒドロキシル基で置換されたエキセンディン−4と免疫グロブリンFc領域とが、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール−プロピレングリコールの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸およびこれらの組み合わせよりなる群から選択される非ペプチド性重合体によって互いに連結され、天然型エキセンディン−4結合体より血糖低下効果および生体内持続性が向上したことを特徴とする、インスリン分泌ペプチド結合体。
- エキセンディン−4のN末端アミン基がヒドロキシル基で置換されたエキセンディン−4とアルブミンとが、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール−プロピレングリコールの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸およびこれらの組み合わせよりなる群から選択される非ペプチド性重合体によって互いに連結され、天然型エキセンディン−4結合体より血糖低下効果および生体内持続性が向上したことを特徴とする、インスリン分泌ペプチド結合体。
- エキセンディン−4のN末端ヒスチジン残基のアルファ炭素およびアルファ炭素に結合されたN末端アミン基が除去されたエキセンディン−4誘導体と免疫グロブリンFc領域とが、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール−プロピレングリコールの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸およびこれらの組み合わせよりなる群から選択される非ペプチド性重合体によって互いに連結され、天然型エキセンディン−4結合体より血糖低下効果および生体内持続性が向上したことを特徴とする、インスリン分泌ペプチド結合体。
- エキセンディン−4のN末端ヒスチジン残基のアルファ炭素およびアルファ炭素に結合したN末端アミン基が除去されたエキセンディン−4誘導体とアルブミンとが、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール−プロピレングリコールの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸およびこれらの組み合わせよりなる群から選択される非ペプチド性重合体によって互いに連結され、天然型エキセンディン−4結合体より血糖低下効果および生体内持続性が向上したことを特徴とする、インスリン分泌ペプチド結合体。
- 下記化学式1のアミノ酸配列を有する、インスリン分泌ペプチド誘導体。
R1−X−Y−Z−R2 ……<化学式1>
(式中、R1はヒスチジン、デス−アミノ−ヒスチジル基、N−ジメチル−ヒスチジル基、ベータ−ヒドロキシイミダゾプロピル基および4−イミダゾアセチル基よりなる群から選択され、
R2は−NH2、−OHおyび−Lysよりなる群から選択され、
XはGly−Glu−Gly−Thr−Phe−Thr−Ser−Asp−Leu−Ser−R3−Gln−Met−Glu−Glu−Glu−Ala−Val−Arg−Leu−Phe−Ile−Glu−Trp−Leu−R4−Asn−Gly−Gly−Pro−Ser−Ser−Gly−Ala−Pro−Pro−Pro−Ser、Gly−Glu−Gly−Thr−Phe−Thr−Ser−Asp−Leu−Ser−R3−Gln−Met−Glu−Glu−Glu−Ala−Val−Arg−Leu−Phe−Ile−Glu−Trp−Leu−R4−Asn−Gly−Gly、およびSer−Asp−Gly−Thr−Phe−Thr−Ser−Asp−Leu−Ser−R3−Gln−Met−Glu−Glu−Glu−Ala−Val−Arg−Leu−Phe−Ile−Glu−Trp−Leu−R4−Asn−Gly−Gly−Pro−Ser−Ser−Gly−Ala−Pro−Pro−Pro−Serよりなる群から選択され、
R3はLys、SerおよびArgよりなる群から選択され、
R4はLys、SerおよびArgよりなる群から選択され、
Yはポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール−プロピレングリコールの共重合体、ポリオキシエチル化ポリオール、ポリビニルアルコール、ポリサッカリド、デキストラン、ポリビニルエチルエーテル、生分解性高分子、脂質重合体、キチン類、ヒアルロン酸およびこれらの組み合わせよりなる群から選択され、
Zは免疫グロブリンFc領域である。) - 非ペプチド性重合体の両末端がそれぞれ免疫グロブリンFc領域およびインスリン分泌ペプチドのアミン基またはチオール基に結合されたことを特徴とする、請求項1に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 免疫グロブリンFc領域が脱糖化(deglycosylated)されることを特徴とする、請求項1に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 免疫グロブリンFc領域が、CH1、CH2、C--H3およびCH4ドメインよりなる群から選ばれる1つ〜4つのドメインからなることを特徴とする、請求項1に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 免疫グロブリンFc領域がヒンジ領域をさらに含むことを特徴とする、請求項16に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 免疫グロブリンFc領域が、IgG、IgA、IgD、IgEおよびIgMよりなる群から選ばれる免疫グロブリン由来のFc領域であることを特徴とする、請求項1〜5のいずれか1項に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 免疫グロブリンFc領域のそれぞれのドメインが、IgG、IgA、IgD、IgEおよびIgMよりなる群から選ばれる免疫グロブリンに由来の相異なる起源を有するドメインハイブリッドであることを特徴とする、請求項18に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 免疫グロブリンFc領域が、同一起源の単鎖免疫グロブリンからなる二量体または多量体(免疫グロブリンFcの組み合わせ)である、請求項18に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 免疫グロブリンFc領域がIgG4 Fc領域であることを特徴とする、請求項18に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 免疫グロブリンFc領域がヒト脱糖化IgG4 Fc領域であることを特徴とする、請求項21に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 非ペプチド性重合体の反応基がアルデヒド基、プロピオンアルデヒド基、ブチルアルデヒド基、マレイミド基およびスクシンイミド誘導体よりなる群から選ばれることを特徴とする、請求項1に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- スクシンイミド誘導体がスクシンイミジルプロピオネート、スクシンイミジルカルボキシメチル、ヒドロキシスクシンイミジルおよびスクシンイミジルカーボネートよりなる群から選ばれることを特徴とする、請求項23に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 非ペプチド性重合体が両末端に反応性アルデヒド基を有することを特徴とする、請求項23に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- 非ペプチド性重合体がポリエチレングリコールであることを特徴とする、請求項25に記載のインスリン分泌ペプチド結合体。
- (1)両末端にアルデヒド、マレイミド、およびスクシンイミド誘導体の中から選ばれる反応基を有する非ペプチド性重合体をインスリン分泌ペプチドのアミン基またはチオール基に共有結合させる段階と、
(2)前記(1)の反応混合物から、N末端のアミノ酸以外のアミノ酸に非ペプチド性重合体が共有結合されたインスリン分泌ペプチドを含む結合体を分離する段階と、
(3)分離された結合体の非ペプチド性重合体の他方の末端に免疫グロブリンFc領域を共有結合によって連結することにより、非ペプチド性重合体の両末端がそれぞれ免疫グロブリンFc領域およびインスリン分泌ペプチドと結合されたタンパク質結合体を生成する段階とを含む、インスリン分泌ペプチド結合体の製造方法。 - (1)両末端にアルデヒド反応基を有する非ペプチド性重合体をインスリン分泌ペプチドのリシン残基にpH7.5以上で共有結合させる段階と、
(2)前記(1)の反応混合物から、リシン残基に非ペプチド性重合体が共有結合されたインスリン分泌ペプチドを含む結合体を分離する段階と、
(3)分離された結合体の非ペプチド性重合体の他方の末端に免疫グロブリンFc領域を共有結合によって連結することにより、非ペプチド性重合体の両末端がそれぞれ免疫グロブリンFc領域およびインスリン分泌ペプチドと結合sれたタンパク質結合体を生成する段階とを含む、インスリン分泌ペプチド結合体の製造方法。 - 前記インスリン分泌ペプチドは、エキセンディン−4のN末端アミン基が除去されたデス−アミノ−ヒスチジル(des-amino-histidyl)エキセンディン−4誘導体であることを特徴とする、請求項27または28に記載のインスリン分泌ペプチド結合体の製造方法。
- 前記インスリン分泌ペプチドは、エキセンディン−4のN末端アミン基がヒドロキシル基で置換されたエキセンディン−4誘導体であることを特徴とする、請求項27または28に記載のインスリン分泌ペプチド結合体の製造方法。
- 前記インスリン分泌ペプチドは、エキセンディン−4の一番目のアミン酸(ヒスチジン)のアルファカーボンが除去されたエキセンディン−4誘導体であることを特徴とする、請求項27または28に記載のインスリン分泌ペプチド結合体の製造方法。
- 前記非ペプチド性重合体がポリエチレングリコールであることを特徴とする、請求項27または28に記載のインスリン分泌ペプチド結合体の製造方法。
- 請求項1〜32のいずれか1項のタンパク質結合体を含む、糖尿、肥満、急性冠症候群または多嚢胞性卵巣症候群治療用薬学的組成物。
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