JP2007262077A - Ｂ細胞リンパ腫および細胞株の処置に効果的な二重特異性抗体 - Google Patents

Abstract

【課題】悪性Ｂ細胞に対して選択的な細胞傷害性を有する二重特異性抗体を提供すること、および、これらの抗体を用いる治療および診断方法を提供すること。
【解決手段】本発明は、悪性Ｂ細胞に対して選択的な細胞傷害性を有する二重特異性抗体を提供する。二重特異性抗体は、エフェクター細胞抗原および悪性Ｂ細胞の表面上の２８／３２ｋＤａヘテロ二量体タンパク質に結合する。本発明はまた、二重特異性抗体の単特異性成分、それらのヒト化形態、およびヒト化二重特異性抗体を包含する。本発明はさらに、これらの抗体を用いる治療および診断方法を提供する。
【選択図】なし

Description

（発明の背景）
モノクローナル抗体（ＭｏＡｂ）の投与は、ヒトの悪性腫瘍の新規な処置様式として有望であることが示されている。しかし、ＭｏＡｂによる悪性細胞の破壊は、抗体の標的細胞への首尾よい結合の後でさえも、常に生じるわけではない。悪性腫瘍の免疫療法に対する第２のアプローチは、細胞免疫系の操作を包含する。ＩＬ−２のようなリンホカインは、血液、脾臓、または悪性腫瘍そのものから単離されるＮＫ細胞およびＴ細胞の両方を活性化するために使用され得る。このような細胞の抗腫瘍効果は、インビトロおよびインビボの両方において詳細に報告されている。ＩＬ−２単独に基づく治療の毒性は重篤であり得、そしてこの治療の臨床上の利用性を十分に制限し得る。

抗体の特異性と活性化リンパ球の能力とを組み合わせることを意図する悪性腫瘍の免疫療法は、より効果的で、そしてより少ない毒性であり得る。このようなアプローチの１つは、活性化Ｔ細胞の毒性を標的抗原（Ａｇ）を発現する腫瘍細胞に再指向するための二重特異性抗体の使用である。

二重特性抗体の種々の形態が提供されている。これらは、通称「ハイブリッドハイブリドーマ」により分泌されるＢＳＩｇＧ（これは、２つの異なる重鎖および２つの異なる軽鎖を含むＩｇＧ分子である）、および異なる特異性の抗体または抗体フラグメントの化学的な結合により生成されるヘテロ抗体結合体を包含する。

数人の研究者は、抗ＣＤ３／抗腫瘍二重特性抗体構造を免疫療法薬剤として評価した。このような研究により、腎細胞癌腫、黒色腫、神経膠腫、リンパ腫、白血病、および多剤耐性関連糖タンパク質を発現している細胞のインビトロでの細胞溶解が報告された。特定の抗ＣＤ３／抗腫瘍特異的ヘテロ抗体結合体により指向されるＩＬ−２活性化ヒト末梢リンパ球が、ヌードマウスにおいてヒトガン異種移植片の増殖を妨げることもまた報告された。ヒト異種移植片を有する免疫不全マウスのインビトロおよびインビボでの研究により、特定の二重特異性抗体が、特定の標的抗原を有する腫瘍細胞、および、いくらか拡大して、治療抗体により認識されないバイスタンダー腫瘍細胞の両方の増殖を阻止し得ることが報告された。

リンパ球の細胞膜は、独特に構築され、そしてサプレッサー、インデューサー、または細胞の細胞溶解作用、細胞の活性化状態もしくは細胞の分化段階のような異なる細胞表現型特徴を決定し、そして細胞がモノクローナルまたはポリクローナルの集団のいずれに属するかを決定する。従って、これまで悪性リンパ球上に分布した細胞膜抗原の大多数は、分化または活性のいくつかの段階において、悪性ではないリンパ球上に示される。

上記から、悪性細胞上で優勢的にまたは独占的に見出される抗原に対して標的化された治療薬剤の必要性が存在することが明らかである。この治療薬剤は、このような細胞に対して強い細胞溶解活性を誘導し得る。本発明は、この必要性および他の必要性を満たす。

（発明の要旨）
本発明は、悪性Ｂ細胞リンパ球およびＴ細胞に結合する二重特異性モノクローナル抗体が、悪性Ｂ細胞のみに効率良く結合し、そして正常Ｂ細胞には結合しないように形成され
得るという理解を前提とする。

さらに、本発明は、二重特異性抗体が、末梢拡散大細胞型リンパ腫から得られ、悪性Ｂ細胞のみに特異的なモノクローナル抗体であり、そしてこのモノクローナル抗体がキラーＴ細胞またはＮＫ細胞にも結合する二重特異性抗体を形成するように改変され得るモノクローナル抗体を産生する細胞株から形成され得るという理解を前提とする。

本発明は、さらに、Ｔ細胞またはＮＫ細胞に特異的なＩｇＧ抗体を産生する細胞株の融合により形成される細胞株、およびＢ細胞悪性腫瘍に特異的なＩｇＧ抗体を産生する細胞株が、次いで、悪性Ｂ細胞およびＴ細胞またはＮＫ細胞の両方に効果的に結合し、それにより悪性Ｂ細胞の溶解または破壊をもたらす独特な二重特異性抗体を産生するという理解を前提とする。

好適な実施態様において、細胞株は、以下でさらに説明するように、Ｔ細胞のＣＤ３抗原に特異的な抗体を産生する細胞株と、悪性Ｂ細胞の細胞膜上のヘテロ二量体に特異的な細胞株との組み合わせによる融合に由来する。

さらなる局面によれば、本発明は、１Ｄ１０抗体を提供する。これは、悪性Ｂ細胞の表面上の２８／３２ｋＤａのヘテロ二量体タンパク質に特異的である。

本発明は、さらに、ヒト化形態の１Ｄ１０抗体を提供する。ヒト化抗体は、ヒト化重鎖およびヒト化軽鎖を含有する。ヒト化軽鎖は、対応する１Ｄ１０免疫グロブリン軽鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびＬ４８、Ｌ４９、Ｌ６９、およびＬ７０からなる第１の群より選択される位置の少なくとも１つの位置（ここで、アミノ酸位置は、１Ｄ１０免疫グロブリン軽鎖の可変領域フレームワークの等しい位置に存在する同じアミノ酸により占有される）を除くヒトκ軽鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有する。ヒト化重鎖は、対応する１Ｄ１０免疫グロブリン重鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびＨ２７、Ｈ２９、Ｈ３０、Ｈ３７、Ｈ６７、Ｈ７１、Ｈ７８、およびＨ８３からなる第２の群より選択される位置の少なくとも１つの位置（ここで、アミノ酸位置は、マウス１Ｄ１０免疫グロブリン重鎖の可変領域フレームワークの等しい位置に存在する同じアミノ酸により占有される）を除くヒト重鎖の可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有する。ヒト化抗体は、約１０^７Ｍ^−１の低限および１Ｄ１０免疫グロブリンの結合親和性の約５倍の上限を有する結合親和性で、２８／３２ｋＤａヘテロ二量体タンパク質細胞に特異的に結合する。好ましくは、ヒト化軽鎖可変領域フレームワークは、Ｒ３．５Ｈ５Ｇ抗体に由来する。この場合、位置Ｌ４３は、ヒトκサブグループＩコンセンサス配列の等しい位置に存在するアミノ酸で置換され得る。好ましくは、ヒト化重鎖は、ＩＣ４抗体の重鎖領域可変フレームワーク由来である。この場合、位置Ｈ７３は、ヒト免疫グロブリンサブグループＩＩまたはＩＶコンセンサス配列の等しい位置に存在する同一のアミノ酸により置換され得る。

さらなる局面によれば、本発明は、ＣＤ３抗原に特異的なヒト化抗体を提供する。抗体は、ヒト化重鎖および軽鎖を含有する。ヒト化軽鎖は、対応するＭ２９１免疫グロブリン軽鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびヒトκ軽鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有する。ヒト化重鎖は、対応するＭ２９１免疫グロブリン重鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびＨ３０、Ｈ６７、Ｈ６８、Ｈ７０、Ｈ７２、およびＨ７４からなる第２の群より選択される位置の少なくとも１つの位置（ここで、アミノ酸位置は、マ
ウスＭ２９１免疫グロブリン重鎖可変領域フレームワークの等しい位置に存在する同一のアミノ酸により占有される）を除くヒト重鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有する。免疫グロブリンは、約１０^７Ｍ^−１の低限およびＭ２９１免疫グロブリンの結合親和性の約５倍の上限を有する結合親和性で、Ｔ細胞の表面上でＣＤ３抗原に特異的に結合する。好ましくは、ヒト化軽鎖可変領域フレームワークは、サブグループＩ中のＨＦ２−１／１７抗体の軽鎖可変領域フレームワーク由来である。好ましくは、ヒト化重鎖領域フレームワークは、２１／２８抗体の重鎖領域可変フレームワーク由来である。この場合、位置Ｈ４４は、ヒト免疫グロブリンサブグループＩコンセンサス配列の等しい位置に存在する同じアミノ酸で置換され得る。

さらなる局面によれば、本発明は、ＣＤ３抗原に特異的に結合する第１の結合フラグメント、および悪性Ｂ細胞の表面上の２８／３２ｋＤａヘテロ二量体抗原に特異的に結合する第２の結合フラグメントを含有するヒト化二重特異性抗体を提供する。第１の結合フラグメントは、Ｍ２９１抗体の重鎖可変領域のヒト化形態およびＭ２９１抗体の軽鎖可変領域のヒト化形態を含有する。第１の結合フラグメントに連結している第２の結合フラグメントは：１Ｄ１０抗体由来の重鎖可変領域のヒト化形態および１Ｄ１０抗体由来の軽鎖可変領域のヒト化形態を含有する。

好ましくは、第１および第２の結合フラグメントは、各重鎖可変領域に融合された定常領域のセグメントをさらに含有し、そして結合フラグメントは、定常領域の会合により連結される。例えば、結合フラグメントは、ＦａｂまたはＦａｂ’であり得る。両結合フラグメントがＦａｂ’である場合、二重特異性抗体はＦ（ａｂ’）_２である。必要であれば、第１および第２の結合フラグメントは、各定常領域に融合した第１および第２のロイシンジッパーをさらに含有する。

本発明は、上記抗体を含有する薬学的組成物をさらに提供する。悪性Ｂ細胞を有する患者に上記の二重特異性抗体の治療的有効量を供する処置方法もまた提供される。

従って、本願発明は、以下を提供する。
（項目１） 二重特異性抗体であって、以下の抗原：
（ａ）Ｔ細胞およびナチュラルキラー細胞からなる群より選択されるエフェクター細胞の表面上の第１の抗原、および
（ｂ）悪性Ｂ細胞の表面上の２８／３２ｋＤａヘテロ二量体タンパク質上の第２の抗原に結合し、該第２の抗原は１Ｄ１０と称される抗体に特異的に結合し、ここで該二重特異性抗体と該第１および該第２の抗原との該結合が該悪性Ｂ細胞の傷害をもたらす、二重特異性抗体。
（項目２） 前記エフェクター細胞がＴ細胞である、項目１に記載の二重特異性抗体。
（項目３） 前記二重特異性抗体が前記Ｔ細胞上のＣＤ３抗原に結合する、項目２に記載の二重特異性抗体。
（項目４） 前記抗体が細胞株ＡＴＣＣ ＨＢ １０９９３により産生される、項目３に記載の二重特異性抗体。
（項目５） 項目１に記載の二重特異性抗体を産生する細胞株。
（項目６） 第１の抗原に結合する抗体を産生する第１のハイブリドーマ、および
第２の抗原に結合する抗体を産生する第２のハイブリドーマ
の２つのハイブリドーマから形成されるハイブリッドハイブリドーマである、項目５に記載の細胞株。
（項目７） 前記エフェクター細胞がＴ細胞であり、そして前記第１のハイブリドーマが前記Ｔ細胞上のＣＤ３抗原に結合する抗体を産生する、項目６に記載の細胞株。
（項目８） ＡＴＣＣ ＨＢ １０９９３と称される細胞株。
（項目９） １Ｄ１０と称される抗体。
（項目１０） 項目９に記載の抗体のヒト化形態。
（項目１１） 項目１０に記載のヒト化抗体であって、該抗体が以下のヒト化重鎖およびヒト化軽鎖：
（１）対応する１Ｄ１０免疫グロブリン軽鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびＬ４８、Ｌ４９、Ｌ６９、およびＬ７０からなる第１の群より選択される位置の少なくとも１つの位置を除くヒトκ軽鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有するヒト化軽鎖であって、ここで、アミノ酸位置は、１Ｄ１０免疫グロブリン軽鎖の可変領域フレームワークの等しい位置に存在する同じアミノ酸により占有される、軽鎖；および
（２）対応する１Ｄ１０免疫グロブリン重鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびＨ２７、Ｈ２９、Ｈ３０、Ｈ３７、Ｈ６７、Ｈ７１、Ｈ７８、およびＨ８３からなる第２の群より選択される位置の少なくとも１つの位置を除くヒト重鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有するヒト化重鎖であって、ここで、アミノ酸位置は、マウス１Ｄ１０免疫グロブリン重鎖の可変領域フレームワークの等しい位置に存在する同一のアミノ酸により占有される、重鎖；を含有し、
ここで、該免疫グロブリンは約１０^７Ｍ^−１の低限および１Ｄ１０免疫グロブリンの結合親和性の約５倍の上限を有する結合親和性で、悪性Ｂ細胞の表面上の２８／３２ｋＤａヘテロ二量体タンパク質に特異的に結合する、ヒト化抗体。
（項目１２） 項目１１に記載のヒト化抗体であって、前記ヒト化軽鎖可変領域フレームワークが、前記第１の群由来の少なくとも１つの位置および位置Ｌ４３を除くＲ３．５Ｈ５Ｇ抗体の軽鎖可変領域フレームワーク由来であり、該ヒト化軽鎖可変領域フレームワークはヒトκサブグループＩコンセンサス配列の等しい位置に存在するアミノ酸を占有し；
前記ヒト化重鎖が、前記第２のグループより選択される少なくとも１つの位置および位置Ｈ７３を除くＩＣ４抗体の重鎖領域可変フレームワーク由来であり、ここでアミノ酸位置はヒト免疫グロブリンサブグループＩＩまたはＩＶコンセンサス配列の等しい位置に存在する同じアミノ酸により占有される、ヒト化抗体。
（項目１３） 前記ヒト化軽鎖が図４Ａ（上段）のアミノ酸配列を含有し、および
前記ヒト化重鎖が図４Ｂ（上段）のアミノ酸配列を含有する、
項目１２に記載のヒト化抗体。
（項目１４） 前記ヒト化軽鎖がヒトκ定常領域をさらに含有し、前記ヒト化重鎖がヒトγ１定常領域をさらに含有し、そして細胞表面上の２８／３２ｋＤａヘテロ二量体タンパク質に結合する場合、前記ヒト化抗体がＡＤＣＣおよび悪性Ｂ細胞の補体媒介溶解をもたらす、項目１３に記載のヒト化抗体。
（項目１５） ヒト化抗体であって、該抗体が以下のヒト化重鎖およびヒト化軽鎖：
（１）対応するマウスＭ２９１免疫グロブリン軽鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびヒトκ軽鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワーク配列を含有するヒト化軽鎖、および
（２）対応するマウスＭ２９１免疫グロブリン重鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびＨ３０、Ｈ６７、Ｈ６８、Ｈ７０、Ｈ７２、およびＨ７４からなる第２の群より選択される位置の少なくとも１つの位置を除くヒト重鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有するヒト化重鎖であって、ここで、アミノ酸位置は、マウスＭ２９１免疫グロブリン重鎖可変領域フレームワークの等しい位置に存在する同じアミノ酸により占有される、重鎖；を含有し、
ここで、該免疫グロブリンは、約１０^７Ｍ^−１の低限および該Ｍ２９１免疫グロブリンの結合親和性の約５倍の上限を有する結合親和性でＴ細胞表面上のＣＤ３抗原に特異的に結合する、ヒト化抗体。
（項目１６） 項目１５に記載のヒト化抗体であって、前記ヒト化軽鎖可変領域フレーム
ワークが、サブグループＩ中のＨＦ２−１／１７抗体の軽鎖可変領域フレームワーク由来であり；
前記ヒト化重鎖領域フレームワークが、前記第２の群より選択される少なくとも１つの位置および位置４４を除く２１／２８抗体の重鎖領域可変フレームワーク由来であり、ここでアミノ酸位置は、ヒト免疫グロブリンサブグループＩコンセンサス配列の等しい位置に存在する同じアミノ酸により占有される、ヒト化抗体。
（項目１７） 前記ヒト化軽鎖が図５Ａ（上段）のアミノ酸配列を含有し、そして
前記ヒト化重鎖が図５Ｂ（上段）のアミノ酸配列を含有する、
項目１６に記載のヒト化抗体。
（項目１８） ヒト化されている項目１に記載の二重特異性抗体。
（項目１９） 第１の抗原がＣＤ３抗原である、項目１８に記載の二重特異性抗体。
（項目２０） 項目１９に記載の二重特異性抗体であって、
Ｍ２９１抗体の重鎖可変領域のヒト化形態；
Ｍ２９１抗体の軽鎖可変領域のヒト化形態；
を含有する第１の結合フラグメント、および
１Ｄ１０抗体由来の重鎖可変領域のヒト化形態；
１Ｄ１０抗体由来の軽鎖可変領域のヒト化形態；
を含有する該第１の結合フラグメントが結合する第２の結合フラグメントを含み、ここで、該第１の結合フラグメントが前記ＣＤ３抗原に特異的に結合し、そして該第２の結合フラグメントが悪性Ｂ細胞表面上の２８／３２ｋＤａヘテロ二量体抗原に特異的に結合する、二重特異性抗体。
（項目２１） 項目２０に記載の二重特異性抗体であって、前記Ｍ２９１抗体の重鎖可変領域のヒト化形態が、対応するＭ２９１免疫グロブリン重鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびＨ３０、Ｈ６７、Ｈ６８、Ｈ７０、Ｈ７２、およびＨ７４からなる第２の群より選択される位置の少なくとも１つの位置を除くヒト重鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有し、ここで、アミノ酸位置は、マウスＭ２９１免疫グロブリン重鎖可変領域フレームワークの等しい位置に存在する同じアミノ酸により占有され；
前記Ｍ２９１抗体の軽鎖可変領域のヒト化形態が、対応するＭ２９１免疫グロブリン軽鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびヒトκ軽鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有し；
前記１Ｄ１０抗体由来の重鎖可変領域のヒト化形態が、対応する１Ｄ１０免疫グロブリン重鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびＨ２７、Ｈ２９、Ｈ３０、Ｈ３７、Ｈ６７、Ｈ７１、Ｈ７８、およびＨ８３からなる第２の群より選択される位置の少なくとも１つの位置を除くヒト重鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有し、ここで、アミノ酸位置は、マウス１Ｄ１０免疫グロブリン重鎖可変領域フレームワークの等しい位置に存在する同じアミノ酸により占有され；そして、
前記１Ｄ１０抗体由来の軽鎖可変領域のヒト化形態が、対応する１Ｄ１０免疫グロブリン軽鎖の相補性決定領域由来のアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）、およびＬ４８、Ｌ４９、Ｌ６９、およびＬ７０からなる第１の群より選択される位置の少なくとも１つの位置を除くヒトκ軽鎖可変領域フレームワーク配列由来の可変領域フレームワークを含有し、ここで、アミノ酸位置は、１Ｄ１０免疫グロブリン軽鎖可変領域フレームワークの等しい位置に存在する同じアミノ酸により占有される、二重特異性抗体。
（項目２２） 項目２１に記載の二重特異性抗体であって、第１の結合フラグメントが、図５Ｂ（上段）に示される重鎖可変領域および図５Ａ（上段）に示される軽鎖可変領域を含有し、そして第２の結合フラグメントが図４Ｂ（上段）に示される重鎖可変領域および図４Ａ（上段）に示される軽鎖可変領域を含有する、二重特異性抗体。
（項目２３） 項目２２に記載の二重特異性抗体であって、第１および第２の結合フラグメントそれぞれが、それぞれの重鎖可変領域に融合された定常領域のセグメントをさらに含有し、そして該結合フラグメントが該定常領域の会合により結合される、二重特異性抗体。
（項目２４） 前記結合フラグメントがＦａｂまたはＦａｂ’である、項目２３に記載の二重特異性抗体。
（項目２５） 第１および第２の結合フラグメントがＦａｂ’であり、そして前記二重特異性抗体がＦ（ａｂ’）_２である、項目２４に記載の二重特異性抗体。
（項目２６） 第１および第２の結合フラグメントが、それぞれの定常領域に融合された第１および第２のロイシンジッパーをさらに含有する、項目２５に記載の二重特異性抗体。
（項目２７） 前記第１の結合フラグメントが図５Ｄに示されるアミノ酸配列を有する重鎖を含有し、そして前記第２の結合フラグメントが図４Ｄに示されるアミノ酸配列を有する重鎖を含有する、項目２６に記載の二重特異性抗体。
（項目２８） 悪性Ｂ細胞を被る患者を処置する方法であって、該方法が、治療的有効量の項目１に記載の二重特異性抗体で患者を処置する工程を包含する、方法。
（項目２９） 項目２８に記載の方法であって、前記二重特異性抗体が：
前記Ｍ２９１抗体の重鎖可変領域のヒト化形態；
前記Ｍ２９１抗体の軽鎖可変領域のヒト化形態；
を含有する第１の結合フラグメント、および、
前記１Ｄ１０抗体由来の重鎖可変領域のヒト化形態；
前記１Ｄ１０抗体由来の軽鎖可変領域のヒト化形態；
を含有する該第１の結合フラグメントに結合する第２の結合フラグメントを含み、ここで、該第１の結合フラグメントがＴ細胞表面上のＣＤ３抗原に特異的に結合し、そして該第２の結合フラグメントが前記悪性Ｂ細胞表面上の２８／３２ｋＤａヘテロ二量体抗原に特異的に結合する、方法。
（項目３０） 患者にＴ細胞を活性化するための薬剤を投与する工程をさらに包含する、項目２９に記載の方法。
（項目３１） 前記薬剤がＩＬ−２である、項目３０に記載の方法。
（項目３２） 項目１に記載の二重特異性抗体を含む薬学的組成物。

（定義）
用語「実質的な同一性」または「実質的な相同性」は、２つのペプチド配列を欠失ギャップ量（ｄｅｆａｕｌｔ ｇａｐ ｗｅｉｇｈｔ）を用いて、例えば、ＧＡＰプログラムまたはＢＥＳＴＦＩＴプログラムにより最適にアラインした場合に、少なくとも６５％の配列同一性、好ましくは８０％または９０％の配列同一性、より好ましくは少なくとも９５％以上の配列同一性（例えば、９９％の配列同一性）を共有することを意味する。好ましくは、同一でない残基の位置は、保存的アミノ酸置換により異なる。

アミノ酸置換を保存的または非保存的に分類する目的のために、アミノ酸は以下のように分類される：第Ｉ群（疎水性側鎖）：ノルロイシン（ｎｏｒｌｅｕｃｉｎｅ）、ｍｅｔ、ａｌａ、ｖａｌ、ｌｅｕ、ｉｌｅ；第ＩＩ群（中性疎水性側鎖）：ｃｙｓ、ｓｅｒ、ｔｈｒ；第ＩＩＩ群（酸性側鎖）：ａｓｐ、ｇｌｕ；第ＩＶ群（塩基性側鎖）：ａｓｎ、ｇｌｎ、ｈｉｓ、ｌｙｓ、ａｒｇ；第Ｖ群（鎖の配向に影響される残基）：ｇｌｙ、ｐｒｏ；および第ＶＩ群（芳香族側鎖）：ｔｒｐ、ｔｙｒ、ｐｈｅ。保存的置換は、同じクラスにおけるアミノ酸間での置換を包含する。非保存的置換は、これらのクラスの１つのメンバーを別のクラスのメンバーと交換することからなる。

免疫グロブリンの成熟重鎖および軽鎖の種々の可変領域由来のアミノ酸は、それぞれＨｘおよびＬｘと称される（ここで、ｘは、Ｋａｂａｔのスキーム（Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ
ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ （Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ，Ｂｅｔｈｅｓｄａ，ＭＤ，１９８７および１９９１）に従うアミノ酸の位置を称する数字である）。Ｋａｂａｔは、各サブクラスについて抗体に対する多くのアミノ酸配列を列挙し、そしてそのサブクラスにおいて各残基の位置に最も一般に存在するアミノ酸を列挙する。Ｋａｂａｔは、列挙した配列中の各アミノ酸に残基番号を付与する方法を用い、そして残基番号を付与するこの方法は、当該分野において一般的な方法（ｓｔａｎｄａｒｄ）になっている。Ｋａｂａｔのスキームは、Ｋａｂａｔにおけるコンセンサス配列の１つを有する問題の抗体を配列することによる彼の概論に含まれない他の抗体にも拡張可能（ｅｘｔｅｎｄｉｂｌｅ）である。Ｋａｂａｔの番号付けシステムの使用により、異なる抗体における等価な位置のアミノ酸が容易に決定される。例えば、ヒト抗体のＬ５０位のアミノ酸は、マウス抗体のアミノ酸Ｌ５０位に等価な位置を占める。

軽鎖および重鎖は両方とも、Ｎ末端からＣ末端に、ドメインＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、およびＦＲ４を含む。各ドメインに対するアミノ酸の割り当ては、Ｋａｂａｔ （（１９８７）および（１９９１）、前出）、またはＣｈｏｔｈｉａ ＆ Ｌｅｓｋ、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ． １９６：９０１−９１７ （１９８７）；Ｃｈｏｔｈｉａら、Ｎａｔｕｒｅ ３４２：８７８−８８３ （１９８９）の定義に従う。

基本的な抗体構造の単位は、四量体を含むことが知られている。各四量体は、ポリペプチド鎖の２つの同一の対からなり、各対は１本の「軽鎖」（約２５ｋＤａ）および１本の「重鎖」（約５０〜７０ｋＤａ）を有する。各鎖のアミノ末端部分は、抗原認識を最初に担う種々の領域の約１００から１１０またはそれ以上のアミノ酸を含む。各鎖のカルボキシ末端部位は、エフェクター機能を最初に担う定常領域を規定する。各軽鎖／重鎖対の可変領域は、抗体結合部位を形成する。従って、完全な抗体は、２つの結合部位を有する。

軽鎖をκまたはλのいずれかとして分類する。重鎖を、γ、μ、α、ζ、およびεとして分類し、そして抗体のイソ型を、それぞれ、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、およびＩｇＥとして定義する。軽鎖および重鎖内の、可変領域および定常領域は、約１２以上のアミノ酸の「Ｊ」領域によって結合され、重鎖はまた約１０を超えるアミノ酸の「Ｄ」領域を含む（概して、Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ （Ｐａｕｌ，Ｗ．編、第２版、Ｒａｖｅｎ Ｐｒｅｓｓ，Ｎ．Ｙ．、１９８９）、第７章を参照（これは、全ての目的のためにその全てが参考として援用される））。

用語「エピトープ」は、免疫グロブリンまたはＴ細胞レセプターに特異的に結合し得る任意のタンパク質決定基を含む。エピトープ決定基は、通常、アミノ酸または糖側鎖のような分子の化学的に活性な表面配置からなり、そして通常、特異的な三次元構造特徴ならびに特異的な電荷特徴を有する。

用語「患者」は、ヒト被験体および家畜被験体を含む。

（詳細な説明）
本発明は、エフェクター細胞（Ｔ細胞またはナチュラルキラー細胞）および悪性Ｂ細胞の表面上に存在する２８／３２ ｋＤａのヘテロ二量体抗原の両方に特異的な二重特異性（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ）抗体を提供する。本発明は、本願発明の抗体を産生するハイブリドーマおよび他の細胞株をさらに提供する。

２８／３２ｋＤａ抗原は、悪性Ｂリンパ球の表面上に優先的に見出され、そして休止期
のリンパ球または種々の誘導的刺激によってインビトロで活性化されたＢ細胞およびＴ細胞上で発現されない。Ｇｉｎｇｒｉｃｈら、Ｂｌｏｏｄ ７５、２３７５−２３８７ （１９９０）を参照のこと。リンパ球が悪性の形質転換を被る場合において、またはいくつかの場合において、それらがエプスタイン−バーウイルス（ＥＢＶ）によって混乱された（ｐｅｒｔｕｒｂｅ）場合、この抗原は発現され得る。正常な休止期のリンパ球および刺激されたリンパ球は、抗原を発現しない。この抗原はまた、造血幹細胞上に存在しない。悪性Ｂ細胞上で優先的にまたは排他的に発現される２８／３２ｋＤａ抗原についての科学的基礎は、本発明の実施には重要ではないが、抗原がＨＬＡ−Ｄｒ抗原の異常型翻訳後プロセッシング変異株を示し得ると考えられている。

悪性Ｂ細胞に特異的な抗体を産生するために、ＨＯ−８５で標識された末梢化拡散（ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌｉｚｉｎｇ ｄｉｆｆｕｓｅ）大細胞型リンパ腫を有する患者由来のリンパ腫細胞株を、１０％ウシ胎児血清を有する懸濁培養液ＲＰＭＩ １６４０中で、約２４時間の倍加時間（ｄｏｕｂｌｉｎｇ ｔｉｍｅ）で増殖させた。細胞株は、ＣＤ２０、μ、δ（弱い）、κ、ＨＬＡクラスＩ、およびＨＬＡクラスＩＩ抗原に陽性である。細胞株は、ＣＡＬＬＡ抗原、Ｔ細胞抗原、骨髄細胞抗原、または単核細胞抗原を検出するモノクローナル抗体と反応しない。この細胞は、ＳＦＲ７、ＤＲ７、およびＢ７／２１モノクローナル抗体と反応し、このことはそれらがＤＲ７およびＤＰ抗原をそれぞれ発現することを示している。

前述のように、雌ＢＡＬＢ／ｃマウス（６〜１０週齢）に、ヒト大細胞型リンパ腫株由来の５×１０^６細胞を用い、２週間間隔で４から６回腹膜内感染を与えた。動物を最後の感染の５日後に屠殺し、そして脾細胞を非分泌性マウスミエローマ細胞株Ｎ−１と融合させた。９６ウェル細胞培養トレイ中にプレートした後、ハイブリドーマを、ヒポキサンチン−アミノプテリン−チミジン（ＨＡＴ）培地中で選択した。１０日後、悪性Ｂ細胞（抗ＨＯ８５）抗体結合活性を測定するために、２５μｌアリコートを各ウェルから取り出した。

悪性Ｂ細胞（抗ＨＯ８５）抗体結合活性を、新鮮なＨＯ８５細胞を標的として用いる全細胞の間接的な放射性イムノアッセイにより測定した。同一のアッセイを、標的ＲＡＪＩ（ＡＴＣＣ ＣＣＬ８６）、ＭＯＬＴ−３（ＡＴＣＣ ＣＲＬ１５８２）、ＨＬ−６０（ＡＴＣＣ ＣＣＬ２４０）、および新鮮な末梢血単核細胞を用いて行った。ＨＯ−８５およびＲａｊｉに対して組織培養培地のみの活性の５倍以上の結合活性を示すが、ＭＯＬＴ−３、ＨＬ−６０、および末梢血単核細胞と反応しないウェルを採集した。

上記基準を満たす細胞は、１Ｄ１０と呼ばれる抗体を産生することが見出され、そしてその後限界希釈によってクローン化された。ハイブリドーマは、インビトロおよびもとの感染されたＢＡＬＢ／ｃマウスの腹水中で良好に成長する。

１Ｄ１０に結合する悪性Ｂ細胞の一部は、それぞれ３２ｋＤａおよび２８ｋＤａであるα鎖およびβ鎖の分子量を有する２つのタンパク質を含むヘテロ二量体のポリペプチドである。このタンパク質は、Ｒａｊｉのような悪性Ｂ細胞を界面活性剤で可溶化することによって得ることができる。分子量決定は、ヨウ素標識細胞およびＭｏＡｂ６抗原沈降の１次元ＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析を用いることによりなされる。１Ｄ１０抗体の形成については、Ｇｉｎｇｒｉｃｈら、Ｂｌｏｏｄ ７５、２３７５−２３８７（１９９０）により考察される。１Ｄ１０に対して同じまたは同様の結合特異性を有する他の抗体は、１Ｄ１０を用いた２８／３２ｋＤａヘテロ二量体抗原に対する競合結合によってスクリーニングされる。多数の型の競合結合アッセイが公知であり、例えば：直接的または間接的固相ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、直接的または間接的固相酵素イムノアッセイ（ＥＩＡ）、サンドイッチ競合アッセイ（Ｓｔａｈｌｉら、Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇ
ｙ ９、２４２−２５３ （１９８３）を参照のこと）；直接的固相ビオチン−アビジンＥＩＡ（Ｋｉｒｋｌａｎｄら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ． １３７、３６１４−３６１９ （１９８６）を参照のこと）；直接的固相標識アッセイ、直接的固相標識サンドイッチアッセイ（Ｈａｒｌｏｗ＆Ｌａｎｅ、「Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ， Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ
Ｍａｎｕａｌ」、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ （１９８８）を参照のこと）；Ｉ−１２５標識を用いる直接的固相標識ＲＩＡ（Ｍｏｒｅｌら、Ｍｏｌｅｃ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． ２５、７−１５ （１９８８）を参照のこと）；直接的固相ビオチン−アビジンＥＩＡ（Ｃｈｅｕｎｇら、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ １７６、５４６−５５２ （１９９０））；および直接的標識ＲＩＡ（Ｍｏｌｄｅｎｈａｕｅｒら、Ｓｃａｎｄ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ． ３２、７７−８２（１９９０））。典型的には、このようなアッセイは、２８／３２ｋＤａ抗原を産生する細胞、非標識試験免疫グロブリンおよび標識対照標準免疫グロブリン（１Ｄ１０）の使用を包含する。競合阻害は、試験免疫グロブリンの存在下で細胞に結合する標識の量を決定することにより測定される。試験免疫グロブリンは、通常過剰に存在する。（抗体に競合する）競合アッセイによって同定された抗体は、対照標準抗体として同一のエピトープに結合する抗体および対照標準抗体により結合されたエピトープが立体障害を生じるために十分に近位な隣接エピトープに結合する抗体を含む。

本発明の二重特異性抗体についての第２の成分は、Ｔ細胞の表面上またはＮＫ細胞の表面上の抗原に対して特異性を有する抗体である。適切であると考えられるヒトＴ細胞抗原としては、ＣＤ３、ＣＤ２、ＣＤ２８、ＣＤ４４、Ｃ６９、Ａ１３、およびＧ１をが挙げられる。ナチュラルキラー細胞上の適切な抗原としては、ＦＣγレセプター（３Ｇ８、Ｂ７３．１、ＬＥＵＬ１、ＶＥＰ１３、およびＡＴ１０）が挙げられる。おそらく不適切であるヒトＴ細胞抗原としては、ＭＨＣクラスＩ、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ１８、およびＣＤ７１が挙げられる。

上記のエフェクター細胞抗原に特異的なＩｇＧを産生する細胞株は、市販されているかまたは新たに産生され得る（実施例３を参照のこと）。ＯＫＴ細胞（ＡＴＣＣ ＣＲＬ ８００１）は、ＣＤ３抗原に対する抗体の適切な供給源である。ＣＤ３抗原に対する他の抗体としては、ＷＴ３１、ＷＴ３２、抗ｌｅｕ−４、ＵＣＨＴ−１、ＳＰＶ−３ＴＡ、およびＳＰＶ−Ｔ３Ｂが挙げられる。全てのＴ細胞中に存在するので、ＣＤ３部位が好ましい。

本発明の抗体は、２８／３２ｋＤａヘテロ二量体抗原に特異的な抗体を産生する第１の成分の細胞株とＴ細胞またはナチュラルキラー細胞のいずれかに特異的な抗体を産生する第２の細胞株との融合によって形成される細胞株によって産生され得る。例えば、１Ｄ１０を産生するハイブリドーマを、以下のようにＯＫＴ３と融合させた。

ＯＫＴ３ハイブリドーマ細胞株を、０．１３ｍＭの８−アザグアニンを含む培地、次いで１．０ｍＭウアバインを含む培地中で連続的にＯＫＴ３細胞を増殖させることによって選択した。ハイブリッド−ハイブリドーマを、１０^６個のＨＡＴ耐性ウアバイン感受性１Ｄ１０分泌ハイブリドーマと、１０^６ＨＡＴ感受性ウアバイン耐性ＯＫＴ３分泌ハイブリドーマとの融合によって（３８％ポリエチレングリコールを用いる）産生した。

融合した細胞を、ＨＡＴウアバイン培地にプレートして、ハイブリッド−ハイブリドーマについて選択した。この培地中のＨＡＴは、融合されていないＯＫＴ３細胞の増殖を妨げ、そしてウアバインは、融合されていない１Ｄ１０細胞の増殖を妨げた。従って、親のハイブリドーマの両方の遺伝物質を含むハイブリッド−ハイブリドーマのみが生き残った。１２個のハイブリッド−ハイブリドーマが、この技術を用いて単離された。

二重特異性抗体を分泌する細胞株は、３つの工程のスクリーニング手順によって同定され得る。例えば、１Ｄ１０およびＯＫＴ３の融合により形成されたハイブリドーマの分析において、第１のスクリーニングを、ハイブリッド−ハイブリドーマの上清をヤギ抗マウスＩｇＧ１抗体でコートしたＥＬＩＳＡプレートに添加して行った。洗浄後、アルカリホスファターゼ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ２ａを添加した。反応性により、ＩｇＧ１およびＩｇＧ２ａ重鎖の両方を有する単一の抗体分子を含むハイブリッド−ハイブリドーマ上清が示される。

間接的な免疫蛍光アッセイを、ＥＬＩＳＡに対して陽性の全てのサンプルについて第２のスクリーニングとして使用した。この第２のスクリーニングにおいて、ハイブリッド−ハイブリドーマ上清を、ＨＯ−８５細胞（１Ｄ１０反応性）およびＪｕｒｋａｔ細胞（ＯＫＴ３反応性）に別々に添加した。ヤギ抗マウスＩｇＧ−ＦＩＴＣを添加して、洗浄後、結合抗体の存在を検出した。１２個全てのハイブリッド−ハイブリドーマは、ＨＯ−８５細胞およびＪｕｒｋａｔ細胞の両方に結合し得る抗体を分泌した。これらのハイブリッド−ハイブリドーマの１つを、さらなる研究のために選択した。それを、限界希釈×２によってサブクローン化し、そして１ＤＴ３−Ｄと称した。この細胞株は、ブダペスト条約下、アメリカンタイプカルチャーコレクション（１２３０１ Ｐａｒｋｌａｗｎ Ｄｒｉｖｅ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ ２０８５２）に、１９９２年３月２４日に寄託され、そして番号ＡＴＣＣ ＨＢ １０９９３が与えられた。

１ＤＴ３−Ｄは、１００μｇのＬ−グアニンおよび１００Ｕ／ｍｌのペニシリン−ストレプトマイシンを補充したＨＢ １０１倍地中、インビトロで培養された。これらの細胞を、Ｍｉｎｉ Ｆｌｏ−ｐａｔｈ Ｂｉｏｒｅａｃｔｏｒ 中空線維装置に移した。消費（ｓｐｅｎｄ）培地から得られた抗体を、０．１８から０．５Ｍ ＮａＣｌの勾配を用いたＨＰＬＣ陽イオン交換によって分画した。上述のアッセイにより示されるように、二重反応性を含むピークを単離し、リン酸緩衝化生理食塩水に対して透析し、濃縮して、そしてさらなる研究に使用した。

１Ｄ１０とＯＫＴ３との融合によって形成された二重特異性抗体は、マウス由来のモノクローナルである。本発明のこの抗体のヒト化形態および他の二重特異性の抗体はまた、以下により詳細に考察されるように用いられ得る。

（ヒト化抗体）
本発明は、ヒト化免疫グロブリン（または抗体）をさらに提供する。いくつかのヒト化抗体は、Ｔ細胞抗原ＣＤ３に特異的である。他のヒト化抗体は、悪性Ｂ細胞上の２８／３２ｋＤａへテロ二量体に特異的である。これらのヒト化抗体は、それのみでの治療試薬および診断試薬として有用であるか、またはその成分の結合特異性の両方を所有するヒト化二重特異性抗体を形成するために組み合わされ得る。免疫グロブリンのヒト化形態は、ヒト免疫グロブリンに実質的に由来する可変フレームワーク領域（単数または複数）（アクセプター免疫グロブリンと呼ばれる）、およびマウス免疫グロブリンに実質的に由来する相補性決定領域（ドナー免疫グロブリンと呼ばれる）を有する。存在する場合、定常領域（単数または複数）はまた、ヒト免疫グロブリンに実質的に由来する。ヒト化抗体は、少なくとも１０^７、１０^８、１０^９、または１０^１０Ｍ^−１のそれらのそれぞれの抗原に特異的な結合親和性を示す。ヒト化抗体の結合親和性の上限または下限は、しばしば、それらが由来するマウス抗体のファクターの３あるいは５または１０のファクターの範囲内である。

（（１）ヒト化のためのマウス抗体）
２８／３２ｋＤａへテロ二量体に特異的なヒト化抗体の産生のための出発物質は、好ましくは１Ｄ１０マウス抗体であるが、２８／３２ｋＤａヘテロ二量体に結合について１Ｄ
１０と競合する他のマウス抗体もまた使用され得る。ＣＤ３に特異的なヒト化抗体の産生のための適切な出発物質は、その単離が実施例３に記載されているＭ２９１抗体である。

（（２）フレームワーク残基を供給するためのヒト抗体の選択）
ヒト可変ドメインフレームワーク中へのマウスＣＤＲの置換は、ヒト可変ドメインフレームワークが、ＣＤＲが起源とするマウス可変フレームワークに対して同一または類似する配置を適合する場合、それらの正確な空間的配向の保持が最も生じるようである。これは、フレームワーク配列が、ＣＤＲが由来するマウス可変フレームワークドメインと高程度の配列同一性を示すヒト抗体由来のヒト可変ドメインを得ることによって達成される。重鎖および軽鎖の可変フレームワーク領域は、同一のまたは異なるヒト抗体配列に由来され得る。ヒト抗体配列は、天然に存在するヒト抗体の配列であり得るか、またはいくつかのヒト抗体のコンセンサス配列であり得る。

適切なヒト抗体配列は、マウス可変領域のアミノ酸配列と公知のヒト抗体の配列とのコンピューター比較によって同定される。この比較は、重鎖および軽鎖について別々に実施されるが、その原理は、各々類似している。

（（３）コンピューターモデリング）
マウスＣＤＲ領域とヒト可変フレームワーク領域との非天然的な並置は、特定のアミノ酸残基の置換によって訂正されない限り、結合親和性の欠損に導く非天然的な配座抑制が生じ得る。置換のためのアミノ酸残基の選択は、コンピューターモデリングによって、部分的に、決定される。免疫グロブリン分子の３次元画像を作製するためのコンピューターハードウェアおよびソフトウェアは、広範に入手可能である。一般に、分子モデルは、免疫グロブリン鎖またはそのドメインについて解明された構造から開始することにより作製される。モデル化されるべき鎖は、解明された３次元構造の鎖またはドメインとアミノ酸配列の類似性について比較され、そして最も高い配列類似性を示す鎖およびドメインを、分子モデルの構造についての出発点として選択する。解明された出発構造は、モデル化された免疫グロブリン鎖またはドメインにおける実際のアミノ酸と出発構造におけるアミノ酸との間の差異を可能にするように改変される。次いで、改変構造を混成の免疫グロブリンの中へ組み立てる。最後に、このモデルを、エネルギー最小化によって、および全ての原子が互いに最適な距離の範囲内であり、そして結合長および角度が化学的に受容可能な限界の範囲内にあることを確かめることによってさらに正確にする。

（（４）アミノ酸残基の置換）
上述のように、本発明のヒト化抗体は、ヒト免疫グロブリンに実質的に由来する可変フレームワーク領域（単数または複数）およびマウス免疫グロブリンに実質的に由来する相補性決定領域を含む（例えば、１Ｄ１０またはＭ２９１）。マウス抗体の相補性決定領域および適切なヒトアクセプター免疫グロブリンが同定されると、次の工程は、もしあれば、これらの構成物由来のどの残基が、得られるヒト化抗体の特性を最適化するために置換されるべきであるかを決定することである。一般に、ヒトアミノ酸残基のマウスアミノ酸残基との置換は、最小にするべきである。なぜなら、マウス残基の導入は、ヒトにおいてＨＡＭＡ応答を誘導する抗体の危険性を増大するからである。ＣＤＲ配座および／または抗原への結合に対するそれらの考えられ得る影響に基いて、置換のためのアミノ酸が選択される。このような考えられる影響の研究は、モデリング、特定の位置でのアミノ酸の特徴の試験、または置換の効果または特定のアミノ酸の変異の経験に基づく観察による。

アミノ酸がマウス可変フレームワーク領域と等量のヒト可変フレームワーク領域との間で異なる場合、通常、ヒトフレームワークアミノ酸が、理論的に以下のようなアミノ酸であると予想される場合、等価なマウスアミノ酸により置換されるべきである：
（１）抗原に非共有結合的に直接接触される、または
（２）ＣＤＲ領域に隣接するか、またはＣＤＲ領域と相互作用する（例えば、ＣＤＲ領域の約４〜６Åの範囲内である）。

置換についての他の候補は、その位置でヒト免疫グロブリンには通常無い（ｕｎｕｓｕａｌ）アクセプターヒトフレームワークアミノ酸である。これらのアミノ酸は、より代表的なヒト免疫グロブリンの等価な位置由来のアミノ酸で置換され得る。あるいは、マウス抗体における等価な位置由来のアミノ酸は、このようなアミノ酸が、等価な位置でヒト免疫グロブリンに代表的である場合、ヒトフレームワーク領域内に導入され得る。

一般に、上記の基準を満たす全てのまたは大部分のアミノ酸の置換が望ましい。しかし、場合によって、特定のアミノ酸が上記基準を満たすかどうかについていくつかの両義性が存在する。そして代替の変異体免疫グロブリンが産生され、一方はその特定の置換を有し、他方は有しない。

マウス１Ｄ１０抗体に由来する本発明のヒト化抗体は、通常以下の位置：Ｌ４８、Ｌ４９、Ｌ６９、およびＬ７０の少なくとも１、２、３、または４ヶ所における、対応するマウス ＭＡｂ １Ｄ１０残基でのヒトκ軽鎖フレームワーク残基の置換を含む。ヒト化抗体はまた、通常以下の位置：Ｈ２７、Ｈ２９、Ｈ３０、Ｈ３７、Ｈ６７、Ｈ７１、Ｈ７８、およびＨ８３の少なくとも１、２、３、４、５、６、７、または８ヶ所においてヒト重鎖フレームワーク残基の置換を含む。好適な実施態様において、ヒト軽鎖アクセプター免疫グロブリンが、Ｒ３．５ＨＧである場合、軽鎖はまた、４３位での置換を含む。この位置は、より代表的なアミノ酸残基を有するヒト免疫グロブリンの等価な位置由来の、またはこのようなヒト免疫グロブリンのコンセンサス配列由来のアミノ酸で置換される。同様に、ヒト重鎖アクセプター免疫グロブリンがＩＣ４である場合、重鎖はまた、７３位での置換を含む。

マウスＭ２９１抗体に由来する本発明のヒト化抗体は、軽鎖アクセプターがＨＦ２−１／１７である場合、ヒトκ軽鎖フレームワーク残基の置換を含まない。ヒト化抗体はまた、通常以下の位置：Ｈ３０、Ｈ６７、Ｈ６８、Ｈ７０、Ｈ７２、およびＨＨ７４の少なくとも１、２、３、４、５、および６ヶ所においてヒト重鎖フレームワークの置換を含む。好適な実施態様において、重鎖アクセプター免疫グロブリンが２１／２８である場合、軽鎖はまた、４４位での置換を含む。この位置は、より代表的なアミノ酸残基を有するヒト免疫グロブリンの等価な位置由来の、またはこのようなヒト免疫グロブリンのコンセンサス配列由来のアミノ酸で置換される。

通常、ヒト化抗体におけるＣＤＲ領域は、実質的に同一であり、より通常には、それらが由来するマウス抗体における対応のＣＤＲ領域に同一である。いつも所望されるわけではないが、得られたヒト化免疫グロブリンの結合親和性をかなり影響することなくＣＤＲ残基の１つ以上の保存的アミノ酸を置換することが時には可能である。場合によっては、ＣＤＲ領域の置換は、結合親和性を増強し得る。

上記の特異的なアミノ酸置換について以外に、ヒト化免疫グロブリンのフレームワーク領域は、通常実質的に同一であり、そしてより通常には、それらが由来するヒト抗体のフレームワーク領域に同一である。勿論、フレームワーク領域におけるアミノ酸の多くが、抗体の特異性または親和性にほとんどまたは全く直接的に寄与しない。従って、フレームワーク残基の多くの個々の保存的置換は、得られたヒト化免疫グロブリンの特異性または親和性をかなり変化することなく耐えられ得る。しかし、一般に、このような置換は所望されない。

（（５）可変領域の産生）
ヒト化免疫グロブリンのＣＤＲおよびフレームワーク成分が、概念的に選択されると、種々の方法が、このような免疫グロブリンを産生するために利用可能である。コードの縮重のため、種々の核酸配列は、各免疫グロブリンアミノ酸配列をコードする。所望の核酸配列は、新たな固相ＤＮＡ新規合成によってまたは所望のポリヌクレオチドの初期に調製された変異体のＰＣＲ変異誘発によって産生され得る。この適用に記載される抗体をコードする全ての核酸は、本発明において明白に包含される。

（（６）定常領域の選択）
上述のように産生されたヒト化抗体の変異性セグメントは、典型的に、免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）（代表的にはヒト免疫グロブリンの定常領域）の少なくとも一部に、連結される。ヒト定常領域ＤＮＡ配列は、種々のヒト細胞から、しかし、好ましくは不死化Ｂ細胞から、由来の周知の手順に従って単離され得る（Ｋａｂａｔら、前出、およびＷＯ８７／０２６７１）。通常、抗体は軽鎖定常領域および重鎖定常領域の両方を含む。通常、重鎖定常領域はＣＨ１、ヒンジ、ＣＨ２、ＣＨ３、および、時には、ＣＨ４領域を含む。

ヒト化抗体は、全ての型の定常領域（ＩｇＭ、ＩｇＧ、ＩｇＤ、ＩｇＡおよびＩｇＥを含む）ならびにイソタイプ（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、およびＩｇＧ４を含む）を有する抗体を含む。ヒト化抗体が細胞傷害性活性を示すことが所望される場合、定常ドメインは、通常補体固定定常ドメインであり、そしてそのクラスは典型的には、ＩｇＧ_１である。このような細胞傷害性活性が所望されない場合、定常ドメインはＩｇＧ_２クラスであり得る。ヒト化抗体は、１を超えるクラスまたはイソタイプに由来する配列を含み得る。

（（７）発現系）
ヒト化軽鎖可変領域およびヒト化重鎖可変領域をコードし、必要に応じて定常領域に結合される核酸は、発現ベクター内に挿入される。軽鎖および重鎖は、同一のまたは異なる発現ベクターにおいてクローン化され得る。免疫グロブリン鎖をコードするＤＮＡセグメントは、免疫グロブリンポリペプチドの発現を確実にする発現ベクター（単数または複数）中の制御配列に作動可能に連結される。このような制御配列は、シグナル配列、プロモーター、エンハンサー、および転写終結配列を包含する（Ｑｕｅｅｎら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６、１００２９ （１９８９）；ＷＯ ９０／０７８６１；Ｃｏら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８、１１４９ （１９９２）を参照のこと。これらは、全ての目的のためにそれらの全体が本明細書中で参考として援用される）。

（Ｃ．ヒト化抗体のフラグメント）
本発明のヒト化抗体は、フラグメントおよび完全な抗体を含む。代表的には、これらのフラグメントは、抗体結合をもたらす完全な抗体と競合する。フラグメントは、代表的には、少なくとも１０^７Ｍ^−１の親和性、およびより代表的には１０^８または１０^９Ｍ^−１の親和性（すなわち、完全な抗体と同じ範囲内で）で結合する。ヒト化抗体フラグメントは、別々の重鎖、軽鎖Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２、およびＦｖを含む。フラグメントは、組換えＤＮＡ技術によって、または完全な免疫グロブリンの酵素的分離または化学的分離によって生成される。

（組換え二重特異性抗体）
ハイブリドーマ細胞によって産生される抗体由来の二重特異性抗体を形成するための上記の方法はまた、１Ｄ１０およびＭ２９１のヒト化形態のような組換え発現された抗体からのに重特異性抗体の産生に応用または適用され得る。例えば、二重特異性抗体は、成分抗体をそれぞれ発現する２つの細胞株の融合によって産生され得る。あるいは、成分抗体は、同一の細胞株中で同時発現され得る。二重特異性抗体はまた、成分組換え抗体の化学
的架橋によって形成され得る。

成分組換え抗体はまた、遺伝子的に連結され得る。１つのアプローチにおいて、二重特異性抗体は、スペーサーによって分離された２つの成分抗体由来の４つの異なる可変ドメインを含む単一の融合タンパク質として発現される。例えば、このようなタンパク質は、１つの末端から他の末端、第１の成分抗体のＶＬ領域、スペーサー、第１の成分抗体のＶＨドメイン、第２のスペーサー、第２の成分抗体のＶＨドメイン、第３のスペーサー、および第２の成分抗体のＶＬドメインを含む。例えば、Ｓｅｇａｌら、Ｂｉｏｌｏｇｉｃ Ｔｈｅｒａｐｙ ｏｆ Ｃａｎｃｅｒ Ｕｐｄａｔｅｓ ２、１−１２ （１９９２）を参照のこと。

さらなるアプローチにおいて、二重特異性抗体は、成分抗体をロイシンジッパーペプチドに連結することによって形成される。概して、同時継続出願の１１８２３−００３２００（１９９１年１１月２９日に提出された０７／８０１，７９８）；Ｋｏｓｔｅｌｎｙら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８、１５４７−１５５３ （１９９２）（全ての目的のためにその全てが参考として援用される）を参照のこと。ロイシンジッパーは、一般構造式（ロイシン−Ｘ_１−Ｘ_２−Ｘ_３−Ｘ_４−Ｘ_５−Ｘ_６）_ｎ（配列番号１４）を有し、ここで、Ｘは、従来の２０アミノ酸のいずれでもあり得るが（Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ、（１９８４） Ｃｒｅｉｇｈｔｏｎ （編）、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ）、αヘリックス形成の高い可能性を有するアミノ酸（例えば、アラニン、バリン、アスパラギン酸、グルタミン酸、およびリジン）であることが最も考えられ（ＲｉｃｈａｒｄｓｏｎおよびＲｉｃｈａｒｄｓｏｎ、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４０、１６４８ （１９８８））、そしてｎは３以上であり得るが、代表的にはｎは４または５である。ロイシンジッパーは、種々の真核生物のＤＮＡ結合タンパク質（例えば、ＧＣＮ４、Ｃ／ＥＢＰ、ｃ−ｆｏｓ遺伝子産物（Ｆｏｓ）、ｃ−ｊｕｎ遺伝子産物（Ｊｕｎ）、およびｃ−ｍｙｃ遺伝子産物）に生じる。これらのタンパク質において、ロイシンジッパーは、二量体化（ｄｉｍｅｒｉａｔｉｏｎ）相互作用領域を作製し、ここで、ロイシンジッパーを含むタンパク質は、安定なホモ二量体および／またはヘテロ二量体を形成し得る。

本発明における使用のためのロイシンジッパーは、好ましくはペアワイズ（ｐａｉｒｗａｉｓｅ）親和性を有する。２つの種のロイシンジッパーが十分な濃度で存在する場合にヘテロ二量体形成が、ホモ二量体形成よりも好まれるのでペアワイズ親和性は、ある種のロイシンジッパー（例えば、Ｆｏｓロイシンジッパー）が別の種のロイシンジッパー（例えば、Ｊｕｎロイシンジッパー）とヘテロ二量体を優先的に形成する能力として規定される。Ｓｃｈｕｅｍａｎｎら、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． １９、７３９ （１９９１）を参照のこと。従って、ヘテロ二量体の優先的な形態は、代表的には５０〜７５％、好ましくは７５〜８５％、および最も好ましくは、８５％を越えるヘテロ二量体である二量体集団に導く。合成ペプチドのそれぞれのアミノ末端が、分子間のジスルフィド結合を許容するためにシステイン残基を含む場合、ヘテロ二量体形成は、ホモ二量体化の実質的な排除を生じる。

二重特異性抗体の形態において、成分抗体の結合フラグメントは、第１のまたは第２のロイシンジッパーにインフレームで融合される。適切な結合フラグメントは、Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、または重鎖を含み得る。ジッパーは、抗体結合フラグメントの重鎖または軽鎖に連結され得、そして通常Ｃ末端に連結される。定常領域または定常領域の一部が存在する場合、ロイシンジッパーは、好ましくは定常領域またはその一部に連結される。例えば、Ｆａｂ’−ロイシンジッパー融合において、ジッパーは、通常、ヒンジのＣ末端に融合される。それぞれの成分抗体フラグメントに融合されたロイシンジッパーの封入により、ジッパーのアニーリングによるヘテロ二量体フラグメントの形成が促進される。成分
抗体が定常領域の部分（例えば、Ｆａｂ’フラグメント）を含む場合、ジッパーのアニーリングはまた、定常領域を近接内に運搬するために作用し、それにより（例えば、Ｆ（ａｂ’）２フラグメント中の）定常領域の結合を促進する。代表的なヒト定常領域は、各鎖のヒンジ領域間の２つのジスルフィド結合の形成によって結合する。この結合は、さらなるシステイン残基（単数または複数）を、さらなるジスルフィド結合の形成を可能にする各ヒンジ領域内に操作することによって増強され得る。

抗体結合フラグメントに連結されるロイシンジッパーは、種々の方法で産生され得る。例えば、ロイシンジッパーを含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列は、細胞宿主またはインビトロ翻訳系によって発現され得る。あるいは、ロイシンジッパーおよび／または抗体結合フラグメントは、化学的ペプチド合成によるか、所望のポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列の発現によるか、またはロイシンジッパー、抗体、または高分子種を含む他のタンパク質からの切断によるかのいずれかで、別々に産生され得、そして続いて精製され得る。このような精製ポリペプチドは、スペーサーアミノ酸配列の介在の存在または非存在を伴うペプチド結合によるか、またはスペーサー分子の介在の存在または非存在を伴う非ペプチド共有結合によって連結され得、スペーサー分子は、アミノ酸または他の非アミノ酸化学構造物のいずれかである。結合の方法または型に関わらず、このような結合は可逆的であり得る。例えば、化学的に不安定な結合（ペプチジル結合またはその他のいずれか）は、自発的にまたは熱、電磁放射波、プロテアーゼ、または化学薬剤での処理の際に切断され得る。このような可逆的結合の２つの例は：（１）ヒドロキシルアミンによって切断され得るＡｓｎ−Ｇｌｙペプチド結合を包含する結合、および（２）還元剤によって切断され得るジスルフィド結合、である。

成分抗体のフラグメント−ロイシンジッパー融合タンパク質は、同一の細胞株中の両方の融合タンパク質を同時発現することによってアニーリルされ得る。あるいは、融合タンパク質は、別々の細胞株中で発現され得、そしてインビトロで混合され得る。成分抗体フラグメントが定常領域の一部（例えば、Ｆａｂ’フラグメント）を含む場合、ロイシンジッパーは、アニーリングが生じた後に切断され得る。成分抗体は、二重特異性抗体において定常領域を介して結合されたままである。

（治療法）
本発明の二重特異性抗体を含む薬学的組成物は、非経口投与（すなわち、皮下、筋肉内、および特に、静脈内投与）に有用である。非経口投与のための組成物は、一般に、受容可能なキャリア（好ましくは、水溶性キャリア）に溶解した抗体溶液またはそのカクテルを含む。種々の水溶性キャリア（例えば、水、緩衝化水、０．４％生理食塩水、０．３％グリシンなど）が使用され得る。これらの溶液は、無菌であり、そして一般的に粒状の物質を含まない。この組成物は、生理学的条件に近づけるために必要な薬学的に受容可能な補助物質（例えば、ｐＨ調整剤およびｐＨ緩衝化剤、毒性調整剤など）（例えば、酢酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、乳酸ナトリウム）を含み得る。これらの製剤における二重特異性抗体の濃度は、広範に（すなわち、約０．０１重量％未満、通常には少なくとも約０．１重量％〜５重量％まで）変化し得、そして主に選択された投与の特定の様式に従う、液体容積および粘性に基づいて選択される。

静脈内注入のための典型的な組成物は、２５０ｍｌの滅菌Ｒｉｎｇｅｒ溶液、および１０ｍｇの二重特異性抗体を含むように作製され得る。Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ （第１５版、Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ
Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｅａｓｔｏｎ、Ｐｅｎｎｓｙｌｖａｎｉａ、１９８０）を参照のこと。

本発明の二重特異性抗体またはそのカクテルを含む組成物は、予防処置および／または
治療処置のために投与され得る。治療適用において、組成物を、症状およびその合併症を治療するまたは少なくとも部分的に抑制するのに十分な量で、悪性Ｂ細胞（例えば、急性リンパ芽球性白血病、Ｂ細胞リンパ腫、慢性リンパ性白血病、および多発性骨髄腫）によって既に罹患されている患者に投与される。このことを達成するために適切な量は、「治療有効用量」として規定される。この使用に対する有効量は、症状の重篤度および患者自身の免疫系の一般的な状態に依存して使用されるが、用量当たり約０．０１ｍｇ〜約１００ｍｇの二重特異性抗体の範囲であり、患者当たり０．１ｍｇ〜５０ｍｇおよび１ｍｇ〜１０ｍｇの投薬範囲がより一般に使用される。毎日の、毎週の、または毎月のスケジュールにおける単独投与または複合投与は、処置する医師によって選択される用量レベルおよびパターンで行われ得る。

予防的適用において、二重特異性抗体またはそのカクテルを含む組成物は、患者の耐性を増強するために、疾患状態が進行する危険性のある患者に投与される。このような量は、「予防有効用量」であると規定される。この使用において、正味の応答量はまた、患者の健康状態および一般的な免疫レベルに依存し、一般的には用量当たり０．１ｍｇから１００ｍｇの範囲であるが、本質的には患者当たり１ｍｇ〜１０ｍｇの範囲である。

処置のいくつかの方法において、二重特異性抗体は、エフェクター細胞を活性化するために十分な量で第２の因子（例えば、インターロイキン）と共に投与され、それにより二重特異性抗体単独の投与と比較して悪性Ｂ細胞に対するそれらの細胞傷害性を増加する。インターロイキン−２の投与量は、約５００，０００Ｕ／ｋｇが適切である。組合せ療法（ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ ｔｈｅｒａｒｙ）は、投与される二重特異性抗体がＦ（ａｂ’）２フラグメントである場合、特に適切である。

単特異性１Ｄ１０抗体（特にヒト化形態）はまた、Ｂ細胞悪性疾患を罹患した患者またはＢ細胞悪性疾患の危険性のある患者に対する治療的投与に適切である。必要に応じて、抗体は、放射線標識または毒素と結合される。単特異性Ｍ２９１抗体（特にヒト化形態）は、免疫系の疾患および異常（例えば、宿主対移植片疾患、移植片対宿主疾患、自己免疫病、および炎症）の処置における免疫抑制剤として使用され得る。例えば、Ｃｏｓｉｍｉら、Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ． ３０５、３０８ （１９８１）；Ｒｕｓｓｅｌら、Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ．Ｍｅｄ． ３５、６３ （１９８４）を参照のこと。単特異性抗体を投与するための投薬量および薬学的賦形剤は、二重特異性抗体のそれらに類似である。

（診断方法）
Ｍ２９１および１Ｄ１０抗体（マウス形態およびヒト化形態の両方）はまた、診断方法において有用である。１Ｄ１０抗体（および同一エピトープのまたは類似のエピトープに結合する他の抗体）は、悪性Ｂ細胞の存在の診断、およびそれに対する処置の効力モニターに有用である。抗体はまた、特定の系統および発生起源の細胞を同定し、そして分類するという研究目的に有用である。Ｍ２９１抗体は、患者の免疫学的モニター（例えば、Ｃｏｓｉｍｉら、前出を参照のこと）における診断目的および白血球のサブタイプを（例えば、抗体パネルの一部として）分類する研究目的に有用である。診断の方法は、患者由来の細胞サンプル（例えば、血液サンプル、リンパ節バイオプシーまたは細胞）を用いてインビトロで実施され得るか、またはインビボ画像形成によって実施され得る。

（実施例１）
１ＤＴ３−ＤがＴ細胞による悪性Ｂ細胞の除去を誘導する能力をインビトロで評価した。用いたアッセイは、^５１クロム放出細胞傷害性アッセイであった。標的悪性Ｂ細胞（１ｍｌ中１０^７細胞）を１００μＣｉ ^５１Ｃｒとの１時間のインキュベーションで標識した。正常ドナー由来のＴ細胞を、エフェクター細胞として使用する前に、インビトロでＩ
Ｌ−２、またはＩＬ−２および抗ＣＤ３抗体と３〜７日間インキュベートした。Ｔ細胞を、抗体と共に、^５１Ｃｒ標識悪性Ｂ細胞に添加した。この混合物を４時間インキュベートし、そして細胞非含有上清を除去し、そして放出された^５１Ｃｒの存在についてガンマ計数により評価した。最大放出を、全ての細胞の溶解を誘導する界面活性剤（ＮＰ−４０）で処理したウエルから得られた上清を評価することにより決定した。バックグラウンド放出を、標的悪性Ｂ細胞およびＴ細胞を有するが抗体を有さないサンプルからの^５１Ｃｒレベルを評価することにより決定した。^５１Ｃｒの特異的放出は^５１Ｃｒ含有標的細胞の溶解を示し、そして下式を用いて算定した。

図１は、１ＤＴ３−Ｄは、Ｒａｊｉ（バーキットリンパ腫の患者から樹立された細胞株）、ＨＯ−８５（大細胞リンパ腫細胞株）、６９７（前Ｂ急性リンパ芽球白血病細胞株）、およびＫＨ（慢性リンパ球白血病の患者から得られた新鮮リンパ球）を包含する、多数の異なる悪性Ｂ細胞の溶解を誘導したこと示す。Ｔ細胞標的細胞比は１０：１であり、そして抗体濃度は５μｇ／ｍｌであった。標的溶解は単特異性抗体が用いられたときには見られなかった。

図２は、１ＤＴ３−Ｄが、低いＴ細胞：Ｒａｊｉ細胞比（１：１未満）および低い抗体濃度（０．１μｇ／ｍｌ未満）でのｒａｊｉ細胞の顕著な溶解を誘導し得ることを示す。同様の結果が他の標的細胞株で見られた。

図３は、新鮮ＫＨ細胞の１ＤＴ３−Ｄにより誘導されるＴ細胞媒介溶解が長いインキュベーション時間後に見出されたことを示す。

本発明の二重特異性抗体はまた、単に、１Ｄ１０抗体のＦａｂまたはＦ（ａｂ’）_２フラグメントを選び出して、これらをＯＫＴ３抗体の部分と融合して本発明の二重特異性抗体を形成させることによって生産され得る。あるいは、ナチュラルキラー細胞またはＴ細胞上で１Ｄ１０および抗原を認識する二重特異性抗体は、合成技術または遺伝子工学技術によって生産され得る。

本発明の二重特異性抗体の利点は、それらが悪性Ｂ細胞を認識し、非悪性Ｂ細胞からこれらを識別する能力である。従って、本発明の二重特異性抗体を用いる治療は、例えば、抗ＣＤ１９抗体Ｂ４のような非特異性抗体を用いる治療より著しく損傷が少ない。

さらに、実施例に記載のデータにより示されるように、本発明の抗体は、比較的低いＴ細胞比で悪性Ｂ細胞の顕著な溶解を誘導する。図２は、０．１μｇ／ｍｌ未満の比較的低い抗体濃度での１：１未満の悪性：Ｔ細胞比が、悪性細胞の顕著な破壊を提供することを示す。このことは、患者において利用可能なＴ細胞の濃度への依存を低下させるので、特に重要である。さらに、それはまた、必要な抗体量を低下させ、それによりいかなる潜在的な副作用をも制限する。

（実施例２：ＩＤＴ３−Ｄ二重特異性抗体のインビボ効率）
本実施例は、二重特異性抗体１ＤＴ３−Ｄのインビボ試行を記載する。正常ドナーヒト末梢血リンパ球を、ＯＫＴ３（２μｇ／ｍｌ）および組換えＩＬ−２（３００μｇ／ｍｌ）の存在下でインビトロで活性化した。ＣＢ−１７ ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄマウス（Ｉｔｏｈら、Ｃａｎｃｅｒ ７２， ２６８６−２６９４ （１９９３））に、５×１０^６活性化リンパ球と混合した５×１０^６Ｒａｊｉ細胞を皮下注射した。２４時間後、マウスに二重特異性抗体または二重特異性抗体の単特異性抗体成分を注射したか、あるいは抗体を注
射しなかった。マウスを、腫瘍注射部位において、少なくとも０．５ｃｍの腫瘍の発達について毎日試験した。６０日後に腫瘍のないままのマウスを陰性としてスコア付け、そして６０日以内に腫瘍を発達したマウスを陽性としてスコア付けた。コントロールの未処理マウスは常に２１〜２８日以内に腫瘍を発達した。

第一の実験では、５匹のマウスを、悪性細胞および活性化ヒトＴ細胞の混合物を接種した２４時間後に、１０μｇ／マウスの二重特異性抗体で処置した。コントロール群の５匹のマウスにはビヒクルのみを接種した。処置群およびコントロール群における腫瘍発生（すなわち、少なくとも８週間以内での少なくとも０．５ｃｍの腫瘍の発達）は、以下の通りであった：

フィッシャーの片側検定を用いると、二重特異性抗体処置は、疾患のない生存を延ばした（ｐ値は０．０２４である）。

第二の実験は、上述したように腫瘍およびＴ細胞を接種したマウスにおいて、１０μｇ／マウスの用量で、二重特異性抗体の抗腫瘍効果を単特異性抗ＣＤ３および単特異性１Ｄ１０と比較するように設計した。第２群のマウスは、単特異性１Ｄ１０および単特異性ＯＫＴ３を受容した。第３群は二重特異性抗体を受容し、そしてコントロール群はビヒクルのみを受容した。第４群のマウスもまた１０μｇ／マウスの濃度で二重特異性抗体を受容したが、活性化Ｔ細胞を受容した全ての他の群とは異なり、これらのマウスには非活性化Ｔ細胞を予め接種した。

一般的な二元表についてのフィッシャー検定（ｅｘａｃｔ ｔｅｓｔ）（Ａｇｒｅｓｔｉ、Ｃａｔｅｇｏｒｉｃａｌ Ｄａｔａ Ａｎａｌｙｓｉｓ （Ｗｉｌｅｙ， ＮＹ， １９９０）、６４〜６５頁）を用いて、４つの群の発生率が等しいという帰無仮説を検定した。群間で非常に有意な差異がある（ｐ＝０．００１）。コントロール群を第２群、第３群、および第４群のそれぞれと比較する両側検定もまた実施した。対応する片側ｐ値は０．００４、０．００４、および０．２２２である。従って、第２群および第３群はともに、コントロール群とは有意に異なる。１０μｇ／マウスの用量では、二重特異性抗体または両成分単特異性抗体での組合せの処置は、腫瘍のない生存を延ばしたと結論した。

第三の実験では、用量応答研究を、二重特異性抗体の種々の投与量の抗腫瘍効果を試験するために実施した。別個のマウス群を、それぞれ０．４、２、または１０μｇ／マウスの二重特異性抗体またはビヒクルの投与量で処置した。

Ｃｏｃｈｒａｎ−Ａｒｍｉｔａｇｅトレンド検定（Ａｇｒｅｓｔｉ、Ｃａｔｅｇｏｒｉｃａｌ Ｄａｔａ Ａｎａｌｙｓｉｓ （Ｗｉｌｅｙ， ＮＹ， １９９０）、１００〜１０２頁、１１８〜１１９頁）を用いて、４つの群の発生率が等しいという帰無仮説を、線形トレンドの対立仮説に対して検定した。等間隔スコアを用いると、ｐ値は０．００１である。０、０．４、２、および１０のスコアを用いると、ｐ値は０．０１６４である。両セットのスコアは、比率において有意なトレンドを示す。これらの結果は、二重特異性抗体が生存時間を延ばすのに有効であり、そしてより多い用量（１０μｇおよび２μｇ）を受容したマウスは、腫瘍のない生存を改善したことを示す。

第四の実験は、２μｇ抗体／マウスの用量で、単特異性ＯＫＴ３および１Ｄ１０を二重特異性抗体に対して比較するように設計した。

一般的な二元表についてのフィッシャー検定を用いると、単特異性ＯＫＴ３（第２群）および単特異性１Ｄ１０（第３群）で処置したマウスの腫瘍のない生存は、コントロールとは有意な差異がなかったが、一方、二重特異性抗体（第４群）で処置したマウスは、生存を延ばした。

これらのデータは、１ＤＴ３−Ｄの全身投与がインビボにおける悪性Ｂ細胞を傷害し、そして／またはその発達を妨害すること、および２μｇ／動物の用量で、二重特異性抗体治療が単特異性抗体治療より有効であることを示す。

（実施例３：ヒトＣＤ３抗原に対するモノクローナル抗体の生成）
実施例１に記載の１ＤＴ３−Ｄ抗体は、エフェクター細胞に対して親和性を有する結合部分としてＯＫＴ３を合併させた。本実施例は、二重特異性抗体におけるエフェクター細胞結合成分として使用するための別の抗体Ｍ２９１の単離を記載する。

ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）をＰＨＡおよびＩＬ−２で活性化し、Ｔ細胞を拡大させた。活性化Ｔ細胞をＢａｌｂ／Ｃマウスにおける免疫原として使用した。ハイブリドーマを、標準的な方法により、これらのマウスの脾臓から生成した。これらのハイブリドーマを、インビトロで増殖するようにＰＢＭＣを刺激し得る抗体についてスクリーニングした。適切なＦｃを有する抗ＣＤ３抗体は、ＰＢＭＣ中のＴ細胞の増殖を引き起こす。これらのハイブリドーマの１つであるＭ２９１を単離し、そしてＴ細胞を活性化して増殖させ得るアイソタイプＩｇＧ２ａ／κの抗体を分泌することが分かった。精製抗体Ｍ２９１は、別の抗ヒトＣＤ３抗体であるＯＫＴ３（ＩｇＧ２ａ／κ）と、ヒトＴ細胞への結合について競合し、このことは、それぞれの抗体により認識されるエピトープが密接した間隔にあることを示す。従って、Ｍ２９１は、ヒトＣＤ３複合体に対する特異性を有する抗体である。

（実施例４：１Ｄ１０およびＭ２９１抗体のヒト化）
本実施例は、１Ｄ１０およびＭ２９１抗体についてそれぞれのヒト化手順を記載する。

（（１）１Ｄ１０およびＭ２９１ Ｖ領域ｃＤＮＡのクローニング）
１Ｄ１０およびＭ２９１の重および軽ＶドメインｃＤＮＡを、アンカーＰＣＲ法（Ｌｏｈら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４３， ２１７ （１９８９）を参照のこと）を用いてクローン化した。ｃＤＮＡをまず、ハイブリドーマ細胞由来のポリＡ＋ ＲＮＡをオリゴｄＴでプライムした後に逆転写酵素により合成した。ｄＧの尾部を、ターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼによりｃＤＮＡの３’末端に付加した。次いで、ＶドメインをＰＣＲにより、Ｃ領域にハイブリダイズする３’プライマーおよびＧ尾部にハイブリダイズする５’プライマーを用いて増幅した。いくつかの独立したＨ鎖クローンおよびＬ鎖クローンを配列決定し、配列の誤りがＰＣＲによって導入されなかったことを確認した。１Ｄ１０について、Ｖドメインを、マウスアイソタイプＩｇＧ２ａ／κの抗体として、ミエローマ細胞株ＳＰ２／０に適切なベクター中の遺伝子をトランスフェクトすることにより発現させ、それらが１Ｄ１０の結合部位をコードしていることを確証した。トランスフェクションにおいて用いられる発現ベクターは、定常領域の遺伝子がマウス配列に由来することを除いて、Ｃｏらにより記載のプラスミドｐＶｋ．ＧおよびｐＶｇ．Ｄ（Ｃｏら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８， １１４９ （１９９２）を参照のこと）と同様である。トランスフェクト細胞から単離された抗体は、フローサイトメトリーにより、親マウスＩｇＧ１／κ １Ｄ１０抗体のパターンとは識別できないパターンでＲａｊｉ細胞に結合することが分かった。Ｍ２９１のＶドメインを同様にクローン化し、そしてそれらをマウスＦ（ａｂ’−ジッパー）_２として発現させた（Ｋｏｓｔｅｌｎｙら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８， １５４７ （１９９２）を参照のこと）。フローサイトメトリーアッセイは、Ｍ２９１−Ｆｏｓ Ｆ（ａｂ’ジッパー）_２が親抗体と同様または同一の親和性でヒトＴ細胞に結合することを示した。この観察により、Ｍ２９１の正確なＶドメインがクローン化されたことを確証した。

（（２）ヒト化配列のモデリングおよび設計）
マウス１Ｄ１０およびＭ２９１に最も類似したヒトＶドメインの配列を選択し、ヒト化抗体のフレームワークとして供した。１Ｄ１０については、最良のヒトＶ_ｋ配列は、ヒトサブグループＩのＲ３．５Ｈ５Ｇであり、これはフレームワーク領域において１Ｄ１０とは１６アミノ酸しか異ならない。Ｍａｎｈｅｉｍｅｒ−Ｌｏｒｙら、Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ． １７４， １６３９−１６５２ （１９９１）。最良のＶ_Ｈ配列は、ＫａｂａｔサブグループＩＩまたはサブグループＩＶのＩＣ４であり（Ｋａｂａｔら、Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ １， １１３７ （１９９１）を参照のこと）、これらは２６アミノ酸が異なる。Ｍ２９１については、最良のヒトＶ_ｋ配列は、ヒトサブグループＩのＨＦ２−１／１７であり、２６アミノ酸が、フレームワーク領域においてＭ２９１と異なる（Ａｔｈｉｓｏｎら、Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｉｎｖｅｓｔ． ７５， １１３８ （１９８５）；Ｌａｍｐｍａｎ、Ｂｌｏｏｄ ７４， ２６２ （１９８９））；最良のヒトＶ_Ｈ配列は、ヒトサブグループＩの２１／２８であり、これらは２０アミノ酸が異なる。Ｄｅｒｓｉｍｏｎｉａｎら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １３９， ２４９６−２５０１ （１９８７）。三次元モデルの助けを借りて、マウス抗体と選択されるヒト配列との間で異なるさらなる数のフレームワーク位置を同定した。三次元空間におけるそれらのアミノ酸残基の超可変領域（またはＣＤＲ）に対する位置は、それらがＣＤＲコンホメーション、そして従って結合親和性に影響を及ぼすようであることを示した。マウス配列をこれらの位置で用いた。ヒト配列において、それらのそれぞれのサブグループのコンセンサスと異なる多くの位置を同定した。これらのアミノ酸を、コンセンサス配列に対応するように変更した。マウス１Ｄ１０とヒト化１Ｄ１０との間、およびマウスＭ２９１とヒト化Ｍ２９１との間のＶ_ＨおよびＶ_Ｌ配列比較を、それぞれ図４および図５に示す。

（（３）ヒト化１Ｄ１０抗体の合成および発現）
ヒト化１Ｄ１０ Ｌ鎖およびＨ鎖Ｖ領域をコードするＤＮＡセグメントを、オーバーラップオリゴヌクレオチドからの全遺伝子合成により構築した。これらのミニエキソンは、シグナル配列、Ｊセグメント、およびスプライスドナー配列を含み、そしてＸｂａＩ部位に囲まれた。このＤＮＡセグメントを、図６に概要を示したスキームを用いて、発現ベクター中に取り込んだ。

ヒト化Ｖドメインを、対応する重鎖および軽鎖発現プラスミドｐＶ_ｇ１．Ｄ．ＴｔおよびｐＶｋ．ｒＧ．ｄＥのＸｂａＩ部位にクローン化した。得られたプラスミドをｐＨｕ１Ｄ１０．Ｖｇ１．Ｄ．ＴｔおよびｐＨｕ１Ｄ１０．Ｖ_ｋ．ｒＧ．ｄＥと称する。重鎖発現ベクターｐＶｇ１．Ｄ．Ｔｔ（これは、選択マーカーとして変異ジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子（ｍｄｈｆｒ）（ＳｉｍｏｎｓｅｎおよびＬｅｖｉｎｓｏｎ、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８０， ２４９５， （１９８３）を参照のこと）、転写開始のためのヒトサイトメガロウイルス（ｈＣＭＶ）主要即時型プロモーターおよびエンハンサー（Ｂｏｓｈａｒｔら、Ｃｅｌｌ ４１， ５２１ （１９８５）を参照のこと）、およびヒトＩｇＧ１定常領域を含有する）を、標準的な方法によりそれぞれのフラグメントから構築した。このベクターは、Ｃｏら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８， １１４９ （１９９２）に記載のベクターｐＶ_ｇ１．Ｄとは、γ１遺伝子ポリ（Ａ）部位の３’側に転写終結部位を有することにより異なる。転写終結部位（Ｔｔ）は、ヒト補体遺伝子Ｃ２から下流に位置する配列（Ｃ２ポリ（Ａ）部位の＋３７から＋１６２ｂｐ）（Ａｓｈｆｉｅｌｄら、ＥＭＢＯ Ｊ． １０， ４１９７ （１９９１）を参照のこと）から誘導し、そしてオーバーラッピングオリゴヌクレオチドを用いることにより、完全に合成した。

軽鎖発現については、ベクターを、ｈＣＭＶプロモーターおよびエンハンサー、ヒトＣ_Ｋ遺伝子（先行するイントロンの一部を含む）、および選択用キサンチン−グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ｇｐｔ）遺伝子（ＭｕｌｌｉｇａｎおよびＢｅｒｇ、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ７８， ２０７２ （１９８１）を参照のこと）から構築した。ベクターｐＶ_ｋ．ｒＧ．ｄＥは、ｇｐｔ遺伝子の向きを除いて、Ｃｏらにより記載のｐＶ_ｋ（Ｃｏら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８， １１４９ （１９９２）を参照のこと）と同様である。さらに、ｇｐｔ遺伝子を転写するのに用いられるＳＶ４０プロモーターのエンハンサー領域における２つの反復配列の一方を、ＳｐｈＩ消化により欠失させた。

１つのプラスミドにおける重鎖および軽鎖の同時発現については、ｈＣＭＶプロモーター、ＶＨエキソン、Ｃ_Ｈ１、Ｃ_Ｈ２、およびＣ_Ｈ３エキソン、ポリＡシグナル、および転写終結シグナルを含むＥｃｏＲＩフラグメントを、重鎖発現ベクターから選び出し、そして対応する軽鎖発現プラスミドの単独のＥｃｏＲＩ部位にクローン化した。それらの間に位置した転写終結シグナルの存在により、この２つの遺伝子は、ｈＣＭＶプロモーターにより独立して転写される。転写後、ヒト化Ｖ_Ｈエキソンはヒトγ１ Ｃ_Ｈ１、ヒンジ、Ｃ_Ｈ２、およびＣ_Ｈ３エキソンにスプライスされ、そして次いでポリアデニル化される。同様に、Ｖ_ＬエキソンはヒトＣ_Ｋエキソンにスプライスされる。ヒト化１Ｄ１０の成熟軽鎖および重鎖の推定アミノ酸配列を、それぞれ、図４Ｃおよび４Ｅに示す。

プラスミドｐＨｕ１Ｄ１０．ＩｇＧ１．ｒＧ．ｄＥを、エレクトロポレーションにより、マウスミエローマ細胞株ＴＳＯへのトランスフェクションのために用いた。ＴＳＯ細胞は、それらがＳａｔｏら、Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ． １６５， １７６１ （１９８７）の手順に従って無血清培地において増殖する能力について選択された、マウスミエローマＮＳＯ細胞（ＥＣＡＣＣ ８５１１０５０３）の誘導体である。各トランスフェクショ
ンからの細胞をｇｐｔ発現について選択した。ｇｐｔ遺伝子についてのＳＶ４０プロモーター／エンハンサーは不能にされたので、少数個のトランスフェクタントのみが、選択物を生存させるに十分に高い程度に、ｇｐｔを発現させ得る（ＪａｓｉｎおよびＢｅｒｇ、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖ． ２， １３５３ （１９８８）を参照のこと）。ｇｐｔの野生型ＳＶ４０プロモーターを含むほぼ同一のプラスミドを用いるトランスフェクションからの１０〜５０×１０^−６の効率に比較して、約０．５〜１．０×１０^−６である。標準的なＥＬＩＳＡによりヒト化抗体の生産についてスクリーニングした場合、平均生存細胞もまた、野生型ＳＶ４０プロモーターを含むプラスミドでトランスフェクトされた細胞に比較して、より高いレベルの抗体を生じた。次いで、最良の抗体プロデューサーをヒト化１Ｄ１０の生産のためにサブクローン化した。抗体Ｈｕ１Ｄ１０を、プロテインＡアフィニティークロマトグラフィーにより無血清使用済培地から精製した。

（（４）Ｈｕ１Ｄ１０の特性）
マウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａおよびヒト化１Ｄ１０は、１Ｄ１０陽性細胞株および１Ｄ１０陰性細胞株との反応性について同一のスペクトルを有した。標的抗原を有する細胞についてのマウス１Ｄ１０−ＩｇＧａおよびヒト化１Ｄ１０の親和性を配置替えアッセイを用いて評価した（Ｗｏｏｄｌｅら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８ ２７５６ （１９９２）を参照のこと）。このアッセイにおいて、既結合ヒト化１Ｄ１０またはマウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａがＦＩＴＣ標識マウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａの結合を阻害する能力を、ＦＡＣＳ分析により定量した。ヒト化１Ｄ１０は、マウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａの結合を、親抗体で見られるのと同様の程度に競合阻害した（図７Ａ）。これらのデータは、ヒト抗体がマウス抗体と同様の親和性で結合することを示した。スキャッチャード分析を、ヒト化１Ｄ１０の見かけの親和性をより良好に概算するために用いた。ヒト化１Ｄ１０−ＩｇＧ１は、２．３×１０^８Ｍ^−１の見かけのＫ_ａを有すること、およびＲａｊｉ細胞株において細胞当たり約５×１０^５部位が存在することが分かった（図７Ｂ）。さらに、ヒト化１Ｄ１０は、ＡＤＣＣおよび補体媒介溶解を導く能力を有し、この２つのエフェクター機能は元のマウス１Ｄ１０には存在しない（図８Ａおよび８Ｂ）。

（（５）ヒト化Ｍ２９１および１Ｄ１０（ａｂ’−ジッパー）２の合成および発現）
ロイシンジッパー遺伝子（ＪｕｎおよびＦｏｓ）をＫｏｓｔｅｌｎｙら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８， １５４７ （１９９２）により記載のように合成した。得られたＰＣＲ産物は、１７９ｂｐのＰｓｔＩ−ＳａｌＩフラグメントであり、これは完全ヒンジジッパー遺伝子融合を包含する。ＰｓｔＩ部位はヒンジエキソンの開始部に位置した天然の制限部位であるが、ＳａｌＩ部位はＰＣＲの間にジッパー配列の末端部に付加された。ヒンジ／ジッパーエキソンを、マウスＩｇＧ２ａ遺伝子の３’非コード配列を含む１６２ｂｐのＳａｌＩ−ＢａｍＨＩフラグメントと共に、重鎖発現ベクターｐＶｇｌ．Ｄ．Ｔｔに挿入し、プラスミド中でヒンジ、Ｃ_Ｈ２、およびＣ_Ｈ３エキソンが置換される。１つのプラスミドにおける短縮型重鎖（Ｆｄ）遺伝子と軽鎖遺伝子との同時発現は、ｐＨｕ１Ｄ１０．ＩｇＧ１．ｒＧ．ｄＥ（図６）について上述したのと本質的には同じである。発現プラスミドを、ｐＨｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ．ｒＧ．ｄＥおよびｐＨｕＭ２９１−Ｆｏｓ．ｒＧ．ｄＥと称する（図９）。これらのプラスミドと全抗体を発現させるのに用いたプラスミドとの間の差異は以下の通りである：（１）ヒトγ１Ｃ_Ｈ１エキソンは、ヒンジ、Ｃ_Ｈ２、およびＣ_Ｈ３エキソンの代わりに、ヒンジ／ジッパー融合エキソンにスプライスされている、および（２）転写物は異種シグナルによりポリアデニル化されている。ロイシンジッパーＪｕｎをＨｕ１Ｄ１０のＦｄのために用い、そしてＦｏｓをＨｕＭ２９１のＦｄのために用いる。対応する軽鎖と組み合わせたとき、Ｆｄ−ジッパーは、Ｆ（ａｂ’−ジッパー）_２を形成し得る。１Ｄ１０およびＭ２９１に関するヒト化Ｆ（ａｂ’−ジッパー）_２フラグメントを、それぞれＨｕ１Ｄ１０−ＪｕｎおよびＨｕＭ２９１−Ｆｏｓと称する。Ｈｕ１Ｄ１０−ＪｕｎおよびＨｕＭ２９１−Ｆｏｓにおける重鎖Ｆｄ−ジッパーの推定アミノ酸配列を、それぞれ図４Ｄおよび５Ｄに示す。両場合とも、ヒンジ／ジッパー融
合の領域でヒトＩｇＧ１ヒンジの改変が存在した（図１０）。マウスＩｇＧ２ａヒンジ由来の２アミノ酸残基Ｌｙｓ−Ｃｙｓの挿入をヒンジエキソンに導入して、さらなる重鎖間ジスルフィド結合を提供した。ヒトＩｇＧ１ヒンジにおいてこれらの２残基を挿入することにより、そのＣＯＯＨ−末端半部位をマウスＩｇＧ２ａヒンジに相同とする。改変ヒンジは、野生型ヒトＩｇＧ１が２つであるのに対して、３つの重鎖間ジスルフィド結合を有し得た。さらに、Ａｌａ残基（Ｃ_Ｈ２ドメインの第１残基）および２つのＧｌｙ残基を融合接合部に導入し、接合部をより可動性にした。発現プラスミドであるｐＨｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ．ｒＧ．ｄＥおよびｐＨｕＭ２９１−Ｆｏｓ．ｒＧ．ｄＥを、エレクトロポレーションにより、マウスミエローマ細胞株ＴＳＯに別々にトランスフェクトした。トランスフェクタントを、ＥＬＩＳＡにより、分泌Ｆ（ａｂ’−ジッパー）_２フラグメントの存在および量についてスクリーニングした。Ｆ（ａｂ’−ジッパー）_２フラグメントをプロテインＧアフィニティークロマトグラフィーを用いて精製した。

（（５）ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓの特性）
Ｔ細胞についてのマウスＭ２９１およびＨｕＭ２９１−Ｆｏｓ Ｆ（ａｂ’−ジッパー）_２の相対的親和性を、上記の配置替えアッセイを用いて評価した。ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓは、ＦＩＴＣ標識マウスＭ２９１ ＩｇＧ２ａおよび非標識Ｍ２９１の結合をブロックする（図１１Ａ）。ＣＤ３についてのＨｕＭ２９１の親和性は、Ｎ２９１の２〜３倍以内であると概算される。スキャッチャード分析は、ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓの見かけの親和性がＫ_ａが１．１×１０^９Ｍ^−１であったこと、および活性化ヒトＴ細胞において細胞当たり約６．６×１０^４部位が存在することを示した（図１１Ｂ）。

（（６）二重特異性Ｈｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ×ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓ Ｆ（ａｂ’−ジッパー）_２のインビトロでの形成）
Ｈｕ１Ｄ１０−ＪｕｎおよびＨｕＭ２９１−Ｆｏｓを、０．５〜３．０ｍｇ／ｍｌの間の濃度で等モルで混合し、そしてＰＢＳ中１０ｍＭ ＤＴＴで、３７℃で１時間還元し、Ｆａｂ’−ジッパーを形成した。それらをＰＢＳ中でセファロースＧ−５０カラムに通し、ＤＴＴを除去した。脱塩したタンパク質を４℃で４８時間インキュベートし、ヘテロ二量体二重特異性Ｈｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ×ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓを形成させた。二重特異性分子を、フェニルセファロースカラム上で疎水性相互作用クロマトグラフィー（ＨＩＣ）により、さらに精製した。

（実施例５：ヒト化二重特異性抗体のＴ細胞媒介細胞傷害性）
Ｈｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ×ＨｕＭ２９１−ＦｏｓがＴ細胞媒介溶解を導く能力を、クロム放出アッセイにおいて試験した。ＯＫＴ３およびＩＬ−２処理後のＰＢＭＣ由来のヒトＴ細胞をエフェクター細胞として用いた。Ｄａｗｏ（これは、Ｂ大細胞型リンパ腫の患者から発達した細胞株である）を、標的細胞として用いた。図１２は、二重特異性Ｈｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ×ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓ、およびマウス二重特異性ＩｇＧ １ＤＴ３−Ｄが標的細胞を溶解するようにＴ細胞を導いたことを示す。２つの二重特異性分子は、低い抗体濃度で同様の活性を有するようであった。２つの親抗体であるＨｕＭ２９１−ＦｏｓおよびＨｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎは、単独でも組み合わせても、このアッセイでは有効ではなかった。

高濃度（１０μｇ／ｍｌ）で、１ＤＴ３−Ｄは、標的細胞溶解を媒介するにおいて、Ｈｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ×ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓより高い活性を有した。これは、標的細胞の表面上の低親和性のＦｃレセプターのためである。高い抗体濃度では、二重特異性ＩｇＧのＦｃは、これらのレセプターに結合し得、そしてＴ細胞を標的抗原から独立した標的細胞の溶解に導き得た。これは、逆溶解として知られる機構である（Ｗｅｉｎｅｒら、Ｊ．
Ｉｍｍｕｎｏｌ． １５２， ２３８５ （１９９４）を参照のこと）。Ｈｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ×ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓは、Ｆｃを有さないＦ（ａｂ’）_２様分子であるので、
Ｆｃレセプターへの結合によって溶解を開始させ得ない。いくつかの治療用途において、ヒト化抗体のこの特性は、抗体の選択的傷害性を増大させるのに有利である。

上記に引用された全ての刊行物および特許出願は、その各個々の刊行物または特許出願が、詳細かつ個々に参照のために援用されるとしてそのように示されたと同じ程度に、あらゆる目的のために、本明細書中にその全体が参照のために援用される。本発明は、明確化および理解の目的のために説明および実施例によってやや詳細に記載されているが、ある種の変更および改変が添付の請求の範囲の範囲内で実施され得ることは明らかである。

図１は、本発明の二重特性抗体による悪性Ｂ細胞の溶解を示すグラフである； 図２は、本発明の抗体の異なる濃縮物により引き起こされるＲａｊｉ細胞の溶解を示すグラフである； 図３は、本発明の二重特性抗体による経時的ＫＨ細胞の溶解を示すグラフである。これはまた、比較研究を示している。 図４。ヒト化１Ｄ１０抗体（上段）およびマウス１Ｄ１０抗体（下段）の軽鎖（Ａ）（配列番号１〜２）および重鎖（Ｂ）（配列番号３〜４）可変領域のアミノ酸配列（シグナル配列を含有しない）。各鎖中の３つのＣＤＲに下線が引かれる。マウスのアミノ酸またはコンセンサスヒトアミノ酸で置換されているヒトフレームワーク中の残基に二重下線を引く。ヒト化１Ｄ１０の完全な軽鎖および重鎖のアミノ酸配列を、それぞれ、（Ｃ）（配列番号５）および（Ｅ）（配列番号７）に示す。Ｖ_Ｌドメインは残基１〜１０７からなり、Ｃ_Ｋは１０８〜２１４からなる。Ｖ_Ｈドメインは残基１〜１１６からなり、Ｃ_Ｈ１は１１７〜２１４からなり、ヒンジは２１５〜２２９からなり、Ｃ_Ｈ２は２３０〜３３９からなり、そしてＣ_Ｈ３ドメインは３４０〜４４６からなる。１Ｄ１０のヒト化Ｆ（ａｂ’−ジッパー）_２中のＦｄ−Ｊｕｎのアミノ酸配列を、（Ｄ）（配列番号６）に示す。Ｖ_Ｈドメインは残基１〜１１６からなり、Ｃ_Ｈ１ドメインは１１７〜２１４からなり、改変ヒンジは２１５〜２３４からなり、そしてＦｏｓロイシンジッパーは２３５〜２７３からなる。 図４−１の続き 図４−２の続き 図５。ヒト化Ｍ２９１抗体（上段）およびマウスＭ２９１抗体（下段）の軽鎖（Ａ）（配列番号８〜９）および重鎖（Ｂ）（配列番号１０〜１１）可変領域のアミノ酸配列（シグナル配列を含有しない）。各鎖中の３つのＣＤＲに下線を引く。マウスのアミノ酸またはコンセンサスヒトアミノ酸で置換されているヒトフレームワーク中の残基に二重下線を引く。ヒト化Ｍ２９１の完全な軽鎖のアミノ酸配列を、（Ｃ）（配列番号１２）に示す。Ｖ_Ｌドメインは残基１〜１０６からなり、そしてヒトＣ_Ｋドメインは１０７〜２１３からなる。Ｍ２９１のヒト化Ｆ（ａｂ’ジッパー）２中のＦｄ−Ｆｏｓのアミノ酸配列を、（Ｄ）（配列番号１３）に示す。Ｖ_Ｈドメインは残基１〜１２０からなり、Ｃ_Ｈ１ドメインは１２１〜２１８からなり、改変ヒンジは２１９〜２３８からなり、そしてＦｏｓロイシンジッパーは２３９〜２７９からなる。 図５−１の続き 図６。ヒト化１Ｄ１０ ＩｇＧ１の発現のために使用されるプラスミドｐＨｕ１Ｄ１０．ＩｇＧ１．ｒＧ．ｄＥの構築。 図７。（Ａ）。抗原に対するヒト化１Ｄ１０およびマウス１Ｄ１０の相対的な親和性の比較のための配置替えアッセイ。Ｒａｊｉ細胞上のマウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａ−ＦＩＴＣの亜飽和量（ｓｕｂｓａｔｕｒａｔｉｏｎ）をマウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａまたはヒト化１Ｄ１０−ＩｇＧ１の増加量で置換した。Ｒａｊｉ細胞を完全培地中に２．５×１０^６／ｍｌで再懸濁した。試験抗体（ヒト化１Ｄ１０−ＩｇＧ１）またはコントロール抗体（マウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａ）の希釈物を添加し、そして４℃で１時間インキュベートした。一定の、亜飽和量のマウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａ−ＦＩＴＣを添加し、そして細胞を４℃で１時間インキュベートし、洗浄し、そして１％パラホルムアルデヒド中に再懸濁した。次いで、細胞を、フローサイトメトリーを用いて分析した。値を非競合抗体コントロールと比較した蛍光強度の阻害％で示した。（Ｂ）。^１２５Ｉ標識ヒト化１Ｄ１０−ＩｇＧ１のＲａｊｉ細胞への結合のスキャッチャード（Ｓｃａｔｃｈａｒｄ）プロット分析。スキャッチャード分析を、０．２ｍｌ、９０分間、０℃での標識抗体の希釈物の４×１０^５ Ｒａｊｉ細胞への結合により行った。細胞を結合緩衝液（０．１％アジ化ナトリウムを含有するＰＢＳ中の２％ウマ血清）中で洗浄し、そして計数した。非特異的結合を、過剰の非標識ヒト化１Ｄ１０−ＩｇＧ１との特異的結合の阻害により測定した。見かけ上のＫａおよび結合部位の数を、スキャッチャードプロットの傾きおよびＸ軸切片それぞれから算出した。 図８。（Ａ）。種々の１Ｄ１０アイソタイプによる抗体依存性細胞媒介細胞傷害性（ＡＤＣＣ）能力。^５１Ｃｒ標識Ｒａｊｉヒトリンパ腫細胞を、マウス１Ｄ１０−ＩｇＧ１（▲）、マウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａ（●）、またはヒト化１Ｄ１０−ＩｇＧ１（■）についての標的として、そしてヒト末梢単核をエフェクター細胞として使用した。エフェクター：標的の比は４０：１であった。自発的な放出は、全放出の２０％未満であった。線は、ＳＥＭを表す。（Ｂ）。種々の１Ｄ１０アイソタイプによる補体媒介細胞傷害性。^５１Ｃｒ標識Ｒａｊｉヒトリンパ腫細胞を、マウス１Ｄ１０−ＩｇＧ１（▲）、マウス１Ｄ１０−ＩｇＧ２ａ（●）、またはヒト化１Ｄ１０−ＩｇＧ１（■）についての標的として、そして正常な被験体由来のヒト血清を補体として使用した。自発的な放出は、全放出の２０％未満であった。線は、ＳＥＭを表す。 図９。Ｈｕ１Ｄ１０−ＪｕｎおよびＨｕＭ２９１−Ｆｏｓ Ｆ（ａｂ’−ジッパー）_２の発現のためのプラスミドｐＨｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ．ｒＧ．ｄＥおよびｐＨｕＭ２９１−Ｆｏｓ．ｒＧ．ｄＥの略図。これら２つのプラスミドの構築は、ロイシンジッパー配列ＪｕｎおよびＦｏｓによるＣ_Ｈ２およびＣ_Ｈ３エキソンの置換を除いて、図６のｐＨｕ１Ｄ１０．ＩｇＧ１の構築と同様であった。Ｆｄ−ジッパー転写産物のためのポリアデニル化シグナルは、マウスＩｇＧ２ａ遺伝子の３’非コード配列（Ｋｏｓｔｅｌｎｙら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． １４８， １５４７ （１９９２）を参照のこと）由来である。 図１０。（Ａ）。ヒンジ−ジッパー融合において使用した改変ヒトＩｇＧ１ヒンジの配列。２つの残基Ｌｙｓ−Ｃｙｓ（下線）を改変ヒンジ中に挿入した。この改変ヒンジ中の最初のＣｙｓは軽鎖とジスルフィド結合を形成し、そして残りの３つのＣｙｓ残基は、内部重鎖ジスルフィドを形成する。比較のために、ヒトＩｇＧ１（Ｂ）およびマウスＩｇＧ２ａ（Ｃ）のヒンジ配列もまた示す。マウスＩｇＧ２ａヒンジ中の３つすべてのＣｙｓ残基が、内部重鎖ジスルフィドのために使用される。Ｌｙｓ−Ｃｙｓの挿入後、改変ヒンジおよびマウスＩｇＧ２ａヒンジは、ＣＯＯＨ末端近傍において広範囲の配列相同性を有する。 図１１。（Ａ）。ＨｕＭ２９１−ＦｏｓおよびＭ２９１のそれらの抗原に対する相対的な親和性を比較するための配置替えアッセイ。ヒトＴ細胞上の亜飽和量のマウスＭ２９１−ＦＩＴＣを漸増量のマウスＭ２９１またはＨｕＭ２９１−Ｆｏｓにより置換した。Ｔ細胞を完全培地中に２．５×１０^６／ｍｌで再懸濁した。試験抗体（ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓ）またはコントロール抗体（マウスＭ２９１）の希釈物を添加し、そして４℃で１時間インキュベートした。一定の、亜飽和量のマウスＭ２９１−ＦＩＴＣを添加し、そして細胞を４℃で１時間インキュベートし、洗浄し、そして１％パラホルムアルデヒド中に再懸濁した。次いで、細胞を、フローサイトメトリーを用いて分析した。値を非競合抗体コントロールと比較した蛍光強度の阻害％で示した。（Ｂ）。^１２５Ｉ標識ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓの活性化ヒトＴ細胞への結合のスキャッチャードプロット分析。スキャッチャード分析を、０．２ｍｌ、９０分間、０℃での標識抗体の希釈物の４×１０^５ Ｔ細胞への結合により行った。細胞を結合緩衝液（０．１％アジ化ナトリウムを含有するＰＢＳ中の２％ウマ血清）中で洗浄し、そして計数した。非特異的結合を、過剰の非標識ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓとの特異的結合の阻害により測定した。見かけのＫａおよび結合部位の数を、スキャッチャードプロットの傾きおよびＸ軸切片それぞれから算出した。 図１２。二重特異性抗体が誘導した１Ｄ１０陽性細胞のＴ細胞媒介溶解。ヒトＰＢＬ中のＴ細胞を、抗ＣＤ３抗体ＯＫＴ３により活性化し、そしてＩＬ−２中でそれらを培養することによって拡大した。標的細胞を^５１Ｃｒで標識し、そして洗浄した。Ｔ細胞および標識標的細胞を２５：１のエフェクター：標的比でＶ底マイクロタイタープレート中に入れた。抗体を所望の濃度で添加した。使用した抗体は：Ｈｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ、ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓ、マウス二重特異性ＩｇＧ １ＤＴ３−Ｄ、およびヒト化二重特異性Ｆ（ａｂ’−ジッパー）_２ Ｈｕ１Ｄ１０−Ｊｕｎ×ＨｕＭ２９１−Ｆｏｓであった。プレートを３７℃で４時間インキュベートし、遠心分離し、そして標的細胞溶解を^５１Ｃｒ放出量の測定により測定した。この細胞傷害性アッセイにおける特異的放出のパーセントを以下のように計算した：｛抗体により放出したカウント−抗体の添加なしに放出したカウント｝／｛０．１％ ＳＤＳにより放出したカウント−抗体の添加なしに放出したカウント｝×１００。

Claims (1)

1. 二重特異性抗体であって、以下の抗原：
   （ａ）Ｔ細胞およびナチュラルキラー細胞からなる群より選択されるエフェクター細胞の表面上の第１の抗原、および
   （ｂ）悪性Ｂ細胞の表面上の２８／３２ｋＤａヘテロ二量体タンパク質上の第２の抗原に結合し、該第２の抗原は１Ｄ１０と称される抗体に特異的に結合し、ここで該二重特異性抗体と該第１および該第２の抗原との該結合が該悪性Ｂ細胞の傷害をもたらす、二重特異性抗体。

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