JP2007217356A - 海洋深層水濃縮物含有組成物及びその製造方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】海洋深層水を、(1) 硫酸イオンを90%以上除去し得るナノフィルター膜(NF膜)で処理する工程、及び(2) 工程(1)で得たNF膜透過水を濃縮してNF膜透過水濃縮物を得る工程を含む製造方法であり、該濃縮物はMgイオン10,000〜100,000mg/L、Caイオン4,000〜40,000mg/L、硫酸イオン0〜1,000mg/Lを含有し、析出物がない組成物である。
【選択図】なし
Description
(1) 硫酸イオンを90%以上、好ましくは92%以上、より好ましくは95%以上除去し得るナノフィルター膜で海洋深層水を処理する工程;及び
(2) 工程(1)で得たNF膜透過水を濃縮してNF膜透過水濃縮物を得る工程;
を含む、皮膚細胞を賦活するための、好ましくはサイトカイン産生を促進することにより皮膚細胞を賦活するための、より好ましくはVEGF及び/若しくはKGF産生を促進することにより皮膚細胞を賦活するための、並びに/又は線維芽細胞の増殖を促進することにより皮膚細胞を賦活するための組成物の製造方法を提供する。
鹿児島県与論島太平洋側沖5〜6kmの海上から船上に設置したポンプにて、約500mの深さの部分の海水を採取した。これを、ナノフィルター膜(東レ社製、ROMEMBRA SU-610、膜材質:架橋全芳香族ポリアミド系複合膜、エレメント形式:スパイラル型、海水試験前NaCl標準性能(500ppm、3.5kg/cm2):脱塩率52.7%及び造水量4.9t/日)(給水圧力0.35MPa、給水温度25℃、給水濃度500mg/L(NaCl)、濃縮水量20L/分でのNa2SO4除去率99.6%、MgSO4除去率99.2%)を備えた装置(水道機工株式会社製、処理能力(25℃、24時間運転/日、12kg/cm2):原水18m3/日から透過水3m3/日及び濃縮水15m3/日を生産)を用いて24時間処理し(25℃、12kg/cm2)、18m3の海洋深層水原水からNF膜透過水3m3及びNF膜濃縮水15m3を得た。
NF膜による処理条件は、以下のように、東レ株式会社における委託試験にて運転条件を決定した。東レ社製のNF膜であるSU-610の標準運転範囲は、給水圧力 < 1.0MPa、濃縮水量/透過水量比 > 6、供給水量 < 50L/分、濃縮水量 > 10L/分となっている。この標準運転範囲から、濃縮水量 > 10L/分より濃縮水量を10.5L/分と設定した。標準運転範囲は濃縮水量/透過水量比 > 6となっているが、海洋深層水では5と設定し、透過水量を10.5/5 = 2.1L/分と設定した。運転圧力は、濃縮水量と透過水量により必然的に決まり、海洋深層水(原水)の塩濃度(電気伝導度52,200μs /cm, 24.8℃)が高いので標準運転範囲よりも高い運転圧力とした。
実施例1で得られたNF膜透過水を、ロータリーエバポレーター(東京理化器械株式会社製)を用いた減圧濃縮(50〜60℃、10〜50mmHg)により濃縮し、濾過にて固液分離して液体(水溶液)を得た。さらに得られた液体を同様に減圧濃縮し、濾過にて固液分離して液体(水溶液)を得た。この操作を1〜3回繰り返し、14倍、30倍、41倍、50倍に濃縮したNF膜透過水濃縮物(水溶液)を得た。濃縮前の全体量を14分の1にしたものが、14倍濃縮物である。濃縮前のNF膜透過水及び濃縮後の各種濃度のNF膜透過水濃縮物中のNa、K、Mg及びCaイオンの含有量並びに屈折率を表3に示す。
実施例2で得たNF膜透過水濃縮物の比較例として、ニガリ1を製造した。与論島にて取水した海洋深層水を平釜製法にて常圧濃縮し、遠心脱水機により固液分離してニガリ1を得て、その各イオンの濃度を測定した。また、実施例1で得たNF膜濃縮水を実施例2と同様の手法を用いて濃縮したNF膜濃縮水濃縮物を製造した。ニガリ1、実施例2で得たNF膜透過水濃縮物(41倍)及びNF膜濃縮水濃縮物中の各種イオンの含有量並びに屈折率を表5に示す。なお、屈折率及び各イオンの濃度は、実施例2と同様の手法を用いて測定した。表5から、新規濃縮物であるNF膜透過水濃縮物は、膜処理により硫酸イオンを90%以上除去することで濃縮時にCaイオンが硫酸カルシウムとして析出しないため、ニガリ1及びNF膜濃縮水濃縮物と比べてCa量が非常に多いことがわかる。また、NF膜透過水濃縮物のCaイオン濃度:Mgイオン濃度 = 1:2.5となった。この濃度比が皮膚細胞を賦活するのに適したイオンバランスであることを、他の細胞試験によっても確認した。
製造方法:全て75℃に加熱し、攪拌溶解する。35℃まで冷却し、化粧水を得た。
製造方法:水相Aと油相Bをそれぞれ80℃に加熱し、溶解する。BをAに加え、乳化機で乳化する。乳化物を高圧処理(25℃、200Mpa、1Pass)にかける。35℃まで冷却し、高圧処理化粧水を得た。
製造方法:全成分を均一になるまで加熱攪拌溶解する。濾過、冷却固化、切断、乾燥を経て石鹸を得た。
製造方法:水相Aと油相Bをそれぞれ80℃に加熱し、溶解する。BをAに加え、乳化機で乳化する。35℃まで冷却し、乳液を得た。
製造方法:水相Aと油相Bをそれぞれ80℃に加熱し、溶解する。BをAに加え、乳化機で乳化する。35℃まで冷却し、クリームを得た。
製造方法
工程(a):表11-1中の水相Aと油相Bをそれぞれ80℃に加熱し、溶解する。BをAに加え、乳化機で乳化する。乳化物を高圧処理(25℃、220Mpa、5Pass)にかけ、多層クリーム前処理物を得た。
工程(b):表11-2中の水相Aと油相Bをそれぞれ80℃に加熱し、溶解する。BをAに加え、乳化機で乳化する。乳化物にC(上記工程(a)で得た多層クリーム前処理物)を加え、攪拌し、Dを加えさらに攪拌する。35℃まで冷却し、クリームを得た。
製造方法:水相Aと油相Bをそれぞれ80℃に加熱し、溶解する。BをAに加え、乳化機で可溶化する。35℃に冷却し、美容液を得た。
製造方法:各成分をフリーズドライしたものを混合し、食品を得た。
実験方法:肌のくすみ、老化に悩む女性17人を対象に、上記の実施例9で製造した多層クリームの連用試験(朝晩2回、顔面)を1ヶ月間実施した。連用前、連用1ヵ月後、それぞれにおいて以下の測定を行った。
測定項目:角層水分量測定装置(SKICON-200EX)により角層水分量を測定した。粘着テープで皮膚表面の角層細胞を採取し、角層の剥離状態と形状を観察した。シリコーンレプリカ剤で頬のレプリカを採取し、キメの状態を観察した。各項目は連用前の状態と比較した。
結果:水分量の測定結果を表14-1に示す。14名に水分量の増加が認められた(平均33%増)。キメ、角層の状態の測定結果を表14-2及び図3に示す。角層細胞状態では14名に重層剥離、細胞形状の改善が認められた。キメ観察では9名に皮溝の鮮明度、皮丘の形に改善が認められた(図3)。
(a) 正常ヒト新生児由来の線維芽細胞(クラボウNHDF)を1×104cell/cm2の密度で48穴プレートに播種し、培地として10%牛胎児血清含有D-MEM(GIBCO社)を使用して、CO2インキュベーター(5%CO2、37℃)内で24時間培養した。
(b) 24時間後、実施例2で得られたNF膜透過水濃縮物(14倍、25倍、41倍、50倍)を 0.1%になるよう1%牛胎児血清含有D-MEMで調整した培地に置換し、2日間培養した。
(c) 2日後、MTT(3-(4,5-ジメチルチアゾール-2-イル)-2,5-ジフェニルテトラゾリウムブロミド)を1.0mg/ml添加したD-MEM培地に交換し、4時間培養した。生成したホルマザンを酸性イソプロパノール(0.04N塩酸になるようにイソプロパノールで調製した溶液)により抽出し、波長570nm、630nmの吸光度をプレートリーダー(BIO-TEC INSTRUMENTS, INC, EL808)で測定した。両測定値の差(570nmの吸光度−630nmの吸光度)により細胞賦活効果を評価した。コントロールとして、NF膜透過水濃縮物非添加の場合の値を100%とし、得られた結果を図4に示した(n=3)。MTT法の詳細は「分子生物学研究のための新培養細胞実験法」黒木登志夫・許南浩・千田和広編(羊土社)を参照されたい。
実施例13の工程(b)において、実施例2で得たNF膜透過水濃縮物(30倍、35倍、41倍、45倍)、実施例3で得たニガリ1及び市販のニガリ2(取水地:高知県室戸市)を0.1%になるよう1%牛胎児血清含有D-MEMで調整した培地に置換して、実施例13と同様の手法により線維芽細胞賦活作用を測定した。コントロールとして、NF膜透過水濃縮物非添加の場合の値を100%とし、得られた結果を図5に示した(n=4)。
実施例13の工程(b)において、実施例2で得たNF膜透過水濃縮物(41倍)並びに試薬を用いて調整したCa水溶液、Mg水溶液、Na水溶液、K水溶液及びCaMgNaK水溶液を、0.1%になるよう1%牛胎児血清含有D-MEMで調整した培地に置換して、実施例13と同様の手法により線維芽細胞賦活作用を測定した。コントロールとして、NF膜透過水濃縮物等非添加の場合の値を100%とし、得られた結果を図6に示した(n=4)。なお、Ca水溶液はCa=25.3g/L、Mg水溶液はMg=63.9g/L、Na水溶液はNa=19.7g/L、K水溶液はK=28.3g/L及びCaMgNaKイオン水溶液はCa=25.3g/L、Mg=63.9g/L、Na=19.7g/L、K=28.3g/Lの濃度の溶液を、それぞれ、試薬を用いて調整し、使用した。試薬は、MgCl2(和光純薬工業株式会社)、CaCl2(特級:和光純薬工業株式会社)、KCl(特級:関東化学株式会社)及び/又はNaCl(特級:和光純薬工業株式会社)を用いた。
24穴プレートにヒアルロン酸(株式会社 資生堂製)より作成したヒアルロン酸スポンジを敷き、該ディッシュに10%牛胎児血清含有D-MEMを0.5mlを加え、30分間インキュベートした。その後余分な培地を抜き取り、コラーゲン(ブタ脚由来、タイプI、3mg/ml、pH3.0)を0.25ml滴下し、1時間インキュベーションした。1時間後、余分な培地を抜き取り、正常ヒト新生児由来の線維芽細胞を5×104cell/cm2の密度で播種し、24時間培養した。24時間後、実施例2で得られたNF膜透過水濃縮物(41倍)を0.01、0.05、0.1%になるよう1%牛胎児血清含有D-MEMで調製した培地を添加し、7日間培養した。7日後、培地を抜き取りエライサ法(ELISA法)により線維芽細胞から放出されたVEGF及びKGFを定量した。サイトカインの測定にはQuantikine Human ELISA Kit (R&D System社)を使用した。コントロールとして、NF膜透過水濃縮物非添加の場合の値を100%とし、得られた結果を図7に示す(n=3)。図7から明らかなごとく、NF膜透過水濃縮物(41倍)のVEGF産生増加率は、試験した全ての濃度においてコントロールよりも高いことがわかった。KGF産生増加率は、0.1%の濃度の時にコントロールよりも高くなることがわかった。
実施例16で作製した培養真皮にMTTを1.0mg/ml添加したD-MEM培地を加え、4時間培養した。産生したホルマザンを酸性イソプロパノールにより抽出し、波長570nm、630nmの吸光度を測定した。両測定値の差により、培養真皮中の線維芽細胞賦活効果を評価した。コントロールとしてNF膜透過水濃縮物非添加物の場合の値を100%とし、得られた結果を図8に示した。図8から明らかなごとく、培養皮膚における線維芽細胞賦活効果は、試験した濃度範囲では、NF膜透過水濃縮物と濃度依存的に高まった。
Claims (9)
- 以下の工程(1)及び(2):
(1) 硫酸イオンを90%以上除去し得るナノフィルター膜で海洋深層水を処理する工程;及び
(2) 工程(1)で得たNF膜透過水を濃縮してNF膜透過水濃縮物を得る工程;
を含む、皮膚細胞を賦活するための組成物の製造方法。 - 該NF膜透過水のBrixが2.8〜3.6、Mgイオン濃度が300〜900mg/L、Caイオン濃度が200〜600mg/L、及びSO4イオン濃度が0〜300mg/Lであり、並びに
該NF膜透過水濃縮物のBrixが30.0〜55.0、Mgイオン濃度が10,000〜100,000mg/L、Caイオン濃度が4,000〜40,000mg/L、及びSO4イオン濃度が0〜1,000mg/Lである、
請求項1に記載の製造方法。 - 該NF膜透過水の濃縮において、濃縮が14〜50倍であり、かつ、NF膜透過水濃縮物が析出物のない水溶液状である、請求項1又は2に記載の製造方法。
- ナノフィルター膜の孔径が0.1〜1 nmであり、かつ膜にかかる圧力が0.3〜2.0 MPaである、請求項1〜3のいずれか1項に記載の製造方法。
- 請求項1に定義した工程(1)及び(2)を含む、海洋深層水の濃縮方法。
- 請求項1に定義した工程(2)により得られるNF膜透過水濃縮物を含む、皮膚細胞を賦活するための組成物。
- 海洋深層水由来であって、Brixが30.0〜55.0、Mgイオン濃度が10,000〜100,000mg/L、Caイオン濃度が4,000〜40,000mg/L、及びSO4イオン濃度が0〜1,000mg/Lであり、Caイオン濃度:Mgイオン濃度 = 1:0.25〜1:4である濃縮物を含む、皮膚細胞を賦活するための組成物。
- 化粧品、皮膚外用剤、経口剤又は食品である、請求項6又は7に記載の組成物。
- 湯の花及び/又はその抽出物を更に含む、請求項6〜8のいずれか1項に記載の組成物。
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